JPS63222699A - 単クローン性抗体及びこれを用いるシユードウリジンψの測定法 - Google Patents
単クローン性抗体及びこれを用いるシユードウリジンψの測定法Info
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- JPS63222699A JPS63222699A JP62056050A JP5605087A JPS63222699A JP S63222699 A JPS63222699 A JP S63222699A JP 62056050 A JP62056050 A JP 62056050A JP 5605087 A JP5605087 A JP 5605087A JP S63222699 A JPS63222699 A JP S63222699A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は単クローン性抗体に関し、更に詳細には進行癌
のマーカーであるシユードウリジンψ(pm@dour
idlneψ)に対する単クロ−ン性抗体に関する。
のマーカーであるシユードウリジンψ(pm@dour
idlneψ)に対する単クロ−ン性抗体に関する。
近年癌関連抗原に対する単クローン性抗体を用いた臨床
検査診断が盛んに実施されてきている。また、癌になる
と増加することが知られている物質である癌胎児性抗原
(CIA )、α−7エトfロテンなどに対する抗体を
用いて同様なことが行われている。
検査診断が盛んに実施されてきている。また、癌になる
と増加することが知られている物質である癌胎児性抗原
(CIA )、α−7エトfロテンなどに対する抗体を
用いて同様なことが行われている。
ところで、癌になると増加する物質、すなわち腫瘍マー
カーと呼ばれている物質の中で、進行癌患者尿中に増加
するものとしてシユードウリジンψが知られている。こ
の物質はトランスファー・リボヌクレイツクアシド(t
−RNA)の構成成分の1つであシ、その増加の原因
は、癌組織におけるt −RNAのブレークダウン(b
reakdown )が正常組織に比較し、充進してい
るためであるといわれているが、その増加のメカニズム
の詳細については未解明である0 現在、このシユードウリジンψ(以下「ψ」と略称する
ことがある)の量を測定し、これから進行癌の存在を判
定する試みがなされているが、ψの定量は高速液体クロ
マトグラフィー(HPLC) でおこなわれるため、
?ンゾルの前処理等が煩雑であり、多検体を測定するに
は非常に長時間を要するという欠点があった。
カーと呼ばれている物質の中で、進行癌患者尿中に増加
するものとしてシユードウリジンψが知られている。こ
の物質はトランスファー・リボヌクレイツクアシド(t
−RNA)の構成成分の1つであシ、その増加の原因
は、癌組織におけるt −RNAのブレークダウン(b
reakdown )が正常組織に比較し、充進してい
るためであるといわれているが、その増加のメカニズム
の詳細については未解明である0 現在、このシユードウリジンψ(以下「ψ」と略称する
ことがある)の量を測定し、これから進行癌の存在を判
定する試みがなされているが、ψの定量は高速液体クロ
マトグラフィー(HPLC) でおこなわれるため、
?ンゾルの前処理等が煩雑であり、多検体を測定するに
は非常に長時間を要するという欠点があった。
本発明者らは先に、簡便なψの測定法を開発すべく、種
々検討をおこなった結果、ψに対する単クローン性抗体
を断念に作成し、これを用いることによシ、尿サンゾル
の前処理操作を行うことな(ELIS人法を応用した多
検体同時測定方法を実施することができ、測定の迅速化
、簡素化がはかれることを見出し特許出願したく41!
?願昭61−143484号)。
々検討をおこなった結果、ψに対する単クローン性抗体
を断念に作成し、これを用いることによシ、尿サンゾル
の前処理操作を行うことな(ELIS人法を応用した多
検体同時測定方法を実施することができ、測定の迅速化
、簡素化がはかれることを見出し特許出願したく41!
?願昭61−143484号)。
しかしながら、特願昭61−143484号に記載され
たψに対する単クローン性抗体は、ウリゾンと96〜9
9%、ウラシルと30〜40%の交叉反応性を有してい
るため、この単クローン性抗体を用いたILfSAによ
るψの定量においては、ψのほかにウリゾンやウラシル
も含めて、測定していた可能性があった。(そのため、
進行癌患者においてさえもψの高 (値例が少ないとb
う、これまでのHP LCによ (る定量のデータと矛
盾する結果が得られるという欠点があった。
たψに対する単クローン性抗体は、ウリゾンと96〜9
9%、ウラシルと30〜40%の交叉反応性を有してい
るため、この単クローン性抗体を用いたILfSAによ
るψの定量においては、ψのほかにウリゾンやウラシル
も含めて、測定していた可能性があった。(そのため、
進行癌患者においてさえもψの高 (値例が少ないとb
う、これまでのHP LCによ (る定量のデータと矛
盾する結果が得られるという欠点があった。
そこで、本発明者らは更に、ψに対する反応特異性の高
A単りローン性抗体を得べく研究をおこなった結果、遊
離のψに対する阻害が強く、ウリゾン及びウラシルに対
する阻害がないかあるいは阻害の極めて弱い単クローン
性抗体はψに対する反応特異性が高く、しかもこれをψ
の測定法に用いた場合、HPLC等による定量のデータ
とよく一致することを見出し、本発明を完成した。
A単りローン性抗体を得べく研究をおこなった結果、遊
離のψに対する阻害が強く、ウリゾン及びウラシルに対
する阻害がないかあるいは阻害の極めて弱い単クローン
性抗体はψに対する反応特異性が高く、しかもこれをψ
の測定法に用いた場合、HPLC等による定量のデータ
とよく一致することを見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明は1次の性質
1) 抗体のクラス: IgG1
2) 抗体価 264倍
3) 交叉反応性 :シユードウリジン 100
%ウリゾン 0% ウラシル 7% 5−フルオロウラシル 28% を有するψに対する単クローン性抗体及びこれを用いる
φの測定法を提供するものである。
%ウリゾン 0% ウラシル 7% 5−フルオロウラシル 28% を有するψに対する単クローン性抗体及びこれを用いる
φの測定法を提供するものである。
本発明のψに対する単クローン性抗体は、例えば次の如
くして調製される。
くして調製される。
すなわち、まず、ψを用いて動物を免疫し、その動物の
牌細胞を採取するOこの工程において、ψはそれ単独で
は免疫原となり得ないので、適当なキャリア・プロティ
ン(Carri・rProt・1m )と結合させたの
ち、免疫原として用いる。ψとしては、例えば進行癌患
者の尿中から公知の方法1例えばシグマ(51gmm
)社から販売されている標品を用いることができ、キャ
リア・プロティンとしては、−・ゾテン部分を免疫担当
細胞が認識−すること全可能にする目的で用いられるノ
ロティン、例えばキーホール・す/ペット・ヘモシアニ
ン、牛血清アルブミン等を用いることができる。また、
このψと千ヤリア・プロティンを結合する方法としては
、例えば、核酸塩基の糖部分を過ヨウ素醗で酸化したの
ちにキャリア・ゾロティンと結合させる等の方法が挙げ
られる。
牌細胞を採取するOこの工程において、ψはそれ単独で
は免疫原となり得ないので、適当なキャリア・プロティ
ン(Carri・rProt・1m )と結合させたの
ち、免疫原として用いる。ψとしては、例えば進行癌患
者の尿中から公知の方法1例えばシグマ(51gmm
)社から販売されている標品を用いることができ、キャ
リア・プロティンとしては、−・ゾテン部分を免疫担当
細胞が認識−すること全可能にする目的で用いられるノ
ロティン、例えばキーホール・す/ペット・ヘモシアニ
ン、牛血清アルブミン等を用いることができる。また、
このψと千ヤリア・プロティンを結合する方法としては
、例えば、核酸塩基の糖部分を過ヨウ素醗で酸化したの
ちにキャリア・ゾロティンと結合させる等の方法が挙げ
られる。
更に、免疫動物としては、マウス、ラット等が挙げられ
る。
る。
次【得られた免疫動物の牌細胞を骨髄腫細胞と融合し、
ハイプリドーマを得る。細胞融合においては、公知の?
リエデレングリコールを用いる方法及びウィルスを用い
る方法のいずれを用いても良いが、ハイプリドーマのス
クリーニングに当っては、キャリア・ゾロナインに対す
る抗体産生ハイプリドーマを除去するための留意が必要
である。このためには、免疫に用いたキャリア・プロテ
ィンと異なった種由来のノロティンとψを結合させたも
のを抗原としてスクリーニングする等の方法を用いるこ
とが望ましい。
ハイプリドーマを得る。細胞融合においては、公知の?
リエデレングリコールを用いる方法及びウィルスを用い
る方法のいずれを用いても良いが、ハイプリドーマのス
クリーニングに当っては、キャリア・ゾロナインに対す
る抗体産生ハイプリドーマを除去するための留意が必要
である。このためには、免疫に用いたキャリア・プロテ
ィンと異なった種由来のノロティンとψを結合させたも
のを抗原としてスクリーニングする等の方法を用いるこ
とが望ましい。
斯くして得られたハイプリドーマは、更に遊離のψ、ウ
リゾン及びクラシルで阻害されるか否か検討し、ψによ
シ強く阻害され、ウリゾン及びウラシルで阻害されない
か、あるいは極めて弱く阻害されるものが選ばれ、以下
常法によシクローニングして目的の抗体を産生ずるハイ
プリドーマを得る。
リゾン及びクラシルで阻害されるか否か検討し、ψによ
シ強く阻害され、ウリゾン及びウラシルで阻害されない
か、あるいは極めて弱く阻害されるものが選ばれ、以下
常法によシクローニングして目的の抗体を産生ずるハイ
プリドーマを得る。
このハイプリドーマによシ産生される本発明の単クロー
ン性抗体は、前記した如き性質を有するものである。
ン性抗体は、前記した如き性質を有するものである。
叙上の如くして得られた単クローン性抗体を用いてψを
測定する場合の例を挙げれば次の通りである〇 すなわち、96ウエルゾレートに、ψと牛血清アルブミ
ン(B8ム)の結合物を02μt/穴で添加したのち、
4℃で、12〜24hr放置する。次に各ウェルに1%
BSA t−含むリン駿緩衝生理食塩水(PH1)t−
100μtずつ添加することにより、抗体その他のタン
ノックの非特異的吸着を防止する0次に試料(尿など)
を各ウェルに50μを添加し、ざらに1本発明の単クロ
ーン性抗体(20倍希釈液)を各ウェルに50 aL添
加する。よくかくはんしたのちに%4℃で1時間放置す
る。反応混合物をPBSでよく洗浄したのちに、アルカ
リホスファターゼ標識ヤギ抗マウスIgG抗体の100
0倍希釈液を各ウェルに100μtずつ添加する。室温
で30分間反応させたのちに、 pnsでよく洗い、水
分を切ったのちに基i溶ff()”ラニトロフェニルフ
オスフエートL wi/ d 、 pH9,8ゾエタノ
ールアミ/バッフ7−)t”1ooAtずつ加え、37
℃で30分間反応させる。各ウェルの405 nmにお
ける吸光度t−EIムリーダーで測定することにより試
料中に存在するφ量の定量を行なう0〔本発明の効果〕 以上のように本発明の単クローン性抗体を用いれば、試
料の前処理t−シとなうことなくψの測定をおこなうこ
とができ、しかもHPLCの如き犬がかりな装置も必要
としないので。
測定する場合の例を挙げれば次の通りである〇 すなわち、96ウエルゾレートに、ψと牛血清アルブミ
ン(B8ム)の結合物を02μt/穴で添加したのち、
4℃で、12〜24hr放置する。次に各ウェルに1%
BSA t−含むリン駿緩衝生理食塩水(PH1)t−
100μtずつ添加することにより、抗体その他のタン
ノックの非特異的吸着を防止する0次に試料(尿など)
を各ウェルに50μを添加し、ざらに1本発明の単クロ
ーン性抗体(20倍希釈液)を各ウェルに50 aL添
加する。よくかくはんしたのちに%4℃で1時間放置す
る。反応混合物をPBSでよく洗浄したのちに、アルカ
リホスファターゼ標識ヤギ抗マウスIgG抗体の100
0倍希釈液を各ウェルに100μtずつ添加する。室温
で30分間反応させたのちに、 pnsでよく洗い、水
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ールアミ/バッフ7−)t”1ooAtずつ加え、37
℃で30分間反応させる。各ウェルの405 nmにお
ける吸光度t−EIムリーダーで測定することにより試
料中に存在するφ量の定量を行なう0〔本発明の効果〕 以上のように本発明の単クローン性抗体を用いれば、試
料の前処理t−シとなうことなくψの測定をおこなうこ
とができ、しかもHPLCの如き犬がかりな装置も必要
としないので。
簡便かつ迅速に進行癌の有無を判定することができる。
また、特願昭61−143484号記載の単クローン性
抗体を用いるよりも、よシ特異的なψの定量が可能であ
る。
抗体を用いるよりも、よシ特異的なψの定量が可能であ
る。
次に実施例を挙げ、本発明を説明する。
実施例1
(1) 免疫原の調製:
癌患者の尿中から常法により分離したψと、キャリアノ
ロティンであるキーホール・リンペット・ヘモシアニン
(K@yhol@lympethemocyanins
; KLH)をエルランガー(Erlaug@r )
とピーザー(Bt*s*r )の方法(過ヨウ素酸酸化
法)により結合した。すなわちψを過ヨウ素酸で酸化し
、過剰の過ヨウ素酸をエチレングリコールで分解したの
ち、アルカリ性(PH9〜9.5)条件下でKLHと結
合させ、シック塩基を形成させる。ついでNaBH4で
還元し、安定化合物を生成させる。
ロティンであるキーホール・リンペット・ヘモシアニン
(K@yhol@lympethemocyanins
; KLH)をエルランガー(Erlaug@r )
とピーザー(Bt*s*r )の方法(過ヨウ素酸酸化
法)により結合した。すなわちψを過ヨウ素酸で酸化し
、過剰の過ヨウ素酸をエチレングリコールで分解したの
ち、アルカリ性(PH9〜9.5)条件下でKLHと結
合させ、シック塩基を形成させる。ついでNaBH4で
還元し、安定化合物を生成させる。
この反応混合物を緩衝液(リン酸緩衝生理食塩水、pH
74)中で一晩透析し、未反応のψを除き、このあと凍
結乾燥に付し一20℃の冷凍庫中に保存した。
74)中で一晩透析し、未反応のψを除き、このあと凍
結乾燥に付し一20℃の冷凍庫中に保存した。
(2) 単クローン性抗体の作成:
(1) (11で得たψとKLH結合物を、フロイン
トの完全アゾユパント(Fret+ndls Comp
lete人djavant )と等量混合し、エマルシ
ョンとしたのち、 BALII / eマウスの腹腔
内に一四当F)50μを投与した。2回目以降は不完全
アゾエパント(incompl@t@adjuvant
) ′t−用いたエマルションを、10日間隔で2回
腹腔内に投与した。最終免疫はψ−KLH100μt/
d溶液をα2d靜脈内投与した。
トの完全アゾユパント(Fret+ndls Comp
lete人djavant )と等量混合し、エマルシ
ョンとしたのち、 BALII / eマウスの腹腔
内に一四当F)50μを投与した。2回目以降は不完全
アゾエパント(incompl@t@adjuvant
) ′t−用いたエマルションを、10日間隔で2回
腹腔内に投与した。最終免疫はψ−KLH100μt/
d溶液をα2d靜脈内投与した。
(i) 最終免疫の3日後に、過免疫マウスから摘出
した牌細胞とBALE / eマウス由来ミエローマ細
胞株ap 2 / O−Ag 14 f deリエチレ
ングリコール(PEG )4000を用いて融合した。
した牌細胞とBALE / eマウス由来ミエローマ細
胞株ap 2 / O−Ag 14 f deリエチレ
ングリコール(PEG )4000を用いて融合した。
細胞は96穴プレートに100μt/穴ずつ加え、24
時間後に培地の半量をハラ) (HAT )培地に交換
し2日おきに培地交換した07〜10日後にHAT耐性
のハイプリドーマの成長がみられてくる。この時期に培
地t−HTic変え、約10日間培養したのちにハイプ
リドーマ生育培地に変えた0 (i) 抗体産生細胞のスクリーニングはψと牛血清
アルプミy (BSA ) f:結合させたものを抗原
として用い2抗体エライザ(ELI8人)法により行っ
た。この方法により、キャリアプロティンに対する抗体
を産生ずるノーイブリドーマの除外に成功した0次にψ
による阻害カニかかるか否かを検討することによりψと
特異的に反応する単クローン性抗体を産生ずるノ・イブ
リドーマを選択したOこのノ・イブ1)ドーマについて
、更にウリゾン及びウラシルによる阻害がかかるか否か
をムNTICANCIRRE8EARCH6: 13
5 − 1.38 (1986) 、CAMCER
R]C8EムRCH46,3164−3167(198
6)、 Journal of Immunol
oglcalMethods、8L (1985)16
9−185等に開示の方法に準じて検討し、これらに対
する阻害が無いか、あるいはあっても極めて弱いものを
選択した。ここで選択された細胞株を限界希釈法により
クローン化し単クローン性抗体産生ハイプリドーマクロ
ーンを樹立した0 (3)単クローン性抗体の性質: ψに対する単クローン性抗体のクラス(サブクラス)は
IgG、であった。抗体価は64倍(培養上清t−2段
階希釈し、それぞれとψ−B8A t−反応させるEL
I8At−行ナツタ時、最も高い吸光度を持続する希釈
倍率を抗体価とした)であった。また%種々のプリン、
ビリミシン、修飾、非修飾ヌクレオシドおよび塩基類と
の交叉反応性を検討したところ、ウリゾンとは交叉せず
、ウラシルと7%、5−フルオロクラシルと28%の交
叉反応性を示したが他の化合物とは、交叉反応性を示さ
なかったO 実施例2 ψの200h 100v 50s 20s L O15
,2%1 s a b (μt / d )溶液をあら
かじめψ−BSAα3μt/穴でコートされた96穴ゾ
レートヘ50μtずつ加え、実施例1で得られた単クロ
ーン性抗体の20倍希釈液を50μtずつ加え、競合阻
害実験を行なった0この結果、図1に示すように遊離の
ψの用量に依存して抗体とψ−BBムの結合が阻害され
ることが明らかとなった。本革クローン性抗体を用いる
ψの定量範囲は1〜50μf/NIであった0 実施例3 実施例2のψ溶液にかえて試料として、正常人および癌
患者の尿を用い、同様に競合阻害試験を行なった。実施
例2の結果から得た検量線を用い、試料中のφ量を測定
した。特願昭61−143484号に記載されたψに対
する単クローン性抗体についても同様の測定を行なうこ
とにより、両単クローン性抗体の比較を行なったところ
、φ値が(平均+2×標準偏差)値を越えた癌患者は新
抗体では6/6、旧抗体では1/6であつ九。
時間後に培地の半量をハラ) (HAT )培地に交換
し2日おきに培地交換した07〜10日後にHAT耐性
のハイプリドーマの成長がみられてくる。この時期に培
地t−HTic変え、約10日間培養したのちにハイプ
リドーマ生育培地に変えた0 (i) 抗体産生細胞のスクリーニングはψと牛血清
アルプミy (BSA ) f:結合させたものを抗原
として用い2抗体エライザ(ELI8人)法により行っ
た。この方法により、キャリアプロティンに対する抗体
を産生ずるノーイブリドーマの除外に成功した0次にψ
による阻害カニかかるか否かを検討することによりψと
特異的に反応する単クローン性抗体を産生ずるノ・イブ
リドーマを選択したOこのノ・イブ1)ドーマについて
、更にウリゾン及びウラシルによる阻害がかかるか否か
をムNTICANCIRRE8EARCH6: 13
5 − 1.38 (1986) 、CAMCER
R]C8EムRCH46,3164−3167(198
6)、 Journal of Immunol
oglcalMethods、8L (1985)16
9−185等に開示の方法に準じて検討し、これらに対
する阻害が無いか、あるいはあっても極めて弱いものを
選択した。ここで選択された細胞株を限界希釈法により
クローン化し単クローン性抗体産生ハイプリドーマクロ
ーンを樹立した0 (3)単クローン性抗体の性質: ψに対する単クローン性抗体のクラス(サブクラス)は
IgG、であった。抗体価は64倍(培養上清t−2段
階希釈し、それぞれとψ−B8A t−反応させるEL
I8At−行ナツタ時、最も高い吸光度を持続する希釈
倍率を抗体価とした)であった。また%種々のプリン、
ビリミシン、修飾、非修飾ヌクレオシドおよび塩基類と
の交叉反応性を検討したところ、ウリゾンとは交叉せず
、ウラシルと7%、5−フルオロクラシルと28%の交
叉反応性を示したが他の化合物とは、交叉反応性を示さ
なかったO 実施例2 ψの200h 100v 50s 20s L O15
,2%1 s a b (μt / d )溶液をあら
かじめψ−BSAα3μt/穴でコートされた96穴ゾ
レートヘ50μtずつ加え、実施例1で得られた単クロ
ーン性抗体の20倍希釈液を50μtずつ加え、競合阻
害実験を行なった0この結果、図1に示すように遊離の
ψの用量に依存して抗体とψ−BBムの結合が阻害され
ることが明らかとなった。本革クローン性抗体を用いる
ψの定量範囲は1〜50μf/NIであった0 実施例3 実施例2のψ溶液にかえて試料として、正常人および癌
患者の尿を用い、同様に競合阻害試験を行なった。実施
例2の結果から得た検量線を用い、試料中のφ量を測定
した。特願昭61−143484号に記載されたψに対
する単クローン性抗体についても同様の測定を行なうこ
とにより、両単クローン性抗体の比較を行なったところ
、φ値が(平均+2×標準偏差)値を越えた癌患者は新
抗体では6/6、旧抗体では1/6であつ九。
この結果を表1に示した。
図1は、本発明の単クローン性抗体の、ψに対する検量
線である。 以上 出願人 財団法人 仙台微生物研究所 ;l゛−
線である。 以上 出願人 財団法人 仙台微生物研究所 ;l゛−
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、次の性質、 (1)抗体のクラス:IgG_1 (2)抗体価:64倍 (3)交叉反応性:シユードウリジン100% ウリゾン 0% ウラシル 7% 5−フルオロウラシル 28% を有するシユードウリジンφに対する単クローン性抗体
。 2、被検体に、下に示す性質を有するシユードウリジン
φに対する単クローン性抗体を加え、生じたシユードウ
リジンφ−単クローン性抗体複合物量を測定することを
特徴とするシユードウリジンφの測定法。 (1)抗体のクラス:IgG_1 (2)抗体価:64倍 (3)交叉反応性:シユードウリジン100% ウリジン 0% ウラシル 7% 5−フルオロウラシル 28%
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62056050A JPS63222699A (ja) | 1987-03-11 | 1987-03-11 | 単クローン性抗体及びこれを用いるシユードウリジンψの測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62056050A JPS63222699A (ja) | 1987-03-11 | 1987-03-11 | 単クローン性抗体及びこれを用いるシユードウリジンψの測定法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63222699A true JPS63222699A (ja) | 1988-09-16 |
JPH0379995B2 JPH0379995B2 (ja) | 1991-12-20 |
Family
ID=13016255
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62056050A Granted JPS63222699A (ja) | 1987-03-11 | 1987-03-11 | 単クローン性抗体及びこれを用いるシユードウリジンψの測定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63222699A (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0325360A (ja) * | 1989-06-09 | 1991-02-04 | Ciba Corning Diagnostics Corp | ホモジニアスアンペロメトリックイムノアッセイ |
EP0433452A1 (en) * | 1989-03-09 | 1991-06-26 | Sendai Institute Of Microbiology | Monoclonal antibody, and assay method, reagent kit, search method and drug missile using said antibody |
WO1999020748A1 (fr) * | 1997-10-16 | 1999-04-29 | Taiho Pharmaceutical Co., Ltd. | Anticorps monoclonal anti-uracile et hybridome produisant cet anticorps |
US7205116B2 (en) | 2005-02-08 | 2007-04-17 | Salamone Salvatore J | 5-Fluoro-uracil immunoassay |
-
1987
- 1987-03-11 JP JP62056050A patent/JPS63222699A/ja active Granted
Cited By (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0433452A1 (en) * | 1989-03-09 | 1991-06-26 | Sendai Institute Of Microbiology | Monoclonal antibody, and assay method, reagent kit, search method and drug missile using said antibody |
EP0433452A4 (en) * | 1989-03-09 | 1991-12-04 | Sendai Institute Of Microbiology | Monoclonal antibody, and assay method, reagent kit, search method and drug missile using said antibody |
JPH0325360A (ja) * | 1989-06-09 | 1991-02-04 | Ciba Corning Diagnostics Corp | ホモジニアスアンペロメトリックイムノアッセイ |
WO1999020748A1 (fr) * | 1997-10-16 | 1999-04-29 | Taiho Pharmaceutical Co., Ltd. | Anticorps monoclonal anti-uracile et hybridome produisant cet anticorps |
US7205116B2 (en) | 2005-02-08 | 2007-04-17 | Salamone Salvatore J | 5-Fluoro-uracil immunoassay |
WO2006086208A3 (en) * | 2005-02-08 | 2007-04-26 | Saladax Biomedical Inc | 5-fluoro-uracil immunoassay |
US7767794B2 (en) | 2005-02-08 | 2010-08-03 | Saladax Biomedical Inc | 5-fluoro-uracil immunoassay |
EP2280280A1 (en) * | 2005-02-08 | 2011-02-02 | Saladax Biomedical Inc. | 5-fluoro-uracil immunoassay |
EP2317325A1 (en) * | 2005-02-08 | 2011-05-04 | Saladax Biomedical Inc. | 5-fluoro-uracil immunoassay |
US9551724B2 (en) | 2005-02-08 | 2017-01-24 | Saladax Biomedical, Inc. | 5-fluoro-uracil immunoassay |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0379995B2 (ja) | 1991-12-20 |
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