JPS63169993A - 酵素によるペプチド結合の生成反応 - Google Patents

酵素によるペプチド結合の生成反応

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JPS63169993A
JPS63169993A JP62265501A JP26550187A JPS63169993A JP S63169993 A JPS63169993 A JP S63169993A JP 62265501 A JP62265501 A JP 62265501A JP 26550187 A JP26550187 A JP 26550187A JP S63169993 A JPS63169993 A JP S63169993A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 酵素によるジペプチドの合成法は周知である。
即ち米国特許第4,165,311号、同第4,436
,925号及び同第4,258,836号には水性媒質
中で不溶性の付加化合物、例えば1モルのフェニルアラ
ニンメチルエステルと1モルのN原子を保護されたアス
パルチルフェニルアラニンメチルエステルとの付加化合
物を合成する方法が記載されている。米国特許第4.2
84,721号には、N原子を保護されたアスパラギン
酸とフェニルアラニンの低級アルキルエステルとを水と
混合しない溶媒の存在下において酵素的に結合させる方
法が記載されている。この溶媒は水と混合し得る共溶媒
を含むことができるが、水と混合し得る溶媒の量は酵素
を不活性化または抑制することを避けるために一定限度
に制限しなければならない、米国特許第4.116,7
68号及び同第4,119,493号においては、水性
媒質中の共溶媒として水と混合し得る溶媒を使用するこ
とが記載されている。同様にアンゲヴアンテ・ヘミ−・
インターナショナル・エディジョン、英語版(^nge
w、 Chem、 Int、 Ed、 Engl、) 
24巻、(1985年)、第2号、87頁には、水と混
合し得る溶媒を水と混合して共溶媒として使用すること
ができるが、プロテアーゼ酵素の触媒活性は共溶媒の濃
度が増加するにつれて減少し、50%以上では、酵素と
してキモトリプシンを使用した場合、合成ができないこ
とが示されている。可能な例外としてはポリオール(例
えば1,4−ブタンジオール)を使用すると、成る場合
には酵素を安定させることもある。
N−フォルミルジペプチド(例えばN−フォルミルアス
パルテーム)及びポリペプチドをつくるための酵素的結
合反応に対し水性媒質または水性−有機媒質を使用する
ことは1408604924及びヨーロッパ特許第01
49594号に記載されている。
種々の科学的な学術雑誌には酵素を水及び水温相性有機
溶媒と組み合わせて使用することが多くの論文に記載さ
れているが、その際の収率は溶媒の選択、水、酵素及び
基質の量に依存して変化するように思われる。また酵素
が固定化されているかどうかも一つの因子になるように
思われる。アセトニトリル/水の50150溶媒系を使
用することは、バイオテクノロジー・アンド・バイオエ
ンジニアリング(Biotech、 Bioeng、)
誌、26巻1146頁(1984年)のニルマン(Ni
lsson)とモスバッハ(Mosbach )の論文
に記載されている。この論文にはまたブタンジオール/
水(90/ 10 )混合物を使用することも記載され
ている。溶媒としてアセトニトリルを使用することは米
国ニューヨーク、ジエー・ウィリー(J、 Wiley
)社、1976年発行、ジエー・ビー・ジョーンズ(J
、B、 Jones) 、シー・ジエー・サイ(C,J
、 5ih)及びディー・バールマン(D、 Perl
man)編「アプリケーション・オヴ・バイオケミカル
・システムズ・イン・オーガニック・ケミストリー(^
pplication of Biochemiaal
 Systems inOrganic Chemis
try)、 J第1部107頁以降のジエー・ビー・ジ
ョーンズ及びジエー・エフ・ベック(J、 F、 Be
ck)の論文、及びカナディアン・ジャーナル・オヴ・
ケミストリー(Can、 J、 Chew+、)誌、5
7巻、2245頁(1979年)のジェー・ビー・ジョ
ーンズ及びエム・エム・メーヘス(M、 N、 Meh
es)の論文に記載されている。L−フェニルアラニン
メチルエステル(即ちL−pheOMe)とN原子を保
護されたN−カーボベンジロキシアスパラギン酸(即ち
Z−asp)とを水−不混和性溶媒/水混和性溶媒の混
合物を使用して結合させることはバイオテクノロジー・
レターズ(Biotech、 Lett、)誌、7巻7
89頁(1985年)に記載されている。モナートシュ
リフツ・フユール・ヘミ−(Monatshrifts
 fur Chew+ie)誌、112巻469〜48
1頁(1981年)のコンネッケ(Konnecke)
等の論文にはその4フ5頁にアセトニトリルを溶媒とし
て使用することが記載されている。他の関連する論文と
しては、ジャーナル・オヴ・バイオケミストリー(J、
 [1iochem、)誌、89巻、385頁(198
1年)、ジャーナル・オヴ・オーガニック・ケミストリ
ー(J、 Org、 Chew、)誌51巻2728頁
(1986年)、コツレクション・オヴ・チェツコスロ
バツク・ケミカル・コンミュニゲーション(Coil、
 Czechos、 Chew、 Com!m、)誌、
49巻、231頁、(1984年)、及びプロシーディ
ング・オヴ・ナショナル・アカデミ−・オヴ・サイエン
ス(Proc、 Natl、^cad、sci、)誌、
80巻、3241頁(1983年〉がある。
文献には一般に酵素、特にプロテアーゼは水に混合し得
る有機溶媒及び水と混合しない有機溶媒の両方で使用さ
れることが記載されているが、水に混合し得る溶媒の方
が幾分劣っているというのが一般的な見解のように思わ
れる。従って「大部分の酵素は親水性の、水と混合し得
る溶媒の中では不活性であり、このことは実質的に水が
酵素から溶媒の方へ分配されることによって容易に理解
される」ということができる。[ケムテツク(Chem
tech)誌、1986年6月号、354頁のニー・ケ
ー・クリバアノフ(^、 K、 K11banov)の
論文参照]。
本発明は10テアーゼを水と混合し得る有機溶媒中で使
用することに関する。
本発明によれば酵素を使用してN置換アスパラギン酸及
びフェニルアラニン低級アルキルエステルから成る群か
ら選ばれた二種の基質の間のペプチド結合生成の触媒作
用を行わせる方法が提供される。該エステルのベンジル
炭素原子は水素と容易に置換り得る動き易い一個または
それ以上の基で置換されていることができる6本発明方
法には上記方法を水と混合し得る溶媒中で行う方法が含
まれる。
水混和性溶媒を使用すると多くの利点が得られる。予想
に反してこの溶媒は酵素から不可欠の水を奪うことなく
使用することができる0例えば連続法を実施する場合、
酵素活性に必要な水は溶媒系の中で2〜10重量%が水
で残りが水混和性有機溶媒または該溶媒と他の溶媒との
混合物であるようにすることで提供される。閉じた系(
例えば連続法ではなくて実質的なバッチ法の場合)にお
いては、酵素とその坦体は上記の2〜10重皿%の水を
与えるのに十分な水を失うであろう、しかし酵素が十分
に大量の実質的に無水の水混和性溶媒と接触すると、十
分な水が抽出され、溶媒中の水含量は約2%以下に落ち
、酵素は変性される。10%以上、例えば最高50%の
量の水を使用することもできるが、その場合には水混和
性溶媒を使用する利点が減少するであろう。
多くの反応において、水混和性溶媒を唯一の溶媒として
或いは共溶媒として使用すると、単一の液相が生じ、溶
媒が水と混合しない場合に起る相変化による制限が避け
られる0例えば、水混和性溶媒を使用するとしばしば反
応速度が増加する。
また大部分の有用な水混和性溶媒の誘電定数は、5〜6
0(好ましくは30〜60)であり、このことは単一の
液相の生成に寄与する。何故ならば大部分のアミノ酸誘
導体は比較的極性があり、このような溶媒に可溶である
からである0例えばフェニルアラニンのメチルエステル
はヘキサンまたは酢酸エチルに対してよりもアセトニト
リルに遥かに多く溶解する。
水混和性溶媒を使用すると反応の平衡を移動させること
ができる0例えば酢酸エチル中においてN−フォルミル
アスパラギン酸とフェニルアラニンメチルエステルとの
反応で約10%の収率が得られるが、アセトニトリル中
ではこの収率は約80%になる。
酵素は固定化されていても「遊離」の形をとっていても
、水混和性溶媒に比べ水混和性溶媒中では遥かに安定で
ある。例えばシリカまたはイオン交換樹脂(例えばアン
パライト)上で固定化されたサーモリジンは、酢酸エチ
ル中よりもアセトニトリル中の方が安定である。ここで
「安定性」という言葉は、酵素が水の抽出または他の手
段による変性に抵抗性をもっていることを意味する。ま
た「溶媒系」という言葉は、液相の溶媒部分を指すのに
用いられ、水混和性溶媒及びそれと併用される任意の共
溶媒、例えば水または水混和性溶媒を含む。
「水混和性有機溶媒」という言葉は、任意の割合で水と
混和し単−相をつくる有機液体を意味する。適当な有機
溶媒の例としては、アルコール(例えばエタノール、1
−プロパツール及び2−プロパツール)、ポリオール(
例えば1.4−ブタンジオール及びジエチレングリコー
ル)、ニトリル(例えばアセトニトリル)、及びエーテ
ル(例えばジオキサン及びテトラヒドロフラン)、並び
に他の溶媒、例えばジメチルフォルムアミド、ジメチル
スルフオキシド及びアセトンがある。
アセトニトリルは好適な水混和性溶媒である。
本発明の具体化例においては、アセトニトリルを広範囲
のアミノ酸及び酵素と共に使用して酵素的結合反応によ
りジペプチド及びポリペプチドをつくることができる。
この反応に使用される適当なアミノ酸の例としては、脂
肪族アミノ酸、例えばグリシン(Gly)、アラニン(
^Ia)、ヴアリン(Va l )、ノルヴアリン<n
orJal) 、ロイシン(Leu) 、イソロイシン
(iso−Leu) 、ノルロイシン(nor−Leu
)のようなモノアミノモノカルボン酸;セリン(Ser
)、スレオニン(Thr) 、ホモセリン(homo−
Ser>のようなオキシアミノ酸、メチオニン(Net
) 、シスチン(CysS)、及びシスティン(Cys
lりのような含硫アミノ酸;アスパラギン酸(^sp)
及びグルタミン酸(II:lu)のようなモノアミノジ
カルボン酸;オルニチン(Orn> 、リジン(Lys
) 、アルギニン(^rg)のようなジアミノジカルボ
ン酸;フェニルアラニン(Phe)、チロシン(Tyr
)のような芳香族アミノ酸;ヒスチジン(旧3)及びト
リプトファン(Trp)のような複素環式アミノ酸が含
まれる。(アミノ酸はこの分野で普通使用されている記
号で表される。)溶媒の選択には注意が必要である。例
えば、酵素が金属を含んでいる場合には、溶媒はこの金
属と錯体を形成してはいけない。DNF及びDMSOは
メタロプロテナーゼの金属成分と錯体をつくると思われ
るので、溶媒系の50%以下(モル基準)に制限し、残
りは例えば水または他の溶媒にすることが好適である。
溶媒はまた酵素または基質と化学的に反応しないという
意味で不活性でなければならない。例えば、アセトンが
溶媒である場合、基質または酵素のアミノ基との反応を
最低限度に抑制する条件下で使用しなければならない。
アシル供与体として作用するアミノ酸は、一般にNの位
置に保護基を有している。適当なNの保護基は、ペプチ
ド合成に通常使用されるもので、例えばt−ブチロキシ
カルボニル(BOC−)、t−アミロキシカルボニル(
t−八〇C)のようなt〜アルコキシカルボニル基、ベ
ンジロキシカルボニル(Z−)、p−メトキシベンジロ
キシカルボニル トキシベンジロキシカルボニル(Z(OMe)t−)、
2,4。
6−ドリメチルベンジロキシカルボニル(TMZ−)、
p−7エニルアゾベンジロキシカルボニル(PZ−) 
、 p−トルエンスルフォニル(tosyl−)のよう
な随時不活性置換基を有し得るベンジロキシカルボニル
基;O−ニトロフェニルスルフェニル(Nps−)等で
ある。
フォルミル基も使用することができる。
アミン部分を供与してジペプチドまたはポリペプチドを
つくるのに適したアミノ酸の例には、上記の任意のもの
が含まれる.フェニルアラニンが好適であり、特にベン
ジル炭素に置換基をもつ誘導体、例えば接触水素化分解
または電解還元による開裂のような方法によって容易に
置換し得る少なくとも1個の基をベンジル炭素に置換基
として有する誘導体を使用することができる.適当な置
換フェニルアラニンの例としては、式 %式% 但し式中phはフェニル基(置換または非置換の)であ
り、Xは一〇〇 、−SH 、−CI 、−Br 、−
4、−OCOC115、−0COOCIIa、−81,
または−SCH zであり、Rは炭素数1〜4の低級ア
ルキル基である、に対応するものが含まれる。
アミノ基供与アミノ酸は適当なC末端保護基によって保
護される.アミン成分のカルボキシル基保護基(C末端
保護基)には、メトキシ(−OMe)、エトキシ(−0
Et)のようなアルコキシ基;L−ブトキシ(0−t−
Bu)のようなt−アルコキシ基;及びベンジロキシ(
−0Bzl) 、p−ニトロベンジロキシ(−0BZL
(p−NO2))、ペンズヒドリロキシ(−0Bzh)
 、ベンジルアミノ(−NHBz l )、2.4−ジ
メトキシベンジルアミノ(−NHDBN)、ベンジルヒ
ドリルアミノ(−NHBzh)のような置換基を有する
こともあるベンジロキシ基:または非置換のアミノ基(
−Ni1.)等が含まれる.まなアミド及びヒドラジッ
ド基もC末端保護基とし用いることができる。
使用できる酵素は、ペプチド結合の生成を媒介し得る公
知のものであり、アミノペプチダーゼ(例えばロイシン
アミノペプチダーゼ)、カルボキシペプチダーゼ(例え
ばカルボキシペプチダーゼy)、セリンプロテイナーゼ
(例えばキモトリプシン、スブチリシン)、チオールプ
ロテイナーゼ(例えばパパイン、プロメライン)、酸プ
ロテイナーゼ(例えばペプシン)、及びメタロプロテイ
ナーゼ(例えばサーモリシン、及びビブリオ・プロテオ
リテイクス(Vibrio Proteolyticu
s)から得られるメタロエンドブロテイナーゼ(実施例
6参照))が含まれる.酵素は純粋な形で使用する必要
はなく、一種の酵素または多数の酵素を含む多少とも租
製の製品(例えば部分的に精製した醗酵ブイヨン濃縮物
)であることができる。
水混和性有機溶媒は実質的に無水の「割らない」形また
は水及び/又は他の有機溶媒(水混和性溶媒及び水混和
性溶媒の両方)と組み合わせて使用することができる.
水を使用する場合、その量は一般に全溶媒系(例えば水
足す水混和性溶媒)に関し50重量%より少ない.しか
し、或種の溶媒は金属イオンと錯体をつくり種々のメタ
ロプロテイナーゼ酵素を不活性化するようなので、この
ような溶媒と共に使用する水の量は溶媒系の50重量%
に等しいかまたはそれ以上でなければならない。
錯体をつくる溶媒の例としてはDMF及びDMSOが含
まれる.溶媒が乾燥したまたは割らない形である場合、
溶媒は酵素を固定化するのに用いられた坦体から与えら
れる若干の水(溶媒の約10重量%までの)を含んでい
よう.好適なアセトニトリル溶媒の場合、−mに水の量
は最低限度に保たれ、「割らない」アセトニトリルは良
好な溶媒であることが見だされている.この場合、含ま
れた水は坦体から来るものだけである.しかし連続法を
行う場合、アセトニトリル溶媒中の水の量は少なくとも
10重量%の水準に保たれなければならず、一般に5〜
50重量%の範囲に入る。この水の量は酵素の脱水を避
けるに有利であり、基質を溶解する助けとなることがで
きる。連続法を行う場合には、必要ならば基質流を介し
て水を加えることができる。さらに詳細には、Nを保護
されたアスパラギン酸をフェニルアラニン低級エステル
及びそのベンジル置換誘導体と結合させる場合(連続法
でもバッチ法でも)、アセトニトリルを種々の量の水と
用いることができるが、水の量は50重量%より少ない
ことが好適である。即ちCI*CN/)IJの重量比は
lを、好ましくは約2.5を越えていなければならない
当業界の専門家に公知の方法を用い、各結合反応に対し
て選ばれ゛た有機溶媒は、該溶媒に対する基質及び生成
するジペプチドまたはポリペプチドの溶解度、水または
他の共溶媒の存在量、酵素に対する共溶媒の効果及び他
の因子のようないくつかの因子に関して最適化すること
ができる。
周知のように、多くのプロテアーゼ酵素はエステラーゼ
活性をも示す、この活性は水混和性有機溶媒を適当に選
択することにより時により減少させることができる0例
えばアクリロニトリルはエステラーゼ活性を減少させる
若干の効果を示す。
またエステラーゼ活性が別の酵素によって与えられるか
、または同じ分子上にあるエステラーゼ活性部位がプロ
テアーゼ活性部位と異なっている場合には、エステラー
ゼ活性をさらに減少させる阻害剤を使用することもでき
る。適当な阻害剤は、えん麦、そら豆、いんげん豆及び
馬鈴薯から抽出することができる。この抽出法は日本農
芸化学会誌、31巻、38頁、(1957年)に記載さ
れている。
阻害剤は純粋な物質の必要はなく、粗抽出物でよい。
「結合した」という言葉は酵素が適当な不溶性坦体上に
固定化され、回収及び再使用し得る錯体を形成している
ことを意味する。適当な固定化の方法には、物理的吸着
、イオン結合、共有結合、吸着に続く交叉結合または後
酵素を反応媒質に実質的に不溶な坦体材料に包含させる
その他の方法が含まれる。適当な基質としては、珪酸質
材料(例えば多孔性シリカ)、非珪酸質セラミックス(
例えばアルミナ)、または天然または合成有機重合体材
料(例えばアンパライトXAD−7、ポリアクリルアミ
ド共重合体、アガロース及びアルギネートのような樹脂
)がある、これに対し「遊離」の酵素は結合しておらず
、溶媒系中に溶解または懸濁させることができる。
基質アミノ酸の濃度を高くし適切な反応速度で工程を行
うようにすることが好咳しい、結合反応に与える各基質
は、溶媒に対するその溶解度範囲内の濃度で使用される
。しかし反応の進行と共に原料が消費されるから、基質
の一部を懸濁状態に保つことができる。溶液中において
基質材料は夫々的0、C01〜約2モル、好ましくは約
0.1〜約1モルの範囲の濃度で存在しなければならな
い。
N−置換アスパラギン酸/フェニルアラニン低級アルキ
ルエステルの結合反応に関しては、酸/エステルのモル
比は両方の基質がL配置を有する場合には1:1である
ことができる。実際には10:1〜1:10の範囲で使
用することができ、3:1〜1:5が好適である。両基
質がOL配装をもっている場合には、し−異性体の割合
が上記範囲に入るような量で使用することができる。
本発明は、例えば水を含んだ固定化された酵素を、両方
の原料を含む水と混和し得る有機溶媒中に懸濁させ、撹
拌しながら反応を進行させることにより実施することが
できる。反応が完結したら、□固定化された酵素と反応
生成物を含む溶液または懸濁液とを濾過または他の分離
方法により互いに分離することができる。
本発明はまた水を含んだ固定化した酵素を充填したカラ
ム中に、二種の原料を含む水混和性有機溶媒を流すこと
によっても行うことができる。この方法によれば、反応
を連続的に行うことができ、本発明を工業的に応用する
際に有利である。
反応温度は通常約10〜約80℃、好ましくは約20〜
約50℃である。
反応時間は二つの基質の濃度、固定化した酵素の量、予
め決められた転化率等に依存する。しかし、通常反応時
間は約0.5〜約200時間であり、好ましくは約2〜
約24時間で十分である。
所望の生成物がアスパルテームとして知られているジペ
プチドである場合には、反応生成物、即ちN−置換−L
−アスパルチル−し−フェニルアラニンメチルエステル
は通常の方法、例えば反応生成物を濃縮した後再結晶、
抽出等を行う方法により分離することができる。また反
応混合物は当業界に公知の適当な方法により固定化され
た酵素から分離することができる。分離後、固定化され
た酵素は再使用できる。
本発明を実施する場合、アミノ酸基質はDLまたはLの
配置をもっていることができる。酵素がL異性体に対し
選択性をもっている時には、DL異性体を使用してもし
異性体だけが反応に関与し、D異性体は反応せずに反応
媒質中に残る。酵素が立体選択性をもたない場合には、
D異性体を例えばり、L選択性をもたないセリンプロテ
アーゼのような酵素と一緒に使用することができ、アミ
ノ供与体(例えばアラニンまたはフェニルアラニン)は
Dであることができる。
実施例1 サーモアーゼの固定化 アンパライトXAD−7樹脂のビーズをエタノールで洗
浄し、次いで水で洗浄して微細物を除去する。
洗浄したビーズを0、C5モルMes70、C2モルC
aCl2溶液の中に再懸濁させる。アンパライトXAD
−7を真空濾過して過剰の水を除去した後、ビーズ(1
00g)を4°Cにおいて9gのサーモアーゼを含む0
,05モルMes10、C2モルCaCLl+lI溶液
100m1に懸濁させる。
−晩振盪した後、固定化したサーモアーゼを上記混合M
fr溶液で十分に洗浄した後真空濾過した。
実施例2 遊離酵素を使用した 「割らない」水混和性溶媒中での結合反応2511のフ
ラスコ中においてZ−L−アスパラギン酸(0,192
g、80ミリモル)及びり、L−エリスローフェニルセ
リンメチルエステル(0,42B、240ミリモル)を
割らない有機溶媒(アセトニトリル、ジオキサン、Tl
(FまたはDMF)に溶解し、最終容積を9r#1にす
る。粗製のサーモアーゼ粉末(120mg)を上記反応
混合物に加え、反応フラスコを40℃で振盪する。
10時間後、反応混合物中のZ−アスパルチル−1,−
エリスロフェニルセリンメチルエステル(Z−OH−ア
スパルテーム)の濃度をHPLCによって決定する。結
果を次の表に示す。
Z−OH−7スバ1.1   0  1.2   1.
5ルー−ムの゛  nM       mM    m
M実施例3 固定化した酵素を用いる結合反応実施例2
と及び同じ実験を繰返したが、固定化したサーモアーゼ
(サーモアーゼを固定化する方法は実施例1記載の通り
)1gを120Bの粗製サーモアーゼ粉末の代りに用い
た。20時間の反応後、Z−OH−アスパルテームの濃
度を肝LCで決定した。
結果を下記表に示す。
Z−OB−アスバ  8.1  0.5  9.9  
 65ルー−ムの゛   mM    mM   wM
    mM実施例4  Z−Phe−PheOMeを
生成するためのアセトニトリル中での結合反応 25m lのフラスコ中においてZ−L−フェニルアラ
ニン(0,216g 、80ミリモル)及びL−フェニ
ルアラニンメチルエステル(0,32,,200ミリモ
ル)を割らないアセトニトリルに溶解し、最終容積を9
mlにする。固定化したサーモアーゼ(2,5g)を反
応混合物に加え、反応フラスコを40℃で振盪する。1
8時間反応させた後、Z−L−フェニルアラニル−1、
−フェニルアラニンメチルエステルの濃度は70ミリモ
ルであった。
実施例5  D、L−エリスロフェニルセリンの結合反
応 11のバイオリアクターの中で30FiのZ−asp、
65gのり、L−エリスロフェニルセリンメチルエステ
ル及び80gの湿った固定化したサーモアーゼを40℃
において650 mlのアセトニトリルに混合する。2
4時間後22HのZ−L−アスパルチル−フェニルセリ
ンメチルエステルを得た。
実施例6 ビブリオ・プロテオリティクス酵素によるプ
ロテアーゼ(即ち「ビブリオ」)の調製1、種子培養の
調製 ^、準備 −500IIlの目盛付きエルレンマイヤー
・フラスコの中に100 mlの種菌培地を入れ、12
1℃で20分間オートクレーブ処理する。
B、接種 −微生物の入った単一の一70℃のアンプル
を水道水の下で解かし、種菌フラスコへ無菌的に移す。
C1培養 −接種したフラスコを25Orpm/ 27
℃で18時間培養する。
0、640nmで測定された増殖度は、光学密度4、C
〜6、Cであった。ブイヨンのpHは約8、Cであった
2、規模を拡大した醗酵 −1,51の醗酵容器中で容
8It、onで行う。
^、準備 −容器に培地のすべての成分くポリペプトン
20g、食塩20g 、 Mg5O□・711z00.
4g、 P −20000,2+sl)を加えたが、滅
菌前にはpHの調節は行わない、 pttは約7、Cで
なければならない、オートクレーブ中で滅菌した場合、
1、C1の容器を温度121℃で45分間滅菌しなけれ
ばならない。
B、接種 (1)設定及び二重チェック操作パラメータa、 6N
のNaOHでpHを約8.6にする。
b、温度75℃ c、 RPM  1000 d、空気1.OLPMにおいて溶存酸素の読み 100
% (2) 10m1の種菌ブイヨンを接種した。
C1操作 (1)上記パラメータを維持する。
(2)溶存酸素は最高要求量の約75〜80%に低下す
る。
(3)次の量を監視する。
a、光学濃度 −640nmにおける吸光度の読み、約
12〜14時間で光学濃度は10〜12のピークに達す
る。
b、メタロエンドペプチダーゼの生成 −毎秒的0.1
単位。
3、ビブリオ酵素の収得及び濃縮 醗酵開始後約14〜16時間で生成酵素は、ファグラ(
FAGL^)試験法で測定して約0.10単位/秒活性
の力価に達する。ブイヨンは細胞が進んだ段階に分裂す
る前に収得する(約10〜25%)。
先ずブイヨン全体を遠心分離にかけ細胞部分を分離する
0次に上澄液をアミコン(八m1con>社製の5IO
YIO及び5IYIO限外濾過カートリツジを用いて7
0〜100倍に濃縮する。最後に濃縮液を3回0、C1
モルのhepes及び0、C1モルのCaCI=緩衝溶
液(pH7,2)で洗浄する。
上記方法を用いるビブリオ・プロテオリティクスを米国
メリーランド州ロックヴイル(Roakville)パ
ーク・ローン・ドライヴ(Park Lawn Dri
ve) 12301所在のアメリカン・タイプ・カルチ
ャー・コレクション(^merican Type C
u1ture Co11ection)番号^TCC5
3559として寄託した。
実施例7N−フォルミルアスパラギン酸の結合反応 実施例6と同様にしてつくったビブリオ・プロテオリテ
ィクスの醗酵ブイヨンを濃縮し洗浄した。
醗酵ブイヨン中の中性のプロテアーゼを実施例1と同様
な方法でアンパライトXAD−7上で固定化した。N−
フォルミルアスパラギン酸(1,93g)及びL−フェ
ニルアラニンメチルエステル(6,2g)をアセトニト
リルに溶解し最終容積を1501にする。湿った固定化
中性プロテアーゼ14.5.を加えた後、反応を室温で
24時間行う、最終生成物(N−フォルミルアスパルチ
ル−L−フェニルアラニンメチルエステル)の濃度はH
PLCで測定して11.7g/lであった。
溶媒を真空蒸発させ、残渣を酢酸エチルに溶解し、IN
のHCIで2回洗浄する。水性相を酢酸エチルで処理す
る。−緒にした有機相を塩水で洗浄し、−晩Mg5Ot
上で乾燥する。溶媒を蒸発させると無色の固体が得られ
、これをジクロロエタンから再結晶しN−フォルミルア
スパルテームと同定した。
実施例8 水/水混和性溶媒系の使用 水/水混和性有機溶媒をジペプチドの酵素的合成反応の
有機媒質として試験した。各反応混合物中の基質の濃度
はZ−アスパラギン酸が80ミリモル、D、L−エリス
ロフェニルセリンメチルエステルが240ミリモルであ
った。サーモアーゼ酵素及びシリカを使用して得た固定
化した触媒は、ライ−トール(Weetall)のカル
ボニル−アルキルアミン共有結合法[メソッズ・イン・
エンザイモロジー(Methods in Enzym
ology)84巻、134〜148頁(19)6年)
のエイチ・エイチ・ライ−トールの論文参照]を使用し
て調製した。
Z−7スバルチルーし一エリスロフェニルセリンメチル
エステルの合成は、シリカで固定化した酵素を用いた場
合、溶媒が90%以上を占める濃度のエタノール、ジメ
チルスルフオキシド、N、N−ジメチルフォルムアミド
またはアセトン中では認められなかった。シリカで固定
化した酵素を用いた場合、割らない1,2−ジメトキシ
エタン及び1,4−ブタンジオール中におけるジペプチ
ドの収率は共に理論値の25%であった。シリカではな
くアンパライトを使用した実施例3とこの結果とを比較
すると、坦体の選択が酵素反応に影響を及ぼし得ること
が示される。アンパライトで固定化した酵素を用いた場
合、95%エタノール及び1.4−ブタンジオール中で
のジペプチドの収率は夫々20%及び40%であった。
すべなの反応は40℃で行った。
実施例9 水/アセトニトリル溶媒系の使用固定化した
または遊離のサーモアーゼ酵素を使用し、ジペプチドの
酵素的合成に対する水/水混和性有機溶媒としてアセト
ニトリルを試験した。
この合成反応に使用した基質の濃度はZ−アスパラギン
酸が80ミリモル、D、L−エリスロフェニルセリンメ
チルエステルまたはL−フェニルアラニンメチルエステ
ルが240ミリモルであった。実施例1記載の吸着法に
よりサーモアーゼ酵素をアンパライト上に固定化した0
合成反応は100%アセトニトル、75%アセトニトリ
ル/25%水、50%アセトニトリル150%水及び2
5%アセトニトリル/75%水系中で試験した。24時
間反応を監視し、反応速度及び収率を決定した。遊離の
酵素を高アセトニトリル濃度で使用した場合、ジペプチ
ドの反応速度は遅いことが認められた。アセトニトリル
濃度が25及び50%の場合にはジペプチド合成反応は
著しくは認められなかった。しかし、アセトニトリル濃
度が75%以上の場合は反応速度は同様であり、共に2
4時間で約70%の収率を示しな。アセトニトリル濃度
90%以上でさらに長く培養すると、ジペプチドの収率
は90%を越えた。すべての反応は40℃で行った。
実施例10  結合反応の大規模化 固定化したプロテアーゼ酵素を含むli!tit拌器付
タンク反応器を使用して、Z−アスパルチル−L−フェ
ニルアラニンメチルエステルジペプチドの連続製造法を
示す。80gのアンパライト触媒をZ−アスパラギン酸
160ミリモル及びL−フェニルアラニンメチルエステ
ル480ミリモルを含む700 mlの割らないアセト
ニトリル中に加える。触媒は実施例1の方法で調製した
。一定に撹拌しながら反応温度を40℃に保つ、26時
間後90%のジペプチド収率が得られた。3回の別々の
操作中同じ酵素触媒を使用して新しい反応原料とアセト
ニトリルとを反応器に装入したが、活性の低下は見られ
なかった。
実施例11  アセトニトリル中における固定化したプ
ロナーゼによる 2−^5p−L−エリスロPh5erONeの合成Z−
アスパラギン酸(192+*g)及びり、L−エリスロ
フェニルセリン(411mg)をアセトニトリル(9m
l)中に含む溶液に、アンパライト上で固定化したプロ
ナーゼE[シグマ・ケミカルズ(Sigma Chem
icals)社製〕(湿った重量1.5g)を加えた。
この混合物を23℃で19時間振盪する。llPLc分
析の結果182HのZ−^5p−L−エリスロPhse
rOMeが得られた。
実施例12  アセトニトリル中における固定化したキ
モトリプシンによる Z−L−Tyr−D−^1aOMeの合成N−Z−L−
チロシン(102B、0.32ミリモル)及びD−アラ
ニンメチルエステル(1371111,0,66ミリモ
ル)をアセトニトリル(4ml)中に含む溶液に、アン
パライトXAD−7上で固定化したキモトリプシン(湿
った重量0.5g)を加えた。この混合物を室温で39
時間振盪する。固定化した酵素を濾過し、溶媒を蒸発し
て85mgのZ−L−Tyr−D−^1aOMeを得た

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1、N−置換アスパラギン酸またはその塩、及びベンジ
    ル基の炭素原子が一個またはそれ以上の水素と容易に置
    き換り得る動き易い基によって置換されているフェニル
    アラニン低級エステルから成る群から選ばれた二種の基
    質の間にペプチド結合を生成させる酵素反応において、
    水混和性有機溶媒の存在下において該反応を実施するこ
    とを特徴とする改良方法。 2、水を含んだ固定化されたメタロプロテイナーゼの存
    在下において反応を行う特許請求の範囲第1項記載の方
    法。 3、酵素がサーモリシンである特許請求の範囲第1項記
    載の方法。 4、N原子の保護基がフォルミルまたはベンジロキシカ
    ルボニルである特許請求の範囲第1項記載の方法。 5、フェニルアラニンのベンジル炭素がヒドロキシルで
    置換されている特許請求の範囲第1項記載の方法。 6、エステルの低級アルキル置換基がメチルである特許
    請求の範囲第1項記載の方法。 7、溶媒がアセトニトリルである特許請求の範囲第1項
    記載の方法。 8、エステラーゼ阻害剤の存在下において反応を行う特
    許請求の範囲第1項記載の方法。 9、水混和性溶媒は、モノヒドロキシまたはポリヒドロ
    キシアルコール、ニトリル、エステルまたはそれらの混
    合物である特許請求の範囲第1項記載の方法。 10、N−保護基がt−アルコキシカルボニル、ベンジ
    ロキシカルボニル、p−トルエンスルフォニル、o−ニ
    トロフェニルスルフェニルまたはフォルミルである特許
    請求の範囲第1項記載の方法。 11、N−末端保護基をもったアミノ酸またはペプチド
    或いはその塩の酸成分を、C−末端保護基をもったアミ
    ノ酸またはペプチド或いはその塩のアミノ成分とを、ペ
    プチド結合の生成を媒介することが知られている酵素及
    びアセトニトリル含有溶媒の存在下において反応させる
    ことによってジペプチドまたはポリペプチドを製造する
    方法。 12、溶媒は少なくとも50重量%のアセトニトリルを
    含んでおり、残りが水である特許請求の範囲第11項記
    載の方法。 13、溶媒は少なくとも50重量%のアセトニトリルを
    含んでおり、残りが水、一種またはそれ以上の水混和性
    有機溶媒またはそれらの混合物である特許請求の範囲第
    11項記載の方法。 14、酵素がサーモリシンである特許請求の範囲第11
    項記載の方法。 15、N−末端保護基をもつアミノ酸がアスパラギン酸
    である特許請求の範囲第11項記載の方法。 16、C−末端保護基をもつアミノ酸がフェニルアラニ
    ンの低級アルキルエステルである特許請求の範囲第11
    項記載の方法。 17、保護されたアミノ酸がフェニルアラニンのメチル
    エステルである特許請求の範囲第11項記載の方法。 18、N原子の保護基がフォルミルまたはベンジロキシ
    カルボニルである特許請求の範囲第11項記載の方法。 19、エステラーゼ阻害剤の存在下において反応を行う
    特許請求の範囲第11項記載の方法。 20、N−保護基がt−アルコキシカルボニル、ベンジ
    ロキシカルボニル、p−トルエンスルフォニル、o−ニ
    トロフェニルスルフェニルまたはフォルミルである特許
    請求の範囲第11項記載の方法。 21、フェニルアラニンの低級アルキルエステルは式 ▲数式、化学式、表等があります▼ 但し式中Phはフェニル基であり、Xは−OH、−SH
    、−Cl、−Br、−I、−OCOCH_3、−OCO
    OCH_3、−NH_2または−SCH_3であり、R
    は炭素数1〜4の低級アルキル基である、 に対応する特許請求の範囲第1項記載の方法。 22、Xは−OHであり、Rはメチルである特許請求の
    範囲第21項記載の方法。 23、C−末端保護基をもつアミノ酸はD−アラニンで
    ある特許請求の範囲第11項記載の方法。
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