JPH07149796A - Htlv−iii dnaのクローニングおよび発現 - Google Patents

Htlv−iii dnaのクローニングおよび発現

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JPH07149796A
JPH07149796A JP6098231A JP9823194A JPH07149796A JP H07149796 A JPH07149796 A JP H07149796A JP 6098231 A JP6098231 A JP 6098231A JP 9823194 A JP9823194 A JP 9823194A JP H07149796 A JPH07149796 A JP H07149796A
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iii
dna
cdna
polypeptide
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Nancy T Chang
ナンシー・ティー・チャン
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Abstract

(57)【要約】 【目的】 HTLV−III DNAのクローニングに
基づいて、エイズの診断、治療および予防に有用な方法
を提供する。 【構成】 HTLV−III cDNAを含む組換えベ
クターを用いて形質転換した細胞により発現される免疫
反応性HTLV−IIIポリペプチド、該ポリペプチド
の製造方法、HTLV−III遺伝子をコードする単離
されたcDNA、HTLV−IIIウイルスに特異的な
HTLV−IIIゲノムの部分と本質的に相同であるD
NA配列からなるDNAプローブ、およびHTLV−I
IIポリペプチドが少なくとも1つの他のポリペプチド
に結合してなるハイブリッドタンパク質。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は分子生物学およびウイル
ス学の分野、特にヒトT細胞白血病ウイルス−III型
(HTLV−III)に関する。
【0002】
【従来の技術】ヒトT細胞白血病−リンパ腫ウイルス
(HTLV)という用語は、T細胞トロピックレトロウ
イルスの特定の属を意味する。これらのウイルスはある
種のT細胞新生物の発生において重要な役割を演ずる。
現在、3つの型のHTLVが知られている。この属の1
つの亜属であるHTLV−I型(HTLV−I)は、日
本、カリブ海沿岸およびアフリカのある地域に発生する
成人T細胞白血病−リンパ腫(ATLL)の原因と関係
がある。HTLV−II型(HTLV−II)は毛状細
胞白血病のT細胞変異型をもつ患者から単離された。
M.ポポビック(Popovic)らの「エイズおよず
プレエイズ患者からの細胞変性レトロウイルス(HTL
V−III)の検出、単離および連続生産」、サイエン
224:497−500(1984)を参照された
い。
【0003】HTLV−III型(HTLV−III)
は後天性免疫不全症候群(AIDS,エイズ)にかかっ
た多数の患者から単離された。HTLV−IIIはエイ
ズ患者から単離されたプロトタイプのウイルスである。
このエイズに対して最も危険な立場にあると報告された
人々には、同性愛または両性愛の男性、静脈内薬物使用
者および米国のハイチ人移民が含まれる。提供者から集
めた血液製剤を受容する血友病患者および頻繁に輸血を
受ける人々も危険な立場にある。エイズの臨床上の症状
は、一般にヘルパーTリンパ球の減少をともなう今だ解
明されていない恐ろしい免疫不全を包含する。これらは
悪性腫瘍および感染症をともなうことがある。エイズ患
者の死亡率は高い。あまり恐ろしくない型のエイズも存
在し、これはリンパ腫および低下したヘルパーT細胞数
をともなうことがあるが、成熟したエイズの破壊的症状
を示さない。これらの徴候を呈する初期エイズ(プレエ
イズ)患者も多数存在する。これらの人々のなかで誰が
一層恐ろしい症状へ進行するかを予言することは今のと
ころ不可能である。
【0004】伝染性エイズの病因としてHTLV−II
Iが含まれることは多くのことから証明されている。第
一に、首尾一貫した疫学が存在し、すなわちエイズ患者
の95%以上がHTLV−IIIに対して特異的な抗体
を有する。第二に、この病気において再現できるウイル
スの同定および単離がなされ、HTLV−IIIの10
0種以上の変異型がエイズ患者から単離された。第三
に、エイズに感染した血液提供者から輸血を受けた正常
な健康人がエイズに感染する。
【0005】HTLV−IIIはHTLV−IおよびH
TLV−IIといくつかの特性を共有するが、形態学
的,生物学的および抗原的に区別し得ることがわかっ
た。R.C.ガロ(Gallo)らの「危険な状態にあ
るエイズ患者からの細胞変性レトロウイルスの検出およ
び単離」、サイエンス224:500−503(19
84)を参照されたい。例えば、HTLV−IおよびH
TLV−IIのコアタンパク質p24およびp19、な
らびにエンベロープ抗原に対する抗体との交差反応性を
証明するか、あるいはクローニングしたHTLV−Iお
よびHTLV−IIのDNAとの核酸交差ハイブリダイ
ゼーション実験を行うことにより、HTLV−IIIが
HTLV−IおよびHTLV−IIと抗原的に関係のあ
ることがわかった。しかしながら、HTLV−Iおよび
HTLV−IIと異なって、HTLV−IIIは正常人
の臍帯血液および骨髄からのT細胞にインビトロで感染
しかつそれを形質転換する能力を欠いており、感染細胞
に対してのみ細胞変性作用を有していた。
【0006】他のレトロウイルスのRNAゲノムと同様
に、HTLV−IIIのRNAゲノムはウイルスタンパ
ク質をコードする3つの遺伝子を含んでいる:すなわち
1)内部構造(ヌクレオカプシドまたはコア)タンパク
質をコードするgag遺伝子;2)RNA依存性DNA
ポリメラーゼ(逆転写酵素)をコードするpol遺伝
子;および3)ウイルス粒子のエンベロープ糖タンパク
質をコードするenv遺伝子。さらに、HTLV−II
Iゲノムはenv遺伝子と3′側LTRとの間に位置す
るPxと呼ばれる領域を含んでおり、これはウイルスの
機能的死亡と関連があるように思われる。
【0007】現在のところ、エイズの症状が現われる以
前にエイズを診断することはまだ困難である。この病気
の予防に利用できる方法も目下のところ存在しない。一
般にエイズ患者の治療は成功せず、そしてHTLV−I
IIが身体に及ぼす破壊的作用に多数の犠牲者が出てい
る。
【0008】
【発明が解決しようとする問題点】本発明は、免疫反応
性HTLV−IIIポリペプチドを発現できる組換え体
/ベクター宿主系内でのHTLV−III DNAのク
ローニングに基づいている。免疫反応性ポリペプチドを
発現する系内でのHTLV−III DNAのクローニ
ングに基づいて、本出願人はエイズの診断、治療および
予防に有用な方法を開発した。本出願人は体液(例えば
血液、唾液、精液)中のHTLV−IIIおよびその抗
体を検出する方法、ならびに免疫療法(例えばエイズの
予防接種や受動免疫)において有用な方法を開発した。
さらに、本出願人は体液中のHTLV−IIIの検出に
有用なHTLV−III DNAプローブおよびRNA
プローブの作製方法を開発した。
【0009】HTLV−IIIゲノムのセグメントによ
ってコードされるポリペプチドは、これらの組換えDN
A法を使って生産した。例えば、HTLV−IIIゲノ
ムの3つの領域(env遺伝子配列、env−lor遺
伝子配列、およびHTLV−III cDNAからの
1.1KbのEcoRI制限断片)によってコードされ
るポリペプチドを生産した。発現されたポリペプチドは
単離した。これらのポリペプチドはエイズ患者の血清お
よびHTLV−IIIに対する抗体と免疫反応性であ
り、従ってHTLV−IIIに対する抗体の有無につい
て血液およびその他の体液をスクリーニングするのに有
用である。それ故、本発明はエイズの診断方法ばかりで
なく、HTLV−IIIを含む血液または血液成分を通
じて他の人々へのこの病気が伝染するのを予防する方法
をも提供するものである。特に後者は、血液成分(例え
ば血友病の治療のための第VIII因子;第IX因子)
を得るために提供された血液を輸血または使用するに先
立って、その血液をスクリーニングするのに価値があ
る。
【0010】組換えDNA法によって生産されたポリペ
プチドは、このウイルスに対する抗体(モノクローナル
抗体を含む)の生産に利用できる。この種の抗体は血
液、唾液、精液などの体液中のHTLV−IIIを直接
検出するためのイムノアッセイおよび診断技術の基礎を
なすものである。このウイルスに対する中和抗体は、こ
の病気に対して受動免疫を与えるのに使用できる。
【0011】このような組換え体/ベクター宿主系内で
のHTLV−III DNAのクローニングは、さらに
HTLV−III DNAのヌクレオチド塩基配列を決
定するための基礎を提供する。DNAプローブはHTL
V−IIIゲノムに特異的なDNA領域と相同であり、
これらのDNAプローブは血液、唾液または他の体液中
のHTLV−IIIを検出する別の方法を提供する。H
TLV−IIIゲノムに特異的な領域を含むRNAプロ
ーブも作製され、体液中のHTLV−IIIの検出に使
用される。
【0012】
【問題点を解決するための手段】HTLV−IIIとH
TLV−ウシ白血病ウイルス(BLV)属の他のウイル
スとの間の類似性にもかかわらず、HTLV−IIIの
生物学および病理学は実質的に異なっている。例えば、
比較的乏しい相同がHTLV−Iまたは−IIゲノムの
それと比較したときHTLV−IIIゲノムに見られ
た。HTLV−IIIによる感染はしばしば強い免疫抑
制(エイズ)をもたらし、その結果OKT4(+)細胞
集団の減少をきたす。この作用はインビトロでのリンパ
球培養において、OKT4(+)細胞へのHTLV−I
II感染の、形質転換作用というよりむしろ、著しい細
胞変性作用によって反映される。これとは対照的に、H
TLV−Iによる感染はT細胞白血病−リンパ腫(OK
T4(+)細胞の悪性化)の低い発生率をもたらす。H
TLV−I患者の場合もある程度の免疫不全を示す。H
TLV−Iおよび−IIによる一次リンパ球培養物の感
染は、主にOKT4(+)細胞のインビトロ形質転換を
引き起こす。リンパ球へのHTLV−I感染の細胞変性
作用は明らかに起こるが、HTLV−IIIの場合に観
察されるものほど顕著な細胞変性作用ではない。
【0013】HTLV−IIIはさらにインビボおよび
インビトロでの伝染性ウイルス粒子生産の程度において
もHTLV−Iおよび−IIと異なっている。細胞不含
の高力価伝染性ウイルス粒子はエイズ患者の精液および
唾液、ならびにHTLV−IIIを感染させた培養物の
上清から得ることができる。成人T細胞白血病−リンパ
腫(ATLL)患者またはHTLV−Iもしくは−II
を感染させた培養物からは、もし存在するとしても、き
わめて少数の細胞不含伝染性ウイルス粒子を回収できる
にすぎない。
【0014】エンベロープ糖タンパク質はエイズ患者の
抗血清によって認識される主な抗原である。この点で、
HTLVは他のレトロウイルスと類似しており、そのた
めにエンベロープ糖タンパク質は一般に最も抗原的なウ
イルスポリペプチドである。さらに、中和抗体は一般に
レトロウイルスのエンベロープ糖タンパク質に対して向
けられる。エイズ患者からの血清試料の88〜100%
はHTLV−IIIの抗原と反応する抗体を含むことが
見出され、主な免疫反応はHTLV−IIIの推定上の
エンベロープ抗原であるp41に対して向けられた。コ
アタンパク質に対する抗体もエイズ患者の血清に見出さ
れたが、エンベロープ抗原に対する抗体の存在ほど感染
指示剤として有効であるとは思われない。
【0015】HTLV−IIIのp41抗原は、ウイル
スエンベロープがウイルスの不活化および精製過程で部
分的に破壊されるので、その性状決定が難しかった。本
発明はHTLV−IIIウイルスのの抗原成分の性状を
決定しかついくつかの方法で他のウイルス抗原成分の存
在および特性を決定するという大いなる要求に答えるも
のである。それはHTLV−IIIポリペプチド、その
ポリペプチドに対する抗体、RNAプローブおよびDN
Aプローブのような産物を提供し、またそれらの生産方
法も提供する。これらはスクリーニング、診断および治
療を行う際に役立つ。
【0016】本発明は、HTLV−IIIタンパク質を
コードする組換えDNA塩基配列の翻訳によって生産さ
れるHTLV−IIIポリペプチドに関する。この方法
で生産され、エイズ患者からの血清またはHTLV−I
IIに対する抗体と免疫反応性のポリペプチドは、組換
えDNA−生産による免疫反応性HTLV−IIIポリ
ペプチドと称される。これらにはHTLV−IIIコア
タンパク質およびエンベロープ糖タンパク質をそれぞれ
コードするgagおよびenvDNA配列に特異的な組
換えDNA配列の翻訳によって生産される抗原HTLV
−IIIコアポリペプチドおよびエンベロープポリペプ
チドが含まれるが、これらに限定されない。それらはま
たHTLV−III cDNAの1.1KbのEcoR
I制限断片に含まれる組換えDNA配列の翻訳、および
HTLV−IIIのsor遺伝子およびPx遺伝子に特
異的な組換えDNA配列の翻訳によって生産されるポリ
ペプチドをも包含する。sorDNA配列は複製感応H
TLV−IIIウイルスに共通している。Px遺伝子は
HTLV−IIIゲノムのenv遺伝子と3′末端との
間に位置し、1つの大きな読み取り枠を有するコーディ
ング配列(lor)を含む。envDNA配列とlor
DNA配列とは共にHTLV−IIIゲノムの同じ読み
取り枠内に位置するため、この遺伝子領域はenv−l
orと称される。
【0017】HTLV−IIIのこれらの領域によりコ
ードされるポリペプチドは、HTLV−III感染およ
びHTLV−IIIに対する抗体を検出する免疫化学検
定法において使用することができる。これらの方法はエ
イズを診断する際に役立つ。さらに、これらは血液成分
(例えば血友病の治療のための第VIII因子)の輸血
または生産のために血液を使用するのに先立って、その
血液をスクリーニングする際にも利用できる。スクリー
ニング技術の利用可能性はエイズ伝染の危険を減ずるで
あろう。
【0018】ポリペプチドと反応する抗体の検出は多く
の確立された方法によって実施できる。例えば、免疫反
応性HTLV−IIIポリペプチドをポリスチレンビー
ズや他の固体支持体のような固相に付着させる。次にそ
の固相をHTLV−IIIに対する抗体について試験し
ようとする血液試料とインキュベートする。適当なイン
キュベーション期間の経過後固相と血液試料とを分離す
る。固相に結合した抗体は、標識ポリペプチドまたはヒ
ト免疫グロブリンに対する標識抗体を用いて検出でき
る。
【0019】HTLV−IIIポリペプチドはエイズの
ワクチン予防にも使用される。このウイルスに対する予
防接種のためには中和抗体を誘導する免疫原性ポリペプ
チドが利用されるであろう。その第一の候補はウイルス
エンベロープポリペプチドである。
【0020】これらのポリペプチドはHTLV−III
ポリペプチドに対する抗体(モノクローナル抗体を含
む)の生産にも使用できる。これらの抗体は体液(血
液,唾液,精液など)中のウイルスを直接検出する免疫
化学検定法において使用される。特異的HTLV−II
I抗原決定基に対するモノクローナル抗体を使用する検
定法は、偽陽性の結果を減少させることによってウイル
ス検定の正確さを改善するであろう。また、ウイルスに
対する抗体は免疫療法にも利用でき、例えばウイルスに
対する受動免疫を与えることができる。
【0021】ポリペプチドの生産方法、ならびにこれら
のポリペプチドに基づく診断方法も本発明の主題であ
る。
【0022】さらに、本発明は免疫反応性ポリペプチド
をコードするHTLV−IIIの遺伝子の単離方法;こ
れらの遺伝子のヌクレオチド塩基配列の同定方法;ウイ
ルスRNAを生産させるべく適当なベクター内へのウイ
ルスDNAに特異的なDNA配列の導入方法、およびD
NAプローブの作製方法を提供する。これらのプローブ
はHTLV−III DNAに特異的な塩基配列で構成
され、例えば血液のような体液中の相補的HTLV−I
II DNA配列を検定するのに有用である。 HTLV−IIIポリペプチド 免疫反応性HTLV−IIIポリペプチドをコードする
HTLV−III DNAのセグメントを単離するため
に、遺伝子操作法が使用される。これらのポリペプチド
はエイズ患者からの血清またはHTLV−IIIに対す
る抗体と免疫反応性であり、これらにはコアタンパク
質、HTLV−III DNAの1.1Kb EcoR
I制限断片によりコードされる15Kdのペプチド、お
よびエンベロープ糖タンパク質が含まれる。これらの方
法はまたポリペプチドをコードする断片の塩基配列決定
にも使用できる。宿主細胞DNA内に組み込まれたプロ
ウイルス遺伝子は分子的にクローニングされ、そしてク
ローニングされたプロウイルスのヌクレオチド塩基配列
を決定する。
【0023】HTLV−III DNAの大腸菌発現ラ
イブラリーを作製する。HTLV−IIIゲノムをクロ
ーニングし、その後制限酵素を用いてクローニングした
HTLV−IIIゲノムを切断し、それによりDNA断
片を得る。(第1図および第2図を参照されたい。)約
200〜500bpのHTLV−III DNA断片を
アガロースゲルから単離し、T4 ポリメラーゼで末端修
復し、そしてリンカーDNAに連結させる。リンカー連
結DNAを次に制限酵素で処理し、アガロースゲルから
精製して発現ベクター内でクローニングする。使用する
発現ベクターの例はompA,pIN(A,Bおよび
C)、ラムダpL,T7,lac,Trp,ORFおよ
びラムダgt11である。さらに、pSV28pt,p
SV2neo,pSVdhfrおよびVPVベクターの
ような哺乳動物細胞、ならびにGALIおよびGAL1
0のよう酵母ベクターも使用できる。
【0024】細菌ベクターはlacコーディング配列を
含み、この中にβ−ガラクトシダーゼ融合タンパク質を
生成させるためにHTLV−III DNAを挿入す
る。次に、この組換えベクターを細菌(例えば大腸菌)
内に導入する(HTLV−III DNAを含むベクタ
ーを取り込んだこれらの細胞は形質転換されたと言われ
る)。その後、融合タンパク質を発現する形質転換細胞
を同定するために、これらの細胞をスクリーニングす
る。例えば、細菌をマッコンキー(MacConke
y)寒天平板に置いてクローンの表現型を確かめる。も
しβ−ガラクトシダーゼが生産されているならば、コロ
ニーが赤く見えるだろう。
【0025】また、細菌コロニーはHTLV−III
DNAプローブを用いてスクリーニングすることによ
り、興味あるDNA領域(例えば、HTLV−III
gag,polおよびenv DNA配列)を含むクロ
ーンを同定できる。DNAプローブを用いたスクリーニ
ングにおいて陽性であり、かつマッコンキー寒天平板に
おいて陽性であるクローンを単離する。
【0026】HTLV−III DNA配列を含む細胞
の同定は、HTLV−III特異的抗体と免疫反応性で
あるHTLV−IIIポリペプチドの生産を可能にす
る。選択されたコロニーからの細胞は、ハイブリッドタ
ンパク質を発現させる条件下に培養して増殖させる。そ
の後、当分野で知られた方法により細胞タンパク質を得
る。例えば、培養物を遠心分離し、得られた細胞沈殿物
を破壊する。宿主細胞によって分泌されたポリペプチド
を細胞培養物の上清から(細胞を破壊することなく)得
ることもできる。
【0027】全細胞タンパク質はSDSポリアクリルア
ミドゲル電気泳動を行うことにより分析する。他のタン
パク質を全く含まないゲル上の一箇所で融合タンパク質
を同定する。また、ウェスターンブロット分析が陽性の
クローンに対して行われる。このような分析はエイズ患
者からの血清を用いて行われ、その結果HTLV−II
I特異的抗体と交差反応するHTLV−III−β−ガ
ラクトシダーゼ融合タンパク質(抗原)を発現するクロ
ーンを同定することが可能になる。
【0028】HTLV−III DNAを含むラムダ10
クローンはウイルスの複製型からクローニングされる。
レトロウイルスが複製するとき、二重鎖DNAが生産さ
れる。クローニングされたHTLV−III DNAは
制限酵素SstIで消化する。(図1.a参照)HTL
V−III DNAのLTR内に2つのSstI認識部
位が存在するので、ラムダ10ベクターから取り出された
クローン化DNA配列には一方のLTR領域が存在しな
い。その結果、HTLV−III DNAの小さな(約
200bp)断片が欠失する。
【0029】得られたDNAを線状化し、env遺伝子
領域を含む線状ゲノムDNAを制限酵素で消化していく
つかの断片を得る。例えば、図1.bに示すようにKp
nまたはEcoRIプラスHindIIIを使って断片
をつくる。得られた2.3Kb KpnI−KpnI断
片;1.0Kb EcoRI−EcoRI断片;および
2.4Kb EcoRI−HindIII断片はゲル電
気泳動および電気溶出により単離する。これらの断片を
ランダムにせん断してさらに小さい断片をつくる。こう
して得られた断片はアガロースゲルから分離し、そして
約200〜500bpのDNA断片を溶出する。
【0030】溶出された200〜500bp DNA断
片は大腸菌T4 ポリメラーゼの使用により末端修復し、
そして平滑末端を読み取り枠発現(ORF)ベクター
(例えばpMR100)に連結させる。この連結はpM
R100ベクターのSmaI部位で起こり、pMR10
0ベクターは2つのプロモーター領域、ラムダCI遺伝
子のハイブリッドコーディング配列およびlacI−l
acZ遺伝子融合配列を含む。このベクターにおいて、
これらは読み取り枠の塩基配列からはずれており、その
結果このベクターは非生産性である。HTLV−III
DNAをこのベクターに挿入することにより、正しい
DNA断片が読み取り枠を修正し、その結果CI−HT
LV−III−β−ガラクトシダーゼ融合タンパク質が
生産されるだろう。このハイブリッドの発現はlacプ
ロモーターの制御下にある。pMR100の塩基配列に
基づくと、SmaI部位にクローニングされたDNA断
片挿入物がラムダCI遺伝子断片とlac−Z断片との
間に適当な読み取り枠を生ずる場合、その挿入DNAは
ラムダCI遺伝子の枠により定められる読み取り枠に停
止コドンを含むべきでないと考えられる。
【0031】次いで、組換えpMR100ベクターを大
腸菌の中に導入する。細菌はマッコンキー寒天平板上に
置いてクローンの表現型を確かめる。β−ガラクトシダ
ーゼが生産されている場合は、コロニーが赤く見えるだ
ろう。また、DNA挿入物を含むクローンを同定するた
めに、HTLV−III DNAプローブを用いてコロ
ニーをスクリーニングする。DNAプローブを用いてス
クリーニングしたとき陽性でありかつマッコンキー寒天
平板上で陽性であるクローンを単離する。
【0032】選択されたコロニーからの細胞を培養して
増殖させる。この培養物は遠心分離にかけ、そして細胞
沈殿物を破壊する。全細胞タンパク質はSDSポリアク
リルアミドゲルによる電気泳動を行って分析する。融合
タンパク質は他のタンパク質を全く含まないゲルの上の
一箇所で同定される。(図15参照) ウエスターンブロット分析もスクリーニングしたとき陽
性であったクローンに対して行われる。エイズ患者から
の血清が使用され、こうしてHTLV−III特異的抗
体と交差反応するHTLV−III−β−ガラクトシダ
ーゼ融合タンパク質を発現するクローンを同定すること
が可能になる。この方法によって1000個のクローン
がスクリーニングされ、そして6個のクローンが陽性で
あった。
【0033】pMR100クローニングベクターの性質
ゆえに、生産性DNA挿入物は大きな融合ポリペプチド
の一部として発現されるべきである。HTLV−III
env遺伝子を含む組換えクローンは、コロニーハイ
ブリダイゼーションによって同定した。β−ガラクトシ
ダーゼ活性を有する大きな融合ポリペプチドの生産は、
マッコンキー寒天平板上での表現型同定、β−ガラクト
シダーゼ酵素検定および75%SDS−ポリアクリルア
ミドゲルの分析によって確かめた。この大きな融合タン
パク質とHTLV−IIIに対する抗体との免疫反応
は、エイズ患者からの血清を用いるウエスターンブロッ
ト分析によって評価した。また、大きな融合タンパク質
は抗β−ガラクトシダーゼおよび抗CI抗血清とも反応
した。この発見はそれらがCI−HTLV−III−l
acIZのタンパク質であるという仮説と一致する。
【0034】HTLV−IIIの読み取り枠挿入物断片
は、さらにDNA塩基配列決定によって分析する。pM
R100のSmaIクローニング部位の両側にある2つ
のBamHI部位のうち一方はクローニング段階で破壊
されるので、陽性クローンはHindIIIおよびCl
aI制限酵素で消化して挿入HTLV−III DNA
断片を遊離させる。融合組換え体からHTLV−III
ORF挿入物を単離し、そしてHindIIIおよび
AccIで消化したM13クローニングベクターmp1
8およびmp19内でクローニングする。その後、陽性
クローンのDNA塩基配列を決定する。
【0035】約200〜500bpのHTLV−III
DNA断片をアガロースゲルから単離し、T4 ポリメ
ラーゼで末端修復し、そしてEcoRIリンカーへ連結
させる。次にEcoRIリンカーへ連結させたDNAを
EcoRIで処理し、1%アガロースゲルから精製して
発現ベクターラムダgt11内でクローニングする。こ
のベクターはlacZ遺伝子コーディング配列を含み、
このベクター内にβ−ガラクトシダーゼ融合タンパク質
を生成させるべく外来性DNAを挿入することができ
る。ハイブリッド遺伝子の発現はlacリプレッサーの
制御下にある。lacリプレッサー遺伝子lacIは宿
主細胞の大腸菌Y1090内の別のプラスミドpMC9
によって運ばれる。1.5×104 の組換えファージを
含むHTLV−IIIゲノムDNAのラムダgt11ラ
イブラリーを調べるためにエイズ患者の血液を使用し
た。5000の組換え体のスクリーニングにおいて、強
力なシグナルを発する100の独立クローンを単離し
た。陽性の組換えDNAクローンはさらにそれらの特定
の遺伝子発現について明らかにされた。gag遺伝子特
異的クローンを同定するために、P24に対するウサギ
高度免疫血清を使用した。特定のHTLV−III遺伝
子(詳細にはgag遺伝子,env遺伝子およびPx遺
伝子)のニックトランスレーションされたDNAプロー
ブは、陽性の免疫反応性クローンを特定の遺伝子領域に
グループ分けするのに使用した。
【0036】エイズ血清によって強力なシグナルを発し
かつHTLV−IIIのgag,pol,sorおよび
env−lor遺伝子領域を有する挿入物DNAを含む
組換えクローンは、制限酵素によるマッピングおよびD
NA塩基配列決定によって詳細に調べた。HTLV−III DNAのヌクレオチド配列決定 HTLV−III DNAのヌクレオチド配列決定には
遺伝子操作法を使用した。この配列決定に使用すること
ができる1つの技術は、ショットガン/ランダム配列決
定法である。HTLV−III DNAを約300〜5
00bpの大きさの断片にランダムにせん断する。これ
らの断片は例えばM13を使ってクローニングし、次い
でコロニーはHTLV−III DNA断片挿入物を含
むものを同定するためにスクリーニングする。その後塩
基配列に重複部分が生ずるような多数の分析を行って、
そのヌクレオチド配列を決定する。HTLV−III
DNAの両鎖の塩基配列を決定してその向きを定める。
制限酵素マッピングを用いて得られた塩基配列決定デー
タを調べる。
【0037】1つのクローニングされたHTLV−II
Iゲノム(BH10)のヌクレオチド配列を図3〜図1
4に示す。ここにはgagタンパク質p17およびga
gp24のN末端およびgag p15のC末端(これ
はpolタンパク質のN末端と重なり合う)をコードす
る塩基配列位置が示されている。また、pol,sor
およびenv−lorの読み取り枠(ORF)も示され
る。クローンBH10(Rの一部,U5,tRNAプラ
イマー結合部位およびリーダー配列の一部を含む)に存
在しないHTLV−III DNAの残りの182塩基
対の配列はクローンHXB2から誘導された。別の2つ
のクローン(BH8およびBH5)の塩基配列も示され
る。制限酵素部位はヌクレオチド配列の上に示し、クロ
ーンBH8に存在するがクローンBH10に存在しない
部位はカッコ内に示す。ヌクレオチド251,254,
5671および6987−7001に決失が見られる
(〔 〕)。ヌクレオチドの位置(各線の右側)は転写
開始部位からスタートしている。アミノ酸残基は4つの
最も大きな読み取り枠に対して番号が付けられており
(各線の右側)、各々の場合先行する終止コドンの後か
らスタートするが、gagの場合は最初のメチオニンコ
ドンから数えている。提案されたペプチド切断部位
(V)および起こりうるアスパラギン−結合グリコシル
化部位(*)をenv−lor読み取り枠に対して示
す。図3の最初に示したクローンBH8およびBH10
から誘導されるLTRの塩基配列は各クローンの3′部
分から誘導され、これらのウイルスゲノムの組み込まれ
たコピーの5′−LTRに存在するものと同一であると
推定される。
【0038】クローンHXB2はラムダJ1内でクロー
ニングされたHTLV−III感染H9細胞からのXb
aI消化DNAの組換えファージライブラリーから誘導
された。H9細胞はエイズ患者の血液から得られたHT
LV−IIIのプールによって感染させたヒト白血病細
胞である〔F.ワング−スタール(Wong−Staa
l)のネイチャー312,1984年11月を参照さ
れたい)。クローニングベクタークローンBH10,B
H8およびBH5はランダムgtWes.ラムダB内で
クローニングされたHTLV−III感染H9細胞のH
irt上清分画からのSstI消化DNAのライブラリ
ーより誘導された。両方のライブラリーはプライマーと
してオリゴdTを使ってウイルス粒子RNAから合成さ
れたcDNAプローブを用いてスクリーニングした。ク
ローンBH8,BH5およびHXB2の一部はマクサム
−ギルバード法〔A.M.MaxamおよびGilbe
rt,Methods in Enzymology
65:499−560(1980)を参照〕によって塩
基配列を決定した。クローンBH10はプライマーとし
てM13挿入物の塩基配列に相補的なオリゴヌクレオチ
ドを使用しかつポリメラーゼとしてDNAポリメラーゼ
Iのクレノウ(Klenow)断片または逆転写酵素を
使用することにより変更したサンガー(Sanger)
の方法によって塩基配列を決定した。HTLV−IIIに特異的なRNA,RNAプローブお
よびDNAプローブの作製 HTLV−IIIからの全遺伝子または遺伝子セグメン
トであるDNA配列をT7ベクターのようなベクターに
挿入する。この具体例は、ベクターがT細胞遺伝子10
プロモーターからのTceuプロモーターおよびT細胞
遺伝子10タンパク質からの11個のアミノ酸をコード
するDNA配列を含む。
【0039】次に、このベクターを用いて大腸菌のよう
細胞を形質転換する。T7ベクターはT7ポリメラーゼ
を利用する。T7ポリメラーゼはRNA形成を触媒し、
RNAポリメラーゼが転写開始のために結合する部位で
あるT7プロモーターのみを認識する。このT7ポリメ
ラーゼは大腸菌プロモーターを認識しない。その結果、
HTLV−III DNA配列をT7ベクターのプロモ
ーターおよびポリメラーゼ遺伝子の後に挿入し、かつタ
ーミネーターをHTLV−III DNA配列の直後に
配置する場合、T7ベクターはHTLV−III DN
A挿入物に相補的なRNAを直接製造するであろう。
【0040】また、HTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列の決定は、DNAプローブを作るための基礎
を提供する。RNAプローブとDNAプローブは共に、
体液中のHTLV−IIIの検出に利用できるようにH
TLV−IIIゲノムの特定領域を含まねばならない。
HTLV−IIIゲノムとHTLV−Iおよび−IIゲ
ノムとの間の相同は比較的少なく、プローブはHTLV
−IIIに独特の領域(すなわちHTLV−Iまたは−
IIと共有しない領域)を含む。例えば、HTLV−I
IIのenv遺伝子領域のヌクレオチド配列が使用され
る。
【0041】ウイルスRNAまたはDNAは、非常に高
い濃度のウイルスを含むことが知られている。例えば唾
液中のHTLV−IIIを検出するのに用いられる。こ
れは、例えば唾液試料を変性し、これを濾紙に移し、ど
ちらかの型のプローブを用いてスクリーニングするドッ
トブロット(dot blot)の手段によって行うこ
とができる。試験体液として唾液を使用する場合、HT
LV−IIIの検出は血液を試験する場合よりも迅速か
つ容易であると考えられる。HTLV−IIIポリペプチドと反応するモノクローナ
ル抗体の生産 HTLV−IIIポリペプチドと反応するモノクローナ
ル抗体は、抗体産生細胞株によって生産される。抗体産
生細胞株は普通ハイブリドーマとして知られるハイブリ
ッド細胞株でありうる。このハイブリッド細胞は、HT
LV−IIIポリペプチドに対する抗体を生産する細胞
と、不滅性細胞(すなわちハイブリッド細胞に組織培養
の長期安定性を付与する細胞)との融合によって作られ
る。ハイブリッド細胞株を作る場合、その第一の融合パ
ートナー(抗体産生細胞)はHTLV−IIIポリペプ
チドに対して免疫化した動物の脾臓細胞でありうる。こ
れとは別に、抗体産生細胞はHTLV−III抗原に対
する抗体を産生するところの単離されたBリンパ球であ
りうる。このリンパ球は脾臓、末梢血液、リンパ節また
はその組織から得ることができる。第二の融合パートナ
ー(不滅細胞)はリンパ芽細胞または形質細胞腫細胞
(例えば、それ自身抗体産生能を有する悪性の骨髄腫細
胞)でありうる。
【0042】HTLV−IIIポリペプチドに対するモ
ノクローナル抗体を産生するネズミハイブリドーマは、
マウス骨髄腫細胞とポリペプチドに対して免疫化したマ
ウスからの脾臓細胞との融合によって作られる。マウス
を免疫化するために、種々の異なる免疫感作方法を行う
ことができる。例えば、マウスは精製ポリペプチドの一
次および二次免疫感作を受ける。融合は標準方法におい
て行われる。コーラー(Kohler)およびミルスタ
イン(Milstein)のネイチャー(ロンドン)2
56,495−497(1975);R.ケネット(K
ennet)のモノクローナル抗体(ケネットら編集,
365−367頁,プレナム・プレス,ニューヨーク,
1980年)を参照されたい。
【0043】次いで、ハイブリドーマをポリペプチドと
反応する抗体の産生についてスクリーニングする。これ
は当分野で知られたスクリーニング方法により行われ
る。
【0044】抗体産生細胞株を作る別の方法は、抗体産
生細胞の形質転換による。例えば、HTLV−IIIポ
リペプチドに対して免疫化した動物から得られたBリン
パ球を、ヒトBリンパ球の場合にはエプスタイン−バー
ルウイルス(Epstein−Barr virus)
のようなウイルスを感染させて形質転換し、それにより
不滅性抗体産生細胞を得る。例えば、コズボー(Koz
bor)およびロドー(Rodor)のImmunol
ogy Today 4(3),72−79(198
3)を参照されたい。これとは別に、形質転換遺伝子ま
たは形質転換遺伝子産物を用いてBリンパ球を形質転換
してもよい。
【0045】HTLV−IIIポリペプチドに対するモ
ノクローナル抗体は、抗体産生ハイブリドーマをマウス
の腹腔内に注入し、適当な時間の経過後非常に高力価の
均一抗体を含む腹水を採取し、そして腹水からモノクロ
ーナル抗体を単離することにより大量に生産することが
できる。異種ハイブリドーマは照射マウスまたは胸腺欠
損ヌードマウスに注入すべきである。また、HTLV−
IIIポリペプチドを生産する細胞をインビトロで培養
し、その細胞培養基から分泌されたモノクローナル抗体
を単離する方法によっても抗体を得ることができる。こ
れらの方法により産生された抗体は診断検定法(例えば
体液中のHTLV−IIIを検出する)および受動免疫
療法において使用できる。HTLV−IIIポリペプチ
ドと反応する抗体は、エイズまたは体液(例えば血液、
精液、唾液)中のHTLV−IIIの存在を検出するた
めの診断試験、ならびに受動免疫療法のための基礎を提
供する。例えば、抗p41を生産し、慣用技術によりこ
れを固相に付着させ、そして試験すべき体液を固定化抗
体と接触させることが可能である。このようにして、体
液中のHTLV−III(抗原)を検出することがで
き、この方法はHTLV−IIIに対する抗体を検出す
る試験よりもはるかに少ない偽陽性の試験結果をもたら
すだろう。
【0046】本発明はさらに次の実施例により説明され
るであろう。実施例1 超音波処理されたDNA断片の作製 ゲルにより精製したHTLV−III制限酵素断片10
μgを超音波処理して、平均500bpの大きさに断片
化した。超音波処理後、容量を減らすためにDNAを
0.1×TBE中のDEAE−セルロースカラムに通し
た。DEAE結合DNAは0.2M NaCl−TE
(2M NaCl,10mm トリス−HCl pH
7.5、1mM EDTA)5mlで洗い、次に1M
NaCl−TEで溶出してエタノール沈殿させた。超音
波処理したDNAの大きさを1.2%アガロースゲルに
より測定した。所望の長さ(200〜500bp)のD
NA断片をゲルから溶出した。T4DNAポリメラーゼ
を使って、超音波処理法によって生じた一本鎖DNA末
端を修復および/または切り取った。DNA断片をT4
ポリメラーゼと共にヌクレオチドを添加することなく3
7℃で5分間インキュベートして3′末端からヌクレオ
チドを除き、次に4種のヌクレオチド前駆体を最終濃度
が100μMとなるように加え、この反応混合物をさら
に30分インキュベートして5′末端の一本鎖のつき出
た部分を修復した。68℃で10分間酵素を熱不活化す
ることによりこの反応を停止させた。DNAは1度フェ
ノール抽出し、エタノール沈殿させ、そしてTE中に再
懸濁した。実施例2 ランダムにせん断したDNA断片のクローニング 超音波処理しかつ平滑末端に修復したHTLV−III
DNA断片を、ORF発現ベクターpMR100のS
maI部位に連結し、そして標準形質転換法を使って宿
主細胞LG90を形質転換した。形質転換細胞のβ−ガ
ラクトシダーゼ陽性表現型は、その形質転換細胞をアン
ピシリン(25μg/ml)含有マッコンキー寒天平板
上に採置して、表現型を37℃で20時間後に評価する
ことによって同定した。実施例3 ハイブリッドタンパク質分析 アンピシリン(25μg/ml)含有Lブイヨン中で一
晩増殖させた飽和培養物からの細胞10ml試料を遠心
分離し、細胞沈殿物を1.2倍に濃縮したレムリ(La
emmli)サンプル緩衝液500μlに再懸濁した。
細胞は渦巻混合し、100℃で3分間沸騰させることに
より再懸濁した。次に、この溶菌液を22ゲージ針を使
って繰り返しせん断し、溶菌液の粘度を低下させた。タ
ンパク質試料約10μlは7.5% SDS−PAGE
(SDS−ポリアクリルアミド)ゲルによる電気泳動処
理を行った。
【0047】タウビン(Towbin)らの方法に従っ
て、SDS−PAGEゲルからニトロセルロース紙へタ
ンパク質を移行させた。移行後、このフィルターを0.
1%消泡剤Aおよび0.0001%メルチオレート(m
erthiolate)を含有するPBS中の5%(w
/v)脱脂牛乳の溶液中で37℃において2時間インキ
ュベートし、それにより全ての利用しうるタンパク質結
合部位を飽和させた。エイズ抗血清との反応は、大腸菌
溶菌液をあらかじめ吸収させた1%エイズ患者抗血清含
有の上記牛乳緩衝液中で行った。この反応は回転攪拌機
上の密閉プラスチック袋中で4℃において18〜24時
間実施した。このインキュベーション後、0.5%デオ
キシコール酸、0.1M NaCl、0.5%トリトン
X−100、10mm燐酸塩緩衝液pH7.5および
0.1mM PMSFを含有する溶液で室温において2
0分づつ3回フィルターを洗浄した。
【0048】抗原−抗体反応を視覚化するために、 125
Iでヨウ素化した第二のヤギ抗ヒト抗体とニトロセルロ
ースとをインキュベートした。ヨウ素化抗体との反応
は、第一の抗体のときに使用したものと同じ牛乳緩衝液
中室温で30分間実施した。その後先に述べたようにし
てニトロセルロースを洗浄し、コダックXAR5フィル
ムおよび増感スクリーンを使って−70℃で感光した。実施例4 コロニーハイブリダイゼーションによるHTLV−II
I ORFライブラリーのスクリーニング 大腸菌LG90形質転換体は意図するDNA領域(例え
ばHTLV−IIIgag,envまたはPx遺伝子の
特定配列)を含むHTLV−III DNAプローブを
用いてスクリーニングした。ニトロセルロースフィルタ
ー上でコロニーを増殖させ、ハイブリダイゼーションプ
ローブとしてニックトランスレーションされたHTLV
−III DNAを使い、グルンスタイン(Gruns
tein)およびホグネス(Hogness)の方法に
従ってスクリーニングした。
【0049】一般には、制限エンドヌクレアーゼ消化に
よってDNA断片を切り取り、これをゲル精製し、そし
てニックトランスレーションにより0.5×108 cp
m/μgの比活性に32Pで標識した。〔P.W.J.リ
グビー(Rigby)らのJ.Mol.Biol.,
13,237(1977)を参照〕DNAが固定された
ニトロセルロースフィルターは6×SSC(0.9M
NaCl/0.09Mクエン酸ナトリウム、pH7.
0)、5×デンハート溶液(Denhardt’s s
olution:ポリビニルピロリドン,フイコルおよ
びウシ血清アルブミン各々0.02%)、10μg/m
lの変性した超音波処理大腸菌DNAを用いて55℃で
3〜5時間プレハイブリダイゼーションを行った。次い
で、変性ハイブリダイゼーションプローブを加えた同じ
溶液の新しい試料中にこのフィルターを入れた。ハイブ
リダイゼーションは68℃で16時間行った。その後フ
ィルターを55℃において0.3×SSCで繰り返し洗
浄し、X線フィルムを使用して感光した。実施例5 エイズ患者からの血清と免疫反応するHTLV−III
の組換えDNAによって生産されたペプチド 発現ベクターとしてpIN−III−ompA(omp
A)を使用した。ompAはリポタンパク質(大腸菌中
で最も豊富なタンパク質)遺伝子プロモーター(lp
p)およびlacUV5プロモーター−オペレーターを
有する(図16参照)。ompAベクターはさらにla
cリプレッサーをコードするDNAセグメントを含み、
これは挿入DNAの発現をIPTGのようなlacオペ
ロン誘導物質により調節させる。ompAクローニング
ベクターは3つの読み取り枠の全てに3つの特異な制限
酵素部位EcoRI、HindIIIおよびBamHI
を含み、そしてこれらの制限酵素部位のいずれかにDN
Aが挿入される。
【0050】ベクターラムダgtWESラムダBのSs
tI部位に9Kbの長いHTLV−III DNA挿入
物を含む組換えクローンのラムダBH10から、種々の
制限断片を切り取った。次に、これらの制限断片を3つ
の読み取り枠の全てでompAベクターに挿入し、そし
て大腸菌JA221細胞を形質転換するのに使用した。
形質転換細胞は、ニックトランスレーションされたHT
LV−III DNAプローブを使用するin sit
uコロニーハイブリダイゼーションにより、HTLV−
III DNAについてスクリーニングした。陽性クロ
ーンはHTLV−IIIに特異的な抗体を使用してHT
LV−III抗原ペプチドの発現についてスクリーニン
グした。このために、HTLV−III DNA組換え
プラスミドを含む大腸菌細胞の溶菌液を12.5%SD
S−ポリアクリルアミドゲルによる電気泳動にかけ、そ
してニトロセルロースフィルター上へ移行した。その
後、このフィルターを最初にエイズ患者からの十分の性
状決定された血清とインキュベートし、次に 125Iで標
識したヤギ抗ヒトIgG抗体とインキュベートした。洗
浄したフィルターをオートラジオグラフィーにかけ、抗
HTLV−III抗体と反応性のペプチドを同定した。
【0051】抗HTLV−III抗体と免疫反応性であ
るペプチドをコードするいくつかの遺伝子セグメントが
見出された。これらのうちの1つに1.1KbのEco
RI制限断片がある。この断片は3つの読み取り枠の全
てでompAベクター内に挿入した(図16参照)。細
胞は100mg/mlのアンピシリンを含むLブイヨン
中37℃でOD600 =0.2へと増殖させた。この時点
で細胞培養物を2つのアリコートに分割した。一方のア
リコートに最終濃度が2mMとなるようにIPTGを加
えた(誘導)。他方のアリコートにはIPTGを加えな
かった(非誘導)。IPTG誘導の際に、3つのプラス
ミド構成物〔OmpA1 −R−6(O1R6),Omp
2 −R−7(O2R7)およびOmpA3 −R−3
(O3R3)と命名される〕の全ての形質転換細胞は、
エイズ患者の血清中の抗HTLV−III抗体と強く反
応する15Kdのペプチドを生産した(図17参照、レ
ーン1は精製したHTLV−IIIウイルス粒子;レー
ン2および3は非誘導および誘導のO1R6;レーン4
および5は非誘導および誘導のO2R7;レーン6およ
び7は非誘導および誘導のO3R3である)。この反応
性は正常人から採取した血清を用いた場合検出されな
い。
【0052】HTLV−IIIゲノムのDNA配列デー
タは、EcoRI断片の5′末端に位置するpol遺伝
子内に1つの読み取り枠が存在することを示す。3つの
組換え構成物O1R6,O2R7およびO3R3のDN
A塩基配列決定は、これらの組換え体の各々が各ベクタ
ーのコーディング配列に結合したHTLV−IIIプラ
スDNA鎖の異なる読み取り枠を有するということを証
明した。O3R3の場合のみ、挿入DNAの読み取り枠
がOmpAベクター内のシグナルペプチドによって定め
られるそれと一致するが、O1R6およびO2R7の場
合pol遺伝子セグメントDNAの読み取り枠がベクタ
ーにより定められるそれと不一致である。(図18参
照) ヌクレオチド位置24−29には6bpのリボソーム結
合部位AAGGAG(シャイン−ダルガルノの配列、S
hine−Dalgarno sequence)があ
り、これにより11bp下流(位置41−43)には開
始コドンATGが存在する。3つの組換え体の全てによ
って合成される15Kdのペプチドは、この内部開始コ
ドンを使用して転写物から翻訳されると考えられる。こ
のことが真実である場合には、ペプチドは位置41−4
3に存在するATGから出発して、位置446−448
に存在する停止コドンで終り、それによりHTLV−I
IIのpol遺伝子の3′末端セグメントによりコード
される135アミノ酸残基から成るペプチドが生産され
る。
【0053】HTLV−III DNApol遺伝子の
読み取り枠がベクターにより定められるそれと一致する
O3R3構成物は、15Kdペプチドの他に、19Kd
と16.5Kdの大きさの2つの別のペプチドを生産し
た(図17参照)。19Kdペプチドはさらに35個の
アミノ酸残基を含み、そのうちの21個はOmpA3
クターによってコードされるシグナルペプチドからのも
のであり、残りの14個は挿入HTLV−III DN
Aそれ自体によってコードされると思われる。16.5
Kdペプチドはプロセッシングを受けた19Kdペプチ
ド(シグナルペプチドが開裂している)でありうる。
【0054】O1R6およびO2R7構成物もエイズ患
者の血清と弱く反応する約17.5Kdの別のペプチド
を生産する(図17参照)。このペプチドの開始点は明
らかでない。1.1KbのEcoRI断片は、ヌクレオ
チド位置360−965の間に延びるSOR(短い読み
取り枠)と呼ばれる第二のコーディング領域を含む(図
16参照)。この領域内の5つのAUGメチオニンコド
ンのうち4つがこの読み取り枠の5′末端の近くに存在
する。このDNAセグメントは192,185,177
または164個のアミノ酸残基から成るペプチドをコー
ドできるだろう。しかしながら、この読み取り枠の5′
末端にははっきりと認めうるリボソーム結合部位が存在
しない。
【0055】さらに、15Kdペプチドは実際にpol
遺伝子から誘導されるという決定が多くの証拠により支
持された。第一に、O1R6、O2R7およびO3R3
(図16)からの1.1Kb EcoRI挿入物からの
3′末端StuI/EcoRI断片の欠失は15Kdペ
プチドの合成に影響を与えない。第二に、5′末端Ec
oRI/NdeI断片のみを含むクローンがまだ同じ1
5Kdペプチドを生産する。最後に、読み取り枠クロー
ニングベクターpMR100内に適切に挿入されたSO
Rコーディング配列をもつ種々のDNA断片を含む組換
えクローンは、エイズ患者の血清中に存在する抗HTL
V−III抗体との免疫反応性が非常に乏しいラムダC
I−HTLV−III−β−ガラクトシダーゼ3分節融
合タンパク質を生産した。
【0056】エイズ患者の血清中でウイルスpol遺伝
子から誘導された15Kdペプチドに対する有意な免疫
反応性を検出した。この免疫反応性ペプチドの特性は、
SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動におけるHT
LV−IIIウイルス粒子抗原の結合パターンに関し
て、拮抗阻害免疫検定法を用いて決定した。精製HTL
V−IIIウイルス粒子をSDSで処理し、電気泳動に
かけ、そしてニトロセルロースフィルターの上に移し
た。破壊したHTLV−IIIウイルス粒子を含む同一
のフィルター細片を、O1R6,O2R7または対照細
菌クローンの溶菌液の存在下または不存在下に、十分に
性状決定がなされたエイズ患者の血清とインキュベート
した。エイズ患者の血清に含まれる抗HTLV−III
抗体とフィルターにしみ込ませたウイルス粒子のタンパ
ク質との間の特異的免疫反応は、 125Iで標識したヤギ
抗ヒト抗体によって明らかにした。図19に示すよう
に、O1R6の溶菌液はウイルスp31タンパク質とエ
イズ血清との免疫反応を阻害するが、対照細胞の溶菌液
は阻害しない。この結果は、ウイルスpol遺伝子の
3′末端によってコードされる組換え15Kdタンパク
質が他のウイルス粒子タンパク質p31の一部であると
いうことを示唆しており、p31がHTLV−IIIウ
イルス粒子と一緒に同時精製される細胞タンパク質であ
るというある人々によって共有された考え方と対照をな
している。
【0057】15Kdペプチドに対する抗体がエイズ患
者の血清中に広く含まれるかについても評価した。抗原
の源としてO1R6の溶菌液を使用するウエスターンブ
ロット分析において、エイズ患者と正常な人々からのコ
ード化血清のパネルを試験した。20のエイズ血清の全
てが15Kdペプチドと反応し、8の正常対照はどれも
15Kdペプチドと反応しなかった。代表的な結果を図
20に示す。これらのデータは、全部ではないにして
も、大部分のエイズ患者がウイルスp31タンパク質に
対する抗体を産生することを示している。実施例6 HTLV−IIIの読み取り枠遺伝子セグメントの大腸
菌内での発現 HTLV−III DNAをラムダBH10から切り取
った。このラムダBH10はベクターラムダgtWES
ラムダB内に挿入したHTLV−III DNAの9K
bセグメントを含む先に作製した組換えラムダファージ
である。このHTLV−III DNAを超音波処理
し、約0.5KbのDNA断片をゲル電気泳動により精
製し、末端修復し、そしてORFベクターpMR100
のSmaI部位に挿入した(図21参照)。このベクタ
ーはハイブリッドコーディング配列〔バクテリオファー
ジラムダのラムダCI遺伝子のN末端(5′セグメン
ト)がN末端欠失lacIZ遺伝子(3′セグメント)
に融合される〕を含む第二DNA断片に結合した細菌l
acプロモーターDNAセグメントを含む。SmaIク
ローニング部位を含む短いリンカーDNA断片を、la
cIZコーディングDNAの上流でフレームシフト変異
が起こるような方法で、これらの2つの断片の間に挿入
した。その結果、pMR100はLac- 宿主大腸菌L
G90の細胞内に導入したとき検出可能なβ−ガラクト
シダーゼ活性を示さない。SmaIクローニング部位に
読み取り枠を含む外来性DNA(この場合はHTLV−
III DNA)を挿入すると、その挿入コーディング
配列がラムダCIリーダーおよびlacIZ遺伝子の双
方に関して正しい読み取り枠内にある場合、フレームシ
フト変異を逆転させることができる。形質転換細胞はマ
ッコンキー平板上でスクリーニングして、β−ガラクト
シダーゼ酵素活性をその場で発現する個々のクローンを
検出した。
【0058】スクリーニングされた6000のアンピシ
リン耐性形質転換細胞のうち、約300がβ−ガラクト
シダーゼ活性を発現するとわかった。32Pで標識し、ニ
ックトランスレーションされたHTLV−III DN
Aをプローブとして使用するコロニーハイブリダイゼー
ションは、これらLac+ クローンの全てがHTLV−
III DNAを含むことを明らかにした。Lac+
ローンにおいて、pMR100のSmaI部位に挿入さ
れたHTLV−III断片はラムダCIリーダーセグメ
ントによって定められる読み取り枠に停止コドンを含ん
ではならず、またlacIZ遺伝子も正しい翻訳読み取
り枠で存在しなければならない。3要素融合遺伝子は、
N末端にラムダCIタンパク質の一部をもち、中間にH
TLV−IIIセグメントをもち、そしてC末端にla
cIZポリペプチドをもつ3分節融合タンパク質として
発現された。
【0059】Lac+ クローンによって生産されたタン
パク質は、ラムダCI−β−ガラクトシダーゼ融合タン
パク質を生産する対照Lac+ クローンpMR200の
溶菌液と共に7.5%SDS−ポリアクリルアミドゲル
上でその溶菌液を分割することにより分析した。pMR
200のlacIZ遺伝子は、pMR100のlacI
Z遺伝子が活性β−ガラクトシダーゼを生産するために
ラムダCI遺伝子と同じ読み取り枠になるべく1個の塩
基対を欠失している点を除いてpMR100のそれと同
じである。β−ガラクトシダーゼおよびその融合タンパ
ク質の非常に大きな寸法に基づいて、それらはSDS−
ポリアクリルアミドゲル上で溶菌液中の大部分のタンパ
ク質から分離され、そして図22.Aに示すようにクー
マシーブリリアントブルー染色によって簡単に同定する
ことができる。HTLV−IIIDNAを含むLac+
クローンのいくつかは、ラムダCI−lacIZ融合タ
ンパク質よりも大きな(15000〜27000ダルト
ン)ポリペプチドを生産する。これらの発見はDNA挿
入物の長さが700bp以下であるというデータと一致
する。β−ガラクトシダーゼ融合タンパク質は全細胞タ
ンパク質の約1〜2%を占めた。
【0060】Lzc+ クローンにより生産されたペプチ
ドは、エイズ患者の血清との免疫反応についてウエスタ
ーンブロット分析により試験した。Lac+ クローンの
溶菌液をSDS−ポリアクリルアミドゲルで電気泳動処
理した後、それらをニトロセルロースフィルターへ移行
させた。これらのタンパク質ブロットを最初にエイズ患
者の血清と反応させ、次に 125Iで標識したヤギ抗ヒト
IgGと反応させた。図22.Bのオートラジオグラフ
は代表的な融合タンパク質とエイズ患者血清との免疫反
応性を示す。組換えペプチドはこの他に抗β−ガラクト
シダーゼ抗血清とも反応し、それらが一般構造式ラムダ
CI−HTLV−IIIペプチド−LacIZを有する
という提案と一致した。HTLV−III DNA挿入
物を含まない陰性対照のpMR100およびpMR20
0の免疫反応パターンから、この特別のエイズ血清は宿
主大腸菌のいくつかの細菌タンパク質と反応する抗体を
含むことが明白である。このことはエイズ患者が通常多
数の細菌に感染していることからして驚くにあたらな
い。大腸菌抽出物を結合させたセファロース4Bを用い
てエイズ患者の血清を吸着させると、バックグランド免
疫反応がある程度減少するが、それは完全には消失しな
かった。
【0061】約300の独立したHTLV−III D
NA含有Lac+ コロニーは、クーマシーブリリアント
ブルー染色およびウエスターンブロッティングを使用し
てSDS−ポリアクリルアミドゲルにより分析した。そ
れらのうち約半数は長さが300〜600bpのDNA
挿入物に対応して、約100〜200個のアミノ酸から
なる付加的ペプチドを含む融合タンパク質を発現するこ
とがわかった。これらの融合タンパク質のうち20はエ
イズ患者からの血清と特異的に反応することが見出され
た。非反応性クローンは恐らく、抗体と反応しないよう
な状態に折り重なったペプチドを含むか、あるいはエイ
ズ患者の体内で免疫原性がないHTLV−IIIタンパ
ク質分子の領域に相当するペプチドを含むであろう。L
ac+ クローンの残りの半数は、大きさがラムダCI−
β−ガラクトシダーゼタンパク質と明らかに異なる融合
タンパク質を発現した。このグループの融合タンパク質
からはエイズ患者の血清と反応するものが全く見出せな
かった。
【0062】Lac+ ORFクローンからのHTLV−
III DNA挿入物は、サザンブロッティング法を使
ってHTLV−IIIゲノムの特定セグメントへマッピ
ングされた。これらの実験において、各プラスミドクロ
ーンはニックトランスレーションにより32Pで標識し、
そして一群のHTLV−III DNA制限断片とハイ
ブリダイゼーションを行った。このハイブリダイゼーシ
ョン分析は、DNA塩基配列決定データと一致するOR
F−A,ORF−B,ORF−CおよびORF−D(図
2.A参照)と名づけた4つの読み取り枠セグメントへ
と全てのLac+ ORFクローンをマッピングした。g
agおよびpol遺伝子のコーディング領域に相当する
読み取り枠ORF−Aおよび−Bは、それぞれ1.5K
bおよび3.0Kbの長さである。ORF−Cは約0.
6Kbの長さであり、ORF−B領域とわずかに重なっ
ており、そして21Kdのポリペプチドをコードするこ
とができる。ORF−Cの位置およびpol遺伝子とそ
れとの重複部分は、HTLV−Iおよび−IIのenv
遺伝子構造を暗示する。しかしながら、sor(sho
rt open reading frame,短い読
み取り枠)と命名したORF−Cは完全なエンベロープ
タンパク質をコードするにはあまりに短かすぎる。第四
の読み取り枠のORF−Dはその長さが2.5Kbであ
り、主要エンベロープ糖タンパク質の大型前駆体と3′
末端から誘導される別のタンパク質(HTLV−Iおよ
び−IIのlor産物に類似している)との両方をコー
ドできるだろう。env−lorと命名したHTLV−
IIIのこの遺伝子領域は、HTLV−IおよびHTL
V−IIのlorの少なくとも2倍の長さであり、この
領域に1つまたは2つ以上のタンパク質がコードされて
いるかどうか現在のところはっきりしない。
【0063】多数のクローンを分析するために、サザン
ブロッティングおよびDNA塩基配列決定の両方法を使
用した。図2.Bに示すように、エイズ患者の血清と免
疫反応する融合タンパク質を発現するLac+ ORFク
ローンは、ORF−A(例えば#175および#19
1)、ORF−B(例えば#13,31および162)
またはORF−D(例えば#113,121および12
7)の領域に位置し、sor領域には存在しなかった。
これらの領域の全てのタンパク質が免疫反応性であると
は限らない(例えばORF−Dに位置するORFクロー
ン#76)。
【0064】HTLV−IIIの読み取り枠構造の分析
は、どの読み取り枠がenv遺伝子に相当するかについ
ての疑問を提起した。HTLV−IIIのenv−lo
r領域が推定されるlor遺伝子の他にenv遺伝子の
全部または一部を含むと考えられる。最近になって、H
TLV−Iのlor遺伝子はウイルス活性化および形質
転換の過程に関連した42Kdタンパク質をコードする
ことが示唆された。ORFクローンの1つ(図2.Bの
#127)の溶菌液を、ウエスターンブロット法に基づ
くストリップラジオイムノアッセイで、20人のエイズ
患者と12人の正常人からの血清に対して試験した場
合、ラムダCI−HTLV−III−β−ガラクトシダ
ーゼ融合タンパク質に対する免疫反応は19人のエイズ
患者血清において検出され、正常対照からは全く検出さ
れなかった。この結果は、ORFクローン#127に含
まれるenv−lor領域の部分によりコードされるタ
ンパク質がHTLV−III感染細胞内で生産され、そ
してエイズ患者の、全部ではないにしても、大部分に抗
体を産生させるということを示している。産業上の適用可能性 本発明は、体液中のHTLV−III DNAの存在に
関するスクリーニングおよびエイズの診断に利用され
る。均 等 物 本明細書で述べた特定の物質および方法に均等の多数の
物質および方法が、単に日常的な実験法を使用すること
により当業者によって認識され、また確認されるであろ
う。このような均等物は本発明の範囲内であると考えら
れ、先の特許請求の範囲に包含される。
【図面の簡単な説明】
【図1】図1はHTLV−III DNAを表わす。図
1.aはゲノムが制限酵素SstIによって切断される
部位を示し、図1.bは制限酵素Kpn,EcoRIお
よびHindIIIの作用により作られたHTLV−I
IIゲノムの断片を示す。
【図2】図2はHTLV−III DNAを示す。図
2.Aはゲノム内の制限酵素部位を示し、図2.Bは読
み取り枠クローン内のDNA挿入物のHTLV−III
ゲノム中での位置を示す。(+)および(−)は、それ
ぞれORFベクターを用いて形質転換した細胞により発
現された融合タンパク質とエイズ患者の血清との反応性
および非反応性を示す。
【図3】図3はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定上のア
ミノ酸配列(その1)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図4】図4はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その2)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図5】図5はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その3)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図6】図6はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その4)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図7】図7はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その5)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図8】図8はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その6)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図9】図9はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その7)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図10】図10はHTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状
のアミノ酸配列(その8)を示す。ヌクレオチド配列の
上に制限酵素部位を示す。
【図11】図11はHTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状
のアミノ酸配列(その9)を示す。ヌクレオチド配列の
上に制限酵素部位を示す。
【図12】図12はHTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状
のアミノ酸配列(その10)を示す。ヌクレオチド配列
の上に制限酵素部位を示す。
【図13】図13はHTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状
のアミノ酸配列(その11)を示す。ヌクレオチド配列
の上に制限酵素部位を示す。
【図14】図14はHTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状
のアミノ酸配列(その12)を示す。ヌクレオチド配列
の上に制限酵素部位を示す。
【図15】図15はHTLV−IIIenv−β−ガラ
クトシダーゼ融合タンパク質のSDS−ポリアクリルア
ミドゲル上での位置を示すイムノブロットの写真であ
る。
【図16】図16はゲノムが制限酵素EcoRIによっ
て切断される部位、およびHTLV−III DNAを
保有する組換えプラスミドの作製を示す。
【図17】図17は組換え構成物ompA1−R−6,
ompA2−R−7およびompA3−R−3(この中
に1.1KbのEcoRI HTLV−III cDN
A制限断片が挿入された)を用いて形質転換した細菌細
胞により生産されたペプチドのニトロセルロースフィル
ター上での位置を示すイムノブロットの写真である。
【図18】図18はompAシグナルペプチドのヌクレ
オチド配列、および組換えプラスミドompA1−R−
6,ompA2−R−7,ompA3−R−3の関連領
域を示す。
【図19】図19はHTLV−III DNA組換えプ
ラスミドompA1−R−6を含む大腸菌の溶菌液によ
るHTLV−III抗原とエイズ血清との間の反応の阻
害(レーン1−5)、および大腸菌対照細胞の溶菌液に
よる上記反応の非阻害(レーン6−10)を示すイムノ
ブロットの写真である。
【図20】図20は正常人(レーン1−3)およびエイ
ズ患者(レーン4−11)からの血清中での、HTLV
−III cDNAの1.1Kb EcoRI HTL
V−III制限断片によりコードされるペプチドに対す
る抗体の有無を示すイムノブロットの写真である。精製
したHTLV−IIIウイルス(パネルA)、または細
菌クローンompA1−R−6(O1R6)の全細胞溶
菌液(パネルB)を血清試料と反応させた。
【図21】図21はHTLV−III DNAを有する
読み取り枠発現ベクターpMR100を示す。
【図22】図22はラムダCI−HTLV−III−β
−ガラクトシダーゼ融合タンパク質を示す。図22.A
はラムダCI−HTLV−III−β−ガラクトシダー
ゼ融合タンパク質のSDS−ポリアクリルアミドゲル上
での位置を示すイムノブロットの写真であり、図22.
Bは上記タンパク質とエイズ患者血清との免疫反応を示
す写真である。
─────────────────────────────────────────────────────
【手続補正書】
【提出日】平成6年5月12日
【手続補正1】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】特許請求の範囲
【補正方法】変更
【補正内容】
【特許請求の範囲】
【請求項60】 標識がラジオアイソトープである、請
求項59に記載の単離されたRNA転写物。 ─────────────────────────────────────────────────────
【手続補正書】
【提出日】平成6年11月4日
【手続補正1】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】図面の簡単な説明
【補正方法】変更
【補正内容】
【図面の簡単な説明】
【図1】図1はHTLV−III DNAを表わす。図
1.aはゲノムが制限酵素SstIによって切断される
部位を示し、図1.bは制限酵素Kpn,EcoRIお
よびHindIIIの作用により作られたHTLV−I
IIゲノムの断片を示す。
【図2】図2はHTLV−III DNAを示す。図
2.Aはゲノム内の制限酵素部位を示し、図2.Bは読
み取り枠クローン内のDNA挿入物のHTLV−III
ゲノム中での位置を示す。(+)および(−)は、それ
ぞれORFベクターを用いて形質転換した細胞により発
現された融合タンパク質とエイズ患者の血清との反応性
および非反応性を示す。
【図3】図3はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定上のア
ミノ酸配列(その1)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図4】図4はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その2)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図5】図5はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その3)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図6】図6はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その4)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図7】図7はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その5)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図8】図8はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その6)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図9】図9はHTLV−III DNAのヌクレオチ
ド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状のア
ミノ酸配列(その7)を示す。ヌクレオチド配列の上に
制限酵素部位を示す。
【図10】図10はHTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状
のアミノ酸配列(その8)を示す。ヌクレオチド配列の
上に制限酵素部位を示す。
【図11】図11はHTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状
のアミノ酸配列(その9)を示す。ヌクレオチド配列の
上に制限酵素部位を示す。
【図12】図12はHTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状
のアミノ酸配列(その10)を示す。ヌクレオチド配列
の上に制限酵素部位を示す。
【図13】図13はHTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状
のアミノ酸配列(その11)を示す。ヌクレオチド配列
の上に制限酵素部位を示す。
【図14】図14はHTLV−III DNAのヌクレ
オチド配列、および4つの最も長い読み取り枠の推定状
のアミノ酸配列(その12)を示す。ヌクレオチド配列
の上に制限酵素部位を示す。
【図15】図15はHTLV−IIIenv−β−ガラ
クトシダーゼ融合タンパク質のSDS−ポリアクリルア
ミドゲル上での位置を示すイムノブロットの写真(電気
泳動の写真)である。
【図16】図16はゲノムが制限酵素EcoRIによっ
て切断される部位、およびHTLV−III DNAを
保有する組換えプラスミドの作製を示す。
【図17】図17は組換え構成物ompA1−R−6,
ompA2−R−7およびompA3−R−3(この中
に1.1KbのEcoRI HTLV−III cDN
A制限断片が挿入された)を用いて形質転換した細菌細
胞により生産されたペプチドのニトロセルロースフィル
ター上での位置を示すイムノブロットの写真(電気泳動
の写真)である。
【図18】図18はompAシグナルペプチドのヌクレ
オチド配列、および組換えプラスミドompA1−R−
6,ompA2−R−7,ompA3−R−3の関連領
域を示す。
【図19】図19はHTLV−III DNA組換えプ
ラスミドompA1−R−6を含む大腸菌の溶菌液によ
るHTLV−III抗原とエイズ血清との間の反応の阻
害(レーン1−5)、および大腸菌対照細胞の溶菌液に
よる上記反応の非阻害(レーン6−10)を示すイムノ
ブロットの写真(電気泳動の写真)である。
【図20】図20は正常人(レーン1−3)およびエイ
ズ患者(レーン4−11)からの血清中での、HTLV
−III cDNAの1.1Kb EcoRI HTL
V−III制限断片によりコードされるペプチドに対す
る抗体の有無を示すイムノブロットの写真(電気泳動の
写真)である。精製したHTLV−IIIウイルス(パ
ネルA)、または細菌クローンompA1−R−6(O
1R6)の全細胞溶菌液(パネルB)を血清試料と反応
させた。
【図21】図21はHTLV−III DNAを有する
読み取り枠発現ベクターpMR100を示す。
【図22】図22はラムダCI−HTLV−III−β
−ガラクトシダーゼ融合タンパク質を示す。図22.A
はラムダCI−HTLV−III−β−ガラクトシダー
ゼ融合タンパク質のSDS−ポリアクリルアミドゲル上
での位置を示すイムノブロットの写真(電気泳動の写
真)であり、図22.Bは上記タンパク質とエイズ患者
血清との免疫反応を示す写真(電気泳動の写真)であ
る。
フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12N 15/09 ZNA C12P 21/02 C 9282−4B 21/08 9161−4B C12Q 1/68 A 9453−4B G01N 33/53 D 33/569 H 33/58 A 33/60 Z // C12N 1/21 8828−4B (C12P 21/02 C12R 1:19) (C12N 1/21 C12R 1:19)

Claims (34)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 HTLV−III cDNAを含む組換
    えベクターを用いて形質転換した細胞により発現される
    免疫反応性HTLV−IIIポリペプチド。
  2. 【請求項2】 HTLV−III cDNAがenv遺
    伝子配列をコードする、請求項1記載のポリペプチド。
  3. 【請求項3】 後天性免疫不全症候群の患者からの血清
    またはHTLV−IIIに対する抗体を含む血清と免疫
    反応性である、請求項2記載のポリペプチド。
  4. 【請求項4】 HTLV−III cDNAがenv−
    lor遺伝子配列をコードする、請求項1記載のポリペ
    プチド。
  5. 【請求項5】 後天性免疫不全症候群の患者からの血清
    またはHTLV−IIIに対する抗体を含む血清と免疫
    反応性である、請求項4記載のポリペプチド。
  6. 【請求項6】 HTLV−III cDNAがEcoR
    I制限断片である、請求項1記載のポリペプチド。
  7. 【請求項7】 後天性免疫不全症候群の患者からの血清
    またはHTLV−IIIに対する抗体を含む血清と免疫
    反応性である、請求項6記載のポリペプチド。
  8. 【請求項8】 単離されたHTLV−IIIエンベロー
    プポリペプチド。
  9. 【請求項9】 env−lor遺伝子配列によりコード
    される単離されたHTLV−IIIポリペプチド。
  10. 【請求項10】 HTLV−III遺伝子をコードする
    単離されたcDNA。
  11. 【請求項11】 HTLV−III env遺伝子をコ
    ードする請求項10記載のcDNA。
  12. 【請求項12】 HTLV−III env−lor遺
    伝子配列をコードする請求項10記載のcDNA。
  13. 【請求項13】 後天性免疫不全症候群の患者からの血
    清またはHTLV−IIIに対する抗体を含む血清と免
    疫反応性であるポリペプチドをコードするHTLV−I
    II cDNAのEcoRI制限断片をコードする、請
    求項10記載のcDNA。
  14. 【請求項14】 免疫反応性のHTLV−IIIポリペ
    プチドをコードする単離cDNA。
  15. 【請求項15】 後天性免疫不全症候群の患者からの血
    清またはHTLV−IIIに対する抗体を含む血清と免
    疫反応性であるエンベロープポリペプチドをコードす
    る、請求項14記載の単離cDNA。
  16. 【請求項16】 EcoRI制限断片である請求項14
    記載の単離cDNA。
  17. 【請求項17】 HTLV−III ウイルスに特異的
    なHTLV−IIIゲノムの部分と本質的に相同である
    DNA配列からなるDNAプローブ。
  18. 【請求項18】 DNA配列がエイズ患者の血清と免疫
    反応性であるポリペプチドをコードするHTLV−II
    Iゲノムの部分と本質的に相同である、請求項17記載
    のDNAプローブ。
  19. 【請求項19】 HTLV−IIIポリペプチドが少な
    くとも1つの他のポリペプチドに結合してなるハイブリ
    ッドタンパク質。
  20. 【請求項20】 HTLV−IIIポリペプチドが指示
    ポリペプチドに結合してなる、請求項19記載のハイブ
    リッドタンパク質。
  21. 【請求項21】 指示ポリペプチドがβ−ガラクトシダ
    ーゼである請求項20記載のハイブリッドタンパク質。
  22. 【請求項22】 HTLV−IIIのenv遺伝子の単
    離されたRNA転写物。
  23. 【請求項23】 検出可能なシグナルを発する標識がつ
    いている、請求項22記載のRNA転写物。
  24. 【請求項24】 標識がラジオアイソトープからなる請
    求項23記載のRNA転写物。
  25. 【請求項25】 宿主細胞内へ挿入したとき発現可能な
    HTLV−IIIDNAを含む組換えベクター。
  26. 【請求項26】 HTLV−III cDNAを含むo
    mpAベクター。
  27. 【請求項27】 HTLV−III cDNAを含むp
    MR100ベクター。
  28. 【請求項28】 (a)HTLV−III cDNAを
    切断してcDNA断片をつくり; (b)該cDNA断片を発現ベクターに挿入して組換え
    ベクターを作製し; (c)該組換えベクターを用いて適当な宿主細胞を形質
    転換させ;そして (d)形質転換宿主細胞を、挿入したHTLV−III
    cDNAによってコードされるポリペプチドを発現さ
    せるのに十分な条件下で培養する;ことから成るHTL
    V−IIIポリペプチドの生産方法。
  29. 【請求項29】 切断工程がHTLV−III cDN
    Aを制限エンドヌクレアーゼで消化してcDNAの制限
    断片をつくることから成る、請求項28記載の方法。
  30. 【請求項30】 切断工程がHTLV−III cDN
    Aを剪断してcDNA断片を得ることから成る、請求項
    28記載の方法。
  31. 【請求項31】 (a)HTLV−III ゲノムcD
    NAを制限エンドヌクレアーゼSst1で切断し; (b)切断したcDNAを制限エンドヌクレアーゼで十
    分に消化して、env遺伝子の少なくとも一部分を包含
    する制限断片を生成し; (c)該制限断片を単離し; (d)該制限断片から長さが約200〜500塩基対の
    DNA断片をつくり; (e)約200〜500塩基対の該DNA断片を単離
    し; (f)env遺伝子産物およびβ−ガラクトシダーゼか
    ら成るハイブリッドタンパク質を生産するために、読み
    取り枠発現ベクターpMR100内に単離したDNA断
    片を挿入し; (g)該ベクターを用いてlacZ- 大腸菌細胞を形質
    転換させ; (h)形質転換細胞をマツコンキー(Mac Conk
    ey)寒天平板上に採置し、コロニーを形成させるのに
    十分な条件下に該平板を保持し、そして赤色を示す細胞
    コロニーを選択し; (i)選択したコロニーからの形質転換細胞を、ハイブ
    リッドタンパク質を発現させるのに十分な条件下で培養
    し; (j)培養した形質転換細胞から細胞タンパク質を得; (k)得られた細胞タンパク質を分離し; (l)分離したタンパク質をエイズ患者の血清と接触さ
    せて、その血清と免疫反応性のタンパク質を同定し;そ
    して (m)該免疫反応性タンパク質を単離する;ことから成
    るHTLV−III エンベロープポリペプチドの生産
    方法。
  32. 【請求項32】 請求項31記載の方法により生産され
    た融合タンパク質。
  33. 【請求項33】 env遺伝子発現産物をハイブリッド
    タンパク質の残部から分離する工程をさらに含む、請求
    項31記載の方法。
  34. 【請求項34】 請求項33記載の方法により生産され
    たHTLV−IIIエンベロープポリペプチド。
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