JPH0925241A - Hgf凍結乾燥製剤 - Google Patents
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Abstract
F凍結乾燥製剤、及び安定化剤、塩化ナトリウム、緩衝
剤及び/又は界面活性剤等を添加したHGF凍結乾燥製
剤。 【効果】 HGFを安定化させることができ、長期間の
保存が可能となった。
Description
溶液を凍結乾燥することにより得られる、HGF凍結乾
燥製剤に関する。さらに詳しくは、安定化剤、塩化ナト
リウム、緩衝剤、又は界面活性剤の少なくとも一種以上
を含有する、前記HGF凍結乾燥製剤に関する。本発明
により、HGFを安定化させた、長期保存の可能な製剤
が提供される。
蛋白質であり、異なったアミノ酸配列を有するものが報
告されており、その名称も、HGF、TCF、SCF等
が使用されている。本発明では、これらの公知の肝実質
細胞増殖活性を有する蛋白質をHGFと総称する。HG
Fは様々な薬理作用を示す生理活性ペプチドであり、そ
の薬理作用については、例えば実験医学 Vol.10, No.3
(増刊)330-339 (1992)に記載されている。HGFはそ
の薬理作用から肝硬変治療剤、腎疾患治療剤、上皮細胞
増殖促進剤、抗ガン剤、ガン療法用副作用防止剤、肺障
害治療剤、胃・十二指腸損傷治療剤、脳神経障害治療
剤、免疫抑制副作用防止剤、コラーゲン分解促進剤、軟
骨障害治療剤、動脈疾患治療剤、肺線維症治療剤、肝臓
疾患治療剤、血液凝固異常治療剤、血漿低蛋白治療剤、
創傷治療剤、神経障害改善薬、造血幹細胞増加剤、育毛
促進剤等(特開平4-18028号公報、特開平4-49246号公
報、EP 492614号公報、特開平6-25010号公報、WO 93/88
21公報、特開平6-172207号公報、特開平7-89869号公
報、特開平6-40934号公報、WO 94/2165公報、特開平6-4
0935号公報、特開平6-56692号公報、特開平7-41429号公
報、WO 93/3061公報、特開平5-213721号公報等)として
の開発が期待されている。
報及び特開平6-247872号公報に記載がある。上記WO 90/
10651公報は、HGFと比較してアミノ酸5残基が欠失
したデリーションタイプのHGF(dLeHGF)につ
いて開示されており、TCFIIと称している。この明細
書では、アルブミン、ヒト血清、ゼラチン、ソルビトー
ル、マンニトール、キリシトール等がHGFを安定化す
ることを開示している。これらは、水溶液製剤に関する
ものであり、HGFを水溶液中で安定化させる。また、
特開平6-247872号公報は塩基性アミノ酸等とHGF(T
CF)を共存させることにより、HGFを高濃度に含有
させた製剤について開示している。
おいてそれほど安定ではない(「蛋白質 核酸 酵素」 3
7(9), 1517 (1992))。また、水溶液中におけるタンパク
質の安定化剤は、水分子とタンパク質との相互作用によ
って安定化させるものであり、従って、水の存在しない
タンパク質の凍結乾燥品においては、水溶液におけるタ
ンパク質の安定化剤は、多くの場合、安定化効果を示さ
ない(「蛋白質 核酸酵素」 37(9), 1517 (1992))。一
方、HGFの凍結乾燥製剤についてはまったく知られて
おらず、またHGFの凍結乾燥製剤がどの程度の物理的
及び生物活性的安定性を示すかは予想することができな
かった。
体は、低温又は室温で数日間保存すると、凝集、白濁、
ゲル化が認められ、性状が変化し、類縁体・重合体が形
成される等、物理的安定性が低く、また生物活性が低下
する等、生物活性安定性が低く、長期間の保存に対し安
定な製剤ではない。そのことは、HGFを注射用製剤等
とした医薬又は動物薬としての開発に大きな障害となっ
ていた。本発明は上記の従来の課題を解決するものであ
る。即ち、本発明の目的は、医療用医薬品又は動物用薬
として長期間の保存でも安定な製剤の提供にある。
するためになされたものであり、その要旨は、(1)H
GF凍結乾燥製剤、(2)安定化剤を含有する(1)記
載のHGF凍結乾燥製剤、(3)安定化剤がグリシン、
アラニン、ソルビトール、マンニトール又はデキストラ
ン硫酸である(2)記載のHGF凍結乾燥製剤、(4)
緩衝剤を含有する(1)から(3)のいずれかに記載の
HGF凍結乾燥製剤、(5)緩衝剤がクエン酸塩である
(4)記載のHGF凍結乾燥製剤、及び(6)安定化
剤、塩化ナトリウム、緩衝剤及び界面活性剤を含有する
HGF凍結乾燥製剤に関する。
は、医薬として使用できる程度に精製されたものであれ
ば、種々の方法で精製されたものを用いることができ
る。HGFの精製方法としては、各種の方法が知られて
いる。例えば、ラット、ウシ、ウマ、ヒツジなどの哺乳
動物の肝臓、脾臓、肺臓、骨髄、脳、腎臓、胎盤等の臓
器、血小板、白血球等の血液細胞や血漿、血清などから
抽出、精製して得ることができる(FEBS Letters, 224,
312, 1987 、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 86, 5844, 1
989など参照)。
化細胞を培養し、培養物(培養上清、培養細胞等)から
分離精製してHGFを得ることもできる。あるいは遺伝
子工学的手法によりHGFをコードする遺伝子を適切な
ベクターに組込み、これを適当な宿主に挿入して形質転
換し、この形質転換体の培養上清から目的とする組換え
HGFを得ることができる(例えば、Nature, 342, 44
0, 1989、WO 92/01053公報、特開平5-111383号公報、Bi
ochem. Biophys. Res. Commun., 163, 967, 1989など参
照)。上記の宿主細胞は特に限定されず、従来から遺伝
子工学的手法で用いられている各種の宿主細胞、例えば
大腸菌、枯草菌、酵母、糸状菌、植物又は動物細胞など
を用いることができる。
出精製する方法としては、例えば、ラットに四塩化炭素
を腹腔内投与し、肝炎状態にしたラットの肝臓を摘出し
て粉砕し、S−セファロース、ヘパリンセファロースな
どのゲルカラムクロマトグラフィー、HPLC等の通常
の蛋白質精製法にて精製することができる。また、遺伝
子組換法を用い、ヒトHGFのアミノ酸配列をコードす
る遺伝子を、ウシパピローマウィルスDNAなどのベク
ターに組み込んだ発現ベクターによって動物細胞、例え
ば、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、マウ
スC127細胞、サルCOS細胞などを形質転換し、そ
の培養上清より得ることができる。
効果を有していれば、そのアミノ酸配列の一部が欠失又
は他のアミノ酸により置換されていたり、他のアミノ酸
配列が一部挿入されていたり、N末端及び/又はC末端
に1又は2以上のアミノ酸が結合していたり、あるいは
糖鎖が同様に欠失又は置換されていてもよい。
有する水溶液を通常の凍結乾燥方法で凍結乾燥した製剤
をいう。「安定化剤」としては、グリシン、アラニン等
のアミノ酸類、ヘパリン、デキストラン硫酸等の多糖
類、ソルビトール、マンニトール等の糖アルコール等が
挙げられ、二種以上を併用してもよい。安定化剤を加え
て製造したHGF凍結乾燥製剤は、さらにHGFの保存
安定性が増した製剤である。好ましい安定化剤は、グリ
シン、アラニン、ソルビトール、マンニトール、デキス
トラン硫酸等が挙げられる。例えば、グリシン、アラニ
ン、ソルビトール又はマンニトールの添加量として好ま
しいのは、HGFの重量に対して、0.01−100倍
の重量が挙げられ、特に好ましいのは、0.1−10倍
の重量が挙げられる。
ァー、クエン酸バッファー等が挙げられる。緩衝剤は、
再溶解後の水溶液のpHを調整しHGFの溶解性を保つ
作用を有する。すなわち、例えば実施例で使用した組換
HGFの場合、pHによってHGFの溶解度は変化し、
pH7付近では0.1−5.0mg/mlの溶解度を示
すが、pH5付近では20mg/ml以上の溶解度を示
すため、pHを5.0−6.0にするのが好ましい。緩
衝剤として好ましいものは、クエン酸バッファーが挙げ
られ、特に好ましくはクエン酸ナトリウムバッファーが
挙げられる。このクエン酸バッファーは、再溶解後の水
溶液中でのHGFの安定化にも寄与する。緩衝剤の添加
量として好ましい範囲は、例えば再溶解後の水量に対
し、1−100mMとなる範囲が挙げられる。
ベート20、ポリソルベート80、プルロニックF−6
8、ポリエチレングリコール等が挙げられ、二種以上を
併用してもよい。界面活性剤として特に好ましくは、ポ
リソルベート80を挙げることができる。HGFは容器
の材質であるガラスや樹脂などに吸着しやすい。従っ
て、界面活性剤を添加することによって、再溶解後のH
GFの容器への吸着を防止することができる。界面活性
剤の添加量として好ましい範囲は、例えば再溶解後の水
重量に対し、0.001−2.0%の重量の範囲が挙げ
られる。
つ作用を有する。すなわち、例えば実施例で使用した組
換HGFの場合、塩化ナトリウムの添加により溶解度が
向上し、特に300mM以上では著しく溶解性が向上す
る(特開平6-247872号公報)。塩化ナトリウムの添加量
は浸透圧比により制限を受けるが、一般的に用いられる
注射剤の浸透圧比を示す量でよい。特に医療用又は動物
薬用注射剤の浸透圧比として許容される浸透圧比1−2
が好ましく、例えば再溶解後の水量に対し150−30
0mMとすることが好ましい。
水溶液を通常の凍結乾燥方法で凍結乾燥することで製造
できる。例えば、HGFを適切な溶剤(例えば、滅菌
水、緩衝液、生理食塩水等)に溶解した後、フィルター
等で濾過して滅菌し、必要に応じて、安定化剤、緩衝
剤、界面活性剤、塩化ナトリウム等を加え、凍結乾燥す
る。本発明の製剤は製剤化に必要な添加物、例えば、溶
解補助剤、酸化防止剤、無痛化剤、等張化剤等を含んで
もよい。凍結乾燥方法としては、例えば、常圧下で冷
却凍結する凍結過程、溶質に拘束されない自由水を減
圧下で昇華乾燥する1次乾燥過程、溶質固有の吸着水
や結晶水を除去する2次乾燥過程の3つの単位操作によ
る方法が挙げられる(Pharm. Tech. Japan, 8(1), 75-8
7 (1992))。HGFは、溶液調製時、凍結乾燥時、及び
その凍結乾燥製剤を再溶解した水溶液において、非常に
安定である。なお、HGF含量は、適用疾患、適用投与
経路などに応じて適宜調整することができる。凍結乾燥
製剤は、使用時に注射用蒸留水等を加え、再溶解して使
用される。
を安定化させることができ、長期間の保存が可能となっ
た。
説明するが、本発明はこれらの実施例によりなんら限定
されるものではない。なお、本実施例においては、WO
90/10651公報に記載のdLeHGF(5アミノ
酸欠失型HGF、別名TCFII)を用いた。 実施例1HGF凍結乾燥製剤の作製 300mM塩化ナトリウム、0.01%ポリソルベート
80を含有する10mMクエン酸緩衝液(pH5.0)
にHGF20mg/mlとなるように溶解し、無菌的に
HGF水溶液を得た。本水溶液のpHを調整した後、無
菌的にバイアルに充填し、表1に示す条件に従って凍結
乾燥して、HGF凍結乾燥製剤を得た。なお、表中の→
は、温度を変化させたことを示す。
0)の代わりに10mMクエン酸緩衝液(pH6.0)
を用いて、HGF凍結乾燥製剤を得た。 実施例3HGF凍結乾燥製剤の作製 実施例1において、10mMクエン酸緩衝液(pH5.
0)の代わりに10mMリン酸緩衝液(pH6.0)を
用いて、HGF凍結乾燥製剤を得た。 実施例4HGF凍結乾燥製剤の作製 実施例1において、10mMクエン酸緩衝液(pH5.
0)の代わりに10mMリン酸緩衝液(pH7.0)を
用いて、HGF凍結乾燥製剤を得た。
80を含有する10mMクエン酸緩衝液(pH5)にH
GF20mg/mlとなるように溶解した。続いて、グ
リシンを50mg/mlになるよう溶解し、無菌的にH
GF溶解液を得た。本溶解液のpHを調整した後、無菌
的にバイアルに充填し、実施例1の凍結乾燥の条件と同
様の条件によりHGF凍結乾燥製剤を得た。 実施例6HGF凍結乾燥製剤の作製 実施例5において、グリシンの代わりにアラニンを用い
て、HGF凍結乾燥製剤を得た。
80を含有する10mMクエン酸緩衝液(pH5)にH
GF20mg/mlとなるように溶解した。続いて、ソ
ルビトールを200mg/mlになるよう溶解し、無菌
的にHGF溶解液を得た。本溶解液のpHを調整した
後、無菌的にバイアルに充填し、実施例1の凍結乾燥の
条件と同様の条件によりHGF凍結乾燥製剤を得た。
80を含有する10mMクエン酸緩衝液(pH6)にH
GF10mg/mlとなるように溶解した。続いて、デ
キストラン硫酸を50mg/mlになるよう溶解し、p
Hを調整して、HGF溶解液を得た。次いで、バイアル
充填し、実施例1の凍結乾燥の条件と同様な条件により
HGF凍結乾燥製剤を得た。 実施例9HGF凍結乾燥製剤の作製 実施例1において、10mMクエン酸緩衝液(pH5.
0)の代わりに10mMクエン酸緩衝液(pH6.0)
を用い、またHGF濃度を10mg/mlとして、HG
F凍結乾燥製剤を得た。
するため、実施例1において、凍結乾燥前のHGF水溶
液及び凍結乾燥後そのまま再溶解したHGF水溶液を用
いてHGFの生物活性を測定した(生物活性測定法は以
下に示す)。その結果を表2に示す。凍結乾燥前後で比
活性に変化が認められなかったことから、凍結乾燥過程
及び再溶解においてHGFの生物活性は失活せず、HG
Fを凍結乾燥製剤とすることが可能であることが示され
た。
を精製し、細胞生存率を確認後、1×104/well
でプレートに播種した。5%炭酸ガスインキュベータで
のプレインキュベーション20時間後、HGFサンプル
及び標準品を添加した(n=3)。さらに、5%炭酸ガ
スインキュベータでのプレインキュベーション24時間
後、[3H−チミジン]を添加し、2時間ラベルした。
細胞をセルハーベスターで回収し、細胞内に取り込まれ
た[3H]量を測定した。測定結果を平行線検定法にか
け、標準品に対する比活性を求めた。
50℃にて1ヶ月間保存後、溶解し、溶解後の性状を目
視により観察した。凍結乾燥製剤の溶解は精製水で行っ
た。その結果を表3に示す。−40℃及び25℃の保存
において、いずれの実施例の製剤も性状に関して安定で
あった。また、50℃の保存においては、実施例1の製
剤は溶解直後白濁したが、実施例5、6及び7の製剤は
性状に関して安定であった。
40℃、25℃、40℃、50℃にて1ヶ月間又は2ヶ
月間保存し、その凍結乾燥製剤に含まれる重合体含量と
HGF含量の比を測定した。測定方法は以下に示すゲル
ろ過法を使用した。その結果を表4及び表5に示す。い
ずれの温度の保存においても、いずれの実施例の製剤も
重合体の生成は少なく物理的に安定であった。また、特
に実施例5、6及び7の製剤は重合体の生成は極端に少
なく物理的に安定であった。
て、下記の条件で測定した。 カラム : TOSOH TSK G-3000SW XL (φ0.78×30cm) 流速 : 0.5 ml/min 検出 : OD 280 温度 : 25 ℃ キャリアー : 10mM Tris, 150mM NaCl, 0.05% SDS, pH 7.0 アプライ : 20 μl 重合体の保持時間: 13.0 min HGFの保持時間: 14.4 min
保存し、その凍結乾燥製剤に含まれる重合体含量とHG
F含量の比を測定した。なお、測定は試験例3と同様に
して行った。また、比較例として、デキストラン硫酸を
含まない点以外は同様な成分及び方法により調製されて
いる実施例9の凍結乾燥製剤を用いて、同様な試験を行
った。その結果を表6に示す。表6に示されるように、
デキストラン硫酸を添加することにより、高温保存して
も重合体の生成は少なく、安定性が向上することが判明
した。
40℃、40℃、50℃、60℃にて1ヶ月間又は2ヶ
月間保存し、その凍結乾燥製剤を再溶解した水溶液の生
物活性を、試験例1に示す生物活性測定方法で測定し
た。その結果を表7及び表8に示す。なお、実施例1、
5、6及び7の製剤の再溶解後の水溶液の生物活性の初
期値は、それぞれ1.01±0.25、0.91±0.18、0.88±0.0
5、1.03±0.04であった。60℃の保存では、やや生物
活性に低下傾向が見られるものの、50℃以下の保存で
は、いずれの実施例の製剤も生物活性に殆ど変化はな
く、生物活性的に安定であった。
Claims (6)
- 【請求項1】 HGF凍結乾燥製剤。
- 【請求項2】 安定化剤を含有する請求項1記載のHG
F凍結乾燥製剤。 - 【請求項3】 安定化剤がグリシン、アラニン、ソルビ
トール、マンニトール又はデキストラン硫酸である請求
項2記載のHGF凍結乾燥製剤。 - 【請求項4】 緩衝剤を含有する請求項1から3のいず
れかに記載のHGF凍結乾燥製剤。 - 【請求項5】 緩衝剤がクエン酸塩である請求項4記載
のHGF凍結乾燥製剤。 - 【請求項6】 安定化剤、塩化ナトリウム、緩衝剤及び
界面活性剤を含有するHGF凍結乾燥製剤。
Priority Applications (14)
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