JPH0686639A - タン白の酵素加水分解方法および装置 - Google Patents
タン白の酵素加水分解方法および装置Info
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- JPH0686639A JPH0686639A JP5083449A JP8344993A JPH0686639A JP H0686639 A JPH0686639 A JP H0686639A JP 5083449 A JP5083449 A JP 5083449A JP 8344993 A JP8344993 A JP 8344993A JP H0686639 A JPH0686639 A JP H0686639A
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 十分に規定され、再現性のあるペプチドプロ
フィルを得ることができるタン白の酵素加水分解方法お
よび装置。 【構成】 タン白加水分解酵素およびタン白基質を混合
し、第１加水分解工程は攪拌タンクで行ない、第２加水
分解工程は静置混合要素を設置した管で行なう。
フィルを得ることができるタン白の酵素加水分解方法お
よび装置。 【構成】 タン白加水分解酵素およびタン白基質を混合
し、第１加水分解工程は攪拌タンクで行ない、第２加水
分解工程は静置混合要素を設置した管で行なう。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明はタン白の酵素加水分解方
法およびこの方法の実施装置に関する。
法およびこの方法の実施装置に関する。
【０００２】
【従来の技術および発明が解決しようとする課題】各種
既知の酵素加水分解方法があり、これらは例えば、基
質、酵素、加水分解の程度、および／または所要のペプ
チドプロフィルの選択で相互に異る。例えば、比較的良
く規定されたペプチドプロフィル、特に狭いオリゴペプ
チドプロフィルが腸粘膜による加水分解物の同化の理由
で必要である場合、既知加水分解方法は一般に少なくと
も１回の加水分解物の濾過または選別工程を含む。
既知の酵素加水分解方法があり、これらは例えば、基
質、酵素、加水分解の程度、および／または所要のペプ
チドプロフィルの選択で相互に異る。例えば、比較的良
く規定されたペプチドプロフィル、特に狭いオリゴペプ
チドプロフィルが腸粘膜による加水分解物の同化の理由
で必要である場合、既知加水分解方法は一般に少なくと
も１回の加水分解物の濾過または選別工程を含む。
【０００３】例えば、ＥＰ２２６，２２１号明細書は各
工程は不連続的に発酵タンクで行ない、そして各工程は
限外濾過工程で終結する１つ以上のタン白酵素加水分解
工程により２０００〜６０００の範囲の分子量を有する
アレルギー発現性のないペプチド製造方法を記載する。
工程は不連続的に発酵タンクで行ない、そして各工程は
限外濾過工程で終結する１つ以上のタン白酵素加水分解
工程により２０００〜６０００の範囲の分子量を有する
アレルギー発現性のないペプチド製造方法を記載する。
【０００４】米国特許第４，２１２，８８９号明細書は
魚肉および酵素の混合物を連続連結した数個の加水分解
タンクを含む装置に連続的に通す魚タン白可溶化方法を
記載する。
魚肉および酵素の混合物を連続連結した数個の加水分解
タンクを含む装置に連続的に通す魚タン白可溶化方法を
記載する。
【０００５】本発明により提示された問題は加水分解方
法を供することであり、この方法は好ましくは連続的に
行なってタンク内の不連続加水分解効率を等しくし、ま
たは一層高めることができ、および加水分解および／ま
たはペプチドスペクトルの十分に規定されかつ再現度合
いを有するタン白加水分解物を得ることができる。
法を供することであり、この方法は好ましくは連続的に
行なってタンク内の不連続加水分解効率を等しくし、ま
たは一層高めることができ、および加水分解および／ま
たはペプチドスペクトルの十分に規定されかつ再現度合
いを有するタン白加水分解物を得ることができる。
【０００６】
【課題を解決するための手段】このため、タン白基質を
タン白加水分解酵素により加水分解処理する本発明のタ
ン白酵素加水分解方法は、攪拌タンク内の第１酵素加水
分解工程および管内の第２酵素加水分解工程を含む。好
ましい態様では、本発明方法は連続的に行ない、第２酵
素加水分解工程は静置混合要素を備えた管内で行なう。
タン白加水分解酵素により加水分解処理する本発明のタ
ン白酵素加水分解方法は、攪拌タンク内の第１酵素加水
分解工程および管内の第２酵素加水分解工程を含む。好
ましい態様では、本発明方法は連続的に行ない、第２酵
素加水分解工程は静置混合要素を備えた管内で行なう。
【０００７】同様に、本発明方法の実施装置は、基質計
量ユニットおよび酵素計量ユニットに上流で連結し、少
なくとも１個の加水分解管に下流で連結する二重ジャケ
ットの攪拌加水分解タンクを含む。好ましい態様では、
管は静置混合要素を設置する。
量ユニットおよび酵素計量ユニットに上流で連結し、少
なくとも１個の加水分解管に下流で連結する二重ジャケ
ットの攪拌加水分解タンクを含む。好ましい態様では、
管は静置混合要素を設置する。
【０００８】こうして加水分解および／またはペプチド
スペクトルの十分に規定された度合いを有するタン白加
水分解物を高効率および再現しうる、好ましくは連続的
方法で製造できることが分かった。
スペクトルの十分に規定された度合いを有するタン白加
水分解物を高効率および再現しうる、好ましくは連続的
方法で製造できることが分かった。
【０００９】本発明方法および装置により、特に上部空
隙を残さずに完全に満たすことができる比較的小容積の
タンクおよび比較的大容積の管により作業できる。こう
して比較的小タンクで第１の比較的短かい工程、すなわ
ち加水分解開始工程および比較的大容量管で第２の比較
的長い工程、すなわち加水分解完了工程を好ましくは連
続して行なうことができる。反応時間、すなわち、タン
ク容量および管容量の合計により表わされる全容量の基
質の滞留時間は正確かつ簡単な方法で、例えば容量ポン
プにより調整できる。
隙を残さずに完全に満たすことができる比較的小容積の
タンクおよび比較的大容積の管により作業できる。こう
して比較的小タンクで第１の比較的短かい工程、すなわ
ち加水分解開始工程および比較的大容量管で第２の比較
的長い工程、すなわち加水分解完了工程を好ましくは連
続して行なうことができる。反応時間、すなわち、タン
ク容量および管容量の合計により表わされる全容量の基
質の滞留時間は正確かつ簡単な方法で、例えば容量ポン
プにより調整できる。
【００１０】比較のため大容量の１個の加水分解タンク
で加水分解を行なうことが望ましい場合、単位容量の加
水分解物の滞留時間は正確に規定できない。例えば、一
定ｐＨおよび／または温度条件を定着させ、さらにタン
クを空にするのに必要な時間をかなり要する場合、これ
は不連続加水分解で真実である。しかし、平均滞留時間
を規定することのみができる場合、同じことは連続加水
分解で一層真実である。上記米国特許第４，２１２，８
８９号明細書に記載のタイプの方法においてさえ、滞留
時間は一層正確に規定することはほとんどできない。
で加水分解を行なうことが望ましい場合、単位容量の加
水分解物の滞留時間は正確に規定できない。例えば、一
定ｐＨおよび／または温度条件を定着させ、さらにタン
クを空にするのに必要な時間をかなり要する場合、これ
は不連続加水分解で真実である。しかし、平均滞留時間
を規定することのみができる場合、同じことは連続加水
分解で一層真実である。上記米国特許第４，２１２，８
８９号明細書に記載のタイプの方法においてさえ、滞留
時間は一層正確に規定することはほとんどできない。
【００１１】対照的に、本発明方法および装置では、単
位容量の加水分解物の滞留時間は非常に正確な方法で、
非常に平らなフロントを有する、好ましくは静置混合要
素を設置した、加水分解管を通る加水分解物の流れを規
定できることが分かった。
位容量の加水分解物の滞留時間は非常に正確な方法で、
非常に平らなフロントを有する、好ましくは静置混合要
素を設置した、加水分解管を通る加水分解物の流れを規
定できることが分かった。
【００１２】本明細書では、加水分解度は１３％トリク
ロロ酢酸により沈澱できない全窒素％として測定された
非タン白態窒素（ＮＰＮ）量により規定される。窒素含
量はケルダール法により測定される。アミン態窒素（遊
離α−ＮＨ2 ）含量はアルカリ加水分解後ニンヒドリン
との反応により測定される。
ロロ酢酸により沈澱できない全窒素％として測定された
非タン白態窒素（ＮＰＮ）量により規定される。窒素含
量はケルダール法により測定される。アミン態窒素（遊
離α−ＮＨ2 ）含量はアルカリ加水分解後ニンヒドリン
との反応により測定される。
【００１３】トリチウム標識外因性セロトニン（セロト
ニン−3 Ｈ）を使用するセロトニン緩和はＲ．Ｆｒｉｔ
ｓｃｈｅおよびＭ．ＢｏｎｚｏｎがＩｎｔ．Ａｒｃｈ．
Ａｌｌｅｒｇ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．９３， ２８９〜２９
３（１９９０）に記載の方法によりラットの腹腔の正常
の肥満細胞で行なう。
ニン−3 Ｈ）を使用するセロトニン緩和はＲ．Ｆｒｉｔ
ｓｃｈｅおよびＭ．ＢｏｎｚｏｎがＩｎｔ．Ａｒｃｈ．
Ａｌｌｅｒｇ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．９３， ２８９〜２９
３（１９９０）に記載の方法によりラットの腹腔の正常
の肥満細胞で行なう。
【００１４】ＥＬＩＳＡ阻害試験はβ−ラクトグロブリ
ン（ＢＬＧ）、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）およびカゼ
イン（ＣＡＳ）の特異的ウサギ抗体により行なう。方法
の感度、すなわち濃度検出限界は２０ｎｇ／ｍｌであ
る。
ン（ＢＬＧ）、牛血清アルブミン（ＢＳＡ）およびカゼ
イン（ＣＡＳ）の特異的ウサギ抗体により行なう。方法
の感度、すなわち濃度検出限界は２０ｎｇ／ｍｌであ
る。
【００１５】高性能液体クロマトグラフィ分析（ＨＰＬ
Ｃ試験、ペプチドプロフィル）はタイプＴＳＫ−Ｇ２０
００−ＳＷシリカ（東洋曹達製品）、分画範囲はＢｉｏ
ｒａｄ ＢＩＯＳＩＬ ＳＥＣ−１２５カラムで５００
〜５０，０００ダルトンである、をベースとするゲルで
非変性条件下で行なう。結果は０．１Ｍリン酸塩溶液＋
０．４Ｍ ＮａＣｌ中でｐＨ６．８０で２２０ｎｍのピ
ークの読みの表面分布％で表わす。
Ｃ試験、ペプチドプロフィル）はタイプＴＳＫ−Ｇ２０
００−ＳＷシリカ（東洋曹達製品）、分画範囲はＢｉｏ
ｒａｄ ＢＩＯＳＩＬ ＳＥＣ−１２５カラムで５００
〜５０，０００ダルトンである、をベースとするゲルで
非変性条件下で行なう。結果は０．１Ｍリン酸塩溶液＋
０．４Ｍ ＮａＣｌ中でｐＨ６．８０で２２０ｎｍのピ
ークの読みの表面分布％で表わす。
【００１６】ポリアクリルアミドゲル中のゾーン電気泳
動による分析（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ試験）はＬａｅｍｍｌ
ｉがＮａｔｕｒｅ ２２７、６８０以下（１９７０）に
記載の方法により行なう。リシンの遮断はＨＰＬＣによ
り測定され、加水分解物の全リシンに対し遮断リシン％
として表わす。
動による分析（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ試験）はＬａｅｍｍｌ
ｉがＮａｔｕｒｅ ２２７、６８０以下（１９７０）に
記載の方法により行なう。リシンの遮断はＨＰＬＣによ
り測定され、加水分解物の全リシンに対し遮断リシン％
として表わす。
【００１７】「静置混合要素」とは波動性交差部材また
は金属またはプラスチック小片であると解され、これら
は交差し、または相互に連動し、そして管の軸に沿って
進行する複数の交差通路中に管により規定される空間を
分割する。このタイプの要素はＳｕｌｚｅｒ Ａ．
Ｇ．，ＣＨ−８４０１ ＷｉｎｔｅｒｔｈｕｒによりＳ
ＭＶ、ＳＭＸまたはＳＭＸＬの名称で市販させる。
は金属またはプラスチック小片であると解され、これら
は交差し、または相互に連動し、そして管の軸に沿って
進行する複数の交差通路中に管により規定される空間を
分割する。このタイプの要素はＳｕｌｚｅｒ Ａ．
Ｇ．，ＣＨ−８４０１ ＷｉｎｔｅｒｔｈｕｒによりＳ
ＭＶ、ＳＭＸまたはＳＭＸＬの名称で市販させる。
【００１８】最後に、静置混合要素により供される管は
特記しない場合でさえ二重ジャケットを組織的に設置す
ることを認識することは重要である。
特記しない場合でさえ二重ジャケットを組織的に設置す
ることを認識することは重要である。
【００１９】本発明方法はタン白基質として油糧種実ま
たはケーキの粉末またはペースト、食品級酵母または細
菌、動物または魚類の細切肉、または乳または乳誘導
物、例えば水性サスペンジョンの粒子または水性サスペ
ンジョンのようなタン白の豊富な任意の出発材料を使用
して行なうことができる。
たはケーキの粉末またはペースト、食品級酵母または細
菌、動物または魚類の細切肉、または乳または乳誘導
物、例えば水性サスペンジョンの粒子または水性サスペ
ンジョンのようなタン白の豊富な任意の出発材料を使用
して行なうことができる。
【００２０】タン白基質はホエイタン白を含有するホエ
イ基質、特にチーズ製造からのスイートホエイまたはカ
ゼイン製造からの酸ホエイが好ましく、これらはそのま
ま、またはミネラルを除去して、または乳糖を含まない
液体または再構成形である。
イ基質、特にチーズ製造からのスイートホエイまたはカ
ゼイン製造からの酸ホエイが好ましく、これらはそのま
ま、またはミネラルを除去して、または乳糖を含まない
液体または再構成形である。
【００２１】別の好ましい態様では、酵素はトリプシ
ン、キモトリプシン、パンクレアチン、細菌プロテアー
ゼ、かびプロテアーゼおよびその混合物から成る群から
選択する。タン白加水分解酵素および基質は０．１〜１
２アンソンユニット（ＡＵ）活性／１００ｇ基質乾物を
有する酵素量で混合できる。
ン、キモトリプシン、パンクレアチン、細菌プロテアー
ゼ、かびプロテアーゼおよびその混合物から成る群から
選択する。タン白加水分解酵素および基質は０．１〜１
２アンソンユニット（ＡＵ）活性／１００ｇ基質乾物を
有する酵素量で混合できる。
【００２２】第１加水分解工程は酵素の活性に有利な値
に調整したｐＨおよび温度で１０〜６０分行なうことが
好ましく、一方第２加水分解工程は第１工程の温度に等
しいか、またはより高い、特に０〜１０℃高い温度で１
〜８時間行なうことが好ましい。
に調整したｐＨおよび温度で１０〜６０分行なうことが
好ましく、一方第２加水分解工程は第１工程の温度に等
しいか、またはより高い、特に０〜１０℃高い温度で１
〜８時間行なうことが好ましい。
【００２３】中間または補充工程、特に静置混合要素を
設置した管で行なうことが好ましい予備混合工程；第１
加水分解工程前、中間、または後に特に熱交換機または
静置混合要素を設置した管を使用する熱変性工程；特に
第２加水分解工程後、特に熱交換機および／または蒸気
噴射機および／または静置混合要素を設置した管を使用
する１つ以上の酵素失活工程；および／または特に変性
工程後、特に例えば熱交換機または好ましくは静置混合
要素を設置した管を使用して行なう冷却工程を含むこと
ができる。
設置した管で行なうことが好ましい予備混合工程；第１
加水分解工程前、中間、または後に特に熱交換機または
静置混合要素を設置した管を使用する熱変性工程；特に
第２加水分解工程後、特に熱交換機および／または蒸気
噴射機および／または静置混合要素を設置した管を使用
する１つ以上の酵素失活工程；および／または特に変性
工程後、特に例えば熱交換機または好ましくは静置混合
要素を設置した管を使用して行なう冷却工程を含むこと
ができる。
【００２４】酵素は１または好ましくは２工程で失活で
きる。第１工程は一層正確には酵素の自己消化に相当
し、第２工程は一層正確には滅菌に相当する。
きる。第１工程は一層正確には酵素の自己消化に相当
し、第２工程は一層正確には滅菌に相当する。
【００２５】タンク内の第１加水分解工程は少なくとも
２部に分割して連続連結した少なくとも２個のタンクで
行なうこともできる。同様に、管内で行なう第２加水分
解工程は少なくとも２部に分割して連続連結した少なく
とも２個の管で行なうことができる。後者の場合、ｐＨ
調整および／または酵素の添加は２個の連続管の間で行
なうことができる。ｐＨ調整に対し、例えばＫＯＨ、Ｎ
ａＯＨまたはＣａ（ＯＨ）2 のようなアルカリ性、また
はＨＣｌまたはＨ3 ＰＯ4 のような酸性の適当な反応体
を使用することが好ましい。
２部に分割して連続連結した少なくとも２個のタンクで
行なうこともできる。同様に、管内で行なう第２加水分
解工程は少なくとも２部に分割して連続連結した少なく
とも２個の管で行なうことができる。後者の場合、ｐＨ
調整および／または酵素の添加は２個の連続管の間で行
なうことができる。ｐＨ調整に対し、例えばＫＯＨ、Ｎ
ａＯＨまたはＣａ（ＯＨ）2 のようなアルカリ性、また
はＨＣｌまたはＨ3 ＰＯ4 のような酸性の適当な反応体
を使用することが好ましい。
【００２６】本発明方法の好ましい一態様では、酵素は
細菌性アルカリプロテアーゼ、特にＢａｃｉｌｌｕｓ
ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓが生産し、「アルカラー
ゼ」、特に例えば「アルカラーゼ０．６Ｌ」または「ア
ルカラーゼ２．４Ｌ」の名称でノボ社が市販するもので
ある。この好ましい態様では、特に高いＮＰＮおよび特
に低減したアレルギー発現性を有する加水分解物を得ら
れることが分かった。
細菌性アルカリプロテアーゼ、特にＢａｃｉｌｌｕｓ
ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓが生産し、「アルカラー
ゼ」、特に例えば「アルカラーゼ０．６Ｌ」または「ア
ルカラーゼ２．４Ｌ」の名称でノボ社が市販するもので
ある。この好ましい態様では、特に高いＮＰＮおよび特
に低減したアレルギー発現性を有する加水分解物を得ら
れることが分かった。
【００２７】このため、第１加水分解工程は７．０〜１
０．０のｐＨ値および５０〜８０℃、好ましくは６３〜
７３℃で行ない、一方第２加水分解工程は６．５〜８．
０のｐＨ値および５５〜８０℃、好ましくは６５〜７３
℃で行なう。熱変性工程は第１加水分解工程後または２
つの加水分解工程間で３０秒〜１０分、好ましくは４〜
６分、８０〜１２０℃、好ましくは８５〜９５℃の温度
で行なうことができる。次に酵素は１０〜２０分、好ま
しくは２〜８分、７０〜１１０℃、好ましくは８５〜９
０℃で行なう自己消化工程、その後５秒〜５分、好まし
くは３０秒〜２分、１１０〜１５０℃、好ましくは１２
０〜１３０℃で行なう滅菌工程により失活させることが
できる。
０．０のｐＨ値および５０〜８０℃、好ましくは６３〜
７３℃で行ない、一方第２加水分解工程は６．５〜８．
０のｐＨ値および５５〜８０℃、好ましくは６５〜７３
℃で行なう。熱変性工程は第１加水分解工程後または２
つの加水分解工程間で３０秒〜１０分、好ましくは４〜
６分、８０〜１２０℃、好ましくは８５〜９５℃の温度
で行なうことができる。次に酵素は１０〜２０分、好ま
しくは２〜８分、７０〜１１０℃、好ましくは８５〜９
０℃で行なう自己消化工程、その後５秒〜５分、好まし
くは３０秒〜２分、１１０〜１５０℃、好ましくは１２
０〜１３０℃で行なう滅菌工程により失活させることが
できる。
【００２８】本発明方法の別の好ましい態様では、使用
酵素は一方では特にＢａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉ
ｆｏｒｍｉｓが生産し、「アルカラーゼ」、特に「アル
カラーゼ０．６Ｌ」または「アルカラーゼ２．４Ｌ」の
名称でノボ社が市販する細菌アルカリ性プロテアーゼ、
および他方では膵臓酵素、例えば特にトリプシンの組み
合せである。
酵素は一方では特にＢａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉ
ｆｏｒｍｉｓが生産し、「アルカラーゼ」、特に「アル
カラーゼ０．６Ｌ」または「アルカラーゼ２．４Ｌ」の
名称でノボ社が市販する細菌アルカリ性プロテアーゼ、
および他方では膵臓酵素、例えば特にトリプシンの組み
合せである。
【００２９】好ましい他の態様では、２つの基質、特に
２つのホエイ基質は共通の工程、好ましくは共通の滅菌
工程まで本発明方法によりこれら２種の酵素のうちの１
種により別別に加水分解し、その後２種の異る酵素の２
つの別別の自己消化工程にそれぞれ別別にかけることが
できる。同じ基質は連続してこれらの２種の酵素のうち
の１種の作用に、次にもう１種の作用にかけることもで
きる。これはこの組み合せにより得た、例えばホエイタ
ン白加水分解生成物は特にすぐれた貯蔵安定性を示しう
ることが分かったためである。
２つのホエイ基質は共通の工程、好ましくは共通の滅菌
工程まで本発明方法によりこれら２種の酵素のうちの１
種により別別に加水分解し、その後２種の異る酵素の２
つの別別の自己消化工程にそれぞれ別別にかけることが
できる。同じ基質は連続してこれらの２種の酵素のうち
の１種の作用に、次にもう１種の作用にかけることもで
きる。これはこの組み合せにより得た、例えばホエイタ
ン白加水分解生成物は特にすぐれた貯蔵安定性を示しう
ることが分かったためである。
【００３０】膵臓酵素、特に上記組み合せの特に例えば
トリプシンにより本発明方法を実施するために、ＥＰ３
２２５８９号明細書に記載のｐＨおよび温度条件は有利
に使用できる。
トリプシンにより本発明方法を実施するために、ＥＰ３
２２５８９号明細書に記載のｐＨおよび温度条件は有利
に使用できる。
【００３１】本発明実施装置は上流で基質計量ユニット
および酵素計量ユニットに、下流で静置混合要素を設置
した少なくとも１個の加水分解管に連結する二重ジャケ
ット攪拌加水分解タンクを含む。
および酵素計量ユニットに、下流で静置混合要素を設置
した少なくとも１個の加水分解管に連結する二重ジャケ
ット攪拌加水分解タンクを含む。
【００３２】この装置では、管は垂直配置し、その下端
はタンクに連結し、その上端は排出管中に開口できる。
また水平に、または任意の他の位置に配置することもで
きる。好ましい態様では、直径の４倍の大きさの長さを
有する。
はタンクに連結し、その上端は排出管中に開口できる。
また水平に、または任意の他の位置に配置することもで
きる。好ましい態様では、直径の４倍の大きさの長さを
有する。
【００３３】別の好ましい態様では、基質および酵素計
量ユニットは容量ポンプにより加水分解タンクに連結し
た供給容器を含む。装置はｐＨメータにより調整した容
量ポンプを経て加水分解タンクに連結する供給容器を含
む反応体計量ユニットも含む。
量ユニットは容量ポンプにより加水分解タンクに連結し
た供給容器を含む。装置はｐＨメータにより調整した容
量ポンプを経て加水分解タンクに連結する供給容器を含
む反応体計量ユニットも含む。
【００３４】装置は１個のタンクの代りに連続連結した
数個のタンクを含むことができる。特にそのタンクのう
ちの１つは予備加水分解タンクとして使用することがで
きる。装置は上流で酵素計量ユニットおよび反応体計量
ユニットに連結できる連結管によりタンクの下流で連続
連結する静置混合要素を設置した数個の加水分解管を含
むこともできる。静置混合要素を設置した管は酵素、基
質および／または反応体計量ユニットとタンク間、また
は装置が数個のタンクを含む場合２個の連続タンク間で
あっても供することもできる。
数個のタンクを含むことができる。特にそのタンクのう
ちの１つは予備加水分解タンクとして使用することがで
きる。装置は上流で酵素計量ユニットおよび反応体計量
ユニットに連結できる連結管によりタンクの下流で連続
連結する静置混合要素を設置した数個の加水分解管を含
むこともできる。静置混合要素を設置した管は酵素、基
質および／または反応体計量ユニットとタンク間、また
は装置が数個のタンクを含む場合２個の連続タンク間で
あっても供することもできる。
【００３５】本発明方法実施装置は３例の態様を説明す
る図面を引用して以下に詳細に記載する。図１は１個の
タンクおよび静置混合要素を設置した１個の管を含む装
置の第１態様を図示する。図２は１個のタンクおよび静
置混合要素を設置した数個の加水分解管を含む装置の第
２態様を図示する。図３は２個のタンクおよび静置混合
要素を設置した数個の加水分解管を含む装置の第３態様
を図示する。
る図面を引用して以下に詳細に記載する。図１は１個の
タンクおよび静置混合要素を設置した１個の管を含む装
置の第１態様を図示する。図２は１個のタンクおよび静
置混合要素を設置した数個の加水分解管を含む装置の第
２態様を図示する。図３は２個のタンクおよび静置混合
要素を設置した数個の加水分解管を含む装置の第３態様
を図示する。
【００３６】図１を引用すると、本装置は二重ジャケッ
ト２およびモータ４により駆動される攪拌機３を有する
加水分解タンク１を含む。タンクは各種パイプおよび攪
拌機３の軸が通るカバー５により流体の洩らない仕方で
密閉する。加水分解タンク１はパイプ６により基質計量
ユニット７−１１に、パイプ１２により酵素計量ユニッ
ト１３−１７に、そしてパイプ１８により反応体計量ユ
ニット１９−２４に上流で連結する。基質計量ユニット
は二重ジャケット８およびモータ１０により駆動される
攪拌機９を有する基質供給容器７を含む。容器７はパイ
プ６に連結した容量ポンプ１１により加水分解タンク１
に連結する。酵素計量ユニットは二重ジャケット１４お
よびモータ１６により駆動される攪拌機１５を有する酵
素供給容器１３を含む。容器１３はパイプ１２に連結し
た容量ポンプ１７により加水分解タンク１に連結する。
反応体計量ユニットはパイプ１８に連結した容量ポンプ
２０により加水分解タンク１に連結した反応体供給容器
１９を含む。容量ポンプ２０は測定電極２４がカバー５
を通ってタンク１中に浸漬し、ポンプ２０を調整する電
子装置（図示せず）に電気的に連結する（鎖線２３）ｐ
Ｈメータ２１により調整する。
ト２およびモータ４により駆動される攪拌機３を有する
加水分解タンク１を含む。タンクは各種パイプおよび攪
拌機３の軸が通るカバー５により流体の洩らない仕方で
密閉する。加水分解タンク１はパイプ６により基質計量
ユニット７−１１に、パイプ１２により酵素計量ユニッ
ト１３−１７に、そしてパイプ１８により反応体計量ユ
ニット１９−２４に上流で連結する。基質計量ユニット
は二重ジャケット８およびモータ１０により駆動される
攪拌機９を有する基質供給容器７を含む。容器７はパイ
プ６に連結した容量ポンプ１１により加水分解タンク１
に連結する。酵素計量ユニットは二重ジャケット１４お
よびモータ１６により駆動される攪拌機１５を有する酵
素供給容器１３を含む。容器１３はパイプ１２に連結し
た容量ポンプ１７により加水分解タンク１に連結する。
反応体計量ユニットはパイプ１８に連結した容量ポンプ
２０により加水分解タンク１に連結した反応体供給容器
１９を含む。容量ポンプ２０は測定電極２４がカバー５
を通ってタンク１中に浸漬し、ポンプ２０を調整する電
子装置（図示せず）に電気的に連結する（鎖線２３）ｐ
Ｈメータ２１により調整する。
【００３７】加水分解タンク１は相互に連動する金属ま
たはプラスチックの横木から成る静置混合要素２７を設
置し、二重ジャケット２６を有する加水分解管２５に下
流で連結する。タンク１は加水分解物試料をタンクから
取り出しうるように設計した三方バルブ２９に連結する
パイプにより管２５に連結する。管２５は垂直に配置さ
れ、その下端はタンク１に連結し、その上端は排出パイ
プ３０中に開口する。各二重ジャケット中に循環する流
体温度はタンク１に対し３１で、容器７に対し３２で、
容器１３に対し３３で、および管２５に対し３４で、記
号で示した装置により調整する。
たはプラスチックの横木から成る静置混合要素２７を設
置し、二重ジャケット２６を有する加水分解管２５に下
流で連結する。タンク１は加水分解物試料をタンクから
取り出しうるように設計した三方バルブ２９に連結する
パイプにより管２５に連結する。管２５は垂直に配置さ
れ、その下端はタンク１に連結し、その上端は排出パイ
プ３０中に開口する。各二重ジャケット中に循環する流
体温度はタンク１に対し３１で、容器７に対し３２で、
容器１３に対し３３で、および管２５に対し３４で、記
号で示した装置により調整する。
【００３８】図２では、図１に示した第１態様の要素に
相当する装置の第２態様の要素は同じ参照数字により示
す。この第２態様では、装置は静置混合要素２７，３
７，３８を設置し、容量ポンプ１７に連結するパイプ１
２に再結合するパイプ４１，４２により酵素供給容器１
３に上流で連結する連結管３９，４０を経てタンク１の
下流で連続連結する数個の加水分解管２５，３５，３６
を含む。連結パイプ３９，４０は容量ポンプ２０を連結
するパイプ１８に再結合するパイプ４３，４４により反
応体供給容器１９にも上流で連結する。
相当する装置の第２態様の要素は同じ参照数字により示
す。この第２態様では、装置は静置混合要素２７，３
７，３８を設置し、容量ポンプ１７に連結するパイプ１
２に再結合するパイプ４１，４２により酵素供給容器１
３に上流で連結する連結管３９，４０を経てタンク１の
下流で連続連結する数個の加水分解管２５，３５，３６
を含む。連結パイプ３９，４０は容量ポンプ２０を連結
するパイプ１８に再結合するパイプ４３，４４により反
応体供給容器１９にも上流で連結する。
【００３９】本発明装置のこの第２態様では、静置混合
要素を設置した混合管４５は酵素、基質および反応体計
量ユニットとタンク１間に再び供される。各種酵素、基
質および反応体供給容器は容量ポンプ４９および容量ポ
ンプ１１および２０をそれぞれ連結するパイプ４６，４
７および４８により管４５に連結する。
要素を設置した混合管４５は酵素、基質および反応体計
量ユニットとタンク１間に再び供される。各種酵素、基
質および反応体供給容器は容量ポンプ４９および容量ポ
ンプ１１および２０をそれぞれ連結するパイプ４６，４
７および４８により管４５に連結する。
【００４０】図３では、図１および図２に示す最初の２
態様の要素に相当する装置のこの第３態様の要素は再度
同じ引用数字で示す。この第３態様では、装置は静置混
合要素を設置し、加水分解タンク１の下流で連続連結す
る数個の加水分解管２５，３５，３６，５０を含む。加
水分解タンクは第２タンク、この場合予備加水分解タン
ク５１に、静置混合要素を設置した変性管５２を経て上
流で連結する。
態様の要素に相当する装置のこの第３態様の要素は再度
同じ引用数字で示す。この第３態様では、装置は静置混
合要素を設置し、加水分解タンク１の下流で連続連結す
る数個の加水分解管２５，３５，３６，５０を含む。加
水分解タンクは第２タンク、この場合予備加水分解タン
ク５１に、静置混合要素を設置した変性管５２を経て上
流で連結する。
【００４１】この第３態様では、予備加水分解タンク５
１は上流で基質および反応体供給容器７および１９に連
結し、一方酵素供給容器１３はそれぞれパイプ５６，１
２および４１により予備加水分解タンク５１、加水分解
タンク１および加水分解管２５および３５を連結するパ
イプ３９に下流で連結する。この態様では、静置混合要
素を設置し、最後の加水分解管５０の下流で連続連結す
る失活管５３，５４および冷却管５５が再び供される。
１は上流で基質および反応体供給容器７および１９に連
結し、一方酵素供給容器１３はそれぞれパイプ５６，１
２および４１により予備加水分解タンク５１、加水分解
タンク１および加水分解管２５および３５を連結するパ
イプ３９に下流で連結する。この態様では、静置混合要
素を設置し、最後の加水分解管５０の下流で連続連結す
る失活管５３，５４および冷却管５５が再び供される。
【００４２】本発明方法は次例により説明し、例中部お
よび％は重量による。例１ 本発明方法は図１に記載のものと同様の装置で行なう。
この場合、加水分解タンクは３０リットルの容積を有
し、静置混合要素を設置した加水分解管は高さ３ｍに対
し１８０リットルの容積を有する。使用基質は部分脱ミ
ネラルホエイタン白濃縮物で、乾物含量２０％、および
約２３％のタン白、１．９％の脂肪、７３％の乳糖およ
び１．３％の灰分の各含量（乾物基準％）を有する。３
ＡＵ／ｇの活性を有する豚トリプシンを１００ｇの基質
乾物につき１ｇ酵素量で、すなわち１００ｇの基質乾物
に対し３ＡＵで酵素として使用する。２Ｎ ＫＯＨを反
応体として使用する。タンクは最初に基質を満たし、酵
素に混合後不連続加水分解方法をｐＨ７．３、６０℃で
１５分開始し、その後加水分解基質は４０％のＮＰＮを
有する。次に方法は、タンク内の基質の平均滞留時間が
３０分であり、管内の加水分解物の滞留時間は３時間で
あるような割合で連続的に再開始する。６０℃の温度お
よび７．３のｐＨはタンクで維持する。６０℃の温度は
管に維持し、ｐＨは管の入口で約７．３から管の出口で
約６．９に自然に下がるように浮動できる。加水分解物
は管を出るとき６５％のＮＰＮを有する。比較として、
同じ基質を約７時間７．３のｐＨ、６０℃で２００リッ
トルタンクで同じ酵素対基質比で同じ酵素により不連続
的に加水分解する場合、６０％のＮＰＮを有する加水分
解物が得られる。
よび％は重量による。例１ 本発明方法は図１に記載のものと同様の装置で行なう。
この場合、加水分解タンクは３０リットルの容積を有
し、静置混合要素を設置した加水分解管は高さ３ｍに対
し１８０リットルの容積を有する。使用基質は部分脱ミ
ネラルホエイタン白濃縮物で、乾物含量２０％、および
約２３％のタン白、１．９％の脂肪、７３％の乳糖およ
び１．３％の灰分の各含量（乾物基準％）を有する。３
ＡＵ／ｇの活性を有する豚トリプシンを１００ｇの基質
乾物につき１ｇ酵素量で、すなわち１００ｇの基質乾物
に対し３ＡＵで酵素として使用する。２Ｎ ＫＯＨを反
応体として使用する。タンクは最初に基質を満たし、酵
素に混合後不連続加水分解方法をｐＨ７．３、６０℃で
１５分開始し、その後加水分解基質は４０％のＮＰＮを
有する。次に方法は、タンク内の基質の平均滞留時間が
３０分であり、管内の加水分解物の滞留時間は３時間で
あるような割合で連続的に再開始する。６０℃の温度お
よび７．３のｐＨはタンクで維持する。６０℃の温度は
管に維持し、ｐＨは管の入口で約７．３から管の出口で
約６．９に自然に下がるように浮動できる。加水分解物
は管を出るとき６５％のＮＰＮを有する。比較として、
同じ基質を約７時間７．３のｐＨ、６０℃で２００リッ
トルタンクで同じ酵素対基質比で同じ酵素により不連続
的に加水分解する場合、６０％のＮＰＮを有する加水分
解物が得られる。
【００４３】例２ ３つの別の試験中タンクの有効容積は、基質をタンクに
通した後得られるＮＰＮがそれぞれ１５、３５および４
５％であるように変更することを除いて、手順は例１記
載のものと同じである。５９、６３および６６％の各Ｎ
ＰＮを有する加水分解物をこうして管の出口で得る。比
較では、６０％のＮＰＮはタンクで不連続的に同じ条件
下で、すなわち、７．３のｐＨ、６０℃で、乾物含量２
０％を有する基質および１００ｇ基質乾物につき３ＡＵ
の活性を有する酵素量により約７時間で得られる。換言
すれば、基質が管の出口で３５％以上のＮＰＮを有する
場合不連続的に得られるものより高いＮＰＮを本方法に
より連続的に得ることができる。
通した後得られるＮＰＮがそれぞれ１５、３５および４
５％であるように変更することを除いて、手順は例１記
載のものと同じである。５９、６３および６６％の各Ｎ
ＰＮを有する加水分解物をこうして管の出口で得る。比
較では、６０％のＮＰＮはタンクで不連続的に同じ条件
下で、すなわち、７．３のｐＨ、６０℃で、乾物含量２
０％を有する基質および１００ｇ基質乾物につき３ＡＵ
の活性を有する酵素量により約７時間で得られる。換言
すれば、基質が管の出口で３５％以上のＮＰＮを有する
場合不連続的に得られるものより高いＮＰＮを本方法に
より連続的に得ることができる。
【００４４】例３ ７．３に対し７．８のｐＨ値および６０℃に対し５５℃
の温度をタンク内に維持することを除いて、手順は例１
記載のものと同じである。７０％のＮＰＮを有する加水
分解物を管の出口で得る。
の温度をタンク内に維持することを除いて、手順は例１
記載のものと同じである。７０％のＮＰＮを有する加水
分解物を管の出口で得る。
【００４５】例４ 本発明方法は図２に記載したものと同様の装置を使用し
て行なう。７．５％のタン白を含む乾物含量３３％を有
するホエイタン白濃縮物を基質として使用する。使用酵
素はＢａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓが
生産し、２．４ＡＵ／ｇの活性を有する「アルカラーゼ
２．４Ｌ」の名称でＮｏｖｏ会社により市販される細菌
アルカリ性酵素である。２Ｎ ＫＯＨを反応体として使
用する。反応は適当に開始後、連続的に再開始する。基
質処理量および、管およびタンクの寸法は基質または加
水分解物の滞留時間が静置混合要素を設置したタンクの
前の予備混合管でそれぞれ５〜１０分、予備混合管およ
びタンク間で連続連結する静置混合要素を設置した熱変
性管で５〜８分、タンク（第１加水分解工程）で２５〜
４０分、タンクの後の静置混合要素を設置した第１管Ａ
（第２加水分解工程の管Ａ）で１５〜２５分、静置混合
要素を設置した第２管Ｂ（第２加水分解工程の管Ｂ）で
１５〜２５分、静置混合要素を設置した第３管Ｃ（第２
加水分解工程の管Ｃ）で０〜１００分、管Ｃの残部に連
続連結した静置混合要素を設置した失活管で５〜２０分
および静置混合要素を設置した冷却管で５〜１５分であ
るように決定する。酵素の全量は４部に分割する。すな
わち、全量の５〜１５％の第１部は予備混合管で基質と
混合し、全量の３０〜４０％の第２部はタンクで基質と
混合し、全量の２０〜３０％の第３部は管Ａで基質と混
合し、そして全量の２０〜３０％の第４部は管Ｂで基質
と混合する。基質のｐＨ値は管Ｂまで７．３に調整し、
それ以後ｐＨは浮動する。温度は予備混合管で７５℃
に、熱変性管で８５℃に、タンクで７０℃に、管Ａおよ
び管Ｂで７１℃に、失活管で８０〜１０５℃に、そして
冷却管で２〜８℃に調整する。こうして製造した加水分
解物は冷却管後に集める。
て行なう。７．５％のタン白を含む乾物含量３３％を有
するホエイタン白濃縮物を基質として使用する。使用酵
素はＢａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓが
生産し、２．４ＡＵ／ｇの活性を有する「アルカラーゼ
２．４Ｌ」の名称でＮｏｖｏ会社により市販される細菌
アルカリ性酵素である。２Ｎ ＫＯＨを反応体として使
用する。反応は適当に開始後、連続的に再開始する。基
質処理量および、管およびタンクの寸法は基質または加
水分解物の滞留時間が静置混合要素を設置したタンクの
前の予備混合管でそれぞれ５〜１０分、予備混合管およ
びタンク間で連続連結する静置混合要素を設置した熱変
性管で５〜８分、タンク（第１加水分解工程）で２５〜
４０分、タンクの後の静置混合要素を設置した第１管Ａ
（第２加水分解工程の管Ａ）で１５〜２５分、静置混合
要素を設置した第２管Ｂ（第２加水分解工程の管Ｂ）で
１５〜２５分、静置混合要素を設置した第３管Ｃ（第２
加水分解工程の管Ｃ）で０〜１００分、管Ｃの残部に連
続連結した静置混合要素を設置した失活管で５〜２０分
および静置混合要素を設置した冷却管で５〜１５分であ
るように決定する。酵素の全量は４部に分割する。すな
わち、全量の５〜１５％の第１部は予備混合管で基質と
混合し、全量の３０〜４０％の第２部はタンクで基質と
混合し、全量の２０〜３０％の第３部は管Ａで基質と混
合し、そして全量の２０〜３０％の第４部は管Ｂで基質
と混合する。基質のｐＨ値は管Ｂまで７．３に調整し、
それ以後ｐＨは浮動する。温度は予備混合管で７５℃
に、熱変性管で８５℃に、タンクで７０℃に、管Ａおよ
び管Ｂで７１℃に、失活管で８０〜１０５℃に、そして
冷却管で２〜８℃に調整する。こうして製造した加水分
解物は冷却管後に集める。
【００４６】例５ 本方法は図３に記載のものと同様のタイプの装置を使用
して行なう。７％のタン白を含む乾物含量２８％を有す
るホエイタン白濃縮物を基質として使用する。アルカラ
ーゼ２．４Ｌをタン白基準で２〜６％の総量で、すなわ
ち１００ｇの基質乾物につき１．２〜３．６ＡＵで酵素
として使用する。２Ｎ ＫＯＨを反応体として使用す
る。方法は適当に開始後、連続的に再開始する。基質処
理量および、管およびタンクの寸法は連続工程が次のよ
うに行なわれるように決定する。予備加水分解タンクの
前の静置混合要素を設置した予備混合管では、総量３３
％の酵素を８．７のｐＨ、１０℃で基質と混合する。第
１加水分解工程の第１相は６５℃で１５分予備加水分解
タンクで行なう。予備加水分解タンクと加水分解タンク
間で連続連結した静置混合要素を設置した熱変性管で
は、温度は５分間９２℃に上げ、次いで６５℃に冷却す
る。加水分解タンクでは、総量の残りの６６％の酵素を
添加し、第１加水分解工程の第２相はｐＨ７．４、６５
℃で４５分行なう。静置混合要素を設置し、タンクの下
流で連結する３個の管では、第２加水分解工程は６５℃
で１９５分、すなわち各管で６５分行なう。ｐＨは各管
の入口で７．５に調整し、次に浮動する。３個の加水分
解管後に連続連結する静置混合要素を設置した失活管で
は、酵素を８７℃で５分自己消化させる。失活管後連続
連結した蒸気注入加熱ユニットでは、加水分解物は１２
５℃で１分滅菌する。次に加水分解物は冷却後集める。
して行なう。７％のタン白を含む乾物含量２８％を有す
るホエイタン白濃縮物を基質として使用する。アルカラ
ーゼ２．４Ｌをタン白基準で２〜６％の総量で、すなわ
ち１００ｇの基質乾物につき１．２〜３．６ＡＵで酵素
として使用する。２Ｎ ＫＯＨを反応体として使用す
る。方法は適当に開始後、連続的に再開始する。基質処
理量および、管およびタンクの寸法は連続工程が次のよ
うに行なわれるように決定する。予備加水分解タンクの
前の静置混合要素を設置した予備混合管では、総量３３
％の酵素を８．７のｐＨ、１０℃で基質と混合する。第
１加水分解工程の第１相は６５℃で１５分予備加水分解
タンクで行なう。予備加水分解タンクと加水分解タンク
間で連続連結した静置混合要素を設置した熱変性管で
は、温度は５分間９２℃に上げ、次いで６５℃に冷却す
る。加水分解タンクでは、総量の残りの６６％の酵素を
添加し、第１加水分解工程の第２相はｐＨ７．４、６５
℃で４５分行なう。静置混合要素を設置し、タンクの下
流で連結する３個の管では、第２加水分解工程は６５℃
で１９５分、すなわち各管で６５分行なう。ｐＨは各管
の入口で７．５に調整し、次に浮動する。３個の加水分
解管後に連続連結する静置混合要素を設置した失活管で
は、酵素を８７℃で５分自己消化させる。失活管後連続
連結した蒸気注入加熱ユニットでは、加水分解物は１２
５℃で１分滅菌する。次に加水分解物は冷却後集める。
【００４７】例６ 本方法は図１に記載したものと同様の装置を使用して行
ない、加水分解タンクは２．８リットルの容積を有し、
静置混合要素を設置した加水分解管は約５ｍの長さに対
し１１．６リットルの容積を有する。７．５％のタン白
を含む乾物含量３３％を有するホエイタン白濃縮物を使
用する。アルカラーゼ２．４Ｌを酵素としてタン白基準
で全量６．３％で、すなわち１００ｇの基質乾物につき
３．４ＡＵで使用する。２Ｎ ＫＯＨを反応体として使
用する。タンクは最初に基質を満たし、酵素と混合後、
不連続加水分解方法は７．３のｐＨ、７０℃で２５分開
始する。次に方法は装置内の加水分解物の全滞留時間が
２４０分（タンクで４７分、管で１９３分）であるよう
な割合で連続的に開始する。７０℃の温度および７．３
のｐＨをタンクで維持する。７０℃の温度は管で維持
し、ｐＨは管の入口で約７．３から管の出口で約６．７
２に自然に下がるように浮動させる。試料は連続方法の
出発後２４０分から計算して０、６０、１２０および１
８０分に管の出口で分析用に採取する。これらの試料は
表１に示すｐＨ値およびアミン窒素含量を示し、表中タ
ンクのｐＨを７．３に保持するために使用したＫＯＨの
相当量も示す。
ない、加水分解タンクは２．８リットルの容積を有し、
静置混合要素を設置した加水分解管は約５ｍの長さに対
し１１．６リットルの容積を有する。７．５％のタン白
を含む乾物含量３３％を有するホエイタン白濃縮物を使
用する。アルカラーゼ２．４Ｌを酵素としてタン白基準
で全量６．３％で、すなわち１００ｇの基質乾物につき
３．４ＡＵで使用する。２Ｎ ＫＯＨを反応体として使
用する。タンクは最初に基質を満たし、酵素と混合後、
不連続加水分解方法は７．３のｐＨ、７０℃で２５分開
始する。次に方法は装置内の加水分解物の全滞留時間が
２４０分（タンクで４７分、管で１９３分）であるよう
な割合で連続的に開始する。７０℃の温度および７．３
のｐＨをタンクで維持する。７０℃の温度は管で維持
し、ｐＨは管の入口で約７．３から管の出口で約６．７
２に自然に下がるように浮動させる。試料は連続方法の
出発後２４０分から計算して０、６０、１２０および１
８０分に管の出口で分析用に採取する。これらの試料は
表１に示すｐＨ値およびアミン窒素含量を示し、表中タ
ンクのｐＨを７．３に保持するために使用したＫＯＨの
相当量も示す。
【表１】 表 １ 時 間 ｐＨ アミン窒素 ＫＯＨ （分） （％） （ｇ／ｈ） ０ ６．７１ ０．２６ １２４ ６０ ６．７２ ０．２５ １２３ １２０ ６．７３ ０．２６ １２５ １８０ ６．７１ ０．２６ １２５ ｇ／ｈで示したＫＯＨ量は４７分の滞留時間に対しタン
ク１リットルにつき４４，３７５ｇの平均消費に相当す
る。加水分解物の特徴は管の出口から採取した分析用試
料についてほとんど時間に関し変動しないことが表１か
ら分かる。これらの試料の有利なペプチドプロフィル、
大部分が小ペプチドで、非常に一定であることもポリア
クリルアミドゲル（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ方法）でゾーン電
気泳動により証明することもできる。比較のため、同じ
基質を同じ酵素により、同じ酵素対基質比で不連続的に
２リットルタンクで７０℃で、７．３に保持したｐＨで
４７分間酵素加水分解した。これらの最初の４７分後、
ｐＨは浮動させる。試料は加水分解の開始から数えて４
７分後、次いで２４０分まで、および２４０分を超えて
各種時間に分析用に採取した。これらの試料は表２に示
すｐＨ値およびアミン窒素含量を有する。
ク１リットルにつき４４，３７５ｇの平均消費に相当す
る。加水分解物の特徴は管の出口から採取した分析用試
料についてほとんど時間に関し変動しないことが表１か
ら分かる。これらの試料の有利なペプチドプロフィル、
大部分が小ペプチドで、非常に一定であることもポリア
クリルアミドゲル（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ方法）でゾーン電
気泳動により証明することもできる。比較のため、同じ
基質を同じ酵素により、同じ酵素対基質比で不連続的に
２リットルタンクで７０℃で、７．３に保持したｐＨで
４７分間酵素加水分解した。これらの最初の４７分後、
ｐＨは浮動させる。試料は加水分解の開始から数えて４
７分後、次いで２４０分まで、および２４０分を超えて
各種時間に分析用に採取した。これらの試料は表２に示
すｐＨ値およびアミン窒素含量を有する。
【表２】 表 ２ 時 間 ｐＨ アミン窒素 （分） （％） ４７ ７．３０ ０．２１ ６７ ７．０ ０．２２ １４０ ６．７７ ０．２４ １９７ ６．７５ ０．２７ ２４０ ６．７２ ０．２６ ３００ ６．６８ ３６０ ６．６５ 最初の４７分中ｐＨを７．３に保持するために使用した
ＫＯＨ量は４５．５ｇ／ｌタンクである。表２からタン
クで不連続的に得た加水分解物の特徴は急速に、例６で
使用した装置で連続的滞留時間に相当する２４０分後に
再び変動することが分かる。これは不連続方法でタンク
を空にするのに要する時間中発生するものと対比しうる
生成物の発現の危険がない本発明方法の利点の１つを実
証する。
ＫＯＨ量は４５．５ｇ／ｌタンクである。表２からタン
クで不連続的に得た加水分解物の特徴は急速に、例６で
使用した装置で連続的滞留時間に相当する２４０分後に
再び変動することが分かる。これは不連続方法でタンク
を空にするのに要する時間中発生するものと対比しうる
生成物の発現の危険がない本発明方法の利点の１つを実
証する。
【００４８】例７ 本方法は例１に記載のものと同様の装置を使用して行な
い、この場合加水分解タンクは５リットルの容積を有
し、静置混合要素を設置した加水分解管は約５ｍの長さ
に対し９．６リットルの容積を有する。７．５％タン白
を含む乾物含量３３％を有するホエイタン白濃縮物を基
質として使用する。アルカラーゼ２．４Ｌは酵素として
タン白基準で８％の総量、すなわち１００ｇの基質乾物
につき４．４ＡＵで使用する。これらの８％のうち、２
％はタンクで使用し、６％は管の入口で添加する。２％
ＫＯＨを反応体として使用する。２つの別の試験では、
タンクに最初に基質を満たし、酵素と混合後、不連続加
水分解方法はｐＨ７．３、および７２．５℃および７４
℃の２つの異る温度で４０分出発する。次に各方法は装
置内の加水分解物の全滞留時間は１１６分（タンクで４
０分および管で７６分）であるような割合で連続的に再
開始する。７２．５℃および７４℃の各温度および７．
３のｐＨは各２試験でタンクに維持する。７２℃の温度
は管で維持し、ｐＨは浮動させる。タンクで７２．５℃
および７４℃の温度に相当するこうして得た加水分解物
は９７．２％および９１．４％のそれぞれのＮＰＮを有
し、タンクのｐＨを７．３に維持するために２０５ｇ／
時間および１９８ｇ／時間の各量のＫＯＨの使用が必要
であった。さらに、ポリアクリルアミドゲル（ＳＤＳ−
ＰＡＧＥ法）中のゾーン電気泳動によりこれらは比較的
狭いペプチドプロフィルを有することが分かる。比較の
ため、同じ基質をタン白基準で４％の全量で、すなわち
１００ｇの基質乾物につき２．２ＡＵでアルカラーゼ
２．４Ｌにより、５リットルのタンクで７０℃、および
６．４、６．８、７．３および７．８の各ｐＨ値で４つ
の別の試験で連続的に２００分酵素加水分解する。こう
して加水分解物は８０〜８３％のＮＰＮを有し、ｐＨ値
を６．４、６．８、７．３および７．８に維持するため
に３３．４、５０．１、６０．２および７７．２のＫＯ
Ｈ（ｇ／時間）の各量の使用を必要とした。さらに、こ
れらは０．１７、０．２０、０．２１および０．２２％
の各アミン窒素含量を有する。ＳＤＳ−ＰＡＧＥ試験に
よりこれらは比較的広いペプチドプロフィルを有するこ
とが分かる。これは連続酵素加水分解により得た、低度
の加水分解および比較的広いペプチドプロフィルを有す
る生成物と比較することにより高度の加水分解および比
較的狭いペプチドプロフィルを有する生成物を得ること
ができる限りにおいて本発明方法の別の利点を実証す
る。
い、この場合加水分解タンクは５リットルの容積を有
し、静置混合要素を設置した加水分解管は約５ｍの長さ
に対し９．６リットルの容積を有する。７．５％タン白
を含む乾物含量３３％を有するホエイタン白濃縮物を基
質として使用する。アルカラーゼ２．４Ｌは酵素として
タン白基準で８％の総量、すなわち１００ｇの基質乾物
につき４．４ＡＵで使用する。これらの８％のうち、２
％はタンクで使用し、６％は管の入口で添加する。２％
ＫＯＨを反応体として使用する。２つの別の試験では、
タンクに最初に基質を満たし、酵素と混合後、不連続加
水分解方法はｐＨ７．３、および７２．５℃および７４
℃の２つの異る温度で４０分出発する。次に各方法は装
置内の加水分解物の全滞留時間は１１６分（タンクで４
０分および管で７６分）であるような割合で連続的に再
開始する。７２．５℃および７４℃の各温度および７．
３のｐＨは各２試験でタンクに維持する。７２℃の温度
は管で維持し、ｐＨは浮動させる。タンクで７２．５℃
および７４℃の温度に相当するこうして得た加水分解物
は９７．２％および９１．４％のそれぞれのＮＰＮを有
し、タンクのｐＨを７．３に維持するために２０５ｇ／
時間および１９８ｇ／時間の各量のＫＯＨの使用が必要
であった。さらに、ポリアクリルアミドゲル（ＳＤＳ−
ＰＡＧＥ法）中のゾーン電気泳動によりこれらは比較的
狭いペプチドプロフィルを有することが分かる。比較の
ため、同じ基質をタン白基準で４％の全量で、すなわち
１００ｇの基質乾物につき２．２ＡＵでアルカラーゼ
２．４Ｌにより、５リットルのタンクで７０℃、および
６．４、６．８、７．３および７．８の各ｐＨ値で４つ
の別の試験で連続的に２００分酵素加水分解する。こう
して加水分解物は８０〜８３％のＮＰＮを有し、ｐＨ値
を６．４、６．８、７．３および７．８に維持するため
に３３．４、５０．１、６０．２および７７．２のＫＯ
Ｈ（ｇ／時間）の各量の使用を必要とした。さらに、こ
れらは０．１７、０．２０、０．２１および０．２２％
の各アミン窒素含量を有する。ＳＤＳ−ＰＡＧＥ試験に
よりこれらは比較的広いペプチドプロフィルを有するこ
とが分かる。これは連続酵素加水分解により得た、低度
の加水分解および比較的広いペプチドプロフィルを有す
る生成物と比較することにより高度の加水分解および比
較的狭いペプチドプロフィルを有する生成物を得ること
ができる限りにおいて本発明方法の別の利点を実証す
る。
【００４９】例８ 本方法は図１に記載のものと同様の装置を使用して行な
い、この場合加水分解タンクは２．８リットルの容積を
有し、静置混合要素を設置した加水分解管は約５ｍの長
さに対し１１．６リットルの容積を有する。７．５％の
タン白を含む乾物含量３３％を有するホエイタン白濃縮
物を基質として使用する。アルカラーゼ２．４Ｌは酵素
としてタン白基準で７％の全量で、すなわち１００ｇの
基質乾物につき３．８ＡＵで使用する。これらの７％の
うち、２％はタンクで使用し、５％は管の入口で添加す
る。２Ｎ ＫＯＨは反応体として使用する。タンクに最
初に基質を満たし、酵素と混合後、不連続加水分解方法
をｐＨ７．８、７０℃で２５分間出発させる。次に方法
は、加水分解物の滞留時間はタンクで４５分および加水
分解物管で１７０分、すなわち全体で２１５分であるよ
うな割合で連続的に再開始する。７０℃の温度および
７．８のｐＨはタンクで維持する。７０℃の温度は管で
維持し、ｐＨは管の入口で約７．８から管の出口で約
６．６７に自然に低下するように浮動させる。静置混合
要素を設置し、加水分解管の出口と連続連結する失活管
では、加水分解物は９０℃で１８分失活させる。静置混
合要素を設置し、失活管の下流で連続連結する冷却管で
は、加水分解物は環境温度に冷却する。冷却管の出口
で、試料は連続方法の出発後２１５分から加水分解管の
出口で数えて０、６０、１２０、１８０および２４０分
で分析用に採取する。これらの試料は表３で示すｐＨ
値、アミン窒素含量、リシン遮断、およびＮＰＮを有す
る。表中、タンクで７．８のｐＨを維持するために使用
するＫＯＨの相当量も示す。
い、この場合加水分解タンクは２．８リットルの容積を
有し、静置混合要素を設置した加水分解管は約５ｍの長
さに対し１１．６リットルの容積を有する。７．５％の
タン白を含む乾物含量３３％を有するホエイタン白濃縮
物を基質として使用する。アルカラーゼ２．４Ｌは酵素
としてタン白基準で７％の全量で、すなわち１００ｇの
基質乾物につき３．８ＡＵで使用する。これらの７％の
うち、２％はタンクで使用し、５％は管の入口で添加す
る。２Ｎ ＫＯＨは反応体として使用する。タンクに最
初に基質を満たし、酵素と混合後、不連続加水分解方法
をｐＨ７．８、７０℃で２５分間出発させる。次に方法
は、加水分解物の滞留時間はタンクで４５分および加水
分解物管で１７０分、すなわち全体で２１５分であるよ
うな割合で連続的に再開始する。７０℃の温度および
７．８のｐＨはタンクで維持する。７０℃の温度は管で
維持し、ｐＨは管の入口で約７．８から管の出口で約
６．６７に自然に低下するように浮動させる。静置混合
要素を設置し、加水分解管の出口と連続連結する失活管
では、加水分解物は９０℃で１８分失活させる。静置混
合要素を設置し、失活管の下流で連続連結する冷却管で
は、加水分解物は環境温度に冷却する。冷却管の出口
で、試料は連続方法の出発後２１５分から加水分解管の
出口で数えて０、６０、１２０、１８０および２４０分
で分析用に採取する。これらの試料は表３で示すｐＨ
値、アミン窒素含量、リシン遮断、およびＮＰＮを有す
る。表中、タンクで７．８のｐＨを維持するために使用
するＫＯＨの相当量も示す。
【表３】 表 ３ 時 間 ｐＨ アミン態窒素 ＫＯＨ リシン遮断 ＮＰＮ （分） （％） （ｇ／ｈ） （％） （％） ０ ６．６７ ０．２６ １２５ １６．３ ９５ ６０ ６．６８ ０．２５ １２４ １６．２ ９６ １２０ ６．６７ ０．２６ １２８ １６．３ ９４ １８０ ６．６７ ０．２７ １２４ １６．２ ９５ ２４０ ６．６７ ０．２６ １２７ １６．１ ９６ 表３から、例６の表１からと同様に加水分解物の特徴
は、加水分解管の出口で試料を採取した時間に関係なく
ほとんど変動しないことが分かる。本例条件下で得た生
成物のペプチドプロフィルおよび低アレルギー発現性は
ＨＰＬＣ、エリザおよびセロトニン−3 Ｈ試験を行な
い、その結果は表５、６および７に示す。比較のため、
１６０ｋｇの同じ基質はタン白基準で７％の全量の同じ
酵素によりタンクで７０℃で不連続酵素加水分解する。
これらの７％の酵素のうち、２％は最初の加水分解相に
対しｐＨ７．８で４５分使用し、その後ｐＨは浮動させ
る。６０分後、残りの５％の酵素を添加し、加水分解は
７０℃および浮動ｐＨで２１５分まで、および超えて継
続する。２０ｋｇの加水分解物は加水分解の初めから数
えて１２０分後に取り出す。さらに２０ｋｇ量を１５
０、１８０、２００、２５０、３００および３６０分後
に採取する。試料は２１５分の加水分解後分析用に採取
する。各種採取物および試料に相当する加水分解物は直
ちに失活させ（熱交換機で９０℃１８分）、次いで環境
温度に冷却し（熱交換機で）、分析する。これらは表４
に示すｐＨ値、アミン窒素含量（９７％乾物を含有する
粉末基準％）、リシン遮断およびＮＰＮを有する。
は、加水分解管の出口で試料を採取した時間に関係なく
ほとんど変動しないことが分かる。本例条件下で得た生
成物のペプチドプロフィルおよび低アレルギー発現性は
ＨＰＬＣ、エリザおよびセロトニン−3 Ｈ試験を行な
い、その結果は表５、６および７に示す。比較のため、
１６０ｋｇの同じ基質はタン白基準で７％の全量の同じ
酵素によりタンクで７０℃で不連続酵素加水分解する。
これらの７％の酵素のうち、２％は最初の加水分解相に
対しｐＨ７．８で４５分使用し、その後ｐＨは浮動させ
る。６０分後、残りの５％の酵素を添加し、加水分解は
７０℃および浮動ｐＨで２１５分まで、および超えて継
続する。２０ｋｇの加水分解物は加水分解の初めから数
えて１２０分後に取り出す。さらに２０ｋｇ量を１５
０、１８０、２００、２５０、３００および３６０分後
に採取する。試料は２１５分の加水分解後分析用に採取
する。各種採取物および試料に相当する加水分解物は直
ちに失活させ（熱交換機で９０℃１８分）、次いで環境
温度に冷却し（熱交換機で）、分析する。これらは表４
に示すｐＨ値、アミン窒素含量（９７％乾物を含有する
粉末基準％）、リシン遮断およびＮＰＮを有する。
【表４】 表 ４ 時 間 ｐＨ アミン態窒素 リシン遮断 ＮＰＮ （分） （％，粉末） （％） （％） ６０ ７．５６ １２０ ６．９７ ０．６０ １５．３ １５０ ６．８７ ０．６３ １７．２ ９０ １８０ ６．８２ ０．６６ １８．２ ９４ ２００ ６．８０ ０．６８ １８．３ ９５ ２１５ ６．８０ ０．６８ １８．９ ９５ ２５０ ６．７９ ０．６９ １９．４ ９６ ３００ ６．７７ ０．７１ １９．５ ９６ ３６０ ６．７６ ０．７４ １９．６ ９７ 表４から、例６の表２からと同様に、タンクで不連続的
に得た加水分解物の特徴は例８で使用した装置で連続滞
留時間に相当する２１５分後に再び急速に変動すること
が分かる。
に得た加水分解物の特徴は例８で使用した装置で連続滞
留時間に相当する２１５分後に再び急速に変動すること
が分かる。
【００５０】これは不連続方法でタンクを空にするのに
要する時間中発生するものに匹敵しうる生成物の発現の
危険がない本方法の利点の１つを確証する。上記比較例
の条件下で得られる生成物のペプチドプロフィルおよび
低アレルギー発現性は生成物をＨＰＬＣ、エリザおよび
セロトニン−3 Ｈ試験により２１５分後に試験する。そ
の結果は表５、６および７に示す。類似試験は例７と比
較のために提示したｐＨ７．３に相当する条件下でタン
クで連続的に得た生成物に対し行なう。結果は表５、６
および７に示す。
要する時間中発生するものに匹敵しうる生成物の発現の
危険がない本方法の利点の１つを確証する。上記比較例
の条件下で得られる生成物のペプチドプロフィルおよび
低アレルギー発現性は生成物をＨＰＬＣ、エリザおよび
セロトニン−3 Ｈ試験により２１５分後に試験する。そ
の結果は表５、６および７に示す。類似試験は例７と比
較のために提示したｐＨ７．３に相当する条件下でタン
クで連続的に得た生成物に対し行なう。結果は表５、６
および７に示す。
【表５】 表 ５ ペプチドプロフィル（ＨＰＬＣ試験） 生成物 Ｋダルトンで表わした分子量限界内の範囲のペプチド％ ＞１４ １４−６ ６−3.５ 3.５−1.０ ＜１ 例 ８ ５ ７ ９ ３０ ４９ 比 較 ４ ７ １０ ３１ ４８ （不連続タンク） 比 較 ２１ １３ ９ ２４ ３３ （連続タンク） 表５に示す試験結果は、本発明方法により連続的に得た
加水分解物は、比較に対し不連続タンクで得た加水分解
物と少なくとも同じ狭い、小ペプチドに集中したペプチ
ドプロフィルを有することができるが、連続タンクで比
較に対し得た加水分解物は大きなペプチドの方向に移動
した非常に広いペプチドプロフィルを有することを明示
する。
加水分解物は、比較に対し不連続タンクで得た加水分解
物と少なくとも同じ狭い、小ペプチドに集中したペプチ
ドプロフィルを有することができるが、連続タンクで比
較に対し得た加水分解物は大きなペプチドの方向に移動
した非常に広いペプチドプロフィルを有することを明示
する。
【表６】 表 ６ ＥＬＩＳＡ阻害試験 生成物 タン白ｇにつきμｇ抗原で表わした残留抗原性 ＢＬＧ ＢＳＡ ＣＡＳ 例 ８ ５３ ２０ １５０ 比 較 ４１ ７ １４１ （不連続タンク） 比 較 １１１ ＞１０００ ３１９ （連続タンク）
【表７】 表 ７ セロトニン−3 Ｈ緩和試験 生成物 ｇタン白当量につき緩和に対しμｇのＢＬＧ当量 で表わした残留抗原性 例 ８ ２０ 比 較 ５ （不連続タンク） 比 較 ５０ （連続タンク） 表６および７に示す試験結果は、本発明方法により得た
加水分解物は不連続タンクで比較に対し得た加水分解物
と少なくとも同じ低アレルギー発現性であることができ
るが、連続タンクで比較に対し得た加水分解物は低アレ
ルギー発現性ではないことを説明する。
加水分解物は不連続タンクで比較に対し得た加水分解物
と少なくとも同じ低アレルギー発現性であることができ
るが、連続タンクで比較に対し得た加水分解物は低アレ
ルギー発現性ではないことを説明する。
【００５１】例９ 本方法はタンクで７２．５℃の温度に相当する条件下で
例７記載と同様に行なう。管は９部分に分割する。試料
は連続加水分解が不連続開始相後進行する時２つの連続
部分間で採取する。試料は連続加水分解期間が管内の生
成物の滞留時間に相当する時間に達する場合同じ間隔で
管の出口で採取する。試料のアミン窒素含量を測定す
る。これらの各含量は加水分解物が向かう方向の平衡含
量で割る。座標システム上に、得た商を縦座標上にプロ
ットし、一方装置の加水分解物の滞留時間で割った試料
採取時間の商は横座標にプロットする。横座標０．８か
ら交差し、その最高値の２／３で横座標１．０の垂直線
と交差し、そしてその最高値に達する、換言すれば横座
標１．２の垂直線で縦座標１．０の水平線に接触する、
Ｓ字形曲線が得られる。比較のため、試験は使用管が空
であり、さらに静置混合要素を設置した管と同じ寸法を
有することの他は同様に行なう。試料を同じ条件下で採
取し、同じ商が確定し、相当する曲線が同様に描かれ
る。横座標０．６から交差し、その最高値の１／２で横
座標１．０の垂直線と交差し、最高値、すなわち１．０
に横座標１．８の垂直線を越えて到達するだけのＳ字曲
線が得られる。これは本発明方法の別の２つの利点、す
なわち一方では急速に定常状態が定着でき、他方では装
置から出る加水分解物の均質性が定着できることを実証
する。
例７記載と同様に行なう。管は９部分に分割する。試料
は連続加水分解が不連続開始相後進行する時２つの連続
部分間で採取する。試料は連続加水分解期間が管内の生
成物の滞留時間に相当する時間に達する場合同じ間隔で
管の出口で採取する。試料のアミン窒素含量を測定す
る。これらの各含量は加水分解物が向かう方向の平衡含
量で割る。座標システム上に、得た商を縦座標上にプロ
ットし、一方装置の加水分解物の滞留時間で割った試料
採取時間の商は横座標にプロットする。横座標０．８か
ら交差し、その最高値の２／３で横座標１．０の垂直線
と交差し、そしてその最高値に達する、換言すれば横座
標１．２の垂直線で縦座標１．０の水平線に接触する、
Ｓ字形曲線が得られる。比較のため、試験は使用管が空
であり、さらに静置混合要素を設置した管と同じ寸法を
有することの他は同様に行なう。試料を同じ条件下で採
取し、同じ商が確定し、相当する曲線が同様に描かれ
る。横座標０．６から交差し、その最高値の１／２で横
座標１．０の垂直線と交差し、最高値、すなわち１．０
に横座標１．８の垂直線を越えて到達するだけのＳ字曲
線が得られる。これは本発明方法の別の２つの利点、す
なわち一方では急速に定常状態が定着でき、他方では装
置から出る加水分解物の均質性が定着できることを実証
する。
【図面の簡単な説明】
【図１】１個のタンクおよび静置混合要素を設置した１
個の管を含む装置の説明図である。
個の管を含む装置の説明図である。
【図２】１個のタンクおよび静置混合要素を設置した数
個の加水分解管を含む装置の説明図である。
個の加水分解管を含む装置の説明図である。
【図３】２個のタンクおよび静置混合要素を設置した数
個の加水分解管を含む装置の説明図である。
個の加水分解管を含む装置の説明図である。
１ 加水分解タンク ２ 二重ジャケット ３ 攪拌機 ４ モータ ５ カバー ６ 連結パイプ ７ 基質供給容器 ８ 二重ジャケット ９ 攪拌機 １０ モータ １１ 容量ポンプ １２ 連結パイプ １３ 酵素供給容器 １４ 二重ジャケット １５ 攪拌機 １６ モータ １７ 容量ポンプ １８ 連結パイプ １９ 反応体供給容器 ２０ 容量ポンプ ２１ ｐＨメータ ２４ 電極 ２５ 加水分解管 ２６ 二重ジャケット ２７ 静置混合要素 ２９ 三方バルブ ３０ 排出パイプ ３１ ジャケットの流体温度調整装置 ３２ ジャケットの流体温度調整装置 ３３ ジャケットの流体温度調整装置 ３４ ジャケットの流体温度調整装置 ３５ 加水分解管 ３６ 加水分解管 ３７ 静置混合要素 ３８ 静置混合要素 ３９ 連結パイプ ４０ 連結パイプ ４１ 連結パイプ ４２ 連結パイプ ４３ 連結パイプ ４４ 連結パイプ ４５ 混合管 ４６ 連結パイプ ４７ 連結パイプ ４８ 連結パイプ ４９ 容量ポンプ ５０ 加水分解管 ５１ 予備加水分解タンク ５２ 変性管 ５３ 失活管 ５４ 失活管 ５５ 冷却管 ５６ 連結パイプ
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ａ２３Ｊ 3/20 Ｃ１２Ｐ 21/06 8214−4Ｂ (72)発明者 ニクロ メイステル スイス国グロスホエシェステテン，モシュ ベルグベグ 20 (72)発明者 アルベール ランカン スイス国ローザンヌ，エペエフエル，ジェ ニ シミク セアシュベ （番地なし) (72)発明者 ロベール デュスタン ウド スイス国ローザンヌ，アブニュー デシャ ラン 63 (72)発明者 アルフレッド ウペイ スイス国イヴェルドン，リュ アルディマ ン 24ベ
Claims (13)
- 【請求項１】 タン白基質を攪拌タンク内の第１酵素加
水分解工程および管内の第２酵素加水分解工程を含むタ
ン白加水分解酵素により加水分解することを特徴とす
る、タン白の酵素加水分解方法。 - 【請求項２】 第２加水分解工程は静置混合要素を設置
した管で行なう、請求項１記載の連続酵素加水分解方
法。 - 【請求項３】 基質はタン白の豊富な出発材料、特に油
糧種実またはケーキの粉末またはペースト、食品級酵母
または細菌、動物または魚の細切肉、または乳または水
性サスペンジョンの粒子の乳誘導物または水性サスペン
ジョンである、請求項１記載の方法。 - 【請求項４】 タン白基質はホエイタン白を含有するホ
エイ基質、特にチーズ製造から出るスイートホエイまた
はカゼイン製造から出る酸ホエイで、そのまままたは脱
ミネラルまたは乳糖を含まない、液体または再構成形で
ある、請求項１記載の方法。 - 【請求項５】 タン白加水分解酵素はトリプシン、キモ
トリプシン、パンクレアチン、細菌プロテアーゼ、かび
プロテアーゼおよびその混合物から成る群から選択す
る、請求項１記載の方法。 - 【請求項６】 タン白加水分解酵素および基質は１００
ｇの基質乾物につき０．１〜１２ＡＵの活性を有する酵
素量で混合する、請求項１記載の方法。 - 【請求項７】 第１工程は酵素の活性に有利な値に調整
したｐＨおよび温度で１０〜６０分行ない、第２工程は
第１工程の温度に等しいか、またはより高い、特に０〜
１０℃高い値に調整した温度で１〜８時間行なう、請求
項１記載の方法。 - 【請求項８】 上流で基質計量ユニットおよび酵素計量
ユニットに連結し、下流で少なくとも１個の加水分解管
に連結する攪拌加水分解タンクを含むことを特徴とす
る、請求項１記載の方法を実施する装置。 - 【請求項９】 加水分解管は静置混合要素を設置する、
請求項８記載の装置。 - 【請求項１０】 管は垂直に配置され、その下端はタン
クに連結し、その上端は出口パイプ中に開口する、請求
項９記載の装置。 - 【請求項１１】 基質および酵素計量ユニットはそれぞ
れ加水分解タンクに連結した供給容器を含む、請求項９
記載の装置。 - 【請求項１２】 さらにタンクに連結したｐＨメータに
より調整する容量ポンプを経由し加水分解タンクに連結
した供給容器を有する反応体計量ユニットを含む、請求
項１１記載の装置。 - 【請求項１３】 静置混合要素を設置し、上流で酵素計
量ユニットおよび反応体計量ユニットに連結する連結パ
イプを経由し、タンクの下流で連続連結する数個の加水
分解管を含む、請求項１２記載の装置。
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CH1160/92A CH683695A5 (fr) | 1992-04-09 | 1992-04-09 | Hydrolyse enzymatique. |
| CH01160/92-4 | 1992-04-09 | ||
| CH1160/92-4 | 1992-04-09 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0686639A true JPH0686639A (ja) | 1994-03-29 |
| JP2788837B2 JP2788837B2 (ja) | 1998-08-20 |
Family
ID=4203885
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5083449A Expired - Fee Related JP2788837B2 (ja) | 1992-04-09 | 1993-04-09 | タン白の酵素加水分解方法および装置 |
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| Country | Link |
|---|---|
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| JP (1) | JP2788837B2 (ja) |
| AT (1) | ATE228571T1 (ja) |
| AU (1) | AU659925B2 (ja) |
| BR (1) | BR9301500A (ja) |
| CA (1) | CA2092953C (ja) |
| CH (1) | CH683695A5 (ja) |
| DE (1) | DE69332512T2 (ja) |
| MY (1) | MY109153A (ja) |
| NZ (1) | NZ247275A (ja) |
| PT (1) | PT566877E (ja) |
| ZA (1) | ZA932226B (ja) |
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| DK175501B1 (da) | 2002-12-02 | 2004-11-15 | Green Earth | Anlæg og fremgangsmåde til kontinuerlig hydrolyse af et proteinholdigt animalsk eller vegetabilsk råmateriale |
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| CN104304643A (zh) * | 2014-09-22 | 2015-01-28 | 江苏麦凯乐生物科技有限公司 | 一种小麦水解蛋白的生产工艺 |
| CN108697144A (zh) * | 2016-01-22 | 2018-10-23 | 利乐拉瓦尔集团及财务有限公司 | 用于水解婴儿配方的方法和装置 |
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| CN107674835A (zh) * | 2017-09-11 | 2018-02-09 | 广西肽王生物科技有限公司 | 辣木蛋白酶法水解装置 |
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