JPS6348299A - 新規な軟骨由来の白血球エラスタ−ゼ阻害剤 - Google Patents

新規な軟骨由来の白血球エラスタ−ゼ阻害剤

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JPS6348299A
JPS6348299A JP62187881A JP18788187A JPS6348299A JP S6348299 A JPS6348299 A JP S6348299A JP 62187881 A JP62187881 A JP 62187881A JP 18788187 A JP18788187 A JP 18788187A JP S6348299 A JPS6348299 A JP S6348299A
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クラウス・イー・クエツトナー
マイクル・テイー・デイミユージオ
デイートリヒ・ブロツクス
ドミニク・トリピーア
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Hoechst AG
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は生体内および試験管内で多形核好中球(PMN
)エラスターゼを阻害する新しいタンパクであるカルテ
リン(cartelin )に関する。より詳細には、
本発明はその新しいタンノ臂りをエラスターゼ介在組織
傷害疾患の人体治療に用いることに関する。
これらの疾患において、転移細胞または炎症細胞例えば
白血球が組織に拡散する。PMNエラスターゼおよびそ
の群の酵素は、無定形弾性および結合組織成分、例えば
コラーゲン・タイプ■(これは肺、血管および腸結合組
織の支持成分である)、コラーゲン・タイプ■(これは
上皮および内皮基礎膜の一体性にとって重要である)、
およびフィブロネクチン(これは細胞付着分子である)
などを含む内生基質に対し、広い特異性を有する。
これらに関連する疾患には、肺気腫、慢性気管支炎、嚢
胞性繊維症、気管支拡張症、成人呼吸窮迫症候群、アテ
ローム性動脈硬化症、関節炎、乾癖、脈管炎、糸球体腎
炎、グラム陽性菌性敗血症関連消費性凝固障害および白
血病などが含まれる。更に、コラーゲン分解を伴う新生
物細胞による転移における組織侵入もエラスターゼ阻害
により抑えられるであろう。
一部の軟骨が腫瘍細胞および白血球の侵入を固有的に遅
延させるという知見が得られている。
この抵抗性は部分的に、細胞外マ) IJクスの組成、
組織および部面性によるものである。
侵入に対するこの自然防衛は、抗侵入因子(anti−
1nvasive−factor :略してAIF )
と称される抽出可能な軟骨マトリクス化合物に含ま′れ
ているものと思われる。r Bone Metasta
sis J、()、に、 Hall著、Medical
 Publishers、 Boston。
Mass、、 1981 、 l1p153〜154参
照。またその記載を本明細書の一部に含める。このタン
パク混合物中には、一部は精製されている多くのプロテ
アーゼ阻害剤および成長調節因子が存在する。
AIFについての初期の研究は、それが白血球エラスタ
ーゼに対する阻害活性を含むことを示している。従って
、この阻害剤は、転移に対する自然防御を担っているか
もしれないという仮説がたてられている。
本発明において、分析および分取りロマトグラフイおよ
び電気泳動法を用いてAIFのPMN −エラスターゼ
阻害活性を検討した。精製工程は、クロモゲン基質を利
用する白血球エラスターゼ試験を用いて阻害活性を測定
することによりモニターした。特異的PMN−エラスタ
ーゼ阻害剤が単離され、また高い陽イオン特性(9,5
を超えるPI (等電点)および強い疎水性の挙動を有
する15,000ダルトン(5DS−PAGE )のタ
ンパクとして特徴付けられた。
アミン末端配列およびトリブチツクペプチドの配列は、
その他のタンi4りまたはプロテアーゼ阻害剤またはそ
れらのヌクレオチド翻訳に対し相同性を全く示さ、なか
った。検出された配列は、新規阻害剤に極めて特徴的で
あり、 cDNA補乳動物軟骨細胞ライブラリーの探索
および遺伝子のクローニングのためのノ〜イブリダイゼ
ーション・プローブの合成に用いることができる。
本発明はタンノ9りまたはその薬学的に許容し得る塩に
関する。本発明のタン・fりは10.ODD〜30.0
00ダルトンの分子量、95より大きい等電点、 Leu−X−Phe−Asn−Ala−(式中Xは天然
アミノ酸を表わす) で示されるアミノ末端アミノ酸配列、または−Gly−
Ala7Asn−Ala−Val−Asn−で示される
アミノ酸配列を有するトリプシン分解生成物を示す。
本発明のタンノックは、様々な無機および有機酸と共に
塩を形成するが、それら塩も本発明の範叩内にある。、
塩を作ることのできる酸としては、例えばHCl 11
)IBr 、 E2SO4、H3po4、メタンスルホ
ン酸、トルエンスルホン酸、マレイン酸、フマール酸、
およびカンファースルホン酸などが挙げられる。非毒性
の生理学的に許容し得る塩が好ましいが、その他の塩も
(例えば生成物の単離または精製上)有用である。
本発明はまた、そのタンノ母りを抽出法、メンプラン濾
過およびクロマトグラフィ法の組合せを用いて軟骨から
単離することより成る、この精製タン・やりの単離方法
にも関する。
新規PMNエラスターゼ阻害剤が単離される因子は、幼
若動物から層殺後速やかに除去きれる(従って軟骨の血
液汚染は回避される)生臭中隔の細胞外抽出物である。
次いで阻害剤のプロテプーゼ分解を防止すΣために低温
で寸断薄片を食塩水抽出する。この抽出手順を2回反復
し、そして抽出液を、50,000以上のWのサイズ排
除(XM−50)および1000のサイズ排除(tJM
−2)のAm1con ’Membrane ′!i″
用いて行われる濾過により高分子量および低分子量の汚
染物質を分離することによって精製される。
新規阻害剤は、第1のメンプランを移動・通過するが、
第2のメンプランによって保持される。メンプランの閉
塞を避けるには、塩含有量の高い(3M NaCt)緩
衝液中で濾過を行い、次いで’5ephadex G−
25で粗抽出液を脱塩してから@5ephacryl 
S −2D Oでのゲル浸透クロマトグラフィによる分
画にかけるのが有利であることが判明した(第1図参照
)。
競合的で濃度依存性のPMN−エラスターゼ阻害剤は、
10〜40 KDの低分子量画分に見出された。生検切
採中に軟骨の血液汚染が避けられないため、高分子量画
分は、若干の血清アルブミン(分子量:68KD)’t
−含有する。
この少量の血清アルブミンはPMN−エラスターゼをあ
る程度阻害することが示された。次の精製工程まで微量
物質として残るこの汚染物質は、陽イオン交換クロマト
グラフィにより除かれる。 5ephacryl S 
−200カラムの各画分のタンパク含量を、牛血清アル
ブミンを標準として用いる色素結合法(E’io Ra
dタンノ4り・アッセイ)によりアッセイすると共に、
その酵素活性をアッセイした。
PMN−エラスターゼは、Recent Advanc
es InConne’ct’ive Ti5sue 
Re5earCh+ 1986 r Bukhause
’rverlagl Ba5e1. BostOn、 
Stuttgart+ C,Ar5enis。
g、s、−M、A、 Thomarおよびに、E、 K
uettner、 63〜68頁に記載(その記載を本
明細書の記載の一部として含める)されているように、
ヒト好中球か5単離され精製された。それは本質的にカ
テプシ/’−G活性を有していない。その酵素をその天
然基質、例えばタイプ■コラーゲン、不溶性無定形エラ
スチンに対して、また特異釣合酸基質であるメトキシス
クシニル−L −75ニル−L−アラニル−L−プロリ
ル−L−バリル−p−ニトローアニリP(それを用いて
DMS O原液を作った)に対して試験した。The 
Jou’rnalof Biological Che
mistry、 Vol、 254. pp−4’02
7〜4032 * 1979 + K、Nakajim
a、 J、C,Powers。
B、M、’ AsheおよびM、 Zimmerman
参照(その記載を本明細書の記載の一部として含める)
。アリフォートを各測定についてアッセイ用緩衝液で希
釈した。
PMN−エラスターゼ阻害性画分をプールし、緩衝液交
換を打った(20麿ホスフエート、−6、3) ’5e
phadex G−25で脱塩し、そして空隙容量(テ
イドデリューム)をカルブキシ−メチルセルロースカラ
ム(CM ’5ephadex G−50)に吸着させ
庭。塩含有量の低い緩衝液(20mMホスフェート、p
H6,3)で洗浄することにより、微量の血清アルブミ
ンをカラムから放出させた。
塩濃度の高い緩衝液は、 PMN−エラスターゼ阻害剤
を溶出した( 2M NaC4,20mMホスフェート
、−&6)。
カラム溶出液を粗く分画しく2m/)、そして活性画分
をプールし、@8ephadex ()−85で脱塩し
、そして凍結乾燥した。最終的なN製は、逆相様材料を
用いたEPLCで行った。
ステンレス−スチール製カラムに、5ミクロンの粒度お
よび300Xの細孔径を有するジビニルベンゼンとスチ
レンとの共重合体を充填した。この材料はC−18逆相
材料特性を示す。
この材料は、予め行なった試験において、高いタンパク
およびペプチド回収率を与えることが示された。これは
、一般に用いられる逆相材料の製造に用いられるシリカ
上に存在する不可逆的吸収部位が存在しないためである
タンパクまたはペプチドの溶出は、Q〜100チベータ
の直線濃度勾配を用いて行った。使用された移動相は、
ペプチドおよびタンパクが容易に回収される周知の水/
アセトニトリル/トリフルオロ酢酸系であった。第2図
に示されるクロマトグラム1は、イオン交換カラムで精
製された材料の溶出パターンを示す。
各ピークをクロマトグラムの各ターニング・ポイントで
分画することによりマニュアル的に集め、そしてアリフ
ォートのPMN−エラスターゼ阻害をアッセイした。P
MN−エラスターゼ阻害活性は第2図のビーク7および
8に見出された。
ビーク7および8は再度クロマトグラフィにかけた(第
3図に示されるクロマトグラム2参照)。精製物質をP
Mト〜エラスターゼ阻害試験およびアミノ酸および配列
分析に付した。純度は、5D8−PAGE (17チア
クリルアミド)を用いて試験した。
活性はピーク7にのみ見出された。5DS−PAGE(
銀染色手順を3回反復)により、単離された化合物の等
質性が確認された。
遁アリクオー)1−酸化を受けやすいアミノ酸の分解を
防ぐためにフェノールでスA?イキングした6N ’E
C1の蒸気相中で加水分解(11σ6:% 22時間)
した( Waters As5ociatesのPi 
co−Tagシステム)。
Millipore Waters Chromato
graph DivisionApplication
 5heet T85/81505 19B4年8月、
S、A、Cohen、 T−L、 Tarvin、 B
、A、 BilingB111n参照(その記載を本明
細書の記載の一部に含める)。
その加水分解物f Beckman Am1no Ac
1dAna17Ser 6300のスタート用緩衝液に
溶解し、そしてオルトフタルジアルデヒドによるカラム
後誘導体形成および螢光モニタリング(励起一356n
、発光450nm)  を用いた標準的方法を用いて分
析した。
この方法は、第一級アミンに対しては高い感度を示すが
、第二級アミンに対しては全く感応しない。それ故ヒス
チジンを分析できず、従って新規阻害剤のヒスチジン残
基の数は目下のところ測定できない。
明白な理由から10〜15チの幅で変動し得るPMP−
エラスターゼ阻害剤のアミノ酸分析は次のとおりである
軟骨由来15,000ダルトンエラス ターゼ阻害剤のアミノ酸分析 Cys      6.8 Asp     16.8 Thr      7.6 Ser      5.8 Glu     IQ、4 Gly      7.8 残基     個数/分子 Ala         1Q、4 Val        4.I Met           1.0 工le2.0 Leu     ’  12−2 Tyr        !L8 Phe        5.O Hi s            −−−−Lys  
     37.4 Arg       16.6 配列分析は、Beckman 890M 5equen
cerで供給元のプログラムのレビジョンC’)用いて
行った。遊離されたフェニルチオヒダントイン−アミノ
酸(PTH)は、粒度5ミクロンの逆相材料(C−18
)で充填されたAltex Ultrasphere 
ODSカラム(4,6x250m)を装着したWate
rsシステムでのHPLC分析を用いて同定された。
ステップ濃度勾配および使用緩衝液は、適合化のために
マイナーな変更を加えたほかは、基本的にAnd、 B
iochem、 120 、 !102〜311 、 
(1982)D、 Hawke、 Pan−Mian 
Yuan、 J 、E、 5hilveyに記載のもの
とした(その記載を本明細書の記載の一部に含める)。
シーケンサ−からI(PLO同定システムへのPTHの
マニュアル式移動t−モニターするための内標単として
、転化後にジエチルフタレートをFTHに添加した。U
、V、モニタリングは265 nmで行った。
新規阻害剤のアミン末端配列は、次のとおりである。
151゜ )1−Lys−X−Pha−Lys−Val−Asp−
Val−Leu−Ala−AlaLeu−X−Phe−
Asn−Ala −(式中、Xはいずれの天然アミノ酸
であってよいが、好ましくはグリコジル化部位であり得
る残基、例、1jL−セリン、L−スレオニン、L−グ
ルタミン、L−アスノぞラギンなどであり、あるいは任
意の翻訳後修飾アミノ酸例えばトリメチルリジンまたは
γ−カルデキシグルタミン酸などである) Xについては、この配列位置にこの分解工程ではペプチ
ドから遊離することのない半一シスチンが存在すること
から、Xの同定が困難となる可能性がある。
約2DマイクログラムのPMN−エラスターゼ阻害剤全
0.2マイクログラムのTRCK−)リプシンを用いた
トリプシン消化にかけた。全消化物i HPLc−カラ
ムに注入し、そしてスワロ−スリーブ(swallow
 5loped ) 111度勾配を用いて溶出して第
4図に示されるクロマトグラム3を得た。
ピーク全マニュアル的に集め、そして斜線を施したピー
クを直接配列決定して次の結果を得た。
Gly−Ala−Asn−Ala−Val−Asn =
−本発明によるポリペプチドは、非経腸的に、例えば皮
下的にまたは静脈内に、あるいは粘膜を介して例えば経
鼻的にまたは経皮的に用いることができる。
非経腸投与用量は、疾病のタイプにもよるが、101〜
50■/′In2体表面積7日である。重症の場合には
未だ毒性がみられないことから、それを増加することも
できる。
特に重症のときは、1週間あたり数回の投与を数週間に
わたって行うことが推奨される。特別な吸収特性の結果
経鼻投与用量は相応に高くする必要がある。
皮下、静脈内、または経鼻投与には、本発明化合物また
はそれらの生理学的に許容し得る塩を、所望により慣用
物質例えば可溶化剤、乳化剤またはその他の助剤と共に
、溶液、懸濁液または乳濁液、に変える。
新規活性化合物および相当する生理学的に許容し得る塩
に対して可能な溶媒例は次のとおりである:水、生理学
的食塩水またはアルコール、例えばエタノール、ゾロノ
4ンジオール、またはグリセロール、および糖溶液、例
えばグルコースまたはマンニトール溶液、または前述の
各種溶媒の混合物。
非経腸投与は例えば外部のまたは植込みの計量供給装置
、例えば自動ポンプを用いてまたは連続滴注の形態で行
うこともできる。この場合、変性に対して安定化させる
化合物、例えば欧州特許出願第18609号に記載(そ
の記載を本明細書の記載の一部に含める)の化合物を添
加するのが有利である。
本発明化合物は、徐放作用を有する医薬の形で投与する
こともできる。注射液の場合、このような徐放作用は、
例えば医薬を油性ビヒクル中に溶解または懸濁し、粘度
を増加し溶存医薬の拡散を遅延させる高分子を添加し、
医薬を適当な担体分子例えば水酸化アルミニウムに吸着
させ、または結晶懸濁液を用いることによって達成でき
る。
分析されたアミノ酸配列に基づいて、これらプローブを
用いて比較的厳密でない条件下にゲノムまたはcDNA
遺伝子ライブラリーを探索する場合、カルテリン遺伝子
とハイブリダイズするプローブを構築することができる
。その後に、同じか、または異なるプローブを用いてよ
り厳密な条件下に陽性クローンを探索すれば、カルテリ
ンをコードする完全なりNAまたはその実質的部分を含
む少数のクローンが得られる。後者の場合、この部分D
NA配列を用いた新しい探索により、完全なりNA配列
が得られる。
プローブ1 : Phe−Lys−Val−Asp−V
alTTCAAA  GTA  GACGTGCT 14マープローブ、62倍縮退 プローブ2 : Asn−Ala−Val−AsnAA
CGCA  GTA  AA CC G T 14マープp−ブ、32倍縮退 プ筒−ブ3 : Phe−Lys−Val−Asp−V
al−LeuTTCAAA GT工GAC()’r工C
TIG 18マー、8倍縮退 「縮退」は、哺乳動物について知られているコード用法
を考慮することにより更に減少させることができる。
例えば、任意の所望のアミノIll任意の所定のアミノ
酸と交換できるホスファイト法などにより合成遺伝子を
作ることによってカルテリンの様々なバリエーションを
構築することができる。すなわち、アミノ末端アミノ酸
配列の遺伝子において、Xは任意の遺伝子的にコード可
能なアミノ酸、好1しくはSer %Thr 、 Gl
n 1Cys 1 ftはAsn%特に好ましくはSe
rのコrンであってよい。
同様に1遺伝子的にコード可能なアミノ酸の欠失または
挿入も可能である。
当業者であれば本明細書の教示に照らして、本発明の教
示を特定の課題または状況に適用できることは理解され
たい。以下の実施例は、本発明の代表例ではあるが、そ
れらを限定するものではない。
実施例 1 粗抽出物の調製 18月令の牛の鼻中隔から調製された新鮮な硝子軟骨の
スライスを5客(重/容)の食塩水、(I M NaC
t、 0.05M酢酸ナトリウム、pH5,8:24時
間:4℃)で抽出した。その抽出液を組織から傾瀉し、
2枚のガーゼを通して濾過し、NaC4の添加により5
MNaCtに調節し、そしてXM−50メンプランを用
いて、20 psiおよび4℃でAm1con 濾過に
より精製した。その限外ろ液’iUM−2メンプランに
対し40 psiおよび4℃で加圧した。そのUM−2
残渣を食塩水([]、55MNaC4,2o mM T
ris pct 、 pl(7,3)で2回洗浄した。
実施例 2 ゲル濾過クロマトグラフィ 前記粗抽出物を”5ephadex o−25(I X
 10cIrL)カラムで濃縮しく 0.5NaCt、
  20mM Tris HCl1pH7,3) 、そ
して空隙容量ピークを分析用(1x150cIrL)の
’5ephacryl S −200カラムでのクロマ
トグラフィにかけた。溶出液の各両分(Illll)の
タンパク(Bio−Rad Protein As5a
y)およびPMN−エラスターゼ阻害活性をアッセイし
、そして低分子量(10〜40KD)の活性画分をプー
ルした。
実施例 3 陽イオン交換クロマトグラフィ ’5ephadex G−25(1X 10crIL)
カラムで緩衝液交換(20mMホスフェート、pH6,
3)t−行い、そして空隙カラムビークを短いカルブキ
シ−メチル−セルロース(CM−■5ephadex 
G−5Q )カラムに給送した。その方ラムをカラムの
6倍容のホスフェート緩衝液で洗浄し、そして食塩水(
IM NaC2,,20mMホスフェート、pH6,3
)で溶出した。分画された溶出液(6酎〕のタンパク含
量および酵素活性をアッセイした。活性画分全プールし
、そして23 mMホスフェート(−46,3)i用い
て■5ephadex G−2’iで脱塩した。
実施例 4 阻害アッセイ 60マイクロリツトル(2,5〜15マイクログラムの
タンノぐり/1)のPMN−エラスターゼを96穴式プ
レートに注ぎ、70マイクロリツトルのサンプルを添加
しそして30’Cで60分間インキュベートした。10
0マイクロリツトルの基質(メトキシ−スクシニル−L
−アラニル−L−アラニル−L−プロリル−L−バリル
−p−ニトロアニリド)のDM、SO浴溶液添加後、2
0 rm4 Trisおよび500 mM 、NaCt
より成る緩衝溶液(pH7,3) ’、r:用いて3 
mMまで希釈した(最終DMSO濃度10%)。分裂バ
ラニトロアニリドの405 nmにおける吸収をモニタ
ーし、そしてゼロ時間値と対比することにより反応をフ
ォロ−した。酵素量を様々に変えることにより、半定量
的関係を得た。
実施例 5 HPLC分析 粒度゛5ミクロンおよび300Aの細孔径のPLRP材
料(Polymer Labs LTS Amhers
t、 MA)で充填された4、6X250mzカラムを
装着したWaters As5ociates Sys
temでEIPLCTh行った。
カラム流出液(117分)を216 nmでモニターし
た。移動相の構成は、次のとおりとした。
A:10%アセトニトリル/水中の0.1%トリフルオ
ロ酢酸(TFA)。
B:90チアセトニトリル/水中のcL1チTFA 。
濃度勾配は傾きが1係/分とする直線とした。
実施例 6 トリプシン消化 PMN、、壬うスターゼ阻害剤の100マイクロリット
ルのCL2Nメチルモルホリン−アセテート緩衝液(p
H&1)中の溶液を、a2マイクログラムのTos−P
hs−CE2C!を処理トリプシン(Merck社)を
含有する10マイクロリツトルの緩衝液と混合し、そし
て37℃で5時間インキュベートした。反応を凍結によ
り停止させた。そのトリプチツクペゾチPt?、0〜1
00チペータ(傾き15チ/分)の濃度勾配を用いてH
PLCで分離した。
本発明の方法と物に対して様々な改変を加えることがで
きることは、当業者にとって明らかであろう。すなわち
、本発明は、本発明の改変が特許請求の範囲内、または
その均等の範囲内にある限り、それらの改変を包含する
ものである。
【図面の簡単な説明】
第1図は、5ephacryl 8−200における、
PMN −エラスターゼ阻害剤粗抽出物の溶出プルフィ
ールである。阻害活性は、画分75を中心とする低分子
域の溶出タン/4’り中に認められた。 第2図は、 PLRP−カラムにおけるカルボキシ−メ
チル−セルロース精製画分の逆相EPLC。 各ピークをマニュアル的に集め阻害活性をアッセイした
ところ、活性はピーク7および8に認められた。 第3図は、前記クロマト夛ラム(第2図)のピーク7お
よび8の再クロマトグラフィ。競合的阻害活性はピーク
1に認められた。 第4図は、活性画分のトリプシン消化物の逆相BPLC
,全消化物をカラムに注入しそしてピークラマニュアル
的に集めた。斜線部のピークについて配列決定した。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1)10,000〜30,000ダルトンの分子量、9
    .5より大きい等電点、および ▲数式、化学式、表等があります▼ (式中Xの各々は同一であるかまたは異なつていてもよ
    く、そして各々は天然アミノ酸を表わす) で示されるアミノ末端アミノ酸配列を有し、または −Gly−Ala−Asn−Ala−Val−Asn−
    で示されるアミノ酸配列を有するトリプシン分解生成物
    を与えるタンパクまたはその薬学的に許容し得る塩。 2)12,000〜20,000ダルトンの分子量を有
    する特許請求の範囲第1項記載のタンパクまたはその薬
    学的に許容し得る塩。 3)14,000〜18,000ダルトンの分子量を有
    する特許請求の範囲第1項記載のタンパクまたはその薬
    学的に許容し得る塩。 4)約15,000ダルトンの分子量を有する特許請求
    の範囲第1項記載のタンパクまたはその薬学的に許容し
    得る塩。 5)XがSer、Thr、Glu、AsnおよびCys
    より成る群より選択される特許請求の範囲第1ないし4
    項のいずれか1項に記載のタンパクまたはその薬学的に
    許容し得る塩。 6)XがSerを表わす特許請求の範囲第1ないし5項
    のいずれか1項に記載のタンパクまたはその薬学的に許
    容し得る塩。 7)ラジカルXのいずれか一方または両方がグリコシル
    化されている特許請求の範囲第1ないし6項のいずれか
    1項に記載のタンパクまたは薬学的に許容し得る塩。 8)アミノ酸分析が Cys 6.8±15% Asp 16.8±15% Thr 7.6±15% Ser 5.8±15% Glu 10.4±15% Gly 7.8±15% Ala 10.4±15% Val 4.1±15% Met 1.0±15% Ile 2.0±15% Leu 12.2±15% Tyr 3.8±15% Phe 5.0±15% Lys 37.4±15% Arg 16.6±15% である、特許請求の範囲第1ないし7項のいずれか1項
    に記載のタンパクまたはその薬学的に許容し得る塩。 9)アミノ酸分析が Cys 6.8±10% Asp 16.8±10% Thr 7.6±10% Ser 5.8±10% Glu 10.4±10% Gly 7.8±10% Ala 10.4±10% Val 4.1±10% Met 1.0±10% Ile 2.0±10% Leu 12.2±10% Tyr 3.8±10% Phe 5.0±10% Lys 37.4±10% Arg 16.6±10% である、特許請求の範囲第1ないし7項のいずれか1項
    に記載のタンパクまたはその薬学的に許容し得る塩。 10)特許請求の範囲第1ないし9項のいずれか1項に
    記載の精製タンパクの単離方法であつて、そのタンパク
    を、抽出法、メンブラン濾過およびクロマトグラフィ法
    の組合せを用いて軟骨から単離し、場合によりそのタン
    パクを酵素的に分解し、そして場合により得られたタン
    パクをその生理学的に許容し得る塩に変えることより成
    る前記単離方法。 11)特許請求の範囲第1ないし9項のいずれか1項に
    記載のタンパクの医薬としての使用。 12)PMNエラスターゼ阻害のための特許請求の範囲
    第1ないし9項のいずれか1項に記載のタンパクの使用
    。 13)肺気腫、慢性気管支炎、嚢胞性繊維症、気管支拡
    張症、成人呼吸窮迫症候群、アテローム性動脈硬化症、
    関節炎、乾癖、脈管炎、糸球体腎炎、グラム陽性菌性敗
    血症関連消費性凝固障害、および白血病の治療のための
    特許請求の範囲第1ないし9項のいずれか1項に記載の
    タンパクの使用。 14)6個またはそれ以上のアミノ酸より成る、特許請
    求の範囲第1ないし4項のいずれか1項に記載のタンパ
    クまたはその薬学的に許容し得る塩の酵素的ペプチド分
    解生成物。
JP62187881A 1986-07-30 1987-07-29 新規な軟骨由来の白血球エラスタ−ゼ阻害剤 Pending JPS6348299A (ja)

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