JPS6240298A - 微生物処理による光学活性なジブロモプロパノ−ルの製法 - Google Patents
微生物処理による光学活性なジブロモプロパノ−ルの製法Info
- Publication number
- JPS6240298A JPS6240298A JP17909685A JP17909685A JPS6240298A JP S6240298 A JPS6240298 A JP S6240298A JP 17909685 A JP17909685 A JP 17909685A JP 17909685 A JP17909685 A JP 17909685A JP S6240298 A JPS6240298 A JP S6240298A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- propanol
- dbp
- dibromo
- racemic
- culture medium
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明はうセミ体より微生物による光学活性なS−(−
) −2,3−ジブロモ−1−プロパノールの分取法に
関する。
) −2,3−ジブロモ−1−プロパノールの分取法に
関する。
(従来技術)
2.3−ジブ0モー 1−プロパノール(以下、本化合
物をβ−DBPと略称する)は下記構造式(I)にて表
わされる物質であり、その構造(下記構造式(■))の
原料として知られている。またエビブロモヒドリンと共
に各種の医薬。
物をβ−DBPと略称する)は下記構造式(I)にて表
わされる物質であり、その構造(下記構造式(■))の
原料として知られている。またエビブロモヒドリンと共
に各種の医薬。
農薬等の中間原料として重要なものである。
Sr 0H
(I) (It) (II)
しかしながら、このβ−DBPは合成法によつてつくら
れるために光学的に不活性なラセミ体である。
しかしながら、このβ−DBPは合成法によつてつくら
れるために光学的に不活性なラセミ体である。
ラセミ体β−DBPより光学活性なβ−DBPを製造す
葛方法は知られていない。 ((発
明の目的) 本発明はラセミ体β−DBPを他の誘導体を経ずに直接
微生物に資化させて、光学活性なβ−DBPを分取する
ことを目的とする。 ・:′(発明0
構成) 3
本発明はすなわちR−(+)−2,3−ジプロ
!ミモー 1−プロパ・ノール資化能を有するシュ
ードモナス属に属する細菌、又はその培養菌体を、と作
用せしめてS−(−) −2,3−ジブロモ−1−プロ
パノールを分取することを特徴とする微生物処理による
光学活性なジブロモプロパノールの製法である。
葛方法は知られていない。 ((発
明の目的) 本発明はラセミ体β−DBPを他の誘導体を経ずに直接
微生物に資化させて、光学活性なβ−DBPを分取する
ことを目的とする。 ・:′(発明0
構成) 3
本発明はすなわちR−(+)−2,3−ジプロ
!ミモー 1−プロパ・ノール資化能を有するシュ
ードモナス属に属する細菌、又はその培養菌体を、と作
用せしめてS−(−) −2,3−ジブロモ−1−プロ
パノールを分取することを特徴とする微生物処理による
光学活性なジブロモプロパノールの製法である。
本発明者らが土壌中より分離採取して本発明において用
いた微生物の菌学的性質は表1に示すとおりである。
いた微生物の菌学的性質は表1に示すとおりである。
表 1
a、形態
■細胞の形及び大きさ 桿菌、0゜4〜0,6
X 1.2〜1.8μ■■抗酸性
無 す、各培地における生育状態 ■肉汁寒天平板培養(30’C,3日間培養)イ)コロ
ニー形状の遅速 普通 直径約3〜4mm口)コ
ロニーの形状 円形 ハ)コロニー表面の形状 平滑 二)コロニーの隆起状態 凸円状ホ)コロニーの
周縁 金縁 へ)コロニーの内容 均質 ト)コロニーの色調 乳白色チ)コロニーの
透明度 半透明り)コロニーの光沢
鈍光 ヌ)可溶性色素の生成 無 ■肉汁寒天斜面培1(30℃、3日間培養)イ)生育の
良否 生育良好、糸状口)コロニーの形
平滑 ハ)コロニーの断面の隆起状態 扁平状二)コロニーの
光沢 鈍光 ホ)コロニー表面の形状 平滑 へ)コロニーの透明度 半透明ト)コロニーの
色 乳白色■肉汁液体培養(30’C,3
日間培養)イ)生育性状 膜状 0)濁度 わずかに濁る。
X 1.2〜1.8μ■■抗酸性
無 す、各培地における生育状態 ■肉汁寒天平板培養(30’C,3日間培養)イ)コロ
ニー形状の遅速 普通 直径約3〜4mm口)コ
ロニーの形状 円形 ハ)コロニー表面の形状 平滑 二)コロニーの隆起状態 凸円状ホ)コロニーの
周縁 金縁 へ)コロニーの内容 均質 ト)コロニーの色調 乳白色チ)コロニーの
透明度 半透明り)コロニーの光沢
鈍光 ヌ)可溶性色素の生成 無 ■肉汁寒天斜面培1(30℃、3日間培養)イ)生育の
良否 生育良好、糸状口)コロニーの形
平滑 ハ)コロニーの断面の隆起状態 扁平状二)コロニーの
光沢 鈍光 ホ)コロニー表面の形状 平滑 へ)コロニーの透明度 半透明ト)コロニーの
色 乳白色■肉汁液体培養(30’C,3
日間培養)イ)生育性状 膜状 0)濁度 わずかに濁る。
ハ)ガス発生 なし
ホ)培地の着色 なし
■リドマス・ミルク
凝固せず、リドマスを淡青色あるいは無色にする。
C0生理学的試験
1 硝酸塩の還元 十
2 MRテスト −
3 VPテスト −
4 インドール生産 −
5硫化水素の生成 −
6デンプンの加水分解 −
7fi!2窒反応 −
8クエン酸の利用 十
11 ウレアーゼ +12 オキシ
ダーゼ +13 カタラーゼ
+14 生育の範囲 pH5,
5〜9.O1温度20〜37′C15M素に対する態度
好気性16 0−Fテスト(Huoh Le
ifson法による) 017 糖類からの酸及びガ
スの生成の有無糖類 酸 ガス (1)D−グルコース + −(2)D−ガラ
クトース 十 −(3)ショ糖 +
− (4)トレハロース + −(5)デンプン
−− 以上の結果をもとにパージエイズ・マニュアル・オブ・
デターミネイティブ・バクテリオロジイ(Beraey
’ s Manual of Determinat
iveB acterto+ooy )第8版の記載に
基ツキ帰属同定を行うと本国はシュードモナス属の特徴
を有する。
ダーゼ +13 カタラーゼ
+14 生育の範囲 pH5,
5〜9.O1温度20〜37′C15M素に対する態度
好気性16 0−Fテスト(Huoh Le
ifson法による) 017 糖類からの酸及びガ
スの生成の有無糖類 酸 ガス (1)D−グルコース + −(2)D−ガラ
クトース 十 −(3)ショ糖 +
− (4)トレハロース + −(5)デンプン
−− 以上の結果をもとにパージエイズ・マニュアル・オブ・
デターミネイティブ・バクテリオロジイ(Beraey
’ s Manual of Determinat
iveB acterto+ooy )第8版の記載に
基ツキ帰属同定を行うと本国はシュードモナス属の特徴
を有する。
以下、本発明者らは本国をシュードモナスp seud
omonas OS −K −29(微工研菌寄第7
846号:FERM P−7846)と命名した。
omonas OS −K −29(微工研菌寄第7
846号:FERM P−7846)と命名した。
本発明ではラセミ体β−DBPに、この微生物を接触さ
せてS−(−)−β−DBPを分取するが、具体的には
ラセミ体β−DBPを炭素ζ 源とし、無機態窒素(各種のアンモニア塩、硝酸塩)を
窒素源としその他無機塩類を含む合成培地中で上記細菌
を培養するか、又は上記細菌をブイヨン培地、あるいは
加糖ブイヨン培地等、炭素源、窒素源、有機栄養源、無
機栄養源を含む通常よく用いられる栄養培地中で培養せ
しめ、ラセミ体β−DBPを含有する培地中で作用さ
坪よく生育させておき、これから得られる国
体をせた後、S−(−)−β−DBPを分取すればよい
。
せてS−(−)−β−DBPを分取するが、具体的には
ラセミ体β−DBPを炭素ζ 源とし、無機態窒素(各種のアンモニア塩、硝酸塩)を
窒素源としその他無機塩類を含む合成培地中で上記細菌
を培養するか、又は上記細菌をブイヨン培地、あるいは
加糖ブイヨン培地等、炭素源、窒素源、有機栄養源、無
機栄養源を含む通常よく用いられる栄養培地中で培養せ
しめ、ラセミ体β−DBPを含有する培地中で作用さ
坪よく生育させておき、これから得られる国
体をせた後、S−(−)−β−DBPを分取すればよい
。
炭素源としてはグルコース、シュクロース。
グリセリン等の炭水化物、あるいはクエン酸。
マレイン酸、リンゴ酸等の有機酸及びその塩類を、窒素
源としては硫酸アンモニウム、m化アンモニウム、硝酸
アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機態窒素、及
び尿素、ペプトン。
源としては硫酸アンモニウム、m化アンモニウム、硝酸
アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機態窒素、及
び尿素、ペプトン。
カゼイン、酵母エキス、肉エキス等の有11態窒素を用
いることができる。その他の無機塩類としてはリンII
!塩、マグネシウム塩、カリ塩、マンガン塩、鉄塩、亜
鉛塩、銅塩等が用いられる。
いることができる。その他の無機塩類としてはリンII
!塩、マグネシウム塩、カリ塩、マンガン塩、鉄塩、亜
鉛塩、銅塩等が用いられる。
本菌の培養は、慣用の方法で行うことができる。通常、
温度約20〜40℃、好ましくは25〜37℃、pH約
6〜9、好ましくはp)16.5〜7.5で振盪あるい
は通気W!拌等の手段により好気的に行われる。
温度約20〜40℃、好ましくは25〜37℃、pH約
6〜9、好ましくはp)16.5〜7.5で振盪あるい
は通気W!拌等の手段により好気的に行われる。
本発明で用いる微生物とラセミ体β−DBPを接触させ
るときのラセミ体β−DBPの濃度は培地巾約0.2容
吊%以下であればよく、その接触時間は通常2日〜10
日である。
るときのラセミ体β−DBPの濃度は培地巾約0.2容
吊%以下であればよく、その接触時間は通常2日〜10
日である。
培養終了後、培養液をとり出し遠心分離して微生物菌体
と上清液とに分IIIIU1上清液中のβ−DBPを活
性炭カラム処理、エーテル抽」。
と上清液とに分IIIIU1上清液中のβ−DBPを活
性炭カラム処理、エーテル抽」。
減圧蒸留等の操作によって分取する。
以下実施例により説明する。実施例中%は特に記さない
限り重量%を表わす。
限り重量%を表わす。
実施例1
ラセミ体β−DBPを唯一の炭素源とした培地、すなわ
ち ラセミ体β−DBP O,2客間%硫安
0.05%硝安
0.05%りん酸水素第2カリウム 0
.1%りん酸第2ナトリウム 0.1%りん酸
第1ナトリウム 0.2%硫酸マグネシウム
0.05%硫酸鉄、硫酸銅、硫酸マンガン
微量 pH6,5 を含む培地100m1を有する坂ロフラスコ(500J
容ンに本国O8−に一29株の傾斜寒天培地から 1白
金耳ずつ植菌を行い、30℃で振盪培養を3〜5日間実
施する。次に上記組成の培地4gを入れた511容培養
器(ジャーフッメンタ−)に上記前培養分を加え、以下
の条件下で3〜5日間通気攪拌培養した。
ち ラセミ体β−DBP O,2客間%硫安
0.05%硝安
0.05%りん酸水素第2カリウム 0
.1%りん酸第2ナトリウム 0.1%りん酸
第1ナトリウム 0.2%硫酸マグネシウム
0.05%硫酸鉄、硫酸銅、硫酸マンガン
微量 pH6,5 を含む培地100m1を有する坂ロフラスコ(500J
容ンに本国O8−に一29株の傾斜寒天培地から 1白
金耳ずつ植菌を行い、30℃で振盪培養を3〜5日間実
施する。次に上記組成の培地4gを入れた511容培養
器(ジャーフッメンタ−)に上記前培養分を加え、以下
の条件下で3〜5日間通気攪拌培養した。
温度30℃
E)H初発6.5
通気惜 4f/l1in
回転数 500rpn+
培?!終了後、培養液を取り出し、遠心分離機を用いて
微生物菌体とその上清液とに分離し、この中に残存する
β−DBPを活性炭カラム処理。
微生物菌体とその上清液とに分離し、この中に残存する
β−DBPを活性炭カラム処理。
エーテル抽出、減圧蒸留によって油状物質として1,5
29採取した。本物質の同定は次の方法で行った。
29採取した。本物質の同定は次の方法で行った。
1)ガスクロマトグラフィーによる同定。
カラム担体P E G −20M P 、 5%、6
0〜80メツシユを用いて市販β−DBPと比較した結
果、その保持時間は全く同じであった。純度92%以上
。
0〜80メツシユを用いて市販β−DBPと比較した結
果、その保持時間は全く同じであった。純度92%以上
。
2>IR(赤外吸収スペクトル)による同定。
第1図に示したチャートのように、その吸収パターンは
市販β−DBPと全く同一であった。
市販β−DBPと全く同一であった。
以上から本物質は明らかにβ−DBPである事が判明し
た。又本物質がS−(−)−DBPである事の確認は以
下の方法によった。
た。又本物質がS−(−)−DBPである事の確認は以
下の方法によった。
1)旋光度の測定。
市販β−DBP及び本物質の旋光度は次の如くである。
市販β−DBP (α)2f−0,0G= 1゜メタ
ノール ′ 本 物 質 〔α)” =−12
,7C−1゜メタノール 2)R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチ
ルフェニルアセテートエステルの調整分析。
、・ならびに高速液
体クロマトグラフィーによる ・R−(+)−α
−メトキシ−α−トリフルオロメチルフェニルアセテー
トクロライドを市販β−DBPならびに本物質に反応せ
しめ、そのエステル誘導体を調整した後、液体クロマト
グラフィーでの分析結果は次のようであった。
ノール ′ 本 物 質 〔α)” =−12
,7C−1゜メタノール 2)R−(+)−α−メトキシ−α−トリフルオロメチ
ルフェニルアセテートエステルの調整分析。
、・ならびに高速液
体クロマトグラフィーによる ・R−(+)−α
−メトキシ−α−トリフルオロメチルフェニルアセテー
トクロライドを市販β−DBPならびに本物質に反応せ
しめ、そのエステル誘導体を調整した後、液体クロマト
グラフィーでの分析結果は次のようであった。
分析条件
カラム担体 ZORBAX 0DS
4.6mmX25 C11l (Du pont社製)
溶出液 メタ/−ル:水−60:40(V/V)溶
出量 1m&/1ain 検出法 260nmにおける吸光度分析結果 市販β−DBP 保持時B109.2分及び111.
7分に同一面積をもつ2つのピ ークを与えた。
溶出液 メタ/−ル:水−60:40(V/V)溶
出量 1m&/1ain 検出法 260nmにおける吸光度分析結果 市販β−DBP 保持時B109.2分及び111.
7分に同一面積をもつ2つのピ ークを与えた。
本 物 質 保持時間111.7分にのみピークを
与え109.2分にはピーク を与えなかった。
与え109.2分にはピーク を与えなかった。
以上の結果から本物質は、S−(−)−β−DBPであ
り、その光学純度は99%以上であることが判った。
り、その光学純度は99%以上であることが判った。
実施例2
肉エキス1.0%、ポリペプトン1.0%、グルコース
2.5%、pH7なる培地100−を有する5個の坂ロ
フラスコ(50〇−容)を常法どおり、加熱蒸気滅菌後
、本国O8−に一29株の傾斜寒天培地から菌株を1白
金耳ずつ接種する。各々のフラスコは30℃下で48時
間往復振罎培養(200rpm )を行う。
2.5%、pH7なる培地100−を有する5個の坂ロ
フラスコ(50〇−容)を常法どおり、加熱蒸気滅菌後
、本国O8−に一29株の傾斜寒天培地から菌株を1白
金耳ずつ接種する。各々のフラスコは30℃下で48時
間往復振罎培養(200rpm )を行う。
次に上記組成の培地2.51を51容ジヤーフ7メンタ
ーに入れ、常法どおり加熱蒸気滅菌後、各々のフラスコ
で生育せしめた微生物菌体を無菌的に接種せしめ、次の
条件下で48時間培養する。
ーに入れ、常法どおり加熱蒸気滅菌後、各々のフラスコ
で生育せしめた微生物菌体を無菌的に接種せしめ、次の
条件下で48時間培養する。
温度30℃
pH初発pH7,0
通気ffl 2N /min
回転数 500rl)1
培養の終了した培養液は遠心分離機にて微生物菌体と上
清液とに分離し、上溝液は廃棄する。
清液とに分離し、上溝液は廃棄する。
残った微生物菌体は50ff1Mりん酸緩衝液DH6,
5にて3回〜4回洗浄し洗浄菌体を得る。次にこの洗浄
菌体を実施例1で示したうセミ体DBPを含有する培地
4gに懸濁させ、次の条件下に保持する。
5にて3回〜4回洗浄し洗浄菌体を得る。次にこの洗浄
菌体を実施例1で示したうセミ体DBPを含有する培地
4gに懸濁させ、次の条件下に保持する。
温度30℃
通気l141/win
回転数 500rpm
pH5,S(炭酸カルシウムを209加えて保持する)
洗浄菌体を培地に加えてから48時間、上記の様に通気
攪拌培養し、再び遠心分離機にて微生物菌体と上清液と
に分離した。上清液からのDBPの分離は実施例1と同
様にし、1.51を得た。
攪拌培養し、再び遠心分離機にて微生物菌体と上清液と
に分離した。上清液からのDBPの分離は実施例1と同
様にし、1.51を得た。
このDBPは、実施例1に示したように各種の分析を行
った結果、光学純度99%以上の5−(−)−β−DB
Pであった。
った結果、光学純度99%以上の5−(−)−β−DB
Pであった。
(発明の効果)
本発明によれば土壌中より分離したシュードモナス属に
属するO8−に−29株を利用して2.3−ジブロモ−
1−プロパノールの光学活性化を行うことができる。
属するO8−に−29株を利用して2.3−ジブロモ−
1−プロパノールの光学活性化を行うことができる。
第1図は実施例1により得られたS−(−)−2,3−
ジブロモ−1−プロパノールおよび市販品の同物質の赤
外線吸収スペクトルである。
ジブロモ−1−プロパノールおよび市販品の同物質の赤
外線吸収スペクトルである。
Claims (1)
- R−(+)−2,3−ジブロモ−1−プロパノール資化
能を有するシュードモナス属に属する細菌、又はその培
養菌体を、培地中でラセミ体2,3−ジブロモ−1−プ
ロパノールと作用せしめてS−(−)−2,3−ジブロ
モ−1−プロパノールを分取することを特徴とする微生
物処理による光学活性なジブロモプロパノールの製法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP17909685A JPS6240298A (ja) | 1985-08-14 | 1985-08-14 | 微生物処理による光学活性なジブロモプロパノ−ルの製法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP17909685A JPS6240298A (ja) | 1985-08-14 | 1985-08-14 | 微生物処理による光学活性なジブロモプロパノ−ルの製法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6240298A true JPS6240298A (ja) | 1987-02-21 |
JPH0151999B2 JPH0151999B2 (ja) | 1989-11-07 |
Family
ID=16059973
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP17909685A Granted JPS6240298A (ja) | 1985-08-14 | 1985-08-14 | 微生物処理による光学活性なジブロモプロパノ−ルの製法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6240298A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5139552A (en) * | 1989-12-05 | 1992-08-18 | Nippon Sheet Glass Co., Ltd. | Apparatus for bending and tempering sheet glass |
CN109207400A (zh) * | 2018-09-26 | 2019-01-15 | 东北农业大学 | 一种高效降解黑土中邻苯二甲酸酯的复合菌剂及降解方法 |
-
1985
- 1985-08-14 JP JP17909685A patent/JPS6240298A/ja active Granted
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5139552A (en) * | 1989-12-05 | 1992-08-18 | Nippon Sheet Glass Co., Ltd. | Apparatus for bending and tempering sheet glass |
CN109207400A (zh) * | 2018-09-26 | 2019-01-15 | 东北农业大学 | 一种高效降解黑土中邻苯二甲酸酯的复合菌剂及降解方法 |
CN109207400B (zh) * | 2018-09-26 | 2021-09-28 | 东北农业大学 | 一种高效降解黑土中邻苯二甲酸酯的复合菌剂及降解方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0151999B2 (ja) | 1989-11-07 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4226941A (en) | Process for the optical resolution of d,l-2-amino-4-methylphosphinobutyric acid | |
US4506011A (en) | Process for preparation of aspartylphenylalanine alkyl esters | |
JPS6247520B2 (ja) | ||
JPS6156086A (ja) | α−オキシ酸およびその塩の微生物学的製造法 | |
US4840907A (en) | Process for producing optically active dichloropropanol using microorganism | |
JPS6240298A (ja) | 微生物処理による光学活性なジブロモプロパノ−ルの製法 | |
US5212089A (en) | Process for prepartion of s-(+)-3-halogeno-1,2-propanediol by treatment with alcaligenes | |
JPH03191794A (ja) | 微生物処理によるr―(―)―3―ハロゲノ―1,2―プロパンジオールの製法 | |
JPS6269993A (ja) | 微生物処理による光学活性なα−モノクロルヒドリンの製法 | |
US3905866A (en) | Process for production of L-lysine by fermentation | |
US5246843A (en) | Process for preparation of R-(-)-3-halogeno-1,2,-propanediol by treatment with microorganism | |
JPS6125358B2 (ja) | ||
JP2651703B2 (ja) | 微生物処理による光学活性なジハロゲノプロパノールの製法 | |
JPS5928493A (ja) | アスパルチルフエニルアラニンアルキルエステルの製造法 | |
EP0310949B1 (en) | Process for producing d-alanine | |
JPS61132196A (ja) | 微生物処理による光学活性なジクロロプロパノ−ルの製法 | |
JPH01108988A (ja) | 焦性ぶどう酸の製法 | |
JPH03180196A (ja) | 光学活性エピクロルヒドリンの製法 | |
JPS5820596B2 (ja) | コプロボルフイリン 3 ノ セイホウ | |
JPS6257317B2 (ja) | ||
JPS58126796A (ja) | アスパルチルフエニルアラニンアルキルエステルの製造法 | |
JPH08245497A (ja) | D(−)−酒石酸の製造方法 | |
JPS62210996A (ja) | 抗生物質エミマイシンの製造法 | |
JPH03180197A (ja) | 微生物処理による光学活性ジクロロプロパノールの製法 | |
JPH0315381A (ja) | 新規微生物 |