JPS61146197A - クレアチンホスフオキナ−ゼ活性測定法 - Google Patents
クレアチンホスフオキナ−ゼ活性測定法Info
- Publication number
- JPS61146197A JPS61146197A JP26733084A JP26733084A JPS61146197A JP S61146197 A JPS61146197 A JP S61146197A JP 26733084 A JP26733084 A JP 26733084A JP 26733084 A JP26733084 A JP 26733084A JP S61146197 A JPS61146197 A JP S61146197A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
（産業上の利用分野）
本発明は心筋硬塞、筋ジストロフィー等の筋疾患の診断
に際しての有効な指標の１つとなっているクレアチンホ
スフォキナーゼ（以下ｒｃＰＫＪと称する）活性の測定
法に係る。
に際しての有効な指標の１つとなっているクレアチンホ
スフォキナーゼ（以下ｒｃＰＫＪと称する）活性の測定
法に係る。
（従来の技術）
現在、ＣＰＫ活性の測定はクレアチンリン酸を基質とし
、これにＮ−アセチル−Ｌ−システィン、還元型グルタ
チオン等の還元剤を添加してＣＰＫを活性化させ、この
活性化ＣＰＫが生成するアデノシン−３−リンＷＩ（以
下ｒＡＴＰＪと称する）の測定を基盤とする方法が主流
を占めている。
、これにＮ−アセチル−Ｌ−システィン、還元型グルタ
チオン等の還元剤を添加してＣＰＫを活性化させ、この
活性化ＣＰＫが生成するアデノシン−３−リンＷＩ（以
下ｒＡＴＰＪと称する）の測定を基盤とする方法が主流
を占めている。
このＡＴＰを測定する従来法としてはへキソキナーゼ及
びグルコース−６−リン酸脱水素酵素を共役酵素として
還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオタイドフオス
フエート（ＮＡＤＰ）−１）の増加を波長３４０ｎｌで
測定する方法（Ｒｏｓａｌｋｉ法）及び更にジアホラー
ゼを用いてニトロテトラゾリウムブルーからホルマザン
色素を生成させることにより可視部での測定を可能にし
た方法（ホルマザン法）とがある。
びグルコース−６−リン酸脱水素酵素を共役酵素として
還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオタイドフオス
フエート（ＮＡＤＰ）−１）の増加を波長３４０ｎｌで
測定する方法（Ｒｏｓａｌｋｉ法）及び更にジアホラー
ゼを用いてニトロテトラゾリウムブルーからホルマザン
色素を生成させることにより可視部での測定を可能にし
た方法（ホルマザン法）とがある。
（発明が解決しようとする問題点）
上記両従来法の内で、Ｒｏｓａｌｋｉ法は反応を停止さ
せずに単位時間当りのＮＡＤＰＨ増加量を測定すること
を基礎とするものであるから反応時間等に厳密な規制が
あり、多数の検体を連続的に処理する方法として必ずし
も好適なものとは言えない。
せずに単位時間当りのＮＡＤＰＨ増加量を測定すること
を基礎とするものであるから反応時間等に厳密な規制が
あり、多数の検体を連続的に処理する方法として必ずし
も好適なものとは言えない。
一方、ホルマザン法においては、反応試薬が不安定であ
り試薬ブランク吸光度の増加が著しいために測定精度に
問題点があり、又生成するホルマザン色素が水に離溶性
を有しているために測定機器に付着し、その洗浄が面倒
である等の問題点を有している。
り試薬ブランク吸光度の増加が著しいために測定精度に
問題点があり、又生成するホルマザン色素が水に離溶性
を有しているために測定機器に付着し、その洗浄が面倒
である等の問題点を有している。
従って、本発明は反応停止後に発色させ、可視部での比
色測定を可能にすることによりＲｏｓａｌｋｉ法におけ
る問題点を解消させると共に、安定性の＾い試薬を用い
て水溶性色素を生成させることによりホルマザン法にお
ける問題点をも解消させるものである。
色測定を可能にすることによりＲｏｓａｌｋｉ法におけ
る問題点を解消させると共に、安定性の＾い試薬を用い
て水溶性色素を生成させることによりホルマザン法にお
ける問題点をも解消させるものである。
（問題点を解決するための手段及び作用）本発明によれ
ば、上記問題点は、クレアチンホスフォキナーゼ活性の
測定に当り、共役酵素としてグリセロールキナーゼ（Ｇ
Ｋ）、グリセロール−３−リン酸オキシダーゼ（ＧＰＯ
）及びペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）を用いることにより
解決される。
ば、上記問題点は、クレアチンホスフォキナーゼ活性の
測定に当り、共役酵素としてグリセロールキナーゼ（Ｇ
Ｋ）、グリセロール−３−リン酸オキシダーゼ（ＧＰＯ
）及びペルオキシダーゼ（ＰＯＤ）を用いることにより
解決される。
本発明方法を更に具体的に述べれば、基質としてのクレ
アチンリン酸にＮ−アセチル−し−シスナイン、還元型
グルタチオン等の還元剤を添加して被験試料中のＣＰＫ
を活性化させ、この活性化〇ＰＫが生成するＡＴＰにＧ
Ｋを作用させてグリセロールをグリセロール−３−リン
酸に変じ、このグリセロール−３−リン酸にＧＰＯを作
用させてジヒドロキシアセトン−１−リン酸に変ずる場
合に生成する過酸化水素とＰＯＤの作用により４−アミ
ノアンチピリンとＮ−エチル−Ｎ−＜３−スルホプロピ
ル）−ｍ−アニシジンナトリウム（ＡＤＰＳ）等のトリ
ンダー試薬とを酸化縮合させて水溶性のキノン型色素を
生成させて吸光度を測定し、一方ＣＰＫ活性が既知の標
準試料を用いて同様に吸光度を測定してＣＰＫ活性と吸
光度との関係を予め調べて検」線を作成しておき、上記
被験試料に関して測定された吸光度を検量線と照合する
ことによりクレアチンホスフォキナーゼ活性が測定され
る。
アチンリン酸にＮ−アセチル−し−シスナイン、還元型
グルタチオン等の還元剤を添加して被験試料中のＣＰＫ
を活性化させ、この活性化〇ＰＫが生成するＡＴＰにＧ
Ｋを作用させてグリセロールをグリセロール−３−リン
酸に変じ、このグリセロール−３−リン酸にＧＰＯを作
用させてジヒドロキシアセトン−１−リン酸に変ずる場
合に生成する過酸化水素とＰＯＤの作用により４−アミ
ノアンチピリンとＮ−エチル−Ｎ−＜３−スルホプロピ
ル）−ｍ−アニシジンナトリウム（ＡＤＰＳ）等のトリ
ンダー試薬とを酸化縮合させて水溶性のキノン型色素を
生成させて吸光度を測定し、一方ＣＰＫ活性が既知の標
準試料を用いて同様に吸光度を測定してＣＰＫ活性と吸
光度との関係を予め調べて検」線を作成しておき、上記
被験試料に関して測定された吸光度を検量線と照合する
ことによりクレアチンホスフォキナーゼ活性が測定され
る。
この本発明による測定法は要約すれば下記の２段階反応
工程を利用するものである。
工程を利用するものである。
第１反応工程
活性化ＣＰＫ
第２反応工程
ＧＰＯ
Ｈ２０２＋４−アミノアンチピリン＋トリンダー試薬Ｏ
Ｄ □→キノン色素 上記第１反応工程においてＣＰＫの活性化に用いるＮ−
アセチル−し−システィン、還元型グルタチオン等は還
元性を有して°おり第２反応工程におけるキノン型色素
の生成を阻害するので、第２反応工程に使用する試液に
はＮ−エチルマレイミドを添加してＣＰＫ活性に関与す
るＳＨ基をマスりすることが必要である。
Ｄ □→キノン色素 上記第１反応工程においてＣＰＫの活性化に用いるＮ−
アセチル−し−システィン、還元型グルタチオン等は還
元性を有して°おり第２反応工程におけるキノン型色素
の生成を阻害するので、第２反応工程に使用する試液に
はＮ−エチルマレイミドを添加してＣＰＫ活性に関与す
るＳＨ基をマスりすることが必要である。
更に、第１反応工程の実施において試料である血清中に
ミオキナーゼが存在すると、 ミオキナーゼ のＩＩ反応が生じ測定誤差が生ずるので、第１反応試液
にはＡＭＰを予め添加してミオキナーゼ活性を阻害して
おく必要性がある。
ミオキナーゼが存在すると、 ミオキナーゼ のＩＩ反応が生じ測定誤差が生ずるので、第１反応試液
にはＡＭＰを予め添加してミオキナーゼ活性を阻害して
おく必要性がある。
（実施例）
次に、使用される反応試液、測定操作方法等について本
発明方法の１例を具体的に説明する。
発明方法の１例を具体的に説明する。
（１）試液の調整
ａ） 第１反応試液
下記諸成分を配合して第１反応試液を調製する。
５０ｍＭ ＰＩＰＥＳＩＩ衝液 ｐ ）−１６，４
注１）２０−Ｍ クレアチンリン酸 ３１Ｍ ＡＭＰ 注 ２）１．５
１Ｍ ＡＤＰ ５ｍＭ Ｎ−アセチル−Ｌ−システィン 注３）１
０−Ｍ 塩化マグネシウム・６水塩１０■Ｍ グ
リセロール １鶴Ｍ エチレンジアミン−４−酢酸・２ナトリウム
塩 ２．５ｓＭ ４−アミノアンチピリン２Ｕ／ＩＩ
ＧＫ 注１：ＭＥＳＩｌｌｉ液又はイミダ ゾール緩衝液に代替する ことができる。
注１）２０−Ｍ クレアチンリン酸 ３１Ｍ ＡＭＰ 注 ２）１．５
１Ｍ ＡＤＰ ５ｍＭ Ｎ−アセチル−Ｌ−システィン 注３）１
０−Ｍ 塩化マグネシウム・６水塩１０■Ｍ グ
リセロール １鶴Ｍ エチレンジアミン−４−酢酸・２ナトリウム
塩 ２．５ｓＭ ４−アミノアンチピリン２Ｕ／ＩＩ
ＧＫ 注１：ＭＥＳＩｌｌｉ液又はイミダ ゾール緩衝液に代替する ことができる。
注２：これはミオキナーゼ阻害
剤であり、ｐｉ 、 ｐｉ ＋
ジ（アデノシン−５’）ペ
ンタホスフェートと併用
することができる。
注３二還元型グルタチオンに代
替することができる。
ｂ） 第２反応試液
下記諸成分を配合して第２反応試液を調製する。
５０ｍ Ｍ リン酸１１１１ ｐＨＥｌ、４
注４）４ａ＋ＭＮ−エチルマレイミド １ｉＭ エチレンジアミン−４−酢酸・２ナトリウ
ム塩 １ｍＭ ＡＤＰＳ 注５） ０．２％ トリトン Ｘ−１００注６）５ＬＪ／ｍｌ
ＧＰＯ Ｏ，２１Ｊ／ｗ＋ｌ ＰＯＤ 注４：ＭＥＳ緩衝液又はＭＯＰ Ｓ緩衝液に代替すること ができる。
注４）４ａ＋ＭＮ−エチルマレイミド １ｉＭ エチレンジアミン−４−酢酸・２ナトリウ
ム塩 １ｍＭ ＡＤＰＳ 注５） ０．２％ トリトン Ｘ−１００注６）５ＬＪ／ｍｌ
ＧＰＯ Ｏ，２１Ｊ／ｗ＋ｌ ＰＯＤ 注４：ＭＥＳ緩衝液又はＭＯＰ Ｓ緩衝液に代替すること ができる。
注５：これは発色剤でありフェ
ノール系、アニリン系等
の発色剤に代替すること
もできる。
注６：これは界面活性剤であり、
乳び血清試料の可溶化の
ために用いられるが、こ
の目的に供し得れば他の
界面活性剤に代替するこ
とができる。
■ 測定操作方法
第２反応試液Ｑ、５ｍｌを採取して３７℃で約５分間予
備加温した後に被験血清試料２０μＱ＠：添加し３７℃
で正確に１０分間反応させる。この反応液に第２反応試
液２．Ｃ）ｅＱを添加して３７℃で更に５分間反応させ
る。この場合に第２反応試液中のＮ−エチルマレイミド
により第１反応は停止せしめられ且つ第２反応の結果と
して反応混合物は紫色を呈するのでこの液の吸光度を波
長５４０＋ｍで測定する。
備加温した後に被験血清試料２０μＱ＠：添加し３７℃
で正確に１０分間反応させる。この反応液に第２反応試
液２．Ｃ）ｅＱを添加して３７℃で更に５分間反応させ
る。この場合に第２反応試液中のＮ−エチルマレイミド
により第１反応は停止せしめられ且つ第２反応の結果と
して反応混合物は紫色を呈するのでこの液の吸光度を波
長５４０＋ｍで測定する。
一方、ＣＰＫ活性が既知の種々の標準血清試料について
も同様に操作して得た反応混合物について吸光度を測定
して検量線を予め作成しておく。
も同様に操作して得た反応混合物について吸光度を測定
して検量線を予め作成しておく。
上記被験試料を処理して測定された吸光度を、上記検量
線に照合して当該試料のＣＰＫ活性を求める。
線に照合して当該試料のＣＰＫ活性を求める。
■ 反応性試験
ａ） 第１反応
出願人会社から「スィートロールＡ」及び［スィートロ
ールＮＪ （共に標章）として市販の血清台５０μＱ
を試料とし、これを上記第１ａ項に記載の第１試液と上
記第２項に記載の要領で且つ３７℃で反応させて反応１
１間と吸光度との関係及び試液ブランクの安定性を調べ
た処、第１図のグラフに示される通りの結果が得ら社た
。このグラフから明らかな通り、反応時間と吸光度とは
２０分間に亘り、安定した且つ直線的な比例関係を有し
ていること並びに試薬ブランクは変動も殆んどなく安定
性の極めて高いことが判明した。
ールＮＪ （共に標章）として市販の血清台５０μＱ
を試料とし、これを上記第１ａ項に記載の第１試液と上
記第２項に記載の要領で且つ３７℃で反応させて反応１
１間と吸光度との関係及び試液ブランクの安定性を調べ
た処、第１図のグラフに示される通りの結果が得ら社た
。このグラフから明らかな通り、反応時間と吸光度とは
２０分間に亘り、安定した且つ直線的な比例関係を有し
ていること並びに試薬ブランクは変動も殆んどなく安定
性の極めて高いことが判明した。
ｂ） 第２反応
出願人会社から市販の既述の「スィートロールＡ」及び
「スィートロールＮ」を血清試料とし、これを上記第２
項に記載の要領で処理操作し第２反応における反応時間
と吸光度との関係及び試液ブランクの安定性を調べた処
、第２図のグラフに示される通りの結果が得られた。こ
の図から明らかな通り第２反応は５分以内に終了し、そ
の後吸光度に変化は生じないので、第２反応試液の添加
から５分経過後であれば任意の時期に且つ正確にＣＰＫ
活性を測定し得ること並びに試液ブランクの安定性が極
めて高いことが判明した。
「スィートロールＮ」を血清試料とし、これを上記第２
項に記載の要領で処理操作し第２反応における反応時間
と吸光度との関係及び試液ブランクの安定性を調べた処
、第２図のグラフに示される通りの結果が得られた。こ
の図から明らかな通り第２反応は５分以内に終了し、そ
の後吸光度に変化は生じないので、第２反応試液の添加
から５分経過後であれば任意の時期に且つ正確にＣＰＫ
活性を測定し得ること並びに試液ブランクの安定性が極
めて高いことが判明した。
（４）検量線の作成
ヒトプール血清にウサギ筋肉由来ＣＰＫ （西ドイツの
ベーリンガー社製）を添加して高ＣＰＫ血清（ＣＰＫ活
性１１９０ Ｕ／Ｑ＞を調整し、これを生理食塩水で
段階稀釈して被験試料として上記第２項に記載の要領で
処理操作して吸光度を測定し、被験試料におけるＣＰＫ
活性値と吸光度との関係をプロットした処、第３図のグ
ラフに示される通りの結果が得られ、両者は直線的な関
係を有し、従ってこのグラフは検量線として有用である
ことが判明した。
ベーリンガー社製）を添加して高ＣＰＫ血清（ＣＰＫ活
性１１９０ Ｕ／Ｑ＞を調整し、これを生理食塩水で
段階稀釈して被験試料として上記第２項に記載の要領で
処理操作して吸光度を測定し、被験試料におけるＣＰＫ
活性値と吸光度との関係をプロットした処、第３図のグ
ラフに示される通りの結果が得られ、両者は直線的な関
係を有し、従ってこのグラフは検量線として有用である
ことが判明した。
■ 本発明方法とホルマザン法との相関５０検体に関し
、本発明方法により測定された血清ＣＰＫ活性値と、本
出願人会社から市販の血清ＣＰＫｉｌｌ定用試桑「ニツ
スイ」 （ホルマザン法に準拠）を用いて得られた血清
ＣＰＫ活性値との相関関係を調べた処、第４図のグラフ
に示される通りの結果が得られた。
、本発明方法により測定された血清ＣＰＫ活性値と、本
出願人会社から市販の血清ＣＰＫｉｌｌ定用試桑「ニツ
スイ」 （ホルマザン法に準拠）を用いて得られた血清
ＣＰＫ活性値との相関関係を調べた処、第４図のグラフ
に示される通りの結果が得られた。
回帰式は
ｙ−１，１９ｘ−８，５
ｙ二本発明方法
Ｘ ：ホルマザン法
であり、相関係数は０．９９６であって両者間に良好な
相関のあることが確認された。
相関のあることが確認された。
第１図は標準血清試料と第１反応試液とを反応させた反
応混合物における反応時間と波長５４０■で測定した吸
光度との関係及び第２反応試液自体の経時吸光度変化を
示すグラフ、第２図は標準血清試料と第１反応試液とを
反応させ、次いで第２反応試液と反応させ、この第２反
応工程における反応時間と波長５４０ａｍで測定した吸
光度との関係及び第１反応試液自体の経時吸光度変化を
示すグラフ、第３図はクレアチンホスフォキナーゼ活性
が既知の標準試料の生理食塩水による稀釈系列を作成し
、これら試料を用いて第１及び第２反応試験液と反応さ
せて得た反応混合物の吸光度を測定し、この吸光度と稀
釈率との関係をプロットして作成した標準検量線を示す
グラフ、第４図は本発明方法と従来のホルマザン法との
相関関係を示すグラフである。 特 許 出 願 人 日水報薬株式会社乙゛１ 第１図 ５！応吟ｒ、１（介） 第２図 □スィートロールＡ（２０，ｙ／） 反応時間（介） 生１１食堪水ｔ；よ番禰甲１勤ｌの望７第４図
応混合物における反応時間と波長５４０■で測定した吸
光度との関係及び第２反応試液自体の経時吸光度変化を
示すグラフ、第２図は標準血清試料と第１反応試液とを
反応させ、次いで第２反応試液と反応させ、この第２反
応工程における反応時間と波長５４０ａｍで測定した吸
光度との関係及び第１反応試液自体の経時吸光度変化を
示すグラフ、第３図はクレアチンホスフォキナーゼ活性
が既知の標準試料の生理食塩水による稀釈系列を作成し
、これら試料を用いて第１及び第２反応試験液と反応さ
せて得た反応混合物の吸光度を測定し、この吸光度と稀
釈率との関係をプロットして作成した標準検量線を示す
グラフ、第４図は本発明方法と従来のホルマザン法との
相関関係を示すグラフである。 特 許 出 願 人 日水報薬株式会社乙゛１ 第１図 ５！応吟ｒ、１（介） 第２図 □スィートロールＡ（２０，ｙ／） 反応時間（介） 生１１食堪水ｔ；よ番禰甲１勤ｌの望７第４図
Claims (2)
- （１）クレアチンホスフォキナーゼ活性測定法であって
、共役酵素としてグリセロールキナーゼ、グリセロール
−３−リン酸オキシダーゼ及びペルオキシダーゼを用い
ることを特徴とする、クレアチンホスフォキナーゼ活性
測定法。 - （２）基質としてのクレアチンリン酸にＮ−アセチル−
Ｌ−システィン、還元型グルタチオン等の還元剤を添加
して被験試料中のクレアチンホスフォキナーゼを活性化
させ、この活性化クレアチンホスフォキナーゼが生成す
るアデノシン−３−リン酸にグリセロールキナーゼを作
用させてグリセロールをグリセロール−３−リン酸に変
じ、このグリセロール−３−リン酸にグリセロール−３
−リン酸オキシダーゼを作用させてジヒドロキシアセト
ン−１−リン酸に変ずる場合に生成する過酸化水素とペ
ルオキシダーゼの作用により４−アミノアンチピリンと
Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）−ｍ−アニシ
ジンナトリウム等のトリンダー試薬とを酸化縮合させて
水溶性のキノン型色素を生成させて吸光度を測定し、一
方クレアチンホスフォキナーゼ活性が既知の標準試料を
用いて同様に吸光度を測定してクレアチンホスフォキナ
ーゼ活性と吸光度との関係を予め調べて検量線を作成し
ておき、上記被験試料に関して測定された吸光度を検量
線と照合することを特徴とする、特許請求の範囲第１項
に記載のクレアチンホスフォキナーゼ活性測定法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP26733084A JPS61146197A (ja) | 1984-12-20 | 1984-12-20 | クレアチンホスフオキナ−ゼ活性測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP26733084A JPS61146197A (ja) | 1984-12-20 | 1984-12-20 | クレアチンホスフオキナ−ゼ活性測定法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61146197A true JPS61146197A (ja) | 1986-07-03 |
Family
ID=17443316
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP26733084A Pending JPS61146197A (ja) | 1984-12-20 | 1984-12-20 | クレアチンホスフオキナ−ゼ活性測定法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61146197A (ja) |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS59135900A (ja) * | 1983-01-18 | 1984-08-04 | イ−ストマン・コダツク・カンパニ− | クレアチンキナ−ゼの定量用組成物及び定量方法 |
-
1984
- 1984-12-20 JP JP26733084A patent/JPS61146197A/ja active Pending
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS59135900A (ja) * | 1983-01-18 | 1984-08-04 | イ−ストマン・コダツク・カンパニ− | クレアチンキナ−ゼの定量用組成物及び定量方法 |
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