JPS6022916B2 - 微生物細胞壁溶解酵素の製造方法 - Google Patents
微生物細胞壁溶解酵素の製造方法Info
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- JPS6022916B2 JPS6022916B2 JP51112913A JP11291376A JPS6022916B2 JP S6022916 B2 JPS6022916 B2 JP S6022916B2 JP 51112913 A JP51112913 A JP 51112913A JP 11291376 A JP11291376 A JP 11291376A JP S6022916 B2 JPS6022916 B2 JP S6022916B2
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- streptomyces
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、ストレプトミセス・ムリナス
（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓｍｍｉｎｕｓ）に属する微
生物細胞壁溶解酵素生産菌を培養して微生物細胞壁溶解
酵素を製造する方法に関する。
生物細胞壁溶解酵素生産菌を培養して微生物細胞壁溶解
酵素を製造する方法に関する。
従来、微生物、特に酵母細胞壁溶解方法としては、カタ
ツムリ（Ｈｅｌｉｘｐｏｍａｔｉａ）の消化管内に含ま
れる消イ掠酵素、ブレビバクテリウム・リチクム（Ｂｒ
ｅｖｉ礎ｃｔｅｒｊｕｍｌ〆ｉｃｍｍｎｏｖ．ｓｐ．）
の生産する細胞壁溶解酵素（袴公昭３８−９９３５）、
ストレブトミセス・アルプス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅ
ｓａｌｂｕｓ）、ストレプトミセス・オリバセウス（Ｓ
ｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓｏｌｉｖａｃｅｕｓ）、ストレ
プトミセス・グリセオフラブス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃ
ｅｓｇｒｉｓｅｏｆｌａｖ船）等のストレプトミセス属
に属する菌株の生産する細胞壁溶解酵素（特公昭３８−
９９３３）などを使用する方法が知られている。
ツムリ（Ｈｅｌｉｘｐｏｍａｔｉａ）の消化管内に含ま
れる消イ掠酵素、ブレビバクテリウム・リチクム（Ｂｒ
ｅｖｉ礎ｃｔｅｒｊｕｍｌ〆ｉｃｍｍｎｏｖ．ｓｐ．）
の生産する細胞壁溶解酵素（袴公昭３８−９９３５）、
ストレブトミセス・アルプス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅ
ｓａｌｂｕｓ）、ストレプトミセス・オリバセウス（Ｓ
ｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓｏｌｉｖａｃｅｕｓ）、ストレ
プトミセス・グリセオフラブス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃ
ｅｓｇｒｉｓｅｏｆｌａｖ船）等のストレプトミセス属
に属する菌株の生産する細胞壁溶解酵素（特公昭３８−
９９３３）などを使用する方法が知られている。
しかしながら、これらは作用範囲が限定されていて、い
かなる種類の細胞でも十分に溶解できるものは知られて
いない。特に酵母の場合には加熱処理した酵母の細胞壁
を溶解する酵素は知られているが、生細砲撃を溶解する
ことは困難で、実用化できるものはほとんどない。本発
明者は、より細胞壁溶解活性の高い酵素を製造すべく研
究した結果、今までに、グリオクラジウム（Ｇ１ｉｏｃ
ｌａｄｉ山ｍ）属に属する菌株より微生物細胞壁溶解酵
素を製造する方法（特開昭５０−４２９２）、およびス
トレブトミセス・ヤツガタケンシス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍ
ｙｃｅｓ匁ｔｓｕｇａｔａｋｅｎｓｉｓ）より微生物細
胞壁熔解酵素を製造する方法（特関昭５０−１３２１７
５）を確立したが、今回、ストレプトミセス・ムリナス
が更に溶解活性の高い微生物細胞壁溶解酵素を生産する
事を見し、出し本発明を完成したものである。
かなる種類の細胞でも十分に溶解できるものは知られて
いない。特に酵母の場合には加熱処理した酵母の細胞壁
を溶解する酵素は知られているが、生細砲撃を溶解する
ことは困難で、実用化できるものはほとんどない。本発
明者は、より細胞壁溶解活性の高い酵素を製造すべく研
究した結果、今までに、グリオクラジウム（Ｇ１ｉｏｃ
ｌａｄｉ山ｍ）属に属する菌株より微生物細胞壁溶解酵
素を製造する方法（特開昭５０−４２９２）、およびス
トレブトミセス・ヤツガタケンシス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍ
ｙｃｅｓ匁ｔｓｕｇａｔａｋｅｎｓｉｓ）より微生物細
胞壁熔解酵素を製造する方法（特関昭５０−１３２１７
５）を確立したが、今回、ストレプトミセス・ムリナス
が更に溶解活性の高い微生物細胞壁溶解酵素を生産する
事を見し、出し本発明を完成したものである。
酵母が比較的高い栄養価を有することは知られており、
食品としてまた動物用の飼料として使用できる。
食品としてまた動物用の飼料として使用できる。
しかしながら、そのかたい酵母細胞壁が酵母を比較的不
消化かつ非同化しているという事実のため、酵母成分、
特に蛋白質成分の効率的な利用は未だ実現していない。
この意味で本発明は極めて意義の深いものである。本発
明において使用したストレプトミセス・ムリナスｓｐ．
Ｎｏ．１０１４菌株（工業技術院微生物工業技術研究所
、徴工研菌寄第３７１び号）の特性を列挙すれば次の通
りである。
消化かつ非同化しているという事実のため、酵母成分、
特に蛋白質成分の効率的な利用は未だ実現していない。
この意味で本発明は極めて意義の深いものである。本発
明において使用したストレプトミセス・ムリナスｓｐ．
Ｎｏ．１０１４菌株（工業技術院微生物工業技術研究所
、徴工研菌寄第３７１び号）の特性を列挙すれば次の通
りである。
（ｉ｝ 形態的特徴
｛ａー 気菌系：酵母エキス・麦芽エキス寒天培地上で
観察すると本菌は、幅約０．８山の気菌系で、長鎖状で
分枝していた。
観察すると本菌は、幅約０．８山の気菌系で、長鎖状で
分枝していた。
しかし、輪生分枝は見られず、また、胞子のうも持たな
かった。‘ｂ｝ 胞子：デンプン寒天培地上で生育した
本菌の函子顕微鏡写真より、胞子は０．５×０．５〜０
．３仏の円形あるいは長円形で、表面は平滑、直径５〜
６一のらせん状に連鎖していた。
かった。‘ｂ｝ 胞子：デンプン寒天培地上で生育した
本菌の函子顕微鏡写真より、胞子は０．５×０．５〜０
．３仏の円形あるいは長円形で、表面は平滑、直径５〜
６一のらせん状に連鎖していた。
（ｉｉ） 培養的特徴
各種寒天培地上での培養的特徴を表１に示した。
表１
この結果より、‘ィ漠落気菌系の特徴は、灰色ないし赤
色のシリーズに属す。
色のシリーズに属す。
仰集落裏面は黄色。し一培地中に黄色の水溶性色素を生
成し、水酸化ナトリウムあるいは塩酸でｐＨを変化させ
ても色調は変わらない。（ｉｉｉ） 生理学的特徴 表２ （ｉ），（ｉｉ），側の結果から、本菌は、ストレプト
ミセス・グリセオインカルナツス（Ｓｕｅｐｔｏｍｙｃ
ｅｓ餌ｌｓｅｏｌｎｃａｒ雌ｔｕｓ）〔インターナショ
ナル・ジャーナル・オブ・システム・バクテリオロジー
（ｌｎｔＪ．Ｓ災ｔｅｍＢａｃｔｅｒｉｏｌ．）第１袋
蓋第３２８頁（１９６８年）〕「 ストレプトミセス・
カナリゥス（Ｓけｅｐｔｏｍｙｃｅｓｃａｎａｒｉｕｓ
）〔同上、第２２巻第２８１頁（１９７２王）〕、スト
レプトミセス・／ガラテル（Ｓ０ｅｐｔｏｍｙｃｅｓｎ
ｏ餌ｌａｔｅｒ）〔同上、第２２巻第２８４頁（１９７
２王）〕、ストレプトミセス・クリセウス（Ｓｕｅｐｔ
ｏｍｙｃｅｓｃｈひｓｅ瓜）〔同上、第２２巻第２８４
頁（１９７２年）〕、ストレプトミセス・ムリナス（Ｓ
ｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓｍｍｉｎ聡）〔同上、第１８巻
第１４８頁（１９磯年）〕に類似している。
成し、水酸化ナトリウムあるいは塩酸でｐＨを変化させ
ても色調は変わらない。（ｉｉｉ） 生理学的特徴 表２ （ｉ），（ｉｉ），側の結果から、本菌は、ストレプト
ミセス・グリセオインカルナツス（Ｓｕｅｐｔｏｍｙｃ
ｅｓ餌ｌｓｅｏｌｎｃａｒ雌ｔｕｓ）〔インターナショ
ナル・ジャーナル・オブ・システム・バクテリオロジー
（ｌｎｔＪ．Ｓ災ｔｅｍＢａｃｔｅｒｉｏｌ．）第１袋
蓋第３２８頁（１９６８年）〕「 ストレプトミセス・
カナリゥス（Ｓけｅｐｔｏｍｙｃｅｓｃａｎａｒｉｕｓ
）〔同上、第２２巻第２８１頁（１９７２王）〕、スト
レプトミセス・／ガラテル（Ｓ０ｅｐｔｏｍｙｃｅｓｎ
ｏ餌ｌａｔｅｒ）〔同上、第２２巻第２８４頁（１９７
２王）〕、ストレプトミセス・クリセウス（Ｓｕｅｐｔ
ｏｍｙｃｅｓｃｈひｓｅ瓜）〔同上、第２２巻第２８４
頁（１９７２年）〕、ストレプトミセス・ムリナス（Ｓ
ｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓｍｍｉｎ聡）〔同上、第１８巻
第１４８頁（１９磯年）〕に類似している。
しかし、【１１ストレプトミセス・グリセオィンカルナ
ッスは胞子表面がとげ状であるのに対し、本菌は平滑で
ある。‘２）ストレプトミセス・カナリウスはＬーアラ
ビノース、Ｌーラムノース、Ｄーガラクトース、ラフィ
ノース、１−イノシトール、シュクロースを資化し、ま
た、ツアベック培地で生育良好なのに対し、本菌はこれ
らの糖を殆んどかあるいは全〈資化せず、ツアベック塔
地で生育しない。‘３｝ストレプトミセス・ノガラテル
はＬーアラビノース、Ｌーラムノース、Ｄーガラクトー
ス、ラフイノース、１ーィノシトールを良〈資化するの
に対し、本菌はこれらの糖を殆んどか全く資化しない。
■ストレプトミセス・クリセウスはＬーアラビノース、
Ｄ−ガラクトースを資化し、Ｄーマンニトールを資化せ
ず、また、ッアベツク塔地で生育するのに対し、本菌は
Ｌーアラビノース、Ｄーガラクトースを資化せず、Ｄ−
マンニトールを資化し、ッアベック培地で生育しない。
以上の点から、これらの４菌は本菌と明らかに異なる。
一方、ストレプトミセス・ムリナスは本菌と非常に良く
一致した。従って本菌をストレプトミセス・ムリナスＳ
．Ｐ．Ｎｏ．１０１４と同定した。本発明の微生物細胞
壁溶解酵素は、常法により、ストレプトミセス・ムリナ
スに属する微生物細胞壁溶解酵素生産菌を培地に培養し
、培養物より微生物細胞壁溶解酵素を採取する事により
得られる。
ッスは胞子表面がとげ状であるのに対し、本菌は平滑で
ある。‘２）ストレプトミセス・カナリウスはＬーアラ
ビノース、Ｌーラムノース、Ｄーガラクトース、ラフィ
ノース、１−イノシトール、シュクロースを資化し、ま
た、ツアベック培地で生育良好なのに対し、本菌はこれ
らの糖を殆んどかあるいは全〈資化せず、ツアベック塔
地で生育しない。‘３｝ストレプトミセス・ノガラテル
はＬーアラビノース、Ｌーラムノース、Ｄーガラクトー
ス、ラフイノース、１ーィノシトールを良〈資化するの
に対し、本菌はこれらの糖を殆んどか全く資化しない。
■ストレプトミセス・クリセウスはＬーアラビノース、
Ｄ−ガラクトースを資化し、Ｄーマンニトールを資化せ
ず、また、ッアベツク塔地で生育するのに対し、本菌は
Ｌーアラビノース、Ｄーガラクトースを資化せず、Ｄ−
マンニトールを資化し、ッアベック培地で生育しない。
以上の点から、これらの４菌は本菌と明らかに異なる。
一方、ストレプトミセス・ムリナスは本菌と非常に良く
一致した。従って本菌をストレプトミセス・ムリナスＳ
．Ｐ．Ｎｏ．１０１４と同定した。本発明の微生物細胞
壁溶解酵素は、常法により、ストレプトミセス・ムリナ
スに属する微生物細胞壁溶解酵素生産菌を培地に培養し
、培養物より微生物細胞壁溶解酵素を採取する事により
得られる。
上記の微生物細胞壁溶解酵素を製造する際において、溶
解活性の高いものを得るための好ましい条件をあげると
次のようになる。
解活性の高いものを得るための好ましい条件をあげると
次のようになる。
培地の炭素源としては酵母グルカンおよび細胞壁粗製品
、窒素源としてはカゼイン、ベプトン、酵母エキス、無
機塩としてはＭが０４・７日２０，Ｋ２ＨＰ０４などを
配合する事が好ましい。培地のｐＨは６〜８、培養温度
は約３０℃、培養時間は３０〜７ｑ時間が好ましい。培
養の経過とともに培地中に本酵素が蓄積されるので、こ
れを通常の方法により分離する。例えば、液体塔地の場
合は、培養液を炉過あるし、は遠心分離などの手段によ
り除菌して酵素液を得ることができる。この酵素液より
、等電点沈澱、有機溶媒沈澱、塩析、減圧濃縮、イオン
交換体による方法など通常の酵素精製法により本酵素を
濃縮あるし、は精製できる。培養液１０そを用いて培養
して酵素液を得、これを０．が飽和の硫安で塩析し、沈
澱物を凍結乾燥すると約１２の粗酵素が得られる。本発
明方法によって得られる微生物細胞墜落鱗酵素の溶解活
性は次のようにして測定される。
、窒素源としてはカゼイン、ベプトン、酵母エキス、無
機塩としてはＭが０４・７日２０，Ｋ２ＨＰ０４などを
配合する事が好ましい。培地のｐＨは６〜８、培養温度
は約３０℃、培養時間は３０〜７ｑ時間が好ましい。培
養の経過とともに培地中に本酵素が蓄積されるので、こ
れを通常の方法により分離する。例えば、液体塔地の場
合は、培養液を炉過あるし、は遠心分離などの手段によ
り除菌して酵素液を得ることができる。この酵素液より
、等電点沈澱、有機溶媒沈澱、塩析、減圧濃縮、イオン
交換体による方法など通常の酵素精製法により本酵素を
濃縮あるし、は精製できる。培養液１０そを用いて培養
して酵素液を得、これを０．が飽和の硫安で塩析し、沈
澱物を凍結乾燥すると約１２の粗酵素が得られる。本発
明方法によって得られる微生物細胞墜落鱗酵素の溶解活
性は次のようにして測定される。
酵母懸濁液（０．Ｄ．６６ｏ＝０．７）０．５Ｍ，１／
１９Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）２．０の上、酵素液
（タンパク濃度２０〜２００仏タノ泌）０．５の【より
なる反応液を用い、３７℃で９０分間ゆるやかに振溢し
ながら反応を行なう。反応前後の蟹度を６６瓜ｍで測定
し、反応前後の濁度減少を１０％生じさせる酵素量を１
単位とする。本発明の微生物細胞墜落解酵素の性状を、
対数増殖期生細胞に対して１００単位の溶解活性を有す
る粗酵素を用いて調べた。
１９Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）２．０の上、酵素液
（タンパク濃度２０〜２００仏タノ泌）０．５の【より
なる反応液を用い、３７℃で９０分間ゆるやかに振溢し
ながら反応を行なう。反応前後の蟹度を６６瓜ｍで測定
し、反応前後の濁度減少を１０％生じさせる酵素量を１
単位とする。本発明の微生物細胞墜落解酵素の性状を、
対数増殖期生細胞に対して１００単位の溶解活性を有す
る粗酵素を用いて調べた。
｛１）反応至適ｐＨおよび餌安定性
溶解活性はｐＨ６．の付近で最高、また、ｐＨ６．０で
最も安定であった。
最も安定であった。
‘２）反応至適温度および熱安定性
溶解活性は３７００付近で最高で、温度がそれより高く
ても、また低くても、溶解活性は低下した。
ても、また低くても、溶解活性は低下した。
安定性は、４０℃以下では安定であるが、それ以上では
急激に失活した。｛３’酵素活性に及ぼす金属塩の影響 硫酸マグネシウムと塩化マンガンは、加熱酵母および対
数増殖期生細胞に対する溶解活性をいく分増加させ、硫
酸鉄および塩化水銀は加熱酵母に対する活性を阻害した
。
急激に失活した。｛３’酵素活性に及ぼす金属塩の影響 硫酸マグネシウムと塩化マンガンは、加熱酵母および対
数増殖期生細胞に対する溶解活性をいく分増加させ、硫
酸鉄および塩化水銀は加熱酵母に対する活性を阻害した
。
塩化カルシウムは対数増殖期生細胞に対する活性を阻害
した。硫酸亜鉛、塩化ニッケル、塩化コバルト、硫酸鋼
、酢酸鉛は対数増殖期生細胞および加熱酵母の両基質に
対する活性を阻害した。特に硫酸銅（１０‐３Ｍ）では
完全に失活した。【４）酵素活性に及ぼす還元剤の影響 硫酸アンモニウム、硫酸カリウム、硫酸ナトリウム、硫
酸水素ナトリウム、２一メルカプトェタノール、チオグ
リコール酸などの還元剤に対し本酵素は安定である。
した。硫酸亜鉛、塩化ニッケル、塩化コバルト、硫酸鋼
、酢酸鉛は対数増殖期生細胞および加熱酵母の両基質に
対する活性を阻害した。特に硫酸銅（１０‐３Ｍ）では
完全に失活した。【４）酵素活性に及ぼす還元剤の影響 硫酸アンモニウム、硫酸カリウム、硫酸ナトリウム、硫
酸水素ナトリウム、２一メルカプトェタノール、チオグ
リコール酸などの還元剤に対し本酵素は安定である。
これら還元剤の存在下で酵素反応を行なわせた場合には
、その溶解活性がやや上昇する傾向がある。【５｝ 基
質特異性 ８一１，３グルカナーゼ活性、８一１，６グルカナーゼ
活性およびプロテアーゼ活性を有する。
、その溶解活性がやや上昇する傾向がある。【５｝ 基
質特異性 ８一１，３グルカナーゼ活性、８一１，６グルカナーゼ
活性およびプロテアーゼ活性を有する。
キチナーゼ活性およびマンナナーゼ活性は認められない
。■ 各種酵母に対する溶解活性 本発明酵素の各種定常期生細胞および加熱酒酵母に対す
る溶解活性を調べた。
。■ 各種酵母に対する溶解活性 本発明酵素の各種定常期生細胞および加熱酒酵母に対す
る溶解活性を調べた。
比較のためストレプトミセス・ャツガタケンシスの生産
する酵素およびチモリアーゼ（商品名、キリンビール■
製、アースロバクター・ルテウス生産酵素）の溶解活性
をあげる。酵素（タンパク質）濃度は２００ムタ／泌で
ある。なお、ストレプトミセス・ヤツガタケンシスおよ
びチモリアーゼの溶解活性は、前記の本発明酵素の溶解
活性測定法と同じ方法で行なった。表３ 表４ 次に実施例を示し、本発明をさらに詳しく説明する。
する酵素およびチモリアーゼ（商品名、キリンビール■
製、アースロバクター・ルテウス生産酵素）の溶解活性
をあげる。酵素（タンパク質）濃度は２００ムタ／泌で
ある。なお、ストレプトミセス・ヤツガタケンシスおよ
びチモリアーゼの溶解活性は、前記の本発明酵素の溶解
活性測定法と同じ方法で行なった。表３ 表４ 次に実施例を示し、本発明をさらに詳しく説明する。
なお以下の実施例では、溶解活性測定の基質としてサッ
カロミセス・セレビシアェＯＣ一２を用いた。実施例
１ グルコース０．５％、酵母エキス０．２％、ベブトン０
．２％、酵母細胞壁粗製品０．３％、ＭｇＳ０４・７比
００．１％、Ｋ２ＨＰ０４０．２％を含むｐＨ７．０の
培地を調整し、１２１℃，１５分間オートクレープで殺
菌した。
カロミセス・セレビシアェＯＣ一２を用いた。実施例
１ グルコース０．５％、酵母エキス０．２％、ベブトン０
．２％、酵母細胞壁粗製品０．３％、ＭｇＳ０４・７比
００．１％、Ｋ２ＨＰ０４０．２％を含むｐＨ７．０の
培地を調整し、１２１℃，１５分間オートクレープで殺
菌した。
前培養として、坂口フラスコ中、上記培地５０の【にス
トレプトミセス・ムリナスｓ．ｐ．Ｎｏ．１０１４菌株
１白金耳を植え、３０ｑｏ，３凪寿間振糧培養した。
トレプトミセス・ムリナスｓ．ｐ．Ｎｏ．１０１４菌株
１白金耳を植え、３０ｑｏ，３凪寿間振糧培養した。
この前培養液５泌を、ジャーフアメンター中の上記渚地
５００の‘に接種し、３０ｑｏで３既時間通気櫨梓培養
した。培養後、培養液にセラィトを加えてブフナーロー
ト上で炉過し、培養上燈液を得た。次いで、この培養上
燈液を硫安塩析または有機溶媒沈澱により精製した。す
なわち、硫安を０．８飽和に、またはアセトンを３倍量
、またはエタノールを３倍量加えて数時間放置後、遠心
して沈澱した粗酵素を採取した。それぞれの、溶解活性
を測定した。実施例 ２実施例１と同様にして培養し、
培養上澄液を得た。
５００の‘に接種し、３０ｑｏで３既時間通気櫨梓培養
した。培養後、培養液にセラィトを加えてブフナーロー
ト上で炉過し、培養上燈液を得た。次いで、この培養上
燈液を硫安塩析または有機溶媒沈澱により精製した。す
なわち、硫安を０．８飽和に、またはアセトンを３倍量
、またはエタノールを３倍量加えて数時間放置後、遠心
して沈澱した粗酵素を採取した。それぞれの、溶解活性
を測定した。実施例 ２実施例１と同様にして培養し、
培養上澄液を得た。
培養上燈液に硫安を０．８飽和に加え」生ずる沈澱を採
取して粗酵素を得た。この粗酵素を硫安０．２〜１．０
飽和の各画分に再分画した。各画分の対数期生細胞に対
する溶解活性を示す。実施例 ３ 実施例１と同様にして培養し、培養上澄液を得た。
取して粗酵素を得た。この粗酵素を硫安０．２〜１．０
飽和の各画分に再分画した。各画分の対数期生細胞に対
する溶解活性を示す。実施例 ３ 実施例１と同様にして培養し、培養上澄液を得た。
培養上燈液に硫安を０．４飽和に加え、生ずる沈澱を採
取して粗酵素を得た。粗酵素を１／１９ Ｍリン酸緩衝
液（ｐＨ６．０）に溶解し、塩酸でｐＨを４．５〜３肌
刊頃次調製し、各ｐＨにおける沈澱をそれぞれ採取した
。各沈澱物の対数期生細胞に対する溶解活性を示す。実
施例 ４ 実施例１と同様にして培養し、培養上燈液を得た。
取して粗酵素を得た。粗酵素を１／１９ Ｍリン酸緩衝
液（ｐＨ６．０）に溶解し、塩酸でｐＨを４．５〜３肌
刊頃次調製し、各ｐＨにおける沈澱をそれぞれ採取した
。各沈澱物の対数期生細胞に対する溶解活性を示す。実
施例 ４ 実施例１と同様にして培養し、培養上燈液を得た。
Claims (1)
- １ ストレプトミセス・ムリナスに属する微生物細胞壁
溶解酵素生産菌を培養し、培養物から微生物細胞壁溶解
酵素を採取する事を特徴とする微生物細胞壁溶解酵素の
製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP51112913A JPS6022916B2 (ja) | 1976-09-22 | 1976-09-22 | 微生物細胞壁溶解酵素の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP51112913A JPS6022916B2 (ja) | 1976-09-22 | 1976-09-22 | 微生物細胞壁溶解酵素の製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5338687A JPS5338687A (en) | 1978-04-08 |
| JPS6022916B2 true JPS6022916B2 (ja) | 1985-06-04 |
Family
ID=14598613
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP51112913A Expired JPS6022916B2 (ja) | 1976-09-22 | 1976-09-22 | 微生物細胞壁溶解酵素の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6022916B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0811065B2 (ja) * | 1987-09-09 | 1996-02-07 | 雪印乳業株式会社 | 乳酸菌細胞壁溶解酵素の製造法 |
-
1976
- 1976-09-22 JP JP51112913A patent/JPS6022916B2/ja not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS5338687A (en) | 1978-04-08 |
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