JPH10508839A

JPH10508839A - 神経保護薬としてのグリア誘導神経栄養因子

Info

Publication number: JPH10508839A
Application number: JP8515884A
Authority: JP
Inventors: マーテイン，デイビツド
Original assignee: アムジエン・ブルダー・インコーポレーテツド
Priority date: 1994-11-15
Filing date: 1995-11-13
Publication date: 1998-09-02
Also published as: IL115966A0; ATE205088T1; EP0792160B1; CA2204911A1; EP0792160A1; AU3752895A; DK0792160T3; WO1996014861A1; PT792160E; AU691349B2; IL115966A; US5733875A; ES2159647T3; DE69522578T2; DE69522578D1; ZA959714B; CA2204911C

Abstract

(57)【要約】本発明は、発作行動を抑制又は防止するためのグリア誘導神経栄養因子（ＧＤＮＦ）の使用に係わる。本発明の方法は、てんかんのような神経変性疾患を有するか又は潜在的に有する患者に対してＧＤＮＦを投与することによって実現される。調剤上許容可能な担体中に治療有効量のＧＤＮＦを含む調剤組成物も提供する。

Description

【発明の詳細な説明】神経保護薬としてのグリア誘導神経栄養因子発明の分野本発明は、神経保護薬としての、特に抗発作薬としての，グリア誘導神経栄養因子（ＧＤＮＦ）の使用に係わる。発明の背景てんかんは、一般的な神経変性疾患である。小児と１０代の子供たちにこの疾患の高い発生率が認められ、この年齢グループの患者の７５％が２０才になる前にてんかんを発症する。この疾患は、様々な病因によって引き起こされる可能性がある中枢神経系機能障害を示す慢性又は再発性の発作を特徴とする。例えば、てんかんは、一部では、ニューロンの損傷と壊死を生じさせる可能性がある内因性興奮性アミノ酸（例えばグルタミン酸）の過剰放出又は吸収障害に起因するとされている（Ｓｐｅｒｋ，Ｐｒｏｇ．ｉｎＮｅｕｒｏｂｉｏｌ．，４２：１− ３２（１９９４）、及び、ＭｃＮａｍａｒａ，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，１４：３４１３−１３２５（１９９４））。電気刺激（Ｓｗｉｎｙａｒｄ他，Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．，１４０：３７５−３８４（１９５２））、キンドリング（Ｇｏｄｄａｒｄ他，Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．２５：２９５（１９６９））、又は、化学痙攣剤（Ｎａｄｌｅｒ，ＬｉｆｅＳｃｉ．，２４：２０３１−２０４２（１９８１）、及び、Ｂｅｎ−Ａｒｉ他，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，６：１３６１−１３９１（１９８１））のような処置によって、正常な脳において発作を生じさせることが可能である。これらの方法による発作の発生とその後の脳損傷は、成体ラットの海馬とその他の脳領域とにおける即時型遺伝子と成長因子との発現を含む再生的変化と可塑的変化との複合カスケードを生じさせる（Ｓｐｅｒｋ，Ｐｒｏｇ．ｉｎＮｅｕｒｏｂｉｏｌ．，４２：１−３２（１９９４））。Ｇａｌｌ他，Ｍｏｌ．Ｂｒａｉｎ．Ｒｅｓ．，９：１１３−１２３（１９９１）、Ｅｒｎｆｏｒｓ他，Ｎｅｕｒｏｎ，７：１６５−１７６（１９９１）、及び、Ｆｏｌｌｅｓａ他，Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．，１２７：３７−４４（１９９４）によれば、神経成長因子（ＮＧＦ）、塩基性繊維芽細胞成長因子（ｂＦＧＦ）、及び、脳誘導神経栄養因子（ＢＤＮＦ）の発現の変化が、損傷を受けた脳の可塑性をもたらす。ラットに対するカイニン酸の全身的投与又は頭蓋内投与は、ヒトにおける側頭葉てんかんに認められるそれと同様の急性辺縁てんかん重積状態とそれに続くニューロン性脳損傷とを特徴とする症候群を生じさせる。このために、カイニン酸が実験動物における側頭葉てんかんの研究ツールとして広く使用されている（Ｂｅｎ−Ａｒｉ他，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，６：１３６１−１３９１（１９８１）、及び、Ｎａｄｌｅｒ，ＬｉｆｅＳｃｉ．，２４：２０３１−２０４２（１９８１））。カイニン酸塩受容体は、３つのイオン栄養性グルタミン酸塩受容体の中の１つであり、他の２つは、これらの受容体の好ましい作動薬に関して名付けられ、即ち、ＮＭＤＡ（Ｎ−メチル−Ｄ−アスパルタート）受容体とＡＭＰＡ（α−アミノ−３−ヒドロキシ−５−メチル−４−イソオキサゾールプロピオナート）受容体である。カイニン酸塩受容体とＡＭＰＡ受容体を非ＮＭＤＡ受容体と総称することが多い。非ＮＭＤＡ受容体は主に一価カチオンを通過させ、高速興奮性シナプス伝達を仲介するが、更に最近になって、特定の可塑性プロセスの維持において重要な役割を演じることが明らかにされている（Ｍｉｌｌｅｒ，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，１４：４７７−４７９（１９９１）、及び、Ｍｕｌｌｅｒ他，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４２：１６９４：１６９７（１９８８））。最近の報告では、カイニン酸によって誘導される発作後に、成体の海馬において、新規の神経栄養因子であるグリア誘導神経栄養因子（ＧＤＮＦ）に関するｍＲＮＡレベルが増大することが明らかにされた（Ｈｕｍｐｅｌ他，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，．５９：７９１−７９５（１９９４））。トランスフォーミング成長因子 β（ＴＧＦ−β）上科のメンバーであるグリア誘導神経栄養因子を、クローニングし、発現させ、この神経栄養因子が胚中脳腹側の中脳ドパミン作動性ニューロンに対する強力な栄養活性をインビトロで示すことが実証されている（Ｌｉｎ他，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６０：１１３０−１１３２（１９９３）、及び、Ｌｉｎ他，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．，６３：７５８−７６８（１９９４））。更に、組換えヒトＧＤＮＦ（ｒｈＧＤＮＦ）が、インビボでドパミン作動性繊維の発芽を誘導し（Ｈｕｄｓｏｎ他，Ｓｏｃ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ａｂｓｔｒ．，１９：６５２（１９９３））、ラットの黒質中でのドパミン代謝回転を増大させ（Ｈｕｄｓｏｎ他，上記、及び、Ｍｉｌｌｅｒ他，Ｓｏｃ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ａｂｓｔｒ．，２０：５３５．７（１９９４））、６−ＯＨＤＡ病変からニューロンを保護し、眼内の黒質組織のラット胎児移植片の成長と繊維形成とを増大させる（Ｓｔｒｏｍｂｅｒｇ他，Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．，１２４：４０１−４１２（１９９３））ことが既に実証されている。更に、インシツ（ｉｎｓｉｔｕ）でのハイブリッド形成の分析によって、ＧＤＮＦｍＲＮＡは胚脳において発現するが正常な成体の脳においては発現しないことが明らかになっており、このことは、発生中においてｒｈＧＤＮＦが標的誘導因子である可能性があることを示唆している（Ｏｌｓｏｎ他，Ｓｏｃ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ａｂｓｔｒ．，１９：６５２（１９９３）、及び、Ｓｔｒｏｍｂｅｒｇ他，Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．，１２４：４０１−４１２（１９９３））。痙攣発作の発生を防止するために薬剤でてんかんを治療する場合が多い。こうした治療法に対して反応する患者の約６０％が、発作の頻度は低下するものの、依然として発作を経験する。しかし、治療可能な患者の４０％のうち、こうした患者の多くが深刻な副作用（例えば、患者の生活の質に著しい悪影響を与える疲労感、眠気、及び、無力感）を経験する。従って、効果的であり且つこうした深刻な副作用を生じさせない代替の治療法が必要とされている。本発明はこの必要を満たし、関連の利点も提供する。発明の要約本発明は、てんかんのような発作に関連した疾患に対する神経保護をＧＤＮＦがもたらすという発見に係わる。従って、本発明は、抗発作治療を必要とする患者に対して発作の発生を抑制又は防止するのに充分な量のＧＤＮＦを投与することによる、発作の抑制のための方法を提供する。ＧＤＮＦを組換えによって生産し、調剤上許容可能な担体中にＧＤＮＦを含む形でＧＤＮＦを投与することが好ましい。従って、本発明は更に、治療有効量のＧＤＮＦと調剤上許容可能な担体とを含む調剤組成物を提供する。図面の簡単な説明図１は、カイニン酸由来ニューロン損失に対する保護をｒｈＧＤＮＦが与えることを示している。脳室内ＧＤＮＦ（０．５、５、５０μｇ／２μＬ）が、海馬ＣＡ１ニューロン（図１Ａ）と扁桃ニューロン（図１Ｂ）と視床ニューロン（図１Ｃ）をカイニン酸（１２ｍｇ／ｋｇ、皮下）由来病変から保護する。カイニン酸を投与する１時間前に、動物に対して、ｒｈＧＤＮＦ（各々に、０．０５μｇ／４μＬ、０．５μｇ／４μＬ、５μｇ／４μＬ、又は、５０μｇ／４μＬ）（グループＣ−Ｆ）、不活性ＧＤＮＦ（グループＢ）、又は、ビヒクル（グループＡ）を投与した。グループＧは、処置を全く受けなかった正常な動物を表す。カイニン酸／ビヒクルグループに比較して、ＧＤＮＦ処置動物は、検査した全ての領域でニューロン生存の著しい増大を示した。ニューロン計数は９−２４回の測定の平均±Ｓ．Ｅ．Ｍ．である。スチューデントｔ検定を使用した時の、ビヒクルとｒｈＧＤＮＦとの間の差異の有意性はＰ＜０．０１（^**）とＰ＜０．０５（^* ）だった。同様に、ビヒクルグループ（Ａ）と非処置グループ（Ｇ）との間に有意差があった（Ｐ＜０．０１）。図２は、カイニン酸由来の海馬ＣＡ１錐体細胞損失に対する保護をｒｈＧＤＮＦが与えることを示す。クレシルバイオレット（ｃｒｅｓｙｌｖｉｏｌｅｔ）で染色したラットＣＡ１海馬領域の冠状切片（２５倍）。（図２Ａ）：カイニン酸（１２ｍｇ／ｋｇｓ．ｃ．）＋ビヒクル（２μＬ頭蓋内脳室内（ｉｃｖ））７日後。ＣＡ１錐体細胞の壊死に留意されたい。（図２Ｂ）：同時に死亡させた正常ラット。（図２Ｃ）：カイニン酸（１２ｍｇ／ｋｇｓ．ｃ．）＋ｒｈＧＤＮＦ（５０μｇ／２μＬｉｃｖ）７日後。ＣＡ１錐体細胞の保護に留意されたい。図３は、△ｒｈＧＤＮＦ（５０μｇ／２μＬｉｃｖ）、▲ビヒクル（２μＬｉｃｖ）、□カイニン酸（１２ｍｇ／ｋｇｓ．ｃ．）＋ｒｈＧＤＮＦ（５０ μｇ／２μＬｉｃｖ）、◇カイニン酸（１２ｍｇ／ｋｇｓ．ｃ．）＋ｒｈＧＤＮＦ（０．５μｇ／２μＬｉｃｖ）、及び、■カイニン酸（１２ｍｇ／ｋｇｓ．ｃ．）＋ビヒクル（２μＬｉｃｖ）が、体重損失の仲介に対して及ぼす影響をグラフとして示している。体重を７日間測定し、その測定値をゼロ日目からの体重増加として表す。化合物をゼロ日目に投与した。値は平均±Ｓ．Ｅ．Ｍ．（ｎ＝７−１１）である。発明の詳細な説明本発明は、治療有効量のＧＤＮＦ、好ましくは治療有効量の組換えヒトＧＤＮＦ（ｒｈＧＤＮＦ）を投与することによる患者の発作を阻害するための方法を提供する。本発明の１つの実施様態では、好ましいＧＤＮＦは自然発生ヒトタンパク質である。この自然発生ヒトタンパク質は、そのタンパク質を使用して治療される患者に予想外の有害な生理学的副作用を生じさせる危険性がより低いと考えられるので、人間に対する療法として好ましい。しかし、非ヒトＧＤＮＦ（例えばラットＧＤＮＦ）がヒトＧＤＮＦと実質的に等価であり且つ等価の生物活性を有する限り、こうした非ヒトＧＤＮＦも本発明の範囲内に含まれると見なされる。本発明では、タンパク質又はこれと実質的に等価のタンパク質が健康な人間に通常見い出すことが可能である場合に、このタンパク質を「自然発生」タンパク質であるとみなす。「自然発生」タンパク質は、特に、そのタンパク質のアミノ末端又はカルボキシル末端で部分的に切断されている、又は、脱アミノ化もしくは他の形で化学修飾されているアミノ酸を有する、健康な人間に存在することが認められるタンパク質の諸形態を含む。「自然発生」タンパク質を、組換えＤＮＡ法と、そのタンパク質を通常生産する細胞から単離することとによって、得ることが可能である。「自然発生」タンパク質は、Ｅ．ｃｏｌｉ発現の結果としての、ＮＨ₂−末端メチオニル基を含むか又は含まないタンパク質も含む。本明細書とクレームとの全体で使用する術語「実質的に等価である」は、極めて高い度合いのアミノ酸残基相同性（概括的には、本明細書に特に組み入れているＭ．Ｄａｙｏｆｆ，ＡｔｌａｓｏｆＰｒｏｔｅｉｎＳｅｑｕｅｎｃｅａｎｄＳｔｒｕｃｔｕｒｅ，ｖｏｌ．５，ｐ．１２４（１９７２），ＮａｔｉｏｎａｌＢｉｏｃｈｅｍｉｃａｌＲｅｓｅａｒｃｈＦｏｕｎｄａｔｉｏｎ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，Ｄ．Ｃ．を参照されたい）と等価の生物活性とを有することを意味すると定義する。本発明の特に好ましいＧＤＮＦは、本明細書に特に引例として組み入れているＰＣＴ公開Ｎｏ．ＷＯ９３／０６１１６に記述されている通りのＢ４９グリア芽細胞腫細胞の無血清成長順化培地から単離された自然発生タンパク質である。他の好ましいＧＤＮＦの形態もＷＯ９３／０６１１６に説明されている。更に、ヒトＧＤＮＦをコードする遺伝子とラットＧＤＮＦをコードする遺伝子の核酸配列と、こうしたタンパク質のアミノ酸配列とが、ＷＯ９３／０６１１６出願に示されている。本発明は、ＧＤＮＦの非グリコシル化形態と、自然発生ＧＤＮＦタンパク質と組換えＧＤＮＦタンパク質の末端切断形態とを含む。ＧＤＮＦの修飾形態も本発明の方法の使用に含まれる。例えば、１つ以上のポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、他の反復ポリマー部分、又は、ＧＤＮＦの塩基性（ｂａｓｉｃ）ポリペプチド骨格に付着した他の側鎖を付着させることによって、ＧＤＮＦを修飾することが可能である。更に別の実施様態では、ＧＤＮＦの所期の抗痙攣薬活性が著しく損なわれない限り、ポリペプチド鎖のアミノ酸配列を、例えば、１つ以上のアミノ酸の置換、付加、又は、除去によって修飾することが可能である。従って、術語「ＧＤＮＦ」は、ＧＤＮＦの全ての形態を含むことが意図されている。様々な形態のＧＤＮＦを生産するための方法も、ＷＯ９３／０６１１６出願に開示されている。開示されている方法の１つは、様々な供給源（例えば、Ｂ４９細胞の無血清培地）からＧＤＮＦを単離することから成る。開示されている第２の方法は、ＧＤＮＦをコードする遺伝子を単離し、この遺伝子を適切なベクターと細胞型の内でクローニングし、ＧＤＮＦを生産するために遺伝子を発現させることを含む。一般的には組換えＤＮＡ方法を具体例とする後者の方法は、本発明の好ましい方法である。組換えＤＮＡ法は、一つには、より純度の高いタンパク質を比較的より多く得ることが可能なので、好ましい方法である。上記ＧＤＮＦを上記方法によって「実質的に純粋な」形態で生産することが好ましい。術語「実質的に純粋な」は、非修飾形態のＧＤＮＦが比較的高い比活性を有することを意味する。しかし、ＧＤＮＦの誘導体又は修飾形態が異なった比活性を有する可能性があるということを理解されたい。ＧＤＮＦの抗痙攣薬活性を上記タンパク質の１つ以上の別個の部分の各々に付与することが可能なので、抗痙攣薬機能を制御するＧＤＮＦの１部分（又は、１つ以上の部分）からその活性成分が成る治療組成物を投与することによって、本発明の方法を実施することが可能であることも意図されている。本発明の好ましい実施様態では、ＧＤＮＦを含む調剤組成物を神経保護のために患者に有効量投与する。治療用途では、ＧＤＮＦを調剤上許容可能な担体を用いて製剤し、調剤組成物を生産することが可能である。本明細書で使用する術語「調剤上許容可能な担体」は、薬剤に対して悪影響を与えないか、又は、その組成物を投与する患者に対して悪影響を与えない、活性成分のための無毒性で且つ一般的に不活性のビヒクルを意味する。適切なビヒクル又は担体に関しては、標準的な調剤学文献、例えば、本明細書に引例として組み入れているＲｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ，１６ｔｈｅｄ，ＭａｃｋＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇＣｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，ＰＡ（１９８０）を参照することが可能である。こうした担体は、例えば、炭酸水素塩緩衝液、リン酸緩衝液、リンガー液、及び、生理的食塩水のような水溶液を含む。これに加えて、こうした担体は、製剤のｐＨ、浸透圧モル濃度、粘度、透明度、色彩、無菌性、安定性、溶解速度、又は、においを改変又は維持するための他の調剤上許容可能な賦形剤を含むことが可能である。本発明の調剤組成物を、例えば試薬の単純な混合のような従来技術で公知の方法で調製することが可能である。当業者は、調剤上許容可能な担体の選択と組成物の適切な調製とが使用意図と投与形態とによって決定されるということを理解するだろう。１つの実施様態では、活性薬剤としてのＧＤＮＦと担体とが生理学的相容性のある徐放性製剤を構成することが意図されている。当業者には公知であるように、オリゴヌクレオチド中の反応活性結合基を適正に選択することによって活性薬剤の放出速度を調節することが可能である。こうした担体中の主溶媒の種類は水性であっても非水性であってもよい。これに加えて、担体は、製剤のｐＨ、浸透圧モル濃度、粘度、透明度、色彩、無菌性、安定性、溶解速度、又は、においを改変又は維持するための他の調剤上許容可能な賦形剤を含むことが可能である。同様に、担体は、活性薬剤の安定性、溶解速度、放出速度、又は、吸収速度を改変又は維持するための更に別の調剤上許容可能な賦形剤を含むことが可能である。こうした賦形剤は、単回投与形態又は多回投与形態として非経口投与用製剤を調製するための従来一般的に使用される物質である。調剤組成物を調合した後に、この組成物を、溶液、懸濁液、ゲル、乳濁液、固体、脱水粉末、又は、凍結乾燥粉末として、無菌バイアル中に保存することが可能である。こうした製剤は、そのまま使用可能な形態、又は、投与直前に再形成が必要な形態のどちらでも保存が可能である。こうした製剤の好ましい保存温度は、約４℃以下であり、好ましくは−７０℃である。上記活性薬剤を含むこうした製剤を生理的ｐＨで又は生理的ｐＨ付近のｐＨで保存及び投与することが好ましい。高ｐＨ（即ち、８より高いｐＨ）の製剤又は低ｐＨ（即ち、５より低いｐＨ）の製剤の形での投与は望ましくないと現時点では考えられている。活性薬剤を含む調剤製剤を全身的送達のために投与する方法は、頭蓋内、皮下、筋肉内、静脈内、又は、経口経路による投与であることが可能である。活性薬剤を含む調剤製剤を局所的送達のために投与する好ましい方法は、カテーテル又はポンプによって頭蓋内脳室（ｉｃｖ）を介して脳の中に製剤を直接送達することである。経口投与の場合には、本発明の調剤組成物をカプセル封入する。カプセル封入した活性薬剤を、固体投薬形態の化合物で一般的に使用する調剤上許容可能な担体と共に、又は、こうした担体なしに製剤することが可能である。バイオアベイラビリティが最大となり且つ前全身性分解（ｐｒｅ−ｓｙｓｔｅｍｉｃｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ）が最小となる胃腸経路内の箇所において製剤の活性部分が放出されるように、カプセルを設計することが好ましい。活性薬剤の吸収を促進させるために更に別の賦形剤を含むことが可能である。希釈剤、香味料、低融点ワックス、植物油、潤滑剤、懸濁剤、錠剤崩壊剤、及び、結合剤を使用することも可能である。いずれの投与方法においても、具体的な個々の用量は患者の体重概算値に基づいて計算する。適切な用量を決定する場合の他のファクターは、治療又は予防すべき疾病又は疾患、投与経路、患者の年齢、性別、及び、病状とを含む。特定の実施様態では、患者の血液流中のＧＤＮＦ濃度を予め決定した濃度範囲にするように、用量と投与を計画する。ＧＤＮＦを約０．０００５ｍｇ／ｋｇから１ｍｇ／ｋｇまでの用量で投与することが好ましい。上記製剤の各々に関する治療上適切な用量を決定するのに必要な計算を更に改善することは、当業者によって日常的に行われており、本明細書に開示されている用量情報とアッセイを特に考慮して、不要な実験を行うことなしに当業者のよって日常的に行われる作業の範囲内に含まれる。適切な用量反応データに関連付けて使用用量を決定するための確立されたアッセイを使用することによって、こうした用量を確認することも可能である。上記の通りに、当業者は、不要な実験を行わずに、「治療有効量」のＧＤＮＦを送達するのに充分な用量を決定することが可能である。術語「治療有効量」を、患者の発作を抑制又は防止するのに充分なＧＤＮＦの量と定義することが可能である。本明細書で説明するＧＤＮＦ製剤を人間に対して使用するばかりでなく獣医学的用途に使用することが可能であることと、術語「患者」を狭義に捉えるべきではないことに留意されたい。獣医学的用途の場合に、用量範囲は上記範囲と同様であるべきである。下記の実施例で更に詳細に説明する本発明に関連する調査研究で、ｒｈＧＤＮＦがカイニン酸由来発作とこれに関連したニューロン細胞損失とを防止することが実証された。この作用を、比較的少ない用量で、用量に依存した形で得た。海馬ＣＡ１及びＣＡ３領域におけるｒｈＧＤＮＦに関する顕著な免疫染色は、Ｊ．Ｖ．Ｎａｄｌｅｒ，ＴｈｅＨｉｐｐｏｃａｍｐｕｓ−ＮｅｗＶｉｓｔａｓ，ｐ．４６３−４８１（ＡｌａｎＲ．Ｌｉｓｓ，１９８９）によって報告されている通りの、カイニン酸由来毒性によって極度に影響されやすい海馬領域に一致する。ポリクローナル抗ＧＤＮＦ抗体によるｒｈＧＤＮＦに関する顕著な免疫染色が両側に得られたが、このことは、このタンパク質が、ＣＡ１ニューロンの脳室系を通って移動することが可能であることを示しており、ＣＡ１ニューロンの両側保存の原因を示すだろう。この結果は、強直−間代性痙攣の抑制によって示されるような抗発作活性と、ウェットドッグシェイク（ｗｅｔｄｏｇｓｈａｋｅ）の抑制によって示されるような抗てんかん発生活性との両方を、ｒｈＧＤＮＦが有する可能性があることを示している。ｒｈＧＤＮＦの抗痙攣薬特性は、抗てんかん発生性作用よりも強力であると考えられる。てんかん発生と発作は互いに異なった薬理学的プロフィールを有すると考えられる。てんかん発生をＮＭＤＡ受容体遮断薬によって遮断することが可能である（Ｓｔａｓｈｅｆｆ他，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４５：６４８−６５１（１９８９））。これとは対照的に、発作はより高濃度の遮断薬を必要とするか、ＮＭＤＡ遮断薬によっては完全には遮断されない可能性があり、更には、一般的に使用される抗痙攣薬に対して極めて高い感受性を有する可能性がある。てんかん発生は、神経組織が正常な状態からてんかん重積状態に変形させられる場合に生じる比較的永続的な変化である（Ｓｔａｓｈｅｆｆ他，上記）。これらの調査研究では、ｒｈＧＤＮＦの作用を神経組織内での永続的変化に関して直接評価しなかったが、こうした変化の前兆であるウェットドッグシェイク（ｗｅｔｄｏｇｓｈａｋｅ）はｒｈＧＤＮＦによって抑制された。てんかん重積状態に達して危険時間期間を越えてこの状態が維持されると、カイニン酸由来発作が一貫したパターンの脳損傷を生じさせる（Ｂｅｎ−Ａｒｉ，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，３７５−４０３（１９８５））、及び、Ｔａｎａｋａ他，Ｐｒｏｇ．Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．，３８：３１７−３３４（１９９２））。これらの調査研究で観察された脳損傷のパターンは、既に関連文献に報告されている脳損傷パターンと同じである。カイニン酸由来ニューロン損失が海馬ＣＡ３内に無いことが、末梢カイニン酸塩投与によって確認されている（Ｎａｄｌｅｒ，ＴｈｅＨｉｐｐｏｃａｍｐｕｓ−ＮｅｗＶｉｓｔａｓ，ｐ．４６３−４８１（ＡｌａｎＲ．Ｌｉｓｓ，１９８９））。海馬ニューロン、視床ニューロン、及び、類扁桃ニューロンに対するｒｈＧＤＮＦの神経保護作用は、この神経栄養因子による発作活動の減少と一致している。しかし、Ｈｅｆｔｉ他，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ、１０：５１５−５８８（１９８９）、Ｂｅｒｌｏｖｅ他，Ｓｏｃ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ａｂｓｔｒ．，１７：１２６７（１９９１）、Ｓｈｉｇｅｎｏ他，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，１１：２９１４−２９１９（１９９１）、Ｃｈｅｎｇ及びＭａｔｔｓｏｎ，Ｎｅｕｒｏｎ，７：１０３１−１０４１（１９９１）、Ｓｈｉｍｏｈａｍａ他，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ｌｅｔｔ．，１６４：５５−５８（１９９３）、及び、Ｍａｔｔｓｏｎ及びＣｈｅｎｇ，Ｓｔｒｏｋｅ，２４：Ｉ−１３６−Ｉ− １４０（１９９３）で報告されているように、他の神経栄養因子であるｂＦＧＦとＮＧＦがグルタミン酸塩由来興奮毒性に対する保護を与えることが可能なので、カイニン酸由来興奮毒性に対して及ぶ可能性があるｒｈＧＤＮＦの直接的作用を除外することは不可能である。しかし、Ｄｉｎｇｌｅｄｉｎｅ他，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，１４：１−９６（１９８８）に説明されている通りの、活性化に関するこれらの受容体の構造的要件に基づいて、グルタミン酸塩受容体−チャンネル複合体の阻害剤としてｒｈＧＤＮＦが作用する可能性は低いと考えられる。グルタミン酸塩受容体活性化に関連付けられる下流のイベント又は系にｒｈＧＤＮＦが影響を与える可能性の方が高い。他の神経栄養因子が、（ａ）グルタミン酸塩受容体の数又は機能の変化、（ｂ）ストレスタンパク質の保護酵素又はスーパーオキシド代謝の酵素の誘導、（ｃ）細胞内カルシウム貯蔵又はＮａ⁺／Ｋ⁺ ＡＴＰアーゼ活性における、特異的なイオンバランスの変化、及び、（ｄ）グリア細胞を介しての間接的媒介物質作用に影響を与えることが既に明らかにされている。ｒｈＧＤＮＦがシナプス伝達に対する大きな抑制薬活性を有することが可能であることが、カイニン酸由来発作活動の抑制の原因であると考えられる。しかし、ラットの海馬切片を使用した予備的なインビトロ電気生理学的調査では、標準的な細胞外記録方法を使用して、２μｇ／ｍＬのｒｈＧＤＮＦがＣＡ１領域とＣＡ３領域とで記録された発生電位に影響を与えないことが明らかになった。カイニン酸由来発作の改善は、ｒｈＧＤＮＦによるカイニン酸のバイオアベイラビリティの低下を反映する可能性がある。このことが、ウエットドッグシェイクと強直−間代性発作との減少に関するｒｈＧＤＮＦの微分的用量反応関係に基づく可能性は低いと考えられる。更に、不活性ｒｈＧＤＮＦは、カイニン酸由来発作を抑制しなかった。カイニン酸由来発作後に海馬がＧＤＮＦｍＲＮＡを発現させることが可能であることは、特定のストレス条件下でＧＤＮＦを生産する能力を脳が有する可能性があることを示唆している。ＮＧＦ遺伝子群の多くのメンバーが興奮毒性病変及び／又は発作によって上方制御されるので、こうした現象は例外的である。なんらかの特定の理論に束縛されることは望まないが、ＧＤＮＦの局所的生産が発作／興奮毒性プロセスに対してブレーキとして作用し、従って、発生する可能性がある潜在的損傷を抑制すると考えられる。海馬ニューロンが向イオン性グルタミン酸塩受容体と向代謝性グルタミン酸塩受容体との両方を発現させ、カイニン酸塩による間接的な向イオン性ＮＭＤＡの活性化がＧＤＮＦｍＲＮＡの調節に関与すると考えられる。この発見は、特定のＮＭＤＡ受容体チャンネル遮断薬ＭＫ−８０１（Ｗｏｎｇ他，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，８３：７１０４−７１０８（１９８６））がカイニン酸由来ＧＤＮＦｍＲＮＡ発現を低減させたことを実証した最近の研究に支持されている（Ｈｕｍｐｅｌ．，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，５９：７９１−７９５（１９９４））。てんかん様活動が低減させられ、ＣＡ１海馬領域内で生じる興奮毒性損傷が低減させられ、内因性ＧＤＮＦ生産のための刺激が低減させられると考えられるので、ＧＤＮＦｍＲＮＡ発現のこうした低減は上記の考えと一致している。ｒｈＧＤＮＦの単一ボーラス大脳内脳室内注射がラットの体重を減少させるという発見が、ニューロトロフィンの中枢投与又は末梢投与が体重損失を誘導するという従来の調査研究を支持する（Ａｌｔａｒ他，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，８９：１１３４７−１１３５１（１９９２）、及び、Ｍａｒｔｉｎ−Ｉｖｅｒｓｏｎ他，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，１４：１２６２ −１２７０（１９９４））。体重の減少を生じさせると考えられる仕組みは、ドパミンと５−ＨＴのような中枢モノアミンにおける変化に関係している可能性がある。カイニン酸の末梢投与も、体重の変化を誘導した。最近では、Ｈａｊｎａｌ他，ＢｒａｉｎＲｅｓ．Ｂｕｌｌ．，２９：２０９−９１６（１９９２）が、扁桃の中心核内にイオン導入法で投与したカイニン酸に由来する微小病変が、その用量に依存する形で、体重損失、嚥下能力低下又は嚥下不能、及び、渇感低下又は渇感欠如を生じさせることを実証した。こうした研究は、扁桃に対して投与するカイニン酸によって生じさせられる永続的な食物摂取障害が、病理学的ＥＥＧ活動変化の原因ではないものの、食物摂取行動に関与する複雑な調節機構の障害に関連していることを示唆した。扁桃は、食物摂取行動を制御する唯一の脳領域ではなく、カイニン酸によって生じさせられる興奮毒性が、食物摂取行動を制御する他の脳領域に影響を与える可能性がある。低用量のｒｈＧＤＮＦがカイニン酸由来体重損失を減少させたという観察結果は、興奮毒性損傷を減少させ且つ食物摂取行動に関与する神経回路の破壊を防止するｒｈＧＤＮＦの能力と一致している可能性がある。最大用量のｒｈＧＤＮＦによる体重損失の悪化は、カイニン酸とｒｈＧＤＮＦの作用の合計よりも大きいと思われる。従って、ｒｈＧＤＮＦと脳損傷時に放出される他の内因性媒介物質との相乗作用は、体重損失減少の媒介に関与している可能性がある。これまでに行われたインビトロの調査研究は、ｒｈＧＤＮＦが中脳ドパミン作動性ニューロンの生存を強化する強力な神経栄養因子であることと、こうした作用がこの伝達物質系に比較的特異的に現れたことを明らかにした（Ｌｉｎ他，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６０：１１３０−１１３２（１９９３））。この調査研究は、ｒｈＧＤＮＦがグルタミン作動性系のような他の神経伝達物質系に対して更に別の作用を及ぼすことが可能であることを明らかにしている。このことは、ニューロンを含むドパミン以外のニューロン集団にＧＤＮＦｍＲＮＡが及ぶという発見によって更に支持される（Ｓｃｈａａｒ他，Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．，１２４：３６８−３７１（１９９３））、及び、Ｈｕｍｐｅｌ他，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，５９：７９１ −７９５（１９９４））。有望なてんかん療法として神経栄養因子を使用することは新規性のあるアプローチと考えられ、これらの研究は、側頭葉てんかんモデルにおける神経栄養因子による発作活動の効果的な遮断の最初の実証であると考えられる。下記の実施例は、本発明を非限定的に説明することを意図している。実施例１Ａ．活性ｒｈＧＤＮＦの調製本明細書に引例として組み入れているＭｃＤｏｎａｌｄ他，Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ，１０９０：７０−８０（１９９１）に記載されている方法と同一の方法で、成熟ｒｈＧＤＮＦをＥ．ｃｏｌｉ内で発現させた。その後で、ｒｈＧＤＮＦを、遠心分離によって細胞ライゼートから単離して［４Ｍグアニジン、９０ｍＭシステイン、２０ｍＭＴｒｉｓ、ｐＨ８．５］中に可溶化した封入体の形で回収した。このタンパク質を［０．２Ｍグアニジン、２Ｍ尿素、２０ｍＭＴｒｉｓ、ｐＨ８．７５］で１０倍に希釈することによって活性種に再生した。再生混合物を２日間４℃に維持した後で、［２０ｍＭ酢酸ナトリウム、３００ｍＭ塩化ナトリウム、ｐＨ５］中で平衡化したＳＰＳｅｐｈａｒｏｓｅＢｉｇＢｅａｄカラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）上にローディングした。０．３Ｍ→０．６Ｍ塩化ナトリウム塩勾配を使用して組換えヒトＧＤＮＦをカラムから溶出させた。ｒｈＧＤＮＦを含む画分を１つにし、等体積の［５Ｍ塩化ナトリウム、２０ｍＭクエン酸ナトリウム］で希釈し、その後で、［２．５Ｍ塩化ナトリウム、２０ｍＭクエン酸ナトリウム、ｐＨ５］中で平衡化したＰｈｅｎｙｌ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅカラム（ＨｉｇｈＣａｐａｃｉｔｙ，Ｐｈａｒｍａｃｉａ）上にローディングした。２．５Ｍ→０Ｍ塩化ナトリウム下降塩勾配を使用してｒｈＧＤＮＦをＨｉｇｈＣａｐａｃｉｔｙカラムから溶出させた。適切な画分をプールし、等体積の２０ｍＭ酢酸ナトリウムで希釈した。その次に、希釈したタンパク質混合物を［２０ｍＭ酢酸ナトリウム、４７５ｍＭ塩化ナトリウム、ｐＨ５］中で平衡化したＳＰＳｅｐｈａｒｏｓｅＨｉｇｈＰｅｒｆｏｒｍａｎｃｅカラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）上にローディングした。４７５ｍＭ→６７５ｍＭ塩化ナトリウム塩勾配を使用してｒｈＧＤＮＦをカラムから溶出させた。精製ｒｈＧＤＮＦを含む画分を組み合わせ、濃縮し、−２０℃で保存した。Ｂ．不活性ｒｈＧＤＮＦの調製カルボジイミド結合によって過剰グリシンメチルエステルでタンパク質のカルボン酸基をブロッキングすることによって、組換えヒトＧＤＮＦを化学的に不活性化した。精製ｒｈＧＤＮＦ１００ｍｇを０．５ＭＭＥＳｐＨ５の中にダイアフィルトレーションして最終タンパク質濃度を１ｍｇ／ｍＬにした。ＥＤＣ８０ｍＭとグリシンメチルエステル８００ｍＭを加えた。反応物を室温で１時間静置した。混合物をリン酸緩衝塩類液に対して透析し、過剰な試薬を除去し、その後で−２０℃で保存した。実施例２手術体重２００−２２５ｇの成体雄Ｆ３４４ラット（Ｈａｒｌｅｎ）を使用した。動物を１２時間の明暗サイクルで定温度（２２℃）に維持した。動物が食餌と水を自由に摂取できるようにした。動物を２．５％イソフルラン＋Ｏ₂で麻酔し、麻酔状態を維持したままでＫｏｐｆ定位フレーム内に置いた。これらの動物に対して、ｒｈＧＤＮＦ（５０、５、０．５、０．０５μｇ／２μＬ）、ビヒクル（リン酸緩衝塩類液、２μＬ）、又は、不活性ＧＤＮＦ（２μｇ／２μＬ）のいずれかを２６ゲージＨａｍｉｌｔｏｎ注射器を使用して側脳室（ｉｃｖ）の中に５分間に亙って片側注射した。Ｈａｍｉｌｔｏｎ注射器を更に５分間そのままの位置に保った後に取り除いた。ブレグマを基準とする相対的な注射座標は、硬膜から３．５ｍｍの深さにおいて、ＡＰ − ０．８、ＭＬ −１．５であった。動物の皮膚を創傷クリップで縫合し、回復させた。ｒｈＧＤＮＦ、不活性ＧＤＮＦ、又は、ビヒクルを、カイニン酸の１時間前に投与した。カイニン酸（ＴｏｃｒｉｓＮｅｕｒａｍｉｎ，Ｅｎｇｌａｎｄ．）１２ｍｇ／ｋｇを０．９％塩類液中に溶解し、皮下投与した。調査期間中は動物の体重を毎日記録した。実施例３脳組織ＫＡ投与７日後に、ラットをペントバルビトンナトリウム５５ｍｇ／ｋｇ（腹腔内）で麻酔し、リン酸緩衝ホルマリン溶液を噴門経由で潅注した。脳を取り出し、同一の固定剤中で２４時間以上液浸固定し、５μｍ厚切片の形に冠状に切断し、切片をＮｉｓｓｌ染色した。Ｌｅｉｔｚ顕微鏡を使用して、海馬のＣＡ１領域とＣＡ３領域、視床（束周縁の視床核と脳室周囲の視床核）、及び、扁桃（扁桃海馬区域、前外側と、基底内側の類扁桃核、後側と、基底外側の類扁桃核、後方と、後方内側の皮質性類扁桃核）において、生存可能な細胞の計数を両側的に行った。計数、長さ、及び、面積をＢｒｅｇｍａ −４．１６ｍｍ（Ｐａｘｉｎｏｓ及びＷａｔｓｏｎ）で行った。海馬ＣＡ１セクターの総直線長さをＩｍａｇｅ−１（ＵｎｉｖｅｒｓａｌＩｍａｇｉｎｇＣｏｒｐ．，ＷｅｓｔＣｈｅｓｔｅｒ，ＰＡ）画像解析システムで測定した。視床区域と類扁桃区域の面積を，２０倍対物レンズを使用する直線校正スケール上の０．２５ｍｍ²に相当する１００ｍｍ²アイピースレチクル（ｅｙｅｐｉｅｃｅｒｅｔｉｃｌｅ）によって測定した。細胞計数を海馬領域に関しては細胞／ｍｍで表し、視床と扁桃に関しては細胞／ｍｍ²で表した。実施例４ｒｈＧＤＮＦの分布ｒｈＧＤＮＦ（１００μｇ／４μＬ）の頭蓋内脳室内注射（ｉｃｖ）の２４時間後に、ラットに１０％中性緩衝ホルマリンを潅注し、脳を取り出し、パラフィンに埋め込み、荷電スライド上で５ミクロンに切断した。ｒｈＧＤＮＦに対するアフィニティー精製ウサギ抗体を使用して、切片をＧＤＮＦに関して免疫染色した。この抗体（０．５９ｍｇ／ｍＬ）を１：１００希釈で使用し、上記切片と共に１時間インキュベートし、その後で、一価ビオチニル化抗ウサギを加え、更にその後で、ＯｍｎｉｔａｇｓＳｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎＡｌｋａｌｉｎｅＰｈｏｓｐｈａｔａｓｅ（ＬｉｐｓｈａｗＩｍｍｕｎｏｎ，Ｐｉｔｔｓｂｕｒｇｈ，ＰＡ）を加えた。ＮｅｗＦｕｃｈｓｉｎＳｕｂｓｔｒａｔｅＳｙｓｔｅｍ（ＤａｋｏＣｏｒｐ．，Ｃａｒｐｉｎｔｅｒｉａ，ＣＡ）を使用して切片を現像した。負の対照は、同じ濃度の無関係な抗体を一次抗体の代わりに使用した切片と、リン酸緩衝塩類液を注射したラットからの切片とを含んだ。スライドをＣｒｙｓｔａｌＭｏｕｎｔ（Ｂｉｏｍｅｄａ，ＦｏｓｔｅｒＣｉｔｙ，ＣＡ）を使用してマウントし、更にその後でＰｅｒｍｏｕｎｔ（ＦｉｓｃｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｆａｉｒｌａｗｎ，ＮＪ）を使用してマウントし、永久標本を作った。ｒｈＧＤＮＦの分布を、接眼鏡マイクロメーターを装着したＬｅｉｔｚ顕微鏡を使用して評価した。実施例５バイオアッセイｒｈＧＤＮＦと不活性ＧＤＮＦの活性に関するバイオアッセイを、本明細書に引例として組み入れているＬｉｎ他，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６５：８９４２−８９４７（１９９０）によって説明されている通りに行った。簡潔に説明すると、ＧＤＮＦ活性に関するインビトロアッセイによって、ヒヨコ胚交感神経連鎖（Ｅ９）ニューロンの生存を測定する。２０００個の精製ニューロンを９６穴プレートの各穴に入れ、ＧＤＮＦサンプルの連続希釈を加えた。４４時間後に、生体染色剤ＭＴＴ（３−４［，５−ジメチルチアゾール−２−イル］−２，５ −ジフェニルテトラゾリウム）（ＳｉｇｍａＣｈｅｍｉｃａｌＣｏ．，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を減少させる生存細胞の能力によって、ニューロン生存を推定した。ｒｈＧＤＮＦの生理活性を、ＭＴＴアッセイに基づく最大ニューロン生存の５０％を与えるｒｈＧＤＮＦの希釈度であるＥＣ₅₀値として表した。実施例６統計対照動物とＧＤＮＦ処置動物との間の組織学的比較をスチューデントｔ検定で分析した。ウェットドッグシェイクと強直−間代性発作に関するｒｈＧＤＮＦによる用量依存作用を試験するためにロジスティク回帰を行い、その後でＦｉｓｈｅｒ完全試験を行った。Ｗａｌｄ試験、単向分散分析（ＡＮＯＶＡ）、及び、その後でのＳｃｈｅｆｆｅ多重比較方法とを使用して、体重比較を分析した。実施例７結果Ｆｉｓｈｅｒ３４４ラットに対する１２ｍｇ／ｋｇカイニン酸塩の末梢注射が、ウェットドッグシェイクと痙攣とを２時間以内に誘発し、最初の８時間以内に死亡を誘発した（表１）。表１は、カイニン酸（１２ｍｇ／ｋｇ、ｓ．ｃ．）に対するｒｈＧＤＮＦの抗痙攣薬活性を示す。組換えヒトＧＤＮＦ、ビヒクル、又は、不活性ＧＤＮＦを、カイニン酸の１時間前に投与（ｉｃｖ）した。表に示す値は、ウェットドッグシェイク、強直−間代性発作、及び、死亡を示したラットの個体数を示す。全ての動物を、カイニン酸を投与してから最初の１２時間後に検査し、その後では毎日検査した。Ｆｉｓｈｅｒ完全試験を使用した場合に、ウェットドッグシェイクに対して有意性があった用量レベルは５０μｇ／２μＬ（ｐ＝０．００００９）と５μｇ／２μＬ（ｐ＝０．０４２）であった。強直−間代性発作に対しては、０．０５μｇ／２μＬ（ｐ＝０．０１２）、０．５μｇ／２μＬ（ｐ＝０．００００１）、５μｇ／２μＬ（ｐ＝０．００００７）、及び、５０ μｇ／２μＬ（ｐ＝０．００００００９）の用量が有意だった。表１に示す通りの行動変化は、Ｌｏｔｈｍａｎ＆Ｃｏｌｌｉｎｓ，ＢｒａｉｎＲｅｓ．，２１８：２９９−３１８（１９８１）に報告されている従来の調査研究結果と一致していた。脳室内ｒｈＧＤＮＦ（０．０５−５０μｇ／２μ ｇ）は、用量に依存する形で、カイニン酸由来ウェットドッグシェイクを有意に（ｐ＝０．００３６）低減させた。同様に、大脳脳室内経路によって０．５μｇ／２μＬから５０μｇ／２μＬまでの用量のｒｈＧＤＮＦを投与したカイニン酸処置ラットは、強直−間代性発作反応を示さず、一方、ｒｈＧＤＮＦの用量が少ない（０．０５μｇ／２μＬ）動物の５０％と、ビヒクル（ＰＢＳｎ＝１３）又は非活性ＧＤＮＦ（２μｇ／２μＬ）を注射した動物全てが、強直−間代性発作活動を示した（ｐ＝０．０００８、ロジスティク回帰分析、表１を参照されたい）。ｒｈＧＤＮＦを投与したラットには死亡が生じず、一方、ビヒクル又は非活性ＧＤＮＦを投与したラットには死亡が生じた。更に、ｒｈＧＤＮＦはウェットドッグシェイクの発生を遅らせた。ビヒクル処置動物は、カイニン酸投与後３０分間以内にウェットドッグシェイクを示した。組換えヒトＧＤＮＦ（５０μｇ／２μＬ、及び、５μｇ／２μＬ）は、更に３０分間から６０分間ウェットドッグシェイクの発生を遅らせ、一方、より少ない用量では、ウェットドッグシェイクの発生の遅れは１５分間から２０分間にすぎなかった。カイニン酸塩の末梢注射は、７日後に検出された選択的な海馬ＣＡ１ニューロン損失と視床ニューロン損失と扁桃ニューロン損失を一貫して生じさせた。海馬の組織検査によって、正常な対照動物に比較して、ビヒクル又は不活性ＧＤＮＦを投与（ｉｃｖ）した動物全てにおいてＣＡ１錐体細胞の５０−６０％損失が生じたことが明らかになった（図１と図２）。カイニン酸塩によるＣＡ１錐体細胞の損失は著しく大きかった（ｐ＜０．０１、スチューデントｔ検定）。ｒｈＧＤＮＦの投与（０．５−５０μｇ／２μＬ、ｉｃｖ）は、ビヒクル（２μＬ、ｉｃｖ）、低用量ＧＤＮＦ（０．０５μｇ／２μＬ）、又は、不活性ＧＤＮＦ（２μ ｇ／２μＬ）で処置した動物に比較して、左海馬と右海馬の両方において広範なカイニン酸由来ＣＡ１錐体細胞損失を有意に減少させた（ｐ＜０．００１）。ｒｈＧＤＮＦ（５０μｇ）処置動物における生存可能なＣＡ１錐体細胞の個数は、正常な動物の場合のそれとは有意に相違しなかった（図１）。カイニン酸も著しい視床ニューロン損失及び扁桃ニューロン損失を生じさせたが、こうしたニューロン損失はｒｈＧＤＮＦ（０．５−５０μｇ／２μＬ）によって有意に減少させられた（ｐ＜０．０１）（図１）。更に、ｒｈＧＤＮＦを投与しない場合にカイニン酸によって生じさせられる視床体の著しい壊死及び空胞化を抑制することによって、カイニン酸由来ニューロン細胞損失に対するｒｈＧＤＮＦ（５０μｇ／２μＬ）の保護が示された。ｒｈＧＤＮＦ（１００μｇ／４μＬ）を注射したラットの免疫染色切片から、ｒｈＧＤＮＦ注射２４時間後における、脳室系、脳室周囲組織、クモ膜下腔、及び、下神経網の全体に亙ってのｒｈＧＤＮＦの広範な分布が明らかになった。側方脳室の後側部分に隣接した区域ＣＡ１ｂ、ＣＡ１ｃ、ＣＡ２、及び、ＣＡ３内における海馬の側方側面にポジティブ免疫染色が存在した。未処置動物に対するｒｈＧＤＮＦ（５０μｇ／２μＬ、ｉｃｖ）の投与は、ビヒクル処置動物に比較して、調査期間全体に亙って、体重の著しい減少と、体重増加速度の低下とを生じさせた（図３）。分析によって、ゼロ日目から７日目までの体重変化速度の差異（Ｗａｌｄ試験、ｐ＜０．００１）と、全体重変化の差異（Ｗａｌｄ試験、ｐ＜０．００１）とが明らかになった。ベースラインから７日目までの体重変化を、カイニン酸塩投与グループとｒｈＧＤＮＦ投与グループとの間で比較し、及び、カイニン酸塩投与グループとビヒクル投与グループとの間で比較した（単向ＡＮＯＶＡ）。この分析によって、処置グループの中で体重変化に明らかな差異があることが判明した（ｐ＜０．００１）。より低用量のｒｈＧＤＮＦが、それ自体としては追加の体重損失を生じさせずに、カイニン酸塩に起因する体重損失を減少させると考えられる（Ｓｃｈｅｆｆｅ試験、ｐ＜０．０５）。しかし、より高用量のｒｈＧＤＮＦ（５０μｇ／２μ Ｌ、及び、５μｇ／２μＬ）は、体重損失を悪化させると考えられる（Ｓｃｈｅｆｆｅ試験、ｐ＜０．０５）（表２）。高純度のｒｈＧＤＮＦは、培養中におけるヒヨコ交感神経連鎖ニューロンの生存を促進した。化学修飾ｒｈＧＤＮＦ（７５０ｎｇ／ｍＬまで）に対するヒヨコ胚交感神経連鎖ニューロン生存アッセイは、活性ｒｈＧＤＮＦ（ＥＣ₅₀ １０ｎｇ／ｍＬ）に比較した場合に、検出可能な生物学的活性を示さなかった。不活性形態と活性形態のＧＤＮＦを、リポ多糖（ＬＰＳ）レベルとＥ．ｃｏｌｉタンパク質（ＥＣＰ）レベルとに関して試験した。リポ多糖レベルは、＞１ＥＵ／ｍｇであり、Ｅ．ｃｏｌｉタンパク質レベルは、＞５０ｐｐｍだった。本発明の上記の説明は、本発明を説明するための具体例を示している。本発明の思想と範囲から逸脱することなしに変形と変更を行うことが可能であることは、当業者には明らかだろう。下記のクレームがこうした変形と変更のすべてを含むと解釈されたい。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ

Claims

【特許請求の範囲】１．発作活性に関連した神経変性疾患を抑制することを必要とする患者に対して、前記神経変性疾患を抑制するために有効な量のグリア誘導神経栄養因子（ＧＤＮＦ）を投与することを含む、前記神経変性疾患を抑制するための方法。２．前記神経変性疾患がてんかんである請求項１に記載の方法。３．前記ＧＤＮＦを組換えＤＮＡ法で生産する請求項１に記載の方法。４．前記発作が有害量のカイニン酸によって引き起こされる請求項１に記載の方法。５．前記ＧＤＮＦを調剤上許容可能な担体と共に投与する請求項１に記載の方法。６．前記ＧＤＮＦを頭蓋内投与する請求項１に記載の方法。７．発作を抑制するための治療有効量のＧＤＮＦと調剤上許容可能な担体とを含む調剤組成物。