JPH0633320B2 - ラクトサミン化ヒトアルブミンとアデニン―9―β―D―アラビノフラノシド5′モノホスフェートの結合体の製造方法 - Google Patents
ラクトサミン化ヒトアルブミンとアデニン―9―β―D―アラビノフラノシド5′モノホスフェートの結合体の製造方法Info
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Description
【発明の詳細な説明】 本発明は、ウイルス起源の肝炎症状の治療学的処置にお
いて有用な、ラクトサミン化ヒトアルブミン(lactosam
inated human albumin)とアデニン−9−β−D−アラ
ビノフラノシド5′モノホスフエートの結合体(conjug
ates)に関する。
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inated human albumin)とアデニン−9−β−D−アラ
ビノフラノシド5′モノホスフエートの結合体(conjug
ates)に関する。
数年来、アデニン−9−β−D−アラビノシド(ara
−A)及びそのモノホスフエート(ara−AMP)は
ウイルスBによつて誘発された慢性肝炎の処置において
使用されている。ara−A及びara−AMPはウイ
ルス複製を阻害する(inhibit)。
−A)及びそのモノホスフエート(ara−AMP)は
ウイルスBによつて誘発された慢性肝炎の処置において
使用されている。ara−A及びara−AMPはウイ
ルス複製を阻害する(inhibit)。
〔(1)チヤドウイツク、アール ジー、バツセンデイン
エムエフ、クローフオードイーエム、トーマスエイチ
シー、シヤーロツク エス.,ブリテイツシユ.メデイ
カル.ジヤーナル.,1978;2:531−33(Ch
adwick RG,Bassendine MF,Crawford EM,Thomas HC,Sher
lock S.,Br.Med.J.,1978;2:531−33.)参
照〕。
エムエフ、クローフオードイーエム、トーマスエイチ
シー、シヤーロツク エス.,ブリテイツシユ.メデイ
カル.ジヤーナル.,1978;2:531−33(Ch
adwick RG,Bassendine MF,Crawford EM,Thomas HC,Sher
lock S.,Br.Med.J.,1978;2:531−33.)参
照〕。
(2)ポラード アール ビー、スミス ジエイ エル、
ニール イー エイ、グレゴリー ピー、メリガン テ
イー エル、ロビンリンダブリユー シー.、ジヤーナ
ル オブ アメリカン メデイカル アソシエーシヨン
1978;239:1648−50(Pollard RB,Smi
th JL,Neal EA,Gregory PB,Merigan TL,Robinson WC.,
JAMA 1978;239:1648−50.)。
ニール イー エイ、グレゴリー ピー、メリガン テ
イー エル、ロビンリンダブリユー シー.、ジヤーナ
ル オブ アメリカン メデイカル アソシエーシヨン
1978;239:1648−50(Pollard RB,Smi
th JL,Neal EA,Gregory PB,Merigan TL,Robinson WC.,
JAMA 1978;239:1648−50.)。
(3)バツセンデイン エム エフ、チヤド ウイツク
アール ジー、サルメロン ジエイ・シプトン ユー・
トーマス エイチシー、シヤーロツク エス、ガストロ
ンエンテロロジー1981;80:1016−22.
(Basasendine MF,Chadwick RG,Salmeron J.Shipton U.
Thomas HC,Sherlock S.,Gastroenterology 1981:
1016−22.)。
アール ジー、サルメロン ジエイ・シプトン ユー・
トーマス エイチシー、シヤーロツク エス、ガストロ
ンエンテロロジー1981;80:1016−22.
(Basasendine MF,Chadwick RG,Salmeron J.Shipton U.
Thomas HC,Sherlock S.,Gastroenterology 1981:
1016−22.)。
(4)スクラード ジーエイチ、ポラード アールビー、
スミス ジエイエル等、インフエクト.デイス 198
1;143:772−83(Scu-llard GH,Pollard RB,
Smith JL et al.,Infect.Dis 1981;143:77
2−83.)。
スミス ジエイエル等、インフエクト.デイス 198
1;143:772−83(Scu-llard GH,Pollard RB,
Smith JL et al.,Infect.Dis 1981;143:77
2−83.)。
(5)ウエラー アイブイデイー、バツセンデイン エム
エフ、クラキシ等.,グツド 1982;23:717
−23(Weller IVD,Bassen-dine MF,Craxi et al.,Gut
1982;23:717−23.)。
エフ、クラキシ等.,グツド 1982;23:717
−23(Weller IVD,Bassen-dine MF,Craxi et al.,Gut
1982;23:717−23.)。
(6)スミス シーアイ、キツチエン エルケイ、スクラ
ード ジーエイチ、ロビンソン ダブリユ エス、グレ
ゴリー ピービー、メリガン テイーシー.,ジヤーナ
ル オブ アメリカン メデイカル アソシエーシヨン
1982;247:2261−65.(Smith CI,Kit
chen LK,Scullard GH,Robin-son WS,Gregory PB,Meriga
n TC.,JAMA 1982;247:2261−6
5.)。
ード ジーエイチ、ロビンソン ダブリユ エス、グレ
ゴリー ピービー、メリガン テイーシー.,ジヤーナ
ル オブ アメリカン メデイカル アソシエーシヨン
1982;247:2261−65.(Smith CI,Kit
chen LK,Scullard GH,Robin-son WS,Gregory PB,Meriga
n TC.,JAMA 1982;247:2261−6
5.)。
(7)フーフナーグル ジエイエイチ、ハンソン アール
ジー、ミヌーク ジー ワイ等.ガストロエンテロロジ
ー 1984;86:150−57(Hoofnagle JH,Han
ton RG,Minuk GY et al.Gastroenterology1984;8
6:150−57)参照〕。
ジー、ミヌーク ジー ワイ等.ガストロエンテロロジ
ー 1984;86:150−57(Hoofnagle JH,Han
ton RG,Minuk GY et al.Gastroenterology1984;8
6:150−57)参照〕。
或る患者においては、これらの化合物は肝臓の組織学的
外観(histological appearance)の改善及び感染性の
低下(loss of infectivity)も生じる。
外観(histological appearance)の改善及び感染性の
低下(loss of infectivity)も生じる。
〔(8)スクラード ジーエイチ、アンドレ エルエル、
グリーンバーグ エイチビー等.ヘパトロジー 198
1;1:228−32.(Scullard GH,Andres LL,Gree
nberg HB et al.Hepatology 1981;228−3
2).)。
グリーンバーグ エイチビー等.ヘパトロジー 198
1;1:228−32.(Scullard GH,Andres LL,Gree
nberg HB et al.Hepatology 1981;228−3
2).)。
(9)スクラード ジーエイチ、グリーンレバーグ エイ
チビー、スミスジエイエル、グレゴリーピービー、メリ
ガン テイーシー、ロビンソン ダブリユエス、ヘパト
ロジー 1981;2:39−49(Scullard GH,Gree
nberg HB,Smith JL,Gregory PB,Merigan TC,Robinson W
S,Hepatology 1981;2:39−49)参照〕。
チビー、スミスジエイエル、グレゴリーピービー、メリ
ガン テイーシー、ロビンソン ダブリユエス、ヘパト
ロジー 1981;2:39−49(Scullard GH,Gree
nberg HB,Smith JL,Gregory PB,Merigan TC,Robinson W
S,Hepatology 1981;2:39−49)参照〕。
しかしながら、これらの薬は、胃腸管及び骨髄(medull
a ossium)の主として中枢神経系のレベルにおいて副作
用を生じ、これはしばしばそれらの投与を中断させる。
これらの副作用は、もしara−A又はara−AMP
が肝細胞に選択的に運ばれるならば排除され又は減少す
るかも知れない。
a ossium)の主として中枢神経系のレベルにおいて副作
用を生じ、これはしばしばそれらの投与を中断させる。
これらの副作用は、もしara−A又はara−AMP
が肝細胞に選択的に運ばれるならば排除され又は減少す
るかも知れない。
〔前記の文献(7)及び(10) サックス エスエル、
スミス ジエイエル、ポラード アールビー等、ジヤー
ナル オブ アメリカン メデイカル アソシエーシヨ
ン1979;214−28(Sacks SL,Smith JL,Pollar
d RB et al.JAMA 1979;214−28)。
スミス ジエイエル、ポラード アールビー等、ジヤー
ナル オブ アメリカン メデイカル アソシエーシヨ
ン1979;214−28(Sacks SL,Smith JL,Pollar
d RB et al.JAMA 1979;214−28)。
(11)サツクス エスエル;スクラードジーエイチ、
ポラード アール ビー、グレゴリー ピービー、ロビ
ンソン ダブリユエス、メリガン テイーシー.,アン
チマイクロバイアル エージエント アンド ヘモセラ
パー.1982;21−93−100(Sacs SL;Sculla
rd GH,Pollard RB,Gregory PB,Robinson WS,Merigan T
C.,Antimicrob.Agets Chemother.1982;21−93
−100). (12) ホイトレイ アール.アルフオード シー、
ヘスエフ、ブツシヤナンアール.,ドラツグス;20−
267−82(Whitley R.Alford C.Hess F,Buchanan
R.,Drugs 1980;20−267−82).参照〕。
ポラード アール ビー、グレゴリー ピービー、ロビ
ンソン ダブリユエス、メリガン テイーシー.,アン
チマイクロバイアル エージエント アンド ヘモセラ
パー.1982;21−93−100(Sacs SL;Sculla
rd GH,Pollard RB,Gregory PB,Robinson WS,Merigan T
C.,Antimicrob.Agets Chemother.1982;21−93
−100). (12) ホイトレイ アール.アルフオード シー、
ヘスエフ、ブツシヤナンアール.,ドラツグス;20−
267−82(Whitley R.Alford C.Hess F,Buchanan
R.,Drugs 1980;20−267−82).参照〕。
このために、araAMPは肝柔組織細胞(hepatic pa
renchima cells)中にのみ浸透し、そこでリンソームに
より破壊されるラクトサミン化アルブミン(lactosamin
ated albumin)(L−SA)と結合せしめられた。エク
トロメリアウイルス(Ectromelia virus)によって誘発
された肝炎にかかつているマウスに結合体L−SA−a
ra−AMP(conjugate L−SA−ara−AM
P)の投与の後、ara−AMPは肝細胞においてその
薬理学的に活性な形態において濃縮される。L−SA−
ara−AMP結合体は、相同アルブミン(homologue
albumin)を用いて製造されると、少なくともマウスに
おいては免疫原性(inmunogenic)ではない。
renchima cells)中にのみ浸透し、そこでリンソームに
より破壊されるラクトサミン化アルブミン(lactosamin
ated albumin)(L−SA)と結合せしめられた。エク
トロメリアウイルス(Ectromelia virus)によって誘発
された肝炎にかかつているマウスに結合体L−SA−a
ra−AMP(conjugate L−SA−ara−AM
P)の投与の後、ara−AMPは肝細胞においてその
薬理学的に活性な形態において濃縮される。L−SA−
ara−AMP結合体は、相同アルブミン(homologue
albumin)を用いて製造されると、少なくともマウスに
おいては免疫原性(inmunogenic)ではない。
〔(13) フイウム エル.,ブシ シー.,マツテ
イオリ エー、バルボニ ピージー、バルバンテイー
ブロダノ ジー.,エフイービーエスレター.198
1;129−261−64(Fiume L.,Busi C.,Mattiol
i A.Balboni PG,Barba-nti-Brodano G.,FEBS Lett.19
81;129−261−64). (14)アシユウエル ジー、ハルフオード ジエイ、
アンニユ レブ、バイオケム、1982;51:531
−54(Ashwell G.Harford J.Annu Rev.Biochem.19
82:51:531−54)。
イオリ エー、バルボニ ピージー、バルバンテイー
ブロダノ ジー.,エフイービーエスレター.198
1;129−261−64(Fiume L.,Busi C.,Mattiol
i A.Balboni PG,Barba-nti-Brodano G.,FEBS Lett.19
81;129−261−64). (14)アシユウエル ジー、ハルフオード ジエイ、
アンニユ レブ、バイオケム、1982;51:531
−54(Ashwell G.Harford J.Annu Rev.Biochem.19
82:51:531−54)。
(15)フイウム エル、ブシ シー、マツテイオリ
エー.,エフイービーエス レター、1982;14
6:42−46(Fiume L,Busi C,Mattioli A.,FEBS Le
tt.1982;146:42−46)。
エー.,エフイービーエス レター、1982;14
6:42−46(Fiume L,Busi C,Mattioli A.,FEBS Le
tt.1982;146:42−46)。
(16)フイウム エル.,マツテイオリエー、ブシ
シー.,アツコルシ シー.,グツド(Fiums L.,Matti
oli A,Busi C.,Accorsi C.,Gut) (17)フイウム エル.,マツテイオリエー ブシ
シー.,スピノザ ジー.,ウイーランド テイー.,
エキスペリエンテイア 1982;38:1087−8
9(Fium L.,Mattioli A,Busi C,.Spinosa G.,Wieland
T.,Experientia 1982;38:1087−89)。
参照〕。
シー.,アツコルシ シー.,グツド(Fiums L.,Matti
oli A,Busi C.,Accorsi C.,Gut) (17)フイウム エル.,マツテイオリエー ブシ
シー.,スピノザ ジー.,ウイーランド テイー.,
エキスペリエンテイア 1982;38:1087−8
9(Fium L.,Mattioli A,Busi C,.Spinosa G.,Wieland
T.,Experientia 1982;38:1087−89)。
参照〕。
これらの実験において使用されたL−SA−ara−A
MP結合体を製造した方法 〔(18)フイウム エル、マツテイオリエー、ブシ
シー、等、エフ イー ビーエスレター;116:18
5−88(Fiume L.Mattioli A,Busi C.et al.FEBS Let
t;116:185−88)〕 は酸性環境(pH5.3−5.5)におけるL−HSAと活性化
されたara−AMPの結合反応(conjugation)基づ
いている。
MP結合体を製造した方法 〔(18)フイウム エル、マツテイオリエー、ブシ
シー、等、エフ イー ビーエスレター;116:18
5−88(Fiume L.Mattioli A,Busi C.et al.FEBS Let
t;116:185−88)〕 は酸性環境(pH5.3−5.5)におけるL−HSAと活性化
されたara−AMPの結合反応(conjugation)基づ
いている。
この方法は、凍結乾燥後、もし−20℃で貯蔵されたと
しても、短い時間(室温で約1−3及び0−4℃で1週
間以下並びに−20℃で数週間(some weeks))に不溶
性になり、従つて広範に治療学的に使用するには役に立
たない製品をもたらすという欠点を有する。
しても、短い時間(室温で約1−3及び0−4℃で1週
間以下並びに−20℃で数週間(some weeks))に不溶
性になり、従つて広範に治療学的に使用するには役に立
たない製品をもたらすという欠点を有する。
本発明の主要な目的は、凍結乾燥後無期限に可溶性のま
まである結合体生成物を与える、ara−AMPとラクト
サミン化ヒトアルブミンの結合反応(conjugation)の方
法を提供することである。この目的は、カルボジイミド
で活性化されたara−AMPとL-SHAを6.5より高いpHで
相互に接触させることを特徴とする、ara−AMPとL-S
HAとの結合反応方法によつて達成される。
まである結合体生成物を与える、ara−AMPとラクト
サミン化ヒトアルブミンの結合反応(conjugation)の方
法を提供することである。この目的は、カルボジイミド
で活性化されたara−AMPとL-SHAを6.5より高いpHで
相互に接触させることを特徴とする、ara−AMPとL-S
HAとの結合反応方法によつて達成される。
好ましい態様に従えば、水性溶液の形態にあるara−A
MP及びL-SHAをカルボジイミド、特に1−エチル−3
−(ジメチル−アミノプロピル)−カルボジイミドの存
在下に接触させ、それによりara−AMPの活性化を直
接に反応媒体中で行なう。下記の詳細な説明からわかる
通り、本発明の方法によつて得られた結合体は分光光度
法により計算して、5乃至20間で変るara−AMPと
タンパク質のモル比を示す。本発明の主な利点は、治療
的活性は同じであるが、本発明の結合体は製造及び凍結
乾燥の後可溶性のままであり、従つてそれが室温で貯蔵
されたとしても治療学的に有用であり、このことは工業
的製造が可能であり、及び工業的製造を可能ならしめ及
び工業的製造を予測することができることを意味し、こ
れに対して従来この結合体は、それが短い時間に不溶性
になることにより製造の殆んど直後使用されなければな
らなかつたということにある。かくして、この目的は、
アデニン−9−β-D-アラビノフラノシド5′モノホス
フエートをラクトサミン化ヒトアルブミンと結合させる
ことを含む方法において、水性溶液中の結合されるべき
上記2つの成分をカルボジイミド、好ましくは1−エチ
ル−3−(ジメチル−アミノプロピル)−カルボジイミ
ドの存在下に攪拌しながらインキユベートすること及び
反応混合物pHを6.5より高い値に調節し、次いで反応混
合物を分離することを特徴とする前記本発明の方法によ
り達成される。
MP及びL-SHAをカルボジイミド、特に1−エチル−3
−(ジメチル−アミノプロピル)−カルボジイミドの存
在下に接触させ、それによりara−AMPの活性化を直
接に反応媒体中で行なう。下記の詳細な説明からわかる
通り、本発明の方法によつて得られた結合体は分光光度
法により計算して、5乃至20間で変るara−AMPと
タンパク質のモル比を示す。本発明の主な利点は、治療
的活性は同じであるが、本発明の結合体は製造及び凍結
乾燥の後可溶性のままであり、従つてそれが室温で貯蔵
されたとしても治療学的に有用であり、このことは工業
的製造が可能であり、及び工業的製造を可能ならしめ及
び工業的製造を予測することができることを意味し、こ
れに対して従来この結合体は、それが短い時間に不溶性
になることにより製造の殆んど直後使用されなければな
らなかつたということにある。かくして、この目的は、
アデニン−9−β-D-アラビノフラノシド5′モノホス
フエートをラクトサミン化ヒトアルブミンと結合させる
ことを含む方法において、水性溶液中の結合されるべき
上記2つの成分をカルボジイミド、好ましくは1−エチ
ル−3−(ジメチル−アミノプロピル)−カルボジイミ
ドの存在下に攪拌しながらインキユベートすること及び
反応混合物pHを6.5より高い値に調節し、次いで反応混
合物を分離することを特徴とする前記本発明の方法によ
り達成される。
たとえ室温に保持されたとしても凍結乾燥後可溶性のま
まである結合体が本発明の方法によつて得られる理由は
まだ解明されていないけれども、かかる結果について下
記理論的説明を与えることは持つとものように思われ
る。
まである結合体が本発明の方法によつて得られる理由は
まだ解明されていないけれども、かかる結果について下
記理論的説明を与えることは持つとものように思われ
る。
ラクトサミン化ヒトアルブミンと、式 を有するカルボジイミドで活性化されたara−AMPの
結合反応において、それは式 (式中R及びR′はカルボジイミド上に存在する特定の
化学的基を表わす) を有するカルボジイミドによつても活性化され、5つの
誘導体が形成され得る。即ち、 1) 2) 3) 4) 5) (式中形成されているバンド(band)の種類はかつこ内に
示されている)。
結合反応において、それは式 (式中R及びR′はカルボジイミド上に存在する特定の
化学的基を表わす) を有するカルボジイミドによつても活性化され、5つの
誘導体が形成され得る。即ち、 1) 2) 3) 4) 5) (式中形成されているバンド(band)の種類はかつこ内に
示されている)。
始めの4つの誘導体は、それぞれ、L-HSAの基、COO
−、NH2、OH、SH、とカルボジイミドにより活性
化されたara-AMPの反応から生じる。
−、NH2、OH、SH、とカルボジイミドにより活性
化されたara-AMPの反応から生じる。
第5の誘導体は、ara−AMPの糖(アラビノース)の
OH基とL-HSA(カルボジイミドにより活性化された)
のカルボキシル基の反応に由来する。しかしながら、こ
の第5の誘導体の形成はありそうもない。何故ならば、
ara−AMPにおいて利用し得るアラビノースのOH基
は、強い条件下でのみエステル化することができる2級
OH基であるからである。
OH基とL-HSA(カルボジイミドにより活性化された)
のカルボキシル基の反応に由来する。しかしながら、こ
の第5の誘導体の形成はありそうもない。何故ならば、
ara−AMPにおいて利用し得るアラビノースのOH基
は、強い条件下でのみエステル化することができる2級
OH基であるからである。
第1の誘導体において、ara−AMPのホスフエートは
ホスホ無水物結合を介してタンパク質のカルボキシル基
に結合している。これは、NH2基の存在下においてア
ミノリシスを受ける非常に反応性の結合であり、それに
よりカルボアミドバンド(carboamidic band)が形成され
そしてホスフエートが放出される[ジ.デイ サバト、
ダブリユ.ビー.ジエンクス、ジヤーナル オブ アメ
リカン ケミカル ソサイエテイ、83巻、4393−
4400−、1961(G.Di Sabato,W.P.Jencks,J.Am.C
hem.Soc.83,4393−4400−,1961)]。
ホスホ無水物結合を介してタンパク質のカルボキシル基
に結合している。これは、NH2基の存在下においてア
ミノリシスを受ける非常に反応性の結合であり、それに
よりカルボアミドバンド(carboamidic band)が形成され
そしてホスフエートが放出される[ジ.デイ サバト、
ダブリユ.ビー.ジエンクス、ジヤーナル オブ アメ
リカン ケミカル ソサイエテイ、83巻、4393−
4400−、1961(G.Di Sabato,W.P.Jencks,J.Am.C
hem.Soc.83,4393−4400−,1961)]。
酸性pHにおいて製造された結合体においては、ホスホア
ンハイドライド結合は、他のL-HSA分子のNH2基と凍結
乾燥後に反応することによつて、L-HSA分子の付随する
重合を伴つてカルボアミド結合を形成する。
ンハイドライド結合は、他のL-HSA分子のNH2基と凍結
乾燥後に反応することによつて、L-HSA分子の付随する
重合を伴つてカルボアミド結合を形成する。
この徐々に進行する重合は誘導体の溶解性損失の原因で
ある。31PのRMNスペクトル分析によつて、5.5の如
き酸性pHで製造された結合体においては、ara−AMP
とL-HSAの間のすべての結合はホスホ無水物型であり、
これに対して製造がより高いpH、例えば7.5で行なわれ
るときはara−AMPとL-HSAとの間の結合は2つの型で
ある: a)ara−AMPホスフエートのタンパク質のリジン残基
ε−NH2との間のホスホアミド型、 b)ara−AMPホスフエートとタンパク質のカルボキシ
ル残基(グルタミン及び/又はアスパラギン酸の)との
間のホスホ無水物型。
ある。31PのRMNスペクトル分析によつて、5.5の如
き酸性pHで製造された結合体においては、ara−AMP
とL-HSAの間のすべての結合はホスホ無水物型であり、
これに対して製造がより高いpH、例えば7.5で行なわれ
るときはara−AMPとL-HSAとの間の結合は2つの型で
ある: a)ara−AMPホスフエートのタンパク質のリジン残基
ε−NH2との間のホスホアミド型、 b)ara−AMPホスフエートとタンパク質のカルボキシ
ル残基(グルタミン及び/又はアスパラギン酸の)との
間のホスホ無水物型。
かくして、2つの型の結合の割合は結合反応のpHに依存
しているように思われる。
しているように思われる。
これは酸性pHでは十分にプロトン和しており(protonate
d)(-NH3 +)従つてカルボジイミドにより活性化されてい
るara-AMPと反応することはできないL-HSAのNH2基
は、アルカリ性pHにおいては反対に少なくとも一部脱プ
ロトン化され(deprotonated)、従つて活性化されたara-
AMPとの反応にいてCOO−基と首尾良く競合するこ
とができ、かくして第2誘導体(ホスホアニドライドバ
ンド)の形成に導くということにより極めて確からし
い。これは、カルボジイミドによつてヒトアルブミンと
チミジル酸の結合反応をpH7.5で行ない、そしてこれら
の条件下ではホスホアミデートのみが形成される(化合
物2におけると同じ結合)ことを証明することができた
ハロラン(Halloran)及びバーカー(Parker)[ジヤーナル
イムノロジー(J.Immun.96、373、378、19
66)]の実験によつて確かめられる。
d)(-NH3 +)従つてカルボジイミドにより活性化されてい
るara-AMPと反応することはできないL-HSAのNH2基
は、アルカリ性pHにおいては反対に少なくとも一部脱プ
ロトン化され(deprotonated)、従つて活性化されたara-
AMPとの反応にいてCOO−基と首尾良く競合するこ
とができ、かくして第2誘導体(ホスホアニドライドバ
ンド)の形成に導くということにより極めて確からし
い。これは、カルボジイミドによつてヒトアルブミンと
チミジル酸の結合反応をpH7.5で行ない、そしてこれら
の条件下ではホスホアミデートのみが形成される(化合
物2におけると同じ結合)ことを証明することができた
ハロラン(Halloran)及びバーカー(Parker)[ジヤーナル
イムノロジー(J.Immun.96、373、378、19
66)]の実験によつて確かめられる。
ラクトサミン化ヒトアルブミンとara-AMPの結合体
は、上記方法とは異なる反応経路によつても得ることが
でき、その場合には、ホスホリル化されていないヌクレ
オシドから出発して、ara-Aは無水コハク酸によつてara
-Aスクシネートに又は無水グルタル酸によつてara-Aグ
ルタレートに転化することができる。しかる後、これら
の誘導体は、それらのスクシンイミドエステルを介して
又は混合無水物法によつて又はカルボジイミドによつて
L−HSAに結合することができる。これらの方法の1
つによつて、ara-Aはara-Aグルタレートに転化され、こ
のものはそのヒドロキシスクシンイミドエステルを介し
てアシアロフエチユイン(asialofetuine)(AF)に結合さ
れた(AFは、L-HSAと同様に、肝細胞に選択的に浸透
する糖タンパク質である)。かくしてara-Aの肝標的化
(hepatic targeting)をマウスにおいて生じるのに薬理
学的に活性であることが見出されたara-A-glut-AF結合
体が得られた[フイウム等(Fiume et al.,FEBSレタ
ー(FEBS Lett)。116、188(198
0)]。
は、上記方法とは異なる反応経路によつても得ることが
でき、その場合には、ホスホリル化されていないヌクレ
オシドから出発して、ara-Aは無水コハク酸によつてara
-Aスクシネートに又は無水グルタル酸によつてara-Aグ
ルタレートに転化することができる。しかる後、これら
の誘導体は、それらのスクシンイミドエステルを介して
又は混合無水物法によつて又はカルボジイミドによつて
L−HSAに結合することができる。これらの方法の1
つによつて、ara-Aはara-Aグルタレートに転化され、こ
のものはそのヒドロキシスクシンイミドエステルを介し
てアシアロフエチユイン(asialofetuine)(AF)に結合さ
れた(AFは、L-HSAと同様に、肝細胞に選択的に浸透
する糖タンパク質である)。かくしてara-Aの肝標的化
(hepatic targeting)をマウスにおいて生じるのに薬理
学的に活性であることが見出されたara-A-glut-AF結合
体が得られた[フイウム等(Fiume et al.,FEBSレタ
ー(FEBS Lett)。116、188(198
0)]。
下記実施例は本発明の方法を限定することなく説明する
ものである。
ものである。
実施例1 ara−AMP75mg(216μモル)をNaHCO3(粉末)
を添加してH2O1.5ml中に溶解する。この溶液にL-H
SA75mg(0.946μモル)を加える(モル比ラクトース
/アルブミン=29−31)。L-HSAが溶解すると、pH
を電位差計の制御下に10N NaOHで7.5に至らしめ、
そして1−エチル−3−(ジメチル−アミノプロピル)
カルボジイミド75g(391μモル)を加える。混合
物を暗所で攪拌下に25℃で24時間インキユベート
し、次いで、2容量の0.9%NaClを加えた後、セフアデ
ツクスG-100カラム(40−120μ)1.9×130cmで
クロマトグラフイーにかけ、平衡化しそしてNaClの0.9
%溶液で溶出する。
を添加してH2O1.5ml中に溶解する。この溶液にL-H
SA75mg(0.946μモル)を加える(モル比ラクトース
/アルブミン=29−31)。L-HSAが溶解すると、pH
を電位差計の制御下に10N NaOHで7.5に至らしめ、
そして1−エチル−3−(ジメチル−アミノプロピル)
カルボジイミド75g(391μモル)を加える。混合
物を暗所で攪拌下に25℃で24時間インキユベート
し、次いで、2容量の0.9%NaClを加えた後、セフアデ
ツクスG-100カラム(40−120μ)1.9×130cmで
クロマトグラフイーにかけ、平衡化しそしてNaClの0.9
%溶液で溶出する。
L-HSAのモノマー及びオリゴマーに相当する画分を一緒
にしそしてそのpHがNaHCO3で7.5−8に調節されている
H2Oに対して2−4℃で透析する。次いで、結合体を
凍結乾燥する(50−55mg)。結合体は生理学的溶液
(0.9%NaCl)中に100mg/ml(最大試験濃度)まで可
溶である。
にしそしてそのpHがNaHCO3で7.5−8に調節されている
H2Oに対して2−4℃で透析する。次いで、結合体を
凍結乾燥する(50−55mg)。結合体は生理学的溶液
(0.9%NaCl)中に100mg/ml(最大試験濃度)まで可
溶である。
ポリアクリルアミドゲル中の電気泳動をウエーバー ケ
イ(Weber K)及びオスボーン エム(Osborn M)の方法、
ジヤーナル オブ バイオロジカル ケミストリー(J.B
iol.Chem.)。1969、24、4406−12、の方法
に従つてドデシル硫酸ナトリウムの存在下に行なつた。
イ(Weber K)及びオスボーン エム(Osborn M)の方法、
ジヤーナル オブ バイオロジカル ケミストリー(J.B
iol.Chem.)。1969、24、4406−12、の方法
に従つてドデシル硫酸ナトリウムの存在下に行なつた。
電気泳動の後、ゲルをクーマシー ブリリアントブルー
(Coomassie brilliant blue)で着色しそしてデンシトメ
ーター法による結合解析を行なつた。最も高い割合の結
合はラクトサミン化ヒトアルブミンの移動度を有してお
り、次の結合はラビツトの7Sγ−グロブリンの移動度
を有している。横座標に電気泳動移動度を、そして縦座
標にL-HSA及びそのオリゴマー形態(モノマー、ダイマ
ー、トリマー及びテトラマー)の分子量の対数をチヤー
トにプロツトすることによつて直線が得られる。この事
実は第2、第3及び第4バンド(割合が減少する順に)
はそれぞれL-HSAのダイマー、トリマー及びテトラマー
に相当することを示唆する。
(Coomassie brilliant blue)で着色しそしてデンシトメ
ーター法による結合解析を行なつた。最も高い割合の結
合はラクトサミン化ヒトアルブミンの移動度を有してお
り、次の結合はラビツトの7Sγ−グロブリンの移動度
を有している。横座標に電気泳動移動度を、そして縦座
標にL-HSA及びそのオリゴマー形態(モノマー、ダイマ
ー、トリマー及びテトラマー)の分子量の対数をチヤー
トにプロツトすることによつて直線が得られる。この事
実は第2、第3及び第4バンド(割合が減少する順に)
はそれぞれL-HSAのダイマー、トリマー及びテトラマー
に相当することを示唆する。
電気泳動は結合体がL-HSAモノマー約37%、ダイマー
22%、トリマー15%及びテトラマー8%を含み、残
りの18%はL-HSAのより高級オリゴマー(添付図に示
された如き)から成ることを示す。これらの百分率は凍
結乾燥の4ケ月後に行なわれた電気泳動分析により示さ
れた如く長期間において変化しない。かくして、上記方
法に従つて製造された結合体は公知方法に従つて製造さ
れた結合体と異なつて凍結乾燥後に重合を起こさないこ
とが証明される。
22%、トリマー15%及びテトラマー8%を含み、残
りの18%はL-HSAのより高級オリゴマー(添付図に示
された如き)から成ることを示す。これらの百分率は凍
結乾燥の4ケ月後に行なわれた電気泳動分析により示さ
れた如く長期間において変化しない。かくして、上記方
法に従つて製造された結合体は公知方法に従つて製造さ
れた結合体と異なつて凍結乾燥後に重合を起こさないこ
とが証明される。
凍結された結合体のモル比ara-AMP/タンパク質を測
定するために、結合体を再びセフアデツクスG−100
カラムでクロマトグラフイーに付し、平衡化しそして0.
9%NaClで溶離する。
定するために、結合体を再びセフアデツクスG−100
カラムでクロマトグラフイーに付し、平衡化しそして0.
9%NaClで溶離する。
モル比は下記の方法により分光光度法により決定する。
アルブミンの濃度はロウリー等(Lowry et al)の方法
[ジヤーナル オブ バイオロジカル ケミストリー
(J.Biol.Chem.1951、193、266−75)により測
定され、次いで260mμにおける光学密度が分光光度
計で読み取られる。次いで、その波長におけるアルブミ
ンによる寄与 は差し引かれ、そして得られる値からara-AMPの濃度 が計算される。上記方法によつて得られた結合体の6つ
の異なる調製物のモル比は13−15であることが見出
された。0−4℃又は室温に保持された結合体の溶解性
及びモル比ara-AMP/L-HSAは長期間(今日までに試
験された最大の時間である少なくとも4ケ月まで)にお
いて減少しない。
アルブミンの濃度はロウリー等(Lowry et al)の方法
[ジヤーナル オブ バイオロジカル ケミストリー
(J.Biol.Chem.1951、193、266−75)により測
定され、次いで260mμにおける光学密度が分光光度
計で読み取られる。次いで、その波長におけるアルブミ
ンによる寄与 は差し引かれ、そして得られる値からara-AMPの濃度 が計算される。上記方法によつて得られた結合体の6つ
の異なる調製物のモル比は13−15であることが見出
された。0−4℃又は室温に保持された結合体の溶解性
及びモル比ara-AMP/L-HSAは長期間(今日までに試
験された最大の時間である少なくとも4ケ月まで)にお
いて減少しない。
実施例2 ara-AMP150mgをNaHCO3(粉末)を添加して3mlH
2O中に溶解する。この溶液にL30−HSA150mgを
加える。L-HSAが溶解すると、pHを電位差計による制御
下に10N NaOHで7.5に調節し、しかる後1−エチル
−3−(ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド15
0mgを加える。混合物を暗所で攪拌下に25℃で24時
間インキユベートする。
2O中に溶解する。この溶液にL30−HSA150mgを
加える。L-HSAが溶解すると、pHを電位差計による制御
下に10N NaOHで7.5に調節し、しかる後1−エチル
−3−(ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド15
0mgを加える。混合物を暗所で攪拌下に25℃で24時
間インキユベートする。
混合物(約3ml)を磁気手段によつて攪拌下に保持され
たNaClの0.3%水溶液5を含有するフラスコに入れら
れた6.3mmの直径を有するビスキング管(Visking tube)
中で透析する。
たNaClの0.3%水溶液5を含有するフラスコに入れら
れた6.3mmの直径を有するビスキング管(Visking tube)
中で透析する。
これらの条件下では結合体の沈澱は起こらない。透析は
0−4℃で24時間続け、そしてNaClの0.3%溶液を2
回変える。24時間及び2回のこの変更の後遊離ara-A
MPは最早存在しない。
0−4℃で24時間続け、そしてNaClの0.3%溶液を2
回変える。24時間及び2回のこの変更の後遊離ara-A
MPは最早存在しない。
結合体を集め、そしてその容量を測定する。結合体(150
mg)は今やNaClを含有する溶液(3mg/ml)中に溶解した状
態で含まれている。結合体各100mg当り9mgのNaClが
存在しているように更にNaClを加え、次いで凍結乾燥を
行なう。この状態において、凍結乾燥された調製物10
9mgを1mlH2Oで溶解することによつて(溶解性は最
適である)、注射にいつでも使用できる状態の生理学的
溶液(0.9%NaCl)1ml中の結合体100mgの溶液が得ら
れ、又はこのものは生理学的溶液で更に希釈することが
できる。
mg)は今やNaClを含有する溶液(3mg/ml)中に溶解した状
態で含まれている。結合体各100mg当り9mgのNaClが
存在しているように更にNaClを加え、次いで凍結乾燥を
行なう。この状態において、凍結乾燥された調製物10
9mgを1mlH2Oで溶解することによつて(溶解性は最
適である)、注射にいつでも使用できる状態の生理学的
溶液(0.9%NaCl)1ml中の結合体100mgの溶液が得ら
れ、又はこのものは生理学的溶液で更に希釈することが
できる。
実施例1に従つて製造されたara-AMP−L−HSA結
合体の生物学的性質 ara-AMPとの結合反応は、ガラクトースで終るタンパ
ク質に特異的な肝細胞の受容体とのL-HSAの相互作用能
力に影響を与えない。
合体の生物学的性質 ara-AMPとの結合反応は、ガラクトースで終るタンパ
ク質に特異的な肝細胞の受容体とのL-HSAの相互作用能
力に影響を与えない。
事実、マウスにおいて(以下に報告したデータからわか
る通り)、血漿からの放射性アシアロフエチユイン(AF)
の消失は結合体及び等量の結合されていないL31HSA
(non-conjugated L31HSA)によつて同じ速度で競
合的に阻止される(フエチユインは、シアル酸の除去の
後はガラクトース残基を露出しそして肝細胞中に選択的
に浸透するウシ胎仔血清(bovine phoetal serum)のタン
パク質である)(既に記載したアシユウエル等の論文
(14)参照)。
る通り)、血漿からの放射性アシアロフエチユイン(AF)
の消失は結合体及び等量の結合されていないL31HSA
(non-conjugated L31HSA)によつて同じ速度で競
合的に阻止される(フエチユインは、シアル酸の除去の
後はガラクトース残基を露出しそして肝細胞中に選択的
に浸透するウシ胎仔血清(bovine phoetal serum)のタン
パク質である)(既に記載したアシユウエル等の論文
(14)参照)。
フエチユインは酵素により脱シアル化され、(desialate
d)[(22)モレル エージー、フアンデルハマー シージ
エイ、シヤインバーグ IH、アシユエウル ジー.ジ
ヤーナル オブ バイオロジカル ケミストリー、19
66;241:3745−49((22)Morell AG、Va
n der Hamer CJ、Scheinberg IH、Ashwell G.J.Biol.Che
m.1966;241:3745−49)]、次いで[14
C]ホルムアルデヒドで標識された[(23)コツクス ア
ールエー、グリーンウエル ビー、バイオケミカル ジ
ヤーナル。1980;186−861−72(Cox RA、Gr
eenwell P.Biochem J.1980;186−861−7
2)]。
d)[(22)モレル エージー、フアンデルハマー シージ
エイ、シヤインバーグ IH、アシユエウル ジー.ジ
ヤーナル オブ バイオロジカル ケミストリー、19
66;241:3745−49((22)Morell AG、Va
n der Hamer CJ、Scheinberg IH、Ashwell G.J.Biol.Che
m.1966;241:3745−49)]、次いで[14
C]ホルムアルデヒドで標識された[(23)コツクス ア
ールエー、グリーンウエル ビー、バイオケミカル ジ
ヤーナル。1980;186−861−72(Cox RA、Gr
eenwell P.Biochem J.1980;186−861−7
2)]。
28−30gの雌のスイスマウス(Swiss mice)に14CS
F(4.9×106dpm/mg)2μg/gを静脈内に注射した。
L31-HSAまたは結合体を2μg/gの投与量で14C
AFと同時に静脈内に投与した。すべての場合に、注射
した容量は10μ/gであつた。10分後この動物を
殺しそして血漿の放射能を測定した。各値は10匹のマ
ウスから得られた結果の平均(±S.E.)を表わす。
F(4.9×106dpm/mg)2μg/gを静脈内に注射した。
L31-HSAまたは結合体を2μg/gの投与量で14C
AFと同時に静脈内に投与した。すべての場合に、注射
した容量は10μ/gであつた。10分後この動物を
殺しそして血漿の放射能を測定した。各値は10匹のマ
ウスから得られた結果の平均(±S.E.)を表わす。
表2は、エクトロメリア ウイルス(Ectromelia virus)
により誘発された肝炎にかかつたマウスの腸(intestin
e)及び骨髄(medulla ossium)における細胞DNA(cellu
lar DNA)の合成並びに肝臓におけるウイルスDNAの合
成に対して、放射性チミジンの2時間前に注射された2
つの投与量の結合体の作用を示す。結合体は他の2つの
器官における阻害を引き起こすことなく肝臓におけるD
NAの合成を阻害する。体重1g当り1.33mgの投与量で
マウスに静脈内経路により投与された結合体は毒性の明
白な徴候を何ら引き起こさない。結合体のこの投与量の
注射に続く10日間における体重増加の曲線及び食物消
費の曲線は生理学的溶液を静脈内投与された対照マウス
のそれに等しかつた。1.33mg/gの投与量は試験された
最大投与量であり、そしてエクトロメリアウイルスによ
り誘発された肝炎の処置にたいして使用される投与量よ
り40−50倍大きい(表2参照)。
により誘発された肝炎にかかつたマウスの腸(intestin
e)及び骨髄(medulla ossium)における細胞DNA(cellu
lar DNA)の合成並びに肝臓におけるウイルスDNAの合
成に対して、放射性チミジンの2時間前に注射された2
つの投与量の結合体の作用を示す。結合体は他の2つの
器官における阻害を引き起こすことなく肝臓におけるD
NAの合成を阻害する。体重1g当り1.33mgの投与量で
マウスに静脈内経路により投与された結合体は毒性の明
白な徴候を何ら引き起こさない。結合体のこの投与量の
注射に続く10日間における体重増加の曲線及び食物消
費の曲線は生理学的溶液を静脈内投与された対照マウス
のそれに等しかつた。1.33mg/gの投与量は試験された
最大投与量であり、そしてエクトロメリアウイルスによ
り誘発された肝炎の処置にたいして使用される投与量よ
り40−50倍大きい(表2参照)。
結合体L-HSA-ara-AMPの6.5より高いpHにおける製造の更
なる実施例 これらの実施例下記表3に報告されたデータから再び始
めそれら及び再び始めることができる(その製造が実施
例1に記載された結合体は表の結合体NO.1に相当す
る)。使用したカルボジイミド、L-HSAのラクトース/
アルブミン モル比、反応時間及び温度、反応体濃度及
びpH値(それらは常に6.5より大きいとの条件下に)を
変えることによつて、たとえ室温に保持されたとしても
凍結乾燥後可溶性のままである結合体が常に得られる。
なる実施例 これらの実施例下記表3に報告されたデータから再び始
めそれら及び再び始めることができる(その製造が実施
例1に記載された結合体は表の結合体NO.1に相当す
る)。使用したカルボジイミド、L-HSAのラクトース/
アルブミン モル比、反応時間及び温度、反応体濃度及
びpH値(それらは常に6.5より大きいとの条件下に)を
変えることによつて、たとえ室温に保持されたとしても
凍結乾燥後可溶性のままである結合体が常に得られる。
添付図面は実施例1に記載の電気泳動のグラフ図であ
る。
る。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 マツシモ・バルダツチ イタリー国56100ピサ・ビアデレピアツジ エ 9
Claims (7)
- 【請求項1】カルボジイミドで活性化されたアデニン−
9−β−D−アラビノフラノシド5′モノホスフエート
(ara−AMP)とラクトサミン化ヒトアルブミン
(L−HSA)を相互に反応させて、ラクトサミン化ヒ
トアルブミンとアデニン−9−β−D−アラビノフラノ
シド5′モノホスフエートの結合体を製造する方法にお
いて、結合反応を6.5より高いpHで行なうことを特徴と
する方法。 - 【請求項2】カルボジイミドによるara−AMPの活
性化を、araAMP及びL−HSAを含有する反応媒
体中で、該反応媒体中にカルボジイミドを導入すること
によって直接行なうことを特徴とする特許請求の範囲第
1項記載の方法。 - 【請求項3】該カルボジイミドが1−エチル−3−(ジ
メチル−アミノプロピル)−カルボジイミドであること
を特徴とする特許請求の範囲第1又は2項記載の方法。 - 【請求項4】該pHが6.5乃至9.5であることを特徴とする
特許請求の範囲第1項記載の方法。 - 【請求項5】該pHが7.5であることを特徴とする特許請
求の範囲第4項記載の方法。 - 【請求項6】該反応を25℃の温度で行なうことを特徴
とする特許請求の範囲第1項記載の方法。 - 【請求項7】該結合体のアデニン−9−β−D−アラビ
ノフラノシド5′モノホスフエートとラクトサミン化ヒ
トアルブミンのモル比が5乃至20であることを特徴と
する特許請求の範囲第1項記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
IT23998A/84 | 1984-12-11 | ||
IT23998/84A IT1177381B (it) | 1984-12-11 | 1984-12-11 | Metodo per la preparazione di coniugati della adenina-9-beta-d-arabino furano-side 5' monofosfato con albumina umana lattosaminata, coniugati risultanti e relative composizioi terapeuticamente attive |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61171430A JPS61171430A (ja) | 1986-08-02 |
JPH0633320B2 true JPH0633320B2 (ja) | 1994-05-02 |
Family
ID=11211397
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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JP60278843A Expired - Fee Related JPH0633320B2 (ja) | 1984-12-11 | 1985-12-11 | ラクトサミン化ヒトアルブミンとアデニン―9―β―D―アラビノフラノシド5′モノホスフェートの結合体の製造方法 |
Country Status (9)
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EP (1) | EP0184838B1 (ja) |
JP (1) | JPH0633320B2 (ja) |
AT (1) | ATE48612T1 (ja) |
AU (1) | AU576923B2 (ja) |
CA (1) | CA1252719A (ja) |
DE (2) | DE184838T1 (ja) |
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US5554386A (en) * | 1986-07-03 | 1996-09-10 | Advanced Magnetics, Inc. | Delivery of therapeutic agents to receptors using polysaccharides |
IT1245217B (it) * | 1991-03-12 | 1994-09-13 | Baldacci Lab Spa | Coniugato di azidotimidina ed albumina umana procedimento per la sua preparazione e composizioni farmaceutiche che lo contengono |
IT1256110B (it) * | 1992-11-23 | 1995-11-28 | Procedimento di coniugazione di nucleosidi antivirali con albumina umana lattosaminata | |
ITMI20010027A1 (it) * | 2001-01-10 | 2002-07-10 | Uni Di Bologna Dipartimento Di | Composizioni teraputiche per una chemioterapia locoregionale non invasiva delle micrometastasi epatiche |
ATE411819T1 (de) * | 2003-02-17 | 2008-11-15 | Upperton Ltd | Konjugate für medizinische abbildungen umfassend träger, targeting-anteile und kontrastmittel |
-
1984
- 1984-12-11 IT IT23998/84A patent/IT1177381B/it active
-
1985
- 1985-12-10 CA CA000497300A patent/CA1252719A/en not_active Expired
- 1985-12-11 EP EP85115802A patent/EP0184838B1/en not_active Expired
- 1985-12-11 AT AT85115802T patent/ATE48612T1/de not_active IP Right Cessation
- 1985-12-11 ES ES549828A patent/ES8704945A1/es not_active Expired
- 1985-12-11 AU AU51186/85A patent/AU576923B2/en not_active Ceased
- 1985-12-11 JP JP60278843A patent/JPH0633320B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1985-12-11 US US06/807,657 patent/US4794170A/en not_active Expired - Lifetime
- 1985-12-11 DE DE198585115802T patent/DE184838T1/de active Pending
- 1985-12-11 DE DE8585115802T patent/DE3574707D1/de not_active Expired - Fee Related
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AU5118685A (en) | 1986-06-19 |
ATE48612T1 (de) | 1989-12-15 |
ES8704945A1 (es) | 1987-05-01 |
DE3574707D1 (de) | 1990-01-18 |
AU576923B2 (en) | 1988-09-08 |
ES549828A0 (es) | 1987-05-01 |
IT1177381B (it) | 1987-08-26 |
IT8423998A1 (it) | 1986-06-11 |
EP0184838B1 (en) | 1989-12-13 |
IT8423998A0 (it) | 1984-12-11 |
JPS61171430A (ja) | 1986-08-02 |
EP0184838A3 (en) | 1987-04-29 |
EP0184838A2 (en) | 1986-06-18 |
US4794170A (en) | 1988-12-27 |
DE184838T1 (de) | 1987-03-19 |
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