JPS6225988A - 微生物脂質の製造方法 - Google Patents
微生物脂質の製造方法Info
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- JPS6225988A JPS6225988A JP16530285A JP16530285A JPS6225988A JP S6225988 A JPS6225988 A JP S6225988A JP 16530285 A JP16530285 A JP 16530285A JP 16530285 A JP16530285 A JP 16530285A JP S6225988 A JPS6225988 A JP S6225988A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔技術分野〕
〔従来技術〕
モルティエレラ属に属するイサベリナ、ビナセア、ナナ
、ラマニアナ、ラマニアナ・アングリスボラ等の糸状菌
体を、高濃度の炭水化物を炭素源とする培地に培養する
ことにより、γ−リルン酸含有脂質含量の高い菌体を高
密度で生産する方法は既に提案されている（特願昭５９
−２２３４９）。
、ラマニアナ、ラマニアナ・アングリスボラ等の糸状菌
体を、高濃度の炭水化物を炭素源とする培地に培養する
ことにより、γ−リルン酸含有脂質含量の高い菌体を高
密度で生産する方法は既に提案されている（特願昭５９
−２２３４９）。
ところで、このようなγ−リルン酸含有脂質含量の高い
モルティエレラ属糸状菌の増殖菌体を製造する方法は、
回分法による菌体培養で行われている。本発明者らは、
この菌体培養について考察した時に、高密度培養のため
の炭素源の高濃度化は、殖菌された菌が対数増殖を始め
るまでの時間（誘導期）を長くし、相対的に長い培養時
間を必要とした。また菌体増殖と菌体中への脂質蓄積と
は、培養を経時的に見ると、それぞれ前半と後半とに分
れていることを認めた。しかも、培養後半１ ← ：ｊ３ｐ）脂質蓄積段階は、対数増殖期における菌体増
殖の高い菌体を得ようとする場合、培養時間の大部分を
占め、全体の培養時間を長いものとする傾向が認められ
た。モルティエレラ属糸状菌体は、増殖性能にすぐれ、
かつ脂質含量の高い菌体を与える点で、微生物脂質製造
用菌体として好適なものであるが、全体の培養時間をさ
らに短縮して生産性をより高める培養技術は工業的に重
要な意味を持つものである。
モルティエレラ属糸状菌の増殖菌体を製造する方法は、
回分法による菌体培養で行われている。本発明者らは、
この菌体培養について考察した時に、高密度培養のため
の炭素源の高濃度化は、殖菌された菌が対数増殖を始め
るまでの時間（誘導期）を長くし、相対的に長い培養時
間を必要とした。また菌体増殖と菌体中への脂質蓄積と
は、培養を経時的に見ると、それぞれ前半と後半とに分
れていることを認めた。しかも、培養後半１ ← ：ｊ３ｐ）脂質蓄積段階は、対数増殖期における菌体増
殖の高い菌体を得ようとする場合、培養時間の大部分を
占め、全体の培養時間を長いものとする傾向が認められ
た。モルティエレラ属糸状菌体は、増殖性能にすぐれ、
かつ脂質含量の高い菌体を与える点で、微生物脂質製造
用菌体として好適なものであるが、全体の培養時間をさ
らに短縮して生産性をより高める培養技術は工業的に重
要な意味を持つものである。
本発明はモルティエレラ属糸状菌による脂質生産におけ
る高脂質含量菌体の生産性の高い培養方法を提供するこ
とを目的とする。
る高脂質含量菌体の生産性の高い培養方法を提供するこ
とを目的とする。
即ち、本発明によれば、第１の発明として、モルティエ
レラ属糸状菌を炭水化物を炭素源とする培地で培養する
にあたり、所要脂質含量の増殖菌体を含む培地の一部を
、補充培地と置換して培養する操作を反復して行うこと
を特徴とする微生物；脂質の製造方法が提供され、第２
の発明として、；：；、・・ 、１．”’、ｉ′−ｉｌ：ルテイエレラ属糸状菌を炭水
化物を炭素源とする培地で培養するにあたり、培養工程
を菌体増殖工程と菌体中脂質蓄積工程の２工程に分ける
と共に、該菌体中脂質蓄積工程から所要脂質含量の増殖
菌体を含む菌地の一部を抜出し、回収し、一方、該菌体
増殖工程から増殖菌体を含む培地の一部を該菌体中脂質
蓄積工程へ移し、かつ該菌体増殖工程へ補充培地を供給
することを特徴とする微生物脂質の製造方法が提供され
る。
レラ属糸状菌を炭水化物を炭素源とする培地で培養する
にあたり、所要脂質含量の増殖菌体を含む培地の一部を
、補充培地と置換して培養する操作を反復して行うこと
を特徴とする微生物；脂質の製造方法が提供され、第２
の発明として、；：；、・・ 、１．”’、ｉ′−ｉｌ：ルテイエレラ属糸状菌を炭水
化物を炭素源とする培地で培養するにあたり、培養工程
を菌体増殖工程と菌体中脂質蓄積工程の２工程に分ける
と共に、該菌体中脂質蓄積工程から所要脂質含量の増殖
菌体を含む菌地の一部を抜出し、回収し、一方、該菌体
増殖工程から増殖菌体を含む培地の一部を該菌体中脂質
蓄積工程へ移し、かつ該菌体増殖工程へ補充培地を供給
することを特徴とする微生物脂質の製造方法が提供され
る。
本発明において、第１の発明を実施するには、先ず、菌
体の初発における増殖に適した炭素源濃度である、例え
ば１５０〜２３０ｇ／ Ｑの炭水化物を炭素源とした培
地の入った培養槽にフラスコなどで培養した種母菌を接
種した後、所定の温度、例えば２０〜３５℃、所定のｐ
Ｈ１例えば３．０〜６．０、所定の攪拌速度、例えば３
００〜６００ｒｐｍ及び所定の通気量、例えば０．５〜
２ 、 Ｏｖｖｍで培養を開始する。培養を開始して一
定時間後、例えば４８時間後から、一定時間毎、例えば
１２〜２４時間毎に培養槽中の仕込培地の一部、通常、
１７３〜４１５の培養液を増殖菌体と共に取り出すと共
に、培養槽に対し、その都度、取り出した培養液に相当
する量の初発培地と同じか、あるいは必要に応じて炭素
源としての炭水化物濃度を、例えば２５０〜３５０ｇ／
Ｑと高くした新しい培地、すなわち補充培地を供給す
る。この操作を繰り返して培養を行うことにより、通常
の単純回分法による培養とは異なり、−回毎に植菌する
必要がない上、誘導期が短縮されるため時間効率もより
高く、菌体及び脂質の両方を生産性高く培養できる。
体の初発における増殖に適した炭素源濃度である、例え
ば１５０〜２３０ｇ／ Ｑの炭水化物を炭素源とした培
地の入った培養槽にフラスコなどで培養した種母菌を接
種した後、所定の温度、例えば２０〜３５℃、所定のｐ
Ｈ１例えば３．０〜６．０、所定の攪拌速度、例えば３
００〜６００ｒｐｍ及び所定の通気量、例えば０．５〜
２ 、 Ｏｖｖｍで培養を開始する。培養を開始して一
定時間後、例えば４８時間後から、一定時間毎、例えば
１２〜２４時間毎に培養槽中の仕込培地の一部、通常、
１７３〜４１５の培養液を増殖菌体と共に取り出すと共
に、培養槽に対し、その都度、取り出した培養液に相当
する量の初発培地と同じか、あるいは必要に応じて炭素
源としての炭水化物濃度を、例えば２５０〜３５０ｇ／
Ｑと高くした新しい培地、すなわち補充培地を供給す
る。この操作を繰り返して培養を行うことにより、通常
の単純回分法による培養とは異なり、−回毎に植菌する
必要がない上、誘導期が短縮されるため時間効率もより
高く、菌体及び脂質の両方を生産性高く培養できる。
また、本発明において、第２の発明を実施するには、先
ず、菌体の初発における増殖に適した炭素源濃度である
、例えば１５０〜２３０ｇ／ Ｑの炭水化物を炭素源と
した培地を、培地移動のためにポンプの付いたパイプで
連結された２つの培養槽の各培養槽（第１槽、第２槽）
に入れ、それぞれの培養槽にフラスコなどで培養した種
母菌を接種した後、所定の温度、例えば２０〜３５℃、
所定のＰＨ１例えば３．０〜６．０、所定の攪拌速度、
例えば３００〜６００ｒｐｍ及び所定の通気量、例えば
０．５〜２．Ｏｖｖｍで培養を開始する。培養を開始し
て一定時間後、例えば４８時間後から一定時間毎、例え
ば１２〜２４時間毎に、前段の槽（第１槽）あるいは後
段の槽（第２槽）の培養槽中に仕込培地量の１／３〜４
１５の培養液を、後段の槽（第２槽）から取り出して回
収すると共に、取り出した培養液量に相当する培養液を
第１槽から第２槽に送り込む。そして、第１槽に、ある
いは第１槽と第２槽の両方に、取り出した培養液に相当
する量の初発培地と同じか、あるいは必要に応じて炭素
源としての炭水化物濃度を、例えば２５０〜３５０ｇ／
Ｑと高くした新しい培地を補充培地として供給する。
ず、菌体の初発における増殖に適した炭素源濃度である
、例えば１５０〜２３０ｇ／ Ｑの炭水化物を炭素源と
した培地を、培地移動のためにポンプの付いたパイプで
連結された２つの培養槽の各培養槽（第１槽、第２槽）
に入れ、それぞれの培養槽にフラスコなどで培養した種
母菌を接種した後、所定の温度、例えば２０〜３５℃、
所定のＰＨ１例えば３．０〜６．０、所定の攪拌速度、
例えば３００〜６００ｒｐｍ及び所定の通気量、例えば
０．５〜２．Ｏｖｖｍで培養を開始する。培養を開始し
て一定時間後、例えば４８時間後から一定時間毎、例え
ば１２〜２４時間毎に、前段の槽（第１槽）あるいは後
段の槽（第２槽）の培養槽中に仕込培地量の１／３〜４
１５の培養液を、後段の槽（第２槽）から取り出して回
収すると共に、取り出した培養液量に相当する培養液を
第１槽から第２槽に送り込む。そして、第１槽に、ある
いは第１槽と第２槽の両方に、取り出した培養液に相当
する量の初発培地と同じか、あるいは必要に応じて炭素
源としての炭水化物濃度を、例えば２５０〜３５０ｇ／
Ｑと高くした新しい培地を補充培地として供給する。
この操作を繰り返して培養を行うことにより、通常の単
純回分法による培養とは異なり、−回毎に植菌する必要
がない上に、時間効率もより高く、菌体及び脂質の両方
を生産性高く培養することができる。この２段工程培養
法による時には、前記したように、菌体増殖と菌体中へ
の脂質蓄積との時間和が異なることから、前段（第１槽
）での培養は、菌体増殖を行わせるために適した菌体増
殖工程として作用し、後段（第２槽）の培養は、菌体中
への脂質蓄積に適した菌体中脂質蓄積工程として作用し
、全体として極めて効率的な培養を達成することができ
、同時に培地として加えた炭素源などの基質が完全に消
費され無駄がない利点がある。
純回分法による培養とは異なり、−回毎に植菌する必要
がない上に、時間効率もより高く、菌体及び脂質の両方
を生産性高く培養することができる。この２段工程培養
法による時には、前記したように、菌体増殖と菌体中へ
の脂質蓄積との時間和が異なることから、前段（第１槽
）での培養は、菌体増殖を行わせるために適した菌体増
殖工程として作用し、後段（第２槽）の培養は、菌体中
への脂質蓄積に適した菌体中脂質蓄積工程として作用し
、全体として極めて効率的な培養を達成することができ
、同時に培地として加えた炭素源などの基質が完全に消
費され無駄がない利点がある。
前記の２段培養法において、第１槽と第２槽との内容積
の比は、通常、１ ： ０．８〜２．５、好ましくは１
：１．０〜２．０が適当である。
の比は、通常、１ ： ０．８〜２．５、好ましくは１
：１．０〜２．０が適当である。
本発明において、回収する菌体中の脂質含量は、乾燥基
準で１通常、３０〜５５重景％、好ましくは４５〜５０
重量％である。本発明の２段培養法は、第１段で脂質含
量２０〜３５重景％、好ましくは２５〜３０重量％の菌
体を生成させ、第２段で、それよりも高められた脂質含
量を有し、かつ、通常３５〜５５重量％、好ましくは４
５〜５０重量％の菌体を生成させるように実施するのが
よい。
準で１通常、３０〜５５重景％、好ましくは４５〜５０
重量％である。本発明の２段培養法は、第１段で脂質含
量２０〜３５重景％、好ましくは２５〜３０重量％の菌
体を生成させ、第２段で、それよりも高められた脂質含
量を有し、かつ、通常３５〜５５重量％、好ましくは４
５〜５０重量％の菌体を生成させるように実施するのが
よい。
本発明の培養法で用いる使用菌はモルティエレラ（Ｍｏ
ｒｔｉｅｒｅｌｌａ）属の糸状菌であり、このようなも
のには、例えば、イサベリナ（ｉｓａｂｅｌｌｊ、ｎａ
） （ＵＦＯ７８２４、７８８４，７８７３，８１８３
，８３０９）、ビナセア（Ｖｉｎａｃｅａ）、種菌株が
挙げられる。なお、上記した菌はいずれも財団法人発酵
研究所に保存され、工ＦＯカタログ（菌株目録）に記載
されている。
ｒｔｉｅｒｅｌｌａ）属の糸状菌であり、このようなも
のには、例えば、イサベリナ（ｉｓａｂｅｌｌｊ、ｎａ
） （ＵＦＯ７８２４、７８８４，７８７３，８１８３
，８３０９）、ビナセア（Ｖｉｎａｃｅａ）、種菌株が
挙げられる。なお、上記した菌はいずれも財団法人発酵
研究所に保存され、工ＦＯカタログ（菌株目録）に記載
されている。
上記の糸状菌を培養する培地の炭素源である炭水化物と
しては、たとえばグルコース、フラクトース、サッカロ
ース、糖蜜、デン粉、木材糖化液などが用いられる。炭
水化物は培地ＩＱ中に２０〜４００ｇ用いるものが好ま
しい。また窒素源としては、例えば硝酸アンモニウム、
硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニ
ウムなどの様な無機窒素源、または尿素、ペプトン、酵
母エキス、コーン・スチープ・リカーなどの有機窒素源
が用いられる。無機塩としては、例えば、ＫＨ２ＰＯ４
、Ｋ２ＨＰＯ４、ＮａＣＱ 、 Ｆｅ５０４・７Ｈ２０
、Ｍｇ５Ｏ４・７Ｈ２０、Ｚｎ５０４・７Ｈ２０などが
用いられる。その他必要に応じて微量要素、その他の栄
養源を添加する。
しては、たとえばグルコース、フラクトース、サッカロ
ース、糖蜜、デン粉、木材糖化液などが用いられる。炭
水化物は培地ＩＱ中に２０〜４００ｇ用いるものが好ま
しい。また窒素源としては、例えば硝酸アンモニウム、
硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニ
ウムなどの様な無機窒素源、または尿素、ペプトン、酵
母エキス、コーン・スチープ・リカーなどの有機窒素源
が用いられる。無機塩としては、例えば、ＫＨ２ＰＯ４
、Ｋ２ＨＰＯ４、ＮａＣＱ 、 Ｆｅ５０４・７Ｈ２０
、Ｍｇ５Ｏ４・７Ｈ２０、Ｚｎ５０４・７Ｈ２０などが
用いられる。その他必要に応じて微量要素、その他の栄
養源を添加する。
〔効 果ゴ
１：本発明によれば、脂質含量の高いモルティエレラ属
糸状菌体を培養する方法として、単純回分操′作による
培養方法よりも、実行培地に対する菌体及びγ−リルン
酸含有脂質の各生産性を１，２〜２．２倍高め得るもの
である。特に、２段培養法によれば、菌体増殖工程と、
菌体中への脂質蓄積工程をそれぞれ独立して行おし得る
ことから、全体の培養時間を短縮し、菌体の生産性を著
しく高めることができる。また、単純回分法では、１回
培養する毎に種菌の培養をそれぞれ別途に行い、植菌す
る必要があるのに対して、本発明による方法では、１回
の植苗で１ケ月ないし２ケ月間にわたって連続的な菌体
培養が可能であり、その意味からも本発明法は、非常に
時間効率にすぐれた方法ということができる。
糸状菌体を培養する方法として、単純回分操′作による
培養方法よりも、実行培地に対する菌体及びγ−リルン
酸含有脂質の各生産性を１，２〜２．２倍高め得るもの
である。特に、２段培養法によれば、菌体増殖工程と、
菌体中への脂質蓄積工程をそれぞれ独立して行おし得る
ことから、全体の培養時間を短縮し、菌体の生産性を著
しく高めることができる。また、単純回分法では、１回
培養する毎に種菌の培養をそれぞれ別途に行い、植菌す
る必要があるのに対して、本発明による方法では、１回
の植苗で１ケ月ないし２ケ月間にわたって連続的な菌体
培養が可能であり、その意味からも本発明法は、非常に
時間効率にすぐれた方法ということができる。
次に本発明の実施例を示すが、本発明はこれにより制限
を受けるものではない。
を受けるものではない。
実施例１
グルコース６０ｇ、ＫＨ２ＰＯ４２ｇ、 Ｍｇ５Ｏ４・
７Ｈ２００，３ｇ、 ＮａＣｎ ０．１ｇ、マルト・エ
キス０．２ｇ、イースト・エキス０．２ｇ、ペプトン０
．１ｇ−Ｆｅ５０４ ・７Ｈ２０１０ｍｇ、 ＣａＣＱ
２ ・２Ｈ２０１０ｍｇ−ＣｕＳＯ４・５ｔ（２００
，２ｍｇ。
７Ｈ２００，３ｇ、 ＮａＣｎ ０．１ｇ、マルト・エ
キス０．２ｇ、イースト・エキス０．２ｇ、ペプトン０
．１ｇ−Ｆｅ５０４ ・７Ｈ２０１０ｍｇ、 ＣａＣＱ
２ ・２Ｈ２０１０ｍｇ−ＣｕＳＯ４・５ｔ（２００
，２ｍｇ。
Ｍｎ５Ｏ４・４Ｈ２０１，昨Ｇと窒素源として尿素（（
ＮＨ２） ２ ＣＯ）及び硫酸アンモニウム（（ＮＨ４
）２ＳＯ４：ｌをＣハ比（炭素源中の炭素原子重量／窒
素源中の窒素原子重量）が約６０になるように加え、脱
イオン水１０００ｍ Ｑに混合した培地を基準として炭
素源である炭水化物（グルコース）の濃度を増加させた
場合、その濃度に応じて培地成分を増加して、また窒素
源を尿素などに変えた場合は同じＣ／Ｎ比になるように
培地を調整した。
ＮＨ２） ２ ＣＯ）及び硫酸アンモニウム（（ＮＨ４
）２ＳＯ４：ｌをＣハ比（炭素源中の炭素原子重量／窒
素源中の窒素原子重量）が約６０になるように加え、脱
イオン水１０００ｍ Ｑに混合した培地を基準として炭
素源である炭水化物（グルコース）の濃度を増加させた
場合、その濃度に応じて培地成分を増加して、また窒素
源を尿素などに変えた場合は同じＣ／Ｎ比になるように
培地を調整した。
炭素源濃度を２００ｇ／ Ｑとして調製した培地を初発
培地として用い、その１４℃を内容積２０Ｑの培地槽に
仕込み、菌株を接種した後、３０℃の培養温度で、ｐＨ
を３．５に制御して、通気量を１．０〜２．Ｏｖｖｍと
し、攪拌速度３００〜６００ｒｐｍで培養を開始する。
培地として用い、その１４℃を内容積２０Ｑの培地槽に
仕込み、菌株を接種した後、３０℃の培養温度で、ｐＨ
を３．５に制御して、通気量を１．０〜２．Ｏｖｖｍと
し、攪拌速度３００〜６００ｒｐｍで培養を開始する。
培養開始４８時間後から、仕込培地の一定量、すなわち
実行培地量の１７３〜２／３を抜き出し、初発培地と同
一組成あるいは炭素源濃度を３００ｇ／Ωとして、他の
栄養源もその割合で増加して調製した培地を補充した。
実行培地量の１７３〜２／３を抜き出し、初発培地と同
一組成あるいは炭素源濃度を３００ｇ／Ωとして、他の
栄養源もその割合で増加して調製した培地を補充した。
′培養開始７２時間以後は、反復時間２４時間毎に培地
を抜き出し、新しい培地（補充培地）を供給したが、培
地１０当りの生成菌体量、脂質量共に定常値になった。
を抜き出し、新しい培地（補充培地）を供給したが、培
地１０当りの生成菌体量、脂質量共に定常値になった。
生成菌体は遠心脱水器で培地から分離した後、その一部
を含水率の定量のため精秤し、菌体から脂質を抽出し、
生成脂質量を求めた。
を含水率の定量のため精秤し、菌体から脂質を抽出し、
生成脂質量を求めた。
なお、菌体からの脂質抽出は、湿菌体にクロロホルム−
メタノール（２： ｌｖ／ｖ）混液を加え、ガラスピー
ズ存在下にホモジナイズすることにより菌体の破砕と脂
質の抽出を同時に行った。この場合、抽出を完全に行う
ため、これを３回繰返し全抽出液を集めた。上記抽出液
をＦ ｏ ］、ｃ ｈの分配洗浄法により精製した後、
溶媒を減圧留去し、重量法で全脂質を測定した。
メタノール（２： ｌｖ／ｖ）混液を加え、ガラスピー
ズ存在下にホモジナイズすることにより菌体の破砕と脂
質の抽出を同時に行った。この場合、抽出を完全に行う
ため、これを３回繰返し全抽出液を集めた。上記抽出液
をＦ ｏ ］、ｃ ｈの分配洗浄法により精製した後、
溶媒を減圧留去し、重量法で全脂質を測定した。
前記菌株として、モルティエレラ・ラマニアナ・アング
リスボラＩＦ０８１８７を用いた場合について、前記培
養条件、すなわち１段反復回分法による培生産速度で表
わして表−１に示した。
リスボラＩＦ０８１８７を用いた場合について、前記培
養条件、すなわち１段反復回分法による培生産速度で表
わして表−１に示した。
表−１の結果から、３種類の１段反復回分操作により、
菌体及び脂質の両方の生産効率が単純回分法に比べてい
ずれも著しく高くなったことが認められる。
菌体及び脂質の両方の生産効率が単純回分法に比べてい
ずれも著しく高くなったことが認められる。
１ｌ−
＝１２一
実施例２
実施例１と同様に調製した初発培地（炭素源濃度２００
ｇ／ ｆｌ ）を送液ポンプの付いたパイプで結合され
た前段の槽（内容積Ｘ０Ｑ）（第１槽）と後段の槽（内
容積２０Ω）（第２槽）にそれぞれ６Ｑ、１１仕込み、
両槽に菌株を植菌した後、両槽とも実施例１と同じ条件
で培養を開始した。
ｇ／ ｆｌ ）を送液ポンプの付いたパイプで結合され
た前段の槽（内容積Ｘ０Ｑ）（第１槽）と後段の槽（内
容積２０Ω）（第２槽）にそれぞれ６Ｑ、１１仕込み、
両槽に菌株を植菌した後、両槽とも実施例１と同じ条件
で培養を開始した。
培養開始４８時間後から、仕込み培地の一定量を後段の
第２槽から抜き出し、回収すると共に、前段の第１槽か
ら一定量の培地を第２槽に送り込む。
第２槽から抜き出し、回収すると共に、前段の第１槽か
ら一定量の培地を第２槽に送り込む。
第１槽に、場合によっては第１槽と第２槽に、新しい培
地（補充培地）を実施例１と同様に供給する。
地（補充培地）を実施例１と同様に供給する。
培養開始７２時間以後は、反復時間１２時間ないし２４
時間毎に培地を第２槽から抜き出し、回収すると共に、
前記操作により補充培地を第１槽に供給したが、培地Ｉ
Ｑ当りの生成菌体量及び脂質量とも定常値となった。
時間毎に培地を第２槽から抜き出し、回収すると共に、
前記操作により補充培地を第１槽に供給したが、培地Ｉ
Ｑ当りの生成菌体量及び脂質量とも定常値となった。
なお、生成菌体量、脂質量は実施例１に示した方法に従
って定量した。
って定量した。
菌株としてモルティエレラ・ラマニアナ・アングリスボ
ラＵＦＯ８１８７を用いた場合について、前記培養条件
、すなわち、２段反復回分法による培養−２′ 条件を変えての培養結果を、単純回分法と比較して、培
地量に対する菌体生産速度及び脂質生産速度で表わして
表−２に示した。
ラＵＦＯ８１８７を用いた場合について、前記培養条件
、すなわち、２段反復回分法による培養−２′ 条件を変えての培養結果を、単純回分法と比較して、培
地量に対する菌体生産速度及び脂質生産速度で表わして
表−２に示した。
なお、表−２において、第１槽置換量は、第１槽から第
２槽に移送した培地量に対応して第１槽に加えた補充培
地量を意味し、第２槽置換量は、第２槽から抜出した培
地量に対応して第２槽に加えた第１槽からの培地量又は
これと補充培地を加えた培地量を意味する。
２槽に移送した培地量に対応して第１槽に加えた補充培
地量を意味し、第２槽置換量は、第２槽から抜出した培
地量に対応して第２槽に加えた第１槽からの培地量又は
これと補充培地を加えた培地量を意味する。
表−２の結果から、３種類の培養条件下での２段反復回
分操作法が、単純回分法と比較して菌体及び脂質の両方
の生産効率で優れていることが明らかである。また、本
発明による２段法は、１段法と比較した場合、相対的に
脂質の生産効率が優れていることが明らかに認められる
。また、第２槽の培養温度を２０℃と下げて培養した結
果では、脂質の生産効率は幾分小さいが、脂質中のγ−
リルン酸含量が１％近く上昇する。
分操作法が、単純回分法と比較して菌体及び脂質の両方
の生産効率で優れていることが明らかである。また、本
発明による２段法は、１段法と比較した場合、相対的に
脂質の生産効率が優れていることが明らかに認められる
。また、第２槽の培養温度を２０℃と下げて培養した結
果では、脂質の生産効率は幾分小さいが、脂質中のγ−
リルン酸含量が１％近く上昇する。
Claims (2)
- （１）モルティエレラ属糸状菌を炭水化物を炭素源とす
る培地で培養するにあたり、所要脂質含量の増殖菌体を
含む培地の一部を、補充培地と置換して培養する操作を
反復して行うことを特徴とする微生物脂質の製造方法。 - （２）モルティエレラ属糸状菌を炭水化物を炭素源とす
る培地で培養するにあたり、培養工程を、菌体増殖工程
と菌体中脂質蓄積工程の２工程に分けると共に、該菌体
中脂質蓄積工程から所要脂質含量の増殖菌体を含む培地
の一部を抜出し、回収し、一方、該菌体増殖工程から増
殖菌体を含む培地の一部を該菌体中脂質蓄積工程へ移し
、かつ該菌体増殖工程へ補充培地を供給することを特徴
とする微生物脂質の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP16530285A JPS6225988A (ja) | 1985-07-26 | 1985-07-26 | 微生物脂質の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP16530285A JPS6225988A (ja) | 1985-07-26 | 1985-07-26 | 微生物脂質の製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6225988A true JPS6225988A (ja) | 1987-02-03 |
| JPS6319154B2 JPS6319154B2 (ja) | 1988-04-21 |
Family
ID=15809748
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP16530285A Granted JPS6225988A (ja) | 1985-07-26 | 1985-07-26 | 微生物脂質の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6225988A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2012002572A1 (ja) * | 2010-06-30 | 2012-01-05 | 日本水産株式会社 | 有用物質の製造方法 |
-
1985
- 1985-07-26 JP JP16530285A patent/JPS6225988A/ja active Granted
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2012002572A1 (ja) * | 2010-06-30 | 2012-01-05 | 日本水産株式会社 | 有用物質の製造方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6319154B2 (ja) | 1988-04-21 |
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| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| EXPY | Cancellation because of completion of term |