JPH08310910A - 植物の生長促進方法及び植物生長促進剤 - Google Patents
植物の生長促進方法及び植物生長促進剤Info
- Publication number
- JPH08310910A JPH08310910A JP7142424A JP14242495A JPH08310910A JP H08310910 A JPH08310910 A JP H08310910A JP 7142424 A JP7142424 A JP 7142424A JP 14242495 A JP14242495 A JP 14242495A JP H08310910 A JPH08310910 A JP H08310910A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- plant
- genus
- growth
- mycorrhizal
- promoting
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A40/00—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
- Y02A40/10—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in agriculture
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【目的】 植物を生長させるにあたり、ＶＡ菌根菌の植
物への感染率を向上し、植物の生長を効率的に促進する
方法及び植物の生長促進効果を有する植物生長促進剤を
提供する。 【構成】 植物を栽培するに際し、植物及び／又は栽培
土壌に光合成細菌好ましくはロドシュードモナス属、ロ
ドスピリラム属の属する光合成細菌及びＶＡ菌根菌好ま
しくはグロムス属、ギガスポラ属に属するＶＡ菌根菌等
を施用することで、栽培植物の生長を促進する。また、
植物の生長促進剤に、光合成細菌好ましくはロドシュー
ドモナス属、ロドスピリラム属の属する光合成細菌及び
ＶＡ菌根菌好ましくはグロムス属、ギガスポラ属に属す
るＶＡ菌根菌を含有する。
物への感染率を向上し、植物の生長を効率的に促進する
方法及び植物の生長促進効果を有する植物生長促進剤を
提供する。 【構成】 植物を栽培するに際し、植物及び／又は栽培
土壌に光合成細菌好ましくはロドシュードモナス属、ロ
ドスピリラム属の属する光合成細菌及びＶＡ菌根菌好ま
しくはグロムス属、ギガスポラ属に属するＶＡ菌根菌等
を施用することで、栽培植物の生長を促進する。また、
植物の生長促進剤に、光合成細菌好ましくはロドシュー
ドモナス属、ロドスピリラム属の属する光合成細菌及び
ＶＡ菌根菌好ましくはグロムス属、ギガスポラ属に属す
るＶＡ菌根菌を含有する。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、ＶＡ菌根菌の植物への
感染方法、植物の生長促進方法及び生長促進剤に関し、
さらに詳しくは光合成細菌とＶＡ菌根菌を用いてＶＡ菌
根菌の栽培植物への感染を促進する方法、さらに栽培植
物の生長を促進する方法及び光合成細菌とＶＡ菌根菌を
含有する生長促進効果に優れた生長促進剤に関する。
感染方法、植物の生長促進方法及び生長促進剤に関し、
さらに詳しくは光合成細菌とＶＡ菌根菌を用いてＶＡ菌
根菌の栽培植物への感染を促進する方法、さらに栽培植
物の生長を促進する方法及び光合成細菌とＶＡ菌根菌を
含有する生長促進効果に優れた生長促進剤に関する。
【０００２】
【従来の技術】ＶＡ菌根菌（Vesicular Arbuscular Myc
orrhizae）は、植物と共生し、リン酸やミネラルの吸収
を促し、これに感染した植物の生育を促進する働き、ま
た、植物と共生することにより、植物の病気、乾燥性と
いったストレスに対する耐性（抵抗力）を向上させる働
きがあることが知られている（鈴木達彦、農業および園
芸、第６２巻、第８号、１９８７年）。ＶＡ菌根菌を用
いて植物の生長を促進させるためには、植物に如何にＶ
Ａ菌根菌を感染させ、感染したＶＡ菌の植物内での生長
を促進するかである。
orrhizae）は、植物と共生し、リン酸やミネラルの吸収
を促し、これに感染した植物の生育を促進する働き、ま
た、植物と共生することにより、植物の病気、乾燥性と
いったストレスに対する耐性（抵抗力）を向上させる働
きがあることが知られている（鈴木達彦、農業および園
芸、第６２巻、第８号、１９８７年）。ＶＡ菌根菌を用
いて植物の生長を促進させるためには、植物に如何にＶ
Ａ菌根菌を感染させ、感染したＶＡ菌の植物内での生長
を促進するかである。
【０００３】ＶＡ菌根菌の植物への感染を促進する方法
としては、オキザロ酢酸、酢酸又はピルビン酸等の有機
酸を感染時に処理する方法（トランスサクションズ・オ
ブ・ザ・ブリテッシュ・マイコロジカル・ソサイエテ
ィ、４２巻、２７３ページ、１９５９年）、シスチン、
グリシン又はリジン等のアミノ酸を感染時に処理する方
法（ソイル・バイオロジー・アンド・バイオケミストリ
ー、１５巻、５５ページ、１９８３年）またはイソフラ
ボノイド類による方法（特表平４−５０４２０９）等が
知られている。しかし、有機酸やアミノ酸等は土壌中に
おいてＶＡ菌根菌以外の土壌微生物により容易に分解又
は吸収される。そのためにＶＡ菌根菌の感染を促進する
には不十分である。さらに、イソフラボノイド類は高価
であり大量に使用することは実質上制限される。
としては、オキザロ酢酸、酢酸又はピルビン酸等の有機
酸を感染時に処理する方法（トランスサクションズ・オ
ブ・ザ・ブリテッシュ・マイコロジカル・ソサイエテ
ィ、４２巻、２７３ページ、１９５９年）、シスチン、
グリシン又はリジン等のアミノ酸を感染時に処理する方
法（ソイル・バイオロジー・アンド・バイオケミストリ
ー、１５巻、５５ページ、１９８３年）またはイソフラ
ボノイド類による方法（特表平４−５０４２０９）等が
知られている。しかし、有機酸やアミノ酸等は土壌中に
おいてＶＡ菌根菌以外の土壌微生物により容易に分解又
は吸収される。そのためにＶＡ菌根菌の感染を促進する
には不十分である。さらに、イソフラボノイド類は高価
であり大量に使用することは実質上制限される。
【０００４】有機酸等の他に、エチレンがＶＡ菌根菌の
感染を促進するということも知られている（石井孝昭
ら、日本園芸学会平成６年度春季大会講演要旨集）。し
かし、エチレンはガス状物質であり取り扱いが困難であ
る。
感染を促進するということも知られている（石井孝昭
ら、日本園芸学会平成６年度春季大会講演要旨集）。し
かし、エチレンはガス状物質であり取り扱いが困難であ
る。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記観点か
らなされたものであり、ＶＡ菌根菌の植物への感染率を
向上し、さらに感染したＶＡ菌根菌の植物内での菌糸の
伸長を促進することにより、植物の生長促進を図る方法
及び植物の生長に対して優れた生長促進効果を有する植
物生長促進剤を提供することを課題とする。
らなされたものであり、ＶＡ菌根菌の植物への感染率を
向上し、さらに感染したＶＡ菌根菌の植物内での菌糸の
伸長を促進することにより、植物の生長促進を図る方法
及び植物の生長に対して優れた生長促進効果を有する植
物生長促進剤を提供することを課題とする。
【０００６】
【課題を解決するための手段】本発明者は、上記課題を
解決するために、鋭意研究を重ねた結果、植物をＶＡ菌
根菌及び光合成細菌の存在下で栽培させることで、ＶＡ
菌根菌の植物への感染率を上げ、さらに感染したＶＡ菌
根菌の植物内での伸長を効果的に維持促進することによ
り、ＶＡ菌根菌単独の場合よりも効率よく植物の生長を
促進することを見出し本発明を完成するに至った。
解決するために、鋭意研究を重ねた結果、植物をＶＡ菌
根菌及び光合成細菌の存在下で栽培させることで、ＶＡ
菌根菌の植物への感染率を上げ、さらに感染したＶＡ菌
根菌の植物内での伸長を効果的に維持促進することによ
り、ＶＡ菌根菌単独の場合よりも効率よく植物の生長を
促進することを見出し本発明を完成するに至った。
【０００７】すなわち本発明は、植物を栽培するに際
し、前記植物及び／又は栽培土壌に光合成細菌及びＶＡ
菌根菌を施用し、ＶＡ菌根菌の植物への感染率を向上さ
せる方法及び植物の生長を促進する方法並びにＶＡ菌根
菌及び光合成細菌に属する細菌を含有するＶＡ菌根菌の
植物生長促進剤である。
し、前記植物及び／又は栽培土壌に光合成細菌及びＶＡ
菌根菌を施用し、ＶＡ菌根菌の植物への感染率を向上さ
せる方法及び植物の生長を促進する方法並びにＶＡ菌根
菌及び光合成細菌に属する細菌を含有するＶＡ菌根菌の
植物生長促進剤である。
【０００８】以下、本発明を詳細に説明する。本発明の
方法が適用される植物としては、ＶＡ菌根菌が感染する
植物であればいずれでもよいが、キュウリ、スイカなど
のウリ科植物、ダイズ、クローバーなどの豆科植物、ト
ウモロコシ、メヒシバ、ソルガム、イネなどのイネ科植
物、ナス、トマトなどのナス科植物、キクなどのキク科
植物、ベゴニアなどのシュウカイドウ科植物等が好適で
ある。これらの植物は、実生苗、播種して育苗後、移植
して栽培したり、栄養繁殖したり、接ぎ木、挿し芽、挿
し木、球根等により増殖、栽培したりして用いられる。
方法が適用される植物としては、ＶＡ菌根菌が感染する
植物であればいずれでもよいが、キュウリ、スイカなど
のウリ科植物、ダイズ、クローバーなどの豆科植物、ト
ウモロコシ、メヒシバ、ソルガム、イネなどのイネ科植
物、ナス、トマトなどのナス科植物、キクなどのキク科
植物、ベゴニアなどのシュウカイドウ科植物等が好適で
ある。これらの植物は、実生苗、播種して育苗後、移植
して栽培したり、栄養繁殖したり、接ぎ木、挿し芽、挿
し木、球根等により増殖、栽培したりして用いられる。
【０００９】ＶＡ菌根菌は土壌中に存在する接合類の一
種であり、その菌糸が種々の植物の根について菌根を形
成するものである。本発明のＶＡ菌根菌は、特に限定さ
れず、例えば、グロムス（Glomus）属、ギガスポラ（Gi
gaspora）属、スカテロスポラ（Scutellospora）属、ア
カウロスポラ（Acaulospora）属、エントロフォスポラ
（Entrophospora）属、スクレロシスティス（Sclerocys
tis）属に属するＶＡ菌根菌等を挙げることができる
が、本発明においては、これらのうちでもグロムス属、
ギガスポラ属に属するＶＡ菌根菌が好ましく用いられ
る。
種であり、その菌糸が種々の植物の根について菌根を形
成するものである。本発明のＶＡ菌根菌は、特に限定さ
れず、例えば、グロムス（Glomus）属、ギガスポラ（Gi
gaspora）属、スカテロスポラ（Scutellospora）属、ア
カウロスポラ（Acaulospora）属、エントロフォスポラ
（Entrophospora）属、スクレロシスティス（Sclerocys
tis）属に属するＶＡ菌根菌等を挙げることができる
が、本発明においては、これらのうちでもグロムス属、
ギガスポラ属に属するＶＡ菌根菌が好ましく用いられ
る。
【００１０】上記グロムス属に属するＶＡ菌根菌として
は、グロムス モセアエ（Glomus mosseae）、グロムス
ファスキュレータム（Glomus fasciculatum）、グロ
ムスエツニケータム（Glomus etunicatum）、グロムス
ベルシフォルメ（Glomusversiforme）、グロムス イ
ントララデシス（Glomus intraradices）、グロムスカ
レドニウム（Glomus caledonium）、グロムス マニフ
ォルティス（Gloms manifortis）、グロムス ｓｐ．
（Glomus sp.）Ｒ１０（ＡＴＣＣ７４３１１）等を挙げ
ることができる。本発明においては、これらのうちでも
グロムス ｓｐ．Ｒ１０が好ましく用いられる。
は、グロムス モセアエ（Glomus mosseae）、グロムス
ファスキュレータム（Glomus fasciculatum）、グロ
ムスエツニケータム（Glomus etunicatum）、グロムス
ベルシフォルメ（Glomusversiforme）、グロムス イ
ントララデシス（Glomus intraradices）、グロムスカ
レドニウム（Glomus caledonium）、グロムス マニフ
ォルティス（Gloms manifortis）、グロムス ｓｐ．
（Glomus sp.）Ｒ１０（ＡＴＣＣ７４３１１）等を挙げ
ることができる。本発明においては、これらのうちでも
グロムス ｓｐ．Ｒ１０が好ましく用いられる。
【００１１】また、ギガスポラ属に属するＶＡ菌根菌と
しては、ギガスポラ マルガリータ（Gigaspora margar
ita）、ギガスポラ アルビーダ（Gigaspora albid
a）、ギガスポラ ラミスポロフォラ（Gigaspora ramis
porophora）、ギガスポラ ギガンティア（Gigaspora g
igantia）等を挙げることができる。本発明において
は、これらのうちでもギガスポラ ラミスポロフォラが
好ましく用いられる。
しては、ギガスポラ マルガリータ（Gigaspora margar
ita）、ギガスポラ アルビーダ（Gigaspora albid
a）、ギガスポラ ラミスポロフォラ（Gigaspora ramis
porophora）、ギガスポラ ギガンティア（Gigaspora g
igantia）等を挙げることができる。本発明において
は、これらのうちでもギガスポラ ラミスポロフォラが
好ましく用いられる。
【００１２】上記ＶＡ菌根菌を本発明に用いるに際して
は、ＶＡ菌根菌の生息する土壌等から分離したＶＡ菌根
菌を胞子としてそのまま用いてもよいし、あるいはＶＡ
菌根菌接種物として製剤化されたものを用いてもよい。
は、ＶＡ菌根菌の生息する土壌等から分離したＶＡ菌根
菌を胞子としてそのまま用いてもよいし、あるいはＶＡ
菌根菌接種物として製剤化されたものを用いてもよい。
【００１３】上記ＶＡ菌根菌胞子を集める方法として
は、自然界から篩を用いて集める方法（鈴木達彦、ＶＡ
菌根に関する諸問題５、農業および園芸、第６２巻、第
３号、２８ページ、１９８７年）や遠心分離による方法
（特開昭６３−３０９１７８公報）が知られている。ま
た、栄養薄膜培養法（特開昭５５−１１８３９０号公
報）や器官培養した根を使用する方法（特公昭６２−４
９０３７号公報）等により無菌的にＶＡ菌根菌を増殖さ
せ、胞子を形成させる方法もあるが、収集方法に特に制
限はない。
は、自然界から篩を用いて集める方法（鈴木達彦、ＶＡ
菌根に関する諸問題５、農業および園芸、第６２巻、第
３号、２８ページ、１９８７年）や遠心分離による方法
（特開昭６３−３０９１７８公報）が知られている。ま
た、栄養薄膜培養法（特開昭５５−１１８３９０号公
報）や器官培養した根を使用する方法（特公昭６２−４
９０３７号公報）等により無菌的にＶＡ菌根菌を増殖さ
せ、胞子を形成させる方法もあるが、収集方法に特に制
限はない。
【００１４】一方、ＶＡ菌根菌接種物として製剤化され
たものを用いる場合には、その起源は特に制限はなく、
市販品を用いることもできるが、次のようにして製造さ
れたＶＡ菌根菌接種物を用いるのが好ましい。
たものを用いる場合には、その起源は特に制限はなく、
市販品を用いることもできるが、次のようにして製造さ
れたＶＡ菌根菌接種物を用いるのが好ましい。
【００１５】例えば、土壌から分離したＶＡ菌根菌を種
菌として用い、これをＶＡ菌根菌培養のための宿主植物
に感染させ、ＶＡ菌根菌を増殖させ、ＶＡ菌根菌接種物
を得、これを用いることができる。
菌として用い、これをＶＡ菌根菌培養のための宿主植物
に感染させ、ＶＡ菌根菌を増殖させ、ＶＡ菌根菌接種物
を得、これを用いることができる。
【００１６】ＶＡ菌根菌を植物に感染させる方法は特に
限定はなく、播種、育苗苗、挿し芽、挿し木、接ぎ木、
球根、植物組織など、様々な態様で行うことができる。
ＶＡ菌根菌の植物への感染方法について述べると、施用
方法としては、用土と混合したり、種子や芽の下層に層
状に施用したり、あるいは定植時の植え穴の中に施用し
たりすることが好ましい。用土としては、土壌や人工培
土などを用いればよい。ＶＡ菌根菌の植物への感染方法
は、既知の方法により行えばよく、例えば、温度は１０
〜４０℃、好ましくは１５〜３０℃、土壌のｐＨは３〜
９．５、好ましくは４〜８の条件で行われる。
限定はなく、播種、育苗苗、挿し芽、挿し木、接ぎ木、
球根、植物組織など、様々な態様で行うことができる。
ＶＡ菌根菌の植物への感染方法について述べると、施用
方法としては、用土と混合したり、種子や芽の下層に層
状に施用したり、あるいは定植時の植え穴の中に施用し
たりすることが好ましい。用土としては、土壌や人工培
土などを用いればよい。ＶＡ菌根菌の植物への感染方法
は、既知の方法により行えばよく、例えば、温度は１０
〜４０℃、好ましくは１５〜３０℃、土壌のｐＨは３〜
９．５、好ましくは４〜８の条件で行われる。
【００１７】なお、ＶＡ菌根菌を感染させる際に用いら
れる栽培培地（用土）としては、無機質であり、かつ水
を含むことにより崩壊しにくいものであれば特に制限は
ないが、雑菌の混入防止という観点から、滅菌処理（焼
成処理も含む）したものが好ましい。
れる栽培培地（用土）としては、無機質であり、かつ水
を含むことにより崩壊しにくいものであれば特に制限は
ないが、雑菌の混入防止という観点から、滅菌処理（焼
成処理も含む）したものが好ましい。
【００１８】本発明においては、この様にしてＶＡ菌根
菌に感染した植物を、担体を含む培地で栽培して、ＶＡ
菌根菌を増殖させ、得られたＶＡ菌根菌接種物を用いる
ことが好ましい。
菌に感染した植物を、担体を含む培地で栽培して、ＶＡ
菌根菌を増殖させ、得られたＶＡ菌根菌接種物を用いる
ことが好ましい。
【００１９】ここで、焼成赤玉土、焼成アタパルジャイ
ト、焼成モンモリロナイト、焼成珪藻土としては、それ
ぞれ赤玉土、アタパルジャイト、モンモリロナイト、珪
藻土を、焼成温度２００〜１３００℃、好ましくは３０
０〜１０００℃にて焼成処理したものが用いられる。ま
た、必要に応じて、アルミナ等のバインダーを使用して
の造粒も可能である。これらの粒径は通常、１０ｍｍ以
下、好ましくは５ｍｍ以下である。
ト、焼成モンモリロナイト、焼成珪藻土としては、それ
ぞれ赤玉土、アタパルジャイト、モンモリロナイト、珪
藻土を、焼成温度２００〜１３００℃、好ましくは３０
０〜１０００℃にて焼成処理したものが用いられる。ま
た、必要に応じて、アルミナ等のバインダーを使用して
の造粒も可能である。これらの粒径は通常、１０ｍｍ以
下、好ましくは５ｍｍ以下である。
【００２０】なお、宿主植物の栽培は通常の条件で行え
ばよい。宿主植物の生育に伴い、ＶＡ菌根菌も増殖す
る。通常、栽培温度は５〜４０℃であり、必要に応じて
灌水や液肥等を施用すればよい。
ばよい。宿主植物の生育に伴い、ＶＡ菌根菌も増殖す
る。通常、栽培温度は５〜４０℃であり、必要に応じて
灌水や液肥等を施用すればよい。
【００２１】通常、栽培し始めてから、２〜５ヶ月程度
経過して、宿主植物が十分に生育したところで、水など
の供給を絶ち、暫く放置すると、ＶＡ菌根菌は胞子を形
成する。そこで形成したＶＡ菌根菌の菌糸や胞子の付着
した培地を常法により回収し、ＶＡ菌根菌接種物とす
る。
経過して、宿主植物が十分に生育したところで、水など
の供給を絶ち、暫く放置すると、ＶＡ菌根菌は胞子を形
成する。そこで形成したＶＡ菌根菌の菌糸や胞子の付着
した培地を常法により回収し、ＶＡ菌根菌接種物とす
る。
【００２２】尚、本発明においては、この様にして得ら
れたＶＡ菌根菌の菌糸や胞子の付着した培地について、
目開き１．０ｍｍの篩を通過し、目開き０．０３５ｍｍ
の篩を通過しない画分、好ましくは、目開き０．８５ｍ
ｍの篩を通過し、目開き０．１ｍｍの篩を通過しない画
分に分級し、この画分をＶＡ菌根菌接種物とすることも
できる。
れたＶＡ菌根菌の菌糸や胞子の付着した培地について、
目開き１．０ｍｍの篩を通過し、目開き０．０３５ｍｍ
の篩を通過しない画分、好ましくは、目開き０．８５ｍ
ｍの篩を通過し、目開き０．１ｍｍの篩を通過しない画
分に分級し、この画分をＶＡ菌根菌接種物とすることも
できる。
【００２３】更に、このＶＡ菌根菌接種物は、担体を含
んだものが好ましい。ここで担体としては、ＶＡ菌根菌
の菌糸や胞子の付着した培地から得られる画分と同程度
の粒径のものとすることが好ましい。担体は、ＶＡ菌根
菌胞子の保存性を高め、生長促進効果を維持する役割の
他、増量剤としての役割をも有する。従って、担体とし
ては、粒径が２ｍｍ未満、特に、０．０９〜１．４ｍｍ
程度のものを用いることが好ましい。この様な担体とし
ては、赤玉土、アタパルジャイト、モンモリロナイト、
焼成赤玉土、焼成アタパルジャイト、焼成モンモリロナ
イト、焼成珪藻土、珪藻土、ゼオライト、軽石等が挙げ
られ、特に崩壊のしにくさや雑菌が少ないことなどの点
から、焼成アタパルジャイトあるいは焼成モンモリロナ
イト、さらにはこれらの混合物を主成分とするものが好
ましく、特に焼成アタパルジャイトを主成分とするもの
が好ましい。
んだものが好ましい。ここで担体としては、ＶＡ菌根菌
の菌糸や胞子の付着した培地から得られる画分と同程度
の粒径のものとすることが好ましい。担体は、ＶＡ菌根
菌胞子の保存性を高め、生長促進効果を維持する役割の
他、増量剤としての役割をも有する。従って、担体とし
ては、粒径が２ｍｍ未満、特に、０．０９〜１．４ｍｍ
程度のものを用いることが好ましい。この様な担体とし
ては、赤玉土、アタパルジャイト、モンモリロナイト、
焼成赤玉土、焼成アタパルジャイト、焼成モンモリロナ
イト、焼成珪藻土、珪藻土、ゼオライト、軽石等が挙げ
られ、特に崩壊のしにくさや雑菌が少ないことなどの点
から、焼成アタパルジャイトあるいは焼成モンモリロナ
イト、さらにはこれらの混合物を主成分とするものが好
ましく、特に焼成アタパルジャイトを主成分とするもの
が好ましい。
【００２４】更に、本発明において用いられるＶＡ菌根
菌接種物としては、水分含量が５〜３０重量％、特に１
０〜２５重量％としたものが好ましい。水分含量がこの
範囲外であると、活性が低下するため好ましくない。本
発明において用いられるＶＡ菌根菌接種物としては、Ｖ
Ａ菌根菌胞子を含む画分と、上述の担体との混合割合は
特に制限はないが、通常、担体１ｇ当たり、１〜５００
胞子、好ましくは５〜３００胞子である。本発明におい
て、植物を栽培するに際してＶＡ菌根菌の施用量は、特
に制限はないが、通常１植物体当たり５〜３００胞子で
ある。
菌接種物としては、水分含量が５〜３０重量％、特に１
０〜２５重量％としたものが好ましい。水分含量がこの
範囲外であると、活性が低下するため好ましくない。本
発明において用いられるＶＡ菌根菌接種物としては、Ｖ
Ａ菌根菌胞子を含む画分と、上述の担体との混合割合は
特に制限はないが、通常、担体１ｇ当たり、１〜５００
胞子、好ましくは５〜３００胞子である。本発明におい
て、植物を栽培するに際してＶＡ菌根菌の施用量は、特
に制限はないが、通常１植物体当たり５〜３００胞子で
ある。
【００２５】次に、本発明ではＶＡ菌根菌とともに光合
成細菌を施用する。光合成細菌は、光エネルギーを用い
て光無機栄養または光有機栄養によって生育する細菌を
意味し、紅色無硫黄細菌、紅色硫黄細菌、緑色硫黄細菌
の３群に大別されている。本発明で用いられる光合成細
菌は特に限定されないが、例えば、紅色無硫黄細菌に分
類されるロドシュードモナス属、ロドスピリラム属、ロ
ドマイクロビューム属、ロドシクラス属、ロドピラ属、
ロドバクター属等の細菌が挙げられる。具体的には、ロ
ドシュードモナス スフェロイデス（Rhodopseudomonas
spheroides)、ロドスピリラム ルブラム(Rhodospiril
lum rubrum) 、ロドマイクロビュームバニリー（Rhodom
icrobium vaniellii) 、ロドシクラス ゲラチノクス(R
hodocyclus genatinocus) 、ロドピラ グロビフォルミ
ス(Rhodopila globiformis) 等が好ましい。これらは、
１種を単独で用いてもよく、また２種以上を混合して用
いてもよい。
成細菌を施用する。光合成細菌は、光エネルギーを用い
て光無機栄養または光有機栄養によって生育する細菌を
意味し、紅色無硫黄細菌、紅色硫黄細菌、緑色硫黄細菌
の３群に大別されている。本発明で用いられる光合成細
菌は特に限定されないが、例えば、紅色無硫黄細菌に分
類されるロドシュードモナス属、ロドスピリラム属、ロ
ドマイクロビューム属、ロドシクラス属、ロドピラ属、
ロドバクター属等の細菌が挙げられる。具体的には、ロ
ドシュードモナス スフェロイデス（Rhodopseudomonas
spheroides)、ロドスピリラム ルブラム(Rhodospiril
lum rubrum) 、ロドマイクロビュームバニリー（Rhodom
icrobium vaniellii) 、ロドシクラス ゲラチノクス(R
hodocyclus genatinocus) 、ロドピラ グロビフォルミ
ス(Rhodopila globiformis) 等が好ましい。これらは、
１種を単独で用いてもよく、また２種以上を混合して用
いてもよい。
【００２６】更に、本発明においては、これらのうちで
もロドシュードモナス スフェロイデス、ロドスピリラ
ム ルブラムが好ましい。
もロドシュードモナス スフェロイデス、ロドスピリラ
ム ルブラムが好ましい。
【００２７】本発明に用いる光合成細菌の培養は、通常
用いられる光合成細菌の培地等の培養条件で行われる
が、温度は通常２０〜５０℃の範囲であり、培地のpHは
通常６〜９の範囲が好ましい。また、細菌の培養は好気
的条件または嫌気的条件のいずれでも行うことができ
る。培養終了後の培養液そのまま、集菌した菌体、必要
に応じてある程度乾燥させた菌体いずれも、本発明に用
いることができる。
用いられる光合成細菌の培地等の培養条件で行われる
が、温度は通常２０〜５０℃の範囲であり、培地のpHは
通常６〜９の範囲が好ましい。また、細菌の培養は好気
的条件または嫌気的条件のいずれでも行うことができ
る。培養終了後の培養液そのまま、集菌した菌体、必要
に応じてある程度乾燥させた菌体いずれも、本発明に用
いることができる。
【００２８】光合成細菌の施用方法は、特に限定されな
い。例えば、あらかじめＶＡ菌根菌製剤中に混合してい
る状態で用いることができ、植物の種子にコーティング
をしておいてもよい。また、光合成細菌を育苗土にあら
かじめ混合しておき、その後にＶＡ菌根菌を施用しても
よく、ＶＡ菌根菌を施用し、一定期間経過後に光合成細
菌を施用してもよい。さらに、灌水土壌条件下での植物
栽培、例えば、イネ、セリなどの灌水土壌における栽培
においても用いることができる。
い。例えば、あらかじめＶＡ菌根菌製剤中に混合してい
る状態で用いることができ、植物の種子にコーティング
をしておいてもよい。また、光合成細菌を育苗土にあら
かじめ混合しておき、その後にＶＡ菌根菌を施用しても
よく、ＶＡ菌根菌を施用し、一定期間経過後に光合成細
菌を施用してもよい。さらに、灌水土壌条件下での植物
栽培、例えば、イネ、セリなどの灌水土壌における栽培
においても用いることができる。
【００２９】また、ＶＡ菌根菌を植物に施用する際、ま
たは施用後に栽培土壌に表面散布または土壌灌注して、
用いてもよい。
たは施用後に栽培土壌に表面散布または土壌灌注して、
用いてもよい。
【００３０】上記の様にして植物栽培用の培土へ光合成
細菌を含有させて用いる場合、その施用量が、培土１ｇ
に対して光合成細菌として１．０×１０3 〜１．０×１
０10個となるように投入する。好ましくは１．０×１０
5 〜１．０×１０8 個である。
細菌を含有させて用いる場合、その施用量が、培土１ｇ
に対して光合成細菌として１．０×１０3 〜１．０×１
０10個となるように投入する。好ましくは１．０×１０
5 〜１．０×１０8 個である。
【００３１】ＶＡ菌根菌の植物への感染率をさらに向上
させるために、酵母エキス、ペプトン、コーンスティー
プリカーなどの有機栄養源、堆肥、油カスなどの有機質
肥料またはトリプトファンなどを栽培土壌に施用してお
いてもよい。この施用時期は、光合成細菌と同時または
光合成細菌施用前後であってもよく、特に限定されな
い。
させるために、酵母エキス、ペプトン、コーンスティー
プリカーなどの有機栄養源、堆肥、油カスなどの有機質
肥料またはトリプトファンなどを栽培土壌に施用してお
いてもよい。この施用時期は、光合成細菌と同時または
光合成細菌施用前後であってもよく、特に限定されな
い。
【００３２】上記の様に、光合成細菌をあらかじめＶＡ
菌根菌製剤に混合した場合には、植物生長促進剤として
用いることができる。
菌根菌製剤に混合した場合には、植物生長促進剤として
用いることができる。
【００３３】本発明の植物生長促進剤に用いる光合成細
菌およびＶＡ菌根菌は、上記と同様な方法で製造するこ
とができる。この植物生長促進剤の配合量は、製剤１ｇ
当たり光合成細菌１．０×１０3 〜１．０×１０10個、
ＶＡ菌根菌３〜５００胞子となるように配合するのが好
ましい。
菌およびＶＡ菌根菌は、上記と同様な方法で製造するこ
とができる。この植物生長促進剤の配合量は、製剤１ｇ
当たり光合成細菌１．０×１０3 〜１．０×１０10個、
ＶＡ菌根菌３〜５００胞子となるように配合するのが好
ましい。
【００３４】また、この製剤には、必要に応じて有機栄
養源、有機質肥料またはトリプトファンなどを添加する
こともできる。
養源、有機質肥料またはトリプトファンなどを添加する
こともできる。
【００３５】
【実施例】以下、本発明の実施例および比較例等により
本発明を説明するが、これらによって限定されるもので
はない。
本発明を説明するが、これらによって限定されるもので
はない。
【００３６】
【製造例１】 光合成細菌（ロドシュードモナス スフ
ェロイデス）の培養接種物 水１Ｌに、酵母エキス１０ｇ、酢酸ナトリウム２．５
ｇ、リン酸第１カリウム０．８ｇ、硫酸マグネシウム・
７水塩０．２ｇ、硫酸アンモニウム０．５ｇ、塩化第２
鉄・６水塩０．０１ｇ、塩化カルシウム・２水塩０．０
５ｇ、塩化マンガン・４水塩０．０００２ｇを混合し、
pHが７．４になるように調整した培地を５００ｍｌ容の
坂口フラスコに１００ｍｌずつ入れ、１２１℃、２０分
間処理して殺菌した。これに、ロドシュードモナス ス
フェロイデス（ＩＦＯ１２２０３）を植菌し、２８℃、
１５００ルックスの照明下で７日間振とう培養した。培
養菌体を遠心分離機（１０，０００Ｇ）により集菌し、
水で懸濁し、もう一度遠心分離し培養菌体を集菌した。
この菌体を１重量％となるように水に懸濁し、吸光度計
（波長６００nm）により菌数濃度を求め、この菌体懸濁
液をピートモス中に滴下した。この培養接種物には、ピ
ートモス１ｇ当たり５×１０7 個のロドシュードモナス
スフェロイデスが含まれていた。
ェロイデス）の培養接種物 水１Ｌに、酵母エキス１０ｇ、酢酸ナトリウム２．５
ｇ、リン酸第１カリウム０．８ｇ、硫酸マグネシウム・
７水塩０．２ｇ、硫酸アンモニウム０．５ｇ、塩化第２
鉄・６水塩０．０１ｇ、塩化カルシウム・２水塩０．０
５ｇ、塩化マンガン・４水塩０．０００２ｇを混合し、
pHが７．４になるように調整した培地を５００ｍｌ容の
坂口フラスコに１００ｍｌずつ入れ、１２１℃、２０分
間処理して殺菌した。これに、ロドシュードモナス ス
フェロイデス（ＩＦＯ１２２０３）を植菌し、２８℃、
１５００ルックスの照明下で７日間振とう培養した。培
養菌体を遠心分離機（１０，０００Ｇ）により集菌し、
水で懸濁し、もう一度遠心分離し培養菌体を集菌した。
この菌体を１重量％となるように水に懸濁し、吸光度計
（波長６００nm）により菌数濃度を求め、この菌体懸濁
液をピートモス中に滴下した。この培養接種物には、ピ
ートモス１ｇ当たり５×１０7 個のロドシュードモナス
スフェロイデスが含まれていた。
【００３７】
【製造例２】 光合成細菌（ロドスピリラム ルブラ
ム）の培養接種物 製造例１と同様にして、ロドスピリラム ルブラム（Ｉ
ＦＯ３９８６）の培養接種物を得た。この培養接種物
は、ピートモス１ｇ当たり５×１０7 個のロドシュード
モナス ルブラムが含まれていた。
ム）の培養接種物 製造例１と同様にして、ロドスピリラム ルブラム（Ｉ
ＦＯ３９８６）の培養接種物を得た。この培養接種物
は、ピートモス１ｇ当たり５×１０7 個のロドシュード
モナス ルブラムが含まれていた。
【００３８】
【製造例３】 ＶＡ菌根菌（グロムス ｓｐ．Ｒ１０）
の培養接種物 長鉢５号（直径１５０ｍｍ×高さ１５７ｍｍ）に目開き
３ｍｍの篩を通過し、目開き１ｍｍの篩に残った焼成モ
ンモリロナイト（粒径１〜３ｍｍ、焼成温度６００℃）
を敷き詰めた。その中央にグロムス ｓｐ．Ｒ１０（Ａ
ＴＣＣ７４３１１）の胞子２５０個を、深さの３ｃｍの
ところにティッシュペーパーで包んで、胞子が水と共に
下へ流れないようにして置いた。次いで、その上１ｃｍ
のところにＦ1シュガーソルガム（カネコ種苗、品種：
ゴールドソルゴー）の種子を２粒置いた。
の培養接種物 長鉢５号（直径１５０ｍｍ×高さ１５７ｍｍ）に目開き
３ｍｍの篩を通過し、目開き１ｍｍの篩に残った焼成モ
ンモリロナイト（粒径１〜３ｍｍ、焼成温度６００℃）
を敷き詰めた。その中央にグロムス ｓｐ．Ｒ１０（Ａ
ＴＣＣ７４３１１）の胞子２５０個を、深さの３ｃｍの
ところにティッシュペーパーで包んで、胞子が水と共に
下へ流れないようにして置いた。次いで、その上１ｃｍ
のところにＦ1シュガーソルガム（カネコ種苗、品種：
ゴールドソルゴー）の種子を２粒置いた。
【００３９】長鉢の中の焼成モンモリロナイト、グロム
ス ｓｐ．Ｒ１０及びＦ1シュガーソルガムを十分に濡
らした後、ビニールで覆い、ガラス温室内に移した。ガ
ラス温室内を２０〜２５℃に維持しながら１週間、水を
涸らさないようにしてＦ1シュガーソルガムを栽培し
た。生育した苗のうち、健全な苗を残し、その他の苗を
除去した。その後、同様にガラス温室内で、毎日灌水を
行いながら栽培を続けた。肥料については、栽培を開始
してから１ヶ月後より、週１回ピータース液肥（Ｎ：
Ｐ：Ｋ＝２０：１０：２０）の１０００倍液を散布し
た。この操作を繰り返しながら、更に２ヶ月半栽培した
後、水と液肥の散布を中止し、３０日間放置した。
ス ｓｐ．Ｒ１０及びＦ1シュガーソルガムを十分に濡
らした後、ビニールで覆い、ガラス温室内に移した。ガ
ラス温室内を２０〜２５℃に維持しながら１週間、水を
涸らさないようにしてＦ1シュガーソルガムを栽培し
た。生育した苗のうち、健全な苗を残し、その他の苗を
除去した。その後、同様にガラス温室内で、毎日灌水を
行いながら栽培を続けた。肥料については、栽培を開始
してから１ヶ月後より、週１回ピータース液肥（Ｎ：
Ｐ：Ｋ＝２０：１０：２０）の１０００倍液を散布し
た。この操作を繰り返しながら、更に２ヶ月半栽培した
後、水と液肥の散布を中止し、３０日間放置した。
【００４０】３０日間の放置後、この長鉢を裏返して、
Ｆ1 シュガーソルガムの根とグロムス ｓｐ．Ｒ１０を
含む焼成モンモリロナイトをビニールシートの上へ広げ
た。Ｆ1 シュガーソルガムの太い根を除去し、そのまま
１５℃の暗所で乾燥させてグロムス ｓｐ．Ｒ１０接種
物を得た。この様にして得られた接種物では、担体焼成
モンモリロナイトに付着しているグロムス ｓｐ．Ｒ１
０の胞子数はグラム当たり約１００個であった。
Ｆ1 シュガーソルガムの根とグロムス ｓｐ．Ｒ１０を
含む焼成モンモリロナイトをビニールシートの上へ広げ
た。Ｆ1 シュガーソルガムの太い根を除去し、そのまま
１５℃の暗所で乾燥させてグロムス ｓｐ．Ｒ１０接種
物を得た。この様にして得られた接種物では、担体焼成
モンモリロナイトに付着しているグロムス ｓｐ．Ｒ１
０の胞子数はグラム当たり約１００個であった。
【００４１】
【製造例４】 ＶＡ菌根菌（ギガスポラ ラミスポロフ
ォラ）の培養接種物 １５０ｍｌ容のビニールポットに、８００℃で焼成した
赤玉土（粒径１〜４ｍｍ）を基材として充填した後、種
菌として休耕地より採取したギガスポラ ラミスポロフ
ォラの胞子５０個を接種し、白クローバーの種子を蒔い
て栽培し、ギガスポラ ラミスポロフォラ感染苗を作製
した。この苗を３週間にわたり、２５〜３０℃で栽培し
た後、１／１００００アールワグネルポットに、上記と
同様に、８００℃で焼成した赤玉土（粒径１〜４ｍｍ）
を基材として１．５Ｌ充填し、そこに感染苗を移植し
た。
ォラ）の培養接種物 １５０ｍｌ容のビニールポットに、８００℃で焼成した
赤玉土（粒径１〜４ｍｍ）を基材として充填した後、種
菌として休耕地より採取したギガスポラ ラミスポロフ
ォラの胞子５０個を接種し、白クローバーの種子を蒔い
て栽培し、ギガスポラ ラミスポロフォラ感染苗を作製
した。この苗を３週間にわたり、２５〜３０℃で栽培し
た後、１／１００００アールワグネルポットに、上記と
同様に、８００℃で焼成した赤玉土（粒径１〜４ｍｍ）
を基材として１．５Ｌ充填し、そこに感染苗を移植し
た。
【００４２】その後、下記に示す液肥を与えながら、２
５〜３０℃で７週間栽培した後、白クローバーを分離し
て廃棄し、基材のみを回収した。この回収した基材か
ら、湿式篩別法で、すなわち目開き１．５ｍｍの篩を用
いて粒径大の部分を除き、次いで目開き１７３μｍの篩
を用いて、粒径小の部分を除いて、ギガスポラ ラミス
ポロフォラの胞子を回収した。この様にしてポット当た
り約２万個の胞子が回収され、これをもとに、胞子含量
が２０胞子／ｇとなるように調製してギガスポララミス
ポロフォラの培養接種物を得た。本菌株は工業技術院生
命工学工業技術研究所での寄託を拒否され、本発明者が
保管している。
５〜３０℃で７週間栽培した後、白クローバーを分離し
て廃棄し、基材のみを回収した。この回収した基材か
ら、湿式篩別法で、すなわち目開き１．５ｍｍの篩を用
いて粒径大の部分を除き、次いで目開き１７３μｍの篩
を用いて、粒径小の部分を除いて、ギガスポラ ラミス
ポロフォラの胞子を回収した。この様にしてポット当た
り約２万個の胞子が回収され、これをもとに、胞子含量
が２０胞子／ｇとなるように調製してギガスポララミス
ポロフォラの培養接種物を得た。本菌株は工業技術院生
命工学工業技術研究所での寄託を拒否され、本発明者が
保管している。
【００４３】なお、上記で白クローバー栽培時に用いた
液肥は、表１に示す組成の微量金属栄養素液と栄養液肥
（Ｎ：Ｐ：Ｋ＝１５：６：６の普通液肥）を用い、微量
金属栄養素液を１００倍に希釈し、この希釈液１Ｌ当た
り栄養液肥を１．０ｇ混合し、更に硫酸マグネシウム・
７水塩を０．２５ｇ加えて調製したものである。
液肥は、表１に示す組成の微量金属栄養素液と栄養液肥
（Ｎ：Ｐ：Ｋ＝１５：６：６の普通液肥）を用い、微量
金属栄養素液を１００倍に希釈し、この希釈液１Ｌ当た
り栄養液肥を１．０ｇ混合し、更に硫酸マグネシウム・
７水塩を０．２５ｇ加えて調製したものである。
【００４４】
【表１】
【００４５】
【実施例１】 ５×５ｃｍの連結ポットに土壌１Ｋｇ当
たりチッソ０．４ｇ、リンサン１．５ｇ、カリウム０．
４ｇ、マグネシウム０．２ｇを含有させた培土（商品
名：クレハ園芸培土）を充填した。このポット培土の中
心部に植え穴をあけ、植え穴に製造例１で得られたロド
シュードモナス スフェロイデスの培養接種物を１ｇ、
製造例３で得られたグロムス ｓｐ．Ｒ１０の培養接種
物を１ｇを入れた後、、キュウリの種子（品種シャープ
１）を１粒づつ播いた。播種後、温室内にて１５〜３０
℃で１５日間栽培を続け、栽培中は適宜灌水を行った。
たりチッソ０．４ｇ、リンサン１．５ｇ、カリウム０．
４ｇ、マグネシウム０．２ｇを含有させた培土（商品
名：クレハ園芸培土）を充填した。このポット培土の中
心部に植え穴をあけ、植え穴に製造例１で得られたロド
シュードモナス スフェロイデスの培養接種物を１ｇ、
製造例３で得られたグロムス ｓｐ．Ｒ１０の培養接種
物を１ｇを入れた後、、キュウリの種子（品種シャープ
１）を１粒づつ播いた。播種後、温室内にて１５〜３０
℃で１５日間栽培を続け、栽培中は適宜灌水を行った。
【００４６】その後、連結ポットからキュウリを取り上
げ、以下の方法でＶＡ菌根菌の感染率を算出し、平均値
を求めた。また、キュウリの苗の地上部を切断し、重量
を測定し、平均値を求めた。結果を表２に示す。
げ、以下の方法でＶＡ菌根菌の感染率を算出し、平均値
を求めた。また、キュウリの苗の地上部を切断し、重量
を測定し、平均値を求めた。結果を表２に示す。
【００４７】感染率の測定法（トリパンブルーによる染
色） （ア）感染させた植物の根を水で十分洗う。 （イ）水切りした根をビーカーに入れ、１０％水酸化カ
リウムで１５分間弱く沸騰させながら煮る。 （ウ）根を数回水で洗浄したのち、５％塩酸を加えて５
分間室温にて放置する。 （エ）アニリンブルー染色液に根を浸し５〜３０分間弱
く加熱する。なお、アニリンブルー染色液（１リット
ル）の組成は以下の通りである。 （オ）根を水洗し、顕微鏡で観察する。 （カ）１ｃｍ間隔のグリットの上に染色したサンプルを
載せ、顕鏡により確認し、クロスライン法により、感染
率を求める。
色） （ア）感染させた植物の根を水で十分洗う。 （イ）水切りした根をビーカーに入れ、１０％水酸化カ
リウムで１５分間弱く沸騰させながら煮る。 （ウ）根を数回水で洗浄したのち、５％塩酸を加えて５
分間室温にて放置する。 （エ）アニリンブルー染色液に根を浸し５〜３０分間弱
く加熱する。なお、アニリンブルー染色液（１リット
ル）の組成は以下の通りである。 （オ）根を水洗し、顕微鏡で観察する。 （カ）１ｃｍ間隔のグリットの上に染色したサンプルを
載せ、顕鏡により確認し、クロスライン法により、感染
率を求める。
【００４８】
【比較例１】 ロドシュードモナス スフェロイデスを
用いない以外は、実施例１と同様に行った。
用いない以外は、実施例１と同様に行った。
【００４９】
【実施例２〜実施例３】 ロドシュードモナス スフェ
ロイデスおよびグロムスｓｐ．Ｒ１０の接種量等を表２
に示すように変えた以外は、実施例１と同様に行った。
ロイデスおよびグロムスｓｐ．Ｒ１０の接種量等を表２
に示すように変えた以外は、実施例１と同様に行った。
【００５０】
【実施例４〜実施例６】 ロドシュードモナス スフェ
ロイデスの培養接種物をロドスピリラム ルブラムの培
養接種物とする以外は、実施例１〜実施例３と同様に行
った。
ロイデスの培養接種物をロドスピリラム ルブラムの培
養接種物とする以外は、実施例１〜実施例３と同様に行
った。
【００５１】
【実施例７〜実施例９】 グロムス ｓｐ．Ｒ１０の培
養接種物をギガスポララミスポロフォラの培養接種物と
し、接種胞子数等を表２に示すように変えた以外は、実
施例１と同様に行った。
養接種物をギガスポララミスポロフォラの培養接種物と
し、接種胞子数等を表２に示すように変えた以外は、実
施例１と同様に行った。
【実施例１０〜実施例１２】 ロドシュードモナス ス
フェロイデスの培養接種物をロドスピリラム ルブラム
の培養接種物とし表２に示すように変えた以外は、実施
例７〜実施例９と同様に行った。
フェロイデスの培養接種物をロドスピリラム ルブラム
の培養接種物とし表２に示すように変えた以外は、実施
例７〜実施例９と同様に行った。
【比較例２】 ロドシュードモナス スフェロイデスを
用いない以外は、実施例９と同様に行った。
用いない以外は、実施例９と同様に行った。
【００５２】
【表２】
【００５３】
【発明の効果】本発明の方法によれば、植物に対するＶ
Ａ菌根菌の感染率を向上することができ、感染したＶＡ
菌根菌の植物内での生長を効果的に維持促進し、効率よ
く植物の生長を促進することができる。また、本発明の
植物生長促進剤は優れた植物の生長促進効果を有する。
Ａ菌根菌の感染率を向上することができ、感染したＶＡ
菌根菌の植物内での生長を効果的に維持促進し、効率よ
く植物の生長を促進することができる。また、本発明の
植物生長促進剤は優れた植物の生長促進効果を有する。
フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:645）
Claims (7)
- 【請求項１】 植物を栽培するに際し、前記植物及び／
又は栽培土壌に光合成細菌及びＶＡ菌根菌を施用するこ
とを特徴とする植物の生長を促進する方法。 - 【請求項２】 ＶＡ菌根菌が、グロムス属及び／又はギ
ガスポラ属に属するＶＡ菌根菌である請求項１記載の植
物の生長を促進する方法。 - 【請求項３】 光合成細菌に属する細菌がロドバクター
属、ロドシュードモナス属、ロドスピラム属、ロドミク
ロビューム属、ロドシクラス属又はロドピーラ属に属す
る細菌から選ばれた１種又は２種以上の細菌を用いるこ
とを特徴とする請求項１または２記載の植物の生長を促
進する方法。 - 【請求項４】 植物が、ウリ科植物である請求項１〜３
記載の植物の生長を促進する方法。 - 【請求項５】 植物を栽培するに際し、前記植物及び／
又は栽培土壌に光合成細菌及びＶＡ菌根菌を施用するこ
とを特徴とするＶＡ菌根菌の植物への感染を向上する方
法。 - 【請求項６】 ＶＡ菌根菌及び光合成細菌に属する細菌
を含有する植物生長促進剤。 - 【請求項７】 ＶＡ菌根菌及び光合成細菌に属する細菌
を含有するＶＡ菌根菌の植物感染向上剤。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP7142424A JPH08310910A (ja) | 1995-05-18 | 1995-05-18 | 植物の生長促進方法及び植物生長促進剤 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP7142424A JPH08310910A (ja) | 1995-05-18 | 1995-05-18 | 植物の生長促進方法及び植物生長促進剤 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH08310910A true JPH08310910A (ja) | 1996-11-26 |
Family
ID=15315010
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP7142424A Pending JPH08310910A (ja) | 1995-05-18 | 1995-05-18 | 植物の生長促進方法及び植物生長促進剤 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH08310910A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2001088093A1 (fr) * | 2000-05-15 | 2001-11-22 | Kumazaki Ryo | Culture complexe, methode de production de culture complexe, methode de production de preculture et methode de production de preparations microbiennes |
| JP2022038863A (ja) * | 2020-08-27 | 2022-03-10 | 学校法人君が淵学園 | 植物の成長促進方法 |
-
1995
- 1995-05-18 JP JP7142424A patent/JPH08310910A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2001088093A1 (fr) * | 2000-05-15 | 2001-11-22 | Kumazaki Ryo | Culture complexe, methode de production de culture complexe, methode de production de preculture et methode de production de preparations microbiennes |
| JP2022038863A (ja) * | 2020-08-27 | 2022-03-10 | 学校法人君が淵学園 | 植物の成長促進方法 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN112980701A (zh) | 促进铁皮石斛种子萌发及生长的复合菌剂 | |
| CN114175996B (zh) | 一种丛枝菌根真菌的扩繁方法 | |
| EP0209627A2 (en) | Method for producing axenic vesicular arbuscular mycorrhizal fungi in association with root organ cultures | |
| JPS6387973A (ja) | のう状体−樹枝状体菌根菌の増殖方法 | |
| JPH08310910A (ja) | 植物の生長促進方法及び植物生長促進剤 | |
| JPH0823963A (ja) | 植物の栽培方法 | |
| Bloss et al. | Latex content and biomass increase in mycorrhizal guayule (Partheniurn argentatum) under field conditions | |
| Ridgway et al. | Optimising the medium for producing arbuscular mycorrhizal spores and the effect of inoculation on grapevine growth | |
| Iruthayathas et al. | Symbiotic specificity in nodulation and nitrogen fixation between winged bean and Rhizobium | |
| JP2931221B2 (ja) | 耐りん酸性を有するｖａ菌根菌グロムス・エスピー ｒ１０とこれを用いた植物の栽培方法 | |
| KR20020001280A (ko) | 노랑다발동충하초 자실체의 대량생산방법 | |
| JPH05244824A (ja) | 植物の栽培方法 | |
| JP6384087B2 (ja) | 植物の栽培方法 | |
| WO2002077201A2 (en) | A method of preparing a growth substrate | |
| Waterer et al. | Mycorrhizal infection level of bell pepper transplants influences subsequent responses to soil solution phosphorus | |
| JPH0591820A (ja) | 植物の栽培方法 | |
| JPH05176636A (ja) | Ｖａ菌根菌の増殖方法 | |
| KR100239152B1 (ko) | 브이에이(va)균근균 접종물의 제조방법 | |
| Waterer et al. | Response of lettuce to pre-and post-transplant phosphorus and pre-transplant inoculation with a VA-mycorrhizal fungus | |
| JP2986272B2 (ja) | Ｖａ菌根菌接種物の製造方法 | |
| JPH107483A (ja) | 植物の栽培促進剤およびそれを用いた植物の栽培促進方法 | |
| JPH05168348A (ja) | 土壌病害の防除法 | |
| JPH07289085A (ja) | 植物の栽培方法 | |
| JPH0638736A (ja) | Ｖａ菌根菌接種物の製造方法 | |
| JPH104810A (ja) | 培養植物体及び該培養植物体を用いたクローン苗の製造方法 |