JPS62210987A - リパ−ゼの製造法 - Google Patents
リパ−ゼの製造法Info
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は新規なリパーゼの製造法に関する。
工業的油脂の加水分解は従来高温高圧加水分解法によシ
行われているが、この方法は、高温高圧条件のプロセス
であり高エネルギーを必要とする。
行われているが、この方法は、高温高圧条件のプロセス
であり高エネルギーを必要とする。
これに対し酵素を利用するリパーゼ訓水分解法は、常、
温常圧領域の温和な条件で反応を行うことができる省エ
ネルギー型の有効なプロセスである。工業的にリパーゼ
油脂加水分解を行うには油脂、特に対象となる牛脂やパ
ーム油等の高融点油脂の加水分解率が高く(90%以上
)、耐熱性を有するリパーゼが必要である。
温常圧領域の温和な条件で反応を行うことができる省エ
ネルギー型の有効なプロセスである。工業的にリパーゼ
油脂加水分解を行うには油脂、特に対象となる牛脂やパ
ーム油等の高融点油脂の加水分解率が高く(90%以上
)、耐熱性を有するリパーゼが必要である。
これまで油脂加水分解用リパーゼとしては酵母カンデイ
ダ・ルゴーサ(Candida rugosa )の生
産するリパーゼが知られている(名糖産業M Ijパ
ーゼOF)。このリパーゼはオリーブ油をはじめ各種油
脂を30℃で90%以上分解する能力を有しているが、
45℃以上では不安定でsb失活し易く、パーム油等の
高融点油脂の加水分解には遮していないっ 耐熱性を有する油脂加水分解用リパーゼとしては、シュ
ードモナス メフイテイカの生産するリパーゼ(公告昭
50−25553 )およびシュードモナス フルオレ
ッセンスの生産するリパーゼ(公告昭57−52835
)が知られているが、前者は高加水分解率(ヤシ油92
%)を得るのに塩化カルシウムが必要であり(Kosu
gi他J。
ダ・ルゴーサ(Candida rugosa )の生
産するリパーゼが知られている(名糖産業M Ijパ
ーゼOF)。このリパーゼはオリーブ油をはじめ各種油
脂を30℃で90%以上分解する能力を有しているが、
45℃以上では不安定でsb失活し易く、パーム油等の
高融点油脂の加水分解には遮していないっ 耐熱性を有する油脂加水分解用リパーゼとしては、シュ
ードモナス メフイテイカの生産するリパーゼ(公告昭
50−25553 )およびシュードモナス フルオレ
ッセンスの生産するリパーゼ(公告昭57−52835
)が知られているが、前者は高加水分解率(ヤシ油92
%)を得るのに塩化カルシウムが必要であり(Kosu
gi他J。
Ferment−Technol、49 .968
(1971))、塩化カルシウムを添加すると分解後に
金禰石鹸が生成して脂肪酸の回収を悪くする欠点を有し
ている。また、後者は分解率の面では牛脂を50℃で3
89 unit/g−oilのリパーゼで94.9%分
解するが(公告昭57−39638)、この分解率に達
するには70時間を要する。さらに、牛脂を12あたl
) 140 unitのリパーゼで加水分解すると、分
解率は24時間後に62特に達し、96.9−の分解率
を得るのに120時間という長時間を必!とする。この
酵素を用いて牛脂を加水分解す′るには、長時間を要す
るため工業的利用には適さない。
(1971))、塩化カルシウムを添加すると分解後に
金禰石鹸が生成して脂肪酸の回収を悪くする欠点を有し
ている。また、後者は分解率の面では牛脂を50℃で3
89 unit/g−oilのリパーゼで94.9%分
解するが(公告昭57−39638)、この分解率に達
するには70時間を要する。さらに、牛脂を12あたl
) 140 unitのリパーゼで加水分解すると、分
解率は24時間後に62特に達し、96.9−の分解率
を得るのに120時間という長時間を必!とする。この
酵素を用いて牛脂を加水分解す′るには、長時間を要す
るため工業的利用には適さない。
また、他に、シュードモナス UKO−816株の生産
するリパーゼ(公開昭58−146277)が耐熱性を
有していることが知られているが、このリパーゼは分子
量が2000万以上という超高分子であシ、比活性c単
位重量当たシのリパーゼ活性)が低くなるという欠点を
有している。
するリパーゼ(公開昭58−146277)が耐熱性を
有していることが知られているが、このリパーゼは分子
量が2000万以上という超高分子であシ、比活性c単
位重量当たシのリパーゼ活性)が低くなるという欠点を
有している。
工業的油脂の加水分解の油脂原料としては、牛脂だけで
なく、よシ融点が高く飽和脂肪酸含有量の高いパーム油
も多く用いられる傾向にある。工業用リパーゼには、こ
れらパーム油、牛脂をできるだけ短時間によシ高い加水
分解(90チ以上)を行い、且つ熱安定性が高いことが
要求されることから、該性質を有するリパーゼの製造法
の開発が熱望されていた。
なく、よシ融点が高く飽和脂肪酸含有量の高いパーム油
も多く用いられる傾向にある。工業用リパーゼには、こ
れらパーム油、牛脂をできるだけ短時間によシ高い加水
分解(90チ以上)を行い、且つ熱安定性が高いことが
要求されることから、該性質を有するリパーゼの製造法
の開発が熱望されていた。
そこで本発明者らは工業用油脂の加水分解に適した高加
水分解率、耐熱性を有するリパーゼを提供することを目
的として鋭意検討した結果、栃木県芳賀郡市貝町の土壌
よシ分離した微生物の生産するリパーゼに、上記目的に
かなうリパーゼが存在することを見出し本発明を完成し
た。
水分解率、耐熱性を有するリパーゼを提供することを目
的として鋭意検討した結果、栃木県芳賀郡市貝町の土壌
よシ分離した微生物の生産するリパーゼに、上記目的に
かなうリパーゼが存在することを見出し本発明を完成し
た。
すなわち、本発明はシュードモナス属に属するリパーゼ
生産菌を培養し、該培養物から後記の理化学的性質を有
するリパーゼを採取することを特徴とするリパーゼの製
造法を提供するものである。
生産菌を培養し、該培養物から後記の理化学的性質を有
するリパーゼを採取することを特徴とするリパーゼの製
造法を提供するものである。
本発明に使用されるシュードモナス属に属する上記リパ
ーゼ生産菌としては、上記リパーゼを生産する能力を有
するものであれば特に限定されないが、例えば本発明者
らが栃木県芳賀郡の土壌よシ分離した新菌株シュードモ
ナス・エスピーKSM−16が挙げられる。
ーゼ生産菌としては、上記リパーゼを生産する能力を有
するものであれば特に限定されないが、例えば本発明者
らが栃木県芳賀郡の土壌よシ分離した新菌株シュードモ
ナス・エスピーKSM−16が挙げられる。
以下にこの菌株の菌学的性質を示す。
(A)形態
■細胞の形及び大きさ
がん状
°幅 0.75−1.0 pm
長さ z3−25 μm
■運動性あり
ペン毛は一本以上あり。
■抱子
なし
■ダラム染色
陰性
(B)各培地における生育状態
■肉汁寒天平板培養
・ 円形、乳白色のコロニーを形成1表面 清らか、光
沢あり、金縁、隆起 ■肉汁寒天斜面培養 普通 ■肉汁液体培養 30℃、2日で菌膜形成、一様に混濁 ■肉汁ゼラチン穿刺培養 液化せず ■リドマスミルク 凝固および’l )マスを還元した。
沢あり、金縁、隆起 ■肉汁寒天斜面培養 普通 ■肉汁液体培養 30℃、2日で菌膜形成、一様に混濁 ■肉汁ゼラチン穿刺培養 液化せず ■リドマスミルク 凝固および’l )マスを還元した。
(C)生理学的性質
■硝酸塩の還元 十
■脱窒反応 −
■MRテスト −
■vpテスト −
■インドールの生成 −
■硫化水素の生成 −
■デンプンの加水分解 −
■クエン酸の利用 Koser+ Christ
ensen+■無機窒素源の利用 NH4+NO3
+0色素の生成 KingA−KingB
−0ウレアーゼ − ■オキシダーゼ + Oカタラーゼ + ■生育の範囲 生育 42℃+、45℃−95℃− 増殖温度範囲 20−43℃。
ensen+■無機窒素源の利用 NH4+NO3
+0色素の生成 KingA−KingB
−0ウレアーゼ − ■オキシダーゼ + Oカタラーゼ + ■生育の範囲 生育 42℃+、45℃−95℃− 増殖温度範囲 20−43℃。
増殖至適温度範囲 30−37℃
0酸素に対する態度 好気的
@OFテスト 0(酸化的)ODk類から酸
およびガスの生成の有無酸 L−アラビノース − D−キシロース + D−グルコース + D−マンノース + D−7ラクトース + D−ガラクトース + マルトース + ショ棚 十 ラクトース + トレハロース + D−ソルビット + D−マンニット + イノジット + グリセリン + デンプン − サリシン − ラフィノース − 以上の糖類からガスの生成はなかった。
およびガスの生成の有無酸 L−アラビノース − D−キシロース + D−グルコース + D−マンノース + D−7ラクトース + D−ガラクトース + マルトース + ショ棚 十 ラクトース + トレハロース + D−ソルビット + D−マンニット + イノジット + グリセリン + デンプン − サリシン − ラフィノース − 以上の糖類からガスの生成はなかった。
(D)炭水化物の利用
D−グルコース +
D−キシロース +
D−リボース +
L−ラムノース −
レブリン酸 −
り一酒石酸 −
meso−歯石酸 十
meso −エ リ ス リ ト − ル
−アドニトール − メサコン酸 − シトラコン酸 − L−バリン + m−ヒドロキシ安息香酸 − 2,3−ブタンジオール + ベタイン + アルギニン + 以上の菌学的性質から、パージ二のマニュ7に、オプ、
デイタミネイティブ、バクテリオロジー第8版(Ber
gey’s manual of determina
tivebacteriology 8 th、 ed
、 )によシ検索した結果、本菌に類似の菌株としてシ
ュードモナス・セパシア(Pseudomonas c
epasia )が挙げられる。そこでシュウトモナス
・セパシア(A、T、C,C,10586)を本菌と同
条件で培養し各性質を比較したところ、次に示すごとく
各性質において異なっていることが判明した。 。
−アドニトール − メサコン酸 − シトラコン酸 − L−バリン + m−ヒドロキシ安息香酸 − 2,3−ブタンジオール + ベタイン + アルギニン + 以上の菌学的性質から、パージ二のマニュ7に、オプ、
デイタミネイティブ、バクテリオロジー第8版(Ber
gey’s manual of determina
tivebacteriology 8 th、 ed
、 )によシ検索した結果、本菌に類似の菌株としてシ
ュードモナス・セパシア(Pseudomonas c
epasia )が挙げられる。そこでシュウトモナス
・セパシア(A、T、C,C,10586)を本菌と同
条件で培養し各性質を比較したところ、次に示すごとく
各性質において異なっていることが判明した。 。
以下余白
リドマスミルク 凝固 液化炭水化
物の貧化性 アドニトール +m
−ヒドロキシ安息香酸 −十 色素生成 +(黄褐色
)これらの諸性質の差異から本リパーゼ生産菌は公知菌
のいずれとも異なる新菌株と判断し、シュードモナス・
エスピーKSM−16と命名し、昭和60年12月2日
に通産省工業技術院微生物工業技術研究所へ寄託した。
物の貧化性 アドニトール +m
−ヒドロキシ安息香酸 −十 色素生成 +(黄褐色
)これらの諸性質の差異から本リパーゼ生産菌は公知菌
のいずれとも異なる新菌株と判断し、シュードモナス・
エスピーKSM−16と命名し、昭和60年12月2日
に通産省工業技術院微生物工業技術研究所へ寄託した。
その微生物受託番号は微工研菌寄第8538号である。
本発明を実施するには、例えば上記KSM−16株が良
好に生育し、リパーゼを順調に生産するために必’ly
炭素源、窒素源、無機塩等を含む培地中でこれを培養し
、該培養液から採取することにより行なわれる。
好に生育し、リパーゼを順調に生産するために必’ly
炭素源、窒素源、無機塩等を含む培地中でこれを培養し
、該培養液から採取することにより行なわれる。
培地の組成については、通常シュードモナス属に属する
微生物の培養に用いられるものであれば特に限定されな
い。例えば、窒素源としては各種無機態窒素と各櫨有機
態窒素及びその組合わせが利用できる。特に単独系とし
てはペプトン、肉エキス、尿素などが有効である。炭素
源としてはグルコースなどの糖類、オリーブ油等の各宿
油脂、脂肪酸、脂肪酸エステル、及び脂肪酸誘導体等を
用いることができる。無機塩類としては硫安、リン酸1
カリ、リン酸2カリ、硝酸ナトリウム、硫酸マグネシウ
ム等の添加が有効である。その他必要に応じて、菌の生
育、酵素の生産に必要な各種有機物、無機物を添加する
ことができる。
微生物の培養に用いられるものであれば特に限定されな
い。例えば、窒素源としては各種無機態窒素と各櫨有機
態窒素及びその組合わせが利用できる。特に単独系とし
てはペプトン、肉エキス、尿素などが有効である。炭素
源としてはグルコースなどの糖類、オリーブ油等の各宿
油脂、脂肪酸、脂肪酸エステル、及び脂肪酸誘導体等を
用いることができる。無機塩類としては硫安、リン酸1
カリ、リン酸2カリ、硝酸ナトリウム、硫酸マグネシウ
ム等の添加が有効である。その他必要に応じて、菌の生
育、酵素の生産に必要な各種有機物、無機物を添加する
ことができる。
培養には、液体培養が適している。培養温度は先にしめ
したように20−42℃で培養でき、なかでも30−3
7℃がもつともよい。また好気的に培養することKより
、約1−2日でリパーゼの生産性は最高に達する。この
ようにして得られた培養液からリパーゼを得るには、菌
体を遠心分離、ろ過によシ分離した後、上澄液を有@溶
剤(アセトン、エタノール等)による沈殿、硫安による
塩析法、あるいは限外ろ過膜(アミコン社製 分画分子
量30000)により濃縮回収することができる。
したように20−42℃で培養でき、なかでも30−3
7℃がもつともよい。また好気的に培養することKより
、約1−2日でリパーゼの生産性は最高に達する。この
ようにして得られた培養液からリパーゼを得るには、菌
体を遠心分離、ろ過によシ分離した後、上澄液を有@溶
剤(アセトン、エタノール等)による沈殿、硫安による
塩析法、あるいは限外ろ過膜(アミコン社製 分画分子
量30000)により濃縮回収することができる。
得られたリパーゼを精製するには、培養液の濃縮液を硫
安沈殿、エタノール沈殿により得た酵素液をDIAI−
セルロース等のイオン交換体、セファデックス等による
ゲルろ適法など一般に知られている蛋白質11tEk法
が利用できる。これらの精製法によシ比活性の高められ
た酵素液は、凍結乾燥することにより酵素粉末を得るこ
とができる。
安沈殿、エタノール沈殿により得た酵素液をDIAI−
セルロース等のイオン交換体、セファデックス等による
ゲルろ適法など一般に知られている蛋白質11tEk法
が利用できる。これらの精製法によシ比活性の高められ
た酵素液は、凍結乾燥することにより酵素粉末を得るこ
とができる。
以上の如くして樽られたリパーゼの理化学的性質は次の
通りである。
通りである。
1、 作用
パーム油、オリーブ油、牛脂、ヤシ油を反応温度60℃
、24時間で90%以上分解する。
、24時間で90%以上分解する。
特にパーム油は93チ以上分解する。
2 基質特異性 各徨グリセライド、エステルなどを分
解する。
解する。
特に飽和油脂を選択的に分解する。
油脂の種類 分解率(50℃、24時間。
1000 unit/g−o口)
パーム油 91.7 %
オリーブ油 82.1%
ヤシ油 73.1%
牛脂 89.11%
1 安定pH範囲
pH3−12,(30℃、 24 hr後の残存活性9
図1) 作用至適pHの範囲 pH6−7,5(図2) 4、作用適温の範囲 65−80℃ 1図3)至適温度
70℃ 5、分子量 5O8−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法では290
00 ゲルろ過(セファデックス G−75)法によると30
000である。
図1) 作用至適pHの範囲 pH6−7,5(図2) 4、作用適温の範囲 65−80℃ 1図3)至適温度
70℃ 5、分子量 5O8−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法では290
00 ゲルろ過(セファデックス G−75)法によると30
000である。
6、糖含有 オルシノール反応による糖発色 +7、
pH%温度などによる失活の条件30℃および50℃
、3時間の熱処理ではは、とんど失活はないが、70℃
、2時間の熱処理では約40%失活する(図4)。酵素
液に塩化カルシウム1mM加えることにより70℃、2
時間の熱失活が30特に減少し、熱安定性が上昇する。
pH%温度などによる失活の条件30℃および50℃
、3時間の熱処理ではは、とんど失活はないが、70℃
、2時間の熱処理では約40%失活する(図4)。酵素
液に塩化カルシウム1mM加えることにより70℃、2
時間の熱失活が30特に減少し、熱安定性が上昇する。
10−80℃の各温度で10分間熱処理した後の残存活
性率を図5に示す。
性率を図5に示す。
8、阻害、活性化および安定化
胆汁収の影響なし
無機塩類の影響
各金属塩が反応系に1 mM # [共存する条件で5
0℃で30分酵素反応を行わせ、塩類を入れない場合の
活性を100としてそれぞれの活性を表した。
0℃で30分酵素反応を行わせ、塩類を入れない場合の
活性を100としてそれぞれの活性を表した。
金属塩
なし ・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・
100CuSO4・・・・・・・・・・・・・・・・・
・・・・ 32M g S O4・・・・・・・・・・
・・・・・・・・・・・ 88MgC22・・・・・・
・・・・・・・・・・・・・・・ 83KC1・・・・
・・・・・・・・・・・・・・・・・ 96NaCt
・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・ 95C
aC12・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・
100CoCLz ・・・・・・・・・・・・・・
・・・・ 71MgC1,・・・・・・・・・・・・
・・・・・・ 75ZnCLz ・・・・・・・
・・・・・・・・・・・ 10FeCL3 ・・・
・・・・・・・・・・・・・・・ 109、力価測
定法 オリーブ油9 mlを150耐用コツプに分注する。つ
ぎに0.1 M IJン酸緩衝液(pH7,0)を14
11it取り50℃に加温する。マグネチツクスターラ
ーで反応液を均一に攪はん(800rpm)しながら酵
素液を加えて反応を開始し、一定時間(30分)反応さ
せた後アセトン、エタノ−′ル(1:1)混液t−20
d加えて反応を止める。
100CuSO4・・・・・・・・・・・・・・・・・
・・・・ 32M g S O4・・・・・・・・・・
・・・・・・・・・・・ 88MgC22・・・・・・
・・・・・・・・・・・・・・・ 83KC1・・・・
・・・・・・・・・・・・・・・・・ 96NaCt
・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・ 95C
aC12・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・・
100CoCLz ・・・・・・・・・・・・・・
・・・・ 71MgC1,・・・・・・・・・・・・
・・・・・・ 75ZnCLz ・・・・・・・
・・・・・・・・・・・ 10FeCL3 ・・・
・・・・・・・・・・・・・・・ 109、力価測
定法 オリーブ油9 mlを150耐用コツプに分注する。つ
ぎに0.1 M IJン酸緩衝液(pH7,0)を14
11it取り50℃に加温する。マグネチツクスターラ
ーで反応液を均一に攪はん(800rpm)しながら酵
素液を加えて反応を開始し、一定時間(30分)反応さ
せた後アセトン、エタノ−′ル(1:1)混液t−20
d加えて反応を止める。
この液にトウイーン80 (Tween 80 ) 1
0 %溶液を1−加え、反応で生成した脂肪酸をpH電
極を用いた自動中和滴定装置(Mettler社製DL
40RC)により0.5 N水酸化カリウム(アルコー
ル性)lfI液で滴定する。酵素力価は1分間に1マイ
クロモルの脂肪酸を遊離させる酵素量を1単位とした。
0 %溶液を1−加え、反応で生成した脂肪酸をpH電
極を用いた自動中和滴定装置(Mettler社製DL
40RC)により0.5 N水酸化カリウム(アルコー
ル性)lfI液で滴定する。酵素力価は1分間に1マイ
クロモルの脂肪酸を遊離させる酵素量を1単位とした。
つ熱安定性が高いという優れた性質を有する。
従って、該リパーゼを利用すれば工業用油脂を常温常圧
領域の温和な条件下で、工業的に有利に加水分解を行な
うことができる。
領域の温和な条件下で、工業的に有利に加水分解を行な
うことができる。
次に実施例を挙げて本発明を説明する。
実施例1
ペプトン(Difco製)41グルコース0.5%。
K2HPO40,1%、Mj!So4・7 Hz8 0
.05 % %オレイン酸0.5%よりなる液体培地1
00 mlを500ゴ容坂口フラスコに入れ121℃1
5分間加圧蒸気滅菌した後、あらかじめ同培地で30℃
24時間振と間抜養したシュードモナス・エスピーKS
M−16株の前培養液1 mlを接種し30℃48時間
振と間抜養した。培養液を遠心分離して菌体を除いた上
澄液の活性は20 unit/m/であった。 ・ 実施例2 尿素0.4%、グル=r −スQ、 5 % −、K2
HPO40,1チ、Mg5Oa・7H冨oo、os%、
酵母エキス0.1%\オレイン酸0.5%よシ成る液体
培地100−を50〇−容坂ロフラスコに入れ121℃
15分間加圧蒸気滅菌した後、あらかじめ同培地で30
℃24時間振と間抜養したシュードモナス・エスピーK
SM−16株の前培養液1dを接種し30℃3日振とう
培養した。培養上澄液のリパーゼ活性は140 uni
t/dであった。
.05 % %オレイン酸0.5%よりなる液体培地1
00 mlを500ゴ容坂口フラスコに入れ121℃1
5分間加圧蒸気滅菌した後、あらかじめ同培地で30℃
24時間振と間抜養したシュードモナス・エスピーKS
M−16株の前培養液1 mlを接種し30℃48時間
振と間抜養した。培養液を遠心分離して菌体を除いた上
澄液の活性は20 unit/m/であった。 ・ 実施例2 尿素0.4%、グル=r −スQ、 5 % −、K2
HPO40,1チ、Mg5Oa・7H冨oo、os%、
酵母エキス0.1%\オレイン酸0.5%よシ成る液体
培地100−を50〇−容坂ロフラスコに入れ121℃
15分間加圧蒸気滅菌した後、あらかじめ同培地で30
℃24時間振と間抜養したシュードモナス・エスピーK
SM−16株の前培養液1dを接種し30℃3日振とう
培養した。培養上澄液のリパーゼ活性は140 uni
t/dであった。
実施例3
ペプトン4aIJ%グル:y −スQ、 5 %、KH
2P OaO11%、MgSO4・7HzO0,05%
、オレイン酸0、5 %よりなる2tの培地を5を容の
ジャーファーメンタ−に入れ121℃15分間加圧蒸気
滅菌したのち、あらかじめ同培地で30℃24時間振と
間抜養したシュ−ドモナス・エスピー KSM−16株
を100−の培養液を加え30℃300rpmで48時
間培誉した。培養後、菌体を遠心分離して除いた培養上
澄1.52の活性は30 unit/d、であった。培
養上澄を300dtで限外ろ過(アミコン社製 ダイヤ
フロー膜 分画分子量10000)により濃縮した後、
凍結乾燥して粗酵素粉末102を得た。酵素粉末には3
000unit/fの活性が認められた。
2P OaO11%、MgSO4・7HzO0,05%
、オレイン酸0、5 %よりなる2tの培地を5を容の
ジャーファーメンタ−に入れ121℃15分間加圧蒸気
滅菌したのち、あらかじめ同培地で30℃24時間振と
間抜養したシュ−ドモナス・エスピー KSM−16株
を100−の培養液を加え30℃300rpmで48時
間培誉した。培養後、菌体を遠心分離して除いた培養上
澄1.52の活性は30 unit/d、であった。培
養上澄を300dtで限外ろ過(アミコン社製 ダイヤ
フロー膜 分画分子量10000)により濃縮した後、
凍結乾燥して粗酵素粉末102を得た。酵素粉末には3
000unit/fの活性が認められた。
参考例1
実施例3で得た粗酵素粉末を用いてパーム油、ヤシ油、
牛脂、オリーブ油の分解をおこなった。
牛脂、オリーブ油の分解をおこなった。
三角フラスコに油12に対し、酵素1000un i
t 、油対水(1:1)で振とうさせ加水分解した。4
8時間後の6油の分解率は、パーム油92チ、ヤシ油9
0.9%、牛脂90.1%、オリーブ油86.3%であ
った。
t 、油対水(1:1)で振とうさせ加水分解した。4
8時間後の6油の分解率は、パーム油92チ、ヤシ油9
0.9%、牛脂90.1%、オリーブ油86.3%であ
った。
参考例2
実施例3で得た粗酵素粉末を用いてパーム油の加水分解
を行った。三角フラスコに、油11に対し酵素160
unit、油対水(1:1)で加え振とうさせ加水分解
した。24時間後パーム油の分解率は92%であった。
を行った。三角フラスコに、油11に対し酵素160
unit、油対水(1:1)で加え振とうさせ加水分解
した。24時間後パーム油の分解率は92%であった。
参考例3 微生物の取得方法
(1)栃木県芳賀郡市貝町周辺の土壌を採取し、土壌小
さじ一杯を滅菌生理食塩水10−の入った試験管に入れ
、1分間ポルテックスミキサーにて懸濁分散させた。約
1時間静置後、その上澄液を0.2−採取し、これを下
記方法で調製された分離用寒天培地の表面にコンラッジ
禅で均一に塗布した後、30℃で培養した。
さじ一杯を滅菌生理食塩水10−の入った試験管に入れ
、1分間ポルテックスミキサーにて懸濁分散させた。約
1時間静置後、その上澄液を0.2−採取し、これを下
記方法で調製された分離用寒天培地の表面にコンラッジ
禅で均一に塗布した後、30℃で培養した。
(分離用寒天培地の調製)
培地組成
トリブチリン・・・・・・・・・・・・・・・0.1%
(NH4)2SO4・・・・・・・・・・・・・・・0
.5%ンイトン ・・・・・・・・・・・・・・・0
.5%酵母エキス ・・・・・・・・・・・・・・・0
.1%KH2P O4・・・・・・・・・・・・・・・
0.5チM g S Oa・7H20・・・・・・・・
・・・・0.1チ寒天 ・・・・・・・・・・・
・・・・2.0%pH4,5(HClで調製) 調製方法 上記組成のうちトリブチリン、および寒天を別滅菌し、
滅菌後これらを無菌的に合せ、シェーカーでトリブチリ
ンを均一に分散させた後、保温下で滅菌シャーレに一定
量分注し不透明な平板寒天培地とした。
(NH4)2SO4・・・・・・・・・・・・・・・0
.5%ンイトン ・・・・・・・・・・・・・・・0
.5%酵母エキス ・・・・・・・・・・・・・・・0
.1%KH2P O4・・・・・・・・・・・・・・・
0.5チM g S Oa・7H20・・・・・・・・
・・・・0.1チ寒天 ・・・・・・・・・・・
・・・・2.0%pH4,5(HClで調製) 調製方法 上記組成のうちトリブチリン、および寒天を別滅菌し、
滅菌後これらを無菌的に合せ、シェーカーでトリブチリ
ンを均一に分散させた後、保温下で滅菌シャーレに一定
量分注し不透明な平板寒天培地とした。
(2)次いで、上記培養により生育したコロニーのうち
、周辺にトリブチリンを分解し透明環を形成するコロニ
ーの1白金耳を滅菌生理食塩水で100倍希釈し、この
希釈液1白金耳を前述の分離用寒天培地と同組成の寒天
培地に画線し、30℃で3日間培養した。生じた複数の
コロニーが相互に相違しないことを肉眼的および顕微鏡
的に観察することによシ確認した。さらに上記コロニー
を再度同じ操作を行い単一性を再確認した。上記菌株の
各培地上の性状および生理学的性質は前述した通りであ
る。
、周辺にトリブチリンを分解し透明環を形成するコロニ
ーの1白金耳を滅菌生理食塩水で100倍希釈し、この
希釈液1白金耳を前述の分離用寒天培地と同組成の寒天
培地に画線し、30℃で3日間培養した。生じた複数の
コロニーが相互に相違しないことを肉眼的および顕微鏡
的に観察することによシ確認した。さらに上記コロニー
を再度同じ操作を行い単一性を再確認した。上記菌株の
各培地上の性状および生理学的性質は前述した通りであ
る。
(3)次いで、上記で純粋培養≠された斜面培地上の菌
株よシ1白金耳を滅菌した10%グリセ・リン水溶液(
2rd )の入った凍結用バイアルに懸濁し、−80℃
にて凍結保存する。かくして3力月凍結保存後、迅速に
解凍して得られる懸濁液の1白金耳を普通寒天培地に蘇
生後、前記と同条件下に各培地上での性状および生理学
的性質を調べた結果、凍結前とは変化が認められなかっ
た。
株よシ1白金耳を滅菌した10%グリセ・リン水溶液(
2rd )の入った凍結用バイアルに懸濁し、−80℃
にて凍結保存する。かくして3力月凍結保存後、迅速に
解凍して得られる懸濁液の1白金耳を普通寒天培地に蘇
生後、前記と同条件下に各培地上での性状および生理学
的性質を調べた結果、凍結前とは変化が認められなかっ
た。
図1は本発明によって得られたリパーゼのpH3〜13
の範囲における、30℃24時間処理後の残存活性を示
す図面である。 図2は、本発明によって得られたリパーゼのpH3〜8
の範囲における比活性を示す図面である。 図3は、本発明によって得られたリパーゼの各温度条件
下における比活性を示す図面である。 図4は、本発明によって得られたリパーゼの各温度条件
下での処理時間と残存活性との関係を示す図面である。 図5は、本発明によって得られたリパーゼの各温度条件
下で10分間処理した場合の残存活性を示す図面である
。 以上 図 1 pH O:マクルバイン緩衝液 Δ: トリス−HC1緩衝液 。:グリセリンーNaOH緩衝液 @ : NaHCO3−NaOH緩衝液ム’、 Na
2EIPO,−Na0F!緩衝液@ : KCt−Na
OH緩衝液 図 2 pH O:マクルパイン緩衝液中、50°C条件下図 3 温度(”C) 図 4 時間(時) Q:30″C Δ:50°C 口:70℃ 図 5 0:pH未調整、1o分間処理
の範囲における、30℃24時間処理後の残存活性を示
す図面である。 図2は、本発明によって得られたリパーゼのpH3〜8
の範囲における比活性を示す図面である。 図3は、本発明によって得られたリパーゼの各温度条件
下における比活性を示す図面である。 図4は、本発明によって得られたリパーゼの各温度条件
下での処理時間と残存活性との関係を示す図面である。 図5は、本発明によって得られたリパーゼの各温度条件
下で10分間処理した場合の残存活性を示す図面である
。 以上 図 1 pH O:マクルバイン緩衝液 Δ: トリス−HC1緩衝液 。:グリセリンーNaOH緩衝液 @ : NaHCO3−NaOH緩衝液ム’、 Na
2EIPO,−Na0F!緩衝液@ : KCt−Na
OH緩衝液 図 2 pH O:マクルパイン緩衝液中、50°C条件下図 3 温度(”C) 図 4 時間(時) Q:30″C Δ:50°C 口:70℃ 図 5 0:pH未調整、1o分間処理
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、シュードモナス属に属するリパーゼ生産菌を培養し
、該培養物から下記の理化学的性質を有するリパーゼを
採取することを特徴とするリパーゼの製造法。 (1)作用 パーム油、オリーブ油、牛脂、ヤシ油を反応温度60℃
、24時間で90%以上分解する。特にパーム油は93
%以上分解する。 (2)基質特異性 各種グリセライド、エステルなどを
分解する。 特に飽和油脂を選択的に分解する。 (3)安定pH範囲 pH3−12 作用至適pHの範囲 pH6−7.5 (4)作用適温の範囲65−80℃ 至適温度 70℃ (5)分子量 SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法では290
00 ゲルろ過(セフアデツクス G−75)法によると30
000である。 (6)糖含有 オルシノール反応による糖発色 +2、
リパーゼ生産菌がシュードモナス・エスピー(Pseu
domonas sp.)KSM−16(微工研菌寄第
8538号)である特許請求の範囲第1項記載のリパー
ゼの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61054510A JPH0755148B2 (ja) | 1986-03-12 | 1986-03-12 | リパ−ゼの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61054510A JPH0755148B2 (ja) | 1986-03-12 | 1986-03-12 | リパ−ゼの製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62210987A true JPS62210987A (ja) | 1987-09-17 |
JPH0755148B2 JPH0755148B2 (ja) | 1995-06-14 |
Family
ID=12972637
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61054510A Expired - Lifetime JPH0755148B2 (ja) | 1986-03-12 | 1986-03-12 | リパ−ゼの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0755148B2 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5827718A (en) * | 1993-08-30 | 1998-10-27 | Novo Nordisk A/S | Lipase, microorganisms producing the lipase, method of producing the lipase and use of the lipase |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5763087A (en) * | 1980-09-30 | 1982-04-16 | Agency Of Ind Science & Technol | Treatment of culture mixture containing heat-resistant lipase |
-
1986
- 1986-03-12 JP JP61054510A patent/JPH0755148B2/ja not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5763087A (en) * | 1980-09-30 | 1982-04-16 | Agency Of Ind Science & Technol | Treatment of culture mixture containing heat-resistant lipase |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5827718A (en) * | 1993-08-30 | 1998-10-27 | Novo Nordisk A/S | Lipase, microorganisms producing the lipase, method of producing the lipase and use of the lipase |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0755148B2 (ja) | 1995-06-14 |
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