JPH0870852A - セルロースアセテートの脱アセチル化能を有する微生物および該微生物を担持したセルロースアセテート成形体 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 【目的】 セルロースアセテートの脱アセチル化能を有
する微生物を単離し、その微生物を使用して、生分解素
材として適度に促進された生分解性を有するセルロース
アセテートからなる成形体を提供すること。 【構成】 酢化度が１０〜５７％のセルロースアセテー
トからなる成形体であって、該成形体は、バチルス セ
レウス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅｕｓ）、バチルス
エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）及びスフィン
ゴモナス パウシモビリス（Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ
ｐａｕｃｉｍｏｂｉｌｉｓ）からなる群から選ばれた
少なくとも１種の、セルロースアセテートの脱アセチル
化能を有する微生物及び／又は該微生物が産生するセル
ロースアセテート脱アセチル化酵素を担持した成形体で
ある。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【産業上の利用分野】本発明は、セルロースアセテート
の脱アセチル化能を有する微生物および該微生物を担持
した、生分解性が高められたセルロースアセテートから
なる成形体に関するものである。

【０００２】

【従来の技術】近年、環境破壊は極めて深刻な問題とな
っており、合成樹脂、合成繊維などの分解し難い合成品
がそのまま残存し、環境を汚染していることが大きな問
題となっている。これに対して木綿、レーヨンといった
セルロース製品などは、非常に生分解性に優れているた
め、地球環境に優しい素材として注目を集め、各種の応
用、開発が行われている。

【０００３】例えば、特開平５−４１９２３号公報に
は、綿製不織布にセルラーゼ、又はプロテアーゼ酵素を
含む水溶液をパッド処理することにより分解酵素を付着
させ、分解酵素の付着量により土中での腐敗をコントロ
ール促進する方法が開示されている。しかし、この様な
不織布は、生分解速度があまりにも速すぎて実使用に供
し難い場合が多い。

【０００４】一方、セルロースを酢化して得られるセル
ロースアセテートは、セルロースに比べて分解速度は低
いものの、長年月の間には生分解するといわれており、
これを用いれば、上記問題を解決できるのではないかと
考えられる。

【０００５】しかしながら、セルロースジアセテート繊
維やセルローストリアセテート繊維は通常、繊維表面と
繊維内部の酢化度が異なっており、該繊維を土中などに
埋没した場合、次第に分解速度が低下していくので実際
の生分解速度は非常に遅く、また、芯部のセルロースア
セテートはほとんど分解せずに自然環境中に残存するの
で、生分解素材として実用化できるものは得られていな
いのが実情である。

【０００６】一方、Ｐｏｌｙｍ．Ｍａｔｅｒ．Ｓｃｉ．
Ｅｎｇ．，６７，１３９−１４０，１９９２．には、セ
ルロースアセテートを分解することが可能な微生物が２
株単離され、それぞれスフィンゴモナス パウシモビリ
ス（Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｐａｕｃｉｍｏｂｉｌ
ｉｓ）及びバチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）属に属する微
生物（バチルス エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓ
ｐ．）と称される）と同定されたことが開示されてい
る。

【０００７】しかしながら、前者はセルロースアセテー
トの分解メカニズムが不明瞭であり、又後者はセルロー
スアセテートを炭素源として生育できないという欠点が
あるため、該微生物をセルロースアセテートに担持し
て、生分解性の高められた成形体を得るという着想は生
まれなかったのが実情である。

【０００８】

【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、上記
の問題点を解消し、あらゆる自然環境において、セルロ
ースアセテートを脱アセチル化し、生分解することが可
能な微生物及び該微生物を担持した成形体を提供する事
にある。

【０００９】

【課題を解決するための手段】本発明者等は、上記目的
を達成するために、種々検討を重ねた結果、ある種のセ
ルロースアセテートの脱アセチル化能を有する微生物を
土中より単離することに成功し、また該微生物及び／又
は該微生物が産生するセルロースアセテート脱アセチル
化酵素を担持させる事により、セルロースアセテートの
生分解速度が高められることを究明した。

【００１０】かくして本発明によれば、セルロースアセ
テートの脱アセチル化能を有する微生物バチルス セレ
ウス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅｕｓ）が見出され、
その菌株の１種は工業技術院生命工学研究所に、受託番
号ＦＥＲＭ Ｐ−１４４３１として寄託された。

【００１１】又、セルロースアセテートの脱アセチル化
能を有し、且つセルロースアセテートを炭素源として生
育できる微生物バチルス エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ
ｓｐ．）が見いだされ、その菌株の１種は工業技術院
生命工学研究所に、受託番号ＦＥＲＭ Ｐ−１４４３０
として寄託された。

【００１２】さらに、本発明によれば、酢化度が１０〜
５７％のセルロースアセテートからなる成形体であっ
て、該成形体は、バチルス セレウス（Ｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｃｅｒｅｕｓ）、バチルス エスピー（Ｂａｃｉｌ
ｌｕｓ ｓｐ．）及びスフィンゴモナス パウシモビリ
ス（Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｐａｕｃｉｍｏｂｉｌ
ｉｓ）からなる群から選ばれた少なくとも１種の、セル
ロースアセテートの脱アセチル化能を有する微生物及び
／又は該微生物が産生するセルロースアセテート脱アセ
チル化酵素を担持した成形体であることを特徴とするセ
ルロースアセテート成形体が提供される。

【００１３】本発明で使用する成形体を形成するセルロ
ースアセテートは、１０〜５７％の酢化度を有している
ことが必要である。

【００１４】酢化度が５７％を越えるとセルロースアセ
テート自身の生分解速度が急激に低下し、セルロースア
セテートの脱アセチル化能を有する微生物及び／又は該
微生物が産出するセルロースアセテート脱アセチル化酵
素に起因する分解を受けにくくなる為、生分解素材とし
て実用に供することが出来ない。

【００１５】一方、酢化度が１０％未満では、生分解速
度が実質的にセルロースと同等になり、生分解速度が高
すぎて使用に供しえない場合がある。

【００１６】セルロースアセテート自身の生分解速度
は、土の種類、季節、湿度等の環境条件により影響を受
けやすいが、これらの環境条件及び使用目的に応じて、
酢化度が１０〜５７％のセルロースアセテートを用い、
更にこれにセルロースアセテートの脱アセチル化能を有
する微生物及び／又は該微生物の産生するセルロースア
セテート脱アセチル化酵素を担持させれば、適度に促進
された生分解速度を有する成形体を得ることが出来る。

【００１７】本発明においては、上記セルロースアセテ
ートにバチルス セレウス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒ
ｅｕｓ）、バチルス エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓ
ｐ．）及びスフィンゴモナス パウシモビリス（Ｓｐｈ
ｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｐａｕｃｉｍｏｂｉｌｉｓ）から
なる群から選ばれた少なくとも１種の、セルロースアセ
テートの脱アセチル化能を有する微生物及び／又は該微
生物が産生するセルロースアセテート脱アセチル化酵素
を担持させることが必要である。

【００１８】上記微生物及び／又は酵素により脱アセチ
ル化を受けたセルロースアセテートは、続いて、土中、
水中などの環境中に広く普遍的に存在するセルロース分
解酵素の作用を受けると考えられるが、セルロース分解
酵素が微量しか存在しない場合に備え、該成形体には上
記微生物及び／又は酵素に加えて、セルロース分解微生
物及び／又はセルロース分解酵素を担持させてもよい。

【００１９】バチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｃｅｒｅｕｓ Ｄ）およびバチルス エスピー Ａ
（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）の２種の菌株は本発
明者らが見いだしたものであり、これらはそれぞれ受託
番号ＦＥＲＭ Ｐ−１４４３１号およびＦＥＲＭ Ｐ−
１４４３０号として、工業技術院生命工学工業技術研究
所に平成６年７月１５日に寄託されている。

【００２０】バチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｃｅｒｅｕｓ Ｄ）およびバチルス エスピー Ａ
（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）の菌学的性質を以下
に示す。

【００２１】（１）形態的性質バチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅ
ｕｓ Ｄ）およびバチルス エスピー Ａ（Ｂａｃｉｌ
ｌｕｓ ｓｐ． Ａ）の形態的性質を表１に示す。

【００２２】

【表１】

【００２３】（２）培養的性質バチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅ
ｕｓ Ｄ）およびバチルス エスピー Ａ（Ｂａｃｉｌ
ｌｕｓ ｓｐ． Ａ）の培養的性質を表２に示す。

【００２４】

【表２】

【００２５】なお、表１の形態的性質および表２中のコ
ロニーの色は表３の組成を有する肉汁寒天平板培養、ま
た、ゼラチンの液化の有無は表４の組成を有する肉汁ゼ
ラチン穿刺培養を行なった時のものである。

【００２６】

【表３】

【００２７】

【表４】

【００２８】（３）生理学的性質バチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅ
ｕｓ Ｄ）およびバチルス エスピー Ａ（Ｂａｃｉｌ
ｌｕｓ ｓｐ． Ａ）の寒天平板培地における生理学的
性質を表５に示す。

【００２９】

【表５】

【００３０】（４）その他の諸性質 また、バチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃ
ｅｒｅｕｓ Ｄ）およびバチルス エスピー Ａ（Ｂａ
ｃｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）は、肉汁寒天平板培地にお
いて表６に記載の諸性質を示す。

【００３１】

【表６】

【００３２】さらに、バチルス エスピー Ａ（Ｂａｃ
ｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）は、表７に記載の炭素源の利
用性を示す。

【００３３】

【表７】

【００３４】以上の菌学的性質により、本発明者らが見
いだしたバチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ
ｃｅｒｅｕｓ Ｄ）は、ＢＥＲＧＥＹ´Ｓ ＭＡＮＵＡ
ＬＯＦ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏ
ｇｙ等に基づき、バチルスセレウス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ
ｃｅｒｅｕｓ）に属する新種菌と同定された。

【００３５】同様に、バチルス エスピー Ａ（Ｂａｃ
ｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）は、バチルス（Ｂａｃｉｌｌ
ｕｓ）属に属する微生物であると考えられるが、近縁と
考えられるＢａｃｉｌｌｕｓ ｓｐｈａｅｒｉｃｕｓ、
Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｆｉｒｍｕｓ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ
ａｌｖｅｉ、Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｂｒｅｖｉｓ、Ｂａｃ
ｉｌｌｕｓ ｌａｔｅｒｏｓｐｏｒｕｓ、Ｂａｃｉｌｌ
ｕｓ ｃｉｒｃｕｌａｎｓとは幾つかの菌学的性質が異
なるので、該微生物は、バチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）
属のうち第II群のサブグループに属する新種菌と同定さ
れた。

【００３６】また、本発明で使用するスフィンゴモナス
パウシモビリス（Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｐａｕ
ｃｉｍｏｂｉｌｉｓ）は、バチルス セレウス Ｄ（Ｂ
ａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅｕｓ Ｄ）やバチルス エス
ピー Ａ（Ｂａｃｉｌｌｕｓｓｐ． Ａ）と同様、セル
ロースアセテートの分解能を有するものであり、ＩＦＯ
１３９３４〜ＩＦＯ１３９３６などの公知の市販品が例
示される。

【００３７】上記バチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌ
ｌｕｓ ｃｅｒｅｕｓ Ｄ）、バチルス エスピー Ａ
（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）およびスフィンゴモ
ナスパウシモビリス（Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｐａ
ｕｃｉｍｏｂｉｌｉｓ）はいずれも、セルロースアセテ
ートを脱アセチル化する性質を有している。

【００３８】即ち、バチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉ
ｌｌｕｓ ｃｅｒｅｕｓ Ｄ）、バチルス エスピー
Ａ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）およびスフィンゴ
モナス パウシモビリス（Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ
ｐａｕｃｉｍｏｂｉｌｉｓ）のＩＦＯ１３９３４〜ＩＦ
Ｏ１３９３６を用いて下記の試験を行なった結果、いず
れの菌株を用いた場合もメンブランフィルターは青色に
染まった。

【００３９】つまり、未処理のメンブランフィルター及
び植菌を行わないで培養して得られたメンブランフィル
ターは、上記の染料では全く染色されないことから、上
記の菌でセルロースアセテートを処理した場合には、セ
ルロースアセテートが脱アセチル化されて−ＯＨ基が生
成し、−ＯＨ基に反応する反応染料により青色に染色さ
れたものと考えられる。

【００４０】（脱アセチル化の確認試験）セルロースア
セテート製メンブランフィルター（アドバンテック東洋
製、Ｎｏ．Ｃ０８０Ａ０４７Ａ）一枚を含む、表８に
示す培地に植菌し、２８℃で１４日間振盪培養を行っ
た。培養終了後、メンブランフィルターを取り出し蒸留
水で良く洗浄した。このメンブランフィルターを、−Ｏ
Ｈ基に反応する反応染料Ｍｉｋａｃｉｏｎ Ｂｌｕｅ
２Ｒ（三菱化成工業 製）を用いて以下に示す方法で染
色した。 染料７５ｍｇを１００ｍｌ蒸留水に溶解し、この溶液
に試料のメンブランフィルターを加える。 の溶液に１５％Ｎａ₂ ＳＯ₄ 溶液２５ｍｌを加え、
２５℃で３０分振盪する。 の溶液に０．２％Ｎａ₂ ＣＯ₃ 溶液２５ｍｌを加
え、２５℃で６０分振盪する。終了後、試料を取り出
し、５分水洗、５分湯洗、５分水洗を繰り返し、風乾す
る。

【００４１】上記微生物のうち、バチルス セレウス
Ｄ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅｕｓ Ｄ）およびバチ
ルス エスピー Ａ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）
は、各種土壌から採取した菌を、セルロースアセテート
粉末およびセルロース粉末を炭素源として含む培地で培
養し、数回の植えつぎを繰り返して、炭素源がセルロー
スアセテート粉末のみの培地で生育可能な菌のみを抽出
した後、表８に示す培地で振盪培養して単離することに
より得られる。

【００４２】

【表８】

【００４３】なお、表８中の無機塩溶液は、表９の組成
を有するものである。

【００４４】

【表９】

【００４５】バチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｃｅｒｅｕｓ Ｄ）、バチルスエスピー Ａ（Ｂａ
ｃｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）、スフィンゴモナス パウ
シモビリス（Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｐａｕｃｉｍ
ｏｂｉｌｉｓ）を培養するための培地成分は、表８の組
成を有するものが好ましく例示されるが、例えば、炭素
源として澱粉、デキストリン、セルロース、グルコー
ス、サッカロース等の単糖〜少糖類、セロビオースオク
タアセテート、マルトース、フラクトース、シュークロ
ース、酢酸や酢酸塩などの有機酸および／またはその塩
などを、また窒素源として酵母エキス、カゼイン、大豆
タンパクや各種タンパク加水分解物などを用いても構わ
ない。

【００４６】また、温度、ｐＨなどの培養条件は、該微
生物が生育できる条件を適宜選択すれば良い。

【００４７】また、本発明で使用されるセルロースアセ
テート脱アセチル化酵素は、上記セルロースアセテート
の脱アセチル化能を有する微生物を培地に培養すること
により産生される。その際の培地成分は表８の組成を有
するものの他、上記の炭素源や窒素源を使用したものが
好ましく例示される。

【００４８】上記の方法で得られたセルロースアセテー
トの脱アセチル化能を有する微生物及び／又はセルロー
スアセテート脱アセチル化酵素は、各種方法でセルロー
スアセテートに担持させることが必要である。

【００４９】担持方法としては、得られた成形体が自然
環境中に廃棄された場合に、担持されたセルロースアセ
テートの脱アセチル化能を有する微生物及び／又はセル
ロースアセテート脱アセチル化酵素が該成形体を効率よ
く分解できるような方法であれば良く、例えば以下のよ
うな方法が挙げられる。

【００５０】セルロースアセテートの脱アセチル化能
を有する微生物及び／又は該微生物から産生されたセル
ロースアセテート脱アセチル化酵素の溶液をそのまま或
いは濃縮し、成形体に担持させる。

【００５１】担持方法としては公知の方法、例えばパッ
ド法、スプレー法、コーテイング法、ハケヌリなどが挙
げられる。この際、セルロースアセテート脱アセチル化
微生物及び／又はセルロースアセテート脱アセチル化酵
素の接着を良好に行う為の接着剤を添加することが好ま
しい。

【００５２】接着剤としては、例えば澱粉系の糊剤、ポ
リビニルアルコール系の糊剤、アクリル酸系の糊剤、ア
ルギン酸、カラゲナン、ゼラチン、カルボキシメチルセ
ルロース等のセルロース誘導体、酢酸ビニル樹脂、ウレ
タン樹脂など、公知の剤が挙げられる。

【００５３】成形体に微生物捕捉能をもつ剤（例え
ば、いわゆるピリジニウム型樹脂等）を付着させ、これ
に微生物を担持させる。

【００５４】セルロースアセテートの脱アセチル化能
を有する微生物及び／又はセルロースアセテート脱アセ
チル化酵素を乾燥粉末及び／又は水分を含む固形物状に
まで濃縮し、これをそのまま或いは接着剤を用い成形体
に担持させる。

【００５５】接着剤としては、例えば上記の接着剤の他
に、セルロースアセテートを有機溶剤（例えばアセト
ン）に溶解したドープ、ポリカプロラクトンを有機溶剤
（例えばテトラヒドロフラン）に溶解したドープなど、
各種接着剤を有機溶剤に溶解及び／又は懸濁したものを
使用することが出来る。

【００５６】セルロースアセテートの脱アセチル化能
を有する微生物及び／又はセルロースアセテート脱アセ
チル化酵素の粉末を成形体に付着させ、その上に上記ド
ープをコーティングする。

【００５７】粉末状のセルロースアセテートの脱アセ
チル化能を有する微生物及び／又はセルロースアセテー
ト脱アセチル化酵素を糊剤などで固め、或いは袋体に封
入し、或いはカプセル化し、これを成形体に埋め込むか
又は付着させる。

【００５８】セルロースアセテートの繊維やフィルム
をアセトン等に溶解したドープより形成する際、ドープ
にセルロースアセテートの脱アセチル化能を有する微生
物及び／又はセルロースアセテート脱アセチル化酵素を
混入する。

【００５９】ここで、成形体とは、セルロースアセテー
トからなる布帛、フィルム、及び、ボトル、カップ等の
各種成形品を意味する。成形体は、その用途、目的にあ
った使用時の性能を得るために各種添加剤を含んでいて
もよい。又、使用後、廃棄時の生分解性の改良を目的と
して他の生分解素材や、例えば界面活性剤、触媒等の各
種添加剤を含んでいてもよい。

【００６０】

【作用】本発明は、新規なセルロースアセテートの脱ア
セチル化能を有する微生物及び／又は該微生物が産生す
るセルロースアセテート脱アセチル化酵素を見いだし、
これがセルロースアセテートを脱アセチル化することを
利用したものであり、セルロースアセテートからなる成
形体に上記微生物及び／又は脱アセチル化酵素を担持さ
せることにより、適度に促進された生分解性を有するセ
ルロースアセテート成形体を得ることができる。

【００６１】上記微生物及び／又は酵素の作用により、
セルロースアセテートが分解する機構については明確で
はないが、先ずセルロースアセテートの脱アセチル化反
応が起こり、続いて脱アセチル化を受けたセルロースア
セテートが環境中に存在するセルロース分解酵素の作用
を受け、セルロースアセテート分子の主鎖の切断が起こ
っていくものと推定される。

【００６２】

【実施例】以下に実施例を挙げて本発明を説明するが、
本発明は、これらの実施例により何ら制限されるもので
はない。

【００６３】［バチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌ
ｕｓ ｃｅｒｅｕｓ Ｄ）およびバチルス エスピー
Ａ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）の単離］大阪府茨
木市耳原の帝人株式会社大阪研究センター内および愛媛
県松山市北吉田町の帝人株式会社松山事業所内の土壌か
ら採取した計２５種の菌を、表１０および表１１に示す
培地を用いて５回の植えつぎを行ない、炭素源がセルロ
ースアセテートのみで生育可能な菌を抽出した。

【００６４】次いで、表１２に示す培地を用いてさらに
２回の植えつぎを行ない、６３日間の培養を行なった。
なお、表１０、１１および１２中の無機塩溶液は表９の
組成を有するものである。

【００６５】さらに、表８に示す培地を用いて２１日間
の振盪培養を行ない、セルロースアセテートの脱アセチ
ル化能を有するバチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌ
ｕｓｃｅｒｅｕｓ Ｄ）およびバチルス エスピー Ａ
（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ． Ａ）の２種の菌株を単離
した。

【００６６】

【表１０】

【００６７】

【表１１】

【００６８】

【表１２】

【００６９】［実施例１］３種の普通栄養培地に、それ
ぞれバチルス セレウス Ｄ（Ｂａｃｉｌｌｕｓｃｅｒ
ｅｕｓ Ｄ）、バチルスエスピー Ａ（Ｂａｃｉｌｌｕ
ｓ ｓｐ． Ａ）、スフィンゴモナス パウシモビリス
（Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａｓ ｐａｕｃｉｍｏｂｉｌｉ
ｓ）ＩＦＯ１３９３４を接種し、２８℃で２日間培養し
た。得られた培養液にトウモロコシ澱粉を５％となるよ
うに、糊化したトウモロコシ澱粉溶液を加えた。

【００７０】一方、酢化度５４．７％のセルロースアセ
テート繊維を用い、公知の方法によりアセテート不織布
を製造した。不織布を構成するセルロースアセテート繊
維の単糸繊度は５．０デニールで、不織布の目付量は２
００ｇ／ｍ2 であった。

【００７１】この不織布を前記３種の培養液中に浸漬
後、ピックアップ量が１００％になるように絞り乾燥し
た。

【００７２】得られた不織布を土中に埋没した結果、い
ずれも２か月後には布強力はほぼ０となり、生分解が進
んだ。

【００７３】一方、培養液での処理を行わなかった不織
布について同様に試験を行った結果、２か月後には布強
力は半分程度保持されていた。

【００７４】同様の試験を大阪府茨木市耳原の帝人株式
会社大阪研究センター内で採取した、温度３０℃、十分
な湿度下に保持した土を用いて行った。

【００７５】上記の土中に不織布を２カ月間埋没した結
果、培養液での処理を行わなかった不織布の強力低下は
見られなかった。一方、培養液での処理を行った不織布
の強力はいずれも半分以下となり、生分解が進んだ。

【００７６】［実施例２］実施例１と同様に培養を行
い、アルギン酸ナトリウムを濃度２％となるよう培養液
に加えた。

【００７７】上記培養液に実施例１と同様に不織布を浸
漬後、ピックアップ量が１００％になるように絞り、こ
れを更に０．５ｍｏｌ／ｌの塩化カルシウム水溶液に１
０分間浸漬した。土中での埋没結果はいずれも実施例１
と同様であった。

【００７８】［実施例３、比較例１、２］実施例１と同
様に培養を行なって得られる培養液を遠心分離（１００
００ｒｐｍ、１０分）し、上澄画分を得た。この上澄画
分にセルロースアセテート製メンブランフィルター（ア
ドバンテック東洋製、Ｎｏ．Ｃ０８０Ａ０４７Ａ）一枚
および、セルロース分解酵素（和光純薬製、Ｔｒｉｃｈ
ｏｄｅｒｍａ ｖｉｒｉｄｅ由来、以下セルラーゼと称
する）を１ｍｇ／ｍｌとなるように加え、３０℃で１５
日間振盪処理を行った。

【００７９】比較対照として、セルラーゼを加えなかっ
たもの（比較例１）、菌を植えなかった培養液（比較例
２）についてもメンブランフィルターを加え、同様の処
理を行った。

【００８０】この結果、セルラーゼを加えた場合（実施
例３）は、メンブランフィルターの崩壊がみられ、この
メンブランフィルターは前記の反応染料により染色可能
であった。一方、セルラーゼを加えなかった場合（比較
例１）、メンブランフィルターの崩壊は見られなかった
が、反応染料による染色は可能であった。

【００８１】更に、菌を植えなかった培養液を用いた場
合（比較例２）、メンブランフィルターの崩壊も反応染
料による染色も見られなかった。

【００８２】このように、環境中にセルラーゼが存在し
ない場合は、セルロースアセテートの脱アセチル化能を
有する微生物及び／又は該微生物が産生する脱アセチル
化酵素に加えてセルラーゼを担持させることにより、セ
ルロースアセテート成形体の生分解性を調節する事がで
きる。

【００８３】

【発明の効果】本発明のセルロースアセテート成形体
は、セルロースアセテートの脱アセチル化能を有する微
生物及び／又は該微生物が産生するセルロースアセテー
ト脱アセチル化酵素が担持されているので、適度に促進
された生分解性を示し、所期の使用目的を達成した後
は、分解して環境を汚染することがないので、農業用資
材、水産用資材、包装用資材、建築用資材あるいは土木
用資材などに広く用いることが出来る。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 (Ｃ１２Ｎ 1/20 Ｃ１２Ｒ 1:07） (Ｃ１２Ｎ 1/20 Ｃ１２Ｒ 1:01）

Claims (7)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 セルロースアセテートの脱アセチル化能
   を有する微生物バチルス セレウス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ
   ｃｅｒｅｕｓ）。
2. 【請求項２】 工業技術院生命工学研究所受託番号ＦＥ
   ＲＭ Ｐ−１４４３１を有する請求項１記載の微生物。
3. 【請求項３】 セルロースアセテートの脱アセチル化能
   を有する微生物バチルス エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ
   ｓｐ．）。
4. 【請求項４】 工業技術院生命工学研究所受託番号ＦＥ
   ＲＭ Ｐ−１４４３０を有する請求項３記載の微生物。
5. 【請求項５】 酢化度が１０〜５７％のセルロースアセ
   テートからなる成形体であって、該成形体は、バチルス
   セレウス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｅｒｅｕｓ）、バチ
   ルス エスピー（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｐ．）及びスフ
   ィンゴモナスパウシモビリス（Ｓｐｈｉｎｇｏｍｏｎａ
   ｓ ｐａｕｃｉｍｏｂｉｌｉｓ）からなる群から選ばれ
   た少なくとも１種の、セルロースアセテートの脱アセチ
   ル化能を有する微生物及び／又は該微生物が産生するセ
   ルロースアセテート脱アセチル化酵素を担持した成形体
   であることを特徴とするセルロースアセテート成形体。
6. 【請求項６】 微生物が工業技術院生命工学研究所受託
   番号ＦＥＲＭ−１４４３１を有する微生物である請求項
   ５記載のセルロースアセテート成形体。
7. 【請求項７】 微生物が工業技術院生命工学研究所受託
   番号ＦＥＲＭ−１４４３０を有する微生物である請求項
   ５記載のセルロースアセテート成形体。