JPS60126080A - β−アミラ−ゼの製造法 - Google Patents
β−アミラ−ゼの製造法Info
- Publication number
- JPS60126080A JPS60126080A JP23183183A JP23183183A JPS60126080A JP S60126080 A JPS60126080 A JP S60126080A JP 23183183 A JP23183183 A JP 23183183A JP 23183183 A JP23183183 A JP 23183183A JP S60126080 A JPS60126080 A JP S60126080A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、バチルス属に属するβ−アミラーゼ生産菌を
培地に培養してβ−アミラーゼを生成蓄積せしめ、これ
を採取する方法において、培地に添加剤としてチオグリ
コール酸またはその塩を含有せしめてβ−アミラーゼの
生産を増強する方法に関する。
培地に培養してβ−アミラーゼを生成蓄積せしめ、これ
を採取する方法において、培地に添加剤としてチオグリ
コール酸またはその塩を含有せしめてβ−アミラーゼの
生産を増強する方法に関する。
β−アミラーゼ〔系統名:1.4−α−D−グルカンマ
ルトハイドロラーゼ(1+4− tx −D −Glu
canmaltohydrolase) +EC3,2
,1,2)は澱粉、グリコーゲン、デキストリンなどか
らマルトースを分離する酵素として有用である。従来β
−アミラーゼの供給源としては主として高等植物、たと
えば大麦麦芽、小麦、大豆、甘藷などが知られている。
ルトハイドロラーゼ(1+4− tx −D −Glu
canmaltohydrolase) +EC3,2
,1,2)は澱粉、グリコーゲン、デキストリンなどか
らマルトースを分離する酵素として有用である。従来β
−アミラーゼの供給源としては主として高等植物、たと
えば大麦麦芽、小麦、大豆、甘藷などが知られている。
近年バチルス属などの微生物にβ−アミラーゼの生産能
が見いだされたが、多くは生産性が低く実用に至ってい
るものは少ない。従来、バチルス属微生物によるβ−ア
ミラーゼ生産の改良法としては、たとえばバチルス・メ
ガテリウム(Bacillusmegaterium
)を澱粉を含む培地に培養する方法(特公昭53−45
393号公報)、バチルス・セレウス(B、 cere
us )を培養するに際し、バリウムイオンあるいは化
エン酸または酒石酸を存在せしめた培地を用いる方法、
種培養を特定のpHで行う方法(特公昭53−5748
号公報、同52−30590号公報、同52−3058
9号公報)などが知られている。
が見いだされたが、多くは生産性が低く実用に至ってい
るものは少ない。従来、バチルス属微生物によるβ−ア
ミラーゼ生産の改良法としては、たとえばバチルス・メ
ガテリウム(Bacillusmegaterium
)を澱粉を含む培地に培養する方法(特公昭53−45
393号公報)、バチルス・セレウス(B、 cere
us )を培養するに際し、バリウムイオンあるいは化
エン酸または酒石酸を存在せしめた培地を用いる方法、
種培養を特定のpHで行う方法(特公昭53−5748
号公報、同52−30590号公報、同52−3058
9号公報)などが知られている。
本発明者らはバチルス属微生物によるβ−アミラーゼの
生産について鋭意研究したところ、これらバチルス属産
生のβ−アミラーゼは、通気攪拌工法部培養を行うと、
せっかく生産されたβ−アミラーゼが失活してしまうと
いう現象に気がついた。従来、バチルス属のβ−アミラ
ーゼは、チオール酵素であること、チオール基と可逆的
にメルカプチドを形成する試薬、たとえばP−クロロマ
ーキュリ安息香酸によって阻害され、この阻害はシスチ
ンのようなチオール化合物を過剰に加えることにより直
ちに回復することが知られている〔八gr、 Biol
、 Chelll、 (アグリカルチュラルロジカル・
ケミストリー)第38巻, 1023〜1029頁(1
974) 、同第40巻, 1523〜1530頁(1
976)および同第43巻.719〜726頁(197
9) )。そこで、本発明者らは各種チオール化合物を
培地に添加してβ−アミラーゼの生産を試験したところ
、意外にもチオグリコール酸またはその塩のみがβ−ア
ミラーゼの失活防止に効果のあることを見いだし、本発
明の完成に至ったものである。
生産について鋭意研究したところ、これらバチルス属産
生のβ−アミラーゼは、通気攪拌工法部培養を行うと、
せっかく生産されたβ−アミラーゼが失活してしまうと
いう現象に気がついた。従来、バチルス属のβ−アミラ
ーゼは、チオール酵素であること、チオール基と可逆的
にメルカプチドを形成する試薬、たとえばP−クロロマ
ーキュリ安息香酸によって阻害され、この阻害はシスチ
ンのようなチオール化合物を過剰に加えることにより直
ちに回復することが知られている〔八gr、 Biol
、 Chelll、 (アグリカルチュラルロジカル・
ケミストリー)第38巻, 1023〜1029頁(1
974) 、同第40巻, 1523〜1530頁(1
976)および同第43巻.719〜726頁(197
9) )。そこで、本発明者らは各種チオール化合物を
培地に添加してβ−アミラーゼの生産を試験したところ
、意外にもチオグリコール酸またはその塩のみがβ−ア
ミラーゼの失活防止に効果のあることを見いだし、本発
明の完成に至ったものである。
本発明法において培地の添加剤として使用するチオグリ
コール酸またはその塩とは、チオグリコール酸、チオグ
リコール酸ナトリウム、チオグリコール酸アンモニウム
などである。これら添加剤の培地への添加量は、菌の生
育に阻害とならない濃度であればよく、好ましくはo.
ooot〜0.05%(W/V)の範囲である。培地へ
の添加時期は、培養の最初、または培養の途中のいずれ
でもよいが、好ましくは菌が生育してβ−アミラーゼが
生産され始めた時期に添加するのがよい。添加回数は、
−回でもまた数回添加してもよい。
コール酸またはその塩とは、チオグリコール酸、チオグ
リコール酸ナトリウム、チオグリコール酸アンモニウム
などである。これら添加剤の培地への添加量は、菌の生
育に阻害とならない濃度であればよく、好ましくはo.
ooot〜0.05%(W/V)の範囲である。培地へ
の添加時期は、培養の最初、または培養の途中のいずれ
でもよいが、好ましくは菌が生育してβ−アミラーゼが
生産され始めた時期に添加するのがよい。添加回数は、
−回でもまた数回添加してもよい。
本発明法で使用する微生物はバチルス属に属するβ−ア
ミラーゼ生産菌であればいずれでもよく、例えばバチル
ス・セレウス(Bacillus cereus )、
バチルス・メガテリウム(B.megaterium
) \バチルス・サーキュランス( B. circu
lans) 、バチルス・ポリミキサ(B. poly
myxa )などが示される。より具体的にはバチルス
・セレウス IFO3001、バチルス・セレウス・バ
リエータス・ミコイデス(B. cereus var
. mycoides ) IへM 1190、バチル
ス・メガテリウム 14M1030、バチルス・サーキ
ュランス IFO 3329 、バチルス・ポリミキサ
IFO 3020 、バチルス・ポリミキサ^TCC
8523などの保存菌株が例示される。
ミラーゼ生産菌であればいずれでもよく、例えばバチル
ス・セレウス(Bacillus cereus )、
バチルス・メガテリウム(B.megaterium
) \バチルス・サーキュランス( B. circu
lans) 、バチルス・ポリミキサ(B. poly
myxa )などが示される。より具体的にはバチルス
・セレウス IFO3001、バチルス・セレウス・バ
リエータス・ミコイデス(B. cereus var
. mycoides ) IへM 1190、バチル
ス・メガテリウム 14M1030、バチルス・サーキ
ュランス IFO 3329 、バチルス・ポリミキサ
IFO 3020 、バチルス・ポリミキサ^TCC
8523などの保存菌株が例示される。
本発明法によりβ−アミラーゼを製造するには、まずバ
チルス属に属するβ−アミラーゼ生産菌株を培地に培養
して、培養物中にβ−アミラーゼを蓄積せしめる。培養
方法は、細菌の一般的な培養方法が用いられる。たとえ
ば、使用する培地としては、微生物が資化し得る炭素源
、窒素源、無機物および発育素、並びにチオグリコール
酸またはその塩を含む合成培地または天然培地が用いら
れる。炭素源としてはシュークロース、アミロース、ア
ミロペクチン、ポテトスターチ、コーンスターチ、コー
ンミール、ワキシースターチ、デキストリン、有機酸な
ど、窒素源としてはミルクカゼイン、ポリペプトン、大
豆カゼイン、酵母エキス、肉エキスなど、無機塩として
は塩化ナトリウム、硫酸マグネシウム、リン酸二カリウ
ム、塩化亜鉛、塩化バリウム、硫酸カリウム、硫酸銅、
塩化第二鉄、酸化カルシウム、リン酸−ナトリウム、リ
ン酸二ナトリウムなど、発育素としてはビタミンB1、
ビオチン、ビタミンB6、D−パントテン酸ナトリウム
、イノシトールなどが用いられる。
チルス属に属するβ−アミラーゼ生産菌株を培地に培養
して、培養物中にβ−アミラーゼを蓄積せしめる。培養
方法は、細菌の一般的な培養方法が用いられる。たとえ
ば、使用する培地としては、微生物が資化し得る炭素源
、窒素源、無機物および発育素、並びにチオグリコール
酸またはその塩を含む合成培地または天然培地が用いら
れる。炭素源としてはシュークロース、アミロース、ア
ミロペクチン、ポテトスターチ、コーンスターチ、コー
ンミール、ワキシースターチ、デキストリン、有機酸な
ど、窒素源としてはミルクカゼイン、ポリペプトン、大
豆カゼイン、酵母エキス、肉エキスなど、無機塩として
は塩化ナトリウム、硫酸マグネシウム、リン酸二カリウ
ム、塩化亜鉛、塩化バリウム、硫酸カリウム、硫酸銅、
塩化第二鉄、酸化カルシウム、リン酸−ナトリウム、リ
ン酸二ナトリウムなど、発育素としてはビタミンB1、
ビオチン、ビタミンB6、D−パントテン酸ナトリウム
、イノシトールなどが用いられる。
また、培養中の発泡を抑えるために、界面活性剤、シリ
コン、植物油などの消泡剤を添加することもできる。
コン、植物油などの消泡剤を添加することもできる。
培養は、通常振盪または通気攪拌下好気的条件のもとに
おこなうのがよい。培養温度は菌が生育しβ−アミラー
ゼが生産される範囲内であればいずれの温度でもよいが
、好ましくは25〜35°Cである。培地のpHは通常
7.5〜9.0の範囲が好ましい。
おこなうのがよい。培養温度は菌が生育しβ−アミラー
ゼが生産される範囲内であればいずれの温度でもよいが
、好ましくは25〜35°Cである。培地のpHは通常
7.5〜9.0の範囲が好ましい。
培養時間はβ−アミラーゼの生産が最大に達する時間を
選べばよく、通常50〜70時間である。
選べばよく、通常50〜70時間である。
以上のようにして得られた培養物からβ−アミラーゼを
採取するには、その理化学的性質を利用して、公知の蛋
白質の精製法を適宜組み合わせて行うことができる。た
とえば、培養物をろ過もしくは遠心分離して菌体を除い
たのち、硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどを用い
た塩析〜エタノール、メタノール、アセトンなどを用い
た有機溶媒沈澱、活性炭、シリカゲル、アルミナ、ヒド
ロキシアパタイト、セルロースなどを用いた吸着クロマ
トグラフィー、イオン交換樹脂、イオン交換セルロース
、イオン交換セファデックスなどを用いたイオン交換ク
ロマトグラフィー、セファデックス、バイオゲルなどを
用いたゲルろ過、電気泳動、限外ろ過、透析などの公知
の方法を任意の順序で適宜組み合せ、または繰り返すこ
とにより精製する。
採取するには、その理化学的性質を利用して、公知の蛋
白質の精製法を適宜組み合わせて行うことができる。た
とえば、培養物をろ過もしくは遠心分離して菌体を除い
たのち、硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどを用い
た塩析〜エタノール、メタノール、アセトンなどを用い
た有機溶媒沈澱、活性炭、シリカゲル、アルミナ、ヒド
ロキシアパタイト、セルロースなどを用いた吸着クロマ
トグラフィー、イオン交換樹脂、イオン交換セルロース
、イオン交換セファデックスなどを用いたイオン交換ク
ロマトグラフィー、セファデックス、バイオゲルなどを
用いたゲルろ過、電気泳動、限外ろ過、透析などの公知
の方法を任意の順序で適宜組み合せ、または繰り返すこ
とにより精製する。
次に、本発明におけるβ−アミラーゼ活性の単位につい
て説明すると、0.5%可溶性澱粉液(pH7,0、リ
ン酸緩衝液)を基質として40℃、30分間反応せしめ
、生じた還元糖量をフェーリング・レーマン・ジュール
(Fehling−LehIlann−3chool)
法により測定したとき、10mgのグルコースに相当す
る還元力のマルトースを生成する酵素量を1単位とした
。
て説明すると、0.5%可溶性澱粉液(pH7,0、リ
ン酸緩衝液)を基質として40℃、30分間反応せしめ
、生じた還元糖量をフェーリング・レーマン・ジュール
(Fehling−LehIlann−3chool)
法により測定したとき、10mgのグルコースに相当す
る還元力のマルトースを生成する酵素量を1単位とした
。
以下、試験例および実施例を以て本発明の詳細な説明す
る。
る。
試験例
可溶性デンプン1.0%、ミルクカゼイン3.5%、酵
母エキス0.1%、塩化ナトリウム0.01%、硫酸マ
グネシウム・7水塩0.1%、リン酸二カリウム0.4
%、グリシン0.075%、ビタミンB1塩酸塩2pp
H1、クエン酸ナトリウム0.03%およびα−サイク
ロデキストリン0.1%からなる組成の培地(pH8,
2) 50−を500rId!容の坂ロフラズコに入れ
て殺菌後、第1表に示すごとく、バチルス属の保存菌株
を接種して振盪培養した。培養開始後0時間または16
時間の各−回、または16時間と30時間の二回、チオ
グリコール酸ナトリウム、還元型グルタチオン、L−シ
スティン塩酸塩または2−メルカプトエタノールを、各
々の時間に0.01%または0.001%添加して、2
8℃において60時間培養した。培養液のβ−アミラー
ゼ活性を測定し、添加剤を加えない場合の活性を100
%としたときの相対値を第1表に示す。同表かられかる
ように、チオール化合物のなかでもチオグリコール酸ナ
トリウムにのみβ−アミラーゼの増産効果が認められ、
還元型グルタチオン、L−システィン塩酸塩および2−
メルカプトエタノールは効果が弱いか全く効果が無く、
むしろ高濃度(0,01%)においては阻害的である。
母エキス0.1%、塩化ナトリウム0.01%、硫酸マ
グネシウム・7水塩0.1%、リン酸二カリウム0.4
%、グリシン0.075%、ビタミンB1塩酸塩2pp
H1、クエン酸ナトリウム0.03%およびα−サイク
ロデキストリン0.1%からなる組成の培地(pH8,
2) 50−を500rId!容の坂ロフラズコに入れ
て殺菌後、第1表に示すごとく、バチルス属の保存菌株
を接種して振盪培養した。培養開始後0時間または16
時間の各−回、または16時間と30時間の二回、チオ
グリコール酸ナトリウム、還元型グルタチオン、L−シ
スティン塩酸塩または2−メルカプトエタノールを、各
々の時間に0.01%または0.001%添加して、2
8℃において60時間培養した。培養液のβ−アミラー
ゼ活性を測定し、添加剤を加えない場合の活性を100
%としたときの相対値を第1表に示す。同表かられかる
ように、チオール化合物のなかでもチオグリコール酸ナ
トリウムにのみβ−アミラーゼの増産効果が認められ、
還元型グルタチオン、L−システィン塩酸塩および2−
メルカプトエタノールは効果が弱いか全く効果が無く、
むしろ高濃度(0,01%)においては阻害的である。
実施例 1
可溶性デンプン1.0%、ミルクカゼイン3.5%、酵
母エキス0.1%、塩化ナトリウム0.01%、硫酸マ
グネシウム・7水塩0.1%、リン酸二カリウム0.4
%、グリシン0.075%、ビタミンB1塩酸塩2pp
m 、クエン酸ナトリウム0.03%およびα−サイク
ロデキストリン0.1%からなる組成の培地(pH8,
2) 50m1!を50〇−容の坂ロフラスコに入れて
殺菌後、バチルス・ポリミキサIP03020株を接種
して振盪培養した。培養開始後、16時間または16時
間と40時間の二面、チオグリコール酸、チオグリコー
ル酸ナトリウムまたばチオグリコール酸アンモニウムを
0.01%または0.001%添加して、28°Cにお
いて60時間培養したのち、培養液のβ−アミラーゼ活
性を測定した。添加剤を加えない場合の活性を100%
としたときの相対値を第2表に示す。本発明法によって
β−アミラーゼが著しく増産されることがわかる。
母エキス0.1%、塩化ナトリウム0.01%、硫酸マ
グネシウム・7水塩0.1%、リン酸二カリウム0.4
%、グリシン0.075%、ビタミンB1塩酸塩2pp
m 、クエン酸ナトリウム0.03%およびα−サイク
ロデキストリン0.1%からなる組成の培地(pH8,
2) 50m1!を50〇−容の坂ロフラスコに入れて
殺菌後、バチルス・ポリミキサIP03020株を接種
して振盪培養した。培養開始後、16時間または16時
間と40時間の二面、チオグリコール酸、チオグリコー
ル酸ナトリウムまたばチオグリコール酸アンモニウムを
0.01%または0.001%添加して、28°Cにお
いて60時間培養したのち、培養液のβ−アミラーゼ活
性を測定した。添加剤を加えない場合の活性を100%
としたときの相対値を第2表に示す。本発明法によって
β−アミラーゼが著しく増産されることがわかる。
第2表
実施例 2
ポテトスターチ0.5%、ポリペプトン2.0%、リン
酸二カリウム0.3%、硫酸マグネシウム7水塩0.1
%からなる組成の培地(pl+ 7.5) 50meを
500mf’容坂ロフラスコに入れて殺菌後、バチルス
・セレウス IFo 3001株−白金耳を接種し、2
8℃で7時間振盪培養し種培養液とした。次いで、実施
例1と同じ組成の培地15βの入った30j2容ジャー
ファーメンタ−に上記種培養液を接種して、温度28°
C1通気量1.517分、攪拌回転数20Orpmで培
養した。培養開始後16時間と30時間の二面、チオグ
リコール酸ナトリウムを各0.01%添加して、60時
間培養した。
酸二カリウム0.3%、硫酸マグネシウム7水塩0.1
%からなる組成の培地(pl+ 7.5) 50meを
500mf’容坂ロフラスコに入れて殺菌後、バチルス
・セレウス IFo 3001株−白金耳を接種し、2
8℃で7時間振盪培養し種培養液とした。次いで、実施
例1と同じ組成の培地15βの入った30j2容ジャー
ファーメンタ−に上記種培養液を接種して、温度28°
C1通気量1.517分、攪拌回転数20Orpmで培
養した。培養開始後16時間と30時間の二面、チオグ
リコール酸ナトリウムを各0.01%添加して、60時
間培養した。
培養液のβ−アミラーゼ活性を測定したところ、添加剤
を加えない場合と比較して169%の活性を示した。培
養液を遠心分離して菌体を除いたのち、上清を限外ろ過
濃縮し、次いでアルコール沈降をすることにより粗β−
アミラーゼ粉末96gを得た。
を加えない場合と比較して169%の活性を示した。培
養液を遠心分離して菌体を除いたのち、上清を限外ろ過
濃縮し、次いでアルコール沈降をすることにより粗β−
アミラーゼ粉末96gを得た。
特許出願人 天野製薬株式会社
Claims (1)
- バチルス属に属するβ−アミラーゼ生産菌を培地に培養
してβ−アミラーゼを生成蓄積せしめ、これを採取する
方法において、チオグリコール酸またはその塩を培地に
添加することを特徴とするβ−アミラーゼの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP23183183A JPS60126080A (ja) | 1983-12-08 | 1983-12-08 | β−アミラ−ゼの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP23183183A JPS60126080A (ja) | 1983-12-08 | 1983-12-08 | β−アミラ−ゼの製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS60126080A true JPS60126080A (ja) | 1985-07-05 |
Family
ID=16929697
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP23183183A Pending JPS60126080A (ja) | 1983-12-08 | 1983-12-08 | β−アミラ−ゼの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS60126080A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7399622B2 (en) | 2001-02-06 | 2008-07-15 | Danisco Sugar Oy | Process for the extraction of β-amylase |
-
1983
- 1983-12-08 JP JP23183183A patent/JPS60126080A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7399622B2 (en) | 2001-02-06 | 2008-07-15 | Danisco Sugar Oy | Process for the extraction of β-amylase |
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