JPS62205790A - D−アミノ酸の製造方法 - Google Patents
D−アミノ酸の製造方法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は抗生物質の修飾剤をはじめ、医薬・農薬中間体
として有用なり一アミノ酸の製造方法に関する。
として有用なり一アミノ酸の製造方法に関する。
(従来技術)
D−アミノ酸は非天然型の光学活性アミノ酸であり、合
成法でも、発酵法でも製造の困難な化合物である。この
D−アミノ酸の製造方法としては、これまでに5−置換
ヒダントインに酵素を作用させる方法(特開昭55−1
04890.特開昭55−114292など)やN−ア
セチル−DL−アミノ酸なり一アミノアシラーゼでD一
体を選択的に脱アセチル化し、D−アミノ酸を得る方法
(特公昭53−36035 )などが知られている。
成法でも、発酵法でも製造の困難な化合物である。この
D−アミノ酸の製造方法としては、これまでに5−置換
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セチル−DL−アミノ酸なり一アミノアシラーゼでD一
体を選択的に脱アセチル化し、D−アミノ酸を得る方法
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(発明が解決しようとする問題点)
しかし、これらの方法は、原料基質が高価であったり、
DL一体を分割したのちに、L一体をラセミ化する別工
程が必要であったりし、更に低コストのD−アミノ酸の
製造法が求められている。
DL一体を分割したのちに、L一体をラセミ化する別工
程が必要であったりし、更に低コストのD−アミノ酸の
製造法が求められている。
(問題点を解決するための手段)
本発明者らは、D−アミノ酸を低コストで製造する方法
について鋭意研究の結果、例えば、安価なアンモニア、
ギ酸などのNADH再生用基質、およびα−ケト酸を原
料に下記CI)式で示される共役酵素反応系を利用する
ことにより、高収率でかつ高い光学純度を有するD−ア
ミノ酸を生成できることを見出し、本発明をなすにいた
った。
について鋭意研究の結果、例えば、安価なアンモニア、
ギ酸などのNADH再生用基質、およびα−ケト酸を原
料に下記CI)式で示される共役酵素反応系を利用する
ことにより、高収率でかつ高い光学純度を有するD−ア
ミノ酸を生成できることを見出し、本発明をなすにいた
った。
HH
NH2NI−I 2
o 。
−ゼを示す。)
即ち、本発明はD−アミノ酸をアミノ基供与体ケト酸か
ら対応するD−アミノ酸を製造するに際し、アミノ基供
与体D−アミノ酸を再生する酵素反応系を利用すること
を特徴とするD−アミノ酸の製造方法である。
ら対応するD−アミノ酸を製造するに際し、アミノ基供
与体D−アミノ酸を再生する酵素反応系を利用すること
を特徴とするD−アミノ酸の製造方法である。
以下、本発明の共役酵素反応系について説明するが、本
発明は、これに限定されるものではない。
発明は、これに限定されるものではない。
L−アミノ酸から、アミノ酸ラセマーゼ(以下AAI’
lという)により生成したD−アミノ酸をアミノ基供与
体とし、D−アミノ酸トランスアミナーゼ(以下D −
ATAという〕により、α−ケト酸をこれに対応するD
−アミノ酸に変換する。この際、アミン基供与体が脱ア
ミノ化されて得られるα−ケト酸を、アミノ酸デヒドロ
ゲナーゼ(以下AADHという〕によりL−アミノ酸に
再生する。
lという)により生成したD−アミノ酸をアミノ基供与
体とし、D−アミノ酸トランスアミナーゼ(以下D −
ATAという〕により、α−ケト酸をこれに対応するD
−アミノ酸に変換する。この際、アミン基供与体が脱ア
ミノ化されて得られるα−ケト酸を、アミノ酸デヒドロ
ゲナーゼ(以下AADHという〕によりL−アミノ酸に
再生する。
このアミン基供与体の再生酵素反応系で使用さ+
れ変換されたNAD は、NADH再生能を有する基
質および酵素の組み合わせによって、再びN A D
Hへと再生される。
質および酵素の組み合わせによって、再びN A D
Hへと再生される。
本発明は、このようにして、目的のD−アミノ酸をバッ
チ法あるいは連続法により、製造することができる。
チ法あるいは連続法により、製造することができる。
本発明の製法によって、はとんど全てのD−ア1−I2
料α−ケト酸((I)式におけるR −C−COOI−
1ないう)によって決定される。
1ないう)によって決定される。
例えば、α−ケトグルタル酸からD−グルタミン酸、α
−ケト酪酸からD−アミノ酪酸、α−ケト吉草酸からD
−フルバリン、α−ケトイソ吉草酸からD−バリン、オ
キザロ酢酸からD−アスパラギン酸、α−ケト−γ−メ
チルチオ酪酸からD−メチオニン、α−ケトイソカプロ
ン酸からD−ロイシン、イミダゾールピルビン酸からD
−ヒスチジン、α−ケトアルギニンからD−アルギニン
、フェニルピルビン酸からD−7エニルアラニン、と−
ヒドロキシフェニルピルビン酸からD−チロシン、フェ
ニルグリオキシル酸からD−7エニルグリシン、インド
ールピルビン酸か6 D −トIJグトファン、ピルビ
ン酸からD−アラニン、β−ヒドロキシピルビン酸から
D−セリンなどを製Mすることができる。
−ケト酪酸からD−アミノ酪酸、α−ケト吉草酸からD
−フルバリン、α−ケトイソ吉草酸からD−バリン、オ
キザロ酢酸からD−アスパラギン酸、α−ケト−γ−メ
チルチオ酪酸からD−メチオニン、α−ケトイソカプロ
ン酸からD−ロイシン、イミダゾールピルビン酸からD
−ヒスチジン、α−ケトアルギニンからD−アルギニン
、フェニルピルビン酸からD−7エニルアラニン、と−
ヒドロキシフェニルピルビン酸からD−チロシン、フェ
ニルグリオキシル酸からD−7エニルグリシン、インド
ールピルビン酸か6 D −トIJグトファン、ピルビ
ン酸からD−アラニン、β−ヒドロキシピルビン酸から
D−セリンなどを製Mすることができる。
次に、本発明に使用される酵素について述べる。
D −ATAは植物や微生物中に見い出され、特にBa
cillus属に高生産株が存在する。その中でもBa
cillus属の中等度好熱菌が生産するD −ATA
(特願昭60−26’735)は耐熱性が高く安定であ
ることより特に好適である。
cillus属に高生産株が存在する。その中でもBa
cillus属の中等度好熱菌が生産するD −ATA
(特願昭60−26’735)は耐熱性が高く安定であ
ることより特に好適である。
さらに、このBacillus f55ヤ度好熱菌由来
のは、極めて高活性であると共に、通常のL−ブロスで
培養後、細胞壁を破砕し、熱処理(例えば60℃、30
分)するだけで、D−ATA活性を低下させることなく
、他の雑多な夾雑酵素活性を取り除くことができ、本発
明の方法において使用するにあたって、極めて有用であ
る。
のは、極めて高活性であると共に、通常のL−ブロスで
培養後、細胞壁を破砕し、熱処理(例えば60℃、30
分)するだけで、D−ATA活性を低下させることなく
、他の雑多な夾雑酵素活性を取り除くことができ、本発
明の方法において使用するにあたって、極めて有用であ
る。
また、ここで用いるD−アミノ酸トランスアミナーゼは
広い基質特異性を有しており、はとんどすべてのD−ア
ミノ酸な高収率、高い立体特異性をもって合成すること
ができる。
広い基質特異性を有しており、はとんどすべてのD−ア
ミノ酸な高収率、高い立体特異性をもって合成すること
ができる。
A ’ARおよびAADHは、バチルス属をはじめ様々
な微生物や植物、動物に存在することが知られている。
な微生物や植物、動物に存在することが知られている。
AARおよびAADHは、アミノ基供与体となるアミノ
酸との基質特異性を勘案して選択される。
酸との基質特異性を勘案して選択される。
その−例として、アラニンラセマーゼ(以下A1aRと
いう)およびアラニンデヒドロゲナーゼ(以下AlaD
Hという)が掲げられるが、これらは多くの微生物に分
布している。その中で特にバチルス−ステアロサーモフ
ィルスIFO12550(Bacillus stea
rothermophilus )が産生ずるものは高
活性でかつ高い安定性を有することより好適である。さ
らに、このバチルス、・ステアロサーモフィルス■F○
12550由来のAu aRおよびAlaDHの溝co
lic 600−pMD112 )などは、どちらも
元の株に比べて活性が数十倍高く、また熱処理(例えば
70℃、1時間)により他の夾雑酵素を取り除くことが
でき、本発明の目的には極めて有用である。
いう)およびアラニンデヒドロゲナーゼ(以下AlaD
Hという)が掲げられるが、これらは多くの微生物に分
布している。その中で特にバチルス−ステアロサーモフ
ィルスIFO12550(Bacillus stea
rothermophilus )が産生ずるものは高
活性でかつ高い安定性を有することより好適である。さ
らに、このバチルス、・ステアロサーモフィルス■F○
12550由来のAu aRおよびAlaDHの溝co
lic 600−pMD112 )などは、どちらも
元の株に比べて活性が数十倍高く、また熱処理(例えば
70℃、1時間)により他の夾雑酵素を取り除くことが
でき、本発明の目的には極めて有用である。
N A D H再生系は公知の基質および酵素の組み合
わせによって実施することができる。例えば、米国特許
第4,221,869号に記載されているギ酸およびギ
酸デヒドロゲナーゼ(以下F D Hという)アルコー
ルおヨヒアルコールデヒドロゲナーゼ(以下ADHとい
う)、グルコースおよびグルコースデヒドロゲ+ ナーゼなどの組み合わせによって、NAD からNA
DHを再生することができる。 F’DI(はCand
ida 属の酵母やPseudomonas 属の細菌
由来のものが市販されている。また、Candida、
Pichia 、 Hansenula 属等のメタノ
ール資化性酵母を培養することにより容易に調製できる
。ADHもウマ肝臓や酵母由来のものが市販されている
。
わせによって実施することができる。例えば、米国特許
第4,221,869号に記載されているギ酸およびギ
酸デヒドロゲナーゼ(以下F D Hという)アルコー
ルおヨヒアルコールデヒドロゲナーゼ(以下ADHとい
う)、グルコースおよびグルコースデヒドロゲ+ ナーゼなどの組み合わせによって、NAD からNA
DHを再生することができる。 F’DI(はCand
ida 属の酵母やPseudomonas 属の細菌
由来のものが市販されている。また、Candida、
Pichia 、 Hansenula 属等のメタノ
ール資化性酵母を培養することにより容易に調製できる
。ADHもウマ肝臓や酵母由来のものが市販されている
。
→崎−門また酵素は生物から抽出したものをそのまま、
あるいは従来知られている方法により固定化したものや
膜反応器等、いずれも使用することができる。
あるいは従来知られている方法により固定化したものや
膜反応器等、いずれも使用することができる。
本発明の反応の最適条件は、使用する酵素により異なる
が、通常pH7〜10、温度25〜55℃、好ましくは
pH8〜9、温度3ヤ〜50℃の範囲で実施される。p
Hは、反応中のpH変動を酸、アルカリを添加しながら
コントロールしてもよいし、トオン交換樹脂等によって
、有機酸などから容易に分離されうる。
が、通常pH7〜10、温度25〜55℃、好ましくは
pH8〜9、温度3ヤ〜50℃の範囲で実施される。p
Hは、反応中のpH変動を酸、アルカリを添加しながら
コントロールしてもよいし、トオン交換樹脂等によって
、有機酸などから容易に分離されうる。
本発明に使用される原料α−ケト酸は50〜500 m
mol/ lの範囲が好ましく、アミン基供与士 体アミノ酸は0.5〜20 m mot/ t、 NA
D は0.1〜10mm0Z/ t%ギ酸、アルコー
ル、グルコース等のN A D I−1再生系基質は1
00〜1000m mob/1.、アンモニアは50m
〜1mot/lが好ましい。また、D−AT Aは2〜
20 Uni t /mA 、 AA Rは1〜10
Unit /ml。
mol/ lの範囲が好ましく、アミン基供与士 体アミノ酸は0.5〜20 m mot/ t、 NA
D は0.1〜10mm0Z/ t%ギ酸、アルコー
ル、グルコース等のN A D I−1再生系基質は1
00〜1000m mob/1.、アンモニアは50m
〜1mot/lが好ましい。また、D−AT Aは2〜
20 Uni t /mA 、 AA Rは1〜10
Unit /ml。
A AD I−1は4〜100 Unit /m/L
、 NADH再生系酵素は1〜10 tJnit /m
Aの範囲で使用されることが好ましい。
、 NADH再生系酵素は1〜10 tJnit /m
Aの範囲で使用されることが好ましい。
わ
ただし、これらの酵素量は、基質との組みNや4種の酵
素の組み合わせ等の条件によって、適宜選択される。本
発明においてアミノ基供与体として添加するアミノ酸(
(I)式におけるす R’−C−Cool−1ヲイウ) ハ、目的とするD−
アミノ糺。
素の組み合わせ等の条件によって、適宜選択される。本
発明においてアミノ基供与体として添加するアミノ酸(
(I)式におけるす R’−C−Cool−1ヲイウ) ハ、目的とするD−
アミノ糺。
酸と異った種類のアミノ酸であることが必要であり、ま
た、対応するAARおよびA A D Hを有し、かつ
、目的とするD−アミノ酸の生成サイクルを崩さないア
ミノ酸の中から適宜選択される。また、このアミノ酸は
、L一体であってもDL一体であっても差しつかえない
。
た、対応するAARおよびA A D Hを有し、かつ
、目的とするD−アミノ酸の生成サイクルを崩さないア
ミノ酸の中から適宜選択される。また、このアミノ酸は
、L一体であってもDL一体であっても差しつかえない
。
本発明の反応には、 D −ATA 、 AARの補酵
素としてピリドキサールリン酸を加えることが好ましい
。
素としてピリドキサールリン酸を加えることが好ましい
。
(発明の効果)
本発明の方法により、
(1)安価な原料を利用できる。
(2)煩雑な工程を必要としない。
(3)高収率で
(4)高い光学純度を有するD−アミノ酸を製造するこ
とができる。
とができる。
(実施例)
実施例1
NH4Ct/NH40H緩衝液(pI−18,1) 1
00μmo4ギ酸ナトリウム250μmo L、α−ケ
トグルタル酸+ 25 μmolSDL−アラニン5 μmob、 NA
D O,5pmol、 ピリドキサールリン酸25 n
motSFDHIUnit、D −ATA 3 Un
it、 Ala−R3UnitおよびAlaDH5Un
itを含む反応液500μtを50℃で4時間反応させ
た。反応はDL−アラニンの添加により開始し、12%
トリクロル酢酸を添加することによって終了させた。反
応液を中和し、遠心分離した上清を希釈し、アミノ酸自
動分析機により生成したグルタミン酸を定量した。また
、得られたグルタミン酸は分析の結果はぼ100%D一
体であった。
00μmo4ギ酸ナトリウム250μmo L、α−ケ
トグルタル酸+ 25 μmolSDL−アラニン5 μmob、 NA
D O,5pmol、 ピリドキサールリン酸25 n
motSFDHIUnit、D −ATA 3 Un
it、 Ala−R3UnitおよびAlaDH5Un
itを含む反応液500μtを50℃で4時間反応させ
た。反応はDL−アラニンの添加により開始し、12%
トリクロル酢酸を添加することによって終了させた。反
応液を中和し、遠心分離した上清を希釈し、アミノ酸自
動分析機により生成したグルタミン酸を定量した。また
、得られたグルタミン酸は分析の結果はぼ100%D一
体であった。
収率は、基質α−ケトグルタル酸に対して100%であ
った。
った。
ただし、F D Hは
リン酸緩衝液(pl−18,0) 50μmol、ギ
酸ナトリウ液1mA、50℃)、340 nmにおける
吸収の増加を経時的に測定し、1分間にNADI−I
1μmotの生成を触媒する酵素量を1Unitとした
。
酸ナトリウ液1mA、50℃)、340 nmにおける
吸収の増加を経時的に測定し、1分間にNADI−I
1μmotの生成を触媒する酵素量を1Unitとした
。
D −A’llは
Tris −1(C4緩衝液(pi−18,1) 25
μmot、ピリドα−ケトグルタル酸ナトリウムを添加
することにより反応を開始しく反応液500μtSiM
度50℃)、したピルビン酸をサリチルアルデヒド法に
よす定量し、1分間にピルビン酸1μmotの生成を触
媒する酵素量を1Unitとした。
μmot、ピリドα−ケトグルタル酸ナトリウムを添加
することにより反応を開始しく反応液500μtSiM
度50℃)、したピルビン酸をサリチルアルデヒド法に
よす定量し、1分間にピルビン酸1μmotの生成を触
媒する酵素量を1Unitとした。
Al a−Rは
リン酸緩衝液(pH8,0) 25μmol、 ビリ
ドキサルリン酸25 nmot、 α−ケトグルタ
ル酸ナトリウり反応を開始しく反応液500μt、50
’C)、15分間インキュベートした後、60%KOH
を500μを添加することにより反応を停止させ、生成
したピルビン酸をサリチルアルデヒド法で測定し、1分
間にピルビン酸1μmo7の生成を触媒する酵素量を1
Unitとした0 AIaDI−1は アンモニア緩唾液(pH8,6) 750μmoA、ピ
ルを開始しく反応液1 ml、 50℃)、340 n
mにおける吸収の減少を経時的に測定し1分間にNAD
T−I 1μmoJ−の減少を触媒する酵素量を1Un
itとした。
ドキサルリン酸25 nmot、 α−ケトグルタ
ル酸ナトリウり反応を開始しく反応液500μt、50
’C)、15分間インキュベートした後、60%KOH
を500μを添加することにより反応を停止させ、生成
したピルビン酸をサリチルアルデヒド法で測定し、1分
間にピルビン酸1μmo7の生成を触媒する酵素量を1
Unitとした0 AIaDI−1は アンモニア緩唾液(pH8,6) 750μmoA、ピ
ルを開始しく反応液1 ml、 50℃)、340 n
mにおける吸収の減少を経時的に測定し1分間にNAD
T−I 1μmoJ−の減少を触媒する酵素量を1Un
itとした。
実施例2〜18
α−ケト酸を実施例1と変えて、各種アミノ酸を製造し
た。結果を表−1に示す。D−ATAfiおよび反応時
間以外の条件は、実施例1と同様にして行なった。
た。結果を表−1に示す。D−ATAfiおよび反応時
間以外の条件は、実施例1と同様にして行なった。
実施例19〜28
Tris−HCt緩衝液(pH9、O) 100μmo
A、 −%−m−+α−ケト酸100μmotギ酸アン
モニウム10010O4、L−、”/、fiiy酸20
.amoj、NAD+1μm6t、 ピリドキサールリ
ン酸5Qnmot、グルタミン酸ラセマーゼ0.5Un
it、FDI41 Unit、D−ATAを含む反応液
1 mlを37℃で反応させた。反応はL−グルタミン
酸の添加により開始し、12%トリクロル酢酸を添加す
ることによって終了させた。
A、 −%−m−+α−ケト酸100μmotギ酸アン
モニウム10010O4、L−、”/、fiiy酸20
.amoj、NAD+1μm6t、 ピリドキサールリ
ン酸5Qnmot、グルタミン酸ラセマーゼ0.5Un
it、FDI41 Unit、D−ATAを含む反応液
1 mlを37℃で反応させた。反応はL−グルタミン
酸の添加により開始し、12%トリクロル酢酸を添加す
ることによって終了させた。
反応液を中和し、遠心分離した上清を希釈し、アミノ酸
自動分析機により、生成したアミノ酸を定量した。得ら
れたアミノ酸は分析の結果り一体であった。収率は、基
質α−ケト酸に対する生成したD−アミノ酸の比とした
。綿果友a−2+こ示す。
自動分析機により、生成したアミノ酸を定量した。得ら
れたアミノ酸は分析の結果り一体であった。収率は、基
質α−ケト酸に対する生成したD−アミノ酸の比とした
。綿果友a−2+こ示す。
ただしF D I−1は
リン酸緩衝液(pH48,0) 50μmoA、ギ酸ナ
ト液1mA、37℃〕、340 nmにおける吸収の増
加を経時的に測定し、1分間にNADH1μmotの生
成を触媒する酵素量を1Unitとした。
ト液1mA、37℃〕、340 nmにおける吸収の増
加を経時的に測定し、1分間にNADH1μmotの生
成を触媒する酵素量を1Unitとした。
D −ATAは
Tris−HC2緩衝液(pH8,1)25μ+no7
.ビリ ドキーケトグルタル酸ナトリウムを添加するこ
とにより反応を開始しく反応液500μt、温度37℃
)、15分間インキ−ベートした後、60%KOHを5
00μを添加することによって反応を停止させ、生成し
たピルビン酸をサリチルアルデヒド法により定量し1分
間にピルビン酸1μmotの生成を触媒する酵素量を1
Unitとした。
.ビリ ドキーケトグルタル酸ナトリウムを添加するこ
とにより反応を開始しく反応液500μt、温度37℃
)、15分間インキ−ベートした後、60%KOHを5
00μを添加することによって反応を停止させ、生成し
たピルビン酸をサリチルアルデヒド法により定量し1分
間にピルビン酸1μmotの生成を触媒する酵素量を1
Unitとした。
グルタミン酸デヒドロゲナーゼは、(株)ベーリンガー
マンハイム山之内製(グルタミン酸脱水素酵素)を用い
た。(1m?あたり120Unit)グルタミン酸ラセ
マーゼ r−5’4は、Tris−HCA緩衝液(pI
−18,0) 200μmot、グルタミ7することに
より反応を開始し、(反応液1 mt、37℃)340
nmにおける吸収の増加を経時的に測定し、1分間に
NADI−11μmolの生成を触媒する酵素量を1U
nitとした。
マンハイム山之内製(グルタミン酸脱水素酵素)を用い
た。(1m?あたり120Unit)グルタミン酸ラセ
マーゼ r−5’4は、Tris−HCA緩衝液(pI
−18,0) 200μmot、グルタミ7することに
より反応を開始し、(反応液1 mt、37℃)340
nmにおける吸収の増加を経時的に測定し、1分間に
NADI−11μmolの生成を触媒する酵素量を1U
nitとした。
手 続 補 正 出 (自発)昭和61年4り
十日 2、発明の名称 D−アミノ酸の製造方法 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住 所 大阪府堺市鉄砲町1番地 名 称 (290)ダイセル化学工業株式会社代表者
久保田美文 4、代理人 東京都千代田区霞が関三丁目8−1 虎の門三井ビル ダイセル化学工業株式会社 特許部内 明細書の特許請求の範囲の欄および発明の詳細な説明の
欄、/−、、l−1 6、補正の内容 1) 明細書の特許請求の範囲の欄を別紙の通り補正す
る。
十日 2、発明の名称 D−アミノ酸の製造方法 3、補正をする者 事件との関係 特許出願人 住 所 大阪府堺市鉄砲町1番地 名 称 (290)ダイセル化学工業株式会社代表者
久保田美文 4、代理人 東京都千代田区霞が関三丁目8−1 虎の門三井ビル ダイセル化学工業株式会社 特許部内 明細書の特許請求の範囲の欄および発明の詳細な説明の
欄、/−、、l−1 6、補正の内容 1) 明細書の特許請求の範囲の欄を別紙の通り補正す
る。
2) 明細1第6頁3行「脱アミン化」を)“脱アミノ
」と補正づ゛る。
」と補正づ゛る。
3) 明細書第6頁6〜7行「使用され変換された」を
「生成された」と補正する。
「生成された」と補正する。
/l) 明細書第13頁19行「25mmolJをr
25nmolJど補正する。
25nmolJど補正する。
5) 明am第18頁5行r 25mrno l Jを
f25nmolJと補正する。
f25nmolJと補正する。
6□l+−ゝ、
特許請求の範囲
(1)D−アミノ酸をアミノ基供与体とし、D−アミノ
酸トランスアミナーゼにより、α−ケト酸から対応する
D−アミノ酸を製造するに際し、1 アミノ基供与体り
−アミノ酸を再生する酵素反応系を利用することを与体
D−アミノ酸の再生に必要なN A D Hを再生する
酵素反応系を含む特許請求の範囲第1項記載の方法。
酸トランスアミナーゼにより、α−ケト酸から対応する
D−アミノ酸を製造するに際し、1 アミノ基供与体り
−アミノ酸を再生する酵素反応系を利用することを与体
D−アミノ酸の再生に必要なN A D Hを再生する
酵素反応系を含む特許請求の範囲第1項記載の方法。
(3) アミノ基供与体り−アミノ酸を再生する酵素
反応系が、そのアミノゼを作用させることにより行なわ
れる系である特許請求の範囲第1項記載の方法。
反応系が、そのアミノゼを作用させることにより行なわ
れる系である特許請求の範囲第1項記載の方法。
Claims (3)
- (1)D−アミノ酸をアミノ基供与体とし、D−アミノ
酸トランスアミナーゼによりα−ケト酸から対応するD
−アミノ酸を製造するに際し、アミノ基供与体D−アミ
ノ酸を再生する酵素反応系を利用することを特徴とする
D−アミノ酸の製造方法。 - (2)アミノ基供与体D−アミノ酸を再生する酵素反応
系が、アミノ基供与体D−アミノ酸の再生に必要なNA
DHを再生する酵素反応系を含む特許請求の範囲第1項
記載の方法。 - (3)アミノ基供与体D−アミノ酸を再生する酵素反応
系が、そのアミノ基供与体D−アミノ酸が脱アミノ化さ
れて得られるα−ケト酸に、アミノ酸デヒドロゲナーゼ
、アンモニア、 NADH、及びアミノ酸ラセマーゼを作用させることに
より行なわれる系である特許請求の範囲第1項記載の方
法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61048233A JPH0785718B2 (ja) | 1986-03-07 | 1986-03-07 | D−アミノ酸の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61048233A JPH0785718B2 (ja) | 1986-03-07 | 1986-03-07 | D−アミノ酸の製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62205790A true JPS62205790A (ja) | 1987-09-10 |
JPH0785718B2 JPH0785718B2 (ja) | 1995-09-20 |
Family
ID=12797724
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61048233A Expired - Fee Related JPH0785718B2 (ja) | 1986-03-07 | 1986-03-07 | D−アミノ酸の製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0785718B2 (ja) |
Cited By (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH01285193A (ja) * | 1988-05-12 | 1989-11-16 | Daicel Chem Ind Ltd | D−アスパラギン酸の製造方法 |
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