JPH07285992A - 新規ペプチド - Google Patents
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Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【構成】 Arg-Gly-Asp-Leu または Arg-Gly-Asp-Leu-G
lu-Arg、及びこれらのペプチドを有効成分とする血小板
凝集抑制剤または癌転移抑制剤。 【効果】 これらのペプチドは血小板凝集阻害活性を有
しており、その性質を利用して動脈硬化、血栓性疾患等
の予防及び治療をする医薬として用いられる。また、癌
転移を抑制する性質を有しており、癌転移抑制剤として
も用いられる。
lu-Arg、及びこれらのペプチドを有効成分とする血小板
凝集抑制剤または癌転移抑制剤。 【効果】 これらのペプチドは血小板凝集阻害活性を有
しており、その性質を利用して動脈硬化、血栓性疾患等
の予防及び治療をする医薬として用いられる。また、癌
転移を抑制する性質を有しており、癌転移抑制剤として
も用いられる。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明はArg-Gly-Asp-Leu 及びAr
g-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg のアミノ酸配列を有する新規ペ
プチドに関する。また、本発明は、このようなペプチド
を有効成分とする血小板凝集抑制剤、及び癌転移抑制剤
に関する。
g-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg のアミノ酸配列を有する新規ペ
プチドに関する。また、本発明は、このようなペプチド
を有効成分とする血小板凝集抑制剤、及び癌転移抑制剤
に関する。
【0002】
【従来の技術】近年、血小板凝集のメカニズムについて
の研究が盛んに行われている。血小板凝集は血小板と細
胞外マトリックスの接着であり、この接着因子の1つと
して粘着性蛋白質であるフィブロネクチン、ビトロネク
チン、フィブリノーゲン等が関与しており、血小板膜上
に存在する主要糖蛋白インテグリンGPIIb/IIIaに対
し粘着性蛋白質が結合及び血小板相互の架橋をすること
により、活性化された血小板が凝集する。このGPIIb
/IIIaに対する粘着性蛋白質の結合はRGD配列(Arg-G
ly-Asp) 依存性であり、RGDペプチドは細胞外マトリ
ックス上のレセプターで認識され、血小板凝集及び粘着
性蛋白質の血小板への結合が抑制されることが知られて
いる。これより、RGDペプチドを血液中に投与すると
B16−F10メラノーマの転移が抑制される(Science, vo
l.233, pp.467-470, 1986)という報告や、RGD配列を
有する種々の鎖状及び環状のオリゴペプチドを用いて血
小板凝集を阻害する方法(高分子学会予稿集、38巻、31
49頁、1989年) 、RGD配列を有する合成オリゴペプチ
ド或いはその繰り返し構造を有するポリペプチドを用い
て、癌転移を抑制する方法(Int. J. Biol. Macromol.,
vol.11, No.1, pp23〜25, 1989及び同誌 vol.11, No.4,
pp226〜232, 1989)等が報告されている。しかし、これ
らのペプチドは必ずしも満足の行く作用を有するもので
はなく、特に血小板凝集阻害活性については活性の高い
ものでは無かった。このため、RGD配列を含み、しか
も血小板凝集抑制活性の高いペプチドが望まれていた。
の研究が盛んに行われている。血小板凝集は血小板と細
胞外マトリックスの接着であり、この接着因子の1つと
して粘着性蛋白質であるフィブロネクチン、ビトロネク
チン、フィブリノーゲン等が関与しており、血小板膜上
に存在する主要糖蛋白インテグリンGPIIb/IIIaに対
し粘着性蛋白質が結合及び血小板相互の架橋をすること
により、活性化された血小板が凝集する。このGPIIb
/IIIaに対する粘着性蛋白質の結合はRGD配列(Arg-G
ly-Asp) 依存性であり、RGDペプチドは細胞外マトリ
ックス上のレセプターで認識され、血小板凝集及び粘着
性蛋白質の血小板への結合が抑制されることが知られて
いる。これより、RGDペプチドを血液中に投与すると
B16−F10メラノーマの転移が抑制される(Science, vo
l.233, pp.467-470, 1986)という報告や、RGD配列を
有する種々の鎖状及び環状のオリゴペプチドを用いて血
小板凝集を阻害する方法(高分子学会予稿集、38巻、31
49頁、1989年) 、RGD配列を有する合成オリゴペプチ
ド或いはその繰り返し構造を有するポリペプチドを用い
て、癌転移を抑制する方法(Int. J. Biol. Macromol.,
vol.11, No.1, pp23〜25, 1989及び同誌 vol.11, No.4,
pp226〜232, 1989)等が報告されている。しかし、これ
らのペプチドは必ずしも満足の行く作用を有するもので
はなく、特に血小板凝集阻害活性については活性の高い
ものでは無かった。このため、RGD配列を含み、しか
も血小板凝集抑制活性の高いペプチドが望まれていた。
【0003】このような状況に鑑み、本発明者らは食品
中に含まれる生理活性物質、特に我々日本人の主食であ
る米中に含まれる生理活性物質に注目し研究する過程に
おいて、米蛋白質の加水分解物中にRGD配列を含む血
小板凝集阻害活性の高い全く新規なペプチドを見出し
た。さらに、このペプチドの薬理作用を検討したとこ
ろ、メラノーマの転移抑制作用があることを見出して、
本発明を完成するに至った。
中に含まれる生理活性物質、特に我々日本人の主食であ
る米中に含まれる生理活性物質に注目し研究する過程に
おいて、米蛋白質の加水分解物中にRGD配列を含む血
小板凝集阻害活性の高い全く新規なペプチドを見出し
た。さらに、このペプチドの薬理作用を検討したとこ
ろ、メラノーマの転移抑制作用があることを見出して、
本発明を完成するに至った。
【0004】
【発明が解決しようとする課題】従って、本発明の課題
は、米蛋白質加水分解物中から見出された、強い血小板
凝集阻害活性を有する新規ペプチドを提供することにあ
る。また、本発明の課題は、このペプチドと化学構造が
類似し、同様の生理活性のあるペプチドを提供すること
にある。さらに、本発明の設題は、このようなペプチド
を有効成分とする血小板凝集抑制剤及び癌転移抑制剤を
提供することにある。
は、米蛋白質加水分解物中から見出された、強い血小板
凝集阻害活性を有する新規ペプチドを提供することにあ
る。また、本発明の課題は、このペプチドと化学構造が
類似し、同様の生理活性のあるペプチドを提供すること
にある。さらに、本発明の設題は、このようなペプチド
を有効成分とする血小板凝集抑制剤及び癌転移抑制剤を
提供することにある。
【0005】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、前記した
ように米蛋白質の加水分解物中に強い血小板凝集阻害活
性を有するペプチドがあることを見出してこのペプチド
を単離し、そのアミノ酸配列を決定した。この結果、次
のアミノ酸配列を有するペプチドを得た。 Arg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg そして、さらにこのペプチドと化学構造が類似し、同様
に強い血小板凝集阻害活性を有するペプチドを探索した
ところ、次のアミノ酸配列を有するペプチドを得た。 Arg-Gly-Asp-Leu すなわち本発明は、次のアミノ酸配列を有するペプチド
にある。 Arg-Gly-Asp-Leu Arg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg これらのペプチドは新規なペプチドであり、強い血小板
凝集阻害活性を示す。さらに、これらのペプチドの薬理
作用を検討したところ、癌細胞の転移を強く抑制するこ
とを見出した。このことから、本発明のペプチドは、動
脈硬化、血栓症、癌転移、その他の疾患を治療あるいは
予防するのに有用である。従って、本発明は、これらの
ペプチドを有効成分とする血小板凝集抑制剤、あるいは
癌転移抑制剤に関する。
ように米蛋白質の加水分解物中に強い血小板凝集阻害活
性を有するペプチドがあることを見出してこのペプチド
を単離し、そのアミノ酸配列を決定した。この結果、次
のアミノ酸配列を有するペプチドを得た。 Arg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg そして、さらにこのペプチドと化学構造が類似し、同様
に強い血小板凝集阻害活性を有するペプチドを探索した
ところ、次のアミノ酸配列を有するペプチドを得た。 Arg-Gly-Asp-Leu すなわち本発明は、次のアミノ酸配列を有するペプチド
にある。 Arg-Gly-Asp-Leu Arg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg これらのペプチドは新規なペプチドであり、強い血小板
凝集阻害活性を示す。さらに、これらのペプチドの薬理
作用を検討したところ、癌細胞の転移を強く抑制するこ
とを見出した。このことから、本発明のペプチドは、動
脈硬化、血栓症、癌転移、その他の疾患を治療あるいは
予防するのに有用である。従って、本発明は、これらの
ペプチドを有効成分とする血小板凝集抑制剤、あるいは
癌転移抑制剤に関する。
【0006】本発明のペプチドは、米粉に食塩水を加え
透析して得られた可溶性蛋白質をトリプシン処理し、高
速液体クロマトグラフで分画を行うことができる。又、
市販のペプチドシンセサイザーを用いることにより容易
に合成が可能である。例えば、合成装置としてSam
Twoペプチド合成装置(Biosearch社製)を
用いてペプチドの合成を行う。即ち、樹脂に活性基を保
護したアミノ酸を吸着させ、これにデブロッキング液を
注入して保護基を除去し、活性基を保護したアミノ酸を
注入し、両者を反応させ、ジペプチドを合成する。この
操作を繰り返すことにより、目的とする配列を有するペ
プチドを合成する。ペプチドの担体としての樹脂からの
脱離と保護基の除去は、10%アニソールを含む無水フ
ッ化水素中で0℃の温度条件下に1時間攪拌することに
より行う。フッ化水素を留去した後樹脂をエーテルで洗
浄し、30%酢酸により抽出し、凍結乾燥により粗ペプ
チドが得られる。この粗ペプチドを0.1%トリフルオ
ロ酢酸に溶解した後、オクタデシルシラン(ODS)カ
ラム(Cosmosil 5C18)を接続した高速液体
クロマトグラフにより、0.1%のトリフルオロ酢酸を
含むアセトニトリルの直線的濃度勾配にて展開、精製す
る。目的とするペプチドは、特有の溶出位置を示す。
透析して得られた可溶性蛋白質をトリプシン処理し、高
速液体クロマトグラフで分画を行うことができる。又、
市販のペプチドシンセサイザーを用いることにより容易
に合成が可能である。例えば、合成装置としてSam
Twoペプチド合成装置(Biosearch社製)を
用いてペプチドの合成を行う。即ち、樹脂に活性基を保
護したアミノ酸を吸着させ、これにデブロッキング液を
注入して保護基を除去し、活性基を保護したアミノ酸を
注入し、両者を反応させ、ジペプチドを合成する。この
操作を繰り返すことにより、目的とする配列を有するペ
プチドを合成する。ペプチドの担体としての樹脂からの
脱離と保護基の除去は、10%アニソールを含む無水フ
ッ化水素中で0℃の温度条件下に1時間攪拌することに
より行う。フッ化水素を留去した後樹脂をエーテルで洗
浄し、30%酢酸により抽出し、凍結乾燥により粗ペプ
チドが得られる。この粗ペプチドを0.1%トリフルオ
ロ酢酸に溶解した後、オクタデシルシラン(ODS)カ
ラム(Cosmosil 5C18)を接続した高速液体
クロマトグラフにより、0.1%のトリフルオロ酢酸を
含むアセトニトリルの直線的濃度勾配にて展開、精製す
る。目的とするペプチドは、特有の溶出位置を示す。
【0007】このようにして得られたペプチドのアミノ
酸配列はプロテインシーケンサーによる配列分析、アミ
ノ酸分析計によるアミノ酸分析により特定できる。
酸配列はプロテインシーケンサーによる配列分析、アミ
ノ酸分析計によるアミノ酸分析により特定できる。
【0008】本発明ペプチドは血小板凝集阻害活性及び
癌細胞転移阻害活性を有し、具体的にはヒト及び動物に
対して動脈硬化、各種血栓性疾患、脳梗塞発作、基礎疾
患によるDIC、及び悪性腫瘍の転移の予防及び悪性腫
瘍の治療剤、又は生化学試薬として利用可能である。
癌細胞転移阻害活性を有し、具体的にはヒト及び動物に
対して動脈硬化、各種血栓性疾患、脳梗塞発作、基礎疾
患によるDIC、及び悪性腫瘍の転移の予防及び悪性腫
瘍の治療剤、又は生化学試薬として利用可能である。
【0009】以下に実施例を挙げて本発明をさらに詳し
く説明する。しかしこれらは単に例示するのみであり、
本発明はこれらにより限定されるものではない。
く説明する。しかしこれらは単に例示するのみであり、
本発明はこれらにより限定されるものではない。
【実施例1】加水分解による本発明ペプチドの製造方法 ニホンバレ種の米をミキサーにて粉砕し、得られた米粉
末を7倍量の1M食塩水にて抽出し、その遠心上清を
0.1M食塩水に対して透析し可溶性蛋白質を得た。こ
の蛋白質をpH7.6に調整した後、蛋白質の1/10
0に相当するトリプシンを加え37℃にて5時間の消化
を行い、沸騰水上にて10分間加熱し酵素を失活させ、
トリプシン消化物とした。30mgのトリプシン消化物
をオクタデシルシランカラム(Cosmosil 5C
18−AR、20φ×250mm、ナカライテスク社製)
を装着した高速液体クロマトグラフ(M600、ミリポ
ア社製)にて、0.1%トリフルオロ酢酸を含むアセト
ニトリルの直線的濃度勾配(0〜30%/30分、10
ml/分)により分画した。アセトニトリル濃度約16
%で溶出された活性画分をフェネチルシリカカラム(D
evelosil PH−A−T−5、4.6φ×25
0mm、野村科学社製)にて0.1%トリフルオロ酢酸
を含むアセトニトリルの直線的濃度勾配(0−30%/
30分、1ml/分)により分画した。アセトニトリル
濃度約15%で溶出された活性画分をプロテインシーケ
ンサー(477A、アプライドバイオシステムズ社製)
にて解析したところ、Arg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg の6残
基からなるペプチドと確認した。
末を7倍量の1M食塩水にて抽出し、その遠心上清を
0.1M食塩水に対して透析し可溶性蛋白質を得た。こ
の蛋白質をpH7.6に調整した後、蛋白質の1/10
0に相当するトリプシンを加え37℃にて5時間の消化
を行い、沸騰水上にて10分間加熱し酵素を失活させ、
トリプシン消化物とした。30mgのトリプシン消化物
をオクタデシルシランカラム(Cosmosil 5C
18−AR、20φ×250mm、ナカライテスク社製)
を装着した高速液体クロマトグラフ(M600、ミリポ
ア社製)にて、0.1%トリフルオロ酢酸を含むアセト
ニトリルの直線的濃度勾配(0〜30%/30分、10
ml/分)により分画した。アセトニトリル濃度約16
%で溶出された活性画分をフェネチルシリカカラム(D
evelosil PH−A−T−5、4.6φ×25
0mm、野村科学社製)にて0.1%トリフルオロ酢酸
を含むアセトニトリルの直線的濃度勾配(0−30%/
30分、1ml/分)により分画した。アセトニトリル
濃度約15%で溶出された活性画分をプロテインシーケ
ンサー(477A、アプライドバイオシステムズ社製)
にて解析したところ、Arg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg の6残
基からなるペプチドと確認した。
【0010】
【実施例2】Arg-Gly-Asp-Leu(RGDL) の合成 Sam Twoペプチド合成装置(Biosearch
社製)により、同装置の標準プロトコールに従って合成
した。即ち、1g当たり0.5mmolのt−Boc−
Leuを結合したアシルオキシメチル樹脂2gをペプチ
ド合成装置の反応容器にセットし、45v/v%トリフ
ルオロ酢酸、2.5v/v%アニソール、52.5v/
v%ジクロロメタンを含むデブロッキング液と20分間
接触させt−Boc基を除いた。ジクロロメタンによる
洗浄の後、10v/v%ジイソプロピルエチルアミンを
含むジクロロメタンにて樹脂中和し、ジクロロメタンに
より洗浄した。その後6.7mmolのt−Boc−A
sp(OBzl)及び6.7mmolのジイソプロピル
カルボジイミド(それぞれ理論当量の6.7倍)を含む
34mlのジクロロメタン、ジメチルフォルムアミド混
合液中で2時間室温にて反応せしめた。ジメチルフォル
ムアミド及びジクロロメタンにて順次洗浄した。この樹
脂を上記と同様にデブロッキングを行い、以下同様にC
末端側からt−Boc−Gly、t−Boc−Arg
(Tos)を順次結合せしめ、t−Boc−Arg(T
os)−Gly−Asp(OBzl)−Leu−樹脂を
得た。この樹脂を10%アニソールを含む無水フッ化水
素中で0℃1時間反応させた後、フッ化水素の留去及び
エーテルによる洗浄を行った。得られたペプチド及び樹
脂の混合物から30%酢酸にてペプチドを抽出し凍結乾
燥によって約400mgの粗ペプチドを得た。粗ペプチ
ドを0.1%トリフルオロ酢酸に溶解した後、オクタデ
シルシラン(ODS)カラム(Cosmosil 5C
18−AR、20φ×250mm、ナカライテスク社製)
を接続した高速液体クロマトグラフ(M600型、日本
ウォータース社製)により、0.1%のトリフルオロ酢
酸を含むアセトニトリルの直線的濃度勾配(0〜25%
/25分、10ml/分)にて展開した。目的とするペ
プチドはアセトニトリル濃度約18%にて溶出された。
得られた物質がArg-Gly-Asp-Leu であることは、アミノ
酸分析(Asp:Gly:Leu:Arg=1.00:
1.00:0.96:0.95)及びプロテインシーケ
ンサー(477A、アプライドバイオシステムズ社製)
により確認された。
社製)により、同装置の標準プロトコールに従って合成
した。即ち、1g当たり0.5mmolのt−Boc−
Leuを結合したアシルオキシメチル樹脂2gをペプチ
ド合成装置の反応容器にセットし、45v/v%トリフ
ルオロ酢酸、2.5v/v%アニソール、52.5v/
v%ジクロロメタンを含むデブロッキング液と20分間
接触させt−Boc基を除いた。ジクロロメタンによる
洗浄の後、10v/v%ジイソプロピルエチルアミンを
含むジクロロメタンにて樹脂中和し、ジクロロメタンに
より洗浄した。その後6.7mmolのt−Boc−A
sp(OBzl)及び6.7mmolのジイソプロピル
カルボジイミド(それぞれ理論当量の6.7倍)を含む
34mlのジクロロメタン、ジメチルフォルムアミド混
合液中で2時間室温にて反応せしめた。ジメチルフォル
ムアミド及びジクロロメタンにて順次洗浄した。この樹
脂を上記と同様にデブロッキングを行い、以下同様にC
末端側からt−Boc−Gly、t−Boc−Arg
(Tos)を順次結合せしめ、t−Boc−Arg(T
os)−Gly−Asp(OBzl)−Leu−樹脂を
得た。この樹脂を10%アニソールを含む無水フッ化水
素中で0℃1時間反応させた後、フッ化水素の留去及び
エーテルによる洗浄を行った。得られたペプチド及び樹
脂の混合物から30%酢酸にてペプチドを抽出し凍結乾
燥によって約400mgの粗ペプチドを得た。粗ペプチ
ドを0.1%トリフルオロ酢酸に溶解した後、オクタデ
シルシラン(ODS)カラム(Cosmosil 5C
18−AR、20φ×250mm、ナカライテスク社製)
を接続した高速液体クロマトグラフ(M600型、日本
ウォータース社製)により、0.1%のトリフルオロ酢
酸を含むアセトニトリルの直線的濃度勾配(0〜25%
/25分、10ml/分)にて展開した。目的とするペ
プチドはアセトニトリル濃度約18%にて溶出された。
得られた物質がArg-Gly-Asp-Leu であることは、アミノ
酸分析(Asp:Gly:Leu:Arg=1.00:
1.00:0.96:0.95)及びプロテインシーケ
ンサー(477A、アプライドバイオシステムズ社製)
により確認された。
【0011】
【実施例3】Arg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg(RGDLER) の合成 Sam Twoペプチド合成装置(Biosearch
社製)により、同装置の標準プロトコールに従って合成
した。即ち、1g当たり0.5mmolのt−Boc−
Arg(Tos)を結合したアシルオキシメチル樹脂2
gをペプチド合成装置の反応容器にセットし、45v/
v%トリフルオロ酢酸、2.5v/v%アニソール、5
2.5v/v%ジクロロメタンを含むデブロッキング液
と20分間接触させt−Boc基を除いた。ジクロロメ
タンによる洗浄の後、10v/v%ジイソプロピルエチ
ルアミンを含むジクロロメタンにて樹脂中和し、ジクロ
ロメタンにより洗浄した。その後6.7mmolのt−
Boc−Glu(OBzl)及び6.7mmolのジイ
ソプロピルカルボジイミド(それぞれ理論当量の6.7
倍)を含む34mlのジクロロメタン、ジメチルフォル
ムアミド混合液中で2時間室温にて反応せしめた。ジメ
チルフォルムアミド及びジクロロメタンにて順次洗浄し
た。この樹脂を上記と同様にデブロッキングを行い、以
下同様にC末端側からt−Boc−Leu、t−Boc
−Asp(OBzl)、t−Boc−Gly、t−Bo
c−Arg(Tos)を順次結合せしめ、t−Boc−
Arg(Tos)−Gly−Asp(OBzl)−Le
u−Glu(OBzl)−Arg(Tos)−樹脂を得
た。この樹脂を10%アニソールを含む無水フッ化水素
中で0℃1時間反応させた後、フッ化水素の留去及びエ
ーテルによる洗浄を行った。得られたペプチド及び樹脂
の混合物から30%酢酸にてペプチドを抽出し凍結乾燥
によって約800mgの粗ペプチドを得た。粗ペプチド
を0.1%トリフルオロ酢酸に溶解した後、オクタデシ
ルシラン(ODS)カラム(Cosmosil 5C18
−AR、20φ×250mm、ナカライテスク社製)を
接続した高速液体クロマトグラフ(M600型、日本ウ
ォータース社製)により、0.1%のトリフルオロ酢酸
を含むアセトニトリルの直線的濃度勾配(0〜25%/
25分、10ml/分)にて展開した。目的とするペプ
チドはアセトニトリル濃度約17%にて溶出された。得
られた物質がArg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg であることは、
アミノ酸分析(Asp:Glu:Gly:Leu:Ar
g=1.00:0.98:1.00:0.96:1.9
5)及びプロテインシーケンサー(477A、アプライ
ドバイオシステムズ社製)により確認された。
社製)により、同装置の標準プロトコールに従って合成
した。即ち、1g当たり0.5mmolのt−Boc−
Arg(Tos)を結合したアシルオキシメチル樹脂2
gをペプチド合成装置の反応容器にセットし、45v/
v%トリフルオロ酢酸、2.5v/v%アニソール、5
2.5v/v%ジクロロメタンを含むデブロッキング液
と20分間接触させt−Boc基を除いた。ジクロロメ
タンによる洗浄の後、10v/v%ジイソプロピルエチ
ルアミンを含むジクロロメタンにて樹脂中和し、ジクロ
ロメタンにより洗浄した。その後6.7mmolのt−
Boc−Glu(OBzl)及び6.7mmolのジイ
ソプロピルカルボジイミド(それぞれ理論当量の6.7
倍)を含む34mlのジクロロメタン、ジメチルフォル
ムアミド混合液中で2時間室温にて反応せしめた。ジメ
チルフォルムアミド及びジクロロメタンにて順次洗浄し
た。この樹脂を上記と同様にデブロッキングを行い、以
下同様にC末端側からt−Boc−Leu、t−Boc
−Asp(OBzl)、t−Boc−Gly、t−Bo
c−Arg(Tos)を順次結合せしめ、t−Boc−
Arg(Tos)−Gly−Asp(OBzl)−Le
u−Glu(OBzl)−Arg(Tos)−樹脂を得
た。この樹脂を10%アニソールを含む無水フッ化水素
中で0℃1時間反応させた後、フッ化水素の留去及びエ
ーテルによる洗浄を行った。得られたペプチド及び樹脂
の混合物から30%酢酸にてペプチドを抽出し凍結乾燥
によって約800mgの粗ペプチドを得た。粗ペプチド
を0.1%トリフルオロ酢酸に溶解した後、オクタデシ
ルシラン(ODS)カラム(Cosmosil 5C18
−AR、20φ×250mm、ナカライテスク社製)を
接続した高速液体クロマトグラフ(M600型、日本ウ
ォータース社製)により、0.1%のトリフルオロ酢酸
を含むアセトニトリルの直線的濃度勾配(0〜25%/
25分、10ml/分)にて展開した。目的とするペプ
チドはアセトニトリル濃度約17%にて溶出された。得
られた物質がArg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg であることは、
アミノ酸分析(Asp:Glu:Gly:Leu:Ar
g=1.00:0.98:1.00:0.96:1.9
5)及びプロテインシーケンサー(477A、アプライ
ドバイオシステムズ社製)により確認された。
【0012】
【試験例1】血小板凝集阻害能の測定 ヘパリン採血したヒト末梢血を1100rpmにて7分
間遠心し、上清を多血小板血漿(PRP)として回収す
る。血小板凝集計(ヘマトレーサー601型、二光バイ
オサイエンス社製)を用いて37℃において比濁法によ
って凝集阻害能を測定した。200μlのPRPに種々
の濃度のペプチドを加えた後、最終濃度400μMとな
るようにADPを添加して凝集反応を開始し、経時的に
濁度を測定した。濁度が一定になる点をもって凝集反応
の終点とし、凝集を50%阻害するのに必要なペプチド
の濃度EC50を求めた。結果を表1に示す。
間遠心し、上清を多血小板血漿(PRP)として回収す
る。血小板凝集計(ヘマトレーサー601型、二光バイ
オサイエンス社製)を用いて37℃において比濁法によ
って凝集阻害能を測定した。200μlのPRPに種々
の濃度のペプチドを加えた後、最終濃度400μMとな
るようにADPを添加して凝集反応を開始し、経時的に
濁度を測定した。濁度が一定になる点をもって凝集反応
の終点とし、凝集を50%阻害するのに必要なペプチド
の濃度EC50を求めた。結果を表1に示す。
【0013】
【表1】 ヒト血小板に対する凝集阻害活性 ─────────────────────────────────── ペプチド EC50 ─────────────────────────────────── Arg-Gly-Asp-Leu 70 Arg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg 156 Arg-Gly-Asp-Ser (フィブロネクチン由来) 103 ───────────────────────────────────
【0014】
【試験例2】悪性腫瘍転移抑制試験 Posteらの方法(Cancer Res. , 40, 1636−44(19
80))を改変した方法により実験を行った。即ち、CO2
インキュベーターを用いて10%ウシ胎児血清及び0.
3g/mlL−グルタミンを含むイーグル最小必要培地
に37℃で培養したB16−BL6メラノーマ細胞株
(ATCC−CRL6322)をリン酸緩衝化生理的食
塩水(PBS(−))で洗浄し、1mMのEDTAを含
むPBS(−)で細胞を剥離させた。この細胞懸濁液か
ら細胞を室温で1000rpm、5分間で遠心沈降さ
せ、10%ウシ胎児血清及び0.3g/mlL−グルタ
ミンを含むイーグル最小必要培地で洗浄し、0.05%
ウシ血清アルブミンを含む無血清イーグル最小必要培地
で5×105 cells/mlの細胞懸濁液を調製し
た。
80))を改変した方法により実験を行った。即ち、CO2
インキュベーターを用いて10%ウシ胎児血清及び0.
3g/mlL−グルタミンを含むイーグル最小必要培地
に37℃で培養したB16−BL6メラノーマ細胞株
(ATCC−CRL6322)をリン酸緩衝化生理的食
塩水(PBS(−))で洗浄し、1mMのEDTAを含
むPBS(−)で細胞を剥離させた。この細胞懸濁液か
ら細胞を室温で1000rpm、5分間で遠心沈降さ
せ、10%ウシ胎児血清及び0.3g/mlL−グルタ
ミンを含むイーグル最小必要培地で洗浄し、0.05%
ウシ血清アルブミンを含む無血清イーグル最小必要培地
で5×105 cells/mlの細胞懸濁液を調製し
た。
【0015】投与量のRDGS、RGDLあるいはRG
DLERをそれぞれイーグル培地に溶解させ、5×10
5 cells/mlのB16−BL6メラノーマととも
に非麻酔下で6週齢のC57BL/6雄性マウスの尾静
脈内に200μl投与したものを投与群とし、又、被検
試料を含まない溶液を5×105 cells/mlのB
16−BL6メラノーマとともに200μl投与したも
のを対照群とした。投与2週間後にこれらのマウスを解
剖し、肺を10%ホルムアルデヒドで固定し、肺の表面
のメラノーマ転移巣の数を肉眼で計数した。
DLERをそれぞれイーグル培地に溶解させ、5×10
5 cells/mlのB16−BL6メラノーマととも
に非麻酔下で6週齢のC57BL/6雄性マウスの尾静
脈内に200μl投与したものを投与群とし、又、被検
試料を含まない溶液を5×105 cells/mlのB
16−BL6メラノーマとともに200μl投与したも
のを対照群とした。投与2週間後にこれらのマウスを解
剖し、肺を10%ホルムアルデヒドで固定し、肺の表面
のメラノーマ転移巣の数を肉眼で計数した。
【0016】この結果を図1に示した。図1に示すよう
に、300μgのRGDL及びRGDLERの投与によ
りB16−BL6メラノーマの肺転移巣の数が有意に減
少した。さらに、1000μgのRGDL及びRGDL
ERの投与でより強い転移抑制効果をもたらした。この
ことから、RGDL及びRGDLERは、強い癌転移抑
制活性を有することが判明した。
に、300μgのRGDL及びRGDLERの投与によ
りB16−BL6メラノーマの肺転移巣の数が有意に減
少した。さらに、1000μgのRGDL及びRGDL
ERの投与でより強い転移抑制効果をもたらした。この
ことから、RGDL及びRGDLERは、強い癌転移抑
制活性を有することが判明した。
【0017】本発明のペプチドはヒト及び動物に対し、
医薬組成物として経口的及び非経口的に安全に投与され
る。好適な投与量は、症状、性別、年令によって多少相
違するが、通常は血小板凝集抑制においても、あるいは
癌転移抑制においても、一日約10〜1000mgを1
日1回ないし数回に分けて経口あるいは非経口的に投与
することが好ましい。製剤として、例えば注射剤、錠
剤、散剤、顆粒剤及びカプセル剤等が挙げられる。これ
らの製剤は公知の製剤学的製法に準じ、製剤として薬理
学的に許容され得る担体、賦形剤、崩壊剤、滑沢剤及び
着色剤等と共に医薬組成物として投与される。これらの
製剤に用いる担体や賦形剤として例えば乳糖、ブドウ糖
等の糖類、デンプン類、炭酸カルシウム等の無機物、カ
ンゾウ末等の植物及び結晶セルロース等が用いられる。
賦形剤として例えばデンプン糊液、アラビアゴム、トラ
ガントゴム、ゼラチン、シロップ、ポリビニルアルコー
ル、ポリビニルエーテル、ヒドロキシプロピルセルロー
ス(HPC)、メチルセルロース、カルボキシメチルセ
ルロース(CMC)、エチルセルロース及び結晶セルロ
ース等、崩壊剤として例えばデンプン、寒天、ゼラチン
末、CMC−Na、CMC−Ca、結晶セルロース、炭
酸カルシウム及び炭酸水素ナトリウム等、滑沢剤として
例えばステアリン酸マグネシウム及びタルク等、着色剤
として例えば医薬品に添加することが許容されている周
知着色料を、各々適宜用いることができる。錠剤、顆粒
剤及びカプセル剤は矯味及び除放化製剤として、糖類、
ヒドロキシメチルセルロースフタレート及び酢酸フタル
酸セルロース等適当なコーティング物質を用いてコーテ
ィングしても良い。又、注射剤を調製する場合には、主
薬の必要に応じ適当なpH調整剤、緩衝剤、安定剤、可
溶化剤等を用いて、常法により各注射剤とする。次に本
発明の製剤の実施例を示す。
医薬組成物として経口的及び非経口的に安全に投与され
る。好適な投与量は、症状、性別、年令によって多少相
違するが、通常は血小板凝集抑制においても、あるいは
癌転移抑制においても、一日約10〜1000mgを1
日1回ないし数回に分けて経口あるいは非経口的に投与
することが好ましい。製剤として、例えば注射剤、錠
剤、散剤、顆粒剤及びカプセル剤等が挙げられる。これ
らの製剤は公知の製剤学的製法に準じ、製剤として薬理
学的に許容され得る担体、賦形剤、崩壊剤、滑沢剤及び
着色剤等と共に医薬組成物として投与される。これらの
製剤に用いる担体や賦形剤として例えば乳糖、ブドウ糖
等の糖類、デンプン類、炭酸カルシウム等の無機物、カ
ンゾウ末等の植物及び結晶セルロース等が用いられる。
賦形剤として例えばデンプン糊液、アラビアゴム、トラ
ガントゴム、ゼラチン、シロップ、ポリビニルアルコー
ル、ポリビニルエーテル、ヒドロキシプロピルセルロー
ス(HPC)、メチルセルロース、カルボキシメチルセ
ルロース(CMC)、エチルセルロース及び結晶セルロ
ース等、崩壊剤として例えばデンプン、寒天、ゼラチン
末、CMC−Na、CMC−Ca、結晶セルロース、炭
酸カルシウム及び炭酸水素ナトリウム等、滑沢剤として
例えばステアリン酸マグネシウム及びタルク等、着色剤
として例えば医薬品に添加することが許容されている周
知着色料を、各々適宜用いることができる。錠剤、顆粒
剤及びカプセル剤は矯味及び除放化製剤として、糖類、
ヒドロキシメチルセルロースフタレート及び酢酸フタル
酸セルロース等適当なコーティング物質を用いてコーテ
ィングしても良い。又、注射剤を調製する場合には、主
薬の必要に応じ適当なpH調整剤、緩衝剤、安定剤、可
溶化剤等を用いて、常法により各注射剤とする。次に本
発明の製剤の実施例を示す。
【0018】
【実施例4】 (1)錠剤の製造 本発明ペプチド 2g 馬鈴薯デンプン 6g ステアリン酸タルク 2g 乳 糖 190g ────────────────────── 合 計 200g 各成分を混合し、本発明ペプチド5mgを含む500m
gの錠剤400個を製造した。
gの錠剤400個を製造した。
【0019】(2)顆粒剤の製造 本発明ペプチド 10g ブドウ糖 50g 乳 糖 136g タ ル ク 4g ────────────────────── 合 計 200g 各成分を混合した後、圧縮成形、粉砕、整粒して20〜
50メッシュの5%顆粒剤を製造した。
50メッシュの5%顆粒剤を製造した。
【0020】(3)カプセル剤の製造 本発明ペプチド 5g 乳 糖 40g トウモロコシデンプン 50g 結晶セルロース 3g タ ル ク 2g ────────────────────── 合 計 100g 各成分を良く混和し、1号カプセルに充填し、100個
製造した。
製造した。
【0021】(4)注射剤の製造 本発明ペプチド 1g 生理食塩水 100ml ────────────────────── 合 計 1g/100ml 本発明ペプチドを生理食塩水に溶解した後滅菌し、1w
/v%の注射剤を製造した。
/v%の注射剤を製造した。
【0022】
【発明の効果】本発明により、血小板凝集阻害活性を有
するペプチドが提供される。本発明のペプチドはその血
小板凝集阻害活性を利用して動脈硬化、血栓性疾患等の
予防及び治療剤(血小板凝集抑制剤)あるいは、メラノ
ーマ細胞の転移を抑制する性質を利用して癌転移抑制
剤、あるいは生化学試薬として利用可能である。
するペプチドが提供される。本発明のペプチドはその血
小板凝集阻害活性を利用して動脈硬化、血栓性疾患等の
予防及び治療剤(血小板凝集抑制剤)あるいは、メラノ
ーマ細胞の転移を抑制する性質を利用して癌転移抑制
剤、あるいは生化学試薬として利用可能である。
【0023】
配列番号:1 配列の長さ:4 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド
【0024】配列番号:2 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド
【図1】試験例2による悪性腫瘍転移抑制試験結果を示
す。
す。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C07K 7/06 Z 8318−4H
Claims (4)
- 【請求項1】 次のアミノ酸配列を示すペプチド。 Arg-Gly-Asp-Leu
- 【請求項2】 次のアミノ酸配列を示すペプチド。 Arg-Gly-Asp-Leu-Glu-Arg
- 【請求項3】 請求項1または請求項2記載のペプチド
を有効成分とする血小板凝集抑制剤。 - 【請求項4】 請求項1または請求項2記載のペプチド
を有効成分とする癌転移抑制剤。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP6159104A JPH07285992A (ja) | 1994-02-25 | 1994-06-17 | 新規ペプチド |
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP6-52949 | 1994-02-25 | ||
JP5294994 | 1994-02-25 | ||
JP6159104A JPH07285992A (ja) | 1994-02-25 | 1994-06-17 | 新規ペプチド |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH07285992A true JPH07285992A (ja) | 1995-10-31 |
Family
ID=26393625
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP6159104A Pending JPH07285992A (ja) | 1994-02-25 | 1994-06-17 | 新規ペプチド |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH07285992A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6689787B1 (en) | 1998-12-23 | 2004-02-10 | G. D. Searle & Co. | Method of using an integrin antagonist and radiation therapy as combination therapy in the treatment of neoplasia |
-
1994
- 1994-06-17 JP JP6159104A patent/JPH07285992A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6689787B1 (en) | 1998-12-23 | 2004-02-10 | G. D. Searle & Co. | Method of using an integrin antagonist and radiation therapy as combination therapy in the treatment of neoplasia |
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