JPS61289900A - クレアチンキナ−ゼ定量用試薬 - Google Patents
クレアチンキナ−ゼ定量用試薬Info
- Publication number
- JPS61289900A JPS61289900A JP13256985A JP13256985A JPS61289900A JP S61289900 A JPS61289900 A JP S61289900A JP 13256985 A JP13256985 A JP 13256985A JP 13256985 A JP13256985 A JP 13256985A JP S61289900 A JPS61289900 A JP S61289900A
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- JP
- Japan
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- reagent
- nac
- creatine kinase
- activity
- quantitative determination
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、生体液中のタレアチンキナーゼ(以下CKと
略記する。)の定量用試薬に関するものである。
略記する。)の定量用試薬に関するものである。
(従来の技術)
CKは、全身の筋組織及び脳に存在し、臨床検査の領域
においてCK活性の測定は、筋疾患、神経性疾患、中框
神経系疾患、精神病、心疾患などの診断に日常的に測定
されている重要な項目の一つである。
においてCK活性の測定は、筋疾患、神経性疾患、中框
神経系疾患、精神病、心疾患などの診断に日常的に測定
されている重要な項目の一つである。
CKは、(1)式の左右両方向の反応を触媒する酵素で
ある。
ある。
CK
CP+へ叶 C−1−ATP (11
(略号は、Cl):クレアチンリン酸、C:クレアチン
、^DP:アデノシンニリン酸、八TPへアデノシンニ
リン酸である。) 従来から9種々のCK測定法が提案されてきた。
(略号は、Cl):クレアチンリン酸、C:クレアチン
、^DP:アデノシンニリン酸、八TPへアデノシンニ
リン酸である。) 従来から9種々のCK測定法が提案されてきた。
その−・つば、左方向の活性を測定するという方法で、
これらの中には■CPの加水分解で生ずる無放リン酸を
測定する方法、■^nr’をピルビン酸キナーゼ(以下
PKと略記する。)と乳酸脱水素酵素(以下L D I
+と略記する。)の作用で還元型β−ニコチンアミドア
デニンジヌクレオチド(以下N A D Hと略記する
。)に導き、吸収減少として測定する方法、■AnPを
PKでピルビン酸に導き9次いで2.4−ジニ]・ロフ
ェニルヒドラジンとの反応で生成したヒ]′ラゾンを測
定する方法などがある。しかしながら、これらの方法は
いずれも感度が低いため、あるいは発色が不安定なため
に5近年はとんど使用されていない。また、右方向の活
性を測定する方法には、■生成したCを色素と反応さ一
ロて比色する。あるいは螢光を測定する方法、■ルシフ
ェラーゼを用いる方法(特開昭51.−41597号公
報、特開昭55−120796号公報1特開昭56.−
26200号公報、特開昭57−105199号公報参
照。)、■ホスホグリセリン酸キナーゼ(以下PGKと
略記する。)とグリセルアルデヒド−3−リン酸デヒド
ロゲナーゼ(以下GAPrl11と略記する。)を用い
る方法(特公昭59−34119号公報、特開昭56−
155000号公報参照。)■ヘキソキナーゼ(以下1
1にと略記する。)とグルコース−6−リン酸脱水素酵
素(以下G 6 P l′1 +1と略記する。)を用
いる方法などがある。
これらの中には■CPの加水分解で生ずる無放リン酸を
測定する方法、■^nr’をピルビン酸キナーゼ(以下
PKと略記する。)と乳酸脱水素酵素(以下L D I
+と略記する。)の作用で還元型β−ニコチンアミドア
デニンジヌクレオチド(以下N A D Hと略記する
。)に導き、吸収減少として測定する方法、■AnPを
PKでピルビン酸に導き9次いで2.4−ジニ]・ロフ
ェニルヒドラジンとの反応で生成したヒ]′ラゾンを測
定する方法などがある。しかしながら、これらの方法は
いずれも感度が低いため、あるいは発色が不安定なため
に5近年はとんど使用されていない。また、右方向の活
性を測定する方法には、■生成したCを色素と反応さ一
ロて比色する。あるいは螢光を測定する方法、■ルシフ
ェラーゼを用いる方法(特開昭51.−41597号公
報、特開昭55−120796号公報1特開昭56.−
26200号公報、特開昭57−105199号公報参
照。)、■ホスホグリセリン酸キナーゼ(以下PGKと
略記する。)とグリセルアルデヒド−3−リン酸デヒド
ロゲナーゼ(以下GAPrl11と略記する。)を用い
る方法(特公昭59−34119号公報、特開昭56−
155000号公報参照。)■ヘキソキナーゼ(以下1
1にと略記する。)とグルコース−6−リン酸脱水素酵
素(以下G 6 P l′1 +1と略記する。)を用
いる方法などがある。
これらのうち、■の比色法あるいは螢光法は測定値の信
頼性が劣ること、■のルシフェラーゼ法は高価なルシフ
ェラーゼを使用しなければならなく。
頼性が劣ること、■のルシフェラーゼ法は高価なルシフ
ェラーゼを使用しなければならなく。
また測定装置が特殊なものとなること、■のI)Gに/
GAPrlll法はPK/frill法と同しく吸収減
少系であり。
GAPrlll法はPK/frill法と同しく吸収減
少系であり。
PK/I、l1ll法と同様の欠点を有し、しかもPK
、 IIII+よりも高価なI’GK、 GAPIII
+を使用しなければならないこと、などからいずれも実
用に供するには1゛分とはいえない。ところが、■のI
I K / G 6 +1 D II法は原理的に最も
優れ3感度、再現性も良いこと、及び多数検体処理も可
能なことから最も多用されている。
、 IIII+よりも高価なI’GK、 GAPIII
+を使用しなければならないこと、などからいずれも実
用に供するには1゛分とはいえない。ところが、■のI
I K / G 6 +1 D II法は原理的に最も
優れ3感度、再現性も良いこと、及び多数検体処理も可
能なことから最も多用されている。
その測定原理は。
CK
CP 十AnP −−−C十ATP
fl)11に ^TP +グルコースー→Ar1P −+−G−6−P
f21G6P1111 r;−6−p +NA11(P) −−一−→ 6
−PGA+NAr1(P)It f3t(上記略号の
うち、 G−6−Pはグルコース−6一リンM、 NA
D(P)はβ〜ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド
(リン酸) 、 NAII(P)11は還元型β−ニコ
チンアミドアデニンジヌクレオチド(リン酸)。
fl)11に ^TP +グルコースー→Ar1P −+−G−6−P
f21G6P1111 r;−6−p +NA11(P) −−一−→ 6
−PGA+NAr1(P)It f3t(上記略号の
うち、 G−6−Pはグルコース−6一リンM、 NA
D(P)はβ〜ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド
(リン酸) 、 NAII(P)11は還元型β−ニコ
チンアミドアデニンジヌクレオチド(リン酸)。
6−PGAは6−ホスホグルコン酸である。)で示され
る。
る。
一方、 CK活性の賦活効果を高めるため、活性賦活
剤としてN〜ルアセチルシスティン以後NACと略記す
る。)、ジチオスレイトール、グルタチオン、メルカプ
トエタノールなどの、いわゆるSH基含有化合物(以後
Sll試薬と略記する。)が用いられており、その中で
も特にNACが好ましいとされている(J、Cl1n、
Chem、Cl1n、Biochem Vol、15゜
P249〜254.1977参照)。
剤としてN〜ルアセチルシスティン以後NACと略記す
る。)、ジチオスレイトール、グルタチオン、メルカプ
トエタノールなどの、いわゆるSH基含有化合物(以後
Sll試薬と略記する。)が用いられており、その中で
も特にNACが好ましいとされている(J、Cl1n、
Chem、Cl1n、Biochem Vol、15゜
P249〜254.1977参照)。
(発明が解決しようとする問題点)
しかしながら、従来のGK測定用試薬は溶液状態での室
温保存安定性が乏しく、液状化してからの試薬の室温(
18〜37℃)での寿命は非常に短く。
温保存安定性が乏しく、液状化してからの試薬の室温(
18〜37℃)での寿命は非常に短く。
短時間のうちに使用してくてはならず、比較的長時間に
わたる緊急性の高い少数検体を不定期に測5一 定する緊急用自動分析装置には不適当であった。
わたる緊急性の高い少数検体を不定期に測5一 定する緊急用自動分析装置には不適当であった。
特にNACを含有せしめると、 CM活性の賦活効果を
高めるが、 NACは比較的不安定な試薬であるため5
溶液状態ではSll基が徐々に酸化されてCK活性賦活
剤としての効果が長時間持続できなくなる。
高めるが、 NACは比較的不安定な試薬であるため5
溶液状態ではSll基が徐々に酸化されてCK活性賦活
剤としての効果が長時間持続できなくなる。
さらにNACの分解物は(J活性を阻害するという報告
もあり (C1,IN、Ctl[!M、Vo#22.
tm5.P650〜656゜1976参照。)、活性賦
活効果の減少とあわせてCK測定用試薬の溶液状態にお
ける不安定性の大きな原因となっている。
もあり (C1,IN、Ctl[!M、Vo#22.
tm5.P650〜656゜1976参照。)、活性賦
活効果の減少とあわせてCK測定用試薬の溶液状態にお
ける不安定性の大きな原因となっている。
(問題点を解決するための手段)
本発明者らは、このような問題点を解決すべく鋭意研究
を重ねた結果、 NACと、 NAC以外のSt(試薬
とを共存させると、 NACが安定になり、 CKの活
性賦活効果を長期間持続させるとともにCK活性を阻害
するNACの分解物の生成も抑制され。
を重ねた結果、 NACと、 NAC以外のSt(試薬
とを共存させると、 NACが安定になり、 CKの活
性賦活効果を長期間持続させるとともにCK活性を阻害
するNACの分解物の生成も抑制され。
GK測定用試薬が溶液状態で長期間使用することができ
ることを見出し1本発明を完成した。
ることを見出し1本発明を完成した。
すなわち9本発明はクレアチンリン酸、β−ニコチンア
ミドアデニンジヌクレオチド(リン酸)。
ミドアデニンジヌクレオチド(リン酸)。
アデノシンニリン酸からなるクレアチンキナーゼ定量用
試薬において、N−アセチルシステインと。
試薬において、N−アセチルシステインと。
N−アセチルシステイン以外の511.1含有化合物と
を含有することを特徴とするりし・アチン;トナーゼ定
量用試薬である。
を含有することを特徴とするりし・アチン;トナーゼ定
量用試薬である。
本発明の試薬は2例えば、 C1)、NAII(II)
、A叶、IIK。
、A叶、IIK。
G6 PIII+が」:成分であり、その他itl常の
賦活剤、防腐剤1安定化剤などが含まれており、この中
にNACと、 NAC以夕(のSl+llとを共存させ
ることが必要である。このNACの濃度としては、0.
1〜100 mMが適当であり、 0.5〜50n+
M、特に1.0〜30IIIMが好ましい。また、
NAC以外のSH試薬としては1例えば、ジチオスレイ
]・−ル、ジチオエリスリト−ル、メルカプトエタノー
ル、チオグリセロール、チオグリコール酸、チオグルコ
ース、システィンなどがあげられる。そのfm度として
は。
賦活剤、防腐剤1安定化剤などが含まれており、この中
にNACと、 NAC以夕(のSl+llとを共存させ
ることが必要である。このNACの濃度としては、0.
1〜100 mMが適当であり、 0.5〜50n+
M、特に1.0〜30IIIMが好ましい。また、
NAC以外のSH試薬としては1例えば、ジチオスレイ
]・−ル、ジチオエリスリト−ル、メルカプトエタノー
ル、チオグリセロール、チオグリコール酸、チオグルコ
ース、システィンなどがあげられる。そのfm度として
は。
0.1〜50mM、特に0,2〜30+nMが好ましい
。
。
本発明に用いられるIIKとしては、その給源が限定さ
れるものではなく、ヘーカーズ イースト(Baker
s Yeast)由来のものなどを使用することができ
る。また、11によりもグルコースに対して基質特異性
が高いグルコキナーゼ(以後GIc、にと略記する。)
も使用することができる。Glckとしても。
れるものではなく、ヘーカーズ イースト(Baker
s Yeast)由来のものなどを使用することができ
る。また、11によりもグルコースに対して基質特異性
が高いグルコキナーゼ(以後GIc、にと略記する。)
も使用することができる。Glckとしても。
その給源が限定されるものではなく、ニー「I /’Z
クター エーロゲネスなどの黴η2物由来のもの、動物
由来のものなどの各種のものを使用することができるが
、なかでも最適生育温度が50℃ないし85℃である微
生物の産生ずるものが好ましい。そのような微生物とし
ては5例えばノ\チルス ステア口ザーモフィルス、バ
チルス サーモプロテオリティカス、バチルス アシ1
′カルダリウスなどのバチルス属、ザーモアクチノマイ
セス属、サーマス属、ザーモミクロビウム属、カルデリ
ア属などの微生物があげられる。これらの中でも特に好
ましい微生物としては、バチルス ステアロサーモフィ
ルスがあげられ、その具体例としてはATCC7933
、7954,10194,12980,NGA1503
.1IK563株(黴二[研菌寄第7275号、]ンE
RM ll−7275,昭和58年9月29日寄託)な
どがある。
クター エーロゲネスなどの黴η2物由来のもの、動物
由来のものなどの各種のものを使用することができるが
、なかでも最適生育温度が50℃ないし85℃である微
生物の産生ずるものが好ましい。そのような微生物とし
ては5例えばノ\チルス ステア口ザーモフィルス、バ
チルス サーモプロテオリティカス、バチルス アシ1
′カルダリウスなどのバチルス属、ザーモアクチノマイ
セス属、サーマス属、ザーモミクロビウム属、カルデリ
ア属などの微生物があげられる。これらの中でも特に好
ましい微生物としては、バチルス ステアロサーモフィ
ルスがあげられ、その具体例としてはATCC7933
、7954,10194,12980,NGA1503
.1IK563株(黴二[研菌寄第7275号、]ンE
RM ll−7275,昭和58年9月29日寄託)な
どがある。
G6Pr1l+についても、 Glckと同様に、その
給源が限定されるものではないが、好ましくは補酵素と
してNADPだけでなく、NAr1にも作用するG6P
rl+(例えばロイコノストックメセンテロイデス、シ
ュードモナス フルオレッセンス由来など)、さらに好
ましくはNAD、 NADP共に作用でき、かつ安定性
、保存性に冨む好熱性細菌由来のG 6 P n II
が望ましい。
給源が限定されるものではないが、好ましくは補酵素と
してNADPだけでなく、NAr1にも作用するG6P
rl+(例えばロイコノストックメセンテロイデス、シ
ュードモナス フルオレッセンス由来など)、さらに好
ましくはNAD、 NADP共に作用でき、かつ安定性
、保存性に冨む好熱性細菌由来のG 6 P n II
が望ましい。
また、賦活剤としては1例えば酢酸マグネシウム、硫酸
マグネシウムなどのマグネシウム塩類を。
マグネシウムなどのマグネシウム塩類を。
防腐剤としては1例えば、アジ化ナトリウムなどの公知
のものを使用することができる。安定化剤としては2例
えば、可溶性デンプン、メチルセルロース、カルボキシ
メチルセルロースなどの多糖類とその誘導体、アルブミ
ン、γ−グロブリンなどのタンパク質、ポリビニルアル
コール、ポリエチレングリコールなどの水溶液高分子化
合物を適宜使用することができる。
のものを使用することができる。安定化剤としては2例
えば、可溶性デンプン、メチルセルロース、カルボキシ
メチルセルロースなどの多糖類とその誘導体、アルブミ
ン、γ−グロブリンなどのタンパク質、ポリビニルアル
コール、ポリエチレングリコールなどの水溶液高分子化
合物を適宜使用することができる。
本発明のCK定量用試薬の各成分の濃度は、公知技術を
適用すればよいが、一般には次の濃度が好ましい。例え
ば、 IIK、またはGlckを0.1〜40ユニット
/m 1! 、 G6pH11を0.1〜40ユニット
/mn、CPを2〜70mM、八〇Pを0へ1〜20m
M、NAII(P)を0.05〜20mM、グルコース
を1〜200mM、マグネシウム塩類を0.5〜30m
M、アデノシン−リン酸(以後AMPと略記する)を0
.2〜20mM、 ジアデノシンペンタホスフェ−1−
(以後Ap5Aと略記する)を1〜100μ門。
適用すればよいが、一般には次の濃度が好ましい。例え
ば、 IIK、またはGlckを0.1〜40ユニット
/m 1! 、 G6pH11を0.1〜40ユニット
/mn、CPを2〜70mM、八〇Pを0へ1〜20m
M、NAII(P)を0.05〜20mM、グルコース
を1〜200mM、マグネシウム塩類を0.5〜30m
M、アデノシン−リン酸(以後AMPと略記する)を0
.2〜20mM、 ジアデノシンペンタホスフェ−1−
(以後Ap5Aと略記する)を1〜100μ門。
エチレンジアミン四酢酸(以後[!rlTAと略記する
。)を0.1〜20mM、アジ化ナトリウムを0.5〜
50 mM使用すればよい。より好ましくは、 IIK
またはGlckO,2〜20−L −Z ソト/m 7
!、G6PDIl 0.2〜20ユニット7ml、 C
P 5〜40mM、A叶0.2〜10mM、NAI′+
(P)0.1〜10mL グルコース2〜100n+M
、マグネシウム塩類2〜15mM、ARP 0.5〜
15mM、Ap5八2へ〜50μM、BIITA 0
.2〜10mM、 アジ化すトリウム1〜30mMを使
用すわばよい本発明の試薬は、いわゆる−試薬系でも使
用できるが、自動分析機などの都合に31、っては公知
技術を適宜組み合わせて二試薬系に分けて使用すること
も可能である。
。)を0.1〜20mM、アジ化ナトリウムを0.5〜
50 mM使用すればよい。より好ましくは、 IIK
またはGlckO,2〜20−L −Z ソト/m 7
!、G6PDIl 0.2〜20ユニット7ml、 C
P 5〜40mM、A叶0.2〜10mM、NAI′+
(P)0.1〜10mL グルコース2〜100n+M
、マグネシウム塩類2〜15mM、ARP 0.5〜
15mM、Ap5八2へ〜50μM、BIITA 0
.2〜10mM、 アジ化すトリウム1〜30mMを使
用すわばよい本発明の試薬は、いわゆる−試薬系でも使
用できるが、自動分析機などの都合に31、っては公知
技術を適宜組み合わせて二試薬系に分けて使用すること
も可能である。
この場合、1(K又はGlck、 G6PDII、 N
A11(P) 、 NAC,NAC以夕(の311試薬
、グルコース、 Alll)などからなる第−試薬と、
cp、マグネシウム塩類などからなる第二試薬とに分
けることが好ましい。
A11(P) 、 NAC,NAC以夕(の311試薬
、グルコース、 Alll)などからなる第−試薬と、
cp、マグネシウム塩類などからなる第二試薬とに分
けることが好ましい。
(実施例)
次に9本発明を実施例により具体的に説明する実施例1
.比較例1 バルチス ステアロザーモフ・\ルス山来のGlck3
ユニット/mI!(生化学工業株式会社より購入)。
.比較例1 バルチス ステアロザーモフ・\ルス山来のGlck3
ユニット/mI!(生化学工業株式会社より購入)。
ロイコノストックメセンテロイデス由来のG 6 P
D I+(オリエンタル酵母工業株式会社より購入)■
ユニット/mn、AnPニカリウム塩1mM 、NA1
1r’ ・ナトリウム塩0.5mM、グルコース25m
M、AMP ImM、Ap5A10μM、NAC15m
M、 ジチオスレイトール5mM 、酢酸マグネシウ
ムl0mM、 アジ化ナトリウム0.1%、 EDTA
2+11M、 CP20mM、イミダゾール−酢酸緩衝
液(pH6,7)150 mMより成るCK測定用試薬
を調製し、37℃の恒温槽に放置し、使用時に必要量を
採って血清中のCK活性を測定した(実施例1)。
D I+(オリエンタル酵母工業株式会社より購入)■
ユニット/mn、AnPニカリウム塩1mM 、NA1
1r’ ・ナトリウム塩0.5mM、グルコース25m
M、AMP ImM、Ap5A10μM、NAC15m
M、 ジチオスレイトール5mM 、酢酸マグネシウ
ムl0mM、 アジ化ナトリウム0.1%、 EDTA
2+11M、 CP20mM、イミダゾール−酢酸緩衝
液(pH6,7)150 mMより成るCK測定用試薬
を調製し、37℃の恒温槽に放置し、使用時に必要量を
採って血清中のCK活性を測定した(実施例1)。
比較のため、ジチオスレイトールを添加しなかった以外
は実施例1と同様にしてCK測定用試薬を調製し、37
℃の恒温槽に放置し、使用時に必要量を採って1n嘗8
中のCK活性値を測定した(比較例1)。
は実施例1と同様にしてCK測定用試薬を調製し、37
℃の恒温槽に放置し、使用時に必要量を採って1n嘗8
中のCK活性値を測定した(比較例1)。
CM活i11の測定は、1記名cK定尾川試薬を37℃
に保温し、その3.0m7!を光路長1clnのセルに
入れ2次に市販の標rim血清20plを添加し、セル
室を同じ<37℃の恒温に保った分光光度d1にて34
0nmの吸光度変化により求めた。各試薬調整日を0日
[1とU7.その時の(J活性測定値を100%として
、37°C保存における各試薬による測定値の相対値を
追跡した。
に保温し、その3.0m7!を光路長1clnのセルに
入れ2次に市販の標rim血清20plを添加し、セル
室を同じ<37℃の恒温に保った分光光度d1にて34
0nmの吸光度変化により求めた。各試薬調整日を0日
[1とU7.その時の(J活性測定値を100%として
、37°C保存における各試薬による測定値の相対値を
追跡した。
その結果、実施例1においてtJ、試薬調整日から14
日間にわたって+J活性が100%検出できたが、比較
例1においては、試薬調整日から711間しか検出でき
なかった。
日間にわたって+J活性が100%検出できたが、比較
例1においては、試薬調整日から711間しか検出でき
なかった。
このように、実施例1では、 NACの安定化のために
、ジチオスレイトールを添加したことにより。
、ジチオスレイトールを添加したことにより。
NACのCK活性に対する賦活効果の持続が著しく向上
し、しかもCM活性を阻害するNACの分解物の生成も
抑制されていた。
し、しかもCM活性を阻害するNACの分解物の生成も
抑制されていた。
実施例2.比較例2
Glck をHK(オリエンタル酵母工業株式会社よ
り購入)に代えた以外は、すべて実施例1と同様にして
CK測定用試薬を調製し、37℃の恒温槽に放置し、実
施例1と同様にして標準血清中のCK活性を測定した(
実施例2)。
り購入)に代えた以外は、すべて実施例1と同様にして
CK測定用試薬を調製し、37℃の恒温槽に放置し、実
施例1と同様にして標準血清中のCK活性を測定した(
実施例2)。
比較のため、 Glckを上記のHKと同じものに代え
た以外はすべて比較例1と同様にしてCK測定用試薬を
調製し、37℃の恒温槽に放置し、−h記と同様にして
標準血清中のCK活性を測定した(比較例2)。
た以外はすべて比較例1と同様にしてCK測定用試薬を
調製し、37℃の恒温槽に放置し、−h記と同様にして
標準血清中のCK活性を測定した(比較例2)。
その結果、実施例2では、試薬調整日がら50間にわた
りCKが100%検出できたが、比較例2では試薬を調
製した当日しか検出できなかった。
りCKが100%検出できたが、比較例2では試薬を調
製した当日しか検出できなかった。
実施例3.4
ジチオスレイトールをチオグリセロールに代えた以外は
、すべl実施例1と同様にして測定用試薬を調製した(
実施例3)。また、ジチオスレイトールをメルカプトエ
タノールに代えた以外は。
、すべl実施例1と同様にして測定用試薬を調製した(
実施例3)。また、ジチオスレイトールをメルカプトエ
タノールに代えた以外は。
すべて実施例1と同様にしてCK測定用試薬を調製した
(実施例4)。両試薬を実施例1全く同様にしてCK活
性測定値の経口変化を追跡した。
(実施例4)。両試薬を実施例1全く同様にしてCK活
性測定値の経口変化を追跡した。
その結果、実施例3では12日にわたり、実施例4では
13日にわたりCMが100%検出できた。
13日にわたりCMが100%検出できた。
(発明の効果)
本発明のCK定量用試薬は、 NACとNAC以外の
S11試薬を共存することによって、 GKの活性賦
活剤であるNACの安定化を可能にし、賦活効果を長時
間持続させることと共に、 CK活性を阻害するNA
Cの分解物の生成を抑制することができる。そのため9
本発明のCに測定用試薬は溶液状態でも長期間使用する
ことが可能となり、一度に大量の試薬を調整しておくこ
とができる。このことにより。
S11試薬を共存することによって、 GKの活性賦
活剤であるNACの安定化を可能にし、賦活効果を長時
間持続させることと共に、 CK活性を阻害するNA
Cの分解物の生成を抑制することができる。そのため9
本発明のCに測定用試薬は溶液状態でも長期間使用する
ことが可能となり、一度に大量の試薬を調整しておくこ
とができる。このことにより。
緊急検査にも迅速に対応することができると共に。
作業効率の改善、余剰試薬廃棄の頻度の減少などが可能
となる。
となる。
特許出願人 ユニチカ株式会社
株式会社ヤトロン
Claims (1)
- (1)クレアチンリン酸、β−ニコチンアミドアデニン
ジヌクレオチド(リン酸)、アデノシン二リン酸からな
るクレアチンキナーゼ定量用試薬において、N−アセチ
ルシステインと、N−アセチルシステイン以外のSH基
含有化合物とを含有することを特徴とするクレアチンキ
ナーゼ定量用試薬。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13256985A JPS61289900A (ja) | 1985-06-18 | 1985-06-18 | クレアチンキナ−ゼ定量用試薬 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13256985A JPS61289900A (ja) | 1985-06-18 | 1985-06-18 | クレアチンキナ−ゼ定量用試薬 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61289900A true JPS61289900A (ja) | 1986-12-19 |
Family
ID=15084373
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP13256985A Expired - Lifetime JPS61289900A (ja) | 1985-06-18 | 1985-06-18 | クレアチンキナ−ゼ定量用試薬 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS61289900A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999029895A1 (de) * | 1997-12-11 | 1999-06-17 | Roche Diagnostics Gmbh | Stabilisiertes reagenz und verfahren zur bestimmung von creatin-kinase |
-
1985
- 1985-06-18 JP JP13256985A patent/JPS61289900A/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999029895A1 (de) * | 1997-12-11 | 1999-06-17 | Roche Diagnostics Gmbh | Stabilisiertes reagenz und verfahren zur bestimmung von creatin-kinase |
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Legal Events
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