JPS58139069A - 酵素免疫測定法 - Google Patents
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-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
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- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は酵素免疫測定法、さらに詳しくは、ヒト妊娠特
異性及び/又は異所性β1−グリコプロティンの酵素免
疫測定法並びkそれに用いる測定試薬に関する。
異性及び/又は異所性β1−グリコプロティンの酵素免
疫測定法並びkそれに用いる測定試薬に関する。
ヒト妊娠特異性β、−グリ;プロティンは、胎盤から産
生される蛋白の一種であシ、受験後短期間で母体体液中
に見出される。胎盤から産生されたヒト妊娠特異性β1
−グリコプロティンは母体側に分泌され、胎児側へはほ
とんど移行せず、その体液中に十外高い濃変で存在し、
日内あるいはi差変動が少なく、かつ、体液中のヒト妊
娠特異性β1−グリ;プロティンO半減期が短い等、胎
盤機能マーカーとして十分な条件を満大していゐ。
生される蛋白の一種であシ、受験後短期間で母体体液中
に見出される。胎盤から産生されたヒト妊娠特異性β1
−グリコプロティンは母体側に分泌され、胎児側へはほ
とんど移行せず、その体液中に十外高い濃変で存在し、
日内あるいはi差変動が少なく、かつ、体液中のヒト妊
娠特異性β1−グリ;プロティンO半減期が短い等、胎
盤機能マーカーとして十分な条件を満大していゐ。
従って、妊婦体液中のにト妊娠特異性It−グリコブロ
チインを測定すゐことは、早期妊娠診断や切迫流量の予
後経過の観察等に有用である。
チインを測定すゐことは、早期妊娠診断や切迫流量の予
後経過の観察等に有用である。
また、悪性膿瘍患者の体液中から異所性β1−グリコプ
ロティンが検出され、例えば絨毛瘉、乳癌、胃癌等の患
者体液中KM)妊娠特異性/1−グリコプロティンと共
通の抗原基をもつ蛋白の存在が指摘されている。
ロティンが検出され、例えば絨毛瘉、乳癌、胃癌等の患
者体液中KM)妊娠特異性/1−グリコプロティンと共
通の抗原基をもつ蛋白の存在が指摘されている。
これらの悪性腫瘍患者体液中O異所性/1−グリコプロ
ティンを測定すゐヒとは、疾患す病態勢を把握すZため
の補助手段として重要である。
ティンを測定すゐヒとは、疾患す病態勢を把握すZため
の補助手段として重要である。
現在まで体液中のヒト妊娠特異性及び/又は異所性β1
−グリコプロティンを定量的に測定するため、種々の方
法が知られている。
−グリコプロティンを定量的に測定するため、種々の方
法が知られている。
(以下、ヒト妊娠特異性β、−グリコブ■ティン及び異
所性β1グリコプロティンを包括して82本と略記する
。) 。
所性β1グリコプロティンを包括して82本と略記する
。) 。
例えば、沈降反応を利用しえ一元免疫拡散法(Sing
le Radial Immuao D目fuslon
:8RID )や免疫電気拡散法(いわゆるロケット電
気泳動法、Rocket Immuno 1lLs@@
rophor@sis $BIl)等O方法がある。し
かし、免疫拡散法は操作が簡単であるが、8Pl)検出
感度(最小検出濃度)が数10μm71以上と微量の定
量法としては不十分な場合が多い。かつ、試料により、
不鮮明な沈降線を生ずる例があ夛、沈降線に染色を加味
した方法が提案されている( 8chulti−Lar
ien、 P、at ml、、 C目n。
le Radial Immuao D目fuslon
:8RID )や免疫電気拡散法(いわゆるロケット電
気泳動法、Rocket Immuno 1lLs@@
rophor@sis $BIl)等O方法がある。し
かし、免疫拡散法は操作が簡単であるが、8Pl)検出
感度(最小検出濃度)が数10μm71以上と微量の定
量法としては不十分な場合が多い。かつ、試料により、
不鮮明な沈降線を生ずる例があ夛、沈降線に染色を加味
した方法が提案されている( 8chulti−Lar
ien、 P、at ml、、 C目n。
Chlnn、 Actm、、 99.59−69 、1
979 : Towlar 。
979 : Towlar 。
C,M、 @t ml、、 ClIn、 Chlm、
Aeta、 87 、289−296゜1978)が、
中はシ、微量定量には不十分である。
Aeta、 87 、289−296゜1978)が、
中はシ、微量定量には不十分である。
%に1悪性腫瘍患者の体液中の8P1(数nt/st〜
数toonr/11)を測定することは困難である。
数toonr/11)を測定することは困難である。
高感度の微量定量法としては、放射免疫測定法(ラジオ
イムノアッセイ:RI人)がある。この方法は測定感度
のみならず精度、再現性及び特異反応性に優れている。
イムノアッセイ:RI人)がある。この方法は測定感度
のみならず精度、再現性及び特異反応性に優れている。
しかし、放射性物質を使用するため、半減期によゐ時間
的制約や放射性同位元素による環境汚染等、また、放射
線取り扱い設備の設置が必要である等、一般臨床検査と
して実用化されZKけ檜々の制約を受けるという欠点が
ある。
的制約や放射性同位元素による環境汚染等、また、放射
線取り扱い設備の設置が必要である等、一般臨床検査と
して実用化されZKけ檜々の制約を受けるという欠点が
ある。
本発明者らは、前述の種々の測定法におけゐ問題点を解
消し、高感度で、かつ、前述0種々の制約を受#/fな
い8P10111定法及びそれに用いる測定試薬を提供
する仁とを目的として、鋭意研究を重ね九結果、本発明
を完成すゐに!つた。
消し、高感度で、かつ、前述0種々の制約を受#/fな
い8P10111定法及びそれに用いる測定試薬を提供
する仁とを目的として、鋭意研究を重ね九結果、本発明
を完成すゐに!つた。
すなわち、本発−は、次に示す一連のl1、すなわち、
試料を、ヒト妊娠特異性及び/又は異所性β、−グリコ
プロティンに411異的な固相化抗体に接触させる工種
: 肢固相化抗体相に該β重−グリコプ驕ティンに特異的な
アルカリホスファターイ標識抗体を接触させる1穆; 過剰の咳アルカリホスファターゼ標識抗体から該固相化
抗体相を分離する1穆; 鋏固相化抗体相上のアルカリホスファターゼ活性を測定
する1穆; からなることを特像とする5PIO測定法及びそtIK
用いる測定試薬に関する。
プロティンに411異的な固相化抗体に接触させる工種
: 肢固相化抗体相に該β重−グリコプ驕ティンに特異的な
アルカリホスファターイ標識抗体を接触させる1穆; 過剰の咳アルカリホスファターゼ標識抗体から該固相化
抗体相を分離する1穆; 鋏固相化抗体相上のアルカリホスファターゼ活性を測定
する1穆; からなることを特像とする5PIO測定法及びそtIK
用いる測定試薬に関する。
本発明に応用した酵素を標識物質として使用する酵素免
疫測定法(エンザイムイムノアツセイ;BI人)は、原
理的KRIAと同様に抗原抗体反応を応用している仁と
から測定感度、精度、再現性、特異反応性に優れている
。さらに1前述した試薬有効期間の制約中高価な測定機
器並びに%定の施設を必要としないという長所を有して
いる。
疫測定法(エンザイムイムノアツセイ;BI人)は、原
理的KRIAと同様に抗原抗体反応を応用している仁と
から測定感度、精度、再現性、特異反応性に優れている
。さらに1前述した試薬有効期間の制約中高価な測定機
器並びに%定の施設を必要としないという長所を有して
いる。
本発明はEIAのうちサンドインチ法忙よる亀のであp
lその原理は次の通〕である。
lその原理は次の通〕である。
担体に抗体を固相化しておき、とれに測定すべき抗原を
接触させ、結合した抗原の残された抗体結合部位に#素
で標識した抗体を接触させた後、担体上の酵素活性を測
定すると、酵素活性が測定すべき抗原量と相関するとい
う原理である。
接触させ、結合した抗原の残された抗体結合部位に#素
で標識した抗体を接触させた後、担体上の酵素活性を測
定すると、酵素活性が測定すべき抗原量と相関するとい
う原理である。
本発明は、前記の原理を応用して8Pl特異的な抗体を
担体に固相化させ(固相化抗体)、これに測定しようと
するヒト体液中の8P1(抗原)を接触させ、次に酵素
で標識した抗ヒ)8P1抗体(酵素標識抗体)を接触さ
せて、固相化抗体−抗原−酵素標識抗体からなる複合体
を形成後、過剰の酵素標識抗体から前記複合体を分離し
て、複合体上の酵素活性を測定するととにより、8P1
の定量を行なう酵素免疫測定法に関すゐ。
担体に固相化させ(固相化抗体)、これに測定しようと
するヒト体液中の8P1(抗原)を接触させ、次に酵素
で標識した抗ヒ)8P1抗体(酵素標識抗体)を接触さ
せて、固相化抗体−抗原−酵素標識抗体からなる複合体
を形成後、過剰の酵素標識抗体から前記複合体を分離し
て、複合体上の酵素活性を測定するととにより、8P1
の定量を行なう酵素免疫測定法に関すゐ。
本発明に用いる担体は、不溶化担体であれば、どのよう
な本のを用いて亀よい。不溶化担体としては、ポリスチ
レン、ポリプロピレン、ポリカーボネイト、ナイロン等
が挙げられるが、ポリスチレン、ポリカーボネイトが好
首しく、ボリスチレいやすさ、担体上の固相化抗体量の
バラツキ度の均−化等実用土の問題から、特にビーズ状
(4%〜8”/m)のものが最も効果的でああ。
な本のを用いて亀よい。不溶化担体としては、ポリスチ
レン、ポリプロピレン、ポリカーボネイト、ナイロン等
が挙げられるが、ポリスチレン、ポリカーボネイトが好
首しく、ボリスチレいやすさ、担体上の固相化抗体量の
バラツキ度の均−化等実用土の問題から、特にビーズ状
(4%〜8”/m)のものが最も効果的でああ。
8PIK特異的な固相化抗体は以下のようKして調製す
る。すなわち、前記担体を洗剤勢を用いて洗浄後、水洗
した後、抗8Pl家鷺免疫グロブリンG(IgG)画分
1〜sθ声訃省、好壕しくは10μt、乙−を含む炭酸
緩衝液に4〜40℃、 好tしくは4℃で、6〜72時
間、好オしくは一夜浸漬する。この時、抗SP1家兎I
厘GO代わ、tJK、抗spi家兎IgGF(麿1)’
)s7ラグメントを用いてもよく、仁の場合も、緩衝液
中の濃度Fi1〜50μt/wiが適轟である。普た、
炭酸緩衝液の代わ如に、リン酸緩衝液又はトリス−塩酸
緩衝液等を用いてもよい。次に1前記担体をクエン酸緩
衝液で洗浄後、ウシ血清アルプ建ン(B8A)を0.0
1〜IIG、好ましくは0.1憾含有するクエン酸緩衝
液に浸漬して1〜7日、好ましくけ2日経てから使用に
供する。
る。すなわち、前記担体を洗剤勢を用いて洗浄後、水洗
した後、抗8Pl家鷺免疫グロブリンG(IgG)画分
1〜sθ声訃省、好壕しくは10μt、乙−を含む炭酸
緩衝液に4〜40℃、 好tしくは4℃で、6〜72時
間、好オしくは一夜浸漬する。この時、抗SP1家兎I
厘GO代わ、tJK、抗spi家兎IgGF(麿1)’
)s7ラグメントを用いてもよく、仁の場合も、緩衝液
中の濃度Fi1〜50μt/wiが適轟である。普た、
炭酸緩衝液の代わ如に、リン酸緩衝液又はトリス−塩酸
緩衝液等を用いてもよい。次に1前記担体をクエン酸緩
衝液で洗浄後、ウシ血清アルプ建ン(B8A)を0.0
1〜IIG、好ましくは0.1憾含有するクエン酸緩衝
液に浸漬して1〜7日、好ましくけ2日経てから使用に
供する。
この時、クエン酸緩衝液の代わりに1 リン酸緩衝液又
はトリス−塩酸緩衝液等を用いてもよい。
はトリス−塩酸緩衝液等を用いてもよい。
酵素標識抗体の標識酵素としては、アルカリホスファタ
ーゼを用いたが、その理由は以下のとお抄である。すな
わち、酵素標識抗体の調製が簡単であること、酵素標識
抗体の安定性がよいこと、酵素活性が高いこと、酵素反
応が速いこと、用いる基質が安定であること、BIA自
動化システムの組み込み可能なこと等が挙げられる。
ーゼを用いたが、その理由は以下のとお抄である。すな
わち、酵素標識抗体の調製が簡単であること、酵素標識
抗体の安定性がよいこと、酵素活性が高いこと、酵素反
応が速いこと、用いる基質が安定であること、BIA自
動化システムの組み込み可能なこと等が挙げられる。
酵素標識抗体は以下のようKして調製した。すなわち、
仔つシ腸由来のアルカリホスファターゼと抗8Pl家兎
IiGを重量比で0.5:1〜2.5=1、好ましくは
2:10割合で、リン酸緩衝液に溶解し、グルタルアル
デヒドの0.01〜S*、好ましくは1慢水溶液を用い
て架橋反応させる。この時、アルカリホスファターゼは
、仔つシ腸由来の略のの代わりに、大腸菌もしくはブタ
腎臓由来のもの、又は他の山東のアルカリホスファター
ゼを用いてもよい。又、リン酸緩衝液の代わりに1クエ
ン酸緩衝液又はベロナール緩衝液等を用いてもよい。・
このようにして、室温で10分〜器時間、好ましくFi
3時間放置後、リン酸緩衝液、トリス−塩酸緩衝液の順
に透析し、分画、精製して酵素標識抗体を得る。
仔つシ腸由来のアルカリホスファターゼと抗8Pl家兎
IiGを重量比で0.5:1〜2.5=1、好ましくは
2:10割合で、リン酸緩衝液に溶解し、グルタルアル
デヒドの0.01〜S*、好ましくは1慢水溶液を用い
て架橋反応させる。この時、アルカリホスファターゼは
、仔つシ腸由来の略のの代わりに、大腸菌もしくはブタ
腎臓由来のもの、又は他の山東のアルカリホスファター
ゼを用いてもよい。又、リン酸緩衝液の代わりに1クエ
ン酸緩衝液又はベロナール緩衝液等を用いてもよい。・
このようにして、室温で10分〜器時間、好ましくFi
3時間放置後、リン酸緩衝液、トリス−塩酸緩衝液の順
に透析し、分画、精製して酵素標識抗体を得る。
Al1述の架橋反応は、好ましいものとして、グルタル
アルデヒドを用いる方法(グルタルアルデヒド法)Kよ
勤行なったが、他の既知の方法であるバラベンゾキノン
法又は過冒つ素酸法によ勤行なって龜よい。この時は、
それぞれに応じて、既知の方法及び条件下で行なう。
アルデヒドを用いる方法(グルタルアルデヒド法)Kよ
勤行なったが、他の既知の方法であるバラベンゾキノン
法又は過冒つ素酸法によ勤行なって龜よい。この時は、
それぞれに応じて、既知の方法及び条件下で行なう。
また、前記固相化抗体−抗原−酵素標識抗体から々る複
合体の形成及び峡複合体上の酵素活性の測定は以下のよ
うにして行なった。すなわち、前記固相化抗体をクエン
酸緩衝液及び検体を含む容器、好オしくけ小型試験管中
に入れ、4〜40℃、好オしくけ37℃で、0.5〜1
6時間、好ましくけ1.5時間インキュベートする。そ
の彼、固相化抗体相(固相化抗体−抗原)を洗浄液で洗
浄後、酵素標識抗体を扁え、4〜40℃、好ましくは3
7℃で、0.5〜16時間、好ましくけ1時間インキュ
ベートする。その後、洗浄液で洗滲して、過刺のアルカ
リホスファターゼ標識抗体を洗い流す。この時、洗浄液
としては塩化マグネシウム、食塩、ツイーン(Twe・
n)20[登録商標]を含む洗浄液、食塩、塩化亜鉛を
含む洗浄液又は食塩、アルジミンを含む洗浄液等が挙げ
らねるが、塩化マグネシウム、食塩、ツイーン20を含
む洗浄液が好ましい。その後、基質液中に移し、4〜4
0℃、好ましくけ37℃で、0.5〜16時間、好壕し
くけ45分インキエペートした後、呈色液を加えて吸光
度を測定した。この時、基質液とし。
合体の形成及び峡複合体上の酵素活性の測定は以下のよ
うにして行なった。すなわち、前記固相化抗体をクエン
酸緩衝液及び検体を含む容器、好オしくけ小型試験管中
に入れ、4〜40℃、好オしくけ37℃で、0.5〜1
6時間、好ましくけ1.5時間インキュベートする。そ
の彼、固相化抗体相(固相化抗体−抗原)を洗浄液で洗
浄後、酵素標識抗体を扁え、4〜40℃、好ましくは3
7℃で、0.5〜16時間、好ましくけ1時間インキュ
ベートする。その後、洗浄液で洗滲して、過刺のアルカ
リホスファターゼ標識抗体を洗い流す。この時、洗浄液
としては塩化マグネシウム、食塩、ツイーン(Twe・
n)20[登録商標]を含む洗浄液、食塩、塩化亜鉛を
含む洗浄液又は食塩、アルジミンを含む洗浄液等が挙げ
らねるが、塩化マグネシウム、食塩、ツイーン20を含
む洗浄液が好ましい。その後、基質液中に移し、4〜4
0℃、好ましくけ37℃で、0.5〜16時間、好壕し
くけ45分インキエペートした後、呈色液を加えて吸光
度を測定した。この時、基質液とし。
ては、フェニルリン酸及び4−ア建ノアンチビリンを炭
酸緩衝液に溶解したものを用いたが、代わりにフェニル
リン酸及び4−アミノアンチビリンを水酸化ナトリウム
−ホウ酸緩衝液K11l解した本のを用いて奄よい。ま
え、呈色液としては、ホウ酸を含む7エリシアン化カリ
ウム**を用いたが、代わりKNつ素溶液を用いて亀よ
い。
酸緩衝液に溶解したものを用いたが、代わりにフェニル
リン酸及び4−アミノアンチビリンを水酸化ナトリウム
−ホウ酸緩衝液K11l解した本のを用いて奄よい。ま
え、呈色液としては、ホウ酸を含む7エリシアン化カリ
ウム**を用いたが、代わりKNつ素溶液を用いて亀よ
い。
本発明の一実施態様として、以下に示す測定キットを用
いる測定法が挙げられる。
いる測定法が挙げられる。
該測定キットは、次の(1)及び伽)の各試薬を構成要
素とし、 (1)抗ヒ)8P1抗体吸着ポリスチレン製担体(2)
アルカリホスファターゼ結合抗ヒト8P1抗体(酵素標
識抗体) 他に(3)〜―)が必要に応じて組み込まれている仁と
を特徴とする。
素とし、 (1)抗ヒ)8P1抗体吸着ポリスチレン製担体(2)
アルカリホスファターゼ結合抗ヒト8P1抗体(酵素標
識抗体) 他に(3)〜―)が必要に応じて組み込まれている仁と
を特徴とする。
(3)標準8P1
(4)酵素基質
(5)反応呈色液
(6)蛋白調整液
(7)反応用緩衝液
(8)洗浄液
錦記キットを用いて、患者の体液中の8F1を測定し、
従来の市販キラ) (8RID)と比較した。
従来の市販キラ) (8RID)と比較した。
その結果を、IIEI表に示す。
第1表
(単位二μf廁)
表から明らかなように1本発明の測定法は、従来の測定
法(8RID)K比し、はるかに高い感度 )を示し
た。
法(8RID)K比し、はるかに高い感度 )を示し
た。
次に1以下の纂2表に示す対象について、本発明の測定
法によシ、体液中e)8P1を測定した。
法によシ、体液中e)8P1を測定した。
その結果を第2表に示す。
1
表から明らかなように、本発f!oss定法及び測定試
薬は、妊娠診断、胎盤機能検査及び悪性腫瘍診断に有用
であることが判明した。
薬は、妊娠診断、胎盤機能検査及び悪性腫瘍診断に有用
であることが判明した。
以下、実施例によシ本発明をさらK[0KlK明する。
実施例
(A)試薬及び試薬液の調製
0抗8P1家兎IgG吸着担体の作成
ビーズ状(寸法、6.411v/WL)のポリスチレン
製担体を中性洗剤で洗浄後、数回水洗した後、抗8P1
家兎IgG画分1μb−〜50μf、〆―を含む0.0
5M炭酸緩衝液−9,6に4℃で一夜浸漬した。このポ
リスチレンビーズを0.01Mクエン酸緩衝液pH6,
8で洗浄後、o、innウシ血清アップオンB8A)を
含むクエン酸緩衝液に浸漬して2日経てから使用に供し
た。
製担体を中性洗剤で洗浄後、数回水洗した後、抗8P1
家兎IgG画分1μb−〜50μf、〆―を含む0.0
5M炭酸緩衝液−9,6に4℃で一夜浸漬した。このポ
リスチレンビーズを0.01Mクエン酸緩衝液pH6,
8で洗浄後、o、innウシ血清アップオンB8A)を
含むクエン酸緩衝液に浸漬して2日経てから使用に供し
た。
0アル力リホスフアターゼ結合抗8Pl家兎IgG複合
体の調製 仔つシ腸由来のアルカリホスファターゼ(べ一リンガー
)lvと抗8P1家兎IgG 2.5 *を0.05M
リン酸緩衝液−6,8に溶解し、1優グルタルアルデヒ
ド水溶液で架橋反応させる。室温で3時間放置後、前記
リン酸緩衝液と0.1 M ) +7スー塙酸緩衝液−
8,0の順に透析し、次にセルロファインGO−700
m (チッソ■)で分画、精製して酵素標識抗体を得た
。
体の調製 仔つシ腸由来のアルカリホスファターゼ(べ一リンガー
)lvと抗8P1家兎IgG 2.5 *を0.05M
リン酸緩衝液−6,8に溶解し、1優グルタルアルデヒ
ド水溶液で架橋反応させる。室温で3時間放置後、前記
リン酸緩衝液と0.1 M ) +7スー塙酸緩衝液−
8,0の順に透析し、次にセルロファインGO−700
m (チッソ■)で分画、精製して酵素標識抗体を得た
。
0固相に結合した酵素O活性測定用試薬と測定法フェニ
ルリン酸と4−ア建ノアンチビリンを0.1M11ml
lNItflNM 10.OK11ljl L&もOを
基質とし、反応呈色液はホウ酸を會む7エリシアン化カ
リウム溶液を用いた0反応生成物は分光光度針(gyv
a社、G11ford 8tasar−1) Kよl
、S OOruaでの吸光賓で測定した。
ルリン酸と4−ア建ノアンチビリンを0.1M11ml
lNItflNM 10.OK11ljl L&もOを
基質とし、反応呈色液はホウ酸を會む7エリシアン化カ
リウム溶液を用いた0反応生成物は分光光度針(gyv
a社、G11ford 8tasar−1) Kよl
、S OOruaでの吸光賓で測定した。
(B)測定操作と結果
抗8P1家兎l1IG吸着ポリスチレンビーズ1個を反
応用クエン酸緩衝液pH6,l I!00*jと検体5
0μmを含む小型試験管に入れ、一方、標準−線用には
反応用クエン酸緩衝液40G、$11と予め調製した8
P1標準液BOsl及び予め血清を一定濃度KfA*シ
た蛋白調整液100*jを含む小蓋試験管に入れ、それ
ぞれ37℃で1.5時間インキュベートした。その後、
ポリスチレンビーズを塩化マグネシウム、食塩、ツイー
ン20を會む洗浄液でl−ずつ2回洗浄し、アルカリホ
スファターゼ結合抗8P1家兎IgG複合体液400s
lを加え、37℃で1時間インキュベートした。その俵
、ポリスチレンビーズを洗浄液でl−ずつ2回洗浄し、
ポリスチレンビーズを基質液1ml含む小型試験管に移
し、37℃で45分インキエペートした後、1−の前記
呈色液を加えた。呈色した液の吸光度を波長500 a
mで試薬ブランクを対照にして測定し、図に示す標準−
線を得、検体中のSr1量を知つ九。図の結果から明ら
かなように、20〜1620nf/*の範囲の測定が可
能であることが認められた。
応用クエン酸緩衝液pH6,l I!00*jと検体5
0μmを含む小型試験管に入れ、一方、標準−線用には
反応用クエン酸緩衝液40G、$11と予め調製した8
P1標準液BOsl及び予め血清を一定濃度KfA*シ
た蛋白調整液100*jを含む小蓋試験管に入れ、それ
ぞれ37℃で1.5時間インキュベートした。その後、
ポリスチレンビーズを塩化マグネシウム、食塩、ツイー
ン20を會む洗浄液でl−ずつ2回洗浄し、アルカリホ
スファターゼ結合抗8P1家兎IgG複合体液400s
lを加え、37℃で1時間インキュベートした。その俵
、ポリスチレンビーズを洗浄液でl−ずつ2回洗浄し、
ポリスチレンビーズを基質液1ml含む小型試験管に移
し、37℃で45分インキエペートした後、1−の前記
呈色液を加えた。呈色した液の吸光度を波長500 a
mで試薬ブランクを対照にして測定し、図に示す標準−
線を得、検体中のSr1量を知つ九。図の結果から明ら
かなように、20〜1620nf/*の範囲の測定が可
能であることが認められた。
図は、本発明の測定法により作成し九8P1標準曲線を
示す図である。
示す図である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、 次に示す一連の1寝、すなわち、試料を、ヒト妊
娠特異性及び/又は異所性β、−グリコプロティンに4
11異的な固相化抗体Km触させる工程; 該固相化抗体相に該!1グリコプロティンに%異的なア
ルカリホス7アターイ標識抗体を接触させる工1; 過剰の該アルカリホス7アターイ標識抗体から該固相化
抗体相を分離すゐ工1; 該固相化抗体槽上のアルカリホスファターゼ活性を測定
する工程; からなることを*1とするヒト妊娠特異性及び/又は異
所性ムーグリ;プ■ティンO測定法。 2、 ヒト妊娠特異性及び/又は異所性It−グリコプ
ロティンに4I異的な固相化抗体。 3、 ヒト妊娠特異性及び/又は異所性!、−ダリコプ
ロテインに特異的な固相化抗体並びに該β1−グリコプ
ロティンに特異的なアルカリホスファターゼ標識抗体を
組み合わせる仁とを特徴とするヒト妊娠特異性汲び/又
は異所性β、−グリコプロティンの測定試薬。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2132882A JPS58139069A (ja) | 1982-02-15 | 1982-02-15 | 酵素免疫測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2132882A JPS58139069A (ja) | 1982-02-15 | 1982-02-15 | 酵素免疫測定法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS58139069A true JPS58139069A (ja) | 1983-08-18 |
Family
ID=12052067
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2132882A Pending JPS58139069A (ja) | 1982-02-15 | 1982-02-15 | 酵素免疫測定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS58139069A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2014163728A (ja) * | 2013-02-22 | 2014-09-08 | Toyobo Co Ltd | イムノアッセイ方法 |
-
1982
- 1982-02-15 JP JP2132882A patent/JPS58139069A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2014163728A (ja) * | 2013-02-22 | 2014-09-08 | Toyobo Co Ltd | イムノアッセイ方法 |
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