JPH10507763A - Ｌ−ピラノシルヌクレオシド - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 化学式（Ｉ）のαおよびβ−Ｌ−ピラノシルヌクレオシドで、ここにおいてピラノシル炭水化物分子上でのヌクレオシド置換が、置換されたまたは置換されていないプリン（アデニンもしくはグアニン）またはピリミジン（シトシン、ウラシル、チミンおよびヒポキサンチン）塩基を含んでいるものに関する。同様に提供されているのは、αおよびβ−Ｌ−ピラノシルヌクレオシドの製造方法およびそれらを哺乳類においてガンの治療のために用いる方法。

Description

【発明の詳細な説明】 Ｌ−ピラノシルヌクレオシド 発明の分野 本発明はＬ−ピラノシルヌクレオシド、それらの調製工程、それらを含む薬用 組成物およびそのような化合物の、抗ガン、抗ウイルス、抗真菌、抗寄生菌、お よび／または抗細菌剤として哺乳類において用いる方法に関する。発明の背景 Ｐｅｒｉｇａｕｄ，Ｃ．ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ ａｎｄ Ｎ ｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ，１１（２−４），９０３−９４５，（１９９２）は、ヌ クレオシドおよび／またはヌクレオチドの化学治療剤（抗ガン、抗ウイルス、抗 細菌剤を含む）としての利用に関する従来技術について、有用な概観を提供して いる。この総説記事に記載されているように、「ヌクレオシド（群）」という用 語は天然に生じるヌクレオシドで、例えば、アデニンおよびグアニン（それぞれ ＡおよびＧ）はプリン塩基を有し、他方シトシン、ウラシル、チミンおよびヒポ キサンチン（それぞれＣ、Ｕ、Ｔ、およびＨ）はピリミジン塩基を有するという ように、塩基によって区別されるものに関する。 Ｎａｇａｓａｗａ，Ｎ．，ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．，３２，２ ５１−２５２，（１９６７）は、ある種のＤ−リボピラノシルヌクレオシド（特 に９−（２’）−デオキシ−β−Ｄ−リボピラノシル）アデノシン）の製造を記 述している。Ｆｕｃｉｋ，Ｖ．，ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒ ｅｓｅａｒｃｈ，Ｖｏｌ．１，Ｎｏ．４，（１９７４），６３９−６４４は、あ る種のリボピラノシルヌクレオシドを含む修飾された一連の派生体を用いた、Ｂ ａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓにおけるシチジン−輸送システムに対するプ リンヌクレオシドの親和性に及ぼす化学修飾の構造的効果を記述している。 よく知られているように、天然の核酸においてみられる糖は、ほとんど全ての 場合において、Ｄ−リボースおよびＤ−デオキシリボースである。リボヌクレオ チドおよびリボヌクレオシドのＤ−アイソマーの化学的および生物学的活性を調 べる多くの研究が成されているが、Ｌ−アイソマーに関しては大幅に少ない研究 が成されているのみである。これは、主に、微生物および酵素の助けを借りたヌ クレオシドのＤ、Ｌアイソマーの光学分割に頻繁に関与する、Ｌ−アイソマーの 合成が大幅に困難であることによる（一般に、Ａｓａｉ，Ｍ．，ｅｔ ａｌ．， Ｃｈｅｍ，Ｐｈａｒｍ，Ｂｕｌｌ．，１５（１２），１８６３−１８７０（１９ ６７）を参照されたい）。公知のＤ−ヌクレオシド化合物の活性、および、数多 くのそのようなＤ−糖ヌクレオシド成功した商業化（商業的な容認を得たＤ−ヌ クレオシドアナログの議論には、Ｐｅｒｉｇａｕｄ，Ｃ．，ｅｔ ａｌ．，前出 、を参照されたい）は、部分的には、Ｌ−アイソマーのある種のヌクレオシドア ナログに関する現在の研究につながるものである。 恐らく、最良の公知の市販されている核塩基アナログは、５−フロロウラシル （５−ＦＵ）で、その構造は以下の通りである： ５−ＦＵは、Ｒｏｃｈｅから市販されている代謝拮抗物質であり、ある種のガ ンの治療のために、最も一般に用いられている薬剤である。この薬剤が高度に受 け入れられていることは、部分的には、その極端な細胞毒性による。しかしなが ら、この高度に毒性である化合物は、安全性の余裕が狭く、例えば吐き気、嘔吐 、および下痢、白血球減少、血小板減少、脱毛等のようなＧＩ副作用を含む、多 くの副作用を有している。さらには、５−ＦＵは主に静脈内配合物として用いら れている。故に、恐らくは５−ＦＵと同程度に細胞毒性であるか、またはより低 毒性であるが５−ＦＵよりも特異的であるヌクレオシドアナログで、好ましくは 経口で投与可能であるものに対する需要がある。 ５−ＦＵは現在、それが正常細胞に与える損傷のために、短い間隔で投与され ている。患者は、治療の細胞毒性から回復を可能とする時間にわたり、化学治療 を受ける。もし、健康な細胞に対しては毒性が少ない薬が開発された場合、治療 されたガン細胞においてしばしば示される複数の薬剤耐性と関連している、時期 的な間隔をおいて患者治療することが必要ではなくなることは注意されるべきで ある。特に、腫瘍が殺されているときには、最も薬剤に耐性である細胞は最も遅 く死ぬので、それ故に、治療が停止された場合は（それはしばしば正常細胞に対 する毒性のためであるのだが）、より耐性である腫瘍細胞が増加するよう残され る。 重要な市販のヌクレオシドアナログはアジドチミジン（ＡＺＴ）であり、Ｂｕ ｒｒｏｕｇｈｓ ＷｅｌｌｃｏｍｅよりＲｅｔｒｏｖｉｒとして市販されている 。ＡＺＴ、以下の化学式の、β−Ｄ−デオキシ−リボフラノシルの派生体： は、抗ウイルス剤、特に後天性免疫不全症候群（ＡＩＤＳ）の原因となるウイル スに対して有用である。 この化合物は、５−ＦＵと同じ様に、顆粒球減少および／または重度貧血等の 血液学的毒性を含む、数多くの好ましくない副作用を有する。 限定することを意図してはいないが、出願人は、Ｌ−ヌクレオシド化合物が、 本発明でクレームされているように、５−ＦＵおよびＡＺＴ等の化合物を超えて 有用であり得ると確信しているが、それはＬ−ヌクレオシドは（クレームされた ように）弱化細胞（ｃｏｍｐｒｏｍｉｓｅｄ ｃｅｌｌ）に対して選択的透過性 を示すことが信じられているからである。弱化細胞とは、ガン細胞または他の感 染細胞であってその感染が細菌、真菌、ウイルスまたは寄生であるものを意味す る。本発明のＬ−ヌクレオシドは、これらの弱化細胞に輸送されるかまたは透過 するが、一方で正常細胞中ではＬ−ヌクレオシドは透過しない。（例えば、Ｌｉ ｎ，Ｔ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，”Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃ ａｌ Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ２’，３’−Ｄｉｄｅｏｘｙ−Ｌ−Ｐｙｒ ｉｍｉｄｉｎｅ Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ ａｓ Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ Ａｎｔ ｉｖｉｒａｌ Ａｇｅｎｔｓ ａｇａｉｎｓｔ ＨＩＶ ａｎｄ ＨＢＶ”と題 された要約、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，（１９９４），３７，７９８−８０３で 刊行；およびＳｐａｄａｒｉ，Ｓ．，ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．， （１９９２），３５，４２１４−４２２０を参照されたい。）故に、これらのＬ −ヌクレオシドが弱化された細胞に対して選択的である度合までは、これらは正 常細胞に対しては、５−ＦＵのような化合物よりは害が少ない。 この選択的透過性の考えに基づいて、治療用化合物が細胞のＲＮＡに関連した 阻害的機構をしばしば有するところのウイルス感染細胞においては、このような ウイルス感染細胞の酵素は正常細胞よりも特異性が低く、それ故、Ｌ−ヌクレオ シドを細胞に透過させることが可能であれば、より根本的な酵素（有機ホスホリ ラーゼ、キナーゼまたはチミジル酸合成等）はこの化合物を阻害を引き起こすよ うな形で認識するかもしれない。 本発明は、それ故、そのような抗ガン、抗ウイルス、抗寄生菌、抗真菌および ／または抗微生物剤としての興味深い活性を有するＬ−ピラノシルヌクレオシド の新しい群に関する。これらの化合物は一般に水溶性であり、そのことは経口で の配達が成され得ることを示唆している。このことは、５−ＦＵ等の抗ガン化合 物に対して特に有利である。そして、これらの化合物の活性は弱化された細胞に 対しては正常細胞と比較してより選択的であり、本発明の化合物は５−ＦＵ等の 類似の化合物よりも少ない副作用を引き起こすであろうことを示唆している。発明の詳細な説明 本発明により、分子式（Ｉ）を有するピラノシルヌクレオシド化合物： または薬学的に許容できるその塩であって、ここにおいて： Ｂは天然に生じる核塩基（Ａ、Ｇ、Ｃ、Ｕ、Ｔまたはヒポキサンチン）または Ｈ、ハロゲン、Ｃ１−Ｃ６アルキル、Ｃ２−Ｃ６アルケニル、Ｃ１−Ｃ６アルコ キシ、Ｃ３−Ｃ６シクロアルキル−Ｃ１−Ｃ６アルコキシ、Ｃ３−Ｃ８シクロア ルキルオキシ、Ｃ３−Ｃ８シクロアルキルチオ、Ｃ１−Ｃ６アルキルチオ、置換 アミノ基、アリール、アラルキル、アリールオキシ、アラルコキシ、アリールチ オ、アラルキルチオ、ヘテロ環リングおよびアミノ基、から成る群より選択され る１またはそれ以上の置換基を有する置換核塩基であり、塩基がピリミジンであ る場合には位置４の原子は硫黄でもよく、塩基がプリンである場合は、位置６の 原子は硫黄でもよい； ＲはＯＲ₅（ここにおいて、Ｒ₅はＨ、ＣＯＲ₆、またはＰ（Ｏ）ｎＲ₇Ｒ₈（こ こにおいてＲ₆は置換されているかまたは置換されていない１−５の炭素原子の アルキルまたは置換されたまたは置換されていない芳香族環構造であり、Ｒ₇お よびＲ₈はそれぞれＨか１−５の炭素原子のアルキルでｎは２または３である） ）； Ｒ₁またはＲ₂は独立に、Ｈ、モノ−またはジ−ハロゲン、ＯＲ₉またはＢ（こ こにおいて、Ｒ₉はＨ、ＣＯＲ₁₀、またはＰ（Ｏ）ｍＲ₁₁Ｒ₁₂（ここにおいてＲ_{1 0} は置換されているかまたは置換されていない１−５の炭素原子のアルキルまた は置換されたまたは置換されていない芳香族環構造であり、Ｒ₁₁およびＲ₁₂はそ れぞれＨか１−５の炭素原子のアルキルでｍは２または３である））；および Ｒ₃またはＲ₄は独立に、Ｂ、ＨまたはＯＲ₁₃（ここにおいて、Ｒ₁₃はＨ、ＣＯ Ｒ₁₄、またはＰ（Ｏ）ｐＲ₁₅Ｒ₁₆（ここにおいてＲ₁₄は置換されているかまたは 置換されていない１−５の炭素原子のアルキルまたは置換されたまたは置換され ていない芳香族環構造であり、Ｒ₁₅およびＲ₁₆はそれぞれＨか１−５の炭素原子 のアルキルでｐは２または３である））、Ｒ₁−Ｒ₄の１つだけがＢであってもよ い；さらにＲおよびＲ₁がそれぞれＯＨである場合、Ｒ₂はＨであり、Ｒ₃がＢで ある場合、Ｂはチミンでは有り得ず；ＲとＲ₁がおのおのＯＨで、Ｒ₂がＨで、Ｒ₄ がＢである場合、Ｂはチミンでは有り得ない、 ものが提供されている。 本発明の好ましい化物には、分子式（Ｉ）の化合物であって、ここにおいて： Ｒ₃またはＲ₄がＢであり、他はＨであり、Ｒ₃がＢである場合は系列はαで、 Ｒ₄がＢである場合は系列はβである； ＢはＣ、Ｔ、Ｕ、Ｇ、Ａまたは５−フルオロウラシル；および Ｒ−Ｒ₂はそれぞれＯＨであるものが含まれる。 特に好ましい本発明の化合物は以下のものである： β−Ｌ−リボピラノシルシトシン、β−Ｌ−リボピラノシルグアニン、β−Ｌ −リボピラノシルアデノシン、β−Ｌ−リボピラノシルウラシル、β−Ｌ−リボ ピラノシル−５−フルオロウラシル、およびα−Ｌ−リボピラノシル−５−フル オロウラシル、並びに薬学的に許容できるそれらの塩である。 また本発明によって、分子式（Ｉ）の化合物の調製方法、分子式（Ｉ）の化合 物を含む薬用組成物の調製方法、および、分子式（Ｉ）の化合物を哺乳類におい てガン（特に哺乳類における固体腫瘍）の治療のために用いる方法、並びに哺乳 類において分子式（Ｉ）の化合物を、抗ウイルス、抗真菌、抗寄生菌および／ま たは抗微生物剤として用いる方法が提供されている。合成 本発明は、様々な病気（ガンを含む）の治療のために有用なＬ−ピラノシルヌ クレオシドの系統を記述する。本発明の化合物は、それらの水溶性により、経口 的に活性である。 本発明の化合物で、ヌクレオシドが、ピラノシル糖にβ結合を介して連結され ているピリミジン塩基（Ｕ、Ｔ、Ｃまたは置換されたピリミジン塩基）を有する 場合（Ｂは分子式（Ｉ）中のＲ₄である）は、一般スキームＡによって調製され る。 テトラアセチル−Ｌ−リボピラノシド（１ｍｏｌ）およびピリミジン塩基（１ ｍｏｌ）の無水ＭｅＣＮ中の混合物に、ＨＭＤＳ（１ｍｏｌ）、ＣｌＳｉＭｅ₃ （０．８ｍｏｌ）およびＳｎＣｌ₄（１．２ｍｏｌ）を連続的に添加した。その 結果生じた透明な溶液を、ＴＬＣが反応の終結を示した１時間にわたって還流し た。溶媒は蒸留され、残留物をＥｔＯＡｃに溶解させ、ＮａＨＣＯ₃およびＨ₂Ｏ で洗浄した。ＥｔＯＡｃ層を乾燥させ、濾過し、蒸留して粗生産物を提供し、そ れは結晶化するかまたはシリカカラム上で精製し、純粋な２、３、５−トリ−Ｏ −アセチル−Ｌ−リボピラノシルピリミジン化合物を得た。これらの化合物は、 ＮＨ₃／ＭｅＯＨまたはＭｅＯＨ中のＮａＯＭｅの何れかとともに撹拌され、純 粋なβ−Ｌ−リボピラノシルピリミジンを、精製および結晶化の後で供与した。 特定の、β結合したピリミジン化合物の合成のためのより詳細なスキームを、 スキームＡ−１として提供する。 本発明の化合物で、ヌクレオシドが、ピラノシル糖にβ結合を介して連結され ているプリン塩基（ＡまたはＧ、または置換されたプリン塩基）を有する場合（ Ｂは分子式（Ｉ）中のＲ₄である）は、以下の一般スキームＢによって調製され る。 プリン塩基（２ｍｏｌ）および（ＮＨ₄）₂ＳＯ₄（触媒量）のＨＭＤＳ中の混 合物を、溶液が透明になるまで還流した。その結果生じた透明な溶液を濃縮し、 シリル化塩基を得、それに無水ジクロロエタンを添加し、溶液を０℃まで冷却し た。窒素雰囲気下で、ジクロロエタン中のテトラアセチル−Ｌ−リボピラノシド （１ｍｏｌ）およびＴＭＳＯＴｆ（２．１ｍｏｌ）を上記の溶液に添加し、室温 で１６時間撹拌した。反応を飽和ＮａＨＣＯ₃溶液で停止させ、溶媒を蒸留した 。残留物をＥｔＯＡｃ中に溶解させ、水および塩水で洗浄した。乾燥させ溶媒を 蒸留した後、得られた残留物をシリカゲルカラム上で精製し、純粋２、３、５− トリ−Ｏ−ベンジル−β−Ｌ−リボピラノシルプリンを供与し、それをＮＨ₃／ ＭｅＯＨとともに撹拌し、通常の精製の後、純粋β−Ｌ−リボピラノシルプリン を提供した。 特定のβ−結合したプリン化合物の合成のためのより詳細なスキームを、スキ ームＢ−１として提供する。 本発明の化合物で、ヌクレオシドが、ピラノシル糖にα結合を介して連結され ているピリミジン塩基（Ｕ、Ｔ、Ｃ、Ｈまたは置換されたピリミジン塩基）を有 する場合（Ｂは分子式（Ｉ）中のＲ₃である）は、以下の一般スキームＣによっ て調製される。 ＨＭＤＳ中のピリミジン塩基（２ｍｏｌ）および硫酸アンモニウム（触媒量） の混合物を、溶液が透明になるまで還流した。その結果生じた透明な溶液を真空 下で濃縮しシリル化塩基を得た。この無水ＣＨ₂Ｃｌ₂中のシリル化塩基に窒素雰 囲気下で、１−チオ−２、３、５−トリ−Ｏ−ベンジル−Ｌ−リボピラノシド（ ２ｍｏｌ）、４オングストロームモレキュラーシーブおよびＮＢＳ（１．１ｍｏ ｌ）を添加した。この反応混合物を室温で一晩撹拌し、Ｎａ₂Ｓ₂Ｏ₃溶液の添加 で停止させた。有機層を水、塩水で洗浄し、Ｎａ₂ＳＯ₄により乾燥させた。溶媒 の蒸留により粗生成物を得、これをシリカゲルカラム上で精製し、２、３、５− トリ−Ｏ−ベンジル−α−Ｌ−リボピラノシルピリミジン化合物を得た。これら の化合物を、続いて、Ｈ₂／Ｐｄ／Ｃ還元し、続いて精製および結晶化し、純粋 α−Ｌ−リボピラノシルピリミジンを供与した。 特定のα−結合ピリミジン化合物の合成のためのより詳細なスキームを、スキ ームＣ−１として提供する。 本発明の化合物で、ヌクレオシドが、ピラノシル糖にα結合を介して連結され ているプリン塩基を有する場合は、以下の一般スキームＤによって調製される。 ＨＭＤＳ中のプリン塩基（２ｍｏｌ）および（ＮＨ₄）₂ＳＯ₄（触媒量）の混 合物を、溶液が透明になるまで還流した。その結果生じた透明な溶液を濃縮しシ リル化塩基を得、ジクロロエタンを添加し溶液を０℃まで冷却した。窒素雰囲気 下で、１−Ｏ−アセチル−２、３、５−トリ−Ｏ−ベンジル−Ｌ−リボピラノー スおよびＴＭＳＯＴｆ（２．１ｍｏｌ）を上記溶液に添加し、室温で１６時間撹 拌した。反応を飽和ＮａＨＣＯ₃溶液の添加で停止させ、溶媒を蒸留した。残留 物をＥｔＯＡｔに溶解させ、水、塩水で洗浄した。乾燥、溶媒を蒸留した後、得 られた残留物をシリカゲルカラム上で分離し、純粋α−およびβ−２、３、５− トリ−Ｏ−ベンジル−Ｌ−リボピラノシルプリンを得、これらを、Ｐｄ／Ｃ触媒 の存在下（Ｈ₂／Ｐｄ／Ｃ）で水素で還元し、通常の精製の後、純粋α−Ｌ−リ ボピラノシルプリンを供与した。 本発明の範囲にあるα−結合プリン化合物の合成のためのより詳細なスキーム を、スキームＤ−１として提供する。 ここに供与した教示に加え、当業者は、本発明の範囲内で化合物の製造の方法 を、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｉｍｐｒｏｖｅｄ ａｎ ｄ Ｎｅｗ Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ，Ｍｅｔｈｏｄｓ ａ ｎｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，Ｌｅｒｏｙ Ｂ．ＴｏｗｎｓｅｎｄおよびＲ．Ｓ ｔｕａｒｔ Ｔｉｐｓｏｎ編集、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９７８）；およびＣｈｅｍｉｓｔｒｙ ｏｆ Ｎｕｃｌｅｏｓｉ ｄｅｓ ａｎｄ Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ，Ｌｅｒｏｙ Ｂ．Ｔｏｗｎｓｅｎｄ編 集、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、Ｐｌｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ（１９８８−１９９１）に記 載されているもの等の公知の技術を応用することにより容易に理解することがで きる。プリンヌクレオシド上での様々な置換を生じさせるための好適な方法はＷ Ｏ９０／０８１４７中に提供されている。ピリミジンヌクレオシド上での置換を 生じさせるための好適な方法はＷＯ８８／０４６６２中に提供されている。その ような出願の両方およびそれらに相当する米国出願／特許の開示は、当業者には 容易に入手可能であり、ここに取り込まれている。本願で請求されている化合物 の糖部分内部で置換を生じさせるための好適な方法は、当業者に知られており、 米国特許第４８８０７８２号；ＷＯ８８／０００５０；ＥＰＯ １９９４５１Ａ ２；米国特許第３８１７９８２号；Ｌａｎｇｅ，Ｐ．，ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｇ ｒｅｓｓ ｉｎ Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｖｉａｌ ａｎｄ Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ，Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ ６ｔｈ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｎｇｒｅｓｓ ｏｆ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ ａｐｙ，Ｕｎｉｖ．Ｐａｒｋ Ｐｒｅｓｓ，Ｅｎｇｌａｎｄ，１９７０，Ｖｏｌ ．１１，ｐ．３９４−３９７；およびＴｏｗｎｓｅｎｄｅｔ ａｌ．，前出、す べてはここに参考文献として取り込まれている、を含む多数の刊行物に記載され ている。 本発明は、以下の実施例および表を参照することによりさらに理解されること ができる：実施例 実施例１ β−Ｌ−リボピラノシルウラシルおよびβ−Ｌ−リボピラノシル−５−フルオロ ウラシル パートＡ １、２、３、４−テトラアセチル−Ｌ−リボピラノシド（１）の合成 Ｌ−リボース（Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．より市販）（６．０ｇ ）、無水酢酸（８０ｍｌ）、およびピリジンを１００℃まで加熱し、Ｌ−リボー スが溶解するまで撹拌した。冷却後、無水酢酸を真空下で蒸留した。残留物を１ ００ｍｌのジクロロメタンに溶解させ、３ｘ５０ｍｌの飽和ＮａＨＣＯ₃溶液、 および５０ｍｌの飽和ＮａＣｌ溶液で洗浄した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥 させ、ｒｏｔｏｖａｐｏｒ上で溶媒を蒸留した。最後に、油状残留物を高真空で 一晩保 存し、（１）を白色結晶固体として供与した（１２．３ｇ、９６．７％）。ＴＬ Ｃ：酢酸エチル−石油エーテル（７：３）中でＲｆ＝０．６３。パートＢ β−Ｌ−リボピラノシルウラシルトリアセテート（２）およびβ−Ｌ−リボピラ ノシル−５−フルオロウラシルトリアセテート（４）の合成 ８０ｍｌの乾燥アセトニトリル中の、１、２、３、４−テトラアセチル−Ｌ− リボピラノシド（１、３．５ｇ、１１ｍｍｏｌ）およびウラシル（Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．より市販）（１．２３ｇ、１１ｍｍｏｌ）または５− フルオロウラシル（Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．より市販）（１．４ ３ｇ、１１ｍｍｏｌ）に、ヘキサメチルジシラザン（２．３ｍｌ、８．８ｍｍｏ ｌ）、トリメチル−クロロシラン（１．１ｍｌ、８．８ｍｍｏｌ）およびトリメ チルシリルトリフレート（３．６ｍｌ、１８ｍｍｏｌ）を添加した。反応混合物 を室温で約１６時間撹拌し、続いて反応を完結させるため１．５時間還流した。 冷却の後、反応混合物を１００ｍｌのジクロロメタンで希釈し、３ｘ５０ｍｌの 飽和炭酸水素ナトリウム溶液で洗浄した。統合した水相を５０ｍｌのジクロロメ タンで再抽出した。統合した有機相を５０ｍｌの飽和ＮａＣｌ溶液で洗浄した。 有機相を硫酸ナトリウムで乾燥させ、溶媒をｒｏｔｏｖａｐｏｒ上で蒸留し、薄 黄色の結晶を供与した。収率は、β−Ｌ−リボピラノシルウラシルトリアセテー ト（２）は３．１ｇ（７６％）、およびβ−Ｌ−リボピラノシル−５−フルオロ ウラシル（４）派生体は２．９ｇ（６９．９％）であった。粗生成物をシリカゲ ルカラム（１５０ｇ）上で、酢酸エチル−石油エーテル（７：３）溶出剤を用い たフラッシュクロマトグラフィーにより精製した。収量はそれぞれ２．０ｇ（５ ２％）、および２．５ｇ（５６％）であった。両方の化合物について、酢酸エチ ル−石油エーテル（７：３）中でのＴＬＣ：Ｒｆ＝０．１８であった。パートＣ β−Ｌ−リボピラノシルウラシル（３）およびβ−Ｌ−リボピラノシル−５−フ ルオロウラシル（５）の合成 パートＢ由来のトリアセテートを、２．０Ｍメタノールアンモニア（１０ｍｍ ｏｌのヌクレオシドに対して８０ｍｌ）で２４時間室温で処理することにより、 脱保護化した。メタノールアンモニアは真空下で蒸留し、残留物を、シリカゲル （１５０ｇ）上でクロロホルム−メタノール−水（６５：３５：４）溶出剤を用 いたフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、１．４ｇ（３６％の全体での 収量）のＬ−リボピラノシルウラシル（３）、および１．８ｇ（４０％の全体で の収量）のＬ−リボピラノシル−５−フルオロウラシル（５）白色結晶を供与し た。クロロホルム−メタノール−水（６５：３５：４）溶媒中での両方の化合物 に対してのＴＬＣ：Ｒｆ＝０．４。 （３）に対する¹Ｈ−ＮＭＲ （ＤＭＳＯ−ｄ６）δ ３．５２−３．７５（ｍ、４Ｈ、Ｈ−３’、４’および５’） ３．９５（ｍ、 １Ｈ、Ｈ２’） ４．８４（ｄ、１Ｈ、ＯＨ） ５．０６（ｄ、１Ｈ、ＯＨ）５ ．１０（ｄ、１Ｈ、ＯＨ） ５．５８（ｄ、１Ｈ、Ｈ−２’） ５．６０（ｄ、 １Ｈ、Ｈ−１’） ７．６５（ｄ、１Ｈ、Ｈ−６） （５）に対する¹Ｈ−ＮＭＲ （ＤＭＳＯ−ｄ６）δ ３．４５−３．８０（ｍ、４Ｈ、Ｈ−３’、４’および５’） ４．０（ｍ、１ Ｈ、Ｈ２’） ４．８−５．４（ｂｒ ｓ、３Ｈ、２’、３’および５’ＯＨ） ５．６０（ｄ、１Ｈ、Ｈ−１’） ８．１０（ｄ、１Ｈ、Ｈ−６）実施例２ β−Ｌ−リボピラノシルシトシン パートＡ ２−トリメチルシリルオキシ−４−トリメチルシリルアミノピリミジン（６）の 合成 シトシン（１．７ｇ、１５．３ｍｍｏｌ）、ヘキサメチルジシラザン（ＨＭＤ Ｓ）（１５ｍｌ）、トリメチル−クロロシラン（ＴＣＳ）（０．１ｍｌ）および ピリジン（１０ｍｌ）を１３０℃のバス温度でシトシンが完全に溶解するまで還 流した（約１．５時間）。過剰のＨＭＤＳおよびピリジンを、２ｘ５０ｍｌの乾 燥トルエンと共に共蒸留することにより除去した。白色固体を高度真空下で乾燥 させた。収量：３．８ｇ（６）（９７．３％）。ＴＬＣ：Ｒｆ＝０．４２ 酢酸 エチル−石油エーテル（７：３）。パートＢ β−Ｌ−リボピラノシルシトシントリアセテート（７）の合成 ８０ｍｌの乾燥アセトニトリル中に溶解された１、２、３、４−テトラアセチ ル−Ｌ−リボヌクレオシド（１、４．１ｇ、１２．９ｍｍｏｌ）およびシリル化 シトシン（６）（３．３ｇ、１２．９ｍｍｏｌ）に、トリメチルシリルトリフレ ート（２．８ｍｌ、１４ｍｍｏｌ）をゆっくり添加した。混合物を室温で７２時 間混合した。反応を、混合物を１時間還流させることにより完結させた。暗褐色 の溶液を１５０ｍｌのジクロロメタンで希釈し、３ｘ５０ｍｌの飽和重炭酸ナト リウム溶液で洗浄した。水層を５０ｍｌのジクロロエタンで再抽出した。統合し た有機層を硫酸ナトリウムにより乾燥させ、溶媒をｒｏｔｏｖａｐｏｒ上で蒸留 した。残留物を真空下で乾燥させ、３．８ｇ（８０％）の褐色の泡を得た。この 生成物を、シリカゲルカラム（１５０ｇ）上で酢酸エチル−メタノール（９：１ ）溶出剤でのフラッシュクロマトグラフィーにより精製した。収量：１．５ｇ（ ７）（３１．５％） オレンジの結晶物質。ＴＬＣ：Ｒｆ＝０．５１ 酢酸エチ ル−メタノール（９：１）。パートＣ β−Ｌ−リボピラノシルシトシン（８）の合成 β−Ｌ−リボピラノシルシトシントリアセテート（７）を、２．０Ｍメタノー ルアンモニア（１０ｍｍｏｌのヌクレオシドに対して８０ｍｌ）で室温で２４時 間処理することにより脱保護した。メタノールアンモニアは真空下で蒸留し、残 留物を、シリカゲル（１５０ｇ）上でクロロホルム−メタノール−水（６５：３ ５：４）溶出剤を用いたフラッシュクロマトグラフィーにより精製し、０．８ｇ （１７％の全体での収量）の（８）の白色針状物質を供与した。ＴＬＣ：Ｒｆ＝ ０．１７、移動層クロロホルム−メタノール−水（６５：３５：４）において。 （８）に対する¹Ｈ−ＮＭＲ （ＤＭＳＯ−ｄ６）δ ３．４２−３．６５（ｍ、４Ｈ、Ｈ−３’、４’および５’） ３．９５（ｍ、 １Ｈ、Ｈ−２’） ４．７９（ｄ、１Ｈ、ＯＨ） ４．８４（ｄ、１Ｈ、ＯＨ） ５．０１（ｄ、１Ｈ、ＯＨ） ５．６７（ｄ、１Ｈ、Ｈ−５’） ５．７１（ ｄ、１Ｈ、Ｈ−５） ７．１３（ｂｒ ｄ、１Ｈ、ＮＨ₂） ７．５５（ｄ、１ Ｈ、Ｈ−６）実施例３ β−Ｌ−リボピラノシルアデノシン （１１） Ｎ⁶−ベンゾイル−アデニン（２．３９２ｇ、１０ｍｍｏｌ）を、ヘキサメチ ルジシラザン（３５ｍｌ）、トリメチル−クロロシラン（０．５ｍｌ）と共に乾 燥ピリジン（１０ｍｌ）の存在下で、還流温度で７時間シリル化した。溶媒を真 空下で除去した。シリル化剤の痕跡は乾燥トルエンとの共蒸留（２ｘ２０ｍｌ） により除去し、その結果生成されたオフホワイトの固体（９）をヌクレオシド合 成に用いた。 シリル化Ｎ⁶−ベンゾイルアデニン（９）（１０ｍｍｏｌ）を、１、２、３、 ４−テトラメチル−Ｌ−リボピラノシド（１、３．１８ｇ、１０ｍｍｏｌ）と乾 燥アセトニトリル（５０ｍｌ）中でトリメチルシリルトリフレート触媒（２．２ ｍｌ、１１ｍｍｏｌ）を用いて反応させた。触媒の添加後、透明溶液を１４時間 還流した。ＴＬＣにより開始時の糖およびシリル化ベンゾイルアデニンが無いこ とが示された。反応混合物を１００ｍｌのジクロロメタンで希釈し、３ｘ５０ｍ ｌの冷飽和重炭酸ナトリウム溶液で洗浄した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥さ せ、蒸留し、褐色ガラス状生成物を得た。フラッシュクロマトグラフィーによる 精製（クロロホルム−メタノール ９５：５）で、３．５ｇの緑色固体を得た。 メタノール（５０ｍｌ）に溶解させた後、生成物を活性炭素（１．２ｇ）で処理 した。この溶液の濾過に続いて、ｒｏｔｏｖａｐｏｒで蒸留し、２．５ｇの（１ ０）の薄黄色のアモルファス結晶物質を得た。１００ｍｌのメタノールアンモニ アでの脱保護の後、１．０ｇ（３９％）の（１１）をオフホワイトの結晶として 得た。ｎ−ブタノール−酢酸−水（１２：３：５）中でＲｆ＝０．３６。 （１１）に対する¹Ｈ−ＮＭＲ （ＤＭＳＯ−ｄ６）δ ３．５５−３．７８（ｍ、３Ｈ、Ｈ−４’および５’） ４．０４（ｍ、１Ｈ、 Ｈ−３’） ４．２３（ｔ、１Ｈ、Ｈ−２’） ４．９１（ｄ、１Ｈ、ＯＨ） ５．０８（ｄ、１Ｈ、ＯＨ） ５．１５（ｄ、１Ｈ、ＯＨ） ５．６３（ｄ、１ Ｈ、Ｈ−１’） ７．２５（ｓ、２Ｈ、ＮＨ₂） ８．１４および８．３０（ｓ 、２Ｈ、Ｈ−２および８）実施例４ β−Ｌ−リボピラノシルグアニン （１４）パートＡ Ｎ²−アセチル−グアニン（２．１３ｇ、１１ｍｍｏｌ）を、還流温度でヘキ サメチルジシラザン（３５ｍｌ）、トリメチルクロロシラン（０．５ｍｌ）と共 に乾燥ピリジン（１０ｍｌ）の存在下で７時間加熱することによりシリル化した 。溶媒は真空下で除去した。シリル化剤の痕跡は乾燥トルエン（２ｘ２０ｍｌ） との共蒸留により除去した。その結果生じたオフホワイトの固体（１２）をヌク レオシド合成に用いた。パートＢ シリル化Ｎ２−アセチル−グアニン（１２）（１０ｍｍｏｌ）を、１、２、３ 、４−テトラアセチル−Ｌ−リボピラノシド（１、３．５ｇ、１１ｍｍｏｌ）と 、乾燥アセトニトリル（５０ｍｌ）中でトリメチルシリルトリフレート触媒（２ ．４２ｍｌ、１２．１ｍｍｏｌ）を用いて反応させた。透明な溶液を、触媒を添 加した後に１．５時間還流し、室温で１２時間撹拌した。ＴＬＣはシリル化塩基 の親塩基または糖を示さなかった。反応混合物を１００ｍｌのジクロロメタンで 希釈し、３ｘ５０ｍｌの冷飽和重炭酸ナトリウム溶液で洗浄した。有機層を硫酸 ナトリウムで乾燥させ、蒸留し、３．４ｇの黄色のアモルファス結晶物質を得た 。フラッシュクロマトグラフィー（クロロホルム−メタノール ９５：５）によ る精製で、１．９ｇの（１３）のオフホワイトの結晶を得た。１００ｍｌのメタ ノールでの脱保護の後、１．０ｇ（４５％）の（１４）をオフホワイトの結晶と して得た。Ｒｆ＝０．２２、ｎ−ブタノール−酢酸−水（１２：３：５）中。 （１４）に対する¹Ｈ−ＮＭＲ （ＤＭＳＯ−ｄ６）δ ３．５０−３．６５（ｍ、３Ｈ、Ｈ−４’および５’） ３．９５−４．１５（ ｍ、２Ｈ、Ｈ−２’および３’） ５．０（ｂｒ ｓ、３Ｈ、２’、３’およ び５’−ＯＨ） ５．５（ｄ、Ｈ、Ｈ−１’） ６．６０（ｂｒ ｓ、２Ｈ、Ｎ Ｈ₂） ７．８３（ｓ、１Ｈ、Ｈ−８）実施例５ α−Ｌ−リボピラノシル−５−フルオロウラシル （１８）パートＡ １、２、３、４−テトラアセチル−Ｌ−リボピラノシド（１）の合成 ピリジン（１０ｍｌ）中のＬ−リボース溶液（２．１５ｇ、１４．３２ｍｍｏ ｌ）に、無水酢酸（１０ｍｌ）を添加し、反応混合物を室温で一晩撹拌した。溶 媒を蒸留し、残留物をＥｔＯＡｃに溶解させ、水、ＣｕＳＯ₄溶液、ＮａＨＣＯ₃ 溶液および塩水で洗浄した。乾燥および溶媒の蒸留の後、油状物を得、それを更 に精製すること無しに、次の段階で用いた。パートＢ １−チオ−２、３、４−トリ−Ｏ−アセチル−Ｌ−リボピラノシド（１５） ＣＨ₂Ｃｌ₂（８０ｍｌ）中の（１）（４．５４ｇ、１４．２８ｍｍｏｌ）の溶 液に、チオフェノール（１．６ｍｌ、１５．７１ｍｍｏｌ）を添加し、室温で１ ５分間撹拌した。続いて、反応混合物をアイスバス中で冷却し、ＳｎＣｌ₄（１ ｍｌ、８．５６ｍｍｏｌ）を滴下し、室温で一晩撹拌した。反応混合物を２Ｎ ＨＣｌ（２ｘ１００ｍｌ）、水（１５０ｍｌ）、ＮａＨＣＯ₃溶液（１００ｍｌ ）、続いて塩水で洗浄した。Ｎａ₂ＳＯ₄で乾燥させた後、溶媒を蒸留し、残留物 をシリカゲルカラム上で２０−３０％ＥｔＯＡｃ／石油エーテルを溶媒として用 いて精製し、純粋な化合物１５（２．６１ｇ、４９．７％）を油状物として得た 。パートＣ １−チオ−２、３、４−トリ−Ｏ−ベンジル−Ｌ−リボピラノシド（１６） ＭｅＯＨ（５０ｍｌ）中の（１５）（２．６１ｇ、７．０８ｍｍｏｌ）の溶液 に、ＮａＯＭｅ（０．３ｍｌ、１．４ｍｍｏｌ）を添加し１８時間撹拌した。反 応混合物をＤｏｗｅｘ５０イオン交換樹脂により中性化し、濾過し、蒸留した。 この残留物に、ＤＭＦ（５０ｍｌ）を添加し、アイスバス中で冷却した。この冷 却された溶液にＮａＨ（２．６７ｇ、６６．８５ｍｍｏｌ）を一部添加し、１５ 分間撹拌した。ベンジルブロミド（８ｍｌ、６．８５ｍｍｏｌ）を滴下し、０℃ で２−３時間撹拌した。ＥｔＯＡｃで希釈した後、反応をＭｅＯＨおよび水で停 止させた。ＥｔＯＡｃ層を水（２ｘ１００ｍｌ）および塩水で洗浄した。乾燥お よび溶媒の蒸留の後、得られた粗生成物をシリカゲルカラム上で５−１０％Ｅｔ ＯＡｃ／石油エーテルを溶媒として用いて精製し、純粋な（１６）（３．２９g 、９３．５％）を油状物として得た。パートＤ １−（２、３、４−トリ−Ｏ−ベンジル−α−Ｌ−リボピラノシル）−５−フル オロウラシル（１７） ヘキサメチルジシラザン（３０ｍｌ）中の５−フルオロウラシル（１．６２ｇ 、１２．４８ｍｍｏｌ）および硫酸アンモニウム（触媒量）の混合物を４時間還 流した。その結果生じた透明な溶液を真空下で濃縮し、シリル化５−フルオロウ ラシルを無色油状物として得た。ＣＨ₂Ｃｌ₂（２０ｍｌ）中の５−シリル化５− フルオロウラシル溶液に、窒素雰囲気下でＮＢＳ（１．２２ｇ、６．８６ｍｍｏ ｌ）、４オングストロームモレキュラーシーブ（２．４ｇ）、およびＣＨ₂Ｃｌ₂ （２０ｍｌ）中の化合物（１６）（３．２ｇ、６．２４ｍｍｏｌ）を添加した。 反応混合物を室温で一晩撹拌し、Ｎａ₂Ｓ₂Ｏ₃溶液の添加により停止させた。有 機層を水および塩水とで洗浄し、Ｎａ₂ＳＯ₄により乾燥させた。溶媒の蒸留によ り粗生成物を得、それを続いてシリカゲルカラム上で５０％ＥｔＯＡＣ／石油エ ーテルを溶媒として用いて精製し、純粋なαアイソマー（１７）（２．４２ｇ、 ７３％）を白色固体として得た。パートＥ α−Ｌ−リボピラノシル−５−フルオロウラシル（１８） ＣＨ₂Ｃｌ₂（１００ｍｌ）中の１７の溶液（パートＤより）（２．４２ｇ、４ ．５４ｍｍｏｌ）に、−７８℃で窒素雰囲気下で、ＢＣｌ₃の１Ｍ溶液（５０ｍ ｌ、４９．９４ｍｍｏｌ）を滴下した。反応混合物を−７８℃で４時間撹拌し、 ＣＨ₂Ｃｌ₂／ＭｅＯＨの１：１の混合物（１００ｍｌ）を添加し、反応混合物を 室温とし、溶媒を蒸留し乾燥した。残留物をＭｅＯＨ（５０ｍｌ）と５回共蒸留 した。得られた残留物を水に溶解させ、ＣＨＣｌ₃（５０ｘ２）およびＣＣｌ₄ （５０ｍｌ）で洗浄した。水層を蒸留し、白色固体を供与し、それを続いてＥ ｔＯＨ／エーテルから結晶化させ、純粋な１８（０．９４ｇ、７９．４％）を供 与した：ｍｐ ２３１℃。 （１８）に対する¹Ｈ−ＮＭＲ （ＤＭＳＯ−ｄ６）δ ３．６２−３．８０（ｍ、３Ｈ、Ｈ−３’、４’および５’） ３．９５（ｄ、 １Ｈ、Ｈ−２’） ５．０−５．２（２ ｂｒ ｓ、 ２Ｈ、ＯＨ） ５．３０ （ｄ、１Ｈ、ＯＨ） ５．５０（ｓ、１Ｈ、Ｈ−１’） ７．９５（ｄ、１Ｈ、 Ｈ−６） １１．９０（ｂｒｄ、１Ｈ、ＮＨ）有用性 あるヒト腫瘍細胞系統に対する生体外での活性。 細胞系統：８つの異なった確立されたヒト細胞系統（ＣＡＬＵ（肺）、ＣＯＬＯ ３２０（結腸）、Ｈ５７８Ｓｔ（胸部）、ＨＴ−２９（結腸）、ＭＣＦ−７（胸 部）、ＯＭ−１（結腸）、ＳＫＬＵ（肺）、およびＳＫＭＥＳ（肺）および２つ の対照細胞系統（骨髄細胞系統および／または繊維芽細胞）を用いた。全ての細 胞系統を、Ｔｕｍｏｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｉｎｓｔｉｔ ｕｔｅ ｆｏｒ Ｄｒｕｇ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ、Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒ ａｐｙ ａｎｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｅｒ、Ｓａｎ Ａｎｔｏｎｉｏ、 Ｔｅｘａｓより入手した。全ての細胞系統を、加熱不活性化させた子牛血清を供 給された適当な培地中で、単層として増殖させた。全ての試薬をＧｒａｎｄ Ｉ ｓｌａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｏ．，Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ，Ｎｅ ｗ Ｙｏｒｋより入手した。 腫瘍細胞の化合物への生体外での接触： 本発明のある化合物の、静脈内（ｉｖ ）配合物ストック溶液（以下の表１に示す）および、５−ＦＵ（対照）の静脈内 配合物を用いた。本発明の化合物のｉｖ配合物を、滅菌緩衝生理食塩水で調製し 、−７０℃で試験で必要になるまで貯蔵した。５−ＦＵ対照配合物は市販製品の 文献に提案されているとおりに調製した。 トリプシン処理に続いて、腫瘍細胞を組織培養培地に懸濁し、１０、１および ０．１μｇ／ｍｌの３つの異なった濃度で継続的に抗ガン剤に接触させた。 生育阻害のラジオメーター測定： 生育阻害を、ＢＡＣＴＥＣ Ｓｙｓｔｅｍ ４６０（Ｊｏｈｎｓｔｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｔｏｗｓｏｎ，ＭＤ ）により、終濃度２μＣｉ／ｍｌで¹⁴Ｃ−グルコースを含む各々の増殖培地中の 細胞に抗腫瘍剤を添加した後に測定した。（Ｃ．Ａｒｔｅａｇａ，ｅｔ ａｌ． ，Ａ Ｒａｄｉｏｍｅｔｒｉｃ Ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ Ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ：Ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ Ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ ａ Ｐａｎｅｌ ｏｆ Ｈｕｍａｎ Ｂｒｅａｓ ｔ Ｃａｎｃｅｒ Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｅｓ，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， ４７，６２４８−６２５３，（１９８７）を一般に参照されたい。） 放射性グルコースを含む２ｍｌの腫瘍細胞懸濁液を、滅菌使い捨て１５ｍｌバ イアルに、自密閉ゴム−アルミニウムキャップを通してシードした。各々の細胞 系統について、この放射性システムにおいて顕著に測定可能な増殖を示すために バイアル当たりに必要である腫瘍細胞の数は変化した。シードしたバイアルを続 いて３７℃で保温した。¹⁴Ｃ−グルコースの代謝の結果である１４ＣＯ２の解放 の測定を、第６、９、１２および１５日にＢＡＣＴＥＣ装置において行った。こ の装置は、¹⁴ＣＯ２を含有するバイアルからの空気をｄｐｍを増殖指標値に変換 するイオン化チャンバーへ送り込む。化学療法感受性は、薬で処理されたバイア ルの増殖指標値を対照バイアルで見られたそれと比較することにより計算した。 各々のデータの点は三重に用意された値を示している。 結果を表１に示す。全ての化合物は等モルレベルで比較している。 表１に示したデータを、対照としての５−ＦＵについて成された結果と比較し た。全ての化合物は等モルベースで投与した。阻害濃度（ＩＣ５０）を、処理し ていない細胞の５０％を殺すために必要な濃度として定義した。表１に列挙され たある化合物のＩＣ５０は５−ＦＵ（対照）よりも高いかも知れないが、本発明 は全体に骨髄や繊維芽細胞等の通常の細胞より低毒性である。このことは、本発 明の化合物は、公知のガン治療剤を超える有用性を有しているかもしれないこと を示唆しているが、それはクレームされた化合物が低毒性および／またはより腫 瘍細胞に選択的であり、それによって深刻ではない副作用を引き起こすからであ る。付加的には、これらの通常細胞に対する低毒性により、本化合物はガン細胞 に対する毒性を選択的に高めるために高いレートで投与されうる。この見地から 、供与された化合物についての治療比は、典型的には以下の計算により決定され る。 （生存％骨髄）／（生存％腫瘍） ８０％より小さい治療比が活性と考えられた。生体内での評価 本発明の代表的な化合物を、多様な、診療における用途を示唆する症状発現前 の抗ガン活性の試験において、これまでに試験され、および／または現在試験さ れている。例えば、ある化合物は生体内で、ヌードマウス中に異種移植されたヒ ト腫瘍に対して試験され、特にＢ１６、ＭＸ−１およびＰ３８８白血病腫瘍細胞 系統が用いられた。Ｂ１６メラノーマ Ｂ６Ｄ２Ｆ１マウスは、マウス中にｓ．ｃ．増殖しているＢ１６腫瘍から調製 されたネズミメラノーマブライのｉ．ｐ．接種物を受け取る（第０日）。第１日 に、腫瘍化マウスは薬剤または対照ビヒクルで処理される；薬剤、薬剤投与経路 および計画は、当該研究に適切であるように選択される。薬剤の投与量の情報が 得られない場合は、最大許容投与量（ＭＴＤ）を、腫瘍化されていないマウスに おける最初の投与量発見実験で決定した。典型的な実験においては、薬剤は、そ れらのＭＴＤおよび１／２ＭＴＤ投与量ｉ．ｐ．で毎日ｘ５の計画で与えられた 。 全てのグループの平均生存時間を計算し、結果を、処理マウスの平均生存／対 照マウスの平均生存（Ｔ／Ｃ）ｘ１００で示した。Ｔ／Ｃ値１５０とは、処理さ れたグループが対照グループより５０％長く生存したことを意味する；これはし ばしば生存期間の増加、またはＩＬＳ値として言及される。 Ｂ１６モデルにおいて、６０日間生存したマウスは長期間生存者または治癒者 と考えられた。このモデルにおいて、一般的に受け入れられている活性の切り捨 ては、ＮＣＩによって長い間用いられているのであるが、Ｔ／Ｃ＝１２５である 。永年にわたるＢ１６の従来の使用は以下の活性のレベルを設定している：Ｔ／ Ｃ＜１２５、活性なし；Ｔ／Ｃ＝１２５−１５０、弱活性；Ｔ／Ｃ＝１５０−２ ００、適度な活性；Ｔ／Ｃ＝２００−３００、高活性；Ｔ／Ｃ＞３００、長期間 生存者あり、卓越した治癒活性。 最初にｌｏｇ配列ｐ値試験を用いてデータの統計を行った。Ｐ３８８白血病 この試験を、Ｂ１６試験と全く同じ方法で行った。腫瘍接種物を腫瘍化ＤＢＡ ／２マウスからｐ３８８細胞を含む腹水を除去し、細胞を遠心し、続いて白血病 細胞を生理食塩水に再懸濁することにより調製した。マウスは第０日に１ｘ１０⁵ のｐ３８８細胞ｉ．ｐ．を受け取った。ＭＸ−１ ヒト胸部腫瘍異種移植 ヌードマウスに、ヌードマウス宿主中のｓ．ｃ．増殖ＭＸ−１腫瘍から収穫さ れたＭＸ−１哺乳類カルシノーマの断片を、トロカールによりｓ．ｃ．移植した 。腫瘍が５ｍｍ ｘ ５ｍｍの大きさになったとき（通常は接種後約１０日）、 動物を、処理および対照グループにペアで組み合わせた。各々のグループは１０ の腫瘍化マウスを含み、それらにそれぞれ耳にタグを付し、実験を通して個別に 追跡した。ドラッグまたはビヒクルの投与は、動物をペアで組み合わせた日に始 めた（第１日）。薬剤、薬剤投与経路および計画は、当該研究に適切であるよう に選択される。薬剤のＭＴＤ投与量が知られていない場合は、腫瘍化されていな いマウスにおける最初の投与量発見実験で決定した。典型的な実験においては、 薬剤は、それらのＭＴＤおよび１／２ＭＴＤ投与量ｉ．ｐ．で毎日ｘ５の計画で 与えられた。 実験は通常、対照腫瘍が２−３ｇの大きさになった時点で終了した。マウスを １週間に２回重さを計り、腫瘍の測定ははさみ尺により１週間に２回行い、第１ 日から開始した。これらの腫瘍測定は、よく知られた公式によりｍｇ腫瘍重量へ と変換され、これらの計算された腫瘍重量から、終了の日を決定できる。終了に おいて、全てのマウスの重さを計り、安楽死させ、それらの腫瘍を切り取った。 腫瘍の重さを計り、グループあたりの平均腫瘍重量を計算した。このモデルにお いて、平均対照腫瘍重量／平均処理腫瘍重量ｘ１００％（Ｃ／Ｔ）を、１００％ から差引き、腫瘍増殖阻害（ＴＧＩ）をそれぞれのグループについて得た。 いくつかの薬剤は腫瘍縮退をＭＸ−１モデルにおいて引き起こした。これらの 薬剤に関して、供与された腫瘍の最終重量を、それ自身の第１日の処理の開始の 重量から差し引いた。この差を最初の腫瘍重量で割ったものが％縮退である。平 均％腫瘍縮退を、ＭＸ−１減退を経験したグループ内のマウスからのデータから 計算できる。腫瘍が完全にマウス中で消失していた場合には、これは完全減退ま たは完全な腫瘍の縮減であると考えられた。必要な場合には、部分的または完全 腫瘍減退にあるマウスは、終了日の後もそれらは生きて長期間の腫瘍の無い生存 者となるか否かを決定するために生かしておいてもよい。 最初にｌｏｇ配列ｐ値試験を用いてデータの統計を行った。 ＨＩＶ−１不活性化研究のための手順 生体外抗ウイルス検索における化合物の試験のための一般的な手順が、以下の 参考文献に開示されている： １．細胞フリーＨＩＶ−１の不活性化 細胞フリーＨＩＶ−１ストックは慢性的にＨＩＶ−１のＨＴＬＶ−ＩＩＩＢ株 に感染されたＨ−９ヒトＴ細胞の培養上清から派生させた。ＭＮおよびいくつか のアフリカ株を含む他のＨＩＶ−１を、確認の目的で後で用いた。 ａ）細胞フリーＨＴＬＶ−ＩＩＩＢ： 細胞フリーＨＩＶ−１（５ｘ１０⁵から１ｘ１０⁶ＴＣＩＤ５０／ｍｌ、または 中央組織培養感染投与量）を、処理しないでおくか、またはＲＰＭＩ１６４０培 養培地、または異なった濃度の抗ウイルス剤で異なった時間的間隔で３７℃で、 または決定される温度で処理した。保温後、処理した、および処理していないも のを、５ｘ１０⁵の洗浄し沈殿させた標的ＭＴ−４細胞に添加した。１時間の３ ７℃での保温の後、ＭＴ−４細胞をＲＰＭＩ１６０４で３回洗浄し、１５％胎児 ウシ血清（ＦＢＳ）を補給したＲＰＭＩ１６４０に再懸濁し、５％ＣＯ２加湿保 温機で３７℃で培養した。細胞生育性を培養第７日に３−（４、５−ジメチル− チアゾール−２−イル）−２、５−ジフェニテトラゾリウムブロミド（ＭＴＴ） ダイの添加により決定したが、これは生きているミトコンドリアの存在下で色を 変化させるものである。全ての決定は三重に用意して行った。 ｂ）細胞フリーＪＲ−ＣＳＦ： ＨＩＶ−１のｌａｂ株（ＨＴＬＶ−ＩＩＩＢ）に対する抗ウイルス剤の効果の 評価に加えて、一次ヒト末梢単核細胞（ＰＢＭＣｓ）のみに感染するＨＩＶ−１ の主要な単離体（ＪＲ−ＣＳＦ）に対する抗ウイルス剤の効果を決定することも 重要である。植物性血球凝集素Ａ（ＰＨＡ、Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃ ｏ．）で活性化させたヒトＰＢＭＣｓを、１０％ＦＢＳ（完全培地）および２． ０μｇのＰＨＡ／ｍｌを添加した培養培地でＰＢＭＣｓを、感染性研究において 用いる前に１日間培養して調製した。上記のように処理された、または処理され ていないＨＩＶ−１（ＪＲ−ＣＳＦ）を、ＰＨＡ活性化ヒトＰＢＭＣｓに添加し 、３７℃で１時間保温した。保温後、１．０ｍｌの完全ＲＰＭＩ１６４０培養培 地を細胞に添加した。培養上清を培養の第３、６、９日に集め、ＨＩＶ−１ ｐ ２４核タンパク質の量を、ＨＩＶ−１ ｐ２４抗原捕捉アッセイ（Ｃｏｕｌｔｅ ｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，ＦＬまたはＭＥＭ−Ｄｕ Ｐｏｎｔ，Ｗｉｌｍｉｎ ｇｔｏｎ，ＤＥ）により三重に用意して行った。 ２．細胞関連ＨＩＶ−１の不活性化 用いられるＨＩＶ−１−感染ヒト細胞には、慢性的に感染されたＨ−９細胞（ ＨＴＬＶ−ＩＩＩＢまたはＭＮ株）、およびＨＴＬＶ−ＩＩＩＢまたはＪＲ−Ｃ ＳＦ株に感染したヒトＰＢＭＣｓが含まれ、ＨＴＬＶ−ＩＩＩＢおよびＭＮ感染 Ｈ−９細胞系統は当研究室で入手できる。感染したヒトＰＢＭＣｓのために、新 鮮ヒトＰＢＭＣｓを正常ボランティアから得、ＰＨＡで刺激し、ＨＴＬＶ−ＩＩ ＩＢまたはＪＲ−ＣＳＦを上記のように感染させた。生体外感染後第７日に、 感染性を培養上清中のＨＩＶ−１ ｐ２４の存在を試験することにより確認した 。感染させた培地は等量のアリコートに分割した。１つのセットを、続いて異な った濃度の抗ウイルス剤で、多様な時間的間隔で処理し、一方、１つのセットは 処理しないまま残した。培養の第３、６および９日に集められた培養上清を、Ｈ ＩＶ−１ ｐ２４レベルについてｐ２４抗原捕捉アッセイキットを用いてアッセ イする。これらの培養に由来する細胞はまた、免疫蛍光（ＩＦ）研究において、 ＨＩＶ−１抗原（群）を発現している細胞のパーセンテージを決定するために用 いられ得る。 ３．ＨＩＶ−１潜在的感染細胞の不活性化 これらのアッセイは、ＨＩＶ−１−潜在的感染細胞に対する抗ウイルス効果を 研究するために設計された。１またはそれ以上の以下のＨＩＶ−１潜在的感染ヒ ト細胞系統を用いることができる（Ｊ１−１、Ｕ１／ＨＩＶ、およびＮＩＨ Ａ ＩＤＳ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ａｎｄ Ｒｅａｇｅｎｔ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ Ｐ ｒｏｇｒａｍ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤより入手したＡＣＨ−２）。これらの 細胞は、それらが異なったサイトカインで刺激されない場合は顕著なＨＩＶ−１ ウイルス複製をせず、刺激されると１０−１００倍のＨＩＶ−１複製を引き起こ すというＨＩＶ−１感染により特徴づけられる。Ｊ１−１、またはＵ１／ＨＩＶ 、またはＡＣＨ−２細胞を９６ウェル丸底組織培養プレートにシードし、１５％ の胎児ウシ血清（ＦＢＳ）を添加したＲＰＭＩ １６４０中で５ｘ１０⁵／ウェ ルを供与した。細胞を、異なった濃度の抗ウイルス剤で多様な時間的間隔にわた り処理するか、または処理しないでおいた。処理に続いて、処理されたまたは処 理されていない細胞をＲＰＭＴ１６４０中で３回洗浄し、以下のように刺激した 。 Ｊ１−１細胞を、１０００Ｕのα−腫瘍壊死因子（α−ＴＮＦ、Ｇｅｎｚｙｍ ｅ）で４８時間にわたり３７℃で、以前に記述されたように（参考文献１）刺激 した。 Ｕ１／ＨＩＶ−１細胞を、２０％−４０％ＰＨＡ−培養上清（Ｅｌｅｃｔｒｏ ｎｕｃｌｅｏｎｉｃｓ）で、４８時間、３７℃で刺激した（参考文献２）。この ＰＨＡ−上清はＥｌｅｃｔｒｏｎｕｃｌｅｏｎｉｃｓから購入するかまたは我々 が調製する。調製されたＰＨＡ−上清、正常ヒトＰＢＭＣを１０⁶細胞／ｍｌの 細胞密度で、１５％ＦＢＳおよび１０μｇ／ｍｌの植物性血球凝集素Ａ（ＰＨＡ 、Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．）を添加したＲＰＭＩ１６４０中で培 養する。培養上清を回収し、２μｍフィルターで濾過し、Ｕ１／ＨＩＶ細胞を刺 激するために上記のように用いる。 ＡＣＨ−２細胞を、４８時間にわたり、３７℃で、１．０μｍｏｌのフォルボ ール−１２−ミリステート−１３−アセテート（ＰＭＡ、Ｓｉｇｍａ Ｃｈｅｍ ｉｃａｌ Ｃｏ．）の添加により記述の通りに（３、４）刺激する。刺激期間の 終りに、培養上清を集め、ＨＩＶ−１発現を、ＨＩＶ−１ ｐ２４抗原捕捉ＥＬ ＩＳＡ（Ｄｕ Ｐｏｎｔ）および逆転写酵素によりアッセイする。 細胞関連ＨＩＶ−１の不活性化実験においては、処理されたおよび処理されて いない細胞にＰＣＲ分析を行ってもよい。 ４．ＨＩＶ−１−誘導シンシチウム形成の阻害 ＨＩＶ−１−感染Ｈ−９細胞を上記のように抗ウイルス剤で処理するかまたは 処理しないでおいた。処理されたおよび処理されていない細胞（５ｘ１０⁴細胞 ／ウェル）を、１ｘ１０⁵のインジケーターＳｕｐＴ１ヒトＴ細胞／ウェルを完 全ＲＰＭＴ１６４０培養培地中に含んでいる９６ウェル平底マイクロタイター組 織培養プレートに添加した。３７℃で一晩保温し、続いて、倒立顕微鏡の視野を 用いた２人の別々の人によって、シンシチウム形成を記録した。 ５．細胞毒性の研究 抗ウイルス剤の細胞毒性は多様な細胞種について試験することができる。上記 で用いた全ての細胞系統および正常ヒトＰＢＭＣｓを、異なった抗ウイルス剤濃 度で多様な時間的間隔で上記のように保温した。細胞毒性は、ＭＴＴダイ法（上 記を参照）および［³Ｈ］チミジン吸い上げおよびシンチレーション計数により 決定した。投与量および配合 本発明の抗腫瘍化合物（活性成分）は、腫瘍を阻害するために活性成分と哺乳 類体内の薬の作用部位との接触をもたらす如何なる手段によって投与されてもよ い。それらは、薬剤と組み合わせて使用するために利用できる何れの従来の方法 によっても、独立した治療用活性成分として、または治療用活性成分と組み合わ せて投与されてもよい。それらは単独で、または、一般的には、投与経路および 標準的な薬学的実情に基づいて選択された薬学的担体と共に投与される。 投与される量は活性成分の腫瘍阻害量となり、勿論、特定の活性成分の薬力学 的特徴、およびその投与の経路および態様；受容者の年齢、健康および体重；症 状の本質と度合；共存する処理、処理の頻度および所望の効果等の公知の要素に 依存して変化する。通常の一日あたりの活性成分投与量（治療有効量またはガン 阻害量）は、体重１ｋｇあたり約５から４００ｍｇである。普通は１０から２０ ０、および好ましくは、１０から５０ｍｇ／ｋｇ／１日を、１日あたり２から４ 回に分けて、または持続的放出形式で供与するのが、所望の結果を得るために効 果的である。 内部投与に好適な投与の型（組成物）は、１単位あたり約１．０ｍｇから約５ ００ｍｇの活性成分を含んでいる。これらの薬用組成物においては、活性成分は 通常、組成物全体の重量に基づいて重量で約０．０５−９５％の量で存在するで あろう。 活性成分は、カプセル、タブレット、および粉末等の固体投与型で、または内 用液、シロップ、および懸濁液等の液体投与型で、経口で投与可能である。それ はまた、滅菌液体投与型で、非経口で投与されてもよい。 ゼラチンカプセルが、活性成分および、ラクトース、シュクロース、マンニト ール、スターチ、セルロース派生体、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸 およびその様なもの等の粉末化された担体を含んでいる。同様の希釈物を、圧縮 したタブレットを製造するために用いることができる。タブレットとカプセルの 両方を、数時間にわたる持続的な薬物の放出を提供するための継続的放出製品と して製造することができる。圧縮されたタブレットは、何れかの不快な味を隠し 、タブレットを空気から防護するために糖コートまたはフィルムコートされてい るか、または消化管における選択的な分解のための腸コートが成されていてもよ い。 経口投与のための液体投与型は、患者の受容性を増加するための着色料または 調味料を含んでいてもよい。 一般に、水、適切な油、生理食塩水、水性デキストロース（グルコース）、お よび関連した糖溶液およびプロピレングリコールまたはポリエチレングリコール 等のグリコールは、非経口溶液のための好適な担体である。非経口投与のための 溶液は、好ましくは、活性成分の水溶性の塩、好適な安定化剤、および、必要で あれば、バッファー物質を含む。重亜硫酸ナトリウム、亜硫酸ナトリウム、また はアスコルビン酸等の抗酸化剤の何れかを単独または組み合わせたものは、好適 な安定化剤である。クエン酸およびその塩およびＥＤＴＡナトリウムもまた用い られた。それに加えて、非経口溶液は、ベンズアルコニウムクロライド、メチル −またはプロピル−パラベン（ｐａｒａｂｅｎ）、およびクロロブタノール等の 保存剤を含んでもよい。 好適な薬用担体は、この分野での標準的な参照テキストであるＲｅｍｉｎｇｔ ｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｍａｃｋ Ｐｕ ｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙにおいて記述されている。 本発明の化合物の投与のための有用な薬用投与型は、以下に記述される。 カプセル： カプセルは、好ましくは、標準的な２断片ハードゼラチンカプセル をそれぞれ、１００ｍｇの粉末化活性成分、１７５ｍｇのラクトース、２４ｍｇ のタルク、および６ｍｇのステアリン酸マグネシウムで満たすことにより調製さ れる。 ソフトゼラチンカプセル： 大豆油中の活性成分の混合物を調製し、陽性移動ポ ンプによりゼラチン中に注入し、１００ｍｇの活性成分を含むソフトゼラチンを 形成する。カプセルを洗浄し、乾燥させる。 タブレット： 投与量単位が１００ｍｇの活性成分、０．２ｍｇのコロイダルシ リコンジオキシド、５ｍｇのステアリン酸マグネシウム、２７５ｍｇの微細結晶 セルロース、１１ｍｇのコーンスターチおよび９８．８ｍｇのラクトースとなる ように、従来の手順でタブレットが調製される。美味しさを増加させるかまたは 放出を遅らせるために、適切なコーティングが応用されてもよい。 注入用： 注入による投与のために好適な非経口組成物は、容積で１０％のプロ ピレンクリコールおよび水中にある重量で１．５％の活性成分を撹拌することに より調製される。溶液は塩化ナトリウムにより等張とし、滅菌する。 懸濁液： 経口投与のための水性懸濁物は、１００ｍｇの細かく分割された活性 成分、２００ｍｇのカルボキシメチルセルロースナトリウム、５ｍｇの安息香酸 ナトリウム、１．０ｇのソルビトール溶液、Ｕ．Ｓ．Ｐおよび０．０２５ｍｌの バニリンを５ｍｌ毎に含むように調製される。 本開示において、本発明の実施において特定の化合物および条件が重要である が、実現されている本発明の利益を損なわない限りにおいては、特定されていな い物質および条件が除外されていないことは理解されるべきである。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号 ＦＩ Ｃ０７Ｄ 405/04 ２３９ Ｃ０７Ｄ 405/04 ２３９ 473/18 473/18 473/30 473/30 473/34 473/34 Ｃ０７Ｈ 19/16 Ｃ０７Ｈ 19/16 (72)発明者 ウェイス，アレクサンダー エル アメリカ合衆国 テキサス州 78245 サ ン アントニオ オミクロン ドライヴ テキサス リサーチ パーク （番地な し） リピテック インコーポレーテッド 内 (72)発明者 グッドヒュー，チャールズ ティー アメリカ合衆国 テキサス州 78245 サ ン アントニオ オミクロン ドライヴ テキサス リサーチ パーク （番地な し） リピテック インコーポレーテッド 内

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．分子式（Ｉ）を化合物： または薬学的に許容できるその塩であって、ここにおいて： ＲはＯＲ₅で、ここにおいてＲ₅はＨ、ＣＯＲ₆、またはＰ（Ｏ）ｎＲ₇Ｒ₈で 、ここにおいてＲ₆は置換されているかまたは置換されていない１−５の炭素原 子のアルキルまたは置換されたまたは置換されていない芳香族環構造であり、Ｒ₇ およびＲ₈はそれぞれＨか１−５の炭素原子のアルキルでｎは２または３である ； Ｒ₁またはＲ₂は独立に、Ｈ，モノ−またはジ−ハロゲン、ＯＲ₉で、、ここ においてＲ₉はＨ、ＣＯＲ₁₀、Ｐ（Ｏ）ｍＲ₁₁Ｒ₁₂で、ここにおいてＲ₁₀は置換 されているかまたは置換されていない１−５の炭素原子のアルキルまたは置換さ れたまたは置換されていない芳香族環構造であり、Ｒ₁₁およびＲ₁₂はそれぞれＨ か１−５の炭素原子のアルキルでｍは２または３である； Ｒ₃またはＲ₄は独立に、Ｂ、ＨまたはＯＲ₁₃で、ここにおいてＲ₁₃はＨ、Ｃ ＯＲ₁₄、Ｐ（Ｏ）ｐＲ₁₅Ｒ₁₆で、ここにおいてＲ₁₄は置換されているかまたは置 換されていない１−５の炭素原子のアルキルまたは置換されたまたは置換されて いない芳香族環構造であり、Ｒ₁₅およびＲ₁₆はそれぞれＨか１−５の炭素原子の アルキルでｐは２または３である；および Ｂは、Ａ、Ｇ、Ｃ、Ｕ、Ｔまたはヒポキサンチンから成る群から選択される 天然に生じる核塩基、またはＨ、ハロゲン、Ｃ１−Ｃ６アルキル、Ｃ２−Ｃ６ア ルケニル、Ｃ１−Ｃ６アルコキシ、Ｃ３−Ｃ６シクロアルキル−Ｃ１−Ｃ６アル コキシ、Ｃ３−Ｃ８シクロアルキルオキシ、Ｃ３−Ｃ８シクロアルキルチオ、Ｃ １−Ｃ６アルキルチオ、置換アミノ基、アリール、アラルキル、アリールオキシ 、アラルコキシ、アリールチオ、アラルキルチオ、ヘテロ環リングお よびアミノ基、から成る群より選択される１またはそれ以上の置換基を有する置 換核塩基であり、塩基がピリミジンである場合には位置４の原子は硫黄でもよく 、塩基がプリンである場合は、位置６の原子は硫黄でもよい； Ｒ₁−Ｒ₄の１つだけがＢであってもよい場合であって、；さらにＲおよびＲ₁ がそれぞれＯＨである場合、Ｒ₂はＨであり、Ｒ₃がＢである場合、Ｂはチミン では有り得ず；ＲとＲ₁がおのおのＯＨで、Ｒ₂がＨで、Ｒ₄がＢである場合、Ｂ はチミンでは有り得ないもの。 ２．Ｒ₃がＢでありＲ₄がＨである請求の範囲第１項記載の化合物。 ３．Ｒ₄がＢでありＲ₃がＨである請求の範囲第１項記載の化合物。 ４．ＢがＣ、Ｔ、Ｕ、Ｇ、Ａまたは５−フルオロウラシルから成る群より選択さ れる核塩基であることを特徴とする請求の範囲第１項記載の化合物。 ５．Ｒ−Ｒ₂はそれぞれＯＨである請求の範囲第１項記載の化合物。 ６．Ｒ₃がＢでありＲ₄がＨであり、ＢがＣ、Ｔ、Ｕ、Ｇ、Ａまたは５−フルオロ ウラシルから成る群より選択される核塩基であり、Ｒ−Ｒ₂はそれぞれＯＨであ る請求の範囲第１項記載の化合物。 ７．Ｒ₄がＢでありＲ₃がＨであり、ＢがＣ、Ｔ、Ｕ、Ｇ、Ａまたは５−フルオロ ウラシルから成る群より選択される核塩基であり、Ｒ−Ｒ₂はそれぞれＯＨであ る請求の範囲第１項記載の化合物。 ８．β−Ｌ−リボピラノシルシトシン、β−Ｌ−リボピラノシルグアニン、β− Ｌ−リボピラノシルアデノシン、β−Ｌ−リボピラノシルウラシル、β−Ｌ−リ ボピラノシル−５−フルオロウラシル、およびα−Ｌ−リボピラノシル−５−フ ルオロウラシルから成る群より選択されることを特徴とする請求の範囲第１項記 載の化合物。 ９．薬学的に許容できる担体および請求の範囲第１項の化合物の１つまたはそれ 以上を治療のために有効量含んでいることを特徴とする薬用組成物。 10．薬学的に許容できる担体および請求の範囲第８項の化合物の１つまたはそれ 以上を治療のために有効量含んでいることを特徴とする薬用組成物。 11．哺乳類を治療する方法であって、ガンを罹病している哺乳類に、ガン阻止量 の以下の化合物を投与することからなる方法： または薬学的に許容できるその塩であって、ここにおいて： ＲはＯＲ₅で、ここにおいてＲ₅はＨ、ＣＯＲ₆、またはＰ（Ｏ）ｎＲ₇Ｒ₈で 、ここにおいてＲ₆は置換されているかまたは置換されていない１−５の炭素原 子のアルキルまたは置換されたまたは置換されていない芳香族環構造であり、Ｒ₇ およびＲ₈はそれぞれＨか１−５の炭素原子のアルキルでｎは２または３である ； Ｒ₁またはＲ₂は独立に、Ｈ，モノ−またはジ−ハロゲン、ＯＲ₉で、ここに おいてＲ₉はＨ、ＣＯＲ₁₀、Ｐ（Ｏ）ｍＲ₁₁Ｒ₁₂で、ここにおいてＲ₁₀は置換さ れているかまたは置換されていない１−５の炭素原子のアルキルまたは置換され たまたは置換されていない芳香族環構造であり、Ｒ₁₁およびＲ₁₂はそれぞれＨか １−５の炭素原子のアルキルでｍは２または３である； Ｒ₃またはＲ₄は独立に、Ｂ、ＨまたはＯＲ₁₃で、ここにおいてＲ₁₃はＨ、Ｃ ＯＲ₁₄、Ｐ（Ｏ）ｐＲ₁₅Ｒ₁₆で、ここにおいてＲ₁₄は置換されているかまたは置 換されていない１−５の炭素原子のアルキルまたは置換されたまたは置換されて いない芳香族環構造であり、Ｒ₁₅およびＲ₁₆はそれぞれＨか１−５の炭素原子の アルキルでｐは２または３である；および Ｂは、Ａ、Ｇ、Ｃ、Ｕ、Ｔまたはヒポキサンチンから成る群から選択される 天然に生じる核塩基、またはＨ、ハロゲン、Ｃ１−Ｃ６アルキル、Ｃ２−Ｃ６ア ルケニル、Ｃ１−Ｃ６アルコキシ、Ｃ３−Ｃ６シクロアルキル−Ｃ１−Ｃ６アル コキシ、Ｃ３−Ｃ８シクロアルキルオキシ、Ｃ３−Ｃ８シクロアルキルチオ、Ｃ １−Ｃ６アルキルチオ、置換アミノ基、アリール、アラルキル、アリールオキシ 、アラルコキシ、アリールチオ、アラルキルチオ、ヘテロ環リングおよびアミノ 基、から成る群より選択される１またはそれ以上の置換基を有する置換核塩基で あり、塩基がピリミジンである場合には位置４の原子は硫黄でもよく、塩基がプ リンである場合は、位置６の原子は硫黄でもよい； Ｒ₁−Ｒ₄の１つだけがＢであってもよい場合であって、；さらにＲおよびＲ₁ がそれぞれＯＨである場合、Ｒ₂はＨであり、Ｒ₃がＢである場合、Ｂはチミン では有り得ず；ＲとＲ₁がおのおのＯＨで、Ｒ₂がＨで、Ｒ₄がＢである場合、Ｂ はチミンでは有り得ないもの。 12．哺乳類においてガンを治療する方法であって、ガンを罹病している哺乳類に 、ガン阻止量の請求項８の化合物を投与することからなる方法。