JPH11506775A - 医薬品の製造のためのスクアラミンの使用 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 ナトリウム／プロトン交換系（ＮＨＥ）の阻害剤として有用なアミノステロール化合物について記載する。ある特定のＮＨＥだけの阻害剤である化合物を使用する方法と、さらに種々のＮＨＥの阻害剤である化合物を使用する方法を含む、アミノステロール化合物を使用する方法についても記載する。化合物の治療活性を評価するための有利なスクリーニング法および検定法についても記載する。

Description

【発明の詳細な説明】 ＮＨＥを阻害する医薬品の製造のためのスクアラミンの使用 技術分野 本発明は、ナトリウム／プロトン交換体（ＮＨＥ）の阻害剤として有用なアミ ノステロール化合物に関する。本発明は、また、同化合物を含有する薬学的組成 物および同化合物のＮＨＥの阻害における用途に関する。本発明は、さらに、Ｎ ＨＥ阻害剤としての効果について、化合物をスクリーニングするための検定方法 に関する。 発明の背景 生体細胞の各々は、自身の酸塩基平衡を、より具体的には、自身の水素イオン 濃度またはプロトン濃度を維持しなければならない。水素イオン濃度がごくわず かに変化するだけでも、細胞中の化学反応の速度は、抑制されたり、加速された りと、顕著に変化する。広義的で一般的には、人が、水素イオン濃度が高いとき （アシドーシス）、その人は昏睡で死亡する可能性が高く、水素イオン濃度が低 いとき（アルカローシス）、この人はテタニーまたは痙攣で死亡することがある 。このような両極端の場合を通じて、関係する細胞および水素イオン濃度の経験 値に依存する疾患および症状は様々である。従って、水素イオン濃度を調節する ことは、ホメオスタシスの最も重要な局面の１つである。 水素イオン濃度を表す簡略な方法は、ｐＨ：ｐＨ＝log１/（Ｈ⁺濃度）＝−log （Ｈ⁺濃度）である。正常な細胞のｐＨは７．４であるが、７．０未満または７ ．７より大きいｐＨでは、人はほんの数時間しか生きられない。このように、ｐ Ｈの維持は生存するために重要である。 ｐＨ平衡を維持する機序にはいくつかある。例えば、静止期および構成期には 、細胞は、赤血球などの細胞を介してプロトン交換を行う機序として十分に検討 されている、塩素イオン/重炭酸イオン交換体を利用していると思われる。 また、マイトジェン、増殖因子、精子等によって誘発される加速増殖期には、 細胞は、別の細胞のしくみを利用して、緊急に対処しなければならない旺盛な代 謝を回転させる。これが、ナトリウム／プロトン（Ｎａ⁺/Ｈ⁺）交換体、”ＮＨ Ｅ”で、”対向輸送体”とも呼ばれる。ＮＨＥは多数の役割および多数の組織に おいて作用するので、生体はＮＨＥファミリーを発生させており、最近の研究は 、ある種の組織に局在し、種々の機能に関連するＮＨＥ”アイソフォーム”ファ ミリーについて解明している。以下に、最も重要と思われるＮＨＥアイソフォー ムを列挙する。 ＮＨＥ１は、ハウスキーピング交換体で、高血圧においては制御されないと考 えられ、細胞内ｐＨ調節に対して作用を発揮すると考えられ、また、この交換体 を管理することによって、虚血傷害から患者を予防するとも考えられている。 ＮＨＥ１は、遺伝的に糖尿病に関連があり、従って、ＮＨＥ１の阻害は、膵臓 のベータ細胞に対する影響を通して、糖尿病の進行を変化させることができる可 能性がある。また、グルコースに応答して生じる血管平滑筋細胞の増殖は、ＮＨ Ｅ１ａの発現の増加に関連がある。 ＮＨＥ１βは有核赤血球上に存在し、高濃度のアミロライドによって阻害され る。このＮＨＥアイソフォームは、ｃＡＭＰ依存的なアドレナリン様因子によっ てに調節される。 ＮＨＥ２は消化管および骨格筋の多数の細胞に関連がある。これを阻害するこ とによって、血管平滑筋肥厚または心肥大などの過形成状態または肥大状態の進 行を変化させることができると考えられる。横紋筋肉腫および平滑筋腫などの筋 原性癌は当然考慮されるべき治療対象である。 ＮＨＥ３は結腸に関連がある。以下に記載する研究は、内皮細胞に関連するも のであることを示している。これを阻害することによって、結腸の水交換などの 機能が影響を受けたり（腸の流体流束を増加させ、例えば、便秘の原因となる） 、結腸癌等が影響を受けるだろう。内皮細胞に対しては、この交換体を阻害する ことによって、正常な増殖が阻害されるだろう。 ＮＨＥ４は腎臓のある種の細胞に関連があり、細胞の容量調節に対して作用を 発揮すると思われる。これに対する特異的な阻害剤は腎機能に影響を及ぼし、高 血圧にの治療効果が期待される。 ＮＨＥ５はリンパ組織および脳細胞に関連がある。ＮＨＥ５を阻害することに よって、これらの細胞に関係する増殖性疾患を阻害するはずである。ＮＨＥ５は 、ＨＩＶ等のウィルス感染に応答して生じるグリア細胞の増殖に関与する有力物 質として可能性が高い。 上記するように、ＮＨＥは生体を援助するように作用するが、ＮＨＥ機能を阻 害することによって、多大な治療上の利点が得られるはずである。例えば、ＮＨ Ｅは通常では、細胞内ｐＨが所定の酸性値より低下したときのみ作用するが、増 殖因子によって刺激されると、細胞が”正常な”静止ｐＨで平衡を保っていても 、細胞のＮＨＥは機能を開始してしまう。結果として、ＮＨＥは、正常な状態で は不活性であるはずのｐＨで、細胞からプロトンをくみ出し始める。細胞は進行 的なプロトンの損失を受け、基本総緩衝能を増加させたり、場合によっては実際 にアルカリ化する。ポンプの作動が妨害されている状況では、増殖刺激によって も細胞は機能しない。従って、ＮＨＥファミリーの阻害物質は、増殖阻害作用を 発揮すると考えられる。 激しい酸性ストレス下、すなわち組織に酸素（または血液供給）が与えられな い状態では、ＮＨＥファミリーはその結果生じる回復不能な損傷に関与すると考 えられる。例えば、心臓に向かう血流が妨害されると、局所的なアシドーシスが 生じる。心筋細胞は根本的な内部酸性化を生じる。この酸性化は休眠中のＮＨＥ を活性化する。これらの交換体は細胞から容易にプロトンを排出し、ナトリウム と交換する。結果として、細胞内ナトリウム濃度が上昇する。続いて、ナトリウ ム−カルシウム交換体が活性化され、内部のナトリウムと外部のカルシウムを交 換する。内部のＣａ⁺濃度が上昇すると、細胞死、収縮性の低下および不整脈が 生じる。従って、虚血後心筋障害およびそれに伴う不整脈はＮＨＥ依存性機序に よって生じると考えられ、従って、このＮＨＥを阻害することによってこのよう な障害の発生が予防されるはずである。ＮＨＥがＮａの内在化を阻害し、ｐＨ値 低下の結果として代謝活性を低下させると、細胞の障害は避けられると考えられ る。このように、心臓虚血に対して用いられるＮＨＥ阻害剤の開発に関心が高ま っている。 ＮＨＥファミリーの他の構成要素は、上皮表面の水およびナトリウムの輸送に 対して典型的な作用を発揮すると思われる。特に、結腸に見られるＮＨＥ３アイ ソフォームは、結腸内腔の流体量を調節する役割を担うと考えられる。このポン プは下痢症例では阻害されている。腎臓の近位尿細管に存在するＮＨＥ３アイソ フォームは、腎臓の酸塩類交換に関しては同様の機能を発揮すると考えられる。 従って、ＮＨＥファミリーの阻害剤は、高血圧治療のための治療剤として認めら れている。 ＮＨＥ作用の阻害に関して予測される真価から、科学者はＮＨＥ阻害剤を探し 出した。最も広範に研究されたＮＨＥ阻害剤は、利尿薬として臨床上使用される グアニジン修飾ピラジンであるアミロライドである。種々のアルキル置換基を導 入することによって、多数の誘導体が作られた。これらの誘導体は、周知の阻害 剤がないＮＨＥ５を除いて、周知で、上記したＮＨＥアイソフォームとともに研 究されている。 特定の交換体に対する阻害剤の活性が、すでに測定されている。以下の表Ａか らわかるように、各交換体は各阻害剤に対して種々の応答スペクトルを示す： コウニロン（Ｃｏｕｎｉｌｌｏｎ）らが記載したＮＨＥ阻害剤は、ＮＨＥ１に 対する特異性を示す。従って、このアイソフォームの阻害が有用である症状の治 療に用いられる。しかしながら、これらの阻害剤は他の周知のＮＨＥアイソフォ ームを標的にしていない、例えば、ＮＨＥ３は影響されない。 以下に説明するように、ＮＨＥ３は内皮細胞上で発現しており、これを阻害す ることによって、抗血管形成作用が生じる。本発明によるアミノステロール化合 物によって阻害されるＮＨＥアイソフォームの種類は、アミロライドまたはコウ ニロン（Ｃｏｕｎｉｌｌｏｎ）らの化合物によって阻害されるものとは異なり、 また異なった薬理作用を有する。 また、コウニロン（Ｃｏｕｎｉｌｌｏｎ）らは、ある種のベンゾイルグアニジ ン誘導体が他のＮＨＥアイソフォームを阻害することも報告した。特に、（３− メチルスルホニル−４−ピペリジノベンゾイル）グアニジンメタンスルホネート は、以下の表に示すように、ＮＨＥ１に対する特に選択性を示す。 アミロライドの化学構造に基本骨格とするこれらのベンゾイルグアニジン化合 物は、ＮＨＥ１の阻害には極めて大きな特異性を示すが、ＮＨＥ２およびＮＨＥ ３に対してもかなりの活性を保持している。広範に分布する”ハウスキーピング ”アイソフォームである、ＮＨＥ１の薬学的阻害を達成すると、ＮＨＥ２および ＮＨＥ３の好ましくない不活性化が生じると考えられる。 従って、当業者は、単一の特定のＮＨＥに対する選択的な作用を示すＮＨＥ阻 害剤の探求を続けている。このような阻害剤は、組織の増殖に対するＮＨＥの影 響を妨害することによって、より正確に組織を阻害し得るだろう。 従って、研究者は、種々のＮＨＥに特異的な阻害剤を開発することは、不整脈 の治療、心筋梗塞の治療および予防、狭心症および心臓の虚血性疾患の治療およ び予防、末梢および中枢神経系の虚血性疾患の治療および予防、末梢器官および 四肢の虚血性疾患の治療および予防、ショックの治療、抗動脈硬化剤の供給、糖 尿病合併症の治療、癌の治療、肺、肝臓および腎臓の繊維症を含む繊維性疾患の 治療および前立腺肥大の治療を含む疾患および症状を有する患者の総括的な新規 な治療法の開発を可能にすると考えている。他の治療対象には、ＨＩＶ、ＨＰＶ およびＨＳＶなどのウィルス疾患の治療、悪性腫瘍の予防、糖尿病（すなわち、 膵島細胞傷害）の予防、糖尿病の血管合併症の予防、例えば黄斑変性、リウマチ 性関節炎、乾癬、癌、悪性血管腫等の異常な血管新生疾患の治療、血管再狭窄の 予防、高血圧関連血管障害の予防、免疫抑制および膠原性血管疾患の治療が挙げ られる。 細菌、真菌および原生動物のＮＨＥに対する阻害剤も、特異的な抗菌剤として 有用であると考えられる。全ての生細胞が一種または別種のＮＨＥを使用して、 細胞内のＮａ⁺およびｐＨのホメオスタシスを維持していることは周知である。 ＮＨＥは多数の細菌および真菌からクローニングされており、ほ乳類のアイソフ ォームと一部配列相同性を有する。標的物質として特定の細菌または真菌のＮＨ Ｅを使用して、ほ乳類のアイソフォームに対して、特に有利で、または活性を持 たないような交換体に対する特異性が高い阻害剤を開発するできるはずである。 このような化合物は、異なる機序を有する抗生物質として有用であるだろう。 このように、当該技術分野において、ＮＨＥの特異的な阻害剤が必要である。 さらに、種々の治療的用途のためのＮＨＥ阻害剤を開発することが必要である。 発明の概要 本発明は、種々のＮＨＥを阻害する種々のアミノステロール化合物を提供する ことによって、当該技術分野の需要を満たすものである。本発明は、ＮＨＥに阻 害剤用を示すアミノステロール化合物および同化合物を含有する組成物に関する 。 このように、本発明は、ＮＨＥの阻害剤として有用な、化合物ＦＸ１Ａ、化合 物ＦＸ１Ｂ、化合物１３６０、化合物１３６１、化合物３７１、化合物１４３７ および化合物３５３などの、新規に単離および合成されたアミノステロール化合 物に関する。これらのステロイド化合物の中には、種々のＮＨＥを阻害すること が見いだされているものもあれば、単一の特定のＮＨＥを有利に阻害することが 見いだされているものもある。 さらに、本発明は、本発明の化合物を使用する薬学的用途および治療方法に関 する。本発明は、また、過去に単離され、その特徴が解明されている、スクアラ ミンに関する新規な用途に関する。 また、本発明は、化合物の治療効果を評価するために有利なスクリーニング方 法に関する。特に、ＮＨＥ阻害作用および治療的効果に関して化合物をスクリー ニングするための便利な方法であることが見いだされているオタマジャクシ検定 法が開発された。 本発明の特に好ましい化合物は、化合物１４３６（または、その薬学的に許容 される塩）である。本発明は、有効量のこの化合物および薬学的に許容される賦 形剤または担体とを含む薬学的組成物に関する。本発明は、さらに、有効量の化 合物１４３６を投与することを含む、細胞の増殖を阻害する方法、特に、細胞が 悪性細胞、血管平滑筋細胞、気管支平滑筋細胞、繊維芽細胞、リンパ球またはリ ンパ組織、筋肉、骨、軟骨、上皮、造血組織または神経組織である同方法に関す る。さらに、本発明は、有効量の化合物１４３６とスクアラミンとを組み合わせ て投与することを含む、細胞の増殖を阻害する方法に関する。本発明は、また、 有効量の化合物１４３６を投与することを含む、リンパ球の増殖を阻害すること によって、免疫系を抑制する方法に関する。また、本発明は、有効量の化合物１ ４３６を投与することを含む、脊椎動物の成長の抑制に関する。本発明は、また 、有効量の化合物１４３６のを投与することを含む、ウィルス標的細胞の増殖を 抑制することによるウィルス感染症の治療に関する。有効量の化合物１４３６を 投与することを含む、動脈圧を制御する方法も好ましい。また、本発明は、有効 量の化合物１４３６を投与することを含む、心筋虚血を予防する方法に関する。 本発明は、また、有効量の化合物１４３６を投与することを含む、移植臓器を維 持する方法に関する。さらに、本発明は、有効量の化合物１４３６を投与するこ とを含む、細菌、ウィルス、真菌および原生動物などの微生物因子によって生じ る感染症を治療する方法に関する。本発明は、また、ＮＨＥを阻害するために有 効量のこの化合物を投与することに関する。 本発明は、また、有効量のスクアラミン（または、その薬学的に許容される塩 ）を投与することを含む、ＮＨＥ３を阻害する方法、好ましくは、病状進行過程 において発現されるこのＮＨＥアイソフォームを特異的に阻害する方法に関する 。本発明による別の方法は、有効量のスクアラミンを投与することを含む、内皮 細胞、特に新しい毛細血管の内皮細胞の増殖を阻害することに関する。 本発明は、また、（ｉ）検定する対象化合物を含有する水溶液（例えば、１０ μｇ/ｍｌの濃度）を調製し、（ｉｉ）該溶液中にオタマジャクシを入れ、（ｉ ｉｉ）少なくとも一時間間隔後に（例えば、約１時間）顕微鏡下で該オタマジャ クシ（例えば、尾および/または四肢）を観察する工程を含む、オタマジャクシ 検定法を実施することを含む、ＮＨＥ阻害活性または抗血管形成活性に関して化 合物を評価する方法に関する。好ましくは、オタマジャクシはアフリカツメカエ ルのオタマジャクシで、さらに好ましくは発生段階５９〜６０のアフリカツメカ エルのオタマジャクシである。同検定法は、単独で、または別の検定法、例えば 、ヒナ漿尿膜検定法および/またはヒナ胚卵黄毛細血管退行検定法と組み合わせ て行ってもよい。 他の態様、目的および利点は、本発明の好ましい特徴および実施態様を添付の 図面と併せて示した、以下の詳細な開示から明らかになる。 図面の簡単な説明 図１Ａおよび１Ｂは、ウサギのナトリウム／プロトン交換体アイソフォーム３ （ＮＨＥ３）の、スクアラミンによる阻害作用を示す。図１Ａは、４０ｍＭ Ｎ Ｈ₄Ｃｌに接触させることによって酸を予め負荷した細胞に関して、細胞外ナト リウムイオン濃度の回復（ｘ軸）の関数としてｐＨ回復速度（ｙ軸）をプロット したもので、”＋”印の曲線は対照（薬剤無添加）を示し、”ΔＷ”印の曲線は スクアラミンを示す。図１Ｂは、酸を予め負荷しなかった細胞に関して、５μｇ /ｍｌのスクアラミンの添加後の時間（ｘ軸）の関数として、実際の内部ｐＨ（ ｙ軸）を示す。 図２Ａは、ウサギのナトリウム／プロトン交換体アイソフォーム１（ＮＨＥ１ ）の、スクアラミンによる阻害作用の欠失を示す。図２Ｂは、ヒトＮＨＥ１の、 スクアラミンによる阻害作用の欠失を示す。内部ｐＨ対時間のこれらプロットに おいて、”ｏ”印の曲線はスクアラミンを示し、”＋”印のものは対照（スクア ラミンを添加しないでインキュベートした細胞）を示す。 図３Ａ、３Ｂおよび３Ｃは、内皮細胞が他の膜作用剤よりスクアラミンに対す る感受性が大きいこと（ｘ軸の３より大きい側の棒グラフ）、および内皮細胞は 、上皮細胞および繊維芽細胞より、スクアラミンに対する感受性が大きいことを 示す。図３Ａは、ウシの肺内皮細胞に対する１μｇ/ｍｌの本発明の薬剤の投与 を示すが、図３Ｂおよび３Ｃは、それぞれ、ヒト上皮細胞およびヒト包皮繊維芽 細胞に対する１０μｇ/ｍｌの膜作用剤の投与を示す。 図４Ａ、４Ｂおよび４Ｃは、スクアラミンの皮下投与、腹腔内投与および経口 投与によるマウスメラノーマの増殖の抑制作用を示したものである。 図５は、種々の用量（”ｏ”＝１０ｍｇ/ｋｇ/ｄ、”＋”＝２０ｍｇ/ｋｇ/ｄ 、”ｏ”＝４０ｍｇ/ｋｇ/ｄ；ｄ＝日）のスクアラミンによる、免疫寛容（ＲＡ Ｇ−１）マウスにおけるヒトメラノーマ１２０５Ｌｕの増殖の抑制を示す。 図６は、化合物３１９の腹腔内投与による、マウスにおけるマウスメラノーマ の抑制を示す。 図７は、マウスＩＶ ＰＫ試験で得られた、化合物３１９の薬物動態学的クリ アランスを示す。 図８は、マウスＩＶ ＰＫ試験で得られたスクアラミンの薬物動態学的クリア ランスを示す。 図９は、ツノザメの肝臓由来のアミノステロールのＨＰＬＣパターンであり、 これらの化合物の多様性を示す。 図１０は、ＮＨＥ３に対する化合物１４３６の阻害作用を示す。 図１１は、Ｌ１２１０白血病を有するマウスにおける、生存率に対する化合物 １４３６の効果を示す。 図１２は、スクアラミンと化合物１４３６とは、マウスのマウスメラノーマの 増殖の抑制に対して相乗作用を発揮することを示す。 図１３および１４は、化合物１４３６（図１３）およびスクアラミン（図１４ ）による、インビトロでのヒト冠動脈平滑筋の増殖の抑制を、濃度（μｇ/ｍｌ ）に対して吸光度をプロットして示したものである。 図１５は、図１４Ａおよび１４Ｂに示したデータの拡大図で、化合物１４３６ およびスクアラミンは共にインビトロにおいて、ヒト冠動脈平滑筋の増殖を抑制 することを証明している。 図１６は、化合物１４３６がマウスの成長を用量依存的に抑制することを示す 。 図１７Ａおよぼ１７Ｂは、ヒトメラノーマに対する化合物３５３およびスクア ラミンの効果を示す。 詳細な説明 アミノステロール化合物の合成 スクアラミンとして周知なステロイドは、ザスロフ（Ｚａｓｌｏｆｆ）らに付 与された米国特許第５，１９２，７５６号の主題であり、その開示内容は参照と して本明細書に含まれる。この化合物は、細菌、真菌および原生動物を死滅させ る広い抗菌スペクトルを有する抗生物質である。スクアラミン、化合物１２５６ の全立体化学を以下に示す。スクアラミンの全化学合成は１９９４年に報告され た。 実施例１ サメ肝臓単離物の調製 スクアラミンに加えて、少なくとも１０種類のあきらかに異なるアミノステロ ール化合物をツノザメの肝臓の抽出物から回収した。アミノステロール化合物を 調製するために、サメの肝臓をメタノール：酢酸で抽出した。水性抽出物をｃ１ ８シリカに吸着させ、７０％アセトニトリルで溶出し、溶出物をＳＰセファデッ クスに吸着させ、１．５Ｍ ＮａＣｌで溶出した。溶出物を５Ｍ ＮａＣｌで調 整して、ステロイドを塩析させた。沈殿物をセライト（Ｃｅｌｉｔｅ）で濾過し 、熱湯、次いでメタノールで溶出した。溶出物は容量を少なくして、１インチの Ｃ１８カラムに供し、アセトニトリルの濃度勾配を徐々に上げ、クロマトグラフ ィーを行った。画分を採取し、蒸発によって濃縮し、薄層クロマトグラフィー（ ＴＬＣ）で別々に分析をした。 サメの肝臓４０ｋｇから単離されたアミノステロール化合物のＨＰＬＣパター ンを第９図に示す。モール（Ｍｏｏｒｅ）らの、プロシーディング ナチュラル アカデミック サイエンス（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．）、１９ ９３年、９０巻、１３５４〜１３５８ページに記載されているように、最終的な ＨＰＬＣ精製を実施した。ＨＰＬＣ画分は、シリカ薄層クロマトグラフィー（６ ：３：１ ＣＨ₂Ｃｌ₂：ＭｅＯＨ：ＮＨ₄ＯＨ）でそれぞれ展開し、ヨウ素蒸気中 で可視化した。画分４０は、溶出パターンの中でもより親水性部分を示し、画分 ６６はより疎水性部分を示す。 スクアラミンは、画分６２付近から溶出が始まり、画分８０まで続いた。また 、他のステロイドは、以下の表１に示すように、画分４３〜４７（Ｒ_f８２）、 ５３〜５５（Ｒ_f１．０２）、５６〜５９（Ｒ_f０．５１）、５７〜６２（Ｒ_f０ ．９６）、６０〜６４（Ｒ_f０．４７）および６１〜６６（Ｒ_f１．０６）の間で 溶出されるのが観察された。 これらの化合物の一部の構造を以下に示す。 これらの化合物の各々は、以下に示すように単離、精製、物性値の測定、ＮＭ Ｒによる構造決定を行った。化合物１３６０ 分取Ｃ１８ＲＰ−ＨＰＬＣによる画分２の主要ステロイドであるこの化合物は 、ＮａＣｌの増加濃度勾配で溶出させるスルホエチルアスパルトアミドＨＰＬＣ を使用した強陽イオン交換によって精製した。ステロイド画分は、シリカＴＬＣ をＣＨ₂Ｃｌ₂：ＣＨ₃ＯＨ：ＮＨ₄ＯＨ（６：３：１）で展開し、ヨウ素で可視化 して、検定した。次いで、ステロイド画分を集めて、０．１％ＴＦＡ水溶液中Ｃ Ｈ₃ＣＮを増加濃度勾配で、Ｃ１８ＲＰ−ＨＰＬＣで再びクロマトグラフィーを 行った。精製した化合物のＴＬＣ分析では、単一のスポットを示し、スクアラミ ン（Ｒ_fスクアラミン＝１．０）に対してＲ_f＝１．０２であった。 化合物１３６０の次の単離物については、強陽イオン交換クロマトグラフィー を実施しなかった。その代わり、分取Ｃ１８ ＲＰ−ＨＰＬＣにより集めた画分 を、軽度なＣＨ₃ＣＮ濃度勾配を使用したＣ１８またはＣ８ＲＰ−ＨＰＬＣに供 した。画分は、ＴＬＣおよびＤ₂Ｏに溶解した試料について¹Ｈ−ＮＭＲで検定し た。 ＦＡＢ−ＭＳで分析したとき、化合物は、典型的に、陽イオンモードにおいて 、６４２．５ダルトンに非常に弱い（Ｍ＋Ｈ）＋信号と、５６２．５ダルトンに 強力なフラグメントとを示した。陰イオンＦＡＢ−ＭＳにおいて、６４０．４ダ ルトンに（Ｍ−Ｈ）−が観察された。続いて実施した、エレクトロスプレイイオ ン化（ＥＳＩ−ＭＳ）分析は、多くのＴＦＡ付加物が付いた親分子の質量６４１ ．４に一致する強力な（Ｍ＋Ｈ）＋信号および（Ｍ−Ｈ）−信号を示した。これ は、化合物１３６０の硫酸塩の不安定性はＦＡＢ条件下ではさらに顕著になるこ とを示唆している。 ＦＡＢ陽イオンモードにおける親分子イオンは強度が非常に弱いので、正確な 質量の測定は脱硫フラグメントについて実施した。正確な質量５６１．４９３２ ５が観察された。次いで、ＳＯ_4-の質量を加えることによって、分子式Ｃ₃₄Ｈ₆₃ Ｎ₃Ｏ₆Ｓに相当する、親分子の正確な質量６４１．４９が算出された。スクアラ ミン（Ｃ₃₄Ｈ₆₅Ｎ₃Ｏ₅Ｓ）と比較して、酸素原子が１個多く、水素原子が２個少 ないこの分子式は、カルボニル基を有する化合物であることを示している。 Ｄ₂Ｏに溶解した化合物の¹Ｈ−ＮＭＲ（３００ＭＨｚ）は、スクアラミンと識 別できるいくつかの特徴を示した。化合物１３６０については、Δ＝４．１５ｐ ｐｍで共鳴が出現する最低磁場は、２個のプロトンからなる積分値をもつ少なく とも７シグナルからなる分裂パターンを示した。スクアラミンについては、Δ＝ ４．２ｐｐｍでの低磁場での共鳴は硫酸位置（Ｈ２４）で、１個のプロトンから なる積分値をもつ５シグナルからなる多重線が３００ＭＨｚで出現した。２．６ ｐｐｍでは、化合物１３６０も２個のプロトンによる分解能の悪い多重線を示し た。文献と比較すると、これらの共鳴はカルボニル基のα位のメチレンプロトン によると思われる。スクアラミンでは、２．２〜２．７５の領域は共鳴を示さな かった。化合物１３６０は２個のはっきりしたメチル二重線、１つは０．９５ｐ ｐｍに、もう１つは１．１ｐｐｍに示された。これは、３個のメチル基が０．９ 〜１．０５ｐｐｍの領域において重なった二重線として分裂するスクアラミンと は異なる。他の共鳴の特徴は、２種のステロイドでは極めて似通っていた。高磁 場メチル領域では、化合物１３６０とスクアラミンは共に、それぞれ０．８５お よび０．６５ｐｐｍに、１９位および１８位の分解能の悪い一重線メチルシグナ ルを示した。ステロイド核（１．０〜２．１ｐｐｍ）およびスペルミジン由来の 共鳴も、化合物１３６０およびスクアラミンでは同じ特徴的パターンを示した。 環のアルコール位のＨ７は、Ｄ₂Ｏに溶解した両ステロイドにおいて、３．８５ ｐｐｍに共鳴を示した。 Ｄ₂Ｏ中で実施したＣＯＳＹ（ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐ ｙ）スペクトル（３００ＭＨｚ）によって、２７位の硫酸、−ＣＨ₂ＯＳＯ₃−が 確定した。２次元（２Ｄ）プロット中の特徴的なクロスピークパターンは、Δ＝ １．１の二重線ピークは２６位のメチルであり、３．０５ｐｐｍでは２５位のＨ と相関関係があり（ポリアミンの共鳴によって隠蔽されている）、４．１５ｐｐ ｍでは複雑な多重線に最接近していたことを示した。 ２Ｄマップのポリアミン領域は、スペルミジンの分裂パターンに一致し、化合 物１３６０はスクアラミンと同じポリアミンを持つことを確認した。しかし、Ｄ₂ Ｏ中の２Ｄマップは、特にステロイド核領域において多数のクロスピーク信号 が出現せず、完全な一次構造を確定することができなかった。 化合物１３６０を真空下で乾燥し、窒素中でＤＭＳＯ−ｄ６に溶解し、次いで 、凍結融解ポンプを反復させて窒素下で密封した。３００ＭＨｚおよび６００Ｍ ＨｚでＩＤおよび２Ｄ¹Ｈ−ＮＭＲスペクトル分析を実施した。ＤＭＳＯ中の化 合物のプロトン共鳴は全て分解能がよく(ポリアミン領域（２．８〜３．１）を 除いて)、Ｄ₂Ｏ中の帰属方向にシフトした。例えば、２７位の多重線は高磁場の ３．７７ｐｐｍにシフトし、Ｈ７プロトンは３．６ｐｐｍにシフトした。また、 新たな二重線シグナル（１Ｈ分の積分値）が４．１７ｐｐｍに出現した。この新 たな共鳴は、Ｈ７と２Ｄとの相関性に基づき、７位のヒドロキシルであると同定 されたが、これは６００Ｍｈｚではあきらかであった。Ｄ₂Ｏ中では溶媒と速や かに交換してしまうために、この共鳴は観察されなかった。ＤＭＳＯ中の化合物 １３６０のＤ２マップにおいて、最初にＤ₂Ｏ中で２Ｄ ＣＯＳＹマップから推 定された２７位の硫酸基の位置が再確認された。 化合物１３６０およびスクアラミンの２Ｄ ＣＯＳＹマップを注意深く比較す ることによって、２４位にカルボニル基が存在することが示唆された。２プロト ン分の積分値を有する２．５ｐｐｍ（Ｄ₂Ｏ中では２．６ｐｐｍ）に中心をもつ 多重線は、Ｈ２３ａ，ｂ（２４位のカルボニル基のα位に位置する）と同定され 、Ｈ２２ａ，ｂと最も近い位置で相関関係がある強力なクロスピークを示した。 総相関分光分析（ｔｏｔａｌ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐ ｙ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ(ＴＯＣＳＹ)）では、ステロイドのピークテールに沿 って磁気が伝搬することによって、新たなクロスピークがＨ２２/Ｈ２１として 識別できた。２３位から２４位へ、さらに２４位から２５位へ磁気を伝搬させる シグナルは、２Ｄ ＣＯＳＹおよびＴＯＣＳＹではあきらかに消失していた。２ ２−２３−２４−２５−２６/２７に関して最も近い位置のクロスピークを示す スクアラミンのＣＯＳＹとは異なり、化合物１３６０は相関が妨害されているこ とを示し、これは２４位の官能基がプロトンシグナルの移動を妨害したことを示 唆している。しかしながら、２４位のアルコールから２１〜２６および２７位に よる全てのプロトン相関を予測できるので、Ｃ＝Ｏをアルコールに還元すること によって構造をあきらかにすることができる。 ＤＭＳＯ中の化合物１３６０の¹³Ｃ−ＮＭＲは、３４位の炭素シグナルを示し た。スクアラミンと比較して、化合物１３６０は２１２ｐｐｍに１個のカルボニ ル基を有する(Ｃ２４)。Ｃ２７は、硫酸スキムノール（ｓｃｙｍｎｏｌ ｓｕｌ ｆａｔｅ）について報告された値に一致して、６７ｐｐｍで共鳴した。化合物１３６１ 化合物１３６１は２種類の方法でサメの肝臓の調製物から単離された：第１に は、化合物１３６０の分解産物として、；次いで、分取Ｃ１８ＲＰ−ＨＰＬＣに おいて、スクアラミンよりわずかに速い保持時間で分画される少量のアミノステ ロール成分（画分ＶＩ成分）としてである。各アミノステロールを均一になるよ うに精製するための早期の試みにおいて、Ｃ１８ＲＰ−ＨＰＬＣで収集した画分 について、ＣＨ₂Ｃｌ₂：ＣＨ₃ＯＨ：ＮＨ₄ＯＨ６：３：１を用いたシリカゲルフ ラッシュクロマトグラフィーを実施し、アミノステロールをＴＬＣプレート上で 検定した。収集した遊離塩基性ステロイドについては、分析用カラムを使用して Ｃ１８ＲＰ−ＨＰＬＣを再度実施した。ＲＰ−ＨＰＬＣ溶出パターンは、２種類 の主要ステロイド、すなわち、化合物１３６０および高濃度のＣＨ₃ＣＮで溶出 するより疎水性のステロイドを示した。化合物１３６０の２７位の硫酸基は不安 定なので、あきらかに塩基触媒脱離によって、化合物１３６１が形成される。 Ｄ₂Ｏ中の化合物１３６１の¹Ｈスペクトルの明白な特徴には、硫酸塩を有する ２７位のメチレンプロトンに相当するΔ＝４．１５ｐｐｍに多重線が消失してい ることがあった。Ｄ₂Ｏ中でΔ＝５．９５および６．１５の２個の新たな一重線 プロトンは、各々がＨ１個分の積分値を有し、ビニルプロトンと同定された。ま た、化合物１３６０のΔ＝０．９０のメチル二重線とは異なり、新たなステロイ ドは、アリルメチルの特徴を示す、Δ＝１．８ｐｐｍに一重線メチルを示した。 ビニル基およびアリルメチルの化学シフトは、文献の値と比較して矛盾がない。 にもかかわらず、¹Ｈスペクトルは、２４位のカルボニル基のα位に、Δ２．７ ５ｐｐｍのメチレンシグナルが存在することを含む、化合物１３６０の特徴を示 した。ポリアミン領域は、スクアラミンと同様の分裂パターンを示し、スペルミ ジン付加を確認した。 正確な質量である５４３．４８２３はＦＡＢ−ＭＳ（陽イオンモード）によっ て測定した。分子式Ｃ₃₄Ｈ₆₁Ｎ₃Ｏ₂は、計算値が５４３．４８４２で、実験で観 察された値とよく一致した。化合物１３６１のこの分子式は、親分子、化合物１ ３６０から硫酸が脱離したものと一致する。さらに、化合物１３６１の分子式は 、二重結合当量（ｄｏｕｂｌｅ ｂｏｎｄ ｅｑｕｉｖａｌｅｎｔ(ＤＢＥ)）は ５．５で、これと比較して化合物１３６０は５．０で、化合物１２５６は４．０ であった；このＤＢＥ値は化合物１３６１の付加不飽和に一致する。化合物１４３６ この化合物および以下に記載するステロイドは、分取Ｃ１８ＲＰ−ＨＰＬＣで 得られた画分を軽度なＣＨ₃ＣＮ濃度勾配条件下で、小型のＣ１８カラムに用い て精製した。化合物１３６０および１３６１を精製する際には、強陽イオン交換 クロマトグラフィー、シリカゲル（ＳＧ）フラッシュクロマトグラフィー、次い でＲＰ−ＨＰＬＣを使用したが、ｐＨが不安定であると認められるときには、こ れらの実験計画を適用でしなかった。 化合物１４３６は、Ｃ１８ＲＰ−ＨＰＬＣにおいて、スクアラミンよりわずか に速い保持時間で溶出されるが、ＴＬＣ上のＲ_f＝０．４７は、アルカリ条件下 ではスクアラミンよりかなり極性が大きい化学構造を有することを示唆している (ＣＨ₂Ｃｌ₂：ＣＨ₃ＯＨ：ＮＨ₄ＯＨ６：３：１)。 Ｄ₂Ｏ中での¹Ｈ−ＮＭＲスペクトル（４００ＭＨｚ）では、スクアラミンとは 異なるポリアミン領域を示した。分裂パターンおよび積分値は共にスペルミジン よりスペルミン、すなわち、Ｎ−（３−アミノプロピル）−１，４−ブタンジア ミンよりもＮ，Ｎ’−ビス−３−アミノプロピル−１，４−ブタン−ジアミンに 類似している。にもかかわらず、¹Ｈスペクトルはスクアラミンと同一であるよ うに思われた：すなわち、２４硫酸位のΔ＝４．１５にプロトン１個、；Ｈ７ア ルコール環位置に相当するΔ＝３．８５にプロトン１個、；メチル２１およびメ チル２６および２７に相当する、０．８５〜０．９５ｐｐｍに重なり合った３個 の二重線を示した。スペルミンの同定は、Ｄ₂Ｏ中でＣＯＳＹを実施し、クロス ピークパターンをＤ₂Ｏ中のスクアラミンと同様、スペルミン（Ｃ₁₀Ｈ₂₆Ｎ₄）お よびスペルミジン（Ｃ₇Ｈ₁₉Ｎ₃）の標品と比較することによって確認された。ア ミノステロールのＣＯＳＹスペクトルは、一般に、Ｄ₂Ｏ中ではクロスピークの 完全な２次元マップを与えず、従って、最も近い位置の完全な帰属を利用するこ とができないが、ポリアミン領域は、スペルミジンとスペルミンとを識別するた めの信頼性のあるシグナルパターンとして用いられた完全なオフダイアゴナル（ ｏｆｆ−ｄｉａｇｏｎａｌ）クロスピークを示した。 化合物１４３６の¹³Ｃスペクトルは、Ｄ₂Ｏ中でさらに３個のシグナルを示し たが、ステロイドの炭素骨格はＤ₂Ｏ中ではスクアラミンと同じであった。ＤＥ ＰＴ−１３５（ｄｉｓｔｏｎｉｏｎｌｅｓｓ ｅｎｈａｎｃｅｄ ｐｏｌａｒｉ ｚａｔｉｏｎ ｔｒａｎｓｆｅｒ）を、メチルシグナルおよびメチンシグナルが 正のシグナルとなるように、メチレン基が負のシグナルになるように、第４級炭 素の強度が０になるように実施した。化合物のＤＥＰＴ−１３５により、これら ３個の追加シグナルがメチレン（負）であることが明らかになった。 Ｃ₃₇Ｈ₇₂Ｎ₄Ｏ₅Ｓの分子式は、計算値が６８４．５３０１７であり、高分解能 ＦＡＢ−ＭＳ（陽イオンモード）によって測定した実測値６８４．５２１６とよ く一致した。質量の追加分５８ダルトン（６８４．５とスクアラミンの６２７． ５の差）は、スペルミンによって挿入された３−アミノプロピル基の存在と一致 する。さらに、親イオンの偶数の質量数は、窒素数が偶数である化合物を予測す る窒素則に一致する。ＦＡＢ−ＭＳはまた、６８５ａｍｕ（ａｔｏｍｉｃ ｍａ ｓｓ ｕｎｉｔｓ）では（Ｍ＋Ｈ）＋親分子より小さい、８０および９８質量単 位の種への断片化した。これらの断片は、硫酸の消失に次いで脱水が生じたこと を示しており、ＦＡＢ−ＭＳ条件下でのスクアラミンの構造が不安定であること と一致する。 化合物１４３６は、以下の反応式によって化合物１２５６（スクアラミン）か らも合成された： 無水メタノール８００μｌにスクアラミン（ＴＦＡ塩）９５ｍｇ（０．１０６ ｍｍｏｌ）を溶解したものを丸底フラスコに入れた。この混合物に、トリエチル アミン１１８μｌ（０．８４８ｍｍｏｌ）を添加し、次いで、希釈したアクリロ ニトリル溶液（７０μｌのアクリロニトリルをメタノールで１０００μｌに希釈 した）１００μｌを添加した。６時間後、希釈したアクリロニトリル溶液４０μ ｌ（０．０４２ｍｍｏｌ）をさらに添加した。２４時間後、ＴＬＣにおいて、出 発物質と、Ｒ_f＝０．７（スクアラミンはＲ_f＝０．５）の生成物の存在が示され た。反応を停止し、フラッシュクロマトグラフィー（１２：３：１から６：３： １、ＣＨ₂Ｃｌ₂：ＭｅＯＨ：ＮＨ₄ＯＨ）によって生成物を単離した。 得られた生成物は、ＴＬＣでは単一スポットであったが、ＮＭＲスペクトルで は混合物であると思われた。得られた生成物と、ラニーニッケル１０ｍｇ、水酸 化ナトリウム７．３ｍｇおよび無水エタノール５ｍｌと水素化用フラスコに添加 し、４０ｐｓｉで、１７時間水素化した。これにより、標品より低い位置にスポ ットして行ったＴＬＣ上で、分離可能な（フラッシュクロマトグラフィー、６： ３：１、ＣＨ₂Ｃｌ₂：ＭｅＯＨ：ＮＨ₄ＯＨ）２つの生成物が観察された(天然物 質から単離された化合物１４３６)。逆相クロマトグラフィーによってこの生成 物を分離して、純物質１．５ｍｇを得た。この化合物は６８５の正の質量（Ｍ＋ １）イオンを有し、その¹Ｈおよび¹³Ｃ ＮＭＲスペクトルは天然物質から単離 された物質と同一であり、従って、その特徴および構造を確認することができた 。化合物１４３７ このステロイドは、分取Ｃ１８において化合物１３６０の直後に溶出し、ＴＬ Ｃ上ではＲ_f＝０．９６を示す。このことは、スクアラミンより極性が大きいこ とを反映している。Ｄ₂Ｏ中の¹Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ）は、メチル領域、ス テロイド核およびスペルミジン領域並びに環上ヒドロキシル位の７Ｈについては 、スクアラミンと本質的に同じであると思われた。¹Ｈスペクトルからは、２４ 位の硫酸のプロトン１個に相当するΔ＝４．１５ｐｐｍの多重線があきらかに消 失していた。一方、特徴的なジェミナル（ｇｅｍ）アルコールカップリングとプ ロトン２個分の積分値を有するΔ３．９５を中心とする新たなシグナルが観察 された。 スクアラミンと比較すると、Ｄ₂Ｏ中の化合物１４３７の¹³Ｃスペクトルは、 わずかに２カ所が顕著に変化していただけであった。１つの新たなシグナルはΔ ＝７２ｐｐｍに出現し、そのＤＥＰＴ−１３５シグナルが負であったので、結果 的に−ＣＨ₂ＯＨ基と同定された。スクアラミンにおいては、硫酸の位置はΔ８ ６ｐｐｍでは第１級炭素と同定された（正のＤＥＰＴ−１３５シグナル）。しか しながら、化合物１４３７に関しては、硫酸の位置の炭素の共鳴は７６ｐｐｍに シフトし、ＤＥＰＴ−１３５シグナルを示さなかってので、それを第４級炭素と 同定した。これらのデータに一致するアミノステロール構造は、エルゴステロー ルの炭素骨格を有し、炭素２４は硫酸基を有し、炭素２４'はアルコールである 。 陽イオンモードのＦＡＢ−ＭＳは、６５８．６に（Ｍ＋Ｈ）＋を示し、硫酸の 消失によって５７８．６に断片化した；陰イオンモード分析は、６５６．４に擬 親イオン（Ｍ−Ｈ）−を確認した。正確な質量５７８．５２６４は、親分子のシ グナルの強度が小さかったために、脱硫酸フラグメントについて測定した。次い で親イオンの正確な質量は（硫酸基の質量を加えることによって）６５７．５２ ６と算出された。化合物１４３７は、スクアラミンより３０ダルトン大きく、こ れは−ＣＨ₂ＯＨ部分がさらに挿入されていることによって説明された。画分Ｉ中のステロイド 画分Ｉ（ＦＸ１）は、分取Ｃ１８ＲＰ−ＨＰＬＣから最も早く溶出するステロ イド画分である。ＴＬＣ分析は、典型的に、Ｒｆ＝０．８０〜０．８４（スクア ラミンＲ_f＝１．０に対して）の単一主要スポットとＴＬＣの原点にとどまった たんぱく質とを示した。濃縮した試料（≧３ｍｇ/ｍｌ）を用いてＴＬＣを展開 した場合には、主要成分よりＲ_f値がわずかに大きいか、または小さい新たなス ポットの痕跡が識別された。 孔のサイズ６０〜１００Åで、非常に軽度なＣＨ₃ＣＮ濃度勾配を用い、Ｃ１ ８カラムを使用した高分解能ＲＰ−ＨＰＬＣを実施したとき、画分Ｉは７種もの 成分に分離され、Ｉ−１、Ｉ−２、Ｉ−３、Ｉ−４、Ｉ−５、Ｉ−６およびＩ− ７と命名された。ステロイドＦＸ１Ａ、ＦＸ１Ｂ、ＦＸ１ＣおよびＦＸ１Ｄにつ いて考えられる構造を示す： 実施例２ アミノステロールの合成 サメの肝臓から単離された上記の化合物に加えて、合成アミノステロール化合 物が開発されている。実施例Ａ〜Ｇにおいて特定された化合物を含む種々のポリ アミノステロール化合物が、１９９４年９月１３日出願の国際出願第ＰＣＴ/Ｕ Ｓ９４/１０２６５号の米国国内段階に相当する米国特許出願第０８/４１６，８ ８６号明細書に記載されており、その開示内容は本明細書に参照として含まれて いる。 同明細書に例が挙げられている化合物には以下のものを含む： さらにアミノステロール化合物も開発された。本発明の好ましい化合物には以 下に例を挙げる物が含まれる。例Ｈ 化合物３５３および化合物３５４の調製： 化合物３０３の調製と同様の方法で、シアノボロハイドライドナトリウムを用 いて５α−コレスタン−３−オンをスペルミン（４当量）に還元カップリングす ることによって上記化合物を調製した。精製はシリカゲル（クロロホルム：メタ ノール：イソプロピルアミン９：３：１から３：３：１の濃度勾配溶出）で実施 した。化合物３０３と同じ方法で、化合物３５３（高極性）および化合物３５４ （低極性）を塩酸塩にした。α−アミノ化合物３５４：¹Ｈ−ＮＭＲ（２００Ｍ Ｈｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．４７(ｍ、１Ｈ)、３．３〜２．９(ｍ、１２Ｈ)、 ２．３〜１．０(ｍ、３９Ｈ)、１．０〜０．８(ｍ、１２Ｈ)、０．７０(ｓ、３ Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３３９６，２９３４，１５９４，１４５７，１３ ８３；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５７３．６(Ｍ＋１)；Ｃ₃₇Ｈ₇₂Ｎ₄−４ＨＣｌ−Ｈ₂Ｏと しての分析計算値：Ｃ＝６０．３１、Ｈ＝１０．６７、Ｎ＝７．６０；実測値： Ｃ＝６０．０１、Ｈ＝１０．８３、Ｎ＝７．６７。β−アミノ化合物３５３：¹ Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．３〜３．０(ｍ、１３Ｈ)、２ ．２〜１．０(ｍ、３９Ｈ)、１．０〜０．８(ｍ、１２Ｈ)、０．７０(ｓ、３Ｈ) ；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９４５、１５９６，１４６６、１３８３；ＭＳによ る正確な質量（＋ＦＡＢ）計算値：５７３．５８５３；実測値：５７３．５８０ １；Ｃ₃₇Ｈ₇₂Ｎ₄−４ＨＣｌ−Ｈ₂Ｏとしての分析計算値：Ｃ＝５８．８７、Ｈ＝ １０．６８、Ｎ＝７．４２；実測値：Ｃ＝５８．４９、Ｈ＝１０．９４、Ｎ＝７ ．９４。 化合物３５３は、スペルミンとコレステロールとの単純な付加物で、非常に低 価格の化合物である。以下の直線的な方法で化合物３５４のように合成されうる ： 実施例Ｉ 化合物４５８および化合物４５９の調製： 化合物３５３の合成と同様に、３−オキソ−５α−コラノエートとスペルミン （１．３５当量）とから上記化合物を調製した。シリカゲル（クロロホルム：メ タノール：イソプロピルアミン６：３：１から３：５：２の濃度勾配溶出）で精 製した結果、低極性のα−アミノ化合物４５８と高極性のβ−アミノ化合物とが 得られた。化合物３０３に実施したように、これらの化合物を塩酸塩に変換した 。化合物４５８：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．６４(ｓ、 ３Ｈ)、３．４５(ｍ、１Ｈ)、３．２５〜３．０５(ｍ、１２Ｈ)、２，４〜１． ０(ｍ、３６Ｈ)、０．９３(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．８７(ｓ、３Ｈ)、０． ７０(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９４３、１７４１、１４５８、１１ ６９；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５７５．６(Ｍ＋１)；Ｃ₃₅Ｈ₆₆Ｎ₄Ｏ₂−４ＨＣｌ−１． ２Ｈ₂Ｏとしての分析計算値：Ｃ＝５６．６３、Ｈ＝９．８３、Ｎ＝７．５５； 実測値：Ｃ＝５６．５８、Ｈ＝９．４６、Ｎ＝７．２９。化合物４５９：¹Ｈ− ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．６３(ｓ、３Ｈ)、３．２〜３．０( ｍ、１３Ｈ)、２．４〜１．０(ｍ、３６Ｈ)、０．９２(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ) 、０．８６(ｓ、３Ｈ)、０．６９(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９４２ 、１７３９、１５９５、１４５９、１３８２、１１７０；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５７ ５．６(Ｍ＋１)；Ｃ₃₅Ｈ₆₆Ｎ₄Ｏ₂−４ＨＣｌ−１．４Ｈ₂Ｏとしての分析計算値 ：Ｃ＝５６．３５、Ｈ＝９．８４、Ｎ＝７．５１；実測値：Ｃ＝５６．３５、Ｈ ＝９．２６、Ｎ＝７．６７。実施例Ｊ 化合物３８０、３８１、３８２および３９４の調製： イイダ（Ｉｉｄａ）らケミ ファーマ ブル（Ｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｕｌ ｌ.）１９９３年４１巻（４号）７６３〜７６５ページの方法によって、ステロ イド化合物、メチル７α−ヒドロキシ−３−オキソ−５α−コラノエートを調製 した。シアノボロハイドライドナトリウムを用いてこのステロイドとポリアミン 化合物３０１とをカップリングし、トリフルオロ酢酸を用いてＢＯＣ基を除去し 、リチウムハイドライドを塩基として使用した以外は、化合物３１９を調製した ように、エステルを加水分解した。シリカゲル（クロロホルム：メタノール：イ ソプロピルアミン１５：４：１から１０：４：１）で精製を実施した。化合物３ ８１および３８２を２Ｍアンモニアのメタノール溶液で処理し、蒸発させて(３ ×２０ｍｌ)、イソプロピルアミンを除去した。化合物３０３のように塩酸塩を 調製した。 化合物３８０、Ｃ₃₂Ｈ₅₉Ｎ₃Ｏ₃：¹Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ ：３．８３(ｂｒ ｓ、１Ｈ)、３．６６(ｓ、３Ｈ)、２．８〜２．４(ｍ、９Ｈ) 、２．３〜１．０(ｍ、３２Ｈ)、０．９２(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．７８( ｓ、３Ｈ)、０．６５(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３２７８、２９２８ 、１７３６、１４４７、１１６３；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５３４(Ｍ＋１)。 化合物３８１、Ｃ₃₁Ｈ₅₇Ｎ₃Ｏ₃−１．７Ｈ₂Ｏ；１Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ 、 ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．８０(ｂｒ ｓ、１Ｈ)、３．０〜２．５(ｍ、９Ｈ)、２． ２〜１．１(ｍ、３２Ｈ)、０．９４(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．８４(ｓ、３ Ｈ)、０．６９(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３３８０、２９２９、１５ ６０、１３９５；ＭＳ（＋ＦＡＢ）計算値：５２０．４４７８(Ｍ＋１)；実測値 ：５２０．４５０６；分析計算値：Ｃ＝６７．６４、Ｈ＝１１．０６、Ｎ＝７． ６３；実測値：Ｃ＝６７．６４、Ｈ＝１０．２４、Ｎ＝７．８３。 化合物３８２、Ｃ₃₁Ｈ₅₇Ｎ₃Ｏ₃−２Ｈ₂Ｏ：¹Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤ₃ ＯＤ）Δ：３．８０(ｂｒ、ｓ、１Ｈ)、３．１５(ｂｒ、ｓ、１Ｈ)、３．１〜 ２．６(ｍ、８Ｈ)、２．２〜１．１(ｍ、３２Ｈ)、０．９６(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、 ３Ｈ)、０．８５(ｓ、３Ｈ)、０．６９(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３ ４１６、２９３０、１５６０、１３９５；ＭＳ（＋ＦＡＢ）計算値：５２０．４ ４７８(Ｍ＋１)；実測値：５２０．４４８９；分析計算値：Ｃ＝６６．９９、Ｈ ＝１１．０６、Ｎ＝７．５６；実測値：Ｃ＝６６．９３、Ｈ＝１０．１６、Ｎ＝ ７．２８。 化合物３９４、Ｃ₃₂Ｈ₅₉Ｎ₃Ｏ₃−３ＨＣｌ−０．５Ｈ₂Ｏ：¹Ｈ−ＮＭＲ（２０ ０ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．８３(ｂｒ、ｓ１Ｈ)、３．６４(ｓ、３Ｈ)、３ ．４８(ｂｒ ｓ、１Ｈ)、３．３〜２．９(ｍ、８Ｈ)、２．４〜１．１(ｍ、３ ２Ｈ)、０．９４(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．８７(ｓ、３Ｈ)、０．７０(ｓ、 ３Ｈ)；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５３５(Ｍ＋１)；分析計算値：ｃ＝５８．９３、Ｈ＝ ９．７４、Ｎ＝６．４４；実測値：Ｃ＝５８．７１、Ｈ＝１０．１３、Ｎ＝６． ３９。実施例Ｋ 化合物３９５、３９６および３９７の調製： シアノボロハイドライドナトリウムを用いてメチル７α−ヒドロキシ−３−オ キソ−５α−コラノエートとスペルミン（２当量）とをカップリングし、リチウ ムハイドライドを塩基として使用した以外は、化合物３１９の調製のようにエス テルを加水分解した。シリカゲル（クロロホルム：メタノール：イソプロピルア ミン１５：５：１から５：５：１）で化合物３９５および３９６の精製を実施し た。化合物３９７の精製はシリカゲル（ベンゼン：メタノール：イソプロピルア ルコール２：６：１）で実施し、２Ｍアンモニアのメタノール溶液で処理して( ３×２０ｍｌ)、イソプロピルアミンを除去した。化合物３０３と同じ方法で、 化合物３９５および３９６の塩酸塩を調製した。 化合物３９５、Ｃ₃₅Ｈ₆₆Ｎ₄Ｏ₃−４ＨＣｌ−２Ｈ₂Ｏ：¹Ｈ−ＮＭＲ（２００Ｍ Ｈｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．８０(ｂｒ ｓ、１Ｈ)、３．６４(ｓ、３Ｈ)、３． ３〜３．０(ｍ、１３Ｈ)、２．４〜１．０(ｍ、３４Ｈ)、０．９４(ｄ、Ｊ＝６ Ｈｚ、３Ｈ)、０．８７(ｓ、３Ｈ)、０．７０(ｓ、３Ｈ)；分析計算値：Ｃ＝５ ４．４０、Ｈ＝９．６５、Ｎ＝７．２５；実測値：Ｃ＝５４．１６、Ｈ＝９．３ １、Ｎ＝７．１２。 化合物３９６、Ｃ₃₅Ｈ₆₆Ｎ₄Ｏ₃−４ＨＣｌ−５Ｈ₂Ｏ：ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５９ ２(Ｍ＋１)；分析計算値：Ｃ＝５６．３７、Ｈ＝９．６０、Ｎ＝７．５１；実測 値：Ｃ＝５６．４３、Ｈ＝９．８３、Ｎ＝７．２７。 化合物３９７、Ｃ₃₄Ｈ₆₄Ｎ₄Ｏ₃：¹Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ ：３．７８(ｂｒ ｓ、１Ｈ)、２．９〜２．５(ｍ、１３Ｈ)、２．２〜１．１( ｍ、３４Ｈ)、０．９５(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．８７(ｓ、３Ｈ)、０．７ ０(ｓ、３Ｈ)；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５７７．３(Ｍ＋１)。実施例Ｌ 化合物３９３の調製： 窒素下で化合物３０４（２１０ｍｇ、０．４１ｍｍｏｌ）をメタノール（１０ ｍｌ）に溶解し、ｏ−メチルイソウレア塩酸塩（５０ｍｇ、０．４５ｍｍｏｌ） と１Ｎ水酸化ナトリウム溶液（０．４５ｍｌ、０．４５ｍｍｏｌ）とを用いて処 理した。２３時間後、さらにｏ−メチルイソウレアを添加し(１０２ｍｇ、０． ９２ｍｍｏｌ)、反応を７時間持続させ、１Ｎ塩酸溶液で停止させ(ｐＨ＜７)、 蒸発させた。残留物を、１Ｎ水酸化ナトリウム（５０ｍｌ）とクロロホルム（１ ００ｍｌ）に分配させた。追加のクロロホルム（５０ｍｌ）で洗浄後、有機層を 合わせたものを乾燥し(Ｎａ₂ＳＯ₄)、濃縮した。シリカゲル（直径２ｃｍ、５％ から１５％メタノールの塩化メチレン溶液による濃度勾配）のフラッシュクロマ トグラフィーによって精製し、白色の固形物を得た(３２ｍｇ)。この物質をクロ ロホルム（３ｍｌ）に溶解して、氷浴で冷却し、１Ｍ塩化水素のエーテル溶液（ １ｍｌ）で処理し、真空下で濃縮し、化合物３９３を得た(３７ｍｇ、収率１４ ％)。Ｃ₃₅Ｈ₆₄Ｎ₄−２ＨＣｌ−２Ｈ₂Ｏ：¹Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤ₃Ｏ Ｄ）Δ：３．５〜３．３(ｍ、５Ｈ)、３．２〜３．０(ｍ、４Ｈ)、２．２〜１． ０(ｍ、３７Ｈ)、０．９５〜０．８６(ｍ、９Ｈ)、０．７０(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ( ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３３０６、３１５３，２９３４、１６５４、１５８６、１４ ４５、１３８３；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５４１．４(Ｍ＋１)；分 析計算値：Ｃ＝６４．６９、Ｈ＝１０．８６、Ｎ＝８．６２、実測値：Ｃ＝６５ ．０６、Ｈ＝１０．９８、Ｎ＝８．８３。実施例Ｍ 化合物３７０および３７１の調製： 化合物１０１０の調製： 塩化クロム酸ピリジニウム（６．８５ｇ、３１．８ｍｍｏｌ）のジクロロメタ ン（１３０ｍｌ）懸濁液に、化合物１００６（５．９６ｇ、１３．３ｍｍｏｌ） のジクロロメタン（７０ｍｌ）溶液を添加した。室温で３時間攪拌後、反応混合 物をエーテル（１００ｍｌ）で希釈し、濾過してから、エーテルで洗浄した。有 機層を５％水酸化ナトリウム溶液、５％塩酸溶液、飽和炭酸水素ナトリウム、食 塩水で洗浄した。乾燥したエーテル層を蒸発して、フラッシュクロマトグラフィ ー（６ｃｍ、０から２０％の酢酸エチルのヘキサン溶液による濃度勾配）によっ て精製し、純粋な化合物１０１０（５．２５ｇ、収率７７％）を得た。¹Ｈ−Ｎ ＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：４．９２(ｍ、１Ｈ)、２．５〜１．０(ｍ 、２９Ｈ)、２．０６(ｓ、３Ｈ)、１．０３(ｓ、３Ｈ)、０．９１(ｄ、Ｊ＝６． ５Ｈｚ、３Ｈ)、０．８７(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、６Ｈ)、０．６７(ｓ、３Ｈ)； ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９４９、１７３６、１４６８、１３７２、 １２４４、１０２３；ＭＳ(ＥＳ＋)：４６７．８(Ｍ＋Ｎａ)。 化合物３７０および３７１の調製：シアノボロハイドライドナトリウムを用い て、ステロイド１０１０とポリアミン３０１とをカップリングさせ、トリフルオ ロ酢酸を用いてＢＯＣ基を除去し、水酸化ナトリウムを塩基として使用した以外 は、化合物３１９の調製と同様にアセテートを加水分解した。シリカゲル（ベン ゼン：メタノール：イソプロピルアミン２：６：１）で精製した。化合物３７０ （¹Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．８０(ｍ、１Ｈ)、２．９７ (ｍ、１Ｈ)、２．９〜２．６(ｍ、８Ｈ)、２．１〜１．０(ｍ、３５Ｈ)、０．９ ４(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ)、０．８８(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、６Ｈ)、０．８ ７(ｓ、３Ｈ)、０．７０(ｓ、３Ｈ)）および化合物３７１（¹Ｈ−ＮＭＲ（２０ ０ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．７７(ｍ、１Ｈ)、２．８〜２．５(ｍ、９Ｈ)、 ２．１〜１．０(ｍ、３５Ｈ)、０．９３(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ)、０．８８ (ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、６Ｈ)、０．８３(ｓ、３Ｈ)、０．６９(ｓ、３Ｈ)）を、 化合物３０３の調製のように、塩酸塩にした。化合物３７０：ＩＲ(ＫＢｒ、ｃ ｍ^-1)：３４１５、２９４８、１５９５、１４６７、１３８２、１０３１；ＭＳ( ＋ＦＡＢ)：５３２．４(Ｍ＋１)；Ｃ₃₄Ｈ₆₅Ｎ₃Ｏ−３ＨＣｌ−２Ｈ₂Ｏの分析計 算値：Ｃ＝６０．２９、Ｈ＝１０．７１、Ｎ＝６．２０；実測値：Ｃ＝６０．０ １、Ｈ＝１１．０９、Ｎ＝６．３。化合物３７１：ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４ １４、２９５３、１５９６、１４６８、１３８１、１０３３；ＭＳ(＋ＦＡＢ)： ５３２．４(Ｍ＋１)；Ｃ₃₄Ｈ₆₅Ｎ₃Ｏ・２Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝６０．２９、 Ｈ＝１０．７１、Ｎ＝６．２０；実測値：Ｃ＝６０．４９、Ｈ＝１１．００、Ｎ ＝６．４７。実施例Ｎ 化合物４７０の調製： 前駆体の調製： 化合物１０１１および１０１２の調製：メチル３−オキソ−５α−コラノメー ト(化合物３１０、２．００ｇ、５．１５ｍｍｏｌ)、ｐ−トルエンスルホン酸（ ２５０ｍｇ）およびエチレングリコール（２５ｍｌ）のベンゼン（１６０ｍｌ） 溶液を６時間水を除去しながら加熱還流した。室温に冷却後、飽和炭酸水素ナト リウム（３０ｍｌ）を添加し、水層をベンゼンおよび酢酸エチルで抽出した。有 機層を水および食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥し、蒸発させて、化合物 １０１１を得、精製しないで次の工程に使用した。 １Ｍ水素化アルミニウムリチウム（２５ｍｌ、２５ｍｍｏｌ）のエーテル溶液 を窒素下化合物１０１１の無水エーテル（８０ｍｌ）溶液で処理し、５時間加熱 還流した。終夜攪拌後、反応混合物を０℃で、水および２Ｎ水酸化ナトリウム溶 液を用いて反応を停止した。水層をエーテルで抽出し、次いで食塩水で洗浄し、 硫酸マグネシウムで乾燥し、蒸発させて、化合物１０１２（１．８０ｇ）収率８ ６％）を得た。¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：３．９４(ｓ、４ Ｈ)、３．６２(ｍ、２Ｈ)、２．０〜１．０(ｍ、２８Ｈ)、０．９２(ｄ、Ｊ＝６ Ｈｚ、３Ｈ)、０．８１(ｓ、３Ｈ)、０．６６(ｓ、３Ｈ)。 化合物１０１３および１０１４の調製：化合物１０１２（３．６３ｇ、８．９ ７ｍｍｏｌ）の無水ピリジン（１６ｍｌ）溶液を、室温でｐ−トルエンスルホニ ルクロライド（２．３ｇ、１２．１ｍｍｏｌ）で処理し、終夜放置した。氷水を 添加して、反応混合物を攪拌しながら３０分間放置した。次いで、６Ｎ塩酸を添 加し（７０ｍｌ）、水層をジクロロメタンおよびエーテルで抽出した。有機層を ２Ｎ塩酸、飽和炭酸水素ナトリウムおよび食塩水で洗浄し、乾燥し、蒸発させて 粗化合物１０１３を得た。化合物１０１３をジメチルスルホキシド（４０ｍｌ） に溶解して、窒素下、９０℃で、２．５時間、シアン化ナトリウム（１．４ｇ、 ２８ｍｍｏｌ）で処理した。冷却後、反応混合物を氷水で処理し、エーテルおよ びジクロロメタン中に抽出した。有機層を食塩水で洗浄、硫酸ナトリウムで乾燥 し、クロマトグラフィー（直径４ｃｍ、０から２５％酢酸エチルのヘキサン溶液 の濃度勾配）によって精製し、純粋な化合物１０１４を得た。¹Ｈ−ＮＭＲ、Ｃ ＤＣｌ₃）Δ：３．９４(ｓ、４Ｈ)、２．３２(ｍ、２Ｈ)、２．０〜１．０(ｍ、 ２８Ｈ)、０．９３(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．８１(ｓ、３Ｈ)、０．６６(ｓ 、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９３０、２２４７、１４４５、１３８１、 １３５７、１１３３、１０９１、９２８、８９９；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４１４．４ (Ｍ＋１)。 化合物１０１５の調製：化合物（１０１４（４８０ｍｇ、１．１６ｍｍｏｌ） の酢酸（３５ｍｌ）と濃塩酸（２５ｍｌ）との溶液を２５時間還流した。溶媒を 蒸発させた後、残留物を水と酢酸エチルとに分配させた。乾燥および蒸発後、粗 カルボン酸をメタノール（２５ｍｌ）に溶解し、濃塩酸（１ｍｌ）で処理し、２ ０分間還流した。溶媒を蒸発させた後、生成物を酢酸エチルと水とに溶解し、酢 酸エチルで再度抽出した。有機層を食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥し、 フラッシュクロマトグラフィー（直径２ｃｍ、０から２５％酢酸エチルのヘキサ ン溶液の濃度勾配溶出）によって精製し、純粋な化合物１０１５を得た（２９８ ｍｇ、収率６４％であった）ｍ．ｐ．１４７〜１４８℃。¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：３．６７(ｓ、３Ｈ)、２．４〜１．０(ｍ、３０Ｈ)、 １．０１(ｓ、３Ｈ)、０．９３(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．６８(ｓ、３Ｈ)；¹³ Ｃ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：２１２．３、１７４．５、５６ ．５、５６．１、５４．０、５１．６、４６．９、４４．９，４２，８、４０． １、３８．８、３８．４、３５．８、３５．７、３５．６、３４．７、３１．９ 、２９．２、２８．４、２４．２、２１．７、２１．６、１８．８、１２．２、 １１．７；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４０３．３(Ｍ＋１)；Ｃ₂₆Ｈ₄₂Ｏ₃の分析計算値 ：Ｃ＝７７．５６、Ｈ＝１０．５１；実測値Ｃ＝７７．４９、Ｈ＝１０．５２。 化合物４７０の調製：シアノボロハイドライドナトリウムを用いてステロイド １０１５とポリアミン３０１とをカップリングさせ、トリフルオロ酢酸でＢＯＣ 基を除去し、水酸化リチウムを塩基として使用した以外は、化合物３１９の調製 のように、エステルを加水分解した。シリカゲル（クロロホルム：メタノール： イソプロピルアミン１４：４：１から４：４：１の濃度勾配溶出）で精製した。 メタノール：クロロホルム（３×）で蒸発後、化合物を２Ｍアンモニアのメタノ ール溶液で処理し、イソプロピルアミンを蒸発（３×２０ｍｌ）除去した。¹Ｈ −ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：２．８〜２．６(ｍ、９Ｈ)、２．２ 〜１．０(ｍ、９Ｈ)、２．２〜１．０(ｍ、３６Ｈ)、０．９２(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ 、３Ｈ)、０．８０(ｓ、３Ｈ)、０．６６(ｓ、３Ｈ)；ＭＳ（＋ＦＡＢ）：５１ ８．４(Ｍ＋１)；分析計算値：Ｃ＝７１．７３、Ｈ＝１１．４７、Ｎ＝７．８４ ；実測値：Ｃ＝２．０３、Ｈ＝１１．０６、Ｎ＝７．５３。実施例Ｏ 化合物４３１、４３２、４３３、４６５、４６６、４６７および４６９の調製 。 前駆体の調製： 化合物１０１６の調製：ハイオデオキシコリン酸の酸触媒エステル化によって 、ハイオデオキシコリン酸のメチルエステルを調製した。無水メタノール（２０ ０ｍｌ）を入れた５００ｍｌの丸底フラスコにハイデオキシコリン酸(１０ｇ、 ２５．５ｍｍｏｌ)と濃硫酸（５ｍｌ）を磁気的に攪拌しながら滴下した。反応 混合物を終夜攪拌し、次いでジクロロメタン（２５０ｍｌ）で処理し、さらに炭 酸水素ナトリウム溶液（２×１００ｍｌ）および食塩水（１００ｍｌ）で洗浄し た。次いで、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、真空下で乾燥して 化合物１０１６（１０．１ｇ、収率９７％）を得た(Ｏｒｇａｎｉｃ Ｐｒｅｐ ａｒａｔｉｏｎｓ ａｎｄ Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ Ｉｎｔ．１９(２〜３)，１ ９８７，１９７〜２０８を参照)。 化合物１０１７の調製：ハイデオキシコリン酸メチルを塩化クロム酸ピリジニ ウムで酸化することによって、３，６−ジオキソステロールを調製した。化合物 １０１６（１０．１ｇ、２５ｍｍｏｌ）をジクロロメタン（２００ｍｌ）に溶解 した。氷浴中で磁気的に攪拌中のフラスコに、塩化クロム酸ピリジニウム（３３ ｇ、１５０ｍｍｏｌ）を添加した。反応混合物を室温にまで加温し、生成物がＴ ＬＣ上で見られるまで８時間反応を持続した。真空下でジクロロメタンの大部分 を除去し、次いで酢酸エチル（２５０ｍｌ）をフラスコに添加した。フラスコの 底に存在するクロムの外皮をへらで壊し、フラスコの内容物をセライト（Ｃｅｌ ｉｔｅ）カラムで濾過した。次いで、カラムからの溶出物を真空下で容量を減ら し、フロリジル（ｆｌｏｒｉｓｉｌ）カラム（酢酸エチルで溶出）で濾過した。 再び溶出物を約２００ｍｌまで容量を減らし、ジエチルエーテル（１００ｍｌ） を添加してから、炭酸水素ナトリウム(２×２５０ｍｌ)、次いで食塩水（２５０ ｍｌ）で洗浄した。有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、真空下で乾 燥した。再結晶をする前のメチル３，６−ジオキソ−５β−コラン−２４−オ エート１０１７の総収量は９．６ｇ（２４ｍｍｏｌ、９６％）であった(Ｏｒｇ ａｎｉｃ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓ ａｎｄ Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ Ｉｎｔ ．１９(２〜３)，１９８７，１９７〜２０８を参照)。クロムが残存している場 合には、多数の溶媒（無水メタノール、酢酸エチルのヘキサン溶液またはジエチ ルエーテルのヘキサン溶液）で生成物を再結晶してもよい。 化合物１０１８の調製：５βステロールの酸触媒異性化によって、３，６−ジ オキソ−５αステロールを調製した。メタノール（２５０ｍｌ）に、３，６−ジ オキソ−５βステロール１０１７（９．６ｇ、２４ｍｍｏｌ）とテトラヒドロフ ラン（２５ｍｌ）を添加して、ステロールを完全に溶解した。 濃塩酸（１２． ５ｍｌ）を加え、反応を終夜進行させた。次いで、真空下で溶媒を除去して、９ ．６ｇ（収率１００％）のメチル３，６−ジオキソ−５α−コラン−２４オエー ト１０１８（Ｏｒｇａｎｉｃ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓ ａｎｄ Ｐｒｏｃｅ ｄｕｒｅｓ Ｉｎｔ．１９８７年１９巻(２〜３号)、１９７〜２０８ページ参照 ；著者はＨＣｌではなくナトリウムメトキシドを使用して塩基触媒異性化を使用 した）を得た。 化合物１０１９の調製：種々の方法を使用して、メチル３，６−ジオキソ−５ ａ−コラン−２４−オエート１０１８の単保護を実施することができる。１つの 方法は、触媒のｐ−トルエンスルホン酸の存在下にて、化合物１０１８(９．６ ｇ、２３．８ｍｍｏｌ)のトルエン溶液(２５０ｍｌ)とエチレングリコール(１． ７７ｇ、２８．５ｍｍｏｌ)とを還流することを含む。トルエン/水共沸混合物を 除去するためにディーンスタークトラップ(Ｄｅａｎ Ｓｔａｒｋ ｔｒａｐ)を 使用した。約２０分後にＴＬＣによって反応が終了したと判断した。砕氷を加え た炭酸水素ナトリウム溶液（５００ｍｌ）にトルエン溶液をそそぐことによって 反応を停止させた。有機層を追加の炭酸水素ナトリウム（２００ｍｌ）と食塩水 （２００ｍｌ）で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、真空下で乾燥 した。粗精製物をシリカゲル（４ｃｍ×２５ｃｍ、３３％酢酸エチルのヘキサン 溶液で溶出）を用いてクロマトグラフィーを行った。メチル３−ジオキソラン− ６−オキソ−５α−コラン−２４−オエート１０１９（８．９ｇ、８１％）はカ ラムから２番目のバンドとして溶出する；他に存在した唯一の生成物は低極性 のジ−ジオキソランであった。続いての方法は選択性をあきらかに増大させるも ので、トルエンの代わりにベンゼンを使用し、ＴＬＣで反応を追跡することによ って、さらによりよい結果を得た。低沸点溶媒中で重大な二保護が生じる前に反 応を停止させることができる。化合物１０１９：ｍ．ｐ．１２４〜１２６℃；¹ Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：４．０４〜３．９３(ｍ、４Ｈ)、 ３．６８(ｓ、３Ｈ)、０．９５(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．７８(ｓ、３Ｈ)、 ０．６９(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９４５、１７４２、１７０９、 １４３９、１３８１、１３１３、１１６２、１０９０；ＭＳ(ＦＤ)：４４６(Ｍ⁺ )、３８８。 化合物１０２０の調製：ボロハイドライドナトリウムと反応させることによっ て、単保護されたジケトンから高収率で６β−ヒドロキシステロールを調製した 。３−ジオキソラン−６−オキソステロール１０１９（５ｇ、１１ｍｍｏｌ）を テトラヒドロフラン（１０ｍｌ）に溶解し、ボロハイドライドナトリウム（２． ５ｇ、６６ｍｍｏｌ）を加えた無水メタノール（２００ｍｌ）に添加した。ボロ ハイドライドナトリウムを溶解し、約２０〜３０分攪拌してからステロールを添 加した。終夜攪拌後、反応混合物をクロロホルム（５００ｍｌ）で処理し、蒸留 水(２×２００ｍｌ)、次いで食塩水（１００ｍｌ）で洗浄した。次いで、有機層 を硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、真空下で濃縮し、シリカゲル（４ｃｍ×２ ５ｃｍ、ヘキサン：酢酸エチル：塩化メチレン２：１：１で溶出）のフラッシュ クロマトグラフィーによって精製し、メチル３−ジオキソラン−６β−ヒドロキ シ−５α−コラン−２４−オエート１０２０（４．３５ｇ、収率８７％）を得た 。別の方法として、カラムクロマトグラフィーを必要とすることなしに、粗生成 物をベンゼンのヘキサン溶液、酢酸エチルのヘキサン溶液、またはクロロホルム のヘキサン溶液（２×）で再結晶して、高純度の生成物を得てもよい。化合物１ ０２０：ｍ．ｐ．１６４℃；¹Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：４． ０４〜３．９３(ｍ、４Ｈ)、３．７７(ｂｒ ｓ、１Ｈ)、３．６６(ｓ、３Ｈ)、 １．０３(ｓ、３Ｈ)、０．９２(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．６９(ｓ、３Ｈ)； ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３５３３，２９３７、１７２６、１４３８、１３７９、 １２５５、１１９１、１０９６；Ｘ線解析は予想された構造を示した。 化合物１０２１の調製：酸性アセトン溶液を使用して３−ジオキソランの保護 基を除去した。３−ジオキソラン−６β−ヒドロキシ−ステロール１０２０（４ ．０ｇ、８．９ｍｍｏｌ）をアセトン（２００ｍｌ）に溶解し、濃塩酸溶液（１ ０ｍｌ）で処理した。約１時間後、反応混合物を炭酸水素ナトリウム溶液中に注 いだ。溶液をジクロロメタン（３×２００ｍｌ）で抽出し、蒸留水(１００ｍｌ) 、次いで食塩水（１００ｍｌ）で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し 、真空下で蒸発して、メチル３−オキソ−６β−ヒドロキシ−５α−コラン−２ ４−オエート１０２１（３．４５ｇ、収率１００％）を得た：¹Ｈ−ＮＭＲ（２ ００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：３．８(ｂｒ ｍ、１Ｈ)、３．６９(ｓ、３Ｈ)、 １．２４(ｓ、３Ｈ)、０．９５(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．７４(ｓ、３Ｈ)； ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４４７、２９５４，１７４２、１７０７、１４３１。 化合物４３１および４３２の調製：エチレン−ジアミン化合物を以下のように 調製した。メタノール：テトラヒドロフラン５０：５０（１００ｍｌ）とエチレ ンジアミン（２ｍｌ）とからなる溶液を磁気的に攪拌させながら、酢酸で処理し て、ｐＨを約６まで低下させた。３−オキソステロール１０２１（１．５ｇ、３ ．７ｍｍｏｌ）を添加して、混合物を１５分間攪拌した。シアノボロハイドライ ドナトリウム（１ｇ、１６ｍｍｏｌ）を１０ｍｌのメタノールに溶解し、反応容 器に添加し、酢酸を添加することによってｐＨを再度６に調整した。反応物を１ 時間攪拌し、フラスコの内容物を砕氷入りのｐＨ１０．５の炭酸塩緩衝液（２５ ０ｍｌ）中に注いだ。溶液をクロロホルム（５×１５０ｍｌ）で抽出した。有機 層を合わせて、無水硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、真空下で乾燥し、シリカ ゲル（４ｃｍ×２５ｃｍ、クロロホルム：メタノール：イソプロピルアミン８： ２：１で溶出）のフラッシュクロマトグラフィーによって精製し、低極性のα− 異性体４３１（２６０ｍｇ、収率１５％）と高極性のβ−異性体４３２（８４０ ｍｇ、収率４９％）を得た。化合物４３１：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ ＯＤ）Δ：３．７４(ｍ、１Ｈ)、３．６５(ｓ、３Ｈ)、３．５３(ｍ、１Ｈ)、１ ．０６(ｓ、３Ｈ)、０．９４(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．７４(ｓ、３Ｈ)；Ｉ Ｒ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４２６、２９４３，１７４０、１５９０、１ ４３８，１３７９、１２５８、１１６８、１０２７；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４４９． ５(Ｍ＋１)；Ｃ₂₇Ｈ₄₈Ｎ₂Ｏ₃−２ＨＣｌ−０．７Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝６０ ．７０、Ｈ＝９．７０、Ｎ＝５．２４；実測値：Ｃ＝６０．９７、Ｈ＝９．６８ 、Ｎ＝５．３４。化合物４３２：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ： ３．７５(ｍ、１Ｈ)、３．６４(ｓ、３Ｈ)、１．０２(ｓ、３Ｈ)、０．９４(ｄ 、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．７３(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３５６０ 、３３６６、３２５７、２９３６、１７２６、１６４８、１６０５、１４３８、 １３７６、１１６６、１０４７；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４４９．５(Ｍ＋１)；Ｃ₂₇Ｈ₄₈ Ｎ₂Ｏ₃−０．４Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝７１．１３、Ｈ＝１０．７９、Ｎ＝ ６．１４；実測値：Ｃ＝７１．１５、Ｈ＝１０．７１、Ｎ＝６．２８。 化合物４６５および４６６の調製：無水メタノール（１００ｍｌ）を入れたフ ラスコを磁気的に攪拌させながら、化合物１０２１(１．５ｇ、３．７ｍｍｏｌ) 、スペルミン(２ｇ、９．９ｍｍｏｌ)、粉末３Åシーブ（ｓｉｅｖｅｓ）（２ｇ ）を添加し、ｐＨが６になるまで酢酸を加えた。フラスコを密封し、内容物を終 夜攪拌し、次いでシアノボロハイドライドナトリウム（１ｇ、１６ｍｍｏｌ）の メタノール溶液（１０ｍｌ）を添加した。酢酸でｐＨを再度調整し、反応混合物 を８時間攪拌した。エチレンジアミン化合物と同様に反応を停止させた。粗生成 物をフラッシュクロマトグラフィー（５ｃｍ×２５ｃｍ、クロロホルム：メタノ ール：イソプロピルアミン４：５：１で溶出）によって精製し、低極性のα−ア ミノ異性体４６５と高極性のβ−アミノ異性体４６６を得た。アミノステロール の総収量は１．３ｇ（収率５８％）であった。化合物４６５：¹Ｈ−ＮＭＲ（４ ００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．７５(ｍ、１Ｈ)、３．６５(ｓ、３Ｈ)、３． ５４(ｍ、１Ｈ)、１．０６(ｓ、３Ｈ)、０．９５(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０． ７４(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４０６、２９４４、１７４０、１５ ９６、１４６６、１１６８、１０４９、１０２７；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５９１．４ (Ｍ＋１)；Ｃ₃₅Ｈ₆₆Ｎ₄Ｏ₃−４ＨＣｌ−１．２Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５５． ４３、Ｈ＝９．６２、Ｎ＝７．３９；実測値：Ｃ＝５５．７０、Ｈ＝９．１５、 Ｎ＝７．１２。化合物４６６：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３ ．７９(ｍ、１Ｈ)、３．６５(ｓ、３Ｈ)、１．０６(ｓ、３Ｈ)、 ０．９５(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．７４(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1) ：３４０６、２９４４、１７４０、１５９５、１４５９、１３８１、１１６７、 １０５１、１０２６；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５９１．４(Ｍ＋１)；Ｃ₃₅Ｈ₆₆Ｎ₄Ｏ₃− ４ＨＣｌ−１．２Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５５．４３、Ｈ＝９．６２、Ｎ＝７ ．３９；実測値：Ｃ＝５５．４８、Ｈ＝９．０３、Ｎ＝７．３３。 化合物４６９の調製：この化合物は、化合物４６６に使用した方法と同様の方 法で、ポリアミン１０２３を使用して調製した。 アクリロニトリルの２度添加によってピペラジンからポリアミンを調製し、化合 物１０２２を得、ラニーニッケルで触媒した水素化によって還元した。β−アミ ノ異性体４６９：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．７８(ｍ、 １Ｈ)、３．６４(ｓ、３Ｈ)、３．５〜３．３(ｍ、８Ｈ)、３．２〜３．０(ｍ、 ９Ｈ)、２．４〜１．０(ｍ、３０Ｈ)、１．０３(ｓ、３Ｈ)、０．９２(ｄ、Ｊ＝ ６Ｈｚ、３Ｈ)、０．７１(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４０６、２９ ４３、１７３６、１５９４、１４４３、１１６５；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５８９．４ (Ｍ＋１)；Ｃ₃₅Ｈ₆₄Ｎ₄Ｏ₃−４ＨＣｌ−３Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５３．２９ 、Ｈ＝９．４６、Ｎ＝７．１０；実測値：Ｃ＝５３．０６、Ｈ＝８．９０、Ｎ＝ ８．４３。 化合物４３３および４６７の調製：遊離塩基としてのアミノステロールメチル エステル(1 mmol)の一定量を計量して２５ｍｌの丸底フラスコに入れた。アミノ ステロールを最小量のテトラヒドロフラン（２ｍｌ）に溶解し、１Ｎ水酸化カリ ウム溶液（１０ｍｌ）で処理して、１時間磁気的に攪拌した。次いで、溶液を１ ＮＨＣｌで中和し、溶媒を真空下で除去した。残留物を最小量の脱イオン水に溶 解し、オクタデシル基を官能基とするシリカゲルカラム（Ａｌｄｒｉｃｈ、２× １０ｃｍ、アセトニトリルを添加した２％トリフルオロ酢酸水溶液による濃度勾 配溶出）に供した。アミノステロールを含む分画を収集し、溶媒を真空下で除去 した。アミノステロールを０．１ＮＨＣｌに再溶解し、溶媒を真空下で除去して (２×)、トリフルオロ酢酸を完全に除去した。結果として得られた塩酸塩にベン ゼンを添加し、次いで終夜蒸発させて水をできる限り除去した。 エチレンジアミンβ−アミノ異性体４３３はＨＣｌでは処理せず、トリフルオ ロ酢酸塩として単離した。化合物４３３：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃Ｏ Ｄ）Δ：３．７８(ｍ、１Ｈ)、１．０６(ｓ、３Ｈ)、０．９５(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ 、３Ｈ)、０．７４(ｓ、３Ｈ)、；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３５３３、３４８８ 、２９４１、１７１６、１６７９、１６１５、１４８９、１４３１、１１９１； ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４３５．５(Ｍ＋１)、５３１．５(少量のトリフルオロアセタ ミドが含有されている可能性あり)；Ｃ₂₆Ｈ₄₆Ｎ₂Ｏ₃−２ＴＦＡ−０．７Ｈ₂Ｏの 分析計算値：Ｃ＝５３．３６、Ｈ＝７．３７、Ｎ＝４．１５；実測値：Ｃ＝５４ ．３６、Ｈ＝７．４５、Ｎ＝４．４０。 スペルミンβ−アミノ異性体４６７：¹Ｈ−ＮＭＲ(４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ) Δ：３．８０(ｍ、１Ｈ)、１．０５(ｓ、３Ｈ)、０．９５(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３ Ｈ)、０．７３(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４０６、２９４４、１７ １８、１６３７、１４５８；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５７７．４(Ｍ＋１)；Ｃ₃₄Ｈ₆₄Ｎ₄ Ｏ₃−４ＨＣｌ−４Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５１．３８、Ｈ＝９．６４、Ｎ＝ ７．０５；実測値：Ｃ＝５１．４０、Ｈ＝８．７７、Ｎ＝７．０１。実施例Ｐ 胆汁酸メチルエステル４０９、４１０、４１１、３５５、３５６、４１６、４ ４８、４１４、４１５、４１２、４１３、４１７および４４９の調製： 前駆体の調製：以下に構造を示すケノデオキシコール酸およびデオキシコール 酸のメチルエステルについては、ヒオデオキシコール酸を化合物１０１６にエス テル化するために用いた方法と同じ方法によって調製した。 ３−ケトステロイドを調製するための胆汁酸エステルの炭酸銀酸化：適当なア ミンを用いた３−オキソステロールの還元アミノ化によって、ケノデオキシコー ル酸誘導体およびデオキシコール酸誘導体を調製した。同様の方法によって３− オキソステロールを調製した。４当量の硝酸銀を脱イオン水に溶解し、十分量の セライトを添加して、セライト上に５０％炭酸銀を付着させることによって、炭 酸銀が付着したセライトを調製した。磁気的に攪拌中の溶液に、脱イオン水に溶 解した２．２当量の炭酸ナトリウム添加し、絶え間なく激しく攪拌した。結果と して炭酸銀が付着したセライトをガラスフリットロートを通して濾過し、テトラ ヒドロフランで洗浄し、真空デシケータ中で乾燥させた。酸化する胆汁酸のメチ ルエステルをトルエンに溶解し、２当量の炭酸銀付着セライトで処理し、水を共 沸除去するために、ディーンスターク（Ｄｅａｎ Ｓｔａｒｋ）装置を使用して 加熱還流した。両ステロールについて、６時間未満で酸化が終了した。両ステロ ールの合成において、生じた生成物は唯一所望の３−オキソステロールであった 。溶液を濾過し、真空下で溶媒を除去した。両合成で得られた生成物を酢酸エチ ルのヘキサン溶液で簡単に再結晶し、高収率で（両合成において＞８９％）３− オキソステロールを得た。 化合物４０９および４１０の調製：ケノデオキシコール酸の３−オキソステロ ールメチルエステル（１．５ｇ、３．７ｍｍｏｌ）をメタノールに溶解し、１０ 倍の過剰量のエチレンジアミン（２．５ｍｌ）に添加した。酢酸でｐＨを約６ま で低下させ、メタノールに溶解したＮａＢＨ₃ＣＮ（１ｇ、１５．９ｍｍｏｌ） を添加し、酢酸でｐＨを再び調整した。溶液を１時間攪拌し、次いで、化合物４ ３１と同様の方法で反応を停止させ、精製した。アミノステロールの総収率は５ ８％で、α−アミノ異性体と低極性β−アミノ異性体とのおおよその割合は７： ３であった。β−アミノ異性体４０９：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ ）Δ：３．８１（ｍ、１Ｈ）３．６８(ｓ、３Ｈ)、３．４２(ｍ、１Ｈ)、１．０ ４(ｓ、３Ｈ)、０．９５(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ)、０．７２(ｓ、３Ｈ)；Ｉ Ｒ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４２８、２９４０、２０５５、１７４０、１５９１、１ ４４０、１３７７、１１６９、１０７７、９８４；ＭＳ（＋ＦＡＢ）：４４９． ３(Ｍ＋１)；Ｃ₂₇Ｈ₄₈Ｎ₂Ｏ₃−２ＨＣｌ−１．２Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５９ ．７０、Ｈ＝９．７２、Ｎ＝５．１６；実測値：Ｃ＝５９．５９、Ｈ＝９．４９ 、Ｎ＝５．１５。α−アミノ異性体４１０：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ ＯＤ）Δ：３．８２(ｍ、１Ｈ)、３．６５(ｓ、３Ｈ)、３．０５(ｂｒ ｍ、１ Ｈ)、１．００(ｓ、３Ｈ)、０．９４(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ)、０．７２(ｓ 、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３５２２、２９４４、２０１７、１７１８、 １６１９、１４４８、１３７７、１３１４、１２８２、１ ２６０、１１６３、１０１８；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４４９．３(Ｍ＋１)；Ｃ₂₇Ｈ₄₈ Ｎ₂Ｏ₃−２ＨＣｌ−３．７Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５５．１３、Ｈ＝９．８４ 、Ｎ＝４．７６；実測値：Ｃ＝５５．０３、Ｈ＝９．３２、Ｎ＝４．７８。 化合物４１１の調製：以下の変更を除いて、エチレンジアミンと同じ方法でこ のスペルミン化合物を調製した。ケノデオキシコール酸の３−オキソステロール メチルエステル１ｇと、スペルミン１ｇ（約２当量）を使用し、クロマトグラフ ィーはより極性の高い溶媒系（すなわち、ＣＨＣｌ₃：メタノール：イソプロピ ルアミン５：４：１）を使用した。アミノステロールの総収率は４８％であった 。α−アミノ異性体とβ−アミノ異性体４１１との比は、分離が不完全であった ために測定されなかった。化合物４１１：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃Ｏ Ｄ）Δ：３．８３(ｍ、１Ｈ)、３．６５(ｓ、３Ｈ)、３．４２(ｍ、１Ｈ)、１． ０４(ｓ、３Ｈ)、０．９５(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ)、０．７０(ｓ、３Ｈ)； ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４０４、２９４６、２０５９、１７３９、１５９５、 １４５８、１３７８、１１６８、１０７３、１０１２、９８５、７５９；ＭＳ( ＋ＦＡＢ)：５９１．４(Ｍ＋１)；Ｃ₃₆Ｈ₆₆Ｎ₄Ｏ₃−４ＨＣｌ−４Ｈ₂Ｏの分析計 算値：Ｃ＝５１．９７、Ｈ＝９．７２、Ｎ＝６．９３：実測値：Ｃ＝５１．６５ 、Ｈ＝８．５３、Ｎ＝６．７７。 化合物３５５および３５６の調製：シアノボロハイドライドナトリウムを用い てケノデオキシコール酸の３−オキソステロールメチルエステルとポリアミン３ ０１とをカップリングさせ、トリフルオロ酢酸を用いてＢＯＣ基を除去し、化合 物３１９の調製のようにエステルを加水分解した。シリカゲル（クロロホルム： メタノール：イソプロピルアミン１５：４：１から１０：４：１）で精製した。 低極性β−アミノ異性体３５５、Ｃ₃₂Ｈ₅₉Ｎ₃Ｏ₃：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ 、ＣＤＣｌ₃）Δ：３．８７(ｍ、１Ｈ)、３．６８(ｓ、３Ｈ)、３．１５(ｍ、１ Ｈ)、３．０〜２．７(ｍ、８Ｈ)、２．４〜１．０(ｍ、３２Ｈ)、０．９９(ｓ、 ３Ｈ)、０．９１(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．６６(ｓ、３Ｈ)；ＭＳ(ＤＣＩ) ：５３４(Ｍ＋１)．高極性α−アミノ異性体３５６、Ｃ₃₂Ｈ₅₉Ｎ₃Ｏ₃−３ＨＣｌ ：１Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．８２(ｍ、１Ｈ)、３．２ ５〜２．９５(ｍ、９Ｈ)、２．５〜１．０(ｍ、３２Ｈ)、０．９ ７(ｓ、３Ｈ)、０．９４(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．６９(ｓ、３Ｈ)；ＭＳ( ＤＣＩ)：５３４(Ｍ＋１)。 化合物１４１６の調製：デオキシコール酸誘導体を調製するために使用した方 法は、ケノデオキシコール酸誘導体の調製に使用した方法と同じであった。エチ レンジアミン化合物については、アミノステロールの総収率は６２％で、α−ア ミノ異性体４１６とβ−アミノ異性体との比は４：１であった。化合物４１６：¹ Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．９７(ｍ、１Ｈ)、３．６８( ｓ、３Ｈ)、３．２２(ｂｒ ｍ、１Ｈ)、１．０２(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ) 、１．０１(ｓ、３Ｈ)、０．７３(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４１８ 、２９４０、１７３９、１６１６、１４５６、１３７９、１２５３、１１６９、 １０３６；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４４９．４(Ｍ＋１)；Ｃ₂₇Ｈ₄₈Ｎ₂Ｏ₃−２ＨＣｌ− ０．５Ｈ₂Ｏ：Ｃ＝６１．１２、Ｈ＝９．６９、Ｎ＝５．２８；実測値：Ｃ＝６ １．２０、Ｈ＝９．５０、Ｎ＝５．０７。 化合物４４８の調製：デオキシコール酸のスペルミン誘導体については、アミ ノステロールの総収率は４６％であった(反応停止が困難だったために低収率と なった可能が高い)。分離が不完全であったため、α−アミノ異性体４４８とβ −アミノ異性体との比は測定されなかった。化合物４４８：¹Ｈ−ＮＭＲ（４０ ０ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．９８(ｍ、１Ｈ)、３．６７(ｓ、３Ｈ)、１．０ １(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、１．０１(ｓ、３Ｈ)、０．７３(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ( ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９４４、１７３８、１５９４、１４５１、１３７８、１１ ６９、１０３８、７５８；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５９１．５(Ｍ＋１)；Ｃ₃₅Ｈ₆₆Ｎ₄ Ｏ₃−４ＨＣｌ−２．３Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５４．０２、Ｈ＝９．６６、Ｎ ＝７．２０；実測値：Ｃ＝５４．００、Ｈ＝８．６４、Ｎ＝７．２２。 化合物４１４および４１５の調製：６β−ヒドロキシ４３３の調製のようにメ チルエステルから遊離酸を調製した。α−アミノ異性体４１４：¹Ｈ−ＮＭＲ（ ４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．８３(ｍ、１Ｈ)、３．０６(ｂｒ ｍ、１Ｈ )、１．０４(ｓ、３Ｈ)、０．９６(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．７３(ｓ、３Ｈ )；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９４０、２０５３、１７０９、１４５２、１３７ ８、１１６７、１０７６、１００７、９７５；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４３５． ５(Ｍ＋１)；Ｃ₂₆Ｈ₄₆Ｎ₂Ｏ₃−２ＨＣｌ−１．５Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５８ ．４１、Ｈ＝９．６２、Ｎ＝５．２４；実測値Ｃ＝５８．２４、Ｈ＝９．４０、 Ｎ＝５．４７。β−アミノ異性体４１５：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃Ｏ Ｄ）Δ：３．８３(ｍ、１Ｈ)、３．４７(ｍ、１Ｈ)、１．０６(ｓ、３Ｈ)、０． ９５(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．７３(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３ ４８８、２９３５、２０５４、１７０９、１５９３、１４９９、１４５０、１２ ４６、１１６８、１０７７、１０２２、９８４；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４３５．５( Ｍ＋１)；Ｃ₂₆Ｈ₄₆Ｎ₂Ｏ₃−２ＨＣｌ−１．５Ｈ₂Ｏの分析測定値：Ｃ＝５８．４ １、Ｈ＝９．６２、Ｎ＝５．２４；実測値：Ｃ＝５８．５９、Ｈ＝９．３５、Ｎ ＝５．４３。 化合物４１２、４１３、４１７および４４９の調製：上記の方法と同様の方法 を使用してこれらの化合物を製造した。 α−アミノ４１２：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．８３( ｍ、１Ｈ)、３．００(ｂｒ ｍ、１Ｈ)、１．０４(ｓ、３Ｈ)、０．９６(ｄ、Ｊ ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、０．７４(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４１３、２ ９４２、２０６１、１７１０、１５９４、１４６０、１３７７、１１６７、１０ ７４；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５７７．７(Ｍ＋１)；Ｃ₃₄Ｈ₆₃Ｎ₃Ｏ₃−４ＨＣｌ−２． ５Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５３．１９、Ｈ＝９．５８、Ｎ＝７．３０；実測値 ：Ｃ＝５３．２７、Ｈ＝９．４７、Ｎ＝７．３２。 β−アミノ４１３：¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３．８(ｍ 、１Ｈ)、３．４（ｍ、１Ｈ）１．０５(ｓ、３Ｈ)、０．９６(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、 ３Ｈ)、０．７３(ｓ、３Ｈ)；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５７７．７(Ｍ＋１)。 デオキシコール酸エチレンジアミン４１７(α−アミノ異性体)：１Ｈ−ＮＭＲ （４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：４．０３(ｍ、１Ｈ)、３．２２(ｂｒ ｍ、１ Ｈ)、１．０３(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３Ｈ)、１．００(ｓ、３Ｈ)、０．７４(ｓ、３ Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９４０、１７０６、１４５６、１３７９、１２ ５４、１０３４；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４３５．４(Ｍ＋１)；Ｃ₂₆Ｈ₄₆Ｎ₂Ｏ₃−２Ｈ Ｃｌ−２Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５７．４５、Ｈ＝９．６４、Ｎ＝５．１５； 実測値：Ｃ＝５７．３２、Ｈ＝９．２２、Ｎ＝５．１３。 デオキシコール酸スペルミン４９９（α−アミノ異性体）：¹Ｈ−ＮＭＲ（４ ００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：４．０２(ｍ、１Ｈ)、１．０４(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、 ３Ｈ)、１．００(ｓ、３Ｈ)、０．７５(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２ ９４１、１７１６、１４４８、１０３８；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：５７７．４(Ｍ＋１) ；Ｃ₃₄Ｈ₆₄Ｎ₄Ｏ₃−４ＨＣｌ−１．５Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝５４．５７、Ｈ ＝９．５４、Ｎ＝７．４７；実測値：Ｃ＝５４．３１、Ｈ＝８．７１、Ｎ＝７． ８０。実施例Ｏ モノアミン化合物３６３および３６４の調製： 化合物１００２の調製：三酸化クロム（７２．６ｇ、６６０ｍｍｏｌ）のジクロ ロメタン（１０００ｍｌ）懸濁液に、−７８℃にて３，５−ジメチルピラゾール （６３．４ｇ、６６０ｍｍｏｌ）を添加した。２０分後に、酢酸コレステリル（ 化合物１００１、２４ｇ、５６ｍｍｏｌ）を添加し、混合物を室温まで徐々に加 温し、終夜攪拌した。反応混合物（０℃）５Ｎ水酸化ナトリウム溶液（２８０ｍ ｌ）を添加し、混合物を１時間攪拌した。有機層を２ＮＨＣｌ、水および食塩水 で洗浄した。溶媒を除去した後、粗生成物をクロマトグラフィー（６ｃｍ、１０ ％から３０％酢酸エチルのヘキサン溶液）で溶出）で精製し、出発物質（６．７ ８ｇ）と化合物１００２（１２．７８ｇ、５２％）を得た。¹Ｈ−ＮＭＲ（２０ ０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：５．７１(ｓ、１Ｈ)、４．７(ｂｒ ｍ、１Ｈ)、２ ．５〜１．０(ｍ、２７Ｈ)、２．０５(ｓ、３Ｈ)、１．２１(ｓ、３Ｈ)、０．９ ２(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ)、０．８６(ｄ、Ｊ＝７Ｈｚ、３Ｈ)、０．６８( ｓ、３Ｈ)。 化合物１００３の調製：化合物１００２（１４．３２ｇ、３２．３ｍｍｏｌ） の酢酸エチル溶液（１．４１）に窒素を通気し、酸化白金(ＩＶ)（２６３ｍｇ） で処理し、室温で３時間水素ガス（常圧）を通気した。セライトで濾過後、溶液 を蒸発、フラッシュクロマトグラフィー（６ｃｍ、０から２０％酢酸エチルのヘ キサン溶液で濃度勾配溶出）で精製して、純粋な化合物１００３を得た(１０． ８６ｇ、収率７６％)。¹Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：４．６７( ｂｒ ｍ、１Ｈ)、２．４〜１．０(ｍ、２９Ｈ)、２．０２(ｓ、３Ｈ)、１．１ ０(ｓ、３Ｈ)、０．９０(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ)、０．８６(ｄ、Ｊ＝６． ５Ｈｚ、６Ｈ)、０．６５(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９５０、１７ ３０、１７０７、１４７１、１３７３、１２６４、１０３２；ＭＳ(＋ＦＡＢ)： ４４５．７(Ｍ＋１)。 化合物１００４および１００５の調製：化物１００３（１１．６２ｇ、２６． １ｍｍｏｌ）のテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（５００ｍｌ）溶液に１ＭＫ−セ レクトライド（Ｓｅｌｅｃｔｒｉｄｅ）^R（８０ｍｌ、８０ｍｍｏｌ）のＴＨＦ 溶液を室温で添加した。５０℃で５時間後、反応混合物を氷浴で冷却し、次いで ３０％過酸化水素（４５ｍｌ）および飽和塩化アンモニウム溶液（２０ｍｌ）で 処理した。有機層を分離し、水層をエーテル（３×１００ｍｌ）で抽出し、有機 層を合わせて、飽和炭酸水素ナトリウム、塩化アンモニウムおよび水で洗浄した 。乾燥後、粗生成物をクロマトグラフィー（６ｃｍ、０から３０％酢酸エチルの ヘキサン溶液で濃度勾配溶出）によって精製し、化合物１００４を得(１０．９ ５ｇ、２４．５ｍｍｏｌ)、ジメチルアミノピリジン（３０．３０ｇ、２４８ｍ ｍｏｌ）とともにジクロロメタン（２００ｍｌ）に溶解し、無水酢酸（４０ｍｌ 、４２４ｍｍｏｌ）で１９時間処理した。この溶液にメタノール（１５０ｍｌ） を添加し、溶媒を蒸発させた。残留物を酢酸エチルに溶解し、２Ｎ塩酸(３×１ ５０ｍｌ)、水(１００ｍｌ)、飽和炭酸ナトリウム（３×１００ｍｌ）および食 塩水（２×１００ｍｌ）で洗浄した。有機層を乾燥し、蒸発させ、フラッシュク ロマトグラフィー（６ｃｍ、０から２０％酢酸エチルのヘキサン溶液による濃度 勾配溶出）によって精製し、化合物１００５を得た(１１．４７ｇ、収率９０％) 。¹Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：４．８８(ｍ、１Ｈ)、４．７１ (ｂｒ ｍ、１Ｈ)、２．０８(ｓ、３Ｈ)、２．０２（ｓ、３Ｈ）２．０〜１．０ (ｍ、２９Ｈ)、０．９２〜０．８３(ｍ、１２Ｈ)、０．６４(ｓ、３Ｈ)；ＩＲ( ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：２９５４、２８６７、１７３０、１４６８、１３６７、１２ ５７、１０２５；Ｃ₃₁Ｈ₅₂Ｏ₄の分析計算値：Ｃ＝７６．１８、Ｈ１０．７２； 実測値：Ｃ＝７６．０９、Ｈ＝１０．５６。 化合物１００６の調製：化合物１００５（１０．８５ｇ、２２．２ｍｍｏｌ） およびシアン化ナトリウム（１．２０ｇ、２４．４ｍｍｏｌ）のメタノール（４ ２０ｍｌ）溶液を室温で終夜攪拌し、次いで１０時間還流した。溶媒を蒸発させ 、残留物をジクロロメタン水溶液に溶解し、２Ｎ塩酸で酸性化した。ジクロロメ タンで抽出後、有機層を食塩水で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、蒸発させ て、化合物１００６を得た(９．２２ｇ、収率９２％)。¹Ｈ−ＮＭＲ（２００Ｍ Ｈｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：４．８９(ｍ、１Ｈ)、３．６２(ｂｒ ｍ、１Ｈ)、２． ０７(ｓ、３Ｈ)、２．０〜１．０(ｍ、２９Ｈ)、０．９０(ｄ、Ｊ＝６Ｈｚ、３ Ｈ)、０．８７(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、６Ｈ)、０．８２(ｓ、３Ｈ)、０．６４(ｓ 、３Ｈ)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３４４６、２９３５、１７３５、１４６９、 １３７５、１２４５、１０４２、９４１；ＭＳ(＋ＥＳ)：４７０(Ｍ ＋Ｎａ)。 化合物１００７、１００８および１００９の調製：化合物１００６（８９２ｍ ｇ、２．０ｍｍｏｌ）の無水ジクロロメタン溶液（２０ｍｌ）に窒素下（−１０ 乃至−５℃）で、トリエチルアミン（３ｍｌ、２２ｍｍｏｌ）およびメタンスル ホニルクロライド（０．４０ｍｌ、５．２ｍｍｏｌ）のジクロロメタン（４ｍｌ ）溶液を添加した。４０分後、混合物を１Ｎ塩酸溶液（１００ｍｌ）中に注ぎ、 有機層を分離した。ジクロロメタン（３×２０ｍｌ）で抽出後、有機層を１Ｎ塩 酸溶液(３０ｍｌ)、飽和炭酸水素ナトリウム溶液（３０ｍｌ）および食塩水（２ ×３０ｍｌ）で洗浄した。硫酸ナトリウムで乾燥後、溶媒を蒸発させて、化合物 １００７を得、精製しないで次のステップに使用した。 粗精製１００７をジメチルホルムアミド（５０ｍｌ）に溶解し、アジ化ナトリ ウム（２．０ｇ、３１ｍｍｏｌ）で処理し、１００℃までの温度で１８時間加熱 した。冷却後、反応混合物を水（２５０ｍｌ）で希釈し、ジクロロメタン（３× １５０ｍｌ）で抽出し、水（３×１００ｍｌ）で洗浄し、乾燥し(Ｎａ₂ＳＯ₄)、 濾過し、蒸発させて化合物１００８を得、精製しないで次のステップで使用した 。 化合物１００８の無水テトラヒドロフラン（６０ｍｌ）溶液を１Ｍリチウムア ンモニウムハイドライド（２０ｍｌ、２０ｍｍｏｌ）で処理し、５時間加熱還流 した。氷浴で冷却後、混合物に水(５０ｍｌ)、次いで２Ｍ水酸化ナトリウム溶液 （２００ｍｌ）を添加した。水層をジクロロメタン（３×１５０ｍｌ）で抽出し 、次いで食塩水（２×１００ｍｌ）および水（５０ｍｌ）で洗浄した。乾燥した 有機層を蒸発させて化合物１００９を得、精製しないで次のステップに使用した 。 化合物１３６３および１３６４の調製：粗精製化合物１００９をメタノール（ ４０ｍｌ）に溶解し、８０℃にて、２Ｎ水酸化ナトリウム溶液（４０ｍｌ）で１ ２時間処理した。蒸発後、水を添加し(４０ｍｌ)、次いでジクロロメタン（３× ６０ｍｌ）で抽出した。食塩水で洗浄後(３×５０ｍｌ)、有機層を乾燥し(Ｎａ₂ ＳＯ₄)、濾過し、蒸発した。フラッシュクロマトグラフィー（直径２ｃｍ、ジク ロロメタン：メタノール：水酸化アンモニウム９５：４．５：０．５で溶出）で 精製して、化合物１３６３（遅い溶出；¹Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤＣ ｌ₃）Δ：３．８２(ｍ、１Ｈ)、３．１９(ｍ、１Ｈ)、２．０〜１．０(ｍ、２９ )、０．９１(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ)、０．８７(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、６Ｈ )、０．７８(ｓ、３Ｈ)、０．６５(ｓ、３)；ＩＲ(ＫＢｒ、ｃｍ^-1)：３３６２ ，２９３１，１５７５，１４６７，１３８２；ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４０４．４(Ｍ ＋１)、および化合物１３６４（速い溶出；¹Ｈ−ＮＭＲ（２００ＭＨｚ、ＣＤＣ ｌ₃）Δ：３．４(ｂｒ ｍ、１Ｈ)、３．２(ｍ、１Ｈ)、２．０〜１．０(ｍ、２ ９Ｈ)、０．９１(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ)、０．８６＝(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ 、６Ｈ)、０．８０(ｓ、３Ｈ)、０．６８(ｓ、３Ｈ)を得た。各化合物をメタノ ールに溶解して、１Ｎ塩酸のエーテル溶液の過剰量で処理し、蒸発させ、塩酸塩 を得た。化合物１３６３(６４６ｍｇ、４ステップの総収率７４％)：Ｃ₂₇Ｈ₄₉Ｎ Ｏ−ＨＣｌ−０．５Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝７２．２０、Ｈ＝１１．４４、Ｎ ＝３．１２；実測値：Ｃ＝７２．４０、Ｈ＝１１．４４、Ｎ＝３．２６。化合物 １３６４(５０ｍｇ、４ステップの総収率６％)：ＭＳ(＋ＦＡＢ)：４０４．４( Ｍ＋１)；Ｃ₂₇Ｈ₄₉ＮＯ−ＨＣｌ−Ｈ₂Ｏの分析計算値：Ｃ＝７０．７８、Ｈ＝１ １．４４、Ｎ＝３．０６；実測値：Ｃ＝７１．０２、Ｈ＝１１．３３、Ｎ＝３． ３５。実施例Ｒ 化合物３８８および３８７の調製： ¹Ｈ−ＮＭＲスペクトルはバリアン（Ｖａｒｉａｎ）ＸＬ−２００（２００Ｍ Ｈｚ）またはバリアンユニティ（Ｖａｒｉａｎ Ｕｎｉｔｙ）５００(５００ＭＨ ｚ)ＮＭＲスペクトロメーターで得た。赤外スペクトルはパーキンエルマー(Ｐｅ ｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ)２９８スペクトロメーターで記録した。直接挿入プローブ （Ｄｉｒｅｃｔ ｉｎｓｅｒｔｉｏｎ ｐｒｏｂｅ(ＤＩＰ)）化学的イオン化質量 スペクトルデータは、ヒューレットパッカード（Ｈｅｗｌｅｔｔ Ｐａｃｋａｒ ｄ）ＨＰ ５０８７ ＧＣ−ＭＳで得た。融点は、トーマスフーバー（Ｔｈｏｍ ａｓ Ｈｏｏｖｅｒ）キャピラリー融点測定装置で測定され、補正は行わなかっ た。元素分析は、ニュジャージー州ホワイトハウスのクオンタテイティブテクノ ロジー社（Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ.）に よって実施された。ＦＡＢ質量スペクトルデータ（低分解能および高分解能）は 、ペンシルバニア州ウェストチェスターのエム−スキャン社（Ｍ−Ｓｃａｎ Ｉ ｎｃ.）から入手した。 ５−コレン酸は、ステラロイズ（Ｓｔｅｒａｌｏｉｄｓ）社から入手し、その まま使用した。以下の試薬はアルドリッチケミカル社（Ａｉｄｒｉｃｈ Ｃｈｅ ｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐａｎｙ）から購入し、指示のない限りそのまま使用した： ジヒドロピラン(使用前に蒸留)、ｐ−トルエンスルホン酸、水素化アルミニウム リチウム、ｔ−ブチルジメチルシリルクロライド、イミダゾール、３，５−ジメ チルピラゾール、酸化白金(ＩＶ)、トリ−ｓｅｃ−ブチルボロハイドライドカリ ウム(Ｋ−Ｓｅｌｅｃｔｒｉｄｅ^R、ＴＦＡ中１Ｍ)、過酸化水素(３０％)、水素 化ナトリウム(鉱物油中６０％)、臭化ベンジル(使用前に蒸留)、フッ化テトラブ チルアンモニウム(ＴＨＦ中１Ｍ)、塩化オキサリル、ジイソプロピルエチルアミ ン、ジメチルスルホキシド、(使用前に蒸留)、塩化イソプロピルマグネシウム( ＴＨＦ中２Ｍ)、臭化マグネシウム、シアノボロハイドライドナトリウム（ＴＨ Ｆ中１Ｍ）、１０％パラジウム炭素および硫黄トリオキシドピリジン複合体。Ｔ ＨＦおよびＥｔ₂Ｏはナトリウム/ベンゾフェノンケチルから蒸留した。ピリジン はＫＯＨから蒸留した。塩化メチレンおよびペンタンはＣａＨ₂から蒸留した。 ＤＭＦは減圧下でＢａＯから蒸留した。メタノールは、使用前に３Å分子ふるい （ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｉｅｖｅｓ）で乾燥した。ＰＰＴＳは、 ミヤシタ（Ｍｉｙａｓｈｉｔａ）らの方法、ジャーナル オルガニック ケミス トリー（Ｊ．Ｏｒｇ． Ｃｈｅｍ.）１９７７年４２巻３７７２ページ、によっ て調製された。分子ふるいは使用前にオーブン（１７０℃）で終夜乾燥された。 シリカゲル（ＥＭ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｓｉｌｉｃａ Ｇｅｌ ６０，２３０〜４ ００メッシュ）を全てのフラッシュクロマトグラフィーにおいて使用した。 ３β−テトラヒドロピラニルオキコル−５−エン−２４−オイックアシッド２ ４−テトラヒドロピラニルエステル（２００１）の調製： ５−コレン酸（７．５８ｇ、２０ｍｍｏｌ）は乾燥ＣＨ₂Ｃｌ₂（３００ｍｌ） 溶液中に懸濁させた。蒸留したジヒドロピラン（１９．０ｍｌ、２００ｍｌ）を 添加し、次いで触媒量のピリジニウムｐ−トルエンスルホネート（１．１ｇ、４ ．０ｍｍｏｌ）を添加した。アルゴン下で懸濁液を室温にて、終夜攪拌した。こ の間にステロイドは溶液になった。得られた溶液を飽和ＮＨ₄Ｃｌ水溶液(２×) 、飽和ＮａＨＣＯ₃水溶液(２×)、飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄した。有機層を無 水ＭｇＳＯ₄で乾燥し、濾過し、真空下で溶媒を除去した。粗固形物をフラッシ ュクロマトグラフィー（ＳｉＯ₂、ヘキサン/ＥｔＯＡｃ(１０：１)）によって精 製し、化合物２００１を白色固形物として得た(９．８ｇ、１８．５ｍｍｏｌ、 ９２％)。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：５．９６(ｂｒｓ、１Ｈ 、ＴＨＰエステルメチンＨ)、５．３７〜５．３２(ｍ、１Ｈ、Ｃ−６Ｈ)、４． ７２(ｂｒｓ、１Ｈ、ＴＨＰエステルメチンＨ)、３．９５〜３．８７(ｍ、２Ｈ 、ＴＨＰ ＣＨ ₂Ｏ)、３．７１〜３．６４(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰ ＣＨ ₂Ｏ)、３． ５８〜３．４４(ｍ、２Ｈ、ＴＨＰ ＣＨ ₂ＯおよびＣ−３Ｈ)、１．０１(ｓ、３ Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．９４(ｄ、Ｊ＝６．３Ｈｚ、３Ｈ、Ｃ−２１Ｈ)、０．６ ８(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)。 ３β−テトラヒドロピラニルオキシコル−５−エン−２４−オール(２００２) の調製： 化合物２００１（１６．１ｇ、３０ｍｍｏｌ）の無水テトラヒドロフラン（Ｔ ＨＦ、１５０ｍｌ）溶液、ＬｉＡｌＨ₄（５．５ｇ、１４５ｍｍｏｌ）の無水Ｔ ＨＦ（２００ｍｌ）懸濁液に添加した。懸濁液をアルゴン下で終夜、機械的攪拌 子を用いて０℃にて攪拌した。得られた灰色のスラリーに、ＥｔＯＡｃを加え、 次いで飽和Ｎａ₂ＳＯ₄水溶液を加えた。Ｎａ₂ＳＯ₄を添加している間に、白色の 沈殿が形成し、溶液は透明になった。無水Ｎａ₂ＳＯ₄を添加して、混合物を１５ 分間攪拌し、次いで濾過した。濾過物を酢酸エチルで十分に洗浄し、濾液を真空 下で濃縮した。結果として得られた固形物をフラッシュクロマトグラフィー（Ｓ ｉＯ₂、ヘキサン：ＥｔＯＡｃ５：１）によって精製し、化合物２００２を白色 固形物として得た(１２．３ｇ、２７．７ｍｍｏｌ、９２％)。¹Ｈ−ＮＭＲ（５ ００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ５．３７〜５．３２(ｍ、１Ｈ、Ｃ−６Ｈ)、４．７ ２(ｂｒｓ、１Ｈ、ＴＨＰメチンＨ)、３．９５〜３．８８(ｍ、１Ｈ、ＴＨＦ ＣＨ ₂Ｏ)、３．６２〜３．４７(ｍ、４Ｈ、ＴＨＦ ＣＨ ₂ＯおよびＣ−３Ｈおよ びＣ−２４Ｈ)、１．０１(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．９３(ｄ、Ｊ＝６．６Ｈ ｚ、Ｃ−２１Ｈ)、０．６８(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)；ＩＲ（ＣＨＣｌ₃）３６１ ０、２９００ｃｍ^-1：ＭＳ（ＣＩ/イソブタン）ｍ/ｚ４４５(Ｍ＋１、２％)。３ ４３(Ｍ＋１−ＴＨＰＯＨ、１００％)：ｍ．ｐ．１３０〜１３１℃。 ２４−ｔ−ブチルジメチルシリルオキシ−３β−テトラヒドロピラニルオキシ コル−５−エン（２００３）の調製： 化合物２００２（７．６ｇ、１７ｍｍｏｌ）の無水ＣＨ₂Ｃｌ₂（３００ｍｌ） 溶液をｔ−ブチルジメチルシリルクロライド（ＴＢＤＭＳＣｌ、１．０Ｍ）とイ ミダゾール（０．５Ｍ）の無水ＣＨ₂Ｃｌ₂（３８．０ｍｌ、３８．０ｍｍｏｌＴ ＢＤＭＳＣｌ）溶液で処理した。溶液をアルゴン下で終夜室温にて攪拌した。得 られた溶液を飽和ＮａＨＣＯ₃水溶液中に注ぎ、混合物をＣＨ₂Ｃｌ₂（３×）で 抽出した。得られた固形物をフラッシュクロマトグラフィー（ＳｉＯ₂、ヘキサ ン：ＥｔＯＡｃを２０：１から５：１に濃度勾配させる）によって精製し、化合 物２００３を得た(９．４ｇ、１７ｍｍｏｌ、９８％)。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００Ｍ Ｈｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：５．３８〜５．３２(ｍ、１Ｈ、Ｃ−６Ｈ)、４．７２(ｂ ｒｓ、１Ｈ、ＴＨＰメチンＨ)、３．９５〜３．８８(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰＣＨ ₂Ｏ) 、３．６０〜３．４６(ｍ、４Ｈ ＴＨＰ ＣＨ ₂ＯおよびＣ−３ＨおよびＣ−２ ４Ｈ)、１．０１(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．９３(ｄ、Ｊ＝６．６Ｈｚ、Ｃ− ２１Ｈ)、０．８９(ｓ、９Ｈ、ｔ−Ｂｕ)、０．６７(ｓ、３Ｈ、 Ｃ−１８Ｈ)、０．０５(ｓ、６Ｈ、ＴＢＤＭＳ ＣＨ ₃)；ＩＲ(ＣＨＣｌ₃)２９ ００ｃｍ^-1；ＭＳ（ＣＩ/イソブタン）ｍ/ｚ５５９(Ｍ＋１、１％)、４７４(Ｍ ＋１−ＴＨＰ、１２％)、４５７(Ｍ＋１−ＴＨＰＯＨ、１８％)、３４３(Ｍ＋１ −ＴＨＰ−ＴＢＤＭＳＯＨ、６％)、３２５(Ｍ＋１−ＴＨＰＯＨ−ＴＢＤＭＳＯ Ｈ、１００％)；ｍ．ｐ．１１６〜１１８℃；Ｃ₃₅Ｈ₆₂Ｏ₃Ｓｉの分析計算値：Ｃ ＝７５．２１、Ｈ＝１１．１８；実測値：Ｃ＝７５．３７、Ｈ＝１１．２４。 ２４−ｔ−ブチルジメチルシリルオキシ−３β−テトラヒドロピラニルオキシ コル−５−エン−７−オン（２００４）の調製： 三酸化クロム（６．４３ｇ、６４．４ｍｍｏｌ）を無水ＣＨ₂Ｃｌ₂（１００ｍ ｌ）中に懸濁させた。アルゴン下で機械的に攪拌した懸濁液をドライアイス/ア セトン浴中で−７８℃まで冷却した。３,５−ジメチルピラゾール（６．１８ｇ 、６４．４ｍｍｏｌ）を固形物として懸濁液に添加し、混合物を−７８℃にて２ ５分間攪拌し、複合体を完全に形成させた。次いで、化合物２００３（３．１０ ｇ、５．３７ｍｍｏｌ）を固形物として混合物に添加し、反応混合物を徐々に室 温にまで加温し、終夜攪拌した。次いで、混合物を５００ｍｌ丸底一頚フラスコ に移し、シリカゲル（フラッシュグレード）を添加した。スラリーを柔らかい固 形状になるまで濃縮し、湿潤させて充填したフラッシュカラム（ＳｉＯ₂）の上 部にのせて、生成物をヘキサン：酢酸エチル（３０：１から１５：１から６：１ から３：１の濃度勾配）で溶出した。所望の生成物、化合物２００４（１．８０ ｇ、５９％）を白色固形物として得た。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃ ）Δ：５．６５＆５．６３(２Ｓ、１Ｈ、Ｃ−６Ｈ)、４．７０〜４．６４(ｍ、 １Ｈ、ＴＨＰメチン)、３．９０〜３．８１(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰ ＣＨ ₂Ｏ)、３． ７０〜３．６２(ｍ、１Ｈ、Ｃ−３ＨまたはＴＨＰ ＣＨ ₂Ｏ)、３．５７(ｔ、Ｊ ＝６．６Ｈｚ、２Ｈ、Ｃ−２４Ｈ)、３．５２〜３．４６(ｍ、１Ｈ、Ｃ−３Ｈま たはＴＨＰ ＣＨ ₂Ｏ)、１．１９(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．９３(ｄ、Ｊ＝ ６．３Ｈｚ、Ｃ−２１Ｈ)、０．９０(ｓ、９Ｈ、ｔ−ブチル)、０．６８(ｓ、３ Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)、０．０５(ｓ、６Ｈ、ＴＢＤＭＳ ＣＨ₃)；ＩＲ（ＣＨＣｌ₃ ）２９００、１６５０ｃｍ^-1；ＭＳ（ＣＩ/イソブタン）ｍ/ｚ５７３(Ｍ ＋１、１１％)、４８９(Ｍ＋１−ＴＨＰ、１００％)；ｍ．ｐ．１１８〜１２０ ℃。 ２４−ｔ−ブチルジメチルシリルオキシ−３β−テトラヒドロピラニルオキシ コル−５α−コラン−７−オン（２００５）の調製： 化合物２００４（１．０ｇ、１．７５ｍｍｏｌ）をＥｔＯＡｃ（７５ｍｌ）に 溶解し、酸化パラジウム（ＩＶ）（０．０１２ｇ、０．０４９ｍｍｏｌ）を添加 した。混合物を水素化装置（常圧）に収容した。真空排気して、溶解している酸 素を除去し、次いで水素を通気した。真空排気と水素通気工程を２回繰り返した 。水素下、常圧下で反応物を２．５時間攪拌した。反応混合物をセライトで濾過 し、真空下で濃縮した。粗精製物をフラッシュクロマトグラフィー（ＳｉＯ₂、 ヘキサン：ＥｔＯＡｃ２０：１からの濃度勾配）によって精製し、化合物２００ ５を白色固形物として得た(０．７０ｇ、７１％)。２.４−ｔ−ブチルジメチル シリルオキシ−３β−テトラヒドロピラニルオキシコル−５α−コラン−７β− オールを副産物として得た(２１％)。（注：この副産物は、コリン（Ｃｏｌｌｉ ｎ’ｓ）試薬を用いて６４％の収率で所望のケトン２００５に変換させることが できた。）化合物２００５：¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：４． ７３〜４．６６(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰメチンＨ)、３．９５〜３．８５(ｍ、１Ｈ、 ＴＨＰ ＣＨ ₂Ｏ)、３．６６〜３．５２(ｍ、３Ｈ、ＴＨＰＣＨ₂ＯおよびＣ−２ ４Ｈ)、３．５０〜３．４５(Ｍ、１Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、１．０８(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１ ９Ｈ)、０．９１(ｄ、Ｊ＝６．６Ｈｚ、Ｃ−２１Ｈ)、０．８９(ｓ、９Ｈ、ｔ− Ｂｕ)、０．６４(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)、０．０４(ｓ、６Ｈ、ＴＢＤＭＳ ＣＨ ₃ )；ＩＲ（ＣＨＣｌ₃）２９００、１６８５ｃｍ^-1；ＭＳ（ＣＩ/イソブタン） ｍ/ｚ５７５（Ｍ＋１，８５％）４９１(Ｍ＋１−ＴＨＰ、１００％)；ｍ．ｐ． １６６〜１７０℃；Ｃ₃₅Ｈ₆₂Ｏ₄Ｓｉの分析計算値：Ｃ＝７３．１２、Ｈ＝１０ ．８７；実測値：Ｃ＝７２．８８、Ｈ＝１０．７８。 ２４−ｔ−ブチルジメチルシリルオキシ−３β−テトラヒドロピラニルオキシ −５α−コラン−７α−オール（２００６）の調製： Ｋ−セレクトリド（Ｓｅｌｅｃｔｒｉｄｅ）^R（トリ−ｓｅｃ−ブチルボロハ イドライドカリウム）（８．９ｍｌ、ＴＨＦ中１Ｍ、８．９ｍｍｏｌ）を、室温 にて、アルゴン下でケトン２００５（１．７ｇ、３．０ｍｍｏｌ）の無水ＴＨＦ 溶液（５０ｍｌ）にシリンジを介して滴下した。反応混合物を油浴中で５０℃ま で加熱し、５時間攪拌した。混合物を室温まで冷却し、次いで３０％Ｈ₂Ｏ₂を、 ガスの発生が停止するまで、滴下することによって、反応を停止した。飽和ＮＨ₄ Ｃｌ水溶液を添加し、水溶液をＥｔ₂Ｏで抽出した(３×)。有機層を合わせて飽 和ＮａＨＣＯ₃水溶液(２×)、蒸留水（２×）および飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄 し、無水ＭｇＳＯ₄で乾燥し、濾過し、溶媒を真空下で除去した。粗精製物をフ ラッシュクロマトグラフィー（ＳｉＯ₂、ヘキサン：ＥｔＯＡｃ１０：１）で精 製し、アルコール２００６を白色固形物として得た(１．６ｇ、９４％)。¹Ｈ− ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：４．７３〜４．６６(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰ メチンＨ)、３．９５〜３．８５(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰＣＨ ₂Ｏ)、３．８２(ｓ、１ Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、３．６６〜３．５２(ｍ、３Ｈ、ＴＨＰＣＨ₂ＯおよびＣ−２４ Ｈ)、３．５０〜３．４５(ｍ、Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、１．０８(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ )、０．９１(ｄ、Ｊ＝６．６Ｈｚ、Ｃ−２１)、０．８９(ｓ、９Ｈ、ｔ−Ｂｕ) 、０．６４(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)、０．０４(ｓ、６Ｈ、ＴＢＤＭＳ ＣＨ₃) ；ＭＳ（ＣＩ/イソブタン）ｍ/ｚ５７７(Ｍ＋１、５％)、４９３(Ｍ＋１−ＴＨ Ｐ、２２％)、４７５(Ｍ＋１−ＴＨＰＯＨ、２６％)、４５８(Ｍ＋１−ＴＨＰＯ Ｈ−Ｈ₂Ｏ、３８％)、３４３(Ｍ＋１−ＴＨＰＯＨ−ＴＢＤＭＳＯＨ、８０％)、 ３２５(Ｍ＋１−ＴＨＰＯＨ−ＴＢＤＭＳＯＨ−Ｈ₂Ｏ、１００％)；ＩＲ（ＣＨ Ｃｌ₃）３４３０、２８６０ｃｍ^-1；ｍ．ｐ．１３０〜１３３℃；Ｃ₃₅Ｈ₆₄Ｏ₄Ｓ ｉの分析計算値：Ｃ＝７２．８６、Ｈ＝１１．１８；実測値：Ｃ＝７２．６９、 Ｈ＝１１．３２。 ７α−ベンジルオキシ−２４−ｔ−ブチルジメチルシリルオキシ−３β−テト ラヒドロピラニルオキシ−５α−コラン（２００７）の調製： 炎で乾燥させた丸底フラスコに攪拌子を入れ、水素化ナトリウム（鉱物油中６ ０％、２８ｍｇ、０．６９ｍｍｏｌ）を添加し、しきりとガス導入針を備え、ア ルゴンを通気した。無水ペンタンで洗浄して（３×）鉱物油を除去し、ペンタン を除去して水素化ナトリウムを粉末として得た。無水ＤＭＦ（２．０ｍｌ）を添 加した。アルコール２００６（４０ｍｇ、０，０６９ｍｍｏｌ）の無水ＴＨＦ（ ２ ｍｌ）溶液をシリンジを介して滴下した。反応混合物を終夜攪拌し、次いで油浴 中で２０分間４０℃まで加熱した。蒸留直後の臭化ベンジル（０．１６５ｍｌ、 １．３８ｍｍｏｌ）を滴下し、反応混合物を４０℃で１０時間攪拌した。反応物 を室温まで冷却し、溶媒を減圧下で除去した。フラスコを真空下に終夜放置し、 残存する全てのＤＭＦを除去した。粗精製物をフラッシュクロマトグラフィー(Ｓ ｉＯ₂、ヘキサン：ＥｔＯＡｃ５０：１)によって精製し、化合物２００７を白色 固形物として得た(４０ｍｇ、０．０６０ｍｍｏｌ、８７％)。ＥｔＯＡｃ濃度を 増加させる濃度勾配によって、出発物質（３ｍｇ、８％）だけでなく、７α−ホ ルメート（１ｍｇ、１％）を含む他の成分も回収された。化合物２００７：¹Ｈ −ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ７．３５〜７．２０(ｍ、５Ｈ、ベンジ ルＡｒ−ＣＨ ₂)、４．７３〜４．６６(ｍ、１Ｈ、メチンＨ)、４．５３５(ｄ、 Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４．５３(ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈ ｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４．２６(ｄ、Ｊ＝１２．２Ｈｚ、１/２Ｈ、 ベンジル−ＣＨ ₂)、４．２４５(ｄ、Ｊ＝１１．８Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂ )、３．９５〜３．８５(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰ ＣＨ ₂Ｏ)、３．６６〜３．５２( ｍ、３Ｈ、ＴＨＰ ＣＨ ₂ＯおよびＣ−２４Ｈ)、３．５０〜３．４５(ｍ、１Ｈ 、Ｃ−３Ｈ)、１．０８(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．９１(ｄ、Ｊ＝６．６Ｈｚ 、Ｃ−２１Ｈ)、０．８９(ｓ、９Ｈ、ｔ−Ｂｕ)、０．６４(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８ Ｈ)、０．０４(ｓ、６Ｈ、ＴＢＤＭＳ ＣＨ ₃)；ＭＳ（ＣＩ/イソブタン）ｍ/ｚ ６６８(Ｍ＋１，６％)、５８４(Ｍ＋１−ＴＨＰ、１８％)、４７５(Ｍ＋１−Ｔ ＨＰＯＨ ３０％)、４５７(Ｍ＋１−ＴＨＰＯＨ−ＨＯＢｎ、５８％)、３４３( Ｍ＋１−ＴＨＰ−ＨＯＢｎ−ＴＢＤＭＳＯＨ、１００％)、３２５(Ｍ＋１−ＴＨ ＰＯＨ−ＴＢＤＭＳＯＨ−ＨＯＢｎ、８３％)。 ７α−ベンジルオキシ−３β−テトラヒドロピラニルオキシ−５α−コラン− ２４−オール（２００８）の調製： 化合物２００７（０．０５２７ｇ、０．０７９ｍｍｏｌ）の無水ＴＨＦ（４ｍ ｌ）溶液をＡｒ下でテトラブチルアンモニウムフルオライド（ＴＢＡＦ）（０． ２３７ｍｌ、ＴＨＦ中１Ｍ、０．２３７ｍｍｏｌ）で処理した。出発物質がＴＬ Ｃによって確認されなくなるまで、溶液を攪拌した。溶媒を真空下で除去し、残 留物を５ｍｌＣＨ₂Ｃｌ₂中にとり、５ｍｌ飽和ＮａＨＣＯ₃溶液で洗浄し、水層 を５ｍｌＣＨ₂Ｃｌ₂で２回抽出した。有機層を合わせて無水ＭｇＳＯ₄で乾燥し 、濾過し、溶媒を真空下で除去した。フラッシュクロマトグラフィー（ＳｉＯ２ 、ヘキサン：ＥｔＯＡｃ８：１）により、化合物２００８（０．０３９５ｇ、９ ０％）を白色泡状固形物として得た。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃） Δ：７．３５〜７．３４(ｍ、５Ｈ、ベンジルＡｒ−Ｈ)、４．７１〜４．６９( ｍ、１Ｈ、ＴＨＰエーテルメチンＨ)、４．５８５(ｄ、Ｊ＝１１．８Ｈｚ、１/ ２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４．５８(ｄ、Ｊ＝１１．８Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル −ＣＨ ₂)、４．３１５(ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４ ．２９(ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、３．９４〜３．９ ０(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰＯＣＨ ₂)、３．６２〜３．５８(ｍ、３Ｈ、Ｃ−２４Ｈおよ びＴＨＰＯＣＨ₂)、３．５０〜３．４８(ｍ、１Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、３．４５(ｓ、 １Ｈ、７−Ｈ)、０．９２(ｄ、Ｊ＝６．６Ｈｚ、３Ｈ、Ｃ−２１Ｈ)、０．８１( ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．６３（ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ）(注：生成物はジア ステレオマー混合物である)；ＩＲ（ＣＨＣｌ₃）３６００、２９００ｃｍ^-1；Ｍ Ｓ（ＣＩ/イソブタン）ｍ/ｚ５５４(Ｍ＋１、２％)、３６１(Ｍ＋１−ＴＨＰ− ＨＯＢｎ、４２％)、３４３(Ｍ＋１−ＴＨＰ−ＨＯＢｎ、Ｈ₂Ｏ、１００％)；ｍ ．ｐ．５２〜５６℃；Ｃ₃₆Ｈ₅₆Ｏ₄分析計算値：Ｃ＝７８．２１、Ｈ＝１０．２ １；実測値：Ｃ＝７７．９３、Ｈ＝１０．３９。 ７α−ベンジルオキシ−３β−テトラヒドロピラニルオキシ−５α−コラン− ２４−アール（２００８）の調製： ＤＭＳＯ（０．０１ｍｌ、０．１４ｍｍｏｌ）のＣＨ₂Ｃｌ₂（０．１ｍｌ）溶 液を、攪拌中のオキサリルクロライド（０．００８ｍｌ、０．０９１７ｍｍｏｌ ）の無水ＣＨ₂Ｃｌ₂（２ｍｌ）溶液に−７８℃で、無水条件下で（乾燥管）滴下 した。この溶液を−７８℃で１５分間攪拌した、次いでステロイド２００８（０ ．０２３４ｇ、０．０４２３ｍｍｏｌ）の無水ＣＨ₂Ｃｌ₂（０．５ｍｌ）溶液を 滴下し、溶液を−７８℃で４０分間攪拌した。ジイソプロピルエチルアミン（Ｄ ＩＰＥＡ）（０．０８ｍｌ、０．４５８ｍｍｏｌ）を添加し、溶液を３０分間攪 拌しながら０℃まで加温した。飽和ＮａＨＣＯ₃水溶液（５ｍｌ）を添加し、溶 液 を５ｍｌＣＨ₂Ｃｌ₂で３回抽出した。有機層を合わせて、５ｍｌの飽和ＮａＣｌ 水溶液で洗浄し、無水ＭｇＳＯ₄で乾燥し、濾過し、溶媒を真空下で除去した。 フラッシュクロマトグラフィー（ＳｉＯ₂、ヘキサン：ＥｔＯＡｃ１０：１）に よって、化合物２００９（０．０２２６ｇ、９７％）を白色泡状固形物として得 た。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：９．７６(ｓ、１Ｈ、Ｃ−２ ４Ｈ)、７．３５〜７．３４(ｍ、５Ｈ、ベンジルＡｒ−Ｈ)、４．７１〜４．６ ９(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰエーテルメチンＨ)、４．５９(ｄ、Ｊ＝１１．８Ｈｚ、１/ ２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４．５８５(ｄ、Ｊ＝１１．８Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジ ル−ＣＨ ₂)、４．３０(ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４ ．２９(ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、３．９５〜３．８ ９(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰＯＣＨ ₂)、３．６３〜３．５８(ｍ、３Ｈ、Ｃ−２４Ｈおよ びＴＨＰＯＣＨ ₂)、３．５０〜３．４７(ｍ、１Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、３．４５(ｓ、 １Ｈ、７−Ｈ)、２．４９〜２．４２(ｍ、１Ｈ、Ｃ−２３Ｈ)、２．３７〜２． ３１(ｍ、１Ｈ、Ｃ−２３Ｈ)、０．９５８(ｄ、Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ、Ｃ−２ １Ｈ)、０．８１、(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．６３（ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ ）(注：生成物はジアステレオマー混合物である)；ＩＲ（ＣＨＣｌ₃）２９００ 、１７００ｃｍ^-1：ＭＳ（ＣＩ/イソブタン）ｍ/ｚ５５２(Ｍ＋１、０．４％)、 ４６５(Ｍ＋１−ＴＨＰ、３％)、４４９(Ｍ＋１−ＴＨＰＯ、１４％)、３７５( Ｍ＋１−ＴＨＰ−Ｂｎ、７％)、３５９(Ｍ＋１−ＴＨＰ−ＨＯＢｎ、６８％)、 ３４１(Ｍ＋１−ＴＨＰ−ＨＯＢｎ−Ｈ₂Ｏ、１００％)；ｍ．ｐ．５０〜５４℃ ；Ｃ₃₆Ｈ₅₄Ｏの分析計算値：Ｃ＝７８．５０、Ｈ＝９．８８；実測値：Ｃ＝７８ ．１１、Ｈ＝１０．０４。 ７α−ベンジルオキシ−３β−テトラヒドロピラニルオキシコレスタン−２４ ξ−オール（２０１０）の調製： 化合物２００９（０．３７４ｇ、０．６７９ｍｍｏｌ）の無水ＴＨＦ（１０ｍ ｌ）溶液をアルゴン下、室温にて、塩化イソプロピルマグネシウム（２ｍｌ、Ｔ ＨＦ中で２Ｍ、５．４３ｍｍｏｌ）で処理した。出発物質がＴＬＣ上で消失する まで、反応液を攪拌した。ＮＨ₄Ｃｌ水溶液（１０％、１５ｍｌ）を添加して、 反応を停止し、真空下でＴＨＦを除去した。蒸留水（５ｍｌ）を添加して、溶液 を１５ｍｌＣＨ₂Ｃｌ₂で３回抽出した。有機層を合わせて、飽和ＮａＣｌ水溶液 （１５ｍｌ）で洗浄し、無水ＭｇＳＯ₄で乾燥し、濾過し、溶媒を真空下で除去 した。フラッシュクロマトグラフィー（ＳｉＯ₂、ヘキサン：ＥｔＯＡｃ１２： １）によって、化合物２０１０（０．３１１７ｇ、７７％）を白色泡状として得 た。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：７．３５〜７．３４(ｍ、５ Ｈ、ベンジルＡｒ−Ｈ)、４．７１〜４．６９(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰエーテルメチン Ｈ)、４．５８５(ｄ、Ｊ＝１１．９Ｈｚ、１Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４．３１( ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４．２９５(ｄ、Ｊ＝１２ ．０Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、３．９４〜３．９１(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰ 、ＯＣＨ ₂)、３．５０〜３．４８(ｍ、１Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、３．４５(ｓ、１Ｈ、 Ｃ−７Ｈ)、３．３２〜３．３１(ｍ、１Ｈ、Ｃ−２４Ｈ)、０．８１(ｓ、３Ｈ、 Ｃ−１９Ｈ)、０．６３（ｄ、Ｊ＝２．４Ｈｚ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ）(注：生成物 はジアステレオマー混合物である)；ＩＲ（ＣＨＣｌ₃）３６０５、２９００ｃｍ^-1 ；ＭＳ（ＣＩ/イソブタン）ｍ/ｚ５９５(Ｍ＋１、１０％)、４０１(Ｍ＋１− ＴＨＰ−Ｂｎ−Ｈ２Ｏ、２５％)、３８５(Ｍ＋１−ＴＨＰ−ＨＯＢｎ、Ｈ₂Ｏ、 １００％)；ｍ．ｐ．５５〜５９℃；Ｃ₃₉Ｈ₆₂Ｏ₄の分析計算値：Ｃ＝７８．７４ 、Ｈ＝１０．５０；実測値：Ｃ＝７８．６５、Ｈ＝１０．５４。 ７α−ベンジルオキシ−２４ξ−ｔ−ブチルジメチルシリルオキシ−３β−テ トラヒドロピラニルオキシコレスタン（２０１１）の調製： 化合物２０１０（０．０５０ｇ、０．０８４ｍｍｏｌ）の乾燥ＣＨ₂Ｃｌ₂（１ ｍｌ）溶液を、ｔ−ブチルジメチルシリルクロライド（ＴＢＤＭＳＣ１、０．５ Ｍ）とイミダゾール（１．０Ｍ）の乾燥ＣＨ₂Ｃｌ₂（０．８０ｍｌ、０．４０ｍ ｍｏｌＴＢＤＭＳＣｌ）溶液で処理した。反応液を室温、アルゴン気流下で２４ 時間攪拌した。飽和ＮａＨＣＯ₃水溶液（５ｍｌ）を添加して、溶液を１０ｍｌ ＣＨ₂Ｃｌ₂で３回抽出した。有機層を合わせて、１０ｍｌ飽和ＮａＣｌ水溶液で 洗浄し、無水Ｎａ₂ＳＯ₄で乾燥した。濾過と真空下での溶媒除去に次いで実施し た、フラッシュクロマトグラフィー（ＳｉＯ₂、ヘキサン：ＥｔＯＡｃ２０：１ ）によって所望の生成物２０１１（０．０５７ｇ、９６％）が白色固形物として 得 られた。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：７．３５〜７．３４(ｍ 、５Ｈ、ベンジルＡｒ−Ｈ)、４．７０〜４．６９(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰエーテルメ チンＨ)、４．５９(ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１Ｈ、ベンジル−ＣＨ₂)、４．３１ ５(ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４．３１(ｄ、Ｊ＝１ ２．０Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、３．９４〜３．９１(ｍ、１Ｈ、ＴＨ ＰＯＣＨ ₂)、３．６２〜３．５８(ｍ、１Ｈ、ＴＨＰＯＣＨ ₂)、３．５０〜３． ４８(ｍ、１Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、３．４５(ｓ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、３．３７〜３．３ ５(ｍ、１Ｈ、Ｃ−２４Ｈ)、０．８９(ｄ、Ｊ＝１Ｈｚ、９Ｈ、ＳｉＣ（ＣＨ ₃）₃ 、Ｃ−２４位のジアステレオマー)、０．８１(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．６ ２(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)、０．０４および０．０３（２ｓ、６Ｈ、Ｓｉ（ＣＨ ₃ ）₂、ジアステレオトピックおよび/またはジアステレオマー）(注：生成物はジ アステレオマー混合物である)；ＩＲ（ＣＨＣｌ₃）２９００ｃｍ^-1；ＭＳ（ＣＩ /イソブタン）ｍ/ｚ７０９(Ｍ＋１、２０％)、３６７(Ｍ＋１−ＴＨＰＯＨ−Ｈ ＯＢｎ−ＴＢＤＭＳＯＨ、１００％)；ｍ．ｐ．５２〜５８℃；Ｃ₄₅Ｈ₇₆Ｏ₄Ｓの 分析計算値：Ｃ＝７６．２１、Ｈ＝１０．８０；観察値Ｃ＝７６．１１、Ｈ＝１ ０．８１。 ７α−ベンジルオキシ−２４ξ−ｔ−ブチルジメチルシリルオキシコレスタン −３β−オール（２０１２）の調製： 化合物２０１１（０．０５７ｇ、０．０８０３ｍｍｏｌ）をアルゴン下で乾燥 Ｅｔ₂Ｏ（３ｍｌ）に溶解した。ＭｇＢｒ２（０．１４２ｇ、０．７７１ｍｍｏ ｌ）を個体として速やかに添加し、出発物質がＴＬＣ上で消失するまで、混合物 を攪拌した。Ｈ₂Ｏ（１０ｍｌ）を添加し、混合物を１０ｍｌのＥｔ₂Ｏで３回抽 出した。有機層を合わせて、無水ＭｇＳＯ₄で乾燥し、溶媒を真空下で除去した 。フラッシュクロマトグラフィー（ＳｉＯ₂、ヘキサン：ＥｔＯＡｃ７：１）に よって、化合物２０１２（０．０４９３ｇ、９８％）を白色泡状物として得た。¹ Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：７．３６〜７．３５(ｍ、５Ｈ、 ベンジルＡｒ−Ｈ)、４．５９(ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂) 、４．３４(ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、３．６５〜３． ６０(ｍ、１Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、３．４７５(ｄ、Ｊ＝２．４Ｈｚ、１Ｈ、 Ｃ−７Ｈ)、３．４０〜３．３６(ｍ、１Ｈ、Ｃ−２４Ｈ)、０．９１(ｄ、Ｊ＝０ ．９Ｈｚ、９Ｈ、ＳｉＣ（ＣＨ ₃）₃、Ｃ−２４位のジアステレオマー)、０．８ ２(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．６５(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)、０．０５および ０．０４（ｓ、６Ｈ、Ｓｉ（ＣＨ ₃）₂、ジアステレオトロピックおよび/または ジアステレオマー）(注：生成物はジアステレオマーの混合物である)；ＩＲ（Ｃ ＨＣｌ₃）３６００、２９００ｃｍ^-1；ＭＳ（ＣＩ/イソブタン）ｍ/ｚ６２４(Ｍ ＋１、３％)、５０１(Ｍ＋１、３％)、５０１(Ｍ＋１−ＯＴＨＰ、６％)、３８ ５(Ｍ＋１−ＯＴＨＰ−ＴＢＤＭＳ、６８％)、３６７(Ｍ＋１−ＴＨＰＯＨ−Ｔ ＢＤＭＳＯＨ、１００％)；ｍ．ｐ．５５〜５８℃：Ｃ₄₀Ｈ₆₈Ｏ₃Ｓｉの分析計算 値：Ｃ＝７６．８６、Ｈ＝１０．９７；実測値：Ｃ＝７６．６９、Ｈ＝１０．８ ７。 ７α−ベンジルオキシ−２４ξ−ｔ−ブチルジメチル−シリルオキシコレスト −３−オン（２０１３ａ）および７α−ベンゾイルオキシ−２４ξ−ｔ−ブチル ジメチルシリルオキシコレスタン−３−オン（２０１３ｂ）の調製： 化合物２０１２（０．２２９ｇ、０．３６６４ｍｍｏｌ）の無水ＣＨ₂Ｃｌ₂（ ３０ｍｌ）溶液を、コーリンの（Ｃｏｌｌｉｎ’ｓ）試薬（０．３８５ｇ、１． ４９ｍｍｏｌ）で処理した。混合物を、アルゴン下、室温で終夜攪拌した。この 時点で、出発物質はＴＬＣによって確認されなかった。セライトを添加し、混合 物を２０分間攪拌し、次いでセライドパッドで濾過した。残留物をＣＨ₂Ｃｌ₂で 十分にすすいだ。溶媒を真空下で除去した。フラッシュクロマトグラフィー（Ｓ ｉＯ₂、ヘキサン：ＥｔＯＡｃ２０：１）によって、所望の生成物２０１３ａ（ ０．１９８ｇ、８７％）を白色固形物として、並びに７α−ベンゾエート２０１ ３ｂ（０．０１５ｇ、６．４％）を白色泡状物として得た。注：反応を高濃度で 開始した場合には、ベンゾエートはさらに高収量で得られた。化合物２０１３ａ ：¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：７．３５〜７．２７(ｍ、５Ｈ 、ベンジルＡｒ−Ｈ)、４．５５(ｄ、Ｊ＝１１．７Ｈｚ、１Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂ )、４．３２(ｄ、Ｊ＝１１．７Ｈｚ、ベンジル−ＣＨ ₂)、３．４９５(ｄ、Ｊ＝ ２．０Ｈｚ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、３．３８〜３．５５(ｍ、１Ｈ、Ｃ−２４Ｈ)、 １．０２(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．９０(ｄ、Ｊ＝０．８Ｈｚ、９ Ｈ、ＳｉＣ（ＣＨ₃）₃、Ｃ−２４位のジアステレオマー)、０．６７(ｓ、３Ｈ、 Ｃ−１８Ｈ)、０．０４および０．０３（ｓ、６Ｈ、Ｓｉ（ＣＨ₃）₃、ジアステ レトピックおよび/またはジアステレオマー）(注：生成物はジアステレオマーの 混合物である)；ＩＲ（ＣＨＣｌ₃）２９００、１６９０ｃｍ_-1；ＭＳ（ＣＩ/イ ソブタン）ｍ/ｚ６２４(Ｍ＋１、５０％)、５３４(Ｍ＋１−Ｂｎ、７％)、５１ ８(Ｍ＋１−ＯＢｎ、３６％)、４９２(Ｍ＋１−ＨＯＳｉ（Ｍｅ）₂ｔ−Ｂｕ、２ ８％)、３８３(Ｍ＋１−Ｃ₁₄Ｈ₃₀ＯＳｉ、１００％)。化合物２０１３ｂ：¹Ｈ− ＮＭＲ（５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：８．０３(ｄ、Ｊ＝７．３Ｈｚ、２Ｈ、ベ ンゾエートＡｒ Ｈ)、７．５９(ｔ、Ｊ＝７．４Ｈｚ、１Ｈ、Ａｒ)、７．４８( ｔ、Ｊ＝７．７Ｈｚ、２Ｈ、Ａｒ Ｈ)、５．２０(ｂｒ ｓ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、 ３．３５〜３．３１(ｍ、１Ｈ、Ｃ−２４Ｈ)、１．０８(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ) 、０．８６(ｄ、Ｊ＝３．７、９Ｈ、ＳｉＣ（ＣＨ₃）₃)、０．７１（ｓ、３Ｈ、 Ｃ−１８Ｈ）(注：生成物はジアステレオマー混合物である)；ＩＲ（ＣＨＣｌ₃ ）２９００、１６９０ｃｍ−１；ＭＳ（ＣＩ/イソブタン）ｍ/ｚ６３７(Ｍ＋１ 、３％)、５１６(Ｍ＋１−ＯＢｚ、１６％)、３８２(Ｍ＋１−ｏＢｚ−ＴＢＤＭ ＨＳＯＨ、１００％)；ｍ．ｐ．６２〜６５℃。 ７α−ベンジルオキシ−３ξ−(５，１０−ジ−ｔ−ブトキシカルボニル−１ ，５，１０−トリアザデシル)−２４ξ−ｔ−ブチルジメチルシリルオキシコレ スタン（２０１４ａ）の調製： 化合物２０１３ａ（０．０７ｇ、０．１１ｍｍｏｌ）の混合物と、約２当量の アミノ化合物３０１（化合物２０１８から化合物３０１への還元で得られた収率 ６０％の生成物として）と、および３Å分子ふるい（０．５ｇ）のＭｅＯＨ（６ ｍ１、３Åふるいは乾燥処理済み）溶液とをアルゴン下で、室温にて１２時間攪 拌した。ＮａＣＮＢＨ₃（０．３３ｍｌ、ＴＨＦ中１Ｍ、０．３３ｍｍｏｌ）を 添加し、溶液をアルゴン下で、室温にて２４時間攪拌した。混合物をセライトで 濾過し、残留物をＭｅＯＨおよびＣＨ₂Ｃｌ₂で十分に洗浄し、溶媒を真空下で除 去した。残留物をＣＨ₂Ｃｌ₂（１０ｍｌ）に溶解し、ＮａＯＨ水溶液（５％）で 塩基性にしたＨ₂Ｏ５ｍｌで２回洗浄し、飽和ＮａＣｌ水溶液５ｍｌで２回洗浄 した。水層を合わせて、ＣＨ₂Ｃｌ₂で逆抽出し、有機層を合わせて、無水ＭｇＳ Ｏ₄で乾燥した。濾過、真空下での溶媒の除去、およびフラッシュクロマトグラ フィー（ＳｉＯ₂、ＣＨ₂Ｃｌ₂中２％ＭｅＯＨからＣＨ₂Ｃｌ₂中１０％ＭｅＯＨ へ極性を増加させる濃度勾配）によって、所望の生成物２０１４ａ（０．０７ｇ 、６６％）およびｔ−ＢＯＣ基一つが脱離し、過剰のアミンが混合している高極 性生成物、化合物２０１４ｂを得た。化合物２０１４ａ：¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：７．３６〜７．２８(ｍ、Ｈ、ベンジル Ａｒ−Ｈ)、４ ．６３(ｄ、Ｊ＝１２．０Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４．５８(ｄ、Ｊ ＝１２．０Ｈｚ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４．３３(ｔ、Ｊ＝１．２５Ｈｚ、１Ｈ、 ベンジル−ＣＨ ₂)、３．４９(ｓ、１Ｈ、ｃ−７Ｈ)、３．４６〜３．１４(ｍ、 ８Ｈ、Ｎ（ＢＯＣ）ＣＨ ₂＆Ｃ−２４Ｈ)、２．９１〜２．８６(ｍ、２Ｈ、ＮＣＨ ₂ )、１．４７〜１．４１(ｍ、１８Ｈ、２×ＣＯＣ（ＣＨ ₃）₃)、０．９０(ｓ 、９Ｈ、ＳｉＣ（ＣＨ ₃）₃)、０．８４(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．６４(ｓ、 ３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)、０．０５および０．０４（ｓ、６Ｈ、Ｓｉ（ＣＨ₃）₂、ジ アステレオトピックおよび/またはジアステレオマー）(注：この生成物はジアス テレオマーの混合物)。 ７α−ベンジルオキシ−３β−（１，５，１０−トリアザデシル）コレスタン −２４ξ−オール(２０１５β)および７α−ベンジルオキシ−３α−（１，５， １０−トリアザデシル）コレスタン−２４ξ−オール（２０１５α）の調製： ＴＦＡ（１．８ｍｌ、２４ｍｍｏｌ）を化合物２０１４ａ（０．３８６ｇ、０ ．４ｍｍｏｌ）のＣＨＣｌ₃（１５ｍｌ）溶液に室温で添加した。出発物質がＴ ＬＣで確認されなくなるまで、反応物を攪拌した。真空下で溶媒を除去し、残留 物を分取ＴＬＣ（ＳｉＯ₂、２０００μｍ、ＣＨ₂Ｃｌ₂：ＭｅＯＨ：ＮＨ₄ＯＨ ６：３：１、Ｒ_f＝０．４６）によって精製し、所望の３β生成物２０１５β（ ０．１２２ｇ、４８％）と３α異性体２０１５α（０．１０９ｇ、４３％）とを 得た。化合物２０１５αおよび２０１５βを得る条件と同じ条件下で、化合物２ ０１４ｂをＴＦＡで処理することが可能であった。化合物２０１５β：¹Ｈ−Ｎ ＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：７．３２〜７．３５(ｍ、５Ｈ、ベンジル Ａｒ−Ｈ)、４．５７(ｄ、Ｊ＝１１．７Ｈｚ、１Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、４． ３１(ｄ、 Ｊ＝１１．７Ｈｚ、１Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、３．５２(ｓ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、 ３．２２〜３．２１(ｍ、２Ｈ、Ｃ−２４ＨおよびＮＣＨ ₂)、２．８６(ｔ、Ｊ＝ ７．１Ｈｚ、２Ｈ、ＮＣＨ ₂)、２．８１(ｔ、Ｊ＝６．６Ｈｚ、２Ｈ、ＮＣＨ ₂) 、２．７４(ｔ、Ｊ＝７．０Ｈｚ、２Ｈ、ＮＣＨ ₂)、２．６７(ｔ、Ｊ＝６．３Ｈ ｚ、２Ｈ、ＮＣＨ ₂)、０．８５(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．６８３(ｓ、１． ５Ｈ、Ｃ−１８、Ｃ−３４位のジアステレオマー)、０．６７８(ｓ、１．５Ｈ、 Ｃ−１８、Ｃ−２４のジアステレオマー)；ＭＳ（ｐｏｓ．ＦＡＢ）ｍ/ｚ６３８ ．６(Ｍ＋１、１００％)。化合物２０１５α：¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、Ｃ Ｄ₃ＯＤ）Δ：７．３５〜７．２２(ｍ、５Ｈ、ベンジル Ａｒ−Ｈ)、４．６１( ｄ、Ｊ＝１１．４Ｈｚ、１Ｈ、ベンジル−ＣＨ₂ )、４．２８(ｄ、Ｊ＝１１．５ Ｈｚ、１Ｈ、ベンジル−ＣＨ ₂)、３．５３(ｓ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、３．４２(ｓ 、１Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、３．２４〜３．２０(ｍ、２Ｈ、Ｃ−２４ＨおよびＮＣＨ ₂) 、３．０８〜３．０２(ｍ、２Ｈ、ＮＣＨ ₂)、２．９６(ｔ、Ｊ＝６．９Ｈｚ、２ Ｈ、ＮＣＨ ₂)、０．８５(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．６９１(ｓ、１．５Ｈ、 Ｃ−１８、Ｃ−２４位のジアステレオマー)、０．６８６(ｓ、１．５Ｈ、Ｃ−１ ８、Ｃ−２４位のジアステレオマー)；ＭＳ(ｐｏｓ．ＦＡＢ）ｍ/ｚ６３８．６( Ｍ＋１)、１００％)。 ３β−（１，５，１０−トリアザデシル）コレスタ−７α，２４ξ−ジオール （２０１６）の調製： 化合物２０１５β（０．０１２８ｇ、０．０２ｍｍｏｌ）の無水ＥｔＯＨ（８ ｍｌ）溶液に、触媒量の１０％Ｐｄ/Ｃおよび２滴の濃塩酸を滴下した。混合物 をパール（Ｐａｒｒ）の水素化装置に配置し、５５ｐｓｉ（Ｈ₂）下で２４時間 振とうした。溶液をセライトパッドで濾過し、残留物をＥｔＯＨおよびＭｅＯＨ で十分に洗浄し、溶媒を真空下で除去した。所望の精製物２０１６（０．００７ ４ｇ、６８％）を得た。生成物がＴＬＣで不純物を含有しなかった場合は、さら に精製することなしに使用した。ＴＬＣで不純物が観察された場合には、物質を フラッシュクロマトグラフィーによって精製した(ＳｉＯ₂、ＣＨ₂Ｃｌ₂：ＭｅＯ Ｈ：ＮＨ₄ＯＨ１５：４：１)。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：３ ．７９(ｓ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、３．２２〜３．１３(ｍ、６Ｈ、２×ＣＨ₂ ＮおよびＣ−２４ＨおよびＣ−３Ｈ)、３．０９(ｔ、Ｊ＝７．４、２Ｈ、ＣＨ ₂ Ｎ)、２．９９(ｔ、Ｊ＝７．３Ｈｚ、２Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ)、０．８７(ｓ、３Ｈ、Ｃ −１９Ｈ)、０．６９４(ｓ、１．５Ｈ、Ｃ−１８Ｈ、Ｃ−２４位のジアステレオ マー)、０．６９１(ｓ、１．５Ｈ、Ｃ−１８Ｈ、Ｃ−２４位のジアステレオマー )。 スクアラミン（化合物１２５６）の調製： 化合物２０１６（０．０１７６ｇ、０．０３２ｍｍｏｌ）を濃塩酸のＭｅＯＨ 溶液（１０ｍｌＭｅＯＨ中濃塩酸１ｍｌ）に溶解した。溶液を１５分間攪拌し、 真空下で溶媒を除去した。乾燥した粗生成物に、ＳＯ₃−ピリジン複合体（０． ０１０ｇ、０．０６４ｍｍｏｌ）を添加し、フラスコにアルゴンを通気した。無 水ピリジン（１ｍｌ）を添加し、油浴中で溶液を８０℃まで加温し、２時間攪拌 した。ＭｅＯＨ（２ｍｌ）を添加した。フラスコを油浴から出し、混合物を１５ 分間攪拌した。真空下で溶媒を除去し、残留物をＭｅＯＨに懸濁し、セライトパ ッドで濾過した。残留物をＭｅＯＨで十分に洗浄した。フラッシュクロマトグラ フィー（ＳｉＯ₂、ＣＨ₂Ｃｌ₂：ＭｅＯＨ：ＮＨ₄ＯＨ１２：４：１）により、所 望の生成物１２５６（０．０１１３ｇ、５６％）を白色固形物として得た。¹Ｈ −ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：４．１３〜４．１０(ｍ、１Ｈ、Ｃ− ２４Ｈ)、３．７９(ｓ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、３．２２〜３．１０(ｍ、５Ｈ、ＣＨ ₂ Ｎ)、３．０８(ｔ、Ｊ＝６．７Ｈｚ、２Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ)、２．９８(ｔ、Ｊ＝６． ８Ｈｚ、２Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ)、０．８７(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．７０(ｓ、３ Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)；ＭＳ（ｐｏｓ．ＦＡＢ）ｍ/ｚ６２８．４(Ｍ＋１、５７％)、 ５４８．５(Ｍ＋１−ＳＯ₃、２３％)、５３０．５(Ｍ＋１−Ｈ₂ＳＯ₄、１００％ )；高分解能ＭＳ（ｐｏｓ．ＦＡＢ）ｍ/ｚ６２８．４６６９(計算値：６２８． ４７２３)。 ５，１０−ジ−ｔ−ブトキシカルボニル−１，５，１０−トリアザデカン（３ ０１）の調製： ニトリル２０１８（０．０６２４ｇ、０．１８１ｍｍｏｌ）の無水Ｅｔ₂Ｏ（ ０．３０ｍｌ）溶液をＬｉＡｌＨ₄（０．０２４ｇ、０．６３ｍｍｏｌ）の無水 ジエチルエーテル（１ｍｌ）懸濁液に０℃において添加した。混合物を０℃にて ３０ 分間攪拌した。ＮａＯＨ水溶液（１Ｍ）を添加して、過剰のＬｉＡｌＨ₄を中和 し、得られた白色の懸濁物をセライトパッドで濾過した。残留物をＥｔ₂Ｏで十 分に洗浄し、有機層を合わせて、Ｈ₂Ｏで洗浄した。Ｈ₂Ｏ層をＥｔ₂Ｏで抽出し 、エーテル層を合わせて、飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄し、無水ＭｇＳＯ₄で乾燥 し、濾過し、溶媒を真空下で除去した。粗生成物３０１（０．０５６ｇ、８８％ ）の¹Ｈ−ＮＭＲスペクトル（５００ＭＨｚ）は、文献（Ｔｅｔｒａｈｅｄｒａ ｎ４６，１９９０，３２６７−３２８６）に報告されているものと同じであり、 この物質を精製しないで使用した。 ７α−ベンゾイルオキシ−３ξ−（５，１０−ジ−ｔ−ブトキシカルボニル） −１，５，１０−トリアザデシル）−２４ξ−ｔ−ブチルジメチルシリルオキシ コレスタン（２０２０）の調製： 化合物２０１３ａから化合物２０１４ａに転換させるために上記した方法を使 用して、化合物２０１３ｂ（０．１１０ｇ、０．１７２６ｍｍｏｌ）を化合物２ ０２０（０．１６６ｇ、９９％）に転換させた。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、 ＣＤＣｌ₃）Δ：８．１９(ｄ、Ｊ＝７．６Ｈｚ、１/２Ｈ、ベンゾエート−Ａｒ Ｈ)、８．０５(ｄ、Ｊ＝７．４Ｈｚ、３/２Ｈ、ベンゾエート−ＡｒＨ)、７．６ １〜７．５８(ｍ、１Ｈ、ベンゾエート−ＡｒＨ)、７．５５〜７．４５(ｍ、２ Ｈ、ベンジルＡｒ−Ｈ)、５．２３(ｓ、１/４Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、５．１６(ｓ、３/ ４Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、４．７８〜４．６４(ｍ、１Ｈ)、３．４０〜３．２２(ｍ、２ Ｈ)、３．２０〜３．０６(ｍ、３Ｈ、ＮＣＨ ₂)、２．９８〜２．８(ｍ、４Ｈ、 ＮＣＨ ₂)、０．６７３(ｓ、１．５Ｈ、Ｃ−１８、Ｃ−２４位のジアステレオマ ー)、０．６６７(ｓ、１．５Ｈ、Ｃ−１８、Ｃ−２４位のジアステレオマー)。 ７α−ベンソイルオキシ−３α−（１，５，１０−トリアザデシル）コレスタ ン−２４ξ−オール（２０２１α）および７α−ベンゾイルオキシ−３β−（１ ，５，１０−トリアザデシル）コレスタン−２４ξ−オール（２０２１β）の調 製： 化合物２０１４ａを化合物２０１５αおよび２０１５βに転換するために上記 した同じ方法で、化合物２０２０（０．１６６ｇ、０．１７１７ｍｍｏｌ）を化 合物２０２１αおよび２０２１β（３αおよび３β生成物の１：１混合物の定量 的収量）に転換した。化合物２０２１β：¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ₃Ｏ Ｄ）Δ：８．０１(ｄ、Ｊ＝８．３Ｈｚ、２Ｈ、ベンゾエート−ＡｒＨ)、７．６ １〜７．５９(ｍ、１Ｈ、ベンゾエート−ＡｒＨ)、７．５１〜７．４５(ｍ、２ Ｈ、ベンジル Ａｒ−Ｈ)、５．１４(ｓ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、３．２０〜３．１５ (ｍ、１Ｈ)、２．９０〜２．７５(ｍ、４Ｈ、ＮＣＨ₂)、２．７２(ｔ、Ｊ＝６． ９Ｈｚ、２Ｈ、ＮＣＨ ₂)、２．６５(ｔ、Ｊ＝６．７Ｈｚ、２Ｈ、ＮＣＨ₂)、０ ．８５(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．７２６(ｓ、１．５Ｈ、Ｃ−１８、Ｃ−２ ４位のジアステレオマー)、０．７２３(ｓ、１．５Ｈ、Ｃ−１８、Ｃ−２４位の ジアステレオマー)；ＭＳ（ｐｏｓ．ＦＡＢ）ｍ/ｚ６５２．５(Ｍ＋１、１００ ％)、５３０．５(Ｍ＋１−ＨＯＢｚ、６％)。化合物２０２１α：¹Ｈ−ＮＭＲ（ ５００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：８．０１(ｄ、Ｊ＝８．３Ｈｚ、２Ｈ、ベンゾエ ート−ＡｒＨ)、７．６１〜７．５９(ｍ、１Ｈ、ベンゾエート−ＡｒＨ)、７． ５１〜７．４５(ｍ、２Ｈ、ベンジルＡｒ−Ｈ)、５．１２(ｓ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ) 、３．１９〜３．１５(ｍ、１Ｈ)、２．８６(ｓ、１Ｈ)、２．７０〜２．６０( ｍ、４Ｈ、ＮＣＨ ₂)、２．６０〜２．５４(ｍ、２Ｈ、ＮＣＨ ₂)、２．５４〜２ ．４９(ｍ、２Ｈ、ＮＣＨ ₂)、０．７３(ｓ、３Ｈ、Ｃ−２４位のジアステレオマ ー)；ＭＳ（ｐｏｓ．ＦＡＢ）ｍ/ｚ６５２．５(Ｍ＋１、１００％)、５３０．５ (Ｍ＋１−ＨＯＢｚ、１０％)。 ７α−ベンゾイルオキシ−３α−（１，５，１０−トリアザデシル）コレスタ ン−２４ξ−硫酸塩（２０２２）の調製： 化合物２０１６を化合物２０１７に転換するために上記した方法のように、化 合物２０２１α（０．０２１４ｇ、０．０３２８ｍｍｏｌ）を化合物２０２２（ ０．０１９０ｇ、７９％）に転換した。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ ）Δ：８．２１〜８．１４(ｍ、２Ｈ、ベンゾエート−ＡｒＨ)、７．６２〜７． ５０(ｍ、２Ｈ、ベンゾエート−ＡｒＨ)、５．１８〜５．０９(ｍ、１Ｈ、Ｃ− ７Ｈ)、４．２２〜４．１６(ｍ、１/２Ｈ、Ｃ−２４Ｈ)、４．１０〜４．０６( ｍ、１/２Ｈ、Ｃ−２４Ｈ)、３．４３(ｂｒ、ｓ、１Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、３．２２〜 ３．１０(ｍ、５Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ)、３．０９(ｔ、Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ、 ＣＨ ₂Ｎ)、３．０４(ｂｒ、ｓ、２Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ)、２．９９〜２．９６(ｍ、２Ｈ 、ＣＨ ₂Ｎ)、０．６０(ｓ、３/２Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)、０．５２(ｓ、３/２Ｈ、Ｃ −１８Ｈ)(注：化合物はＣ−２４位のジアステレオマーの混合物である)。 ３−エピスクアラミン（３８８）の調製： 化合物２０２２（０．０６６ｇ、０．０８５ｍｍｏｌ）をＫＯＨのメタノール 溶液（５％、％ｍｌ）に溶解し、７時間還流した。ＴＬＣにより出発物質が確認 されなかった。濃塩酸の５％（ｖ/ｖ）メタノール溶液による中和に次いで、溶 媒除去およびフラッシュクロマトグラフィー（ＳｉＯ₂、ＣＨ₂Ｃｌ₂：ＭｅＯＨ ：ＮＨ₄ＯＨ１２：４：１）により、所望の生成物２０２３（０．０３６５ｇ、 ６７％）を得た。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：４．１４〜４． ０９(ｍ、１Ｈ、Ｃ−２４Ｈ)、３．８０(ｓ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、３．４８(ｓ、 １Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、３．２４〜３．１５(ｍ、４Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ)、３．１０(ｔ、Ｊ ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ)、３．０１(ｔ、Ｊ＝７．１Ｈｚ、２Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ )、０．８６(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９Ｈ)、０．６９（ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ）；Ｍ Ｓ（ｐｏｓ．ＦＡＢ）ｍ/ｚ６２８．５(Ｍ＋１、１８％)、５４８．５(Ｍ＋１− ＳＯ₃、６５％)、５３０．４（Ｍ＋１−Ｈ₂ＳＯ₄、１００％；高分解能ＭＳ（ｐ ｏｓ．ＦＡＢ）ｍ/ｚ６２８．４７１３(計算値：６２８．４７２３)。 ３−エピスクアラミンデスルフェート（３α−（１，５，１０−トリアザデシ ル）コレスタン−７α，２４ξ−ジオール、３８７）の調製： 化合物２０１５βを化合物２０１６に転換させるために上記したように、化合 物２０１５α（０．０８９ｇ、０．１３９７ｍｍｏｌ）を化合物３８７（０．０ ３７２ｇ、４９％）に転換した。¹Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ： ３．８０(ｓ、１Ｈ、Ｃ−７Ｈ)、３．４８(ｓ、１Ｈ、Ｃ−３Ｈ)、３．２４〜３ ．１５(ｍ、４Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ)、３．１０(ｔ、Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ)、 ３．００(ｔ、Ｊ＝７．３Ｈｚ、２Ｈ、ＣＨ ₂Ｎ)、０．８６(ｓ、３Ｈ、Ｃ−１９ Ｈ)、０．６９(２ｓ、３Ｈ、Ｃ−１８Ｈ)、ＭＳ（ｐｏｓ．ＦＡＢ）ｍ/ｚ５４８ ．５(Ｍ＋１、１００％)；高分解能ＭＳ（ｐｏｓ．ＦＡＢ）５４８．５１６２( 計算値：５４８．５１５５)。実施例Ｓ 化合物３９９の調製： ３−オキソ−４−コレン酸メチルエステル３００２の調製： ３β−ヒドロキシ−５−コレン酸メチルエステル３００１（２４．１６ｇ、５ ７．１１ｍｍｏｌ）と、アンモニウムトリ−ｔ−ブトキシド（５６．２７ｇ、２ ２８．４３ｍｍｏｌ）と、イソプロピルメチルケトン（５０ｍｌ）の無水トルエ ン（１５０ｍｌ）溶液を攪拌し、１２０℃まで（油浴）６時間加熱した。次いで 、反応混合物を室温まで冷却し、トルエン（１００ｍｌ）で希釈し、２ＮＨＣｌ （７０ｍｌ）で酸性化した。有機層を分離し、水層をトルエン（３×５０ｍｌ） で抽出した。有機層を合わせて、水(１×５０ｍｌ)、飽和ＮａＨＣＯ₃(２×５０ ｍｌ)、水(１×５０ｍｌ)、食塩水（１×５０ｍｌ）で洗浄し、乾燥し(ＭｇＳＯ₄ )、濾過し、真空下で蒸発させ、粗生成物を得た。トルエン、次いで酢酸エチル /ヘキサン（５、１０、２０および４０％）溶媒系を使用した粗生成物のフラッ シュクロマトグラフィーにより、不純物を含まない、白色固形物、３−オキソ− ４−コレン酸メチルエステル３００２（１３．４３ｇ、６０％）を得た。¹Ｈ− ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：０．７１(３Ｈ、ｓ、１８−ＣＨ₃)、０ ．９０(３Ｈ、ｄ、２１−ＣＨ₃)、１．１７(３Ｈ、Ｓ、１９−ＣＨ₃)、３．６６ （３Ｈ、ｓ、ＣＯ₂ＣＨ₃）および５．７１(１Ｈ、ｓ、４−Ｈ)。 ３−オキソ−５α−コラン酸メチルエステル３００３の調製： ３−オキソ−４−コレン酸メチルエステル３００２（１３．０ｇ、２３．６８ ｍｍｏｌ）の無水エーテル（５０ｍｌ）溶液に、蒸留した液体アンモニア（７０ ｍｌ）を−７８℃にて添加した。青色が１０分間持続して発色するようになるま で、リチウム（１．０ｇ、１４４．１ｍｍｏｌ）を少量添加した。その後、溶液 を固形のＮＨ₄Ｃｌ（５０ｇ）で中和した。アンモニアを蒸発させ、得られた残 留物を水（１００ｍｌ）とエーテル（１５０ｍｌ）とに分配した。水溶液をエー テル（３×５０ｍｌ）でさらに抽出した。抽出液を合わせて、食塩水で洗浄し( １×７０ｍｌ)、乾燥し(ＭｇＳＯ₄)、濾過し、真空下で濃縮し、粗生成物を得た 。酢酸エチル：ヘキサン（２：８）を使用したシリカゲルでの粗生成物のフラッ シュクロマトグラフィーにより、不純物を含有しない３−オキソ−５α−コラン 酸メチルエステル３００３（３．８５ｇ、２９％）を得た。¹Ｈ−ＮＭＲ（４０ ０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：０．６９（３Ｈ、ｓ、１８−ＣＨ₃、０．９１(３Ｈ 、 ｄ、２１−ＣＨ3)、１．０２（３Ｈ、ｓ、１９−ＣＨ₃）および３．６６(３Ｈ、 ｓ、ＣＯ₂ＣＨ₃)。 Ｎ−（３’−アミニプロピル）−Ｎ，Ｎ’−（ジ−第３級−ブトキシカルボニ ル）−１，４−ジアミノブタン３０１の調製： （ａ）１，４−ジアミノブタン（８．６ｇ、９７．６ｍｍｏｌ）のメタノール （３．０ｍｌ）溶液に、アクリロニトリル（６．２ｇ、１１６．８ｍｍｏｌ）の メタノール（３．０ｍｌ）溶液を０℃にて添加し、混合物を１２時間攪拌した。 真空下での溶媒の蒸留により、Ｎ−（２’−シアノエチル）−１，４−ジアミノ ブタンを無色の油状物質として得た(１１．０ｇ、８０％)。¹Ｈ−ＮＭＲ（４０ ０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：１．４５(４Ｈ、ｂｒ、−ＣＨ₂ＣＨ₂−)、２．４６( ２Ｈ、ｔ)、２．５８(２Ｈ、ｔ)、２．６２（２Ｈ、ｔ）および２．８４(２Ｈ、 ｔ)。 （ｂ）Ｎ−（２’−シアノエチル）−１，４−ジアミノブタン（５．６ｇ、４ ０ｍｍｏｌ）のジクロロメタン（１４０ｍｌ）溶液に、ジ−ｔ−ブチルジカルボ ネート（１．９２ｇ、８８ｍｍｏｌ）のジクロロメタン（２０ｍｌ）溶液を室温 にて滴下し、混合物を１２時間攪拌した。有機溶媒を真空下で除去し、残留した 油状物質を酢酸エチル（１５０ｍｌ）に溶解し、飽和ＮａＨＣＯ₃(２×７５ｍｌ )、水(２×７５ｍｌ)、食塩水（７５ｍｌ）で洗浄し、乾燥し(ＭｇＳＯ₄)、蒸発 させて、粗粘性油を得た。粗生成物をシリカゲルによるフラッシュクロマトグラ フィーによって精製し、不純物を含有しない（Ｎ−（２’−シアノエチル）−Ｎ ，Ｎ’−（ジ−ｔ−ブトキシカルボニル）−１，４−ジアミノブタンを無色の粘 性油（８．４ｇ、７５％）として得た。¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃ ）Δ：１．４４(９Ｈ、ｓ、ｔ−Ｂｏｃ)、１．４６(９Ｈ、合併ｓ、ｔ−Ｂｏｃ) 、２．６０(２Ｈ、ｍ)、３．１５(２Ｈ、ｍ)、３．２８（２Ｈ、ｔ）および３． ４５(２Ｈ、ｔ)；ＣＩＭＳ(ｍ/ｅ)：３４２(Ｍ＋１、６２％)、２３９(１００％ )、１８６(８３．１％)。 （ｃ）水素化アルミニウムリチウム（１．８ｇ、４８．９ｍｍｏｌ）の無水エ ーテル（３００ｍｌ）懸濁液に、０℃にて、Ｎ−（２’−シアノエチル）−Ｎ， Ｎ’−（ジ−ｔ−ブトキシカルボニル）−１，４−ジアミノブタン（４．８ｇ、 １３．８ｍｍｏｌ）の無水エーテル（１５０ｍｌ）溶液を滴下し、混合物を３０ 分間攪拌した。過剰な水素化アルミニウムリチウムを０℃にて、１ＮＮａＯＨで 中和し、得られた白色懸濁物をセライトで濾過し、エーテルで洗浄し、エーテル 抽出物を食塩水で洗浄し、乾燥し(ＭｇＳＯ₄)、濾過し、真空下で蒸発させ、粗 油を得た。粗生成物をシリカゲルのフラッシュクロマトグラフィーで精製し、不 純物が含有されていないＮ−（３’−アミノプロピル）−Ｎ，Ｎ’−（ジ−ｔ− ブトキシカルボニル）−１，４−ジアミノブタン３０１（３．３ｇ、６８％）を 無色の油状物質として得た。¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）Δ：１ ．４４(１８Ｈ、ｓ、２(ｔ−Ｂｏｃ))、２．６８(２Ｈ、ｔ)、３．０５〜３．２ ５(６Ｈ、ｂｒ)、および４．６５(１Ｈ、ｂｒ)；ＣＩＭＳ(ｍ/ｅ)：３４６(Ｍ＋ １、１００％)、２９０(３．１％)、２４６(３２．２％)。 ３β−Ｎ−１−｛Ｎ［３−(４−アミノブチル)］−１，３−ジアミノプロパン ｝−２４−ヒドロキシ−５α−コラントリヒドロクロライド３００５の調製： ３−オキソ−５α−コラン酸メチルエステル３００３（３．０ｇ、７．７３ｍ ｍｏｌ）とＮ−（３’−アミノプロピル）−Ｎ，Ｎ’−（ジ−ｔ−ブトキシカル ボニル）−１，４−ジアミノブタン３０１（４．０１ｇ、１１．６０ｍｍｏｌ） のメタノール溶液（１５０ｍｌ）に、３Å分子ふるい（１０ｇ）およびＮａＣＮ ＢＨ₃（０．７３ｇ、１１．６１ｍｍｏｌ）とを添加した。反応混合物を室温で １６時間攪拌した。セライトで濾過後、メタノールを真空下で除去した。残留物 をメタノール（５０ｍｌ）に溶解し、次いで予めＨＣｌガスを飽和させおいたメ タノール（１５ｍｌ）を添加した。反応混合物を室温で６時間攪拌した。真空下 でメタノールを除去した後、粗生成物をテトラヒドロフラン（１００ｍｌ）に溶 解し、次いで水素化アルミニウムリチウム（１．５０ｇ、３９．５２ｍｍｏｌ） を一度に添加した。反応混合物を緩やかに８時間還流した。反応混合物を０℃ま で冷却し(氷浴)、次いで白色固形の顆粒状物質が形成されるまで、２ＮＮａＯＨ を滴下した。フラスコを傾斜させてテトラヒドロフランを除き、残留物をトルエ ン（３×５０ｍｌ）で抽出し、有機層を合わせて、乾燥し(Ｋ₂ＣＯ₃)、濾過し、 真空下で蒸発させて、残留物を得た。残留物を無水メタノール（５０ｍｌ）に溶 解し、次いでＨＣｌガスを予め飽和させたメタノール（２０ｍｌ）を添加し た。１時間後、過剰なメタノールを真空下にて除去し、白色固形物を得た。クロ ロホルム：メタノール：イソプロピルアミン（１５：１：１）を使用したシリカ ゲルのフラッシュクロマトグラフィーによって粗生成物を精製し、不純物を含有 しない３β−Ｎ−１−｛Ｎ［３−(４−アミノブチル)］−１，３−ジアミノプロ パン｝−２４−ヒドロキシ−５α−コラントリヒドロクロライド３００５(１． １０ｇ、２４％)。¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ）Δ：０．７１(３Ｈ 、ｓ、１８−ＣＨ₃)、０．８９(３Ｈ、ｓ、１９−ＣＨ₃)、０．９６(３Ｈ、ｄ、 ２１−ＣＨ₃)、２．９０〜３．４０（９Ｈ、ｍ）および３．５１(２Ｈ、ｂｒ ｔ、ＣＨ₂Ｏ)；ＭＳ−ＦＡＢ(陽イオン)：４９０(Ｍ＋１、１００％)、４１９（ ８％）および３６０(７．５％)。 ３β−Ｎ−１−｛Ｎ［３−（４−トリフルオロアセチル）アミノブチル)］− １，３−ジ（トリフルオロアセチル）ジアミノプロパン｝−２４−ヒドロキシ− ５α−コラン３００６の調製： ３β−Ｎ−１−｛Ｎ［３−(４−アミノブチル)］−１，３−ジアミノプロパン ｝−２４−ヒドロキシ−５α−コラントリヒドロクロライド３００５（０．９５ ｇ、１．５８ｍｍｏｌ）の無水メタノール（２０ｍｌ）溶液に、室温で無水トリ エチルアミン（２．２９ｍｌ、１５．８ｍｍｏｌ）を添加し、次いでエチルトリ フルオロ酢酸（２．８ｍｌ、２３．５３ｍｍｏｌ）を添加し、混合物を２０時間 攪拌した。過剰のメタノールおよび低沸点有機試薬を真空下にて除去することに よって、白色残留物を得た。残留物を酢酸エチル（５０ｍｌ）に溶解し、次いで ２ＮＨＣｌ(３×２０ｍｌ)、水(２×２０ｍｌ)、飽和ＮａＨＣＯ₃（３×２０ｍ ｌ）および食塩水（１×２０ｍｌ）で洗浄し、乾燥し(ＭｇＳＯ₄)、濾過し、真 空下にて蒸発させて、不純物を含有しない白色固形物、３β−Ｎ−１−｛Ｎ［３ −（４−トリフルオロアセチル）アミノブチル)］−１，３−ジ（トリフルオロ アセチル）ジアミノプロパン｝−２４−ヒドロキシ−５α−コラン３００６（０ ．７７ｇ、７３％）を得た。¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ₃）Δ：０． ７１(３Ｈ、ｓ、１８−ＣＨ₃)、０．８９(３Ｈ、ｓ、１９−ＣＨ₃)、０．９６( ３Ｈ、ｄ、２１−ＣＨ₃)、３．０１〜３．５７(１１Ｈ、ｍ、４×ＣＨ₂Ｎ＋１× ＣＨＮ＋ＣＨ₂Ｏ)。 ３β−Ｎ−１−｛Ｎ［３−［４−トリフルオロアセチル）アミノブチル)］− １，３−ジ（トリフルオロアセチル）ジアミノプロパン｝−２４−ヒドロキシ− ５α−コラン２４−ピリジニウム硫酸３００７の調製： 化合物３００６（０．７０ｇ、１．０５ｍｍｏｌ）の乾燥ピリジン（２０ｍｌ ）溶液に、室温にて、三酸化硫黄ピリジン複合体（０．７５ｇ、４．７１ｍｍｏ ｌ）を添加し、混合物を６時間攪拌した。真空下にて過剰なピリジンを除去し、 固形の残留物を得、この固形物からクロロホルム（５×２０ｍｌ）を用いて硫酸 化化合物を抽出した。クロロホルムを除去することによって、白色の固形物、３ β−Ｎ−１−｛Ｎ［３−［４−トリフルオロアセチル）アミノブチル)］−１， ３−ジ（トリフルオロアセチル）ジアミノプロパン｝−２４−ヒドロキシ−５α −コラン２４−ピリジニウム硫酸３００７と過剰の試薬（１．０ｇ）とを得た。 さらに精製することなしに、粗生成物を次の工程に使用した。 ３β−Ｎ−１−｛Ｎ［３−(４−アミノブチル)］−１，３−ジアミノプロパン ｝−２４−ヒドロキシ−５α−コラン２４−硫酸カリウム（３９９）の調製： 粗化合物３００７（１．０ｇ）のメタノール溶液（２５ｍｌ）に、室温にて、 炭酸カリウム水溶液（１０ｍｌ）を添加し、混合物を終夜攪拌した。１８時間後 、過剰のメタノールおよび水を真空下にて除去し、残留物を得た。残留物をメタ ノール（３×３０ｍｌ）で抽出した。メタノール抽出液を合わせて、真空下にて 濃縮し、粗生成物を得た。ジクロロメタン：メタノール：水酸化アンモニウム（ ７：２：１）（使用前にＭｇＳＯ₄で乾燥した）を使用したシリカゲルで、粗生 成物をフラッシュクロマトグラフィーすることによって、白色固形物、３β−Ｎ −１−｛Ｎ［３−(４−アミノブチル)］−１，３−ジアミノプロパン｝−２４− ヒドロキシ−５α−コラン２４−硫酸カリウムすなわち化合物３９９(０．２２ ｇ、化合物３００６に対して３５％)。¹Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ₃ＯＤ ）Δ：０．７４(３Ｈ、ｓ、１８−ＣＨ₃)、０．９２(３Ｈ、ｓ、１９−ＣＨ₃)、 １．０(３Ｈ、ｄ、２１−ＣＨ３)、２．９５−３．２４（９Ｈ、ｍ）および４． ００(２Ｈ、ｂｒ ｔ、ＣＨ₂ＯＳＯ₃)；ＭＳ−ＦＡＢ（陽イオン）(ｍ/ｅ)：５ ７０(Ｍ⁺＋２、８５％)、４９０(４４％)、４３０(１５％)、４０２(１６％)； ＭＳ−ＦＡＢ（陰イオン）(ｍ/ｅ)：５６８(Ｍ⁺、３．７％)、４９５(１ ０％)、４５２(７％)、４３８(１７％)、４２３(１４％)。実施例Ｔ 化合物１４３６の調製： この化合物は、β−アラニンアルデヒドをカップリングさせ、次いで以下の略 図に示すように還元することによって、スクアラミンから容易に調製できる： 上記の方法によって、サメの肝臓に大量に含有されるスクアラミンから、スク アラミンの約５％の量が含有される化合物１４３６へ容易に転換させられる。 本願明細書の表ＩおよびＩＩに示す化合物などの他のアミノステロール化合物 も、上記と同様の方法で調製できる。治療活性および利用性 スクアラミンなどのアミノステロール化合物は、ＮＨＥの効果的な阻害剤であ ることが見いだされている。スクアラミンの抗菌作用機序を解明しようとする際 に、スクアラミンは都合のいいことに特定のＮＨＥアイソフォーム、すなわちＮ ＨＥ３を阻害するが、ＮＨＥ１を阻害しないことが見出されている。また、スク アラミンは特殊な機序を介して交換体を阻害することが調べられている。スクア ラミンおよび他のアミノステロールの特殊で、有利な作用および有用性は、さら に、以下に考察する実験結果からあきらかである。 ＮＨＥ３の特異的阻害： スクアラミンの、ＮＨＥ阻害の特異性を測定するために、テセ（Ｔｓｅ）らが ジャーナル バイオロジカル ケミストリー（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ.）１９ ９３年、２６８巻、１１９１７〜１１９２４ページに概説した手法によって、ヒ トＮＨＥ１またはヒトＮＨＥ３を発現する細胞株に対するスクアラミンの作用を 検定した。酸負荷後、または酸負荷を行わないで、内部ｐＨを測定し、結果を図 １Ａおよび図１Ｂに示す。 特に、レビン（Ｌｅｖｉｎｅ）らが、ジャーナル バイオロジカル ケミスト リー（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ.）１９９３年、２６８巻、２５５２７〜２５５ ３５ページに記載したダルベッコの改良イーグル（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ−ｍｏ ｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ）補足培地でウサギＮＨＥ３をトランスフェクト したＰＳ１２０繊維芽細胞を増殖させた。レビン（Ｌｅｖｉｎｅ）らが記載した ように、ｐＨ指標として、蛍光色素ＢＣＥＣＦ−ＡＭ（２'，７’−ビス（カル ボキシエチル）−５（６）−カルボキシフルオレセインアセトキシメチルエステ ル）を使用して、５μｇ/ｍｌスクアラミンで処理した後の内部ｐＨ変化につい て、ガラスカバー上に増殖させたトランスフェクト細胞を検定した。４０ｍＭＮ Ｈ₄Ｃｌと接触させることによって酸で前負荷した細胞について、細胞外ナトリ ウムイオン濃度回復の関数としてｐＨ回復速度をモニターし、その結果を図１Ａ に示す。酸で前負荷しなかった細胞については、スクアラミン添加後の時間の関 数として実際の内部ｐＨ値をモニターし、その結果を図１Ｂに示す。 図１Ａおよび図１Ｂからわかるように、スクアラミンはＫ_m値およびＶ_max値の プロトン濃度においてＮＨＥ３を阻害した。一方、アミロライドなどの既存の薬 剤はＶ_maxにのみ影響を与えた。 このように、アミノステロールスクアラミンは、細胞が分泌しうるプロトンの 絶対数を低下させる（Ｖ_max作用）ばかりでなく、この阻害剤の存在下で細胞に ｐＨを低下させる(Ｋ_m作用)。結果として、ナトリウム／プロトン交換体は、ア ミロライドよりもスクアラミンによってより顕著に不活性化される。 図１Ａおよび図１Ｂに示すＮＨＥ３に対する作用とは異なり、スクアラミンは 図２Ａおよび図２Ｂに示すようにヒトＮＨＥ１およびウサギＮＨＥ１に阻害作用 を示さなかった。ウサギまたはヒトＮＨＥ１をトランスフェクトしたＰＳ１２０ 繊維芽細胞を上記のように増殖させた。蛍光色素ＢＣＥＣＦ−ＡＭと、４０ｍＭ ＮＨ₄Ｃｌに接触させることによって、酸で前負荷した細胞とを使用して５μｇ/ ｍｌスクアラミンで処理した後の内部ｐＨ変化についても、ガラスカバー上に増 殖させたウサギＮＨＥ１（図２Ａ）またはヒトＮＨＥ１（図２Ｂ）を発現するト ランスフェクト細胞を検定した。細胞外ナトリウムイオン濃度回復の関数として ｐＨ回復速度をモニターした。 また、図１Ｂよりあきらかなように、これらの細胞の定常ｐＨも阻害された。 このように、プロトン交換に対してスクアラミンが影響を与えることによって、 細胞は、ポンプが活性化される前に、スクアラミンの存在下でｐＨを低下させら れる。 これらの研究によって、スクアラミンは、ＮＨＥ１よりもＮＨＥ３に対して特 異性を有する阻害剤であることが発見されている。さらに、スクアラミンはポン プが活性化される前に、細胞にｐＨを低下させる阻害剤とされている。図１Ａ、 １Ｂ、２Ａおよび２Ｂに示す結果は、スクアラミンは特有のＮＨＥ特異性を示す ことを表している。 ＮＨＥ３の発現： ＮＨＥ３に対するこのような特異的な影響が重要であることのにはいくつかの 理由がある。ＮＨＥ３は、限られた細胞種の先端面に含有され、ＮＨＥ１よりも さらに特殊化されている。治療上特に関心が集まる細胞は内皮細胞である。 ＰＣＲを使用して、ヒト微小血管およびヒト肺動脈内皮細胞におけるこの対向 輸送体の発現があきらかになった。チョムクツィンスキー（Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓ ｋｉ）らの改良法、アナル バイオケム（Ａｎａｌ. Ｂｉｏｃｈｅｍ.）１９８ ７年１６２巻１５６ページ、によって、原ヒト肺動脈内皮細胞(ＨＰＡＥＣ)、ヒ トメラノーマ細胞ｗｍ１６１７およびヒト微小血管内皮細胞（ＨＭＶＥＣ）か ら総ＲＮＡを単離し、次いで一次鎖ｃＤＮＡ合成キット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ Ｌ ａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ，ＣＡ）を使用してＭＭＬＶ逆転 写酵素で逆転写した。クローンテック（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）社から入手したヒト 小腸総ＲＮＡも同様に逆転写した。 アンプリタックディーエヌエーポリメラーゼキット（ＡｍｐｌｉＴａｑ ＤＮ Ａ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｋｉｔ(Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ，Ｎｏｒｗａｌ ｋ，ＣＴ)）の試薬と、ヒトＮＨＥ３に特異的な２種のオリゴヌクレオチド（Ｂ １３：５’−ＣＡＴＣＴＧＧＡＣＣＴＧＧＡＡＣＡＣＧ−３'；Ｂ１４：５’− ＣＧＴＡＧＣＴＧＡＴＧＧＣＡＴＣＣＴＴＣ−３'）の各々を４００ｎｇを含有 する５０μｌ反応混合物中で、約８０ｎｇのｃＤＮＡ産物を温度変化９４℃で５ 分を１サイクル、９４℃で５０秒、５７℃で１分、７１℃で２分を３８サイクル 、最後に７２℃で１０分、その後４℃に冷却するサイクルを行い増幅した。この 試料の２０μｌを１．７％アガロースゲルで分析した。以下の表２に示すように 、ほとんどの例において約５５０ｂｐの予想されたＮＨＥ３のＰＣＲバンドが観 察された。 各ＰＣＲ反応物の１μｌを、２種の内部プライマー（Ｂ１５：５’−ＣＴＧＧ ＴＣＴＴＣＡＴＣＴＣＣＧＴＧＴＡＣ−３'；Ｂ１６：５’−ＡＧＣＴＣＧＴＧ ＧＡＡ−ＧＡＣＡＴＴＣＡＧＧ）を用いて、温度変化９４℃で５分を１サイクル 、９４℃で５０秒、５８℃で１分、７１℃で２分を３５サイクル、最後に７２℃ で１０分、次いで４℃に冷却するサイクルで、さらに５０μｌ反応混合物中で、 ネスティド（ｎｅｓｔｅｄ）ＰＣＲによって分析した。この反応物の約２０μｌ をさらに１．７％アガロースゲルで分析した。以下の表に示すように、全ての場 合において、約４９０ｂｐの予想されたＮＨＥ３のＰＣＲバンドが観察された。 ＨＰＡＥＣおよびＨＭＶＥＣネスティドＰＣＲバンドの末端部からのＤＮＡ塩基 配列解析によって、両者は予想されたヒトＮＨＥ３の塩基配列を有することが確 認された。 このように、多種の内皮細胞の増殖/形状に関連がある事象はスクアラミンお よび機能的関連化合物によって阻害される。以下に記載した実験を実施して、こ のアミノステロールの効果を評価した。 インビトロにおける、内皮細胞、繊維芽細胞および上皮細胞の増殖阻害： 形質転換されていないヒト細胞をスクアラミンの濃度を増加させる条件下で増 殖させるとき、以下の実験によって示すように、内皮細胞はスクアラミンに対し て特に感受性を示す。ウシ肺内皮細胞、ヒト上皮細胞株ＭＣＦ１０Ａ、およびヒ ト包皮繊維芽細胞を、ペプチドおよびスクアラミンを含む１２種の膜作用剤の存 在下でインキュベートした。 具体的には、ウシ肺内皮細胞、ヒト上皮細胞系ＭＣＦ１０Ａ、およびヒト包皮 繊維芽細胞を以下の１２種の膜作用剤：(１) ＲＧＤ［ＫＩＡＧＫＩＡ］₃−ＮＨ₂ ；(２) ｄ−［ＫＫＬＬＫＫＬ］₂−ＮＨ₂；(３) スクアラミン；(４) ＳＷＬＳ ＫＴＡＫＫＬＥＮＳＡＫＫＲＩＳＥＧＩＡＩＡＩＱＧＧＰＲ；(５) ＦＬＧＧＬ ＩＫＩＶＰＡＭＩＣＡＶＴＫＫＣ；(６) マガイニン（Ｍａｇａｉｎｉｎ）２；( ７) ＰＧＬＡ；(８) ＧＦＡＳＦＬＧＫＡＬＫＡＡＬＫＩＧＡＮＬＬＧＧＴＰＱ Ｑ；(９) ＰＲ−３９；(１０) １−［ＫＫＬＬＫＫＬ］₂−ＮＨ₂（１１）セクロ ピン（Ｃｅｃｒｏｐｉｎ）Ｂ；および(１２)［ＫＩＡＧＫＩＡ］₃−ＮＨ₂の存在 下でインキュベートした。細胞増殖は６００ｎｍの吸光度によって測定した。結 果を図３Ａ〜３Ｃに示す。 図３Ａからあきらかなように、スクアラミンは１μｇ/ｍｌでウシ肺動脈内皮 細胞（ＢＰＥ）の増殖を阻害した。一方、１０μｇ/ｍｌでは上皮細胞（図３Ｂ ）および繊維芽細胞（図３Ｃ）系の増殖に全く影響を与えなかった。しかしなが ら、上皮細胞の増殖を阻害したペプチドはＢＰＥに対しては全く影響を与えなか った。このように、内皮細胞は、繊維芽細胞および上皮細胞よりもスクアラミン に対する感受性が強い。 インビトロにおける内皮細胞の索状組織形成阻害 内皮細胞は、インビトロの種々の早期形成段階において、毛細管に似た管状集 合物を形成する能力を有する。必須増殖因子と効果的な基層のある比較的特異的 な条件下で、このような変換が生じる。増殖因子と内皮細胞との相互作用および 基層への付着がＮＨＥを活性化することが報告されている。この交換体の活性化 は、内皮細胞の多細胞管状構造への形態変換が続いて生じるために必要であると 考えられる。 ＶＧＥＦ（血管内皮増殖因子）の存在下で培養したとき、ヒト微小血管細胞が 形成する索状様構造に対する化合物の効果と、コラーゲンマトリックスに対する 塩基性繊維芽細胞増殖とを評価するために、標準的な索状組織形成検定法を使用 した。結果を以下の表に示す。 表３に示すように、スクアラミンは約０．１μｇ/ｍｌで索状組織形成を阻害 し、これと比較して、フマギリン（Ｆｕｍａｇｉｌｌｉｎ）は１０μｇ/ｍｌで 同活性を示す。これらの濃度では、スクアラミンは細胞の生存または増殖に顕著 に影響するとは思われない。インビトロにおけるこのような性質は、さらに複雑 なインビボモデルにおける抗血管新生作用とおおよそ関連があると思われる(Ｇ ｏｔｏ ｅｔ ａｌ.，Ｌａｂ Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ６９，１９９３， ５０８−５１８参照)。 ＬＰＳの誘導による好中球のヒト臍静脈内皮細胞への付着： リポポリサッカライド（ＬＰＳ）およびある種のサイトカインによるある種の 刺激に内皮細胞を接触させると、細胞膜上に特定の接着分子が誘導され、白血球 の結合を促進する。これらの白血球−内皮細胞相互作用は、細菌侵入部位への白 血球の局在化および毛細血管から周囲組織空間への白血球の血管外遊出の促進に 必要であると考えられる。白血球接着分子には、セレクチン（Ｓｅｌｅｃｔｉｎ ｓ）およびＩＣＡＭ−１がある。 スクアラミンがこの特別な内皮細胞機能を阻害するかどうかを測定するために 、ギャンブル（Ｇａｍｂｌｅ）らの、ジェイ イム メソッド(Ｊ．Ｉｍｍ．Ｍ ｅｔｈｏｄｓ)１９８８年１０９巻１７５〜１８４ページに概説されるように、 標準的な接着検定法を実施した。内皮細胞系における細胞表面リガンドの発現は 、ヒト臍静脈内皮細胞、精製好中球およびＬＰＳ（１００ｎｇ/ｍｌ）およびＴ ＮＦ−α（４０ｎｇ/ｍｌ）などの細胞表面リガンドの誘導因子を使用する系で の顆粒球への接着を起こすことが報告されている。これらの実験系において、ウ ェルあたり約２×１０⁵個のヒト臍静脈細胞（継代数２〜６）を播種した。無血 清培地で終夜細胞を増殖させた。誘導するために、好中球を添加する６時間前に ＴＮＦ−α（４０ｎｇ/ｍｌ）を内皮細胞に添加するか、または４〜６時間前に ＬＰＳ（１００ｎｇ/ｍｌ）を添加した。ＬＰＳ結合たんぱく質の原料を提供す ることために、ウェルに１％ＦＢＳを添加することによってＬＰＳ応答が増加さ れることが見出された。内皮細胞の活性化後に、ウェルあたり約５０×１０⁶個 の好中球を添加した。プレートを室温で３０分緩徐に振とう後に、培地を除去し 、無血清培地で３回洗浄し、各ウェルの写真を撮影した。ＬＰＳまたはＴＮＦ− α添加時に１０μｇ、１．０μｇまたは０．１μｇのスクアラミンをに添加する ことによって、スクアラミンの影響を試験するための実験を実施した。好中球の 添加時に第２の同量のスクアラミンを添加した。ＩＣＡＭ−１のモノクローナル 抗体を陽性対照とした。 ３種の濃度を使用したとき、活性化ヒト内皮細胞を使用した好中球接着に対す るスクアラミンの阻害作用は観察されなかった。好中球の添加前にＩＣＡＭ−１ のモノクローナル抗体４０μｇ/ｍｌを添加したときは、約５０％の接着阻害が 観察された。 これらの結果は、インビトロにおいては、スクアラミンによる内皮細胞のＮＨ Ｅの阻害は、増殖および毛細管形成に影響を与えるが、この細胞内の全ての信号 伝達経路を阻害するわけではないことを示している。このように、白血球を感染 部位へ遊走させる内皮細胞の能力などのある種の”ハウスキーピング”機能はス クアラミンによって妨害されない。これは、スクアラミンは血管新生を阻害する ために使用することはできるが、感染部位または炎症部位への白血球の遊走など のある種の重要な内皮細胞機能を阻害することはないことをあきらかにしている 。 増殖阻害作用： 漿尿膜モデル： 典型的な漿尿膜モデルを使用して、スクアラミンが毛細管増殖阻害剤であるこ とが見出されている。漿尿膜モデル（ＣＡＭモデル）内において増殖中の毛細管 は、新たな血管増殖を阻害する能力に関して薬剤の効果を評価する系として使用 されている。血管新生は、胚発生の第１週に極めて活発である。その後、毛細管 増殖は、”新規”形成ではなく、主に”伸長”が特徴となる。 標準的な検定法においては、薬剤は、血管新生が生じる胚領域に局所的に適用 される。薬剤適用から約７日に目視検査によって評価して、この過程を阻害する 能力によって薬剤を評価する。新規毛細管形成期間中に血管の増殖を阻害するが 、毛細管形成期以降の毛細管増殖は阻害しない薬剤は、特異性の低い毒性物質と は識別され、”特異的な”血管新生阻害剤として一般に認められる。使用した検 定法は、アウエルバッハ（Ａｕｅｒｂａｃｈ）らの、ファルマ セラ（Ｐｈａｒ ｍａ．Ｔｈｅｒ.）１９９１年５１巻１〜１１ページに詳細に記載されている。 結果を以下に表で示す。 表４からわかるように、３日令ＣＡＭに０．６５μｇ程度のスクアラミンを適 用しても、ＣＡＭ血管の血管新生が阻害された。一方、１３日令のヒナに１０倍 量のスクアラミンを適用しても阻害作用は発揮されなかった。 このように、典型的な血管新生検定法において、スクアラミンは、文献に現在 までに記載されている最も活性の強い化合物の効力に匹敵して、強力ではあるが 、特異的な阻害活性を示した。この作用は、毛細管増殖の毒性作用による阻害で はなく、血管新生の抑制に相当する。 ３〜５日ヒナ胚モデルの卵黄毛細管 ”典型的な”ヒナ漿尿膜モデルにおけるスクアラミンを評価する経過において 、このステロイドは３〜５日令のヒナ胚の毛細管の血管構造に劇的で急速な影響 を与えることが観察された。ヒナ胚卵黄毛細管検定法を使用して、毛細管の退行 を誘導する能力について、この化合物を試験した。０．１ｍｌの１５％フィコー ル（Ｆｉｃｏｌ）４００およびＰＢＳ中の胚に各化合物を添加し、６０分後に血 管 の退行を評価した。 スクアラミンは３−〜５−日令ヒナ胚の卵黄毛細管を阻害することが見出され た。３日令ヒナ胚は、多数の血管が出現し、”数字の８”形の構造をとる、すな わち、両極に向かって外側に伸びる血管の輪の中心に胚が位置する胚盤からなる 。この胚構造にスクアラミンを適用することによって(１５％フィコール（Ｆｉ ｃｏｌ）およびＰＢＳ中０．１ｍｌ)、卵黄の血管の進行的な”じゅず状化(ｂｅ ａｄｉｎｇ ｕｐ)”が生じ、最も細い毛細管からこのような変化を示し始める 。約１５分の遅滞期の後、一般に”静脈”側の毛細管と第２の毛細管との間に狭 窄が観察された。拍動性の血流が絶え間なく続いたことにより、行き止まりにな った管が”膨潤”し、つながっていた部分が切れ、”血島”に似た閉じた血管嚢 が形成された。この過程は進行し、一番太い血管だけが無傷のまま残った。胚の 心臓は絶え間なく活発に拍動した。出血は見られず、毛細管構造の完全性を反映 している。また、血流中の赤血球の破壊は顕微鏡では観察されず、溶血が生じて いないことを示している。 毛細管の”退行”と通常呼ばれる事象を証明すると思われるこの検定法を使用 して、６０分で効果を得るために必要なスクアラミンの最小濃度を決定すること ができる。結果を以下の表に示す。 表５からあきらかなように、培地０．１ｍｌ中にスクアラミンが０．１〜０． ０１μｇ含有されていれば、変化を誘導できる。種々の範囲の活性を有する化合 物が見出され、スクアラミン、化合物３１９および化合物４１５が特に活性が強 かった。この実験は、試験したステロイドは数分の時間間隔で毛細管を劇的に再 構成できることを示している。この結果は、スクアラミンはＮＨＥの阻害を介し てこの作用を発揮することを反映している。 オタマジャクシ検定法 オタマジャクシ、好ましくは発生段階５９〜６０のアフリカツメガエル（Ｘｅ ｎｏｐｕｓ ｌａｅｖｉｓ）を使用する、新規に開発された検定法を使用して、 オタマジャクシの尾における毛細管の閉塞をモニターすることによって化合物の 効果を検討した。胚組織と成体期の組織とをともに有する変態による移行期を示 すので、これらの発生段階の動物を使用した。本発明の化合物は、胚組織の形状 、生存および完全性に影響するが、成体組織には影響せず、強力で、特異性の高 い選択性を有する。例えば、動物の成体および胚の上皮全てを破壊する物質は毒 性物質と認められる。胚組織のみを破壊する物質は非常に特有な特異性を示す。 本発明の検定法において、オタマジャクシを、試験化合物の蒸留水、好ましく はその１００ｍｌを入れたペトリ血に入れる。試験化合物の好ましい濃度は約１ μｇ/ｍｌ乃至約１０μｇ/ｍｌである。液体の容量は、動物が自由に泳ぎ、溶液 から水分を摂取するのに十分な量である。このように、観察される結果は、薬剤 が経口経由で吸収され、その後全身に分布して生じる。液体の容量が、経口経由 の摂取を可能にするほど十分でない場合には、観察される効果は、体表面上皮を 介する吸収によるものになるだろう。従って、本発明の簡単な検定法によって、 化合物が経口で利用可能かどうかを識別することができる。 本発明の検定法の別の実施態様において、標準的な方法を使用して、化合物の 水溶液を直接動物の腹腔内に注射してもよい。約０．０５ｍｇ/ｍｌ乃至約０． ５ｍｇ/ｍｌの化合物の約０．０５ｍｌ水溶液の濃度が好ましい。 一定時間、典型的には約６０分経過後に、約１００倍の倍率の倒立顕微鏡下に て、オタマジャクシの尾の毛細管を通る血流の閉塞が観察される。 オタマジャクシを、１０μｇ/ｍｌのスクアラミンを含有する蒸留水中に入れ たとき、尾の毛細管の血流が止まるのが観察された。この過程は尾から頭部方向 に生じた。再も遠位部の血管内の血流が最初に止まり、次に太い血管内の血流が 止まった。この期間中、絶え間ない心拍動、大血管の拍動性膨張によってあきら かなように、循環器系は強靱性を保っており、極めて興味深いことには、四肢の 細い毛細管の血流は変化しないことが観察された。このように、血流の選択的な 停止が局部に観察された。動物をスクアラミン中に数日間維持すると、閉塞した 血管系によって灌流される動物の領域に対応して、尾ひれの末梢領域同様、尾の 最も遠位領域の閉塞の進行が観察される。 この作用は、あきらかに、尾の毛細管の定常期直径が選択的に変化することに よって生じる。内皮細胞のＮＨＥを阻害することによって、あきらかに、毛細管 を形成する細胞の形状が変化し、血流が低下する。オタマジャクシの”成体”部 分（四肢）の毛細管床の機能が妨害されないのは、スクアラミンがある種の毛細 管に選択性を有することを示す。オタマジャクシの尾毛細管閉塞検定の結果から 、化合物３１９、スクアラミンおよび化合物１４３６が、一般的な血管閉塞作用 を誘導することが見出された。 メラノーマの増殖抑制： 経口および非経口投与経路によるマウスにおけるメラノーマの増殖抑制： Ｃ５７ＢマウスのＢ１６メラノーマの増殖は、血管新生に依存する。従って、 これは、癌の増殖に対する血管新生阻害剤の効果を評価するために認知されたモ デルである。 癌の増殖に対する血管新生阻害剤の評価のための認められたモデルである、Ｃ ５７ＢマウスのＢ１６メラノーマ細胞の増殖を利用して、スクアラミンの、皮下 投与、腹腔内投与および経口投与の効果を評価した。Ｂ１６メラノーマ細胞の接 種物をＣ５７Ｂマウスの背に皮下移植した結果、図４Ａ〜４Ｃに示すように、３ ０〜４０日にわたってメラノーマ病変が進行的に増殖した。 このモデルでは、化学療法剤による治療の有無にかかわらず、転移の徴候はほ とんど観察されなかった。動物を皮下投与(図４Ａ)、腹腔内投与（図４Ｂ）また は経口投与（図４Ｃ）によってスクアラミンで治療したとき、腫瘍容量の用量依 存的な抑制が観察された。体重および血液学的要因の測定では、大きな低下を 示さなかった。スクアラミン自身は、非常に高濃度の場合を除いて、培養中のＢ １６に対してわずかな細胞増殖抑制作用しか示さないので、腫瘍のこのような応 答は毛細管発生の妨害に二次的であると説明される。 免疫寛容マウスにおけるヒトメラノーマの増殖抑制： 図５からあきらかなように、メラノーマ１２５０Ｌｕは、ＲＡＧ−１マウスに 移植後活発に増殖する。スクアラミンは、ＲＡＧ−１マウスのメラノーマ１２０ ５Ｌｕの増殖を用量依存的に抑制することが見出されている。 スクアラミンは、腫瘍が約０．１ｍｌに到達後投与され、図５によってあきら かなように、腫瘍の用量依存的であきらかな抑制が見られた。処理中止後、腫瘍 の増殖は未処理の対照と同様の速度で持続した。これは、この状況におけるスク アラミンの影響は可逆的であることを示している。 ウサギにおける腫瘍による角膜血管新生の抑制： ＶＸ２癌細胞をウサギの角膜に移植することによって、数日以内に新たな血管 が誘導された(Ｔａｍａｒｇｏ ｅｔ ａｌ.，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ５１，１９９１，６７２−６７５)。この癌は、新たな血管増殖を刺激する増殖 因子を分泌すると考えられる。このように、このモデルは、腫瘍の転移性拡散、 糖尿病性網膜症、黄斑変性およびリウマチ性関節炎を含む血管新生の病的疾患の 治療における治療有用性のインビボにおける証拠となる。 本実験は、公知の実験計画に基づき実施した。すなわち、評価する対象の薬剤 の一定濃度を含有するポリマーに隣接して腫瘍を移植した。ポリマーは腫瘍のす ぐ近くに徐々に薬剤を放出し、薬剤の局所濃度を高く持続させる。本実験におい て、ＥＬＶＡＸ４０Ｐ（ＤｕＰｏｎｔ，Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ，ＤＥ）のペレッ トに導入されたスクアラミンは、７日めおよび１４日めには約６０％、２１日め には約２５％新たな血管の形成を阻害した。 上記の実験によってあきらかなように、スクアラミンはＮＨＥ３の強力な阻害 剤となる。従って、スクアラミンは、インビボにおいて新たな血管形成が関与す る場合には常に、非常に有用な治療媒介となるはずである。 実際に、新たな血管形成に依存するいかなる病的な過程もＮＨＥ３の阻害によ って治療されうる。スクアラミンは、血管新生過程を阻害する薬剤として、血管 新生の妨害が病状進行の強度を低下させるような、血管新生の持続に依存する疾 患または障害の治療に対して治療上の有用性を有する。このように、スクアラミ ンは、固形腫瘍の増殖および転移、リウマチ性関節炎、乾癬、糖尿病性網膜症、 黄斑変性、血管新生緑内障、乳頭腫、水晶体後方線維増殖および臓器拒絶反応を 含む障害の治療に有用である。 さらに、他のアミノステロールは抗血管形成作用を示すことが報告されている 。上記のような、利用性を判定するための、ヒナ胚毛細管退行検定、オタマジャ クシ検定、内皮索状組織形成を阻害するための検定およびＮＨＥを直接阻害する ための検定を含む種々の検定法を化合物について実施した。上記のデータからあ きらかなように、ヒナ、オタマジャクシおよびインビトロにおける内皮細胞の索 状組織形成阻害から得られた結果はすぐれた相関性を示す。 これらの検定法を適用することによって、スクアラミンのすぐれた代替物とし て化合物３１９が見いだされた。実際に、ＮＨＥ阻害剤としての効力；簡単な合 成経路；特異性、すなわちＣＮＳ作用がない点においてはスクアラミンに勝るこ とが見出された。化合物３１９の特性をさらに以下に示す。 メラノーマ増殖抑制： 化合物３１９は、インビボにおいて、Ｂ１６メラノーマに対して作用すること が見出された。上記のマウスメラノーマ検定法から得られた結果を示す図６に見 られるように、化合物の皮下投与によって、Ｃ５７ＢマウスのＢ１６をスクアラ ミンとほぼ同じ程度抑制した(図４Ｂ)。 薬物動態学的クリアランス 化合物３１９はまた、スクアラミンより速やかな薬物動態学的クリアランスを 示す。クリアランスを評価するために、化合物３１９およびスクアラミンについ てマウスＩＶ ＰＫ試験を実施した。化合物を静脈内投与し、血液試料を１０分 ごとに採取した。投与したステロイドの濃度をＨＰＬＣ分析によって測定した。 図７に示すように、静脈投与後、化合物は約１４分の半減期でマウスの血流中か ら除去された。これと比較して、図８に示すように、スクアラミンは約３５分の 半減期で除去された。 化合物３１９の誘導体によってインビボにおいてクリアランスをさらに低下さ せることが可能であるはずである。薬物の一定の投与量で血中濃度を高くし、投 与回数を減らすために、血流中の薬剤の半減期を延長することは有用であること が多い。ポリアミンは、ポリアミン残基の遊離末端アミノ基を分解する種々の酸 化酵素によって容易に代謝される。セラー（Ｓｅｌｌｅｒ）ら、プログ ドラッ グ リザ（Ｐｒｏｇ．Ｄｒｕｇ．Ｒｅｓ.）１９９４年４３巻８８〜１２６ペー ジ参照。１級アミンをアルキル化することによって、一般に、この代謝経路は遅 延される。セラー（Ｓｅｌｌｅｒ）ら、同上。このように、化合物３１９または 代謝可能なポリアミンを有するいかなるステロイド化合物の１級アミンを単にア ルキル化することによって、この種の簡単な変更が生物学的寿命を延長すること が予想される。 アフリカツメガエルのオタマジャクシ検定法： 上記のオタマジャクシ検定法は、ほ乳類に導入されたときの各ステロイド化合 物の薬理学的対象を測定するためおよび合成化合物が属する薬理学的分類を決定 するための有利な方法である。検定において、ステロイド化合物の各々を１００ ｍｌの蒸留水に１０μｇ/ｍｌの濃度で溶解した。発生段階５９〜６０のアフリ カツメガエルのオタマジャクシを入れ、１時間後に光学顕微鏡および肉眼的観察 によって評価した。 試験したステロイド化合物は、この動物において異なる独特の薬理学的応答を 生じることが観察された： 化合物１２５６(スクアラミン)：尾の細い毛細管の血管閉塞。四肢の血流に は無影響。２時間以内に不活動および死亡が生じた。 ＦＸ１：１時間以内に糞物質の排泄増加。１２時間までに、溶液はかなりの 量の糞骸を含んだ。動物の循環系は充血しており、血液病理学的刺激を示唆して いる。 化合物１３６０：ある種の赤血球の膨潤および溶解が生じ、尾のある種の小 血管内に核が蓄積した。その後、これらの核による栓周囲の尾部分に組織の損傷 が生じた。 化合物１３６１：化合物１３６０と同様。 化合物１４３６：全体的な活動が徐々に低下。心拍動は依然として強力で、 神経系の抑制を示唆した。頭部および尾部のメラニン形成細胞が膨潤し始め、最 初は核が目に見えるほどになり、その後破壊して断片化した。動物は約２時間ま でに死亡した。 化合物１４３７：動物の尾および触覚などの胚部分を覆う上皮が層状に脱皮 し始めた。細胞の層は最初は無傷であるが、徐々に次々に剥離する。トリパンブ ルー染色は、細胞死が生じたことを証明する。動物は活発で、組織の損傷はほと んど見られなかった。 ＦＸ３：尾の筋束はミオグロビンが漏出し始めた。骨格筋の横紋がはっきり しなくなった。筋節が分離し始めた。 マイトジェン刺激によるヒトＴ細胞増殖の阻害 ヒトＴ細胞のマイトジェン刺激による増殖を阻害するための検定法などの、特 定の検定法を使用して、特有の生物活性を有するステロイドを識別した。マイト ジェンが誘導する細胞増殖は、ＮＨＥの活性に依存することが報告されている。 このように、どのステロイドが特有の細胞に対して作用するかを測定するために は、どのステロイドがマイトジェン（または増殖因子）が活性化する細胞増殖を 阻害するかを測定することのみが必要である。 Ｔリンパ球は、ＨＩＶ感染の宿主となるリンパ球様細胞である。ヒトリンパ球 の形質転換を阻害するステロイドは、原則として、ＨＩＶ感染中に活性化される 可能性が高いＮＨＥに作用する。実際に、ＧＰ１２０は、細胞受容体に結合する ことによって、海馬細胞のＮＨＥを活性化するので(Ｂｅｎｏｓ ｅｔ ａｌ.， Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９．１９５４．１３８１１−１３８１６)、同様 の事象がウィルスとリンパ球との相互作用によって早期に生じるという仮定は妥 当である。これは、次の検定法の基礎となった。 採取直後のヘパリン処理した血液を、１０μｇ/ｍｌフィトヘマグルチニン(Ｐ ＨＡ)を含む１０％ＦＣＳ添加ＲＰＭＩ培地を加えた組織培養フラスコに入れた 。その後、１、５および１０μｇ/ｍｌの精製した種々のステロイド化合物を加 えた。培養物を７２時間インキュベートし、その後、コルセミドを１μｇ/ｍｌ の濃度となるよう添加した。培養をさらに２時間続け、細胞を採取した。ギムザ 染色後に、標準的な細胞化学的方法を使用して、有糸分裂像を評価した。結果を 以 下の表に示す。 上記の表からわかるように、化合物１４３６は極めて強力に芽細胞の形質転換 を阻害し、１０μｇ/ｍｌでは７５％を上回る阻害が観察された。スクアラミン についてはこの濃度ではいくぶんかの影響は観察されたが、他のステロイドはか なり活性が弱かった。この簡単な検定法を使用することによって、Ｔ細胞リンパ 球に活発に伝播するウィルス感染を含むＴ細胞リンパ球の増殖性疾患の治療に使 用するための化合物１４３６を同定した。 関連のある細胞および適当な増殖因子を使用した、同様の種類の検定法は容易 に構成されうる。このように、血管形成後の血管平滑筋細胞の増殖を阻害する際 にどのステロイドが有用であるかを測定するためには、以下のように、ヒト冠動 脈平滑筋を用いた培養系を準備し、ＰＤＧＦ刺激によるこれらの細胞の増殖をど のステロイドが阻害するかを測定しさえすればよい。 種々の細胞の阻害 ベイカー（Ｂａｋｅｒ）ら、キャンサー レス（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ.）１９ ９３年５３巻３０５２〜３０５７の検定法を使用して、化合物１４３６は、非常 に広範囲にわたる種々の細胞を阻害することが観察された。以下の表７に記載す るように、組織培養で評価された悪性腫瘍、内皮細胞および血管平滑筋細胞全て は阻害作用に感受性を示した。このように、化合物１４３６は、多種類の組織の 、増殖因子に依存した増殖の抑制において適用できる。 ＮＨＥ３の阻害 化合物１４３６はまた、ウサギＮＨＥ３を阻害することが見出された。図１Ａ および１Ｂに関連して上記したように、ウサギＮＨＥ３をトランスフェクトした ＰＳ１２０繊維芽細胞を増殖させ、４０ｍＭＮＨ₄Ｃｌを接触させることによっ て酸を前負荷した。上記のように、１０μｇ/ｍｌの化合物との接触後の細胞外 ナトリウムイオン濃度の回復の関数としてｐＨ回復速度として表される細胞内部 ｐＨ変化を、蛍光色素ＢＣＥＣＦ−ＡＭを用いて検定した。結果を図１０に示す。 このように、化合物１４３６はＮＨＥ３の阻害剤である。しかしながら、上記 のように、培養中の細胞およびインビボにおけるいくつかのモデルにおいて評価 するとき、化合物１４３６が起こすＮＨＥ３の阻害からは、スクアラミンと化合 物１４３６との全く異なる薬理作用を十分に説明されない。これは、化合物１４ ３６は、ＮＨＥ３に加えて別のＮＨＥを阻害していたことを示唆した。妥当な候 補のＮＨＥは、少なくともリンパ球様細胞、脳および精巣において発現されるＮ ＨＥ５である(最近、クローニングされた、Ｋｌａｎｋｅ ｅｔ ａｌ.，Ｇｅ ｎｏｍｉｃｓ ２５，１９９５，６１５−６２２参照)。 ＮＨＥ５発現細胞の阻害 ＮＨＥ５は化合物１４３６によって影響される他のＮＨＥであるかどうかを調 べるために、この化合物によって阻害される細胞がＮＨＥ５を発現するかどうか を調べる試験を実施した。クランケ（Ｋｌａｎｋｅ）らの方法とクランケ（Ｋｌ ａｎｋｅ）らに記載されているような適当なＰＣＲプライマーとを使用して、Ｎ ＨＥ５は、化合物１４３６に感受性を示す全ての細胞において発現されることが 見出された(以下の表参照)。クローンテックラボラトリーズ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）（Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ，ＣＡ）社から購入した単 離総ＲＮＡまたは総ＲＮＡまたはポリＡ＋ＲＮＡから総ｃＤＮＡを調製した。最 初のＰＣＲサイクルの反応は、ヒトＮＨＥ１、ヒトＮＨＥ３またはヒトＮＨＥ５ に特異的なプライマーと８０ｎｇｃＤＮＡを用い、また、ｃＤＮＡ起源としてポ リＡ⁺ＲＮＡを使用する場合には、１．５ｎｇｃＤＮＡを用いて、上記表２に関 連して記載したように実施した。全ての場合においてアニーリング温度は５７℃ とした。次いで、第２のサイクルのＰＣＲ反応において、ＮＨＥ５検出用プライ マーを用いる第２のＰＣＲのアニーリング温度を６５℃にしたことを除いて、表 ２に関連して記載したような条件で、ヒトＮＨＥ１およびヒトＮＨＥ５について は半ネスティドＰＣＲ反応を実施し、ヒトＮＨＥ３についてはネスティドＰＣＲ 反応を実施した。結果を以下に示す。 ＮＨＥ３と塩基配列が似ているＮＨＥ５は化合物１４３６のより効果的な阻害 標的であると考えられる。ＮＨＥ３とＮＨＥ５を共に発現する細胞は、化合物１ ４３６による両ＮＨＥアイソフォームの阻害を受けるだろうが、スクアラミンの 存在下ではＮＨＥ３のみ阻害されるだろう。 マウス白血病の阻害： 化合物１４３６は多数の癌細胞の増殖に対して阻害活性を有するので、典型的 なマウス白血病モデルにおいて化合物１４３６を調べた(Ｂａｋｅｒ ｅｔ ａ ｌ.，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．５３，１９９３，３０５２−３０５７)。動物の１ ００％に白血病を生じさせる摂取量のＬ１２１０リンパ芽球性白血病細胞をＣ ５７Ｂマウスに接種した。１、５、１０ｍｇ/ｋｇの化合物１４３６を３日ごと にマウスに腹腔内投与した。図１１に示すように、化合物１４３６の最高投与量 においてかなりの延命が達成された。 治療経過中に測定された血液学的特性は特に興味深い。動物をシスプラチンと 化合物１４３６で治療した。以下の表９からあきらかなように、シスプラチンで 治療された動物は２８日めまでに、骨髄の赤血球前駆体の抑制されたため顕著な 貧血を発症した。一方、化合物１４３６で治療された動物はほぼ正常なヘマトク リット値を示し、その証拠にかなりの顆粒球数が認められた。 腫瘍増殖の相乗作用： 腫瘍の増殖は悪性細胞のクローン的伸展と支持血管供給の発生とに関係すると いう考えに基づいて、化合物１４３６とスクアラミンとを組み合わせたものにつ いて試験し、固形腫瘍増殖に相乗作用を発揮するかどうかを調べた。この概念を Ｂ１６メラノーマモデルにおいて評価した。 動物にＢ１６メラノーマを移植し、その後、化合物１４３６または１２５６を 併用または別々に投与して治療した。図１２からあきらかなように、スクアラミ ンを５ｍｇ/ｋｇ/日の用量で、または化合物１４３６を１０ｍｇ/ｋｇの用量で ３日ごとに投与したとき、腫瘍容量に対する重大な影響は観察されなかった。一 方、両薬剤を併用して投与したとき、腫瘍の増殖のかなりの低下が観察された。 スクアラミン１５ｍｇ/ｋｇ/日の投与または化合物１４３６単独のつまって許容 できるスケジュールによる投与はどちらもこの作用を発揮しなかった。このよう に、これら２種の化合物の併用は、血管新生に依存する腫瘍に対して、転移性拡 散を予防する可能性のある治療上の有用性を示す。 リンパ指向性ウィルスに対するアミノステロール化合物の効果： 化合物１４３６は、上記のように、好ましくない毒性作用を示すことなく、Ｐ ＨＡ刺激によるヒトＴ細胞の増殖を阻害し、マウスのリンパ芽球性白血病の増殖 を抑制するので、ＨＩＶの阻害剤としてインビトロで評価するための妥当な候補 物質となると思われた。ＰＨＡ刺激を受けたリンパ球に、感染多重度が１０のＨ ＩＶの臨床分離株を接種した。新鮮なリンパ球を採取し、ＰＨＡおよびＩＬ−２ で刺激した。３日後、ウィルス（ＨＩＶ臨床分離株）の１０００ＴＣＩＤを１時 間適用したＭ．Ｏ．Ｉ．は１：１０であった。細胞を洗浄し、用量応答的に培地 に薬剤を適用した。３日後、上清を１/２容量の新鮮培地および１/２容量の新鮮 薬剤と交換した。７日後、界面活性剤を添加し、ＨＩＶＰ−２４抗原をＥｌｉｓ ａによって測定した。リンパ球の生存については、ウィルスの遺伝子産物ｐ２４ の出現によって評価した。結果を以下の表に示す。 上記のように、１０μｇ/ｍｌの化合物１４３６は抗原の合成を効果的に９７ ％阻害したが、リンパ球の生存率は９５％に維持されていた。 上記の実験は、リンパ指向性のウィルス疾患の治療に対する化合物１４３６の 有用性をあきらかに裏付けている。これらの研究に基づいて、特定のウィルスの 特定の細胞標的の特定のＮＨＥ阻害剤を同定することによって、所定の感染性病 因に対する効果的な抗ウィルス治療が合理的に開発されるはずである。このよう に、呼吸器上皮細胞に対して作用するアミノステロール系ＮＨＥ阻害剤は、これ らの細胞に伝播するヘルペス、インフルエンザおよびＲＳＶなどの呼吸器系ウィ ルスの治療に効果的であるはずである。この概念は、ＣＮＳ（ヘルペス）および 肝臓（肝炎）に感染するウィルスに広げて考えることができる。この方法は、細 胞の増殖および効果的な細胞内のウィルス増殖に必要な、細胞ＮＨＥの活性化を 防ぐことによって、ウィルスの標的細胞への感染を予防する。 インスリン分泌に対する影響： 本発明のアミノステロール化合物の別の作用を検討する際に、膵臓の島細胞か らのインスリンの放出には、島細胞のＮＨＥの活性化、特にグルコースによって 刺激される機序を介して活性化される必要があることがわかった。島細胞の過剰 刺激は、ＩＩ型糖尿病における島細胞機能の欠失になんらかの作用をしている可 能性があると考えられる。また、島細胞ＮＨＥが過剰活性する遺伝的機序が、Ｉ 型糖尿病においてなんらかの作用をしていることが示唆されている。 このように、島細胞機能を抑制させられるなら、遺伝的罹患しやすい、または 後天的過程（肥満）を介して危険な状態に陥った個体の糖尿病の発症を遅延また は軽減させられる可能性がある。インスリンの分泌を司るＮＨＥを阻害すること は、このような状況における治療効果を生ずると考えられる。 ステロイド投与またはインスリンの分泌を司るＮＨＥの効果を検討するために 、サメの肝臓由来のアミノステロール化合物のいくつかを絶食マウスに投与した 。雄ＣＤ−１マウスを４つの治療群の１つに割り当てた。グルコメーター（Ｌｉ ｆｅｓｃａｎ Ｇｌｕｃｏｍｅｔｅｒ ＩＩ およびＯｎｅ Ｔｏｕｃｈ ｔｅ ｓｔ ｓｔｒｉｐｓ）を使用して全血糖を測定した。統計分析は、一元分散分析 (ＡＮＯＶＡ)、次いでボンフェローニ（Ｂｏｎｆｅｒｏｎｎｉ）のｔ−検定 によって実施した。結果を以下の表に示す。 上記のデータからあきらかなように、これらのステロイド化合物の投与後に血 糖値は正常の２〜３倍の間に増加した。第２群の絶食時血糖は、第１群と比較し て有意に上昇した(ｐ＜０．０５)。第４群の絶食時血糖は、第１群と比較して有 意に上昇した。このように、化合物１４３６のＤ５Ｗ（５％グルコース）溶液ま たは化合物１４３７の水溶液を静脈内投与することによってマウスに高血糖を惹 起したと思われる。基礎生理学的原理から示唆されるように、観察された高血糖 応答は、インスリンの分泌阻害によって生じると思われる。このように、化合物 １４３６などの化合物の長期的慢性投与は、Ｉ型糖尿病およびＩＩ型糖尿病の発 症予防または発症遅延に効力を有すると思われる。 動脈平滑筋の成長に対する効果： 本発明のアミノステロール化合物はまた、動脈内の平滑筋の増殖因子が介在す る成長の阻害に利用できると思われる。冠動脈血管形成後には、外科的に処置さ れた血管壁内の血管平滑筋の修復的成長に二次的に通常、再閉塞が生じる。この 過程は、一般に７〜１０日の経過を経て起こる。動脈内の平滑筋の増殖因子が介 在する成長を薬剤が予防できるかどうかを評価するために、ヒト冠動脈平滑筋の 成長に対する化合物１４３６の効果をインビトロにおいて調べた。化合物１４３ ６の結果を図１３に示し、スクアラミンの結果を図１４に示し、図１５は両者を 合わせた対数図である。 図１３からわかるように、約１０〜１２μｇ/ｍｌの化合物１４３６はこれら の細胞の増殖を抑制する効果を示した。例えば、生存性を喪失させることなく、 約１１μｇ/ｍｌのこのステロイドの存在下にて、細胞を静止状態に維持させる ことができた。この実験は、血管形成後の数日間の間に、近位血管における徐放 性投与によって、血管形成部位へ化合物１４３６を局所的に投与することによっ て、血管内皮が連続性を再生し、急性傷害部位周辺の細胞変化が沈静化する期間 、筋の成長を低下させることができたことを示唆する。 成長および体重増加に対する効果： 正常に成長するマウスにおいて化合物１４３６の生理的効果を評価している間 に、このステロイド化合物は、成長しているマウスにおける直線的成長および体 重増加を用量依存的に抑制することがあきらかになった。動物には１日目からＱ ＴＤ（ｉ．ｐ.）を投与した。図１６は、１０ｍｇ/ｋｇＱＴＤｉ．ｐ.、５ｍｇ/ ｋｇＱＴＤｉ．ｐ．および１ｍｇ/ｋｇＱＴＤｉ．ｐ．で治療したＣ５７Ｂマウ スは用量依存的に成長Ｇ低下したことを示す。第６回投与後、１０ｍｇ/ｋｇＱ ＴＤを投与した動物の成長は、治療開始から約１ケ月間に成長がほぼ完全に阻害 される程度まで抑制された。５ｍｇ/ｋｇＱＴＤを投与した動物は、未治療の対 照と比較して、成長が約５０％低下したが、１ｍｇ/ｋｇＱＴＤを投与した動物 は約１０％影響されただけであった。治療動物は外見上あきらかに健康で、全て の動物が活発で、肢体の均整は正常であり、悪液質はなく、外見上の臨床的健康 状態はすぐれていた。動物は、まるで下垂体切除動物のように見られた。 化合物１４３６は、多種多様の細胞および組織の増殖をあきらかに阻害し、こ のことは、ある程度は、観察した成長の根本的抑制を説明するものである。しか しながら、これらの動物の異常な健康良好状態は、他の機序が関与しているにち がいないこと、すなわち、下垂体機能の阻害に関係する機序を示唆している。化 合物１４３６は、下垂体前葉ホルモンの分泌を部分的に阻害して、観察された成 長抑制が生じると考えられる。 化合物１４３６の正確な機序にもかかわらず、この性質は、動物に投与された とき、予測できない様式の抗増殖作用を発揮することを示唆している。化合物１ ４３６は、増殖中の細胞に作用することによって、増殖因子が誘導する細胞の増 殖を阻害するだけでなく、中枢の内分泌レベルで増殖促進ホルモン分泌を阻害す る。このように、化合物１４３６は、動物を”成長阻害”状態にする。このよう な状態では、悪性細胞は、成長ホルモン、およびおそらく、ＬＨおよびＦＳＨな どのホルモンによる最適な外因性ホルモン刺激を受けない。インスリン同様、エ ストロゲンおよびプロゲステロンなどのホルモンの分泌の制御障害が起こる可能 性が高い。ウィルス感染細胞は生理的に好ましくない条件下に置かれ、ウィルス 感染効率は劇的に低下されるはずである。増殖が抑制された免疫学的異種細胞は 、これらの”異種”細胞を動態学的に捕獲する可能性を与えられた存在する免疫 系によって排除されるはずである。 動脈の抵抗性に対する効果： 化合物１４３６は、また静脈内（ｉ．ｖ.）投与によって、ラットの動脈抵抗 を低下させることも見出されている。２００ｇのラットの右頸動脈にカテーテル を挿入し、総投与量５ｍｇ/ｋｇまでの化合物を１０秒間で導入した。３０秒以 内に、平均動脈圧が約１００ｍｍＨｇから約７０ｍｍＨｇに低下し、脈圧が約４ ０ｍｍから約１０ｍｍまで顕著に低下した。血圧の低下にもかかわらず、心拍数 の有意な増加は観察されなかった。心拍出量が基本的に影響されなければ、原則 的には、全身血管抵抗が低下すると、血圧の低下が生じるだろう。 この効果は、重大な変化を生じることなく、３０分間継続した。その時点にお いて、４０μｇのノルアドレナリンを導入した。ほぼ即時の血圧上昇がみられ、 脈圧がそれに伴い増加した。このデータは、化合物１４３６の効果は、標準的な 薬理学的治療によって容易に回復可能であることを示している。 化合物１４３６の動脈抵抗および動脈血圧を低下させる能力は、抗高血圧剤と してのこの化合物の用途を示している。この化合物は代償性頻脈を誘発するとは 思われないので、正味の作用は、心臓の後負荷を低下させることである。循環器 系に対するこの種の効果の生理学的な結果は、心肥大および細動脈平滑筋増殖過 程を緩徐化することだろう。化合物１４３６はこのような性質を有するので、後 負荷の低下が所望されるうっ血性心不全の効果的な治療剤となるはずである。作 用の速やかさと回復の容易さ、および最小限の頻脈作用によって、この化合物は 有用な治療剤となる。 このように、化合物１４３６は過去には周知ではなく、有用な性質と利用性を 有する抗増殖性治療剤である。この化合物は、あきらかに特定の組織または全器 官系の増殖の抑制が所望される疾患に利用できる。 虚血の心毒性作用の抑制： ＮＨＥファミリーの阻害剤は、心虚血症状の治療に対して治療的役割を果たす 可能性があることが示唆されている。このような症状は心臓発作の後、心不全中 、ドナーから被移植者への臓器移植経過中に生じる。 化合物１４３６がこのような症状に有用かどうかを測定するために、以下の実 験を実施した。若体のアフリカツメガエルの心臓を生体から摘出した。クレブス −リンガー緩衝液とアドレナリン５０μｇ/ｍｌとを含有するペトリ皿に心臓を 入れ、肉眼で検査した。室温で、心臓は約１時間協調的（心房拍動に続いて心室 拍動）に拍動を継続した。１０μｇ/ｍｌの化合物１４３６の存在下では、自発 的拍動は２４時間まで継続した。心房ペースメーカーおよび心房拍動の心室への 伝導はこの期間中活発であった。 このようなエクスビボにおける心活動の持続現象を説明する正確な機序は十分 には解明されていないが、化合物１４３６は、ＮＨＥ３およびＮＨＥ５を阻害す ることによって、これらのＮＨＥを遮断することによる心臓内カルシウムの蓄積 を防ぐと考えられている。当該技術分野においては現在、虚血中に蓄積する細胞 内酸がＮＨＥによって細胞外ナトリウムと交換されると理解されている。また、 細胞内に流入されるナトリウムはその後、ナトリウム/カルシウム交換体の作用 によって、細胞外のカルシウムと交換されて排除される。心臓死および心不整脈 に至るのは、この経路を介してカルシウムが流入するためである。化合物１４３ ６は、ＮＨＥを遮断することによって、プロトンまたは酸が心細胞から流出し、 エネルギーの消費および拍出量を低下させるのを防ぎ、また障害性カルシウムの 流入を防いで、細胞を保護する作用を有する。 特徴的な検定法としての抗増殖性検定法および肺瘍増殖抑制検定法： 上記のように、オタマジャクシ検定法を使用して追加の化合物についてスクリ ーニングした。１０μｇ/ｍｌの化合物１４３６の存在下にて、発生段階５９〜 ６０のアフリカツメガエルのオタマジャクシは、神経系の抑制とともに、頭部、 体幹および尾のメラニン形成細胞の劇的な破壊を受けた。上皮細胞の完全性、血 流、赤血球量、組織の完全性、筋繊維の横紋または消化管活動には全く影響が観 察されなかった。 機能的に類似した化合物をスクリーニングするためにオタマジャクシ検定法を 使用して、化合物３５３、３７１および４１３は、化合物１４３６と同様の効果 を発揮することが見出された。これらのうち、化合物３５３は、上記のように合 成が容易なので、特に好ましい。この化合物はまた、他の有利な性質を示すこと も見出された。 上記の増殖抑制方法を使用して、以下に記載するように、化合物３５３はメラ ノーマおよび多数の癌細胞に対して強力な活性を示すことが測定された： また、ベーカー（Ｂａｋｅｒ）ら、キャンサー リス（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ. ）１９９４年、５３巻、３０５２〜３０５７ページの方法を使用したとき、図１ ７Ａに示すように、メラノーマの増殖に対する化合物３５３の効果は、最初の１ ２時間のインキュベーション中には効果は小さかったが、４８時間にわたって極 め て顕著であった。比較のために、ヒトメラノーマに対するスクアラミンの効果を 図１７Ｂに示す。 化合物３５３に接触させた細胞を分析すると、アポトーシス細胞死が誘導され たことがわかった。このように、このアミノステロール化合物は、化合物１４３ ６と同じ選択性の高い細胞死機序を示す。 上記したように、化合物１４３６はオタマジャクシにおいて、メラニン形成細 胞破壊作用を示すが、この化合物は、スクアラミンとほぼ同じ強さで卵黄毛細管 を退行させる。これとは違って、化合物３５３は、ヒナ胚毛細管には何ら影響を 示さない。このように、化合物３５３は、ＮＨＥ３より強力にＮＨＥ５を阻害し 、化合物１４３６よりも選択性も大きいと思われる。化合物３５３は、天然に存 在する分子より特異性が高いアミノステロール化合物を製造することが可能であ ることを示している。 化合物１４３７（画分４）はめずらしいエルゴステロール様側鎖を含有する。 オタマジャクシの尾を覆う胚上皮に対する劇的な作用に基づいて、この分子はサ メから抽出される他の全てのステロイド類から容易に識別される。 上記のオタマジャクシ検定法において、１０μｇ/ｍｌのこのステロイド化合 物に接触させてから６０分以内に、仮性皮膚が層状に剥離するのが観察された。 この変化が迅速に起こったことから、この上皮組織が発現するＮＨＥが標的であ ることが示唆される。接着に関係するＮＨＥ活性および細胞膜たんぱく質は相互 に交信しているので(Ｓｃｈｗａｒｔｚ ｅｔ ａｌ.，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’ｌ Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．８８８，７８４９−７８５３)、上皮土のＮＨＥを阻害す ると、上皮と下層との間の細胞接触が破壊され、剥離に至ると言われている。 上記の検定法を使用して、数種の癌種に対する化合物１４３７の抗癌作用を調 べた。化合物１４３７は、ヒト卵巣癌、ＳＫＯＶ３に対する抗癌活性を示すこと がわかった。このように、化合物１４３７は、感受性の表現型を示す癌腫の治療 に有用である可能性がある。 上記研究が証明するように、化合物１４３７は、”中皮様”上皮層、１層だけ の細胞層からなる皮膚層を標的とする。このような層は、ヒト腹膜、滑膜、心膜 および上衣などの上皮表面に類似している。従って、化合物１４３７は、このよ うな組織およびそれらから派生する悪性物に対する抗増殖作用を示すはずである 。また、これらの組織はウィルスの感染を支持することがあるので、このような 場合には、この化合物は治療的抗ウィルス作用を提供するはずである。 アフリカツメガエルのオタマジャクシ検定法を用いて、化合物１４３７と化学 的な類似性はほとんどないが、上皮の剥離作用に関しては同じ薬理作用を生じる 化合物を同定することが可能である。このような方法により、化合物４０９、４ １０、４１６、４３１、４３２および４３３は機能的に化合物１４３７に類似し ていることが見出された。 ステロイド１３６０（画分２）は、炭素２４位にケト基とＣ２７ヒドロキシル 基に硫酸基を有する側鎖をもつ。構造は幾分スクアラミンに類似しているが、オ タマジャクシおよびヒナ胚検定法において、劇的に異なる薬理作用を示す。 発生段階５９〜６０のオタマジャクシを化合物１３６０の１０μｇ/ｍｌ溶液 に入れたとき、尾全体の広範な血管閉塞が６０分以内に生じ、近位部より遠位部 が程度が大きかった。赤血球の目視可能な膨潤によって閉塞が生じ、その後破裂 して、核が放出された。核は、血管床によって、遠位部の動静脈に運ばれる。こ れは、大きさと重さの異なる硬貨を特殊な収集管内に分ける硬貨選別機械に似て いる。核がこれらの血管内に蓄積されると、血流は近位側で遮断された。核によ る栓が形成されてから２０〜３０分以内に、これらの栓の周辺の組織は破壊し始 めた。まるで、核がこれらの組織を支える土台物質を本質的に溶解する加水分解 酵素を放出しているように思われた。 ヒナ胚検定において、化合物１３６０は、オタマジャクシで見られるものとは 異なる効果を生じた。２０分以内に、化合物に接触しない赤血球より酸化度が高 いことを反映して、胚の血管を循環する血液はより明るい赤色を示した。多種の 機序によってこの効果が説明されるだろうが、化合物１３６０に接触後では、ヒ ナの赤血球の内部ｐＨはよりアルカリ性になっていたと考えられる。これは、こ の細胞のＮＨＥの活性化によって生じるのだろう。さらに、この交換体の活性化 は細胞の膨潤、すなわちオタマジャクシで観察された現象も生じるだろう。 両生類および魚類（およびおそらく鳥類）の有核赤血球は、ＮＨＥ１−βと呼 ばれる特殊なＮＨＥを発現することが知られている。特徴が解明された他の全て のものとは異なり、この交換体はｃＡＭＰによって活性化され、ヘモグロビンの 酸化状態に影響される。このデータは、化合物１３６０がこの交換体を活性化す るであろうことを示している。さらに、この化合物は、示唆された様式で機能す るように理想的な化学構造を有する。弱アルカリ性の条件下では、以下に概略図 で示すように、化合物１３６０は２７位のヒドロキシル基の脱水、硫酸基の脱離 および対応する２７−エンの形成を受けることが見いだされている： このように、細胞内部のアルカリ度が増すと、化合物１３６０の寿命は短くな り、それによって異常な形で”フィードバック”する。化合物１３６０の加水分 解産物である化合物１３６１は同じＮＨＥに阻害作用を示す可能性がある。 データによれば、化合物１３６０は、胚発生段階の血液細胞上に存在するＮＨ Ｅとあきらかに相互作用することがわかる。ヒト胎児は、鳥類、魚類および両生 類と大きさが同じ有核赤血球細胞を発生するので、ヒトのある種の血液細胞、お そらく胎児の血液細胞もこの化合物の標的細胞となると思われる。胎児ＮＨＥの 活性化は、低酸素障害から胎児を保護することを目的とする治療方法に対して有 用かもしれない。 化合物１３６０の全適用範囲を言うには、ヒトにおける赤血球ＮＨＥアイソフ ォームの分布について記載しなければならない。しかしながら、ＮＨＥの阻害剤 ではなく、刺激作用であるように思われる場合もある。いずれにしても、化合物 １３６０は、抗菌、抗真菌、抗ウィルス等、胎児仮死治療および悪性血液腫瘍治 療のために使用されるだろう。 画分３（ＦＸ３）の化学構造はまた完全には決定されていないが、薄層クロマ トグラフィーの結果から、化合物１４３６に構造がよく似た、ステロイドに関連 するスペルミンを有する。このステロイド化合物は、オタマジャクシの胚骨格筋 に対して顕著な効果を示す。 オタマジャクシ検定法において、化合物との接触から１時間以内に、発生段階 ５９〜６０のオタマジャクシの尾の筋束から茶色の色素の漏洩が観察された。横 紋はぼやけて、不明瞭になった。心拍動および四肢の筋活動を含む他の機能は影 響を受けなかった。これらの観察は、ＦＸ３は筋肉を含む初期の間葉を標的にし ていることを示唆する。 オタマジャクシの観察をヒトにまで広げて考られるとすると、ＦＸ３はある種 の間葉細胞の増殖に顕著に影響を与えることになる。このように、ＦＸ３は、横 紋筋、軟骨、繊維芽細胞性組織、骨および脂肪組織の癌などの、間葉細胞由来の 種々の癌の治療に有用であろう。 また、繊維芽細胞の増殖が影響される場合には、繊維芽細胞の増殖が望ましく ない状況において、繊維芽細胞の増殖の制御に有用であろう。すなわち、ＣＮＳ 損傷の瘢痕化が予防されるだろう。線維症が合併する部位の外科処置後の望まし くない瘢痕化は重要な治療標的であるだろう。心臓、腎臓および肝臓疾患に見ら れるような繊維芽細胞性増殖の全体の状態を軽減できるだろう。 筋肉の成長を阻害するならば、ＦＸ３はある種の心疾患に見られるような筋肉 の肥厚性疾患の阻害に用いることができるだろう。 アフリカツメガエルのオタマジャクシ検定法を用いて、数種のアミノステロー ル化合物は、ＦＸ３と同様の薬理作用を示すものとしてと同定された。これらの 化合物には、化合物３７０、４１２、４５８、４５９、４６５および４６６が含 まれる。これらの化合物は、一般に、スペルミン残基を共有する。これらは化学 的にはスクアラミンより単純で、天然に存在するステロイドより、薬剤化にかか るの費用が安い。 画分１（ＦＸ１Ａ）ステロイドの構造を上に示す。水中では速やかに他の分子 （ＦＸ１Ｂ）に転換されるようである。上記の検定法を使用したとき、ＦＸ１Ａ は、アフリカツメガエルに独特の薬理作用を発揮する。 オタマジャクシの周囲の水の中にこのステロイド化合物を加えてから数時間以 内に、糞の排泄が劇的に増加する。多種の脊椎動物の消化管において、ＮＨＥが 腸の液体分泌の調節に用いられているので、画分１はこのようなＮＨＥに作用す ると考えられる。糞物質の増加は、結腸のＮＨＥが阻害されるときヒトに生じる 症状である”下痢”に相当するだろう。このステロイド化合物は全体的な活動、 筋の完全性に、また目視可能ないかなる組織の生存にもほとんど影響を与えない ので、ナトリウム−水交換の調節などの生理学的機能を発揮するのかもしれない。 ステロイド化合物と標的の特徴が十分解明された後ではその用途はより明瞭に なるが、オタマジャクシのデータは、画分１はある種の生理学的傷害におけるナ トリウム/プロトン交換の調節に有用であることを示唆している。これらには、 高血圧、膵嚢胞性線維症および便秘の治療が含まれる。 腸の流体動態に対して影響するので、この薬剤は感受性細菌、寄生虫、真菌等 を死滅させる一方、腸から感染菌の放出を促進する作用を有する抗菌剤ともなろ う。画分１はまた、有効な抗菌剤、抗寄生虫剤または抗真菌剤としての有用であ ろう。 アフリカツメガエルのオタマジャクシの検定法を使用することによって、分画 １と同様の薬理活性を有するアミノステロール化合物が同定された。驚くべきこ とに、これらの化合物は化合物１３６４と化合物４１４を含むことが見出された 。これらの化合物は画分１と同じ効力を発揮するが、それらは化学的には単純な 構造を有する。 予備試験データは、図９に示すように、逆相クロマトグラフィーによる分離に よって、画分１よりわずかに早く溶出する、少なくとも２種の親水性ステロイド が存在することを示した。これらのステロイドの構造を以下に示す。 ＦＸ１ＣおよびＦＸ１Ｄは、化合物１４３７に類似して、スクアラミンに似た １個の硫酸基と追加の水酸基とを有するステロイドであることがわかる。 他ののアミノステロール化合物の構造： スクアラス アカンシアス（Ｓｑｕａｌｕｓ ａｃａｎｔｈｉａｓ）から単離 された種々のアミノステロイドから、この動物の組織からまだ単離されていない 関連のあるアミノステロール化合物が存在することを予測することができる。こ れらのステロール化合物は、現在までに決定された構造と、コレステロール側鎖 が受ける可能性がある周知の生化学的変化とに基づいて、脊椎動物の組織中に存 在することが推論される(Ｔａｍｍａｒ,”Ｂｉｌｅ Ｓａｌｔｓ ｉｎ Ｆｉｓ ｈｅｓ,”Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｚｏｏｌｏｇｙ，(ｅｄｓ．Ｆｌｏｒｋｉｎ ｅｔ ａｌ.)，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，１９７４，５９５−６１２)。 このように、２４位の硫酸ヒドロキシル基を形成するスクアラミンの存在に基 づいて、以下に示すように、スクアラミンステロイド核とアミノステロール部分 を有するが、側鎖の硫酸ヒドロキシル基の位置は異なる他の誘導体を発見するこ とができるはずである。水酸化は２５位、２６位または２７位の炭素上で生じう るので、また各々は立体特異性を示すので、自然界にそれらの存在を期待するこ と、および独自の薬理作用を示すことを想定することは妥当である。 同様に、コレステロール側鎖に１個の硫酸基と第２の水酸基を有するステロイ ドの存在は、側鎖の硫酸化および１箇所での水酸化のパターンに多様性が存在す るであろうことを示唆している。このように、硫酸基形成が２４位、２５位、２ ６位および２７位炭素上にみられるアミノステロールは天然に存在する可能性が 高い。一方、これら４種の硫酸アミノステロールの各々は利用可能な２４位、２ ５位、２６位および２７位の炭素が水酸化されてもよい。少なくとも以下のステ ロイド化合物は、ここに示した帰納的論理とデータに基づいて、天然産物から単 離されうる： ＮＨＥ阻害剤の構造と活性の考察 上記の情報に基づいて、ナトリウム/プロトン交換体のアミノステロール阻害 剤の主要構造要素の推論が可能となった。主要中心構造には、ステロイド核と特 有の側鎖が含まれる。アミノステロール部分は、ＮＨＥとこの分子の相互作用を 特定する。遊離または硫酸化ヒドロキシル基を有する側鎖は、特定のＮＨＥアイ ソフォームに対する特異性を決定する。また、ステロイドに結合するスペルミン またはスペルミジンの存在は、活性の幅を拡大する。このような一般論に基づい て、側鎖の構造が大きな特異性を与えていることが容易にわかる。 このように、分子の調節可能な性質から、すぐれた薬理学的特異性を有する、 他の合成ステロイドＮＨＥ阻害剤を設計することができる。形状および分子表面 特性がアミノステロールに類似する化合物がＮＨＥファミリーと相互作用する。 ステロイド核のこのような化学的類似体は周知で、非ステロイド性エストロゲン 作用薬および拮抗薬の合成に広範に使用されている。一方、特定のコレステロー ル側鎖とこれらのステロイド類似構造とのカップリングによって、個々のＮＨＥ アイソフォームに対する特異性が確立される。 抗菌活性： アミノステロールＮＨＥ阻害剤は、作用機序に基づいて、一種の抗生物質に分 類される。これらの薬剤もヒトの組織において特定のアイソフォームと相互作用 するので、この種の抗生物質を慎重に選択すれば、宿主ＮＨＥ阻害による好まし くない副作用を防ぎ、治療効果が高められる。このように、化合物１４３６のよ うな薬剤を使用することによって、感染症の治療中、リンパ球の増殖が抑制され る。画分１を経口投与すると、標的寄生虫を死滅させるのに伴い、腸の流体通過 を増加させる。さらに、感受性脊椎動物アイソフォームより病原標的に対する特 異性の高い有効な抗真菌剤を設計することができる。 本明細書末の表Ｉに示すように、抗菌/抗真菌スペクトルは化合物ごとに異な る。このように、スクアラミン様の薬理活性を有するまたは有しない抗菌ステロ イドを得ることが可能である。 表Ｉの後の表ＩＩに記載するように、検定によって天然および合成アミノステ ロール化合物の活性が異なる。前記を考慮すると、スクアラミン様の薬理活性を 有するまたは有しないステロイドをスクリーニングすることが可能である。 ＮＨＥアイソフォームの選択： 分子生物学的方法を使用することによって、どのＮＨＥアイソフォームが悪性 腫瘍などの特定の細胞において発現されるかを測定することが可能である。ヒト メラノーマはＮＨＥ１、ＮＨＥ３およびＮＨＥ５を発現し、ヒト腺癌は主にＮＨ Ｅ３を発現する(表８参照)。 このように、スクアラミンまたは化合物３１９などのＮＨＥ３に対してより特 異的な阻害剤を使用することによって、この種の腺癌を極めて効果的に治療され るだろう。一方、メラノーマはＮＨＥ３とともにかなりの量のＮＨＥ５を発現す る。このように、この悪性腫瘍は、ＮＨＥ３およびＮＨＥ５の両方に対する阻害 剤、例えば化合物１４３６単独使用またはスクアラミンとの併用などによって治 療されるべきである。 要約すると、本発明は、標的組織において発現されるＮＨＥアイソフォームを 診断的に評価することによって確立される、アミノステロールＮＨＥ阻害剤の利 用を可能にしている。診断的手法としては、特定のＮＨＥアイソフォームたんぱ く質の免疫学的検出、特異的な塩基配列情報を利用するＰＣＲおよび標準的な方 法による分子生物学的手法が挙げられる。 このように、本発明の他の実施態様は、本発明の明細書および実施例を考慮す ることによって当業者にあきらになる。上記の実施態様および好ましい特徴は例 として考慮されるべきであり、本発明は添付の請求の範囲の内容によって規定さ れる。

【手続補正書】 【提出日】１９９７年１２月１１日 【補正内容】 (１)発明の名称「ＮＨＥを阻害する医薬品の製造のためのスクアラミンの使用」 を「医薬品の製造のためのスクアラミンの使用」と訂正する。 (２)請求の範囲を別紙の通り訂正する。 請求の範囲 １．内皮細胞の増殖を阻害するための、スクアラミンまたはその薬学的に許容 される塩。 ２．新規の毛細管の増殖を阻害するための、請求項１記載の化合物の使用。 ３．血管形成を阻害するための、請求項１記載の化合物の使用。 ４．糖尿病性網膜症を治療するための、請求項１記載の化合物の使用。 ５．黄斑変性を治療するための、請求項１記載の化合物の使用。 ６．血管新生緑内障を治療するための、請求項１記載の化合物の使用。 ７．病理学的血管新生を阻害するための、請求項１記載の化合物の使用。 ８．動脈の平滑筋細胞の増殖を阻害するための、請求項１記載の化合物の使用 。 ９．黒色腫を治療するための、スクアラミンまたはその薬学的に許容される塩 。 １０．腫瘍増殖を阻害するための、スクアラミンまたはその薬学的に許容され る塩。 １１．転移性の腫瘍拡散を阻害するための、請求項10記載の化合物の使用。 １２．慢性関節リウマチを治療するための、スクアラミンまたはその薬学的に 許容される塩。 １３．乳糖腫ウイルス感染症を治療するための、スクアラミンまたはその薬学 的に許容される塩。 １４．乾癬を治療するための、スクアラミンまたはその薬学的に許容される塩 。 １５．水晶体後線維増殖症を治療するための、スクアラミンまたはその薬学的 に許容される塩。 １６．臓器拒絶反応を阻害するための、スクアラミンまたはその薬学的に許容 される塩。 １７．医薬晶の製造のための、スクアラミンまたはその薬学的に許容される塩 。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ， ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，Ｌ Ｕ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ， ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，Ｓ Ｚ，ＵＧ)，ＵＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，Ｉ Ｌ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ， ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，Ｒ Ｕ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．スクアラミンまたはその薬学的に許容される塩を有効量投与することを含 む、NHE3を阻害する方法。 ２．NHE3が特異的に阻害される、請求項１記載の方法。 ３．NHE3が病理学的過程で発現される、請求項１記載の方法。 ４．スクアラミンまたはその薬学的に許容される塩を有効量投与することを含 む、内皮細胞の増殖を阻害する方法。