JPS5877822A - 新規な恐水病ウイルスおよびその製法 - Google Patents
新規な恐水病ウイルスおよびその製法Info
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- JPS5877822A JPS5877822A JP57181202A JP18120282A JPS5877822A JP S5877822 A JPS5877822 A JP S5877822A JP 57181202 A JP57181202 A JP 57181202A JP 18120282 A JP18120282 A JP 18120282A JP S5877822 A JPS5877822 A JP S5877822A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は新規な動水病ウィルス株、そのウィルス株の単
−法に関する。
−法に関する。
I!に詳しくは、本発明は新規なウィルス株(以下、/
に47j株と呼ぶ)、及びインビトロの細胞病理学的効
果に対する特殊なlラーク選別とそれKm<jクローン
精製による新規なウィルス株の単離法に関する。このも
のの生型のワクチンは経口投与に極めて適している。経
口投与は、例えば狐の免疫化(以下にこれをI経口接種
1という)に望會しい、腸管からの投与又は噴−による
鼻内投与などの経口及びその他の非腸管外投与を、その
他の流行病学的に重要な人、野生動物及び家畜に対して
行うこともまた本発明の一特徴を構成する。
に47j株と呼ぶ)、及びインビトロの細胞病理学的効
果に対する特殊なlラーク選別とそれKm<jクローン
精製による新規なウィルス株の単離法に関する。このも
のの生型のワクチンは経口投与に極めて適している。経
口投与は、例えば狐の免疫化(以下にこれをI経口接種
1という)に望會しい、腸管からの投与又は噴−による
鼻内投与などの経口及びその他の非腸管外投与を、その
他の流行病学的に重要な人、野生動物及び家畜に対して
行うこともまた本発明の一特徴を構成する。
ワタテy(例えば以下のようにして得られるL区Pフツ
リ 9タチy (L E P (Low EggPas
@age ) Flury vaccine )”又は
HEP7ラリワタテノ(HE P (HIgh Egg
Passage ) Fluryvscln・〕)の予
予約な腸管外投与によって、温& ム 血−物の動水病つィルス感桑を倶滅し…ることが知られ
ている。
リ 9タチy (L E P (Low EggPas
@age ) Flury vaccine )”又は
HEP7ラリワタテノ(HE P (HIgh Egg
Passage ) Fluryvscln・〕)の予
予約な腸管外投与によって、温& ム 血−物の動水病つィルス感桑を倶滅し…ることが知られ
ている。
lり32年1月29日にブラリ(Flury )という
−少女が米国ジ1−ノア州で死亡したが、その診断によ
る死因は動水病罹患犬による感染後の動水病であった。
−少女が米国ジ1−ノア州で死亡したが、その診断によ
る死因は動水病罹患犬による感染後の動水病であった。
少女の脳、涙腺及び唾511mからの抽出物を、文献(
C,N、Leach and H−Nll Johns
on:Am*r、J、Trop、 Med、、 20
、 j 3 j (/りtAO)〕に記載されているよ
うに、白色マウスに脳内接種することによって動水病ウ
ィルスが単離された。
C,N、Leach and H−Nll Johns
on:Am*r、J、Trop、 Med、、 20
、 j 3 j (/りtAO)〕に記載されているよ
うに、白色マウスに脳内接種することによって動水病ウ
ィルスが単離された。
マウスからの上記の脳物質を/日令の鶏に脳内Il!橿
し、ついで鶏の脳内継代培養を736代にわたり行った
(H,にOProwskl and H,R,Cox
:J、Immunol、、 lr O、333(/!i
’弘ど)の方法による〕。鶏で更にもう2代脳内培養し
た彼にその動水病ウィルスを卵黄嚢接橿によって錫の胚
に適応させた。卵黄嚢60継代培養後に、該ウィルスは
多数の哺乳動物に対し実質上非発病性であるように思わ
れ、かつこの一連の継代培養レベルにおいてLEPフラ
リ ワクテ/の名で大川の動水病ワクチンとして使用で
きる。鶏胚について1!に継代培養(/70−77参代
まで)した後には、このウィルスは−に一層その発病性
を失ってしまっており、−遍令O1!験用マウスは脳内
投与されて4死をなかつ九。しかし、哺乳中のマウス社
死亡しえ。このワクチンはHEPフラリ ワクチン(H
lgh 16 Passage Flury vacc
lns )の名で入手できる。
し、ついで鶏の脳内継代培養を736代にわたり行った
(H,にOProwskl and H,R,Cox
:J、Immunol、、 lr O、333(/!i
’弘ど)の方法による〕。鶏で更にもう2代脳内培養し
た彼にその動水病ウィルスを卵黄嚢接橿によって錫の胚
に適応させた。卵黄嚢60継代培養後に、該ウィルスは
多数の哺乳動物に対し実質上非発病性であるように思わ
れ、かつこの一連の継代培養レベルにおいてLEPフラ
リ ワクテ/の名で大川の動水病ワクチンとして使用で
きる。鶏胚について1!に継代培養(/70−77参代
まで)した後には、このウィルスは−に一層その発病性
を失ってしまっており、−遍令O1!験用マウスは脳内
投与されて4死をなかつ九。しかし、哺乳中のマウス社
死亡しえ。このワクチンはHEPフラリ ワクチン(H
lgh 16 Passage Flury vacc
lns )の名で入手できる。
ζtL&のLEP及びHEPワクチンは予防用ワクチン
として使用されると動水病感染の防禦に有効であったが
、国内及び1iIIllI水皐における最近の新規な管
層基準で示されているように、他の動水病ワタテyK対
する需要が確実に存在する。例え゛ばこの病気が長い間
風土病となっている先進国或は低く最近この病気が流行
しはじめた先進−における舒生動物性動水病(1y1ザ
ーtlc rabl・−)の防除は、有効で経済的な防
除法を利用できないような困−かつ生態学的に複#&情
況にある。
として使用されると動水病感染の防禦に有効であったが
、国内及び1iIIllI水皐における最近の新規な管
層基準で示されているように、他の動水病ワタテyK対
する需要が確実に存在する。例え゛ばこの病気が長い間
風土病となっている先進国或は低く最近この病気が流行
しはじめた先進−における舒生動物性動水病(1y1ザ
ーtlc rabl・−)の防除は、有効で経済的な防
除法を利用できないような困−かつ生態学的に複#&情
況にある。
人の罹患後ワクテン治療もまた、世界の動水病感l11
1w1鴎において多数の問題を童み出した。以上の緒憚
由から、゛動水病の研究は非腸管外、好適には経口ルー
)Kよる罹患後及び罹患前の接種及び免疫化の問題に向
けられてきた。
1w1鴎において多数の問題を童み出した。以上の緒憚
由から、゛動水病の研究は非腸管外、好適には経口ルー
)Kよる罹患後及び罹患前の接種及び免疫化の問題に向
けられてきた。
本発明における研究及び実験の結果、新規なワクチン株
が開発された。この株は種々のルートで投与することが
できる。即ち、これは腸管外又は非腸管外投与すること
ができ、また動水病感染の前後いずれにおいても投与さ
れると、完全な動水病防禦を果すように思われる。
が開発された。この株は種々のルートで投与することが
できる。即ち、これは腸管外又は非腸管外投与すること
ができ、また動水病感染の前後いずれにおいても投与さ
れると、完全な動水病防禦を果すように思われる。
動水病め最も重要な媒介動物及び(又は)感染源である
野生−物の0経口*m”を行う目的で有効な経口投与を
行う可能性は、本発明の有利な特徴として評価されよう
。
野生−物の0経口*m”を行う目的で有効な経口投与を
行う可能性は、本発明の有利な特徴として評価されよう
。
生きたA61h7jワクチン株はこれまでに知られ一友
最も非発病性の現存動水刺ワクチン株である〇これはた
だ1回の適正量の7クチンを用いるだけで屋外でウィル
ス感染をうけた後−の動水病防禦の可能性を与える。こ
の116676株から製造される不活化ワクチンもまた
罹患後に動水病を防禦するがその程度は低い。この生ワ
クチンは極めて高度の抗原性をもち、それは不活化型の
ワクチンとほとんど勢しi抗原性をもつ。この生ワクチ
ン或は不活化ワクチンはほとんど完全に真檜タン・譬り
t含まない細胞培養聾ワクテ/であり、完全ではないと
しても好ましからぬ副作用の程度を実質的に減少させる
。
最も非発病性の現存動水刺ワクチン株である〇これはた
だ1回の適正量の7クチンを用いるだけで屋外でウィル
ス感染をうけた後−の動水病防禦の可能性を与える。こ
の116676株から製造される不活化ワクチンもまた
罹患後に動水病を防禦するがその程度は低い。この生ワ
クチンは極めて高度の抗原性をもち、それは不活化型の
ワクチンとほとんど勢しi抗原性をもつ。この生ワクチ
ン或は不活化ワクチンはほとんど完全に真檜タン・譬り
t含まない細胞培養聾ワクテ/であり、完全ではないと
しても好ましからぬ副作用の程度を実質的に減少させる
。
この新規なウィルス株は次のよう圧して単離された:
上記HEPフツリ ワクチンのウィルスを一次又は二次
3PF鶏胚纏維芽綱胞内で増殖させた。
3PF鶏胚纏維芽綱胞内で増殖させた。
これらの感染され九纏維芽細胞に特異的な免疫けい光(
tmmunoず1uor@sc*nc* ) 法を用い
ることによ桑厘属内螢種にもとづくマウス防禦テストと
、それに続く標皐化動水病対抗りイルス(CVS)の投
与とKより、および既知の陽性血清(liiilli恐
水病標準血動水を用−たインビトロの血清中和テス)
(s*ron@utrallzatlon t@@t
) Kよって動水病ウィルスと同定された。
tmmunoず1uor@sc*nc* ) 法を用い
ることによ桑厘属内螢種にもとづくマウス防禦テストと
、それに続く標皐化動水病対抗りイルス(CVS)の投
与とKより、および既知の陽性血清(liiilli恐
水病標準血動水を用−たインビトロの血清中和テス)
(s*ron@utrallzatlon t@@t
) Kよって動水病ウィルスと同定された。
最初KW用されるHEPフラリ ワタテンの増殖のため
に他の動水病感染性細胞系及び二倍体−−八 胞系をも SPF鶏胚纏維芽細胞の代りに使用し得るこ
とは理解されるであろう。
に他の動水病感染性細胞系及び二倍体−−八 胞系をも SPF鶏胚纏維芽細胞の代りに使用し得るこ
とは理解されるであろう。
HEPフラリ ワクテ/は世界中で使用されてお9、そ
のいずれを使用することも可能である。
のいずれを使用することも可能である。
に、vo@hIna等〔^rch、 gas、 Vlr
ustorsch、、/ t 。
ustorsch、、/ t 。
370C/り66)〕による鶏胚4I維4j細胞(SP
F)におけるプラーク 検屍法及び0.8171@ng
a and L、 JOub@rt (Bul +、
sop、 Scl 、 V≦t。
F)におけるプラーク 検屍法及び0.8171@ng
a and L、 JOub@rt (Bul +、
sop、 Scl 、 V≦t。
・tM≦d、 Comparing、 LyOn、ム
亙μmり(/り7≠)IKよる!ラーキ/グ細胞懸濁法
を用い、感染細II!に対するa胞病理学的効果におい
て、最初のウィルス集団とは明らかに異なるプラークを
単一しうる。このプラークを均一かつ純粋なウィルス集
団を得るために3回りQ−ニンダした。
亙μmり(/り7≠)IKよる!ラーキ/グ細胞懸濁法
を用い、感染細II!に対するa胞病理学的効果におい
て、最初のウィルス集団とは明らかに異なるプラークを
単一しうる。このプラークを均一かつ純粋なウィルス集
団を得るために3回りQ−ニンダした。
ワクチ々株がその元のプイルレ/スに復帰する可能性は
、殆ど排他的にワクチン株の不純さく逆選別をもたらす
)に上るものであるから、株47jの前記の如き効果的
な精製は実際上儂帰の危険性を#除した。tた、この株
1,73Fi入手し得るものりうちでIk4非発病性の
動水病ウィルス株であるO 初めて単離されたプラークはAt、76と番号付けられ
、精製後の株は動水病ワクチン株/%1.76とされた
。この株の試料はlり77年1り/3日に7’ラバの寄
託機ml (Cz@choslovak Natlon
alColl@ctlon of Type C
u1tures of the In5titu
teof Hygl*n@@nd Epidemiol
ogy ) K寄託され、そこで寄託番号CNCTC4
^0≠/77として記録されている。
、殆ど排他的にワクチン株の不純さく逆選別をもたらす
)に上るものであるから、株47jの前記の如き効果的
な精製は実際上儂帰の危険性を#除した。tた、この株
1,73Fi入手し得るものりうちでIk4非発病性の
動水病ウィルス株であるO 初めて単離されたプラークはAt、76と番号付けられ
、精製後の株は動水病ワクチン株/%1.76とされた
。この株の試料はlり77年1り/3日に7’ラバの寄
託機ml (Cz@choslovak Natlon
alColl@ctlon of Type C
u1tures of the In5titu
teof Hygl*n@@nd Epidemiol
ogy ) K寄託され、そこで寄託番号CNCTC4
^0≠/77として記録されている。
この株は、以下の特性により、初めのHEP72リ ウ
ィルスと区別しうるニー (a) インビトロにおける極めて一導な細胞病理学
的効果(培養細胞に対すb款死車、epE ); 明ら
かKHEP799株の効果とは異っており1かり/コ〜
コ参時間早く作用する。
ィルスと区別しうるニー (a) インビトロにおける極めて一導な細胞病理学
的効果(培養細胞に対すb款死車、epE ); 明ら
かKHEP799株の効果とは異っており1かり/コ〜
コ参時間早く作用する。
(b) 短縮された一次ウイルスすイクル;り〜l/
時間の範囲で変化する。一方HEPylu株の場合には
/−〜/j時間である。極めて急速なプラークの形成を
引き起こす。
時間の範囲で変化する。一方HEPylu株の場合には
/−〜/j時間である。極めて急速なプラークの形成を
引き起こす。
(−極めて明瞭なプラーク。このプラークはXF−均し
てHIPウィルスのプラークよりも幾分大きな径(/
m )を有する。このプラークの領域では生細胞1は全
くないが、HEPノラリ株の場合には常にいくらかの生
細胞が4淫する。
てHIPウィルスのプラークよりも幾分大きな径(/
m )を有する。このプラークの領域では生細胞1は全
くないが、HEPノラリ株の場合には常にいくらかの生
細胞が4淫する。
(−インビトロでのam表面に対する高い付着能力。こ
れは適正な経口ワクチンにとって必須の要件である。
れは適正な経口ワクチンにとって必須の要件である。
(・) インピーでの遮かなインターフェロン生産性<
m種後約60分)および高い達成可能なインターフェロ
ン力価。この性質は罹患後の接種に対して重要な要件で
ある。
m種後約60分)および高い達成可能なインターフェロ
ン力価。この性質は罹患後の接種に対して重要な要件で
ある。
(f) jll胞培養において、高いウィルス力価を
与える。
与える。
これ611141!(a−ず)は本発明の株、47 j
カ元のHEP7ラリ ウィルスとは明らかに異ること
を示すものであることを理解することができよう。
カ元のHEP7ラリ ウィルスとは明らかに異ること
を示すものであることを理解することができよう。
本発明がその範囲内に、ウィルス716473株から誘
導され、かつ上述tyys471株の#特性を有する人
工変異株をも包含するものであることが理解されよう。
導され、かつ上述tyys471株の#特性を有する人
工変異株をも包含するものであることが理解されよう。
既に述べたように、本発明によればクローン稽1iKよ
って均質なウィルス集団が得られることから、一定の品
質をもつワクテンパッチの製造が容易化される。即ち、
改善されえ稠度のワクチンを、本発11に従ってウィル
ス腐67!株から製造しうる。
って均質なウィルス集団が得られることから、一定の品
質をもつワクテンパッチの製造が容易化される。即ち、
改善されえ稠度のワクチンを、本発11に従ってウィル
ス腐67!株から製造しうる。
本発明のもう一つの特徴をなすワクチンは次の諸利点を
示す: (1) 元のH筐Pフツリ ワタチンにおけると同様
に本発明による生ウィルス ワクチン社投与後に増殖せ
ず、残留ウィルスは検出され得ない。
示す: (1) 元のH筐Pフツリ ワタチンにおけると同様
に本発明による生ウィルス ワクチン社投与後に増殖せ
ず、残留ウィルスは検出され得ない。
(2) このワタテy鉱極めて迅速なインターフェロy
生童性と、その他の付随的な未知の阻止能、例えばjl
I鳳愉免歳性とを惹起する。天然ウィルスによる実験的
感染後に、ワクチンを一腹投与するだけで売食を防禦を
達成しうろ。極めて迅速なイ/ターアエaン生童性と細
胞性免疫性に基−て、動水病の流行中KII患したばか
りの動物ム の防禦のために、本発明のワクチンを利用することが命
中可能である。特に、人の罹ll後のワクチン治療の可
能性が着しく改善されたが、それ紘このワクチンが感染
後の動物に対し著しく有効であり、その感染の著しく進
んだ段階にある動物を治癒させることすら可能であるか
らである。
生童性と、その他の付随的な未知の阻止能、例えばjl
I鳳愉免歳性とを惹起する。天然ウィルスによる実験的
感染後に、ワクチンを一腹投与するだけで売食を防禦を
達成しうろ。極めて迅速なイ/ターアエaン生童性と細
胞性免疫性に基−て、動水病の流行中KII患したばか
りの動物ム の防禦のために、本発明のワクチンを利用することが命
中可能である。特に、人の罹ll後のワクチン治療の可
能性が着しく改善されたが、それ紘このワクチンが感染
後の動物に対し著しく有効であり、その感染の著しく進
んだ段階にある動物を治癒させることすら可能であるか
らである。
(2) こつ生ウイルスワクチンの非腸管外、例えば経
口ルー)Kよる投与はその組織化された接種の施行くお
けろ使用を容易にする。
口ルー)Kよる投与はその組織化された接種の施行くお
けろ使用を容易にする。
/に471株から製造式れる生ウィルス ワクチンは罹
患前の接種に対して考え得る以下の如き利点をもつ; ^ 動物において /、 動水病ワクチン含有の食餌による狐及びその他の
流行病学的に重要な野生動物の免疫化。
患前の接種に対して考え得る以下の如き利点をもつ; ^ 動物において /、 動水病ワクチン含有の食餌による狐及びその他の
流行病学的に重要な野生動物の免疫化。
ユ 家畜の屠殺が宗教的及び(又は)立法的理由で禁止
されている諸国における家畜、例えば舒犬に対する経口
的接種。
されている諸国における家畜、例えば舒犬に対する経口
的接種。
ま 予防*ag+施行が著しく単純化門れうるような食
餌による、生ウィルス ワクテ/の大規模投与。例えば
飛行機によるウィルス ワクテ/を含有する、場合によ
っては凍結された電−トーールの撒布。
餌による、生ウィルス ワクテ/の大規模投与。例えば
飛行機によるウィルス ワクテ/を含有する、場合によ
っては凍結された電−トーールの撒布。
仏 予肪接種が規定されている諸国、及び動物が既に免
疫化されている場合には罹廊壁にも飼い続けることがで
きるような諸国において使用するえめの、罹患後の家畜
の有効な動水−防禦。
疫化されている場合には罹廊壁にも飼い続けることがで
きるような諸国において使用するえめの、罹患後の家畜
の有効な動水−防禦。
−) 人におiで
f 経口接種の恐怖はIIAW4されうる。接種の恐怖
はいくつかの国々におiては極めて重要な因子でTo6
、この恐怖の九めに1所足回数の接種に応じる患者の数
が減少する。
はいくつかの国々におiては極めて重要な因子でTo6
、この恐怖の九めに1所足回数の接種に応じる患者の数
が減少する。
1 経口投与社、現在市販されている、先行技IIKよ
るワクチンに関する実際上の欠点となってiる、局部反
応又は刺激を与えない、3、大規模で、医療的に慣れて
iない人々による容易な投与が可能になる〔経口ポリオ
*S*(oral pollomyelitjs
vaccenatlon ) 参照〕。
るワクチンに関する実際上の欠点となってiる、局部反
応又は刺激を与えない、3、大規模で、医療的に慣れて
iない人々による容易な投与が可能になる〔経口ポリオ
*S*(oral pollomyelitjs
vaccenatlon ) 参照〕。
これに関して、このワクナノの/lpJたけの投与で十
分であると思われる事実は重要なものと評価されよう。
分であると思われる事実は重要なものと評価されよう。
この新規なワクチンは通常の操作即ちイノビトロの細胞
培養により製造され、又、周知の原理及び国際的標準要
件に従って#8#及び(又は)ウィルスの夾雑を避ける
ために規定された通常の制御法を適用して製造される。
培養により製造され、又、周知の原理及び国際的標準要
件に従って#8#及び(又は)ウィルスの夾雑を避ける
ために規定された通常の制御法を適用して製造される。
本発明の新規なワクチンは、好適には動水病ウィルスを
5PFIO日令の鶏胚に由来する7次又はλ成鶏胚線維
芽細胞の単一層内で生育させることによって製造される
。しかしながら、動水病感染に十分感受性のある他のm
1糸(鳥に由来する他の細胞及び哺乳動物の細胞、例え
ば単一層培養用の幼ハムスター腎、2/(λl継代)或
は懸濁鳩養用の8Hに一、2/ /js(懸濁14.
11113代)のよりなもの)も1(川口うるが、この
場合には動物用ワクチ/に対してのみ使用し得る。この
懸濁細胞培養系は、生産を容易にする大容量の発酵槽内
におけるウィルスワクチンの生産を可能にするという大
暑な利点を持つ。
5PFIO日令の鶏胚に由来する7次又はλ成鶏胚線維
芽細胞の単一層内で生育させることによって製造される
。しかしながら、動水病感染に十分感受性のある他のm
1糸(鳥に由来する他の細胞及び哺乳動物の細胞、例え
ば単一層培養用の幼ハムスター腎、2/(λl継代)或
は懸濁鳩養用の8Hに一、2/ /js(懸濁14.
11113代)のよりなもの)も1(川口うるが、この
場合には動物用ワクチ/に対してのみ使用し得る。この
懸濁細胞培養系は、生産を容易にする大容量の発酵槽内
におけるウィルスワクチンの生産を可能にするという大
暑な利点を持つ。
更にこのワタテ/は櫂クロ担体(ビーズ細胞培養系)上
で生育する細脂内でも製造しうる。例えば、Ia―生青
前及び(又は)生育中に巨大分子アニオノで処理され九
−リブキストランビーJeは、その表両に細胞生育の丸
めに十分な正電荷密度を有するので使用することができ
る。このようにして、畝状媒体中で攪拌され九細胞とビ
ーズとの懸濁物に所定のウィルスを接種し、ウィルスの
接種後にそのビーズを反応槽の底に沈降させ、ウィルス
の懸濁物から分離する。
で生育する細脂内でも製造しうる。例えば、Ia―生青
前及び(又は)生育中に巨大分子アニオノで処理され九
−リブキストランビーJeは、その表両に細胞生育の丸
めに十分な正電荷密度を有するので使用することができ
る。このようにして、畝状媒体中で攪拌され九細胞とビ
ーズとの懸濁物に所定のウィルスを接種し、ウィルスの
接種後にそのビーズを反応槽の底に沈降させ、ウィルス
の懸濁物から分離する。
このワタチン製造のための特殊な方法においては、鶏胚
纏維芽IIA膓を、σO−〜lρfu/細胞なる感−多
重度の動水病ウイルスム47j株で感染させhが、感染
期間は最低1時間であることが好まし−、ζこで感染多
重度とは培地中の細胞当た襲の生存ウィルス粒子数であ
り、1s111に当たりのlラータ形成単位(plag
ue−ずormIQ −units 。
纏維芽IIA膓を、σO−〜lρfu/細胞なる感−多
重度の動水病ウイルスム47j株で感染させhが、感染
期間は最低1時間であることが好まし−、ζこで感染多
重度とは培地中の細胞当た襲の生存ウィルス粒子数であ
り、1s111に当たりのlラータ形成単位(plag
ue−ずormIQ −units 。
11 )で表わ畜れる。■付着しなかったウィルスを除
去した後に、好適には適量の抗生物質(例:100eυ
ペニシリン及び/ 00 pgストレグトマイシ/)と
0.2〜o、r@のアルジミンとが添加された、[ar
ls’s 塩 溶液中のBa5m1 M@dium証−
1・(BMりからなる維持培地を添加する。
去した後に、好適には適量の抗生物質(例:100eυ
ペニシリン及び/ 00 pgストレグトマイシ/)と
0.2〜o、r@のアルジミンとが添加された、[ar
ls’s 塩 溶液中のBa5m1 M@dium証−
1・(BMりからなる維持培地を添加する。
仁の維持培地のplをf、 0− f、 、2 K保つ
ように注意すべきである。フィルス感染細胞を32〜3
9℃で3〜IO日間恒温保持し、そこで細胞を破壊して
ウィルスを遊離させる(力価が増す)ために、その培地
を一70℃以下に凍結する。細胞及び細膓破片を滅菌状
態でr過又は遠心分1lIIKよって除<、F液又は上
澄液を一70℃で保存し、試料を上述のインビトax
プラーキング法によって力価測定するためKIl取す
る。恒温保持後に細胞を破壊するために他の方法、例え
ば細胞懸濁液を超音波振動Kかける方法を使用しうろこ
とが理解されよう。
ように注意すべきである。フィルス感染細胞を32〜3
9℃で3〜IO日間恒温保持し、そこで細胞を破壊して
ウィルスを遊離させる(力価が増す)ために、その培地
を一70℃以下に凍結する。細胞及び細膓破片を滅菌状
態でr過又は遠心分1lIIKよって除<、F液又は上
澄液を一70℃で保存し、試料を上述のインビトax
プラーキング法によって力価測定するためKIl取す
る。恒温保持後に細胞を破壊するために他の方法、例え
ば細胞懸濁液を超音波振動Kかける方法を使用しうろこ
とが理解されよう。
他の特別の製造法によれば、8Hに一2//js細胞を
懸濁液中で生育させる。例えばスピネルフラスコ中に棒
を吊し、少量のトリノトース ホスフェート ブ’ X
(tryptose phosphateMoth
) (7〜/ 71 )、不活化仔牛血清(7〜/1%
>及び抗生物質(例えば/ 001U f)−1−7リ
ン及び/ o o pgのストレグトマイクン)が添加
されたスピネル培養層BHK−2/培地を用いて生育さ
せる。細胞を、約2×lO6細胞/−のレベルに達する
まで生育させ、その間それらを懸濁状態に保ち、互いに
凝集するのを防止するために十分にJlllmlを攪拌
する。
懸濁液中で生育させる。例えばスピネルフラスコ中に棒
を吊し、少量のトリノトース ホスフェート ブ’ X
(tryptose phosphateMoth
) (7〜/ 71 )、不活化仔牛血清(7〜/1%
>及び抗生物質(例えば/ 001U f)−1−7リ
ン及び/ o o pgのストレグトマイクン)が添加
されたスピネル培養層BHK−2/培地を用いて生育さ
せる。細胞を、約2×lO6細胞/−のレベルに達する
まで生育させ、その間それらを懸濁状態に保ち、互いに
凝集するのを防止するために十分にJlllmlを攪拌
する。
遠心分lII!によってそれらの細胞を回転沈降させ、
動水病つィルス属1.71株による0、07〜/ pf
u/細胞なる感染多重度での感染を、定速攪拌の下で3
0ヤルO分間行う。
動水病つィルス属1.71株による0、07〜/ pf
u/細胞なる感染多重度での感染を、定速攪拌の下で3
0ヤルO分間行う。
感染後、少量の牛血清アルデiノ フックシ璽/VC例
えば0. / −0,17重量−)及び抗生物質(例え
ばjO〜JOOpliGカナマイシン又はネすマイyy
)が−纏され九・Hに一コlスピネル培地からなる維持
培地を含むスピネルフラスコ中に鋏細胞を再度懸濁させ
、−を7j〜t、 04C調整する。感染中に、温度を
3λ〜JjC1好ましくはjJcKll)%11日該エ
ビネル フラスコから、少量の試料を取出して、免疫け
い光法による検査に供する。感染後−〜3日の間に、こ
れら試料中の細胞のto〜ioo@が該細胞質中の動水
病細―封入体に対して4I異的な免疫けい光を示すが、
これは感染後参〜4日の収穫時には、lo8〜/ d’
pfu /−の力価KNmするものとなる。収穫時に
1液を7ツスコから取出し、−70℃で凍結保存する。
えば0. / −0,17重量−)及び抗生物質(例え
ばjO〜JOOpliGカナマイシン又はネすマイyy
)が−纏され九・Hに一コlスピネル培地からなる維持
培地を含むスピネルフラスコ中に鋏細胞を再度懸濁させ
、−を7j〜t、 04C調整する。感染中に、温度を
3λ〜JjC1好ましくはjJcKll)%11日該エ
ビネル フラスコから、少量の試料を取出して、免疫け
い光法による検査に供する。感染後−〜3日の間に、こ
れら試料中の細胞のto〜ioo@が該細胞質中の動水
病細―封入体に対して4I異的な免疫けい光を示すが、
これは感染後参〜4日の収穫時には、lo8〜/ d’
pfu /−の力価KNmするものとなる。収穫時に
1液を7ツスコから取出し、−70℃で凍結保存する。
試料から細胞及び細胞片を除去した後、少量の鍍試料を
!ラークカ価副定法によって力価測定する。許容される
力価(107°5〜108・5ρfu /−以上)K、
遺したら、滅菌状態でr過又は癌心分離することによっ
て前記細胞及び細胞片を収穫物から除く。
!ラークカ価副定法によって力価測定する。許容される
力価(107°5〜108・5ρfu /−以上)K、
遺したら、滅菌状態でr過又は癌心分離することによっ
て前記細胞及び細胞片を収穫物から除く。
適正な安定化剤を添加した後、該液体は例えば最終製品
の凍結乾燥のためのバイアル中に分配しうるむとKなる
。
の凍結乾燥のためのバイアル中に分配しうるむとKなる
。
好適には入用の、死菌(不活化)動水病ワタテyも本発
明の範囲内に包含されることが理解されよう。
明の範囲内に包含されることが理解されよう。
これらの死菌動水病ワクチンは、調製され友培養筐中の
ウィルスを、既知の操作又はその便法、例えば/−f曹
ビオラクFノ、ホルマりン、或はアセテルエチレンイン
ンの添加により或は紫外線照射によって不活化すること
により製造することがで自る。
ウィルスを、既知の操作又はその便法、例えば/−f曹
ビオラクFノ、ホルマりン、或はアセテルエチレンイン
ンの添加により或は紫外線照射によって不活化すること
により製造することがで自る。
本発明のウィルス株から誘導される動水病ワクテyは一
種以上の適正な安定化剤、防腐剤、緩衡剤塩類及び補助
剤を含有しうろことが理解されよう。
種以上の適正な安定化剤、防腐剤、緩衡剤塩類及び補助
剤を含有しうろことが理解されよう。
本明細書及び特許請求の範囲の記載にお−で使用される
腸内投与という用語は本発明の動水病ワクテyを腸内に
放出し得る形状で投与することを意味する。
腸内投与という用語は本発明の動水病ワクテyを腸内に
放出し得る形状で投与することを意味する。
本発明は次の諸例によって例示されろ。
例1
■定され丸、又はローラ −トル中で育生されえ1次又
はλ次IFF帰胚纏維芽頴胞の単一層を、(0,02〜
/pfu/細胞の感染多重度(m、o、1.)を有する
動水病ウィルス4471株で感染させる。
はλ次IFF帰胚纏維芽頴胞の単一層を、(0,02〜
/pfu/細胞の感染多重度(m、o、1.)を有する
動水病ウィルス4471株で感染させる。
少量のウィルスを使用することもできるが、その場合に
社恒温保持時間を延長する。種ウィルスを細胞に付着さ
せるためKは、少くとも1時間の感染時間が必要である
。次に、残留する付着しなかったウィルスを除き、適正
量の抗生物質と0.2−のワクチン使用の対象となる関
連種のアルブ電/とを添加したEarle’s塩溶液中
のBa5al M@dium【・1・(BME)からな
る維持培地を添加する。
社恒温保持時間を延長する。種ウィルスを細胞に付着さ
せるためKは、少くとも1時間の感染時間が必要である
。次に、残留する付着しなかったウィルスを除き、適正
量の抗生物質と0.2−のワクチン使用の対象となる関
連種のアルブ電/とを添加したEarle’s塩溶液中
のBa5al M@dium【・1・(BME)からな
る維持培地を添加する。
その際に、維持培地の最終混合物のp[Iがり、2とな
るように注意する。
るように注意する。
前記ウィルス感染細胞を33〜3j℃にて≠〜を日間恒
温保持すると細胞病理学的効果(CP E)が高まる。
温保持すると細胞病理学的効果(CP E)が高まる。
次いでその培地を一70℃で凍結する。
次に、生成物を解凍した後、1ooopで遠心分離する
か又はメンプラン フィルター(孔径jiりl2))で
滅菌条件下でr過して、細胞及び細胞片を除く。上澄液
又はf液を一70℃で保存し、上述のインビトロプラー
キング法(slJlenga及びJ@ub@rt )で
力価11jMするために試料を採取する。
か又はメンプラン フィルター(孔径jiりl2))で
滅菌条件下でr過して、細胞及び細胞片を除く。上澄液
又はf液を一70℃で保存し、上述のインビトロプラー
キング法(slJlenga及びJ@ub@rt )で
力価11jMするために試料を採取する。
罹患後の効果的な接種に用いるワクチン・ヤツテの許容
力価社/ 08pfu /−である。罹患前の接種に対
しては、/ 0’ pfu/−の最少力価でも許容され
る。
力価社/ 08pfu /−である。罹患前の接種に対
しては、/ 0’ pfu/−の最少力価でも許容され
る。
上述のワyt−:yパッチの製造は通常の力価試験(N
IN及びoab・1テスト)で制御されるが、罹患IK
使用されるパッチについては更にG、 81 jl*n
ga (Symposium on Advances
1n111ables Re5earch s
^tlanta 、 G@orgla、 LJ
、S、 ^、。
IN及びoab・1テスト)で制御されるが、罹患IK
使用されるパッチについては更にG、 81 jl*n
ga (Symposium on Advances
1n111ables Re5earch s
^tlanta 、 G@orgla、 LJ
、S、 ^、。
lり7を年2月7〜2日第7≠頁)による追加の新規な
力価試験が必要とされる。
力価試験が必要とされる。
ヒの新規な力価試験において局在屋外ウィルス(1oc
al 5treet virus )を弘週令−lウス
の筋肉内(1,m、 )に投与し、続いてコ≠時間以内
に0.1−ワクチンをl11腹膜内Kl!種する。接種
された全てのマウスは生き残る筈であるが対照マウスの
#lzo sは3週間の試験期間の終了前に死ぬ筈であ
る。
al 5treet virus )を弘週令−lウス
の筋肉内(1,m、 )に投与し、続いてコ≠時間以内
に0.1−ワクチンをl11腹膜内Kl!種する。接種
された全てのマウスは生き残る筈であるが対照マウスの
#lzo sは3週間の試験期間の終了前に死ぬ筈であ
る。
このワタテy パッチの考えられるla曹及びウィルス
夾雑に対する滅菌試験のための通常の制御法と、ワタテ
y製造に用いられる1次又は2次−脂及び細胞系(ce
ll Iln・S)に対する操作法とはl−的に確立さ
れた最少要件に従って行われる。
夾雑に対する滅菌試験のための通常の制御法と、ワタテ
y製造に用いられる1次又は2次−脂及び細胞系(ce
ll Iln・S)に対する操作法とはl−的に確立さ
れた最少要件に従って行われる。
例コ
8NK−2/ /Js細胞を、棒を吊し九−・He・
スピネル フラスコ中の懸濁液中で生育させるが、その
際にスピネル培養用BHに一コ/培地を用い、該培地に
は抗生物質(1001Uのぺxシリン及び1100pの
ストレグトマイクン)の存在下に、1091+トリノト
ース ホス7エートブロスとlO嚢不活化仔牛血清とを
添加する。
スピネル フラスコ中の懸濁液中で生育させるが、その
際にスピネル培養用BHに一コ/培地を用い、該培地に
は抗生物質(1001Uのぺxシリン及び1100pの
ストレグトマイクン)の存在下に、1091+トリノト
ース ホス7エートブロスとlO嚢不活化仔牛血清とを
添加する。
コX / 0’ 細胞/−のレベルに達するまで細胞を
生育させ、その間それらが懸濁状11MK保たれ、かつ
亙いに凝集しないように1十分に細胞を攪拌する。
生育させ、その間それらが懸濁状11MK保たれ、かつ
亙いに凝集しないように1十分に細胞を攪拌する。
遠心分−によって1100rpで細胞を回転沈降させ、
0,0/〜/pfu/m胞の感染多重度で動水病つィル
ス/%A7j株による感染を、定速攪拌下で参!分間行
う、感染後、0.2%の牛血清アルノ電ンフラクク曹/
Vが適量の鈴拝されうる抗生物質(即ちカナマイク/又
はネオマイシン)と共に―纏された@−に一27スピネ
ル培地からなる一持培地を含有するスピネルフラスコに
細胞を再度騙濁させ、同時[pBを7trK調整する。
0,0/〜/pfu/m胞の感染多重度で動水病つィル
ス/%A7j株による感染を、定速攪拌下で参!分間行
う、感染後、0.2%の牛血清アルノ電ンフラクク曹/
Vが適量の鈴拝されうる抗生物質(即ちカナマイク/又
はネオマイシン)と共に―纏された@−に一27スピネ
ル培地からなる一持培地を含有するスピネルフラスコに
細胞を再度騙濁させ、同時[pBを7trK調整する。
感染中に温度を33℃に保ち、そのスピネル フラスコ
から毎日少量の試料を、免疫けい光性によって検査する
えめに取出す。感染後2〜3日間で、これらの賦科中の
Jllmlの10〜100慢が細胞質中の動水病sti
m射入体に対して特異的な免疫けい光を示す筈であって
、これは結果として感染後弘〜を日の収穣時において1
0”〜10”pずU/−という十分な力価を保証する。
から毎日少量の試料を、免疫けい光性によって検査する
えめに取出す。感染後2〜3日間で、これらの賦科中の
Jllmlの10〜100慢が細胞質中の動水病sti
m射入体に対して特異的な免疫けい光を示す筈であって
、これは結果として感染後弘〜を日の収穣時において1
0”〜10”pずU/−という十分な力価を保証する。
収穫時に1前記79スコから筐体をとヤ出し、該筐体を
一70℃に凍結して保存する。この収穫物の少量試料を
別に保存してお自、細胞及び細胞片を除去し九後K、グ
クーク力個1IIl定法で力価測定を行う。力価が許容
されうる値(109・“〜/ 0”・’ pfu /−
又はそれ以上)である鳩舎には、上述の方法によって該
収穫物からm鳳及び細胞片を除き、適正な安定化剤を加
えて、液体を最#ll1l晶の凍結乾燥用バイアル中に
分配する。
一70℃に凍結して保存する。この収穫物の少量試料を
別に保存してお自、細胞及び細胞片を除去し九後K、グ
クーク力個1IIl定法で力価測定を行う。力価が許容
されうる値(109・“〜/ 0”・’ pfu /−
又はそれ以上)である鳩舎には、上述の方法によって該
収穫物からm鳳及び細胞片を除き、適正な安定化剤を加
えて、液体を最#ll1l晶の凍結乾燥用バイアル中に
分配する。
艶に−そう高い力価を得るために、固定完全業一層又は
ローラ培養メトル中の該率一層を感染させることKよる
別法を使用しうる。感染後2〜を時間の関に1細胞は抗
トリノシ/性が破壊されて上述の懸濁培養Kかけられる
。細1@凝集が生じないように注意すべきである。この
ようにして、コX10’ll胞/−以上を使用すること
が可能であり、前記懸濁培養Kかけられる感染細胞の数
に応じてよ抄高い力価の収換物が得られる。
ローラ培養メトル中の該率一層を感染させることKよる
別法を使用しうる。感染後2〜を時間の関に1細胞は抗
トリノシ/性が破壊されて上述の懸濁培養Kかけられる
。細1@凝集が生じないように注意すべきである。この
ようにして、コX10’ll胞/−以上を使用すること
が可能であり、前記懸濁培養Kかけられる感染細胞の数
に応じてよ抄高い力価の収換物が得られる。
例 3
本発明によ・る動水病生ワクチンと不活化動水病ワクチ
ンの用法と価値とを例示する九めに罹患前及び後の秦種
夷験のいくりかの結果を以下に列挙する。
ンの用法と価値とを例示する九めに罹患前及び後の秦種
夷験のいくりかの結果を以下に列挙する。
〔^〕 C水病生ワクデン/I6乙7j株による狐の経
口接種(コー/狐)(ワクチンの力価はコx108pf
u/s(): この実験は着い狐のn口接檜の有効性を示している。狐
の免疫応答は適正な血清変換 (5eroconv@rslon )及び良好な力価を
示す。接種後jケ月以上して3匹の狐は完全に防禦され
、3匹の対照用狐は全部、極めて短い潜伏期間中に死ん
だ。このことは右後足に筋肉内接種された極めて高い用
量の対抗 ウィルスに基〈ものである。
口接種(コー/狐)(ワクチンの力価はコx108pf
u/s(): この実験は着い狐のn口接檜の有効性を示している。狐
の免疫応答は適正な血清変換 (5eroconv@rslon )及び良好な力価を
示す。接種後jケ月以上して3匹の狐は完全に防禦され
、3匹の対照用狐は全部、極めて短い潜伏期間中に死ん
だ。このことは右後足に筋肉内接種された極めて高い用
量の対抗 ウィルスに基〈ものである。
通常使用される狐用の対抗用量は3000 MLD5゜
である。
である。
(11不活化ムt7j株による接横後の血清学的結果:
9クテンを1回注射して投与し、示され九カ価社前表の
ようK 1.tJ、 で表わされている。
ようK 1.tJ、 で表わされている。
接種後参週間で、を匹の犬とt頒の牛とは全部、極めて
高i力価の血清変換を示した。血清変換に必要な最低力
価は欧州薬局方(the Europ@anPhar向
top・・)によってQ10.U、/−と定められてい
る。
高i力価の血清変換を示した。血清変換に必要な最低力
価は欧州薬局方(the Europ@anPhar向
top・・)によってQ10.U、/−と定められてい
る。
(C) 野生の生ウィルス(狐に由来)で感染した後
の研究用マウスの鋳Ill: この表に示された全てのマウスは狐の唾液腺動水病つィ
ルスCO,/−溶液)で筋肉内接種され、2〜I1日の
潜伏期間内に対照のto−to−が死亡した。
の研究用マウスの鋳Ill: この表に示された全てのマウスは狐の唾液腺動水病つィ
ルスCO,/−溶液)で筋肉内接種され、2〜I1日の
潜伏期間内に対照のto−to−が死亡した。
生及び不活化ワクチン4Aフフ株は、表に示された最初
の感染後の種々の期間において、腹膜内に単一用量(0
,7d)で投与された。
の感染後の種々の期間において、腹膜内に単一用量(0
,7d)で投与された。
この未希釈生ワクチンは感染6日後でも防禦し九が、こ
のことは以前罠は市販の如何なるワクチンにりいても決
して昭められなかった。この防禦成績は動水病りイルス
が中枢神経系に遣し九後ですら感染マウスが治癒されう
ろことを示している。
のことは以前罠は市販の如何なるワクチンにりいても決
して昭められなかった。この防禦成績は動水病りイルス
が中枢神経系に遣し九後ですら感染マウスが治癒されう
ろことを示している。
感染後2日で接種を開始し、7目間隔で2回接種すると
いくつかのマウスはなお防禦され友。
いくつかのマウスはなお防禦され友。
この生ワクチンは70回希釈されても、感染後コ参時間
以内ならば防禦能を示しうると考えられる。
以内ならば防禦能を示しうると考えられる。
不活化ワクテyij感染後2≠時間以内である啼にのみ
防禦し、70倍以内であれば希釈することがで自ると考
えられる。
防禦し、70倍以内であれば希釈することがで自ると考
えられる。
Claims (3)
- (1) 寄託番号CNCTCAO≠/77で寄託され
ている動水病つィルス新株ム47jおよび該新株4A7
jの再現性ある高い細胞病理学的効果および他のIfI
#電の緒特性を示す突然変異株および変異株。 - (2)) 再現性ある高い細胞病理学的効果を有する、
寄託番号CNCTC^044/77で寄託されている動
水病ウィルス新株4A7jf)II造方法にお−て、H
砿−7ラリワクチンを一次または二次SPF鴎胚纏繍芽
細鳳、もしくは動水病感染性の細胞畢壜九はλ缶体細胞
系内で増殖させ、公知のグテータ検定法およびlテーク
細胞懸濁法を利用して形成され九プラークを単一し、比
だし皺!ツータは元のHtPフラリ株と社恐水病感粂細
@に対する細胞病理学的効果において異る、次いで得ら
れ良前記プラークを3り=−ン精製に掛けて均一かつ純
粋なウィルス集団を得ることを特徴とする、上記動水病
新株、%A7jの製造方法。 - (3) 舒生食肉獣及びその他の野獣を動水病感染か
ら保護する方法において、寄託番号CNCTC^0弘/
77 として寄託されている、生き九恐水病ウィルス株
447にワクチンを経口投与しても効果の彦い場合に1
上起動物の腸内に#’7クチンを投与することを特徴と
する上記方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB3258/77A GB1596653A (en) | 1977-01-26 | 1977-01-26 | Vaccine |
GB3258 | 1977-01-26 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5877822A true JPS5877822A (ja) | 1983-05-11 |
JPS637754B2 JPS637754B2 (ja) | 1988-02-18 |
Family
ID=9754946
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP715078A Granted JPS5394084A (en) | 1977-01-26 | 1978-01-25 | Novel vaccine |
JP57181202A Granted JPS5877822A (ja) | 1977-01-26 | 1982-10-15 | 新規な恐水病ウイルスおよびその製法 |
Family Applications Before (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP715078A Granted JPS5394084A (en) | 1977-01-26 | 1978-01-25 | Novel vaccine |
Country Status (20)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US4320115A (ja) |
JP (2) | JPS5394084A (ja) |
AT (1) | AT368005B (ja) |
BE (1) | BE863368A (ja) |
CA (1) | CA1112167A (ja) |
CH (2) | CH658192A5 (ja) |
DE (1) | DE2803240B2 (ja) |
DK (1) | DK36378A (ja) |
ES (2) | ES466359A1 (ja) |
FI (1) | FI59812C (ja) |
FR (1) | FR2378859B1 (ja) |
GB (1) | GB1596653A (ja) |
IE (1) | IE46498B1 (ja) |
IT (1) | IT1192756B (ja) |
LU (1) | LU78951A1 (ja) |
NL (1) | NL174371C (ja) |
NO (1) | NO780156L (ja) |
PT (1) | PT67554B (ja) |
SE (2) | SE444453B (ja) |
ZA (1) | ZA78421B (ja) |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4429045A (en) | 1980-07-30 | 1984-01-31 | Norden Laboratories, Inc. | Rabies virus adapted for growth in swine testicle cell culture |
US4347239A (en) | 1980-07-30 | 1982-08-31 | Norden Laboratories, Inc. | Inactivated rabies vaccine for veterinary use |
EP0100752A3 (de) * | 1982-08-04 | 1985-04-17 | Veterinär-Bakteriologisches Institut der Universität Bern | Verfahren zur Herstellung eines neuen Tollwut-Impfstoffs, Behälter und Mittel zu dessen Verabreichung und Verfahren zur oralen Immunisierung |
JPS6147187A (ja) * | 1984-08-10 | 1986-03-07 | Chemo Sero Therapeut Res Inst | 狂犬病ウイルスの精製方法 |
DE3526809A1 (de) * | 1985-07-26 | 1987-04-02 | Behringwerke Ag | Tollwut-lebendimpfstoff |
CA1249518A (en) * | 1985-09-06 | 1989-01-31 | David Johnston | Oral immunization of mammals |
US7094391B1 (en) * | 1988-10-24 | 2006-08-22 | The University Of Texas System | Compositions and methods for administering Borrelia burgdorferi antigens |
AU2359195A (en) * | 1994-04-19 | 1995-11-10 | Thomas Jefferson University | Viral ribonucleocapsid as an immunological enhancer |
US6495360B1 (en) * | 1999-05-28 | 2002-12-17 | Photogen, Inc. | Method for enhanced protein stabilization and for production of cell lines useful for production of such stabilized proteins |
US20030118628A1 (en) * | 2001-04-05 | 2003-06-26 | Tutuncu Nurhan Pinar | Confectionery product having a salivation region and an oral comfort region |
CN112342185B (zh) * | 2020-11-11 | 2022-12-02 | 深圳市卫光生物制品股份有限公司 | 一种鸡胚细胞狂犬病病毒的生物反应器工艺 |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1015262A (en) * | 1962-02-09 | 1965-12-31 | Nat Res Dev | Virus culture |
US3255080A (en) * | 1962-08-06 | 1966-06-07 | Dow Chemical Co | Live rabies virus vaccine and method for the production thereof |
US3397267A (en) * | 1964-09-21 | 1968-08-13 | Research Corp | Method of producing rabies vaccine |
FR1567869A (ja) * | 1967-06-22 | 1969-05-23 | ||
US4014991A (en) * | 1976-01-23 | 1977-03-29 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health, Education And Welfare | Oral rabies immunization of carnivores |
-
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-
1978
- 1978-01-16 NO NO780156A patent/NO780156L/no unknown
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- 1978-01-20 FI FI780184A patent/FI59812C/fi not_active IP Right Cessation
- 1978-01-20 NL NLAANVRAGE7800708,A patent/NL174371C/xx not_active IP Right Cessation
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