JPH05308988A - 新規ポリペプチド、新規ｄｎａ、新規ベクター、新規形質転換体、新規医薬組成物、および新規ポリペプチドの製造方法 - Google Patents
新規ポリペプチド、新規ｄｎａ、新規ベクター、新規形質転換体、新規医薬組成物、および新規ポリペプチドの製造方法Info
- Publication number
- JPH05308988A JPH05308988A JP4146587A JP14658792A JPH05308988A JP H05308988 A JPH05308988 A JP H05308988A JP 4146587 A JP4146587 A JP 4146587A JP 14658792 A JP14658792 A JP 14658792A JP H05308988 A JPH05308988 A JP H05308988A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- amino acid
- acid sequence
- polypeptide
- dna
- gly
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Withdrawn
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【目的】プロテアーゼ阻害活性を有する新規なポリペプ
チド、およびその製造方法、それをコードするＤＮＡ，
そのベクター、その形質転換体、前記ポリペプチドを用
いた医薬組成物および酵素阻害剤の提供。 【構成】下記式１のアミノ酸配列から１つ以上のアミノ
酸が欠失してなるアミノ酸配列を有する新規ポリペプチ
ド。 式１ Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys およびその製造方法、それをコードするＤＮＡ，そのベ
クター、その形質転換体、前記ポリペプチドを用いた医
薬組成物および酵素阻害剤の提供。
チド、およびその製造方法、それをコードするＤＮＡ，
そのベクター、その形質転換体、前記ポリペプチドを用
いた医薬組成物および酵素阻害剤の提供。 【構成】下記式１のアミノ酸配列から１つ以上のアミノ
酸が欠失してなるアミノ酸配列を有する新規ポリペプチ
ド。 式１ Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys およびその製造方法、それをコードするＤＮＡ，そのベ
クター、その形質転換体、前記ポリペプチドを用いた医
薬組成物および酵素阻害剤の提供。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、新規ポリペプチド、新
規ＤＮＡ、当該新規ＤＮＡを含むベクター、当該新規ポ
リペプチドを産生する形質転換体、当該新規ポリペプチ
ドの製造方法、当該新規ポリペプチドを有効成分とする
医薬組成物および当該新規ポリペプチドを用いた酵素阻
害方法に関する。
規ＤＮＡ、当該新規ＤＮＡを含むベクター、当該新規ポ
リペプチドを産生する形質転換体、当該新規ポリペプチ
ドの製造方法、当該新規ポリペプチドを有効成分とする
医薬組成物および当該新規ポリペプチドを用いた酵素阻
害方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】周知のように、生体内にはトリプシンや
キモトリプシンをはじめとして種々のプロテアーゼが存
在している。これらのプロテアーゼは、生体内におい
て、消化、生体防御、血液の凝固線溶等、重要な役割り
を担っている一方、疾患の直接的あるいは間接的原因と
なることがこれまでの研究で明らかにされている。例え
ば、ショック、膵炎、播種性血管内凝固症候群（ＤＩ
Ｃ）等は、プロテアーゼの異常な活性化が原因であると
考えられている代表的な疾患である。現在、このような
プロテアーゼが関与する疾患の治療を目的として各種プ
ロテアーゼインヒビターが使用されている。医薬品とし
て使用されているプロテアーゼインヒビターは、化学合
成物と天然物に大別できる。一般的に、化学合成物は、
低分子で、経口投与可能であり、幅広い酵素阻害スペク
トラムを有する場合が多い。一方、天然物は、蛋白性の
高分子であり、特定のプロテアーゼに対する阻害活性を
有し、かつ、細胞増殖促進等の酵素阻害活性以外の活性
をも併せ持つ場合が多い。先にも述べたように、生体内
プロテアーゼは重要な役割を担っているので、必要以上
に生体内プロテアーゼを阻害することは生体にとって好
ましくないばかりか、病態をさらに悪化させる場合もあ
る。従って、疾患の治療においては、疾患の原因となる
プロテアーゼのみを特異的に阻害することが理想的であ
る。例えば、播種性血管内凝固症候群（以後ＤＩＣと略
す）の治療においては、血液凝固に関わるトロンビンや
活性化血液凝固第Ｘ因子（以後ＦＸａと略す）を阻害
し、プロテインＣを阻害しないことが好ましい。また、
ショックの治療ではトリプシンを阻害することが好まし
いが、ショック時に併発しやすい凝固系亢進によるＤＩ
Ｃを予防することを考えると、プラスミンを阻害しない
方がよい。さらに、疾患の治療においては、患者の症状
に応じて、２種以上のプロテアーゼを適当な比率で阻害
する事も必要である。例えば、ＤＩＣでは線溶系亢進に
よるものも知られているが、この場合には、ショックの
治療のためにトリプシンを阻害すると同時にプラスミン
をも強く阻害する方が好ましい。また、成人呼吸困難症
候群の治療ではエラスターゼを阻害する事が好ましい
が、多臓器不全を予防する意味でトリプシンをも強く阻
害する事が必要である。今後、プロテアーゼと疾患との
関係がより解明されていくに従い、阻害の対象とすべき
プロテアーゼの組み合わせは多様化していくものと考え
られる。従って、これら多様化する阻害の対象とすべき
プロテアーゼの組み合わせに合わせて、例えば特定のプ
ロテアーゼのみを阻害する、もしくはプロテアーゼによ
り阻害の程度が異なる等、阻害様式に特色のある様々な
プロテアーゼインヒビターの開発が必要である。
キモトリプシンをはじめとして種々のプロテアーゼが存
在している。これらのプロテアーゼは、生体内におい
て、消化、生体防御、血液の凝固線溶等、重要な役割り
を担っている一方、疾患の直接的あるいは間接的原因と
なることがこれまでの研究で明らかにされている。例え
ば、ショック、膵炎、播種性血管内凝固症候群（ＤＩ
Ｃ）等は、プロテアーゼの異常な活性化が原因であると
考えられている代表的な疾患である。現在、このような
プロテアーゼが関与する疾患の治療を目的として各種プ
ロテアーゼインヒビターが使用されている。医薬品とし
て使用されているプロテアーゼインヒビターは、化学合
成物と天然物に大別できる。一般的に、化学合成物は、
低分子で、経口投与可能であり、幅広い酵素阻害スペク
トラムを有する場合が多い。一方、天然物は、蛋白性の
高分子であり、特定のプロテアーゼに対する阻害活性を
有し、かつ、細胞増殖促進等の酵素阻害活性以外の活性
をも併せ持つ場合が多い。先にも述べたように、生体内
プロテアーゼは重要な役割を担っているので、必要以上
に生体内プロテアーゼを阻害することは生体にとって好
ましくないばかりか、病態をさらに悪化させる場合もあ
る。従って、疾患の治療においては、疾患の原因となる
プロテアーゼのみを特異的に阻害することが理想的であ
る。例えば、播種性血管内凝固症候群（以後ＤＩＣと略
す）の治療においては、血液凝固に関わるトロンビンや
活性化血液凝固第Ｘ因子（以後ＦＸａと略す）を阻害
し、プロテインＣを阻害しないことが好ましい。また、
ショックの治療ではトリプシンを阻害することが好まし
いが、ショック時に併発しやすい凝固系亢進によるＤＩ
Ｃを予防することを考えると、プラスミンを阻害しない
方がよい。さらに、疾患の治療においては、患者の症状
に応じて、２種以上のプロテアーゼを適当な比率で阻害
する事も必要である。例えば、ＤＩＣでは線溶系亢進に
よるものも知られているが、この場合には、ショックの
治療のためにトリプシンを阻害すると同時にプラスミン
をも強く阻害する方が好ましい。また、成人呼吸困難症
候群の治療ではエラスターゼを阻害する事が好ましい
が、多臓器不全を予防する意味でトリプシンをも強く阻
害する事が必要である。今後、プロテアーゼと疾患との
関係がより解明されていくに従い、阻害の対象とすべき
プロテアーゼの組み合わせは多様化していくものと考え
られる。従って、これら多様化する阻害の対象とすべき
プロテアーゼの組み合わせに合わせて、例えば特定のプ
ロテアーゼのみを阻害する、もしくはプロテアーゼによ
り阻害の程度が異なる等、阻害様式に特色のある様々な
プロテアーゼインヒビターの開発が必要である。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、プロ
テアーゼ阻害活性を有する新規なポリペプチドを提供す
ることにある。本発明の他の目的は、当該新規ポリペプ
チドをコードする塩基配列を有する新規ＤＮＡ、当該新
規ＤＮＡを含むベクター、当該新規ＤＮＡで形質転換さ
れた形質転換体、当該新規ＤＮＡを含むベクターで形質
転換された形質転換体および当該新規ポリペプチドを製
造する方法を提供することにある。さらに、本発明の目
的は、当該新規ポリペプチドを有効成分とする医薬組成
物および当該新規ポリペプチドを用いた酵素阻害方法を
提供することにある。
テアーゼ阻害活性を有する新規なポリペプチドを提供す
ることにある。本発明の他の目的は、当該新規ポリペプ
チドをコードする塩基配列を有する新規ＤＮＡ、当該新
規ＤＮＡを含むベクター、当該新規ＤＮＡで形質転換さ
れた形質転換体、当該新規ＤＮＡを含むベクターで形質
転換された形質転換体および当該新規ポリペプチドを製
造する方法を提供することにある。さらに、本発明の目
的は、当該新規ポリペプチドを有効成分とする医薬組成
物および当該新規ポリペプチドを用いた酵素阻害方法を
提供することにある。
【０００４】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、従来のプ
ロテアーゼインヒビターと異なる、各種プロテアーゼに
対する阻害様式や医薬組成物の有効成分として要求され
る性質を有する新規なプロテアーゼインヒビターを得る
べく鋭意研究を重ねてきた。特に、もともと特異性の高
い阻害活性を有する天然物のプロテアーゼインヒビター
に注目し、これを材料として、目的のプロテアーゼイン
ヒビターを得ることを試みた。その結果、本発明者ら
は、驚くべきことに、下記式１で示したアミノ酸配列中
の１つ以上のアミノ酸を欠失させることにより、目的と
するポリペプチドを得ることに成功した。 式１ Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys 前記式１のアミノ酸配列は、既知の蛋白性プロテアーゼ
インヒビターである尿中トリプシンインヒビター（以後
ＵＴＩと略す）（食見等、Pharma Medica 、７巻、１６
９−１７４頁、１９８９年）もしくはＨＩ−３０（Wach
ter E. and Hochstrasser K., Hoppe- Seyler's Z. Phy
siol. Chem. ３６０巻、１３０５−１３１１頁、１９７
９年）のアミノ酸配列の一部と一致する。このアミノ酸
配列は、ＵＴＩもしくはＨＩ−３０のＣ末端側ドメイン
の一部であり、ＨＩ−３０のＣ末端側ドメインのトリプ
シン阻害活性の機能に必要不可欠な最小単位と考えられ
る配列である（特願平３−３２５２２０号）。ＨＩ−３
０については、その活性中心のアミノ酸を他のアミノ酸
に置換することが既に試みられているが（Fritz 等、特
開平３−２５５０９９、ＥＰ４０１５０８）、アミノ酸
を欠失させた場合の効果については知られていない。ま
た、ＵＴＩについても、活性ドメインの内部のアミノ酸
を欠失させた場合の効果は知られていない。したがっ
て、ＵＴＩもしくはＨＩ−３０のアミノ酸配列の一部か
ら１つ以上のアミノ酸を欠失させた場合の効果は、本発
明者らによりはじめて開示されるものである。従来、Ｕ
ＴＩもしくはＨＩ−３０のプロテアーゼ阻害のために必
要不可欠な構造と考えられてきた式１のアミノ酸配列か
ら、１つ以上のアミノ酸を欠失させ、さらに小さいポリ
ペプチドにしてもプロテアーゼ阻害活性が残存し、か
つ、医薬組成物の有効成分として要求される性質が改善
できることは、まさに、驚くべき知見である。ここで、
医薬組成物の有効成分として要求される性質とは、安定
性、溶解性、非抗原性、生産性等の諸性質のうちのいず
れか１つ以上の性質をいう。式１のアミノ酸配列から１
つ以上のアミノ酸を欠失させることにより、当該ポリペ
プチドから不要な酵素阻害活性をとり除くことができ
る。また、余分なアミノ酸を欠失させることで、目的と
する酵素と結合する際の立体障害をとり除き、より安定
な酵素阻害活性や新規な酵素阻害活性を付与することが
できる。このようにして、酵素阻害様式を変化させた結
果、プロテアーゼが関与するおのおのの疾患の治療に適
したプロテアーゼインヒビターを得ることができる。以
上の知見に基づき、本発明は完成された。
ロテアーゼインヒビターと異なる、各種プロテアーゼに
対する阻害様式や医薬組成物の有効成分として要求され
る性質を有する新規なプロテアーゼインヒビターを得る
べく鋭意研究を重ねてきた。特に、もともと特異性の高
い阻害活性を有する天然物のプロテアーゼインヒビター
に注目し、これを材料として、目的のプロテアーゼイン
ヒビターを得ることを試みた。その結果、本発明者ら
は、驚くべきことに、下記式１で示したアミノ酸配列中
の１つ以上のアミノ酸を欠失させることにより、目的と
するポリペプチドを得ることに成功した。 式１ Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys 前記式１のアミノ酸配列は、既知の蛋白性プロテアーゼ
インヒビターである尿中トリプシンインヒビター（以後
ＵＴＩと略す）（食見等、Pharma Medica 、７巻、１６
９−１７４頁、１９８９年）もしくはＨＩ−３０（Wach
ter E. and Hochstrasser K., Hoppe- Seyler's Z. Phy
siol. Chem. ３６０巻、１３０５−１３１１頁、１９７
９年）のアミノ酸配列の一部と一致する。このアミノ酸
配列は、ＵＴＩもしくはＨＩ−３０のＣ末端側ドメイン
の一部であり、ＨＩ−３０のＣ末端側ドメインのトリプ
シン阻害活性の機能に必要不可欠な最小単位と考えられ
る配列である（特願平３−３２５２２０号）。ＨＩ−３
０については、その活性中心のアミノ酸を他のアミノ酸
に置換することが既に試みられているが（Fritz 等、特
開平３−２５５０９９、ＥＰ４０１５０８）、アミノ酸
を欠失させた場合の効果については知られていない。ま
た、ＵＴＩについても、活性ドメインの内部のアミノ酸
を欠失させた場合の効果は知られていない。したがっ
て、ＵＴＩもしくはＨＩ−３０のアミノ酸配列の一部か
ら１つ以上のアミノ酸を欠失させた場合の効果は、本発
明者らによりはじめて開示されるものである。従来、Ｕ
ＴＩもしくはＨＩ−３０のプロテアーゼ阻害のために必
要不可欠な構造と考えられてきた式１のアミノ酸配列か
ら、１つ以上のアミノ酸を欠失させ、さらに小さいポリ
ペプチドにしてもプロテアーゼ阻害活性が残存し、か
つ、医薬組成物の有効成分として要求される性質が改善
できることは、まさに、驚くべき知見である。ここで、
医薬組成物の有効成分として要求される性質とは、安定
性、溶解性、非抗原性、生産性等の諸性質のうちのいず
れか１つ以上の性質をいう。式１のアミノ酸配列から１
つ以上のアミノ酸を欠失させることにより、当該ポリペ
プチドから不要な酵素阻害活性をとり除くことができ
る。また、余分なアミノ酸を欠失させることで、目的と
する酵素と結合する際の立体障害をとり除き、より安定
な酵素阻害活性や新規な酵素阻害活性を付与することが
できる。このようにして、酵素阻害様式を変化させた結
果、プロテアーゼが関与するおのおのの疾患の治療に適
したプロテアーゼインヒビターを得ることができる。以
上の知見に基づき、本発明は完成された。
【０００５】すなわち、本発明第１の態様は、前記式１
で示されるアミノ酸配列中の１つ以上のアミノ酸が欠失
してなるアミノ酸配列を有することを特徴とする新規ポ
リペプチドを提供する。
で示されるアミノ酸配列中の１つ以上のアミノ酸が欠失
してなるアミノ酸配列を有することを特徴とする新規ポ
リペプチドを提供する。
【０００６】本発明第２の態様は、本発明第１の態様の
新規ポリペプチドをコードする塩基配列を有することを
特徴とする新規ＤＮＡを提供する。
新規ポリペプチドをコードする塩基配列を有することを
特徴とする新規ＤＮＡを提供する。
【０００７】本発明第３の態様は、本発明第２の態様の
新規ＤＮＡを含んでなることを特徴とするベクターを提
供する。
新規ＤＮＡを含んでなることを特徴とするベクターを提
供する。
【０００８】本発明第４の態様は、本発明第２の態様の
新規ＤＮＡによって形質転換された形質転換体を提供す
る。
新規ＤＮＡによって形質転換された形質転換体を提供す
る。
【０００９】本発明第５の態様は、本発明第３の態様の
ベクターによって形質転換された形質転換体を提供す
る。
ベクターによって形質転換された形質転換体を提供す
る。
【００１０】本発明第６の態様は、下記ａ）〜ｃ）の工
程を行うことを特徴とする本発明第１の態様の新規ポリ
ペプチドの製造方法を提供する。 ａ）本発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードする
塩基配列を有するＤＮＡを得る。 ｂ）ａ）で得たＤＮＡで宿主細胞を形質転換させて形質
転換体を得る。 ｃ）ｂ）で得た形質転換体を培養して、本発明第１の態
様の新規ポリペプチドを産生させ、当該ポリペプチドを
培養混合物から回収する。
程を行うことを特徴とする本発明第１の態様の新規ポリ
ペプチドの製造方法を提供する。 ａ）本発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードする
塩基配列を有するＤＮＡを得る。 ｂ）ａ）で得たＤＮＡで宿主細胞を形質転換させて形質
転換体を得る。 ｃ）ｂ）で得た形質転換体を培養して、本発明第１の態
様の新規ポリペプチドを産生させ、当該ポリペプチドを
培養混合物から回収する。
【００１１】本発明第７の態様は、下記ａ）〜ｄ）の工
程を行うことを特徴とする本発明第１の態様の新規ポリ
ペプチドの製造方法を提供する。 ａ）本発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードする
塩基配列を有するＤＮＡを得る。 ｂ）ａ）で得たＤＮＡを含むベクターを得る。 ｃ）ｂ）で得たベクターで宿主細胞を形質転換させて形
質転換体を得る。 ｄ）ｃ）で得た形質転換体を培養して、本発明第１の態
様の新規ポリペプチドを産生させ、当該ポリペプチドを
培養混合物から回収する。
程を行うことを特徴とする本発明第１の態様の新規ポリ
ペプチドの製造方法を提供する。 ａ）本発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードする
塩基配列を有するＤＮＡを得る。 ｂ）ａ）で得たＤＮＡを含むベクターを得る。 ｃ）ｂ）で得たベクターで宿主細胞を形質転換させて形
質転換体を得る。 ｄ）ｃ）で得た形質転換体を培養して、本発明第１の態
様の新規ポリペプチドを産生させ、当該ポリペプチドを
培養混合物から回収する。
【００１２】本発明第８の態様は、本発明第１の態様の
新規ポリペプチドを有効成分として含有することを特徴
とする医薬組成物を提供する。
新規ポリペプチドを有効成分として含有することを特徴
とする医薬組成物を提供する。
【００１３】本発明第９の態様は、本発明第１の態様の
新規ポリペプチドを用いることを特徴とする、新規酵素
阻害方法を提供する。
新規ポリペプチドを用いることを特徴とする、新規酵素
阻害方法を提供する。
【００１４】以下に本発明を詳細に説明する。本発明第
１の態様の新規ポリペプチドは、前記式１のアミノ酸配
列から１つ以上のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸配列
を有することを特徴とする。ここで、「アミノ酸が欠失
してなる」とは、当該アミノ酸の欠失が人工的に形成さ
れたものであっても、天然において生じたものであって
もよいことを意味する。また、「アミノ酸配列を有す
る」とは、当該新規ポリペプチドが、前記式１のアミノ
酸配列から１つ以上のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸
配列そのもので規定されるポリプチドであってもよい
し、前記式１のアミノ酸配列から１つ以上のアミノ酸が
欠失してなるアミノ酸配列のＮ末端、Ｃ末端もしくはそ
の両方に、１つ以上の任意のアミノ酸が付加したアミノ
酸配列で規定されるポリペチドであってもよいことを意
味する。例えば、本発明第１の態様の新規ポリペプチド
は、前記式１のアミノ酸配列から１つ以上のアミノ酸が
欠失してなるアミノ酸配列のＮ末端、Ｃ末端もしくはそ
の両方に、それぞれ、他のポリペプチドを構成するアミ
ノ酸配列が付加したアミノ酸配列で規定されるものであ
ってもよい。欠失するアミノ酸の位置、種類および数は
特に限定されない。しかしながら、好ましくは、当該ア
ミノ酸の欠失は、前記式１のアミノ酸配列中、下記
（１）ないし（５）より選ばれる、いずれか、１箇所以
上の部位で生じていることがよい。すなわち、本発明の
新規ポリペプチドは、前記式１のアミノ酸配列中、下記
（１）ないし（５）より選ばれる、いずれか、１箇所の
部位で、１つ以上のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸配
列を有していてもよいし、下記式（１）ないし（５）よ
り選ばれる任意の２箇所以上の部位で、同時に、１つ以
上のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸配列を有していて
もよい。 （１）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて２番
目のAsn から９番目のPro までの間。 （２）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて１１
番目のArg から２５番目のLys までの間。 （３）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて２７
番目のVal から３３番目のGly までの間。 （４）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて３５
番目のGln から４６番目のGlu までの間。 （５）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて４８
番目のArg から５０番目のTyr までの間。
１の態様の新規ポリペプチドは、前記式１のアミノ酸配
列から１つ以上のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸配列
を有することを特徴とする。ここで、「アミノ酸が欠失
してなる」とは、当該アミノ酸の欠失が人工的に形成さ
れたものであっても、天然において生じたものであって
もよいことを意味する。また、「アミノ酸配列を有す
る」とは、当該新規ポリペプチドが、前記式１のアミノ
酸配列から１つ以上のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸
配列そのもので規定されるポリプチドであってもよい
し、前記式１のアミノ酸配列から１つ以上のアミノ酸が
欠失してなるアミノ酸配列のＮ末端、Ｃ末端もしくはそ
の両方に、１つ以上の任意のアミノ酸が付加したアミノ
酸配列で規定されるポリペチドであってもよいことを意
味する。例えば、本発明第１の態様の新規ポリペプチド
は、前記式１のアミノ酸配列から１つ以上のアミノ酸が
欠失してなるアミノ酸配列のＮ末端、Ｃ末端もしくはそ
の両方に、それぞれ、他のポリペプチドを構成するアミ
ノ酸配列が付加したアミノ酸配列で規定されるものであ
ってもよい。欠失するアミノ酸の位置、種類および数は
特に限定されない。しかしながら、好ましくは、当該ア
ミノ酸の欠失は、前記式１のアミノ酸配列中、下記
（１）ないし（５）より選ばれる、いずれか、１箇所以
上の部位で生じていることがよい。すなわち、本発明の
新規ポリペプチドは、前記式１のアミノ酸配列中、下記
（１）ないし（５）より選ばれる、いずれか、１箇所の
部位で、１つ以上のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸配
列を有していてもよいし、下記式（１）ないし（５）よ
り選ばれる任意の２箇所以上の部位で、同時に、１つ以
上のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸配列を有していて
もよい。 （１）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて２番
目のAsn から９番目のPro までの間。 （２）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて１１
番目のArg から２５番目のLys までの間。 （３）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて２７
番目のVal から３３番目のGly までの間。 （４）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて３５
番目のGln から４６番目のGlu までの間。 （５）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて４８
番目のArg から５０番目のTyr までの間。
【００１５】欠失するアミノ酸の好ましい例としては、
下記（１）または（２）より選ばれるいずれか１つ以上
のアミノ酸があげられる。 （１）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて２２
番目のVal 。 （２）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて５０
番目のTyr 。
下記（１）または（２）より選ばれるいずれか１つ以上
のアミノ酸があげられる。 （１）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて２２
番目のVal 。 （２）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて５０
番目のTyr 。
【００１６】したがって、本発明の新規ポリペプチド
は、前記式１のアミノ酸配列から、少なくとも、前記
（１）または（２）より選ばれる、いずれか、１つ以上
のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸配列を有するものが
よい。すなわち、本発明の新規ポリペプチドは、前記式
１のアミノ酸配列から、前記（１）または（２）より選
ばれる、いずれか、１つのアミノ酸が欠失してなるアミ
ノ酸配列を有するものであってもよいし、前記（１）お
よび（２）のアミノ酸が同時に欠失してなるアミノ酸配
列を有するものであってもよい。また、本発明の新規ポ
リペプチドは、前記式１のアミノ酸配列から、前記
（１）または（２）より選ばれる１つ以上のアミノ酸、
および、式１のアミノ酸配列中の任意の１つ以上のアミ
ノ酸が欠失してなるアミノ酸配列を有するものであって
もよい。
は、前記式１のアミノ酸配列から、少なくとも、前記
（１）または（２）より選ばれる、いずれか、１つ以上
のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸配列を有するものが
よい。すなわち、本発明の新規ポリペプチドは、前記式
１のアミノ酸配列から、前記（１）または（２）より選
ばれる、いずれか、１つのアミノ酸が欠失してなるアミ
ノ酸配列を有するものであってもよいし、前記（１）お
よび（２）のアミノ酸が同時に欠失してなるアミノ酸配
列を有するものであってもよい。また、本発明の新規ポ
リペプチドは、前記式１のアミノ酸配列から、前記
（１）または（２）より選ばれる１つ以上のアミノ酸、
および、式１のアミノ酸配列中の任意の１つ以上のアミ
ノ酸が欠失してなるアミノ酸配列を有するものであって
もよい。
【００１７】本発明の新規ポリペプチドのより好ましい
例として、具体的には下記式３または４より選ばれるア
ミノ酸配列を有するポリペプチドがあげられる。 式３ Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys
例として、具体的には下記式３または４より選ばれるア
ミノ酸配列を有するポリペプチドがあげられる。 式３ Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys
【００１８】 式４ Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu Cys Arg Glu Cys
【００１９】先にも述べたとおり、本発明の新規ポリペ
プチドは、前記式１のアミノ酸配列から１つ以上のアミ
ノ酸が欠失してなるアミノ酸配列のＮ末端、Ｃ末端もし
くはその両方に任意の１つ以上のアミノ酸が付加したア
ミノ酸配列を有するものであってもよい。付加されるア
ミノ酸の種類およびその数は、本発明の新規ポリペプチ
ドの特徴が完全には失われない範囲であれば、特に、限
定されない。Ｎ末端側に付加されるアミノ酸配列として
好ましいものは、下記（１）ないし（５）より選ばれる
アミノ酸配列である。Ｎ末端に付加されるアミノ酸配列
は、下記（１）ないし（５）より選ばれるいずれかのア
ミノ酸配列において１つ以上のアミノ酸が他のアミノ酸
に置換されてなるアミノ酸配列、１つ以上のアミノ酸が
欠失してなるアミノ酸配列、もしくは１つ以上のアミノ
酸の置換と欠失が同時に生じてなるアミノ酸配列であっ
てもよい。これらの配列は、当該新規ポリペプチドを大
腸菌を使用して産生させる場合に有用である。なかでも
下記（１）のアミノ酸配列は、ポリペプチドを大腸菌よ
り効率よく分泌させるために有用な配列である。当該付
加されるアミノ酸配列は、下記（１）ないし（５）より
選ばれるアミノ酸配列にさらに加えて、そのＮ末端に１
つ以上のアミノ酸の追加が生じてなるアミノ酸配列であ
ってもよい。 （１） Asp Asp Ala Ala （２） Thr Val Ala Ala （３） Val Ala Ala （４） Ala Ala （５） Ala
プチドは、前記式１のアミノ酸配列から１つ以上のアミ
ノ酸が欠失してなるアミノ酸配列のＮ末端、Ｃ末端もし
くはその両方に任意の１つ以上のアミノ酸が付加したア
ミノ酸配列を有するものであってもよい。付加されるア
ミノ酸の種類およびその数は、本発明の新規ポリペプチ
ドの特徴が完全には失われない範囲であれば、特に、限
定されない。Ｎ末端側に付加されるアミノ酸配列として
好ましいものは、下記（１）ないし（５）より選ばれる
アミノ酸配列である。Ｎ末端に付加されるアミノ酸配列
は、下記（１）ないし（５）より選ばれるいずれかのア
ミノ酸配列において１つ以上のアミノ酸が他のアミノ酸
に置換されてなるアミノ酸配列、１つ以上のアミノ酸が
欠失してなるアミノ酸配列、もしくは１つ以上のアミノ
酸の置換と欠失が同時に生じてなるアミノ酸配列であっ
てもよい。これらの配列は、当該新規ポリペプチドを大
腸菌を使用して産生させる場合に有用である。なかでも
下記（１）のアミノ酸配列は、ポリペプチドを大腸菌よ
り効率よく分泌させるために有用な配列である。当該付
加されるアミノ酸配列は、下記（１）ないし（５）より
選ばれるアミノ酸配列にさらに加えて、そのＮ末端に１
つ以上のアミノ酸の追加が生じてなるアミノ酸配列であ
ってもよい。 （１） Asp Asp Ala Ala （２） Thr Val Ala Ala （３） Val Ala Ala （４） Ala Ala （５） Ala
【００２０】Ｃ末端に付加されるアミノ酸配列として好
ましいものは、下記（６）ないし（20）より選ばれるア
ミノ酸配列である。Ｃ末端に付加されるアミノ酸配列
は、下記（６）ないし（20）より選ばれるいずれかのア
ミノ酸配列において１つ以上のアミノ酸が他のアミノ酸
に置換されてなるアミノ酸配列、１つ以上のアミノ酸が
欠失してなるアミノ酸配列、もしくは１つ以上のアミノ
酸の置換と欠失が同時に生じてなるアミノ酸配列であっ
てもよい。これらの配列は、当該新規ポリペプチドを大
腸菌で産生させる際に有用である。当該付加されるアミ
ノ酸配列は、下記（６）ないし（20）より選ばれるアミ
ノ酸配列にさらに加えて、そのＣ末端に１つ以上のアミ
ノ酸の追加が生じてなるアミノ酸配列であってもよい。 （６）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser Asn （７）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser （８）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe （９）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg （10）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu （11）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu （12）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu （13）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu （14）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp （15）Gly Val Pro Gly Asp Gly （16）Gly Val Pro Gly Asp （17）Gly Val Pro Gly （18）Gly Val Pro （19）Gly Val （20）Gly
ましいものは、下記（６）ないし（20）より選ばれるア
ミノ酸配列である。Ｃ末端に付加されるアミノ酸配列
は、下記（６）ないし（20）より選ばれるいずれかのア
ミノ酸配列において１つ以上のアミノ酸が他のアミノ酸
に置換されてなるアミノ酸配列、１つ以上のアミノ酸が
欠失してなるアミノ酸配列、もしくは１つ以上のアミノ
酸の置換と欠失が同時に生じてなるアミノ酸配列であっ
てもよい。これらの配列は、当該新規ポリペプチドを大
腸菌で産生させる際に有用である。当該付加されるアミ
ノ酸配列は、下記（６）ないし（20）より選ばれるアミ
ノ酸配列にさらに加えて、そのＣ末端に１つ以上のアミ
ノ酸の追加が生じてなるアミノ酸配列であってもよい。 （６）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser Asn （７）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser （８）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe （９）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg （10）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu （11）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu （12）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu （13）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu （14）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp （15）Gly Val Pro Gly Asp Gly （16）Gly Val Pro Gly Asp （17）Gly Val Pro Gly （18）Gly Val Pro （19）Gly Val （20）Gly
【００２１】もちろん、これらの好ましい配列の追加
は、Ｎ末端あるいはＣ末端のみに生じていてもよく、ま
た、Ｎ末端とＣ末端の両方に生じていてもよい。例え
ば、本発明の新規ポリペプチドのより好ましい例とし
て、前記式３または４のアミノ酸配列のＮ末端に上述の
（４）のアミノ酸配列、Ala Ala が、Ｃ末端に上述の
（６）のアミノ酸配列、Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp
Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser Asn が付加されたアミノ
酸配列を有するポリペプチドがあげられる。
は、Ｎ末端あるいはＣ末端のみに生じていてもよく、ま
た、Ｎ末端とＣ末端の両方に生じていてもよい。例え
ば、本発明の新規ポリペプチドのより好ましい例とし
て、前記式３または４のアミノ酸配列のＮ末端に上述の
（４）のアミノ酸配列、Ala Ala が、Ｃ末端に上述の
（６）のアミノ酸配列、Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp
Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser Asn が付加されたアミノ
酸配列を有するポリペプチドがあげられる。
【００２２】本発明の第１の態様の新規ポリペプチドに
は、糖鎖を有するものおよび有さないもの、いずれも、
が含まれる。近年の技術は、ポリペプチドにアルキル
化、酸化、還元、加水分解等、種々の化学修飾を施すこ
とを可能にした。また、薬理学上許容される酸や塩基と
の塩を形成させたり、ＤＤＳ（Drug Deliverly Sytem）
の点から、ポリペプチドにポリエチレングリコール等の
他の物質を結合させることも一般的に行われる技術であ
る。従って、本発明第１の態様の新規ポリペプチドに
は、これらの修飾が施されたポリペプチドも包含され
る。
は、糖鎖を有するものおよび有さないもの、いずれも、
が含まれる。近年の技術は、ポリペプチドにアルキル
化、酸化、還元、加水分解等、種々の化学修飾を施すこ
とを可能にした。また、薬理学上許容される酸や塩基と
の塩を形成させたり、ＤＤＳ（Drug Deliverly Sytem）
の点から、ポリペプチドにポリエチレングリコール等の
他の物質を結合させることも一般的に行われる技術であ
る。従って、本発明第１の態様の新規ポリペプチドに
は、これらの修飾が施されたポリペプチドも包含され
る。
【００２３】本発明第１の態様の新規ポリペプチドは、
いかなる方法で得られたものであってもよい。例えば、
本発明第１の態様の新規ポリペプチドは、ペプチド合成
機（例えば、アプライドバイオシステムズ社製、４３１
型）を用いて化学合成されたものであってもよい。ま
た、本発明の新規ポリペプチドをコードするＤＮＡを用
い、公知の組み換えＤＮＡ技術（例えば、T,Maniatis等
編、Molecular Cloning,a laboratory manual, １９８
２年, Cold Spring Harbor Laboratory 参照）によって
製造されたものであってもよい。なお、当該新規ポリペ
プチドをコードするＤＮＡの好ましい例は、本発明第２
の態様で説明する。また、組み換えＤＮＡ技術による本
発明第１の態様の新規ポリペプチドの製造方法の好まし
い例は、本発明第３の態様で説明する。
いかなる方法で得られたものであってもよい。例えば、
本発明第１の態様の新規ポリペプチドは、ペプチド合成
機（例えば、アプライドバイオシステムズ社製、４３１
型）を用いて化学合成されたものであってもよい。ま
た、本発明の新規ポリペプチドをコードするＤＮＡを用
い、公知の組み換えＤＮＡ技術（例えば、T,Maniatis等
編、Molecular Cloning,a laboratory manual, １９８
２年, Cold Spring Harbor Laboratory 参照）によって
製造されたものであってもよい。なお、当該新規ポリペ
プチドをコードするＤＮＡの好ましい例は、本発明第２
の態様で説明する。また、組み換えＤＮＡ技術による本
発明第１の態様の新規ポリペプチドの製造方法の好まし
い例は、本発明第３の態様で説明する。
【００２４】次に、本発明第２の態様の新規ＤＮＡを説
明する。
明する。
【００２５】本発明第２の態様の新規ＤＮＡは、本発明
第１の態様の新規ポリペプチドをコードする塩基配列を
有することを特徴とするＤＮＡである。すなわち、本発
明のＤＮＡは、前記式１で示されたアミノ酸配列中の１
つ以上のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸配列を有する
ポリペプチドをコードする塩基配列を有することを特徴
とする。ここで、「塩基配列を有する」とは、本発明第
２の態様の新規ＤＮＡが、当該塩基配列のみで規定され
るものであっても、当該塩基配列の５’末端、３’末端
に任意の１つ以上の塩基が追加された塩基配列で規定さ
れるものであってもよいことを意味する。本発明第２の
態様の新規ＤＮＡは、適当な方法にて適当な宿主細胞を
形質転換させた時に、形質転換された宿主細胞において
本発明第１の態様の新規ポリペプチドが産生され得るよ
うなＤＮＡであれば、いかなる塩基配列を有するＤＮＡ
であってもよい。周知のように１アミノ酸に対応するコ
ドンが複数個あることを考慮すると、本発明第１の態様
の新規ポリペプチドをコードする塩基配列は１種類のみ
に限定されず、したがって、本発明の第２の態様の新規
ＤＮＡの塩基配列も１種類のみに限定されない。しかし
ながら、前記式１のアミノ酸配列をコードする塩基配列
は、好ましくは、前記式２の塩基配列であることがよ
い。従って、本発明第２の態様の新規ＤＮＡは、好まし
くは、本発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードす
る塩基配列であって、前記式２の塩基配列から１つ以上
の塩基が欠失してなる塩基配列を有することが好まし
い。ここで、「塩基が欠失してなる」とは、当該の塩基
の欠失が、人工的に形成されたものであっても、天然に
おいて生じたものであってもよいことを意味する。本発
明第２の態様の新規ＤＮＡは、前記式２の塩基配列から
１つ以上の塩基が欠失してなる塩基配列のみで規定され
るものであってもよいし、前記式２の塩基配列から１つ
以上の塩基が欠失してなる塩基配列に加え、その５’末
端、３’末端もしくはその両方に、任意の１つ以上の塩
基が追加された塩基配列で規定されるものであってもよ
い。例えば、本発明第２の態様の新規ＤＮＡは、前記式
２の塩基配列から１つ以上の塩基が欠失してなる塩基配
列に加え、その５’末端に、リボゾーム、プロモータ
ー、開始コドン結合部位あるいはシグナルペプチドをコ
ードする配列が追加された塩基配列を有していてもよい
し、３’末端に終止コドンが追加された塩基配列を有し
ていてもよい。また、本発明第２の態様の新規ＤＮＡ
は、前記式２の塩基配列から１つ以上の塩基が欠失して
なる塩基配列の５’末端、３’末端もしくはその両方
に、適当な制限酵素によって認識される塩基配列や他の
ポリペプチドをコードする塩基配列が追加された塩基配
列を有していてもよい。
第１の態様の新規ポリペプチドをコードする塩基配列を
有することを特徴とするＤＮＡである。すなわち、本発
明のＤＮＡは、前記式１で示されたアミノ酸配列中の１
つ以上のアミノ酸が欠失してなるアミノ酸配列を有する
ポリペプチドをコードする塩基配列を有することを特徴
とする。ここで、「塩基配列を有する」とは、本発明第
２の態様の新規ＤＮＡが、当該塩基配列のみで規定され
るものであっても、当該塩基配列の５’末端、３’末端
に任意の１つ以上の塩基が追加された塩基配列で規定さ
れるものであってもよいことを意味する。本発明第２の
態様の新規ＤＮＡは、適当な方法にて適当な宿主細胞を
形質転換させた時に、形質転換された宿主細胞において
本発明第１の態様の新規ポリペプチドが産生され得るよ
うなＤＮＡであれば、いかなる塩基配列を有するＤＮＡ
であってもよい。周知のように１アミノ酸に対応するコ
ドンが複数個あることを考慮すると、本発明第１の態様
の新規ポリペプチドをコードする塩基配列は１種類のみ
に限定されず、したがって、本発明の第２の態様の新規
ＤＮＡの塩基配列も１種類のみに限定されない。しかし
ながら、前記式１のアミノ酸配列をコードする塩基配列
は、好ましくは、前記式２の塩基配列であることがよ
い。従って、本発明第２の態様の新規ＤＮＡは、好まし
くは、本発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードす
る塩基配列であって、前記式２の塩基配列から１つ以上
の塩基が欠失してなる塩基配列を有することが好まし
い。ここで、「塩基が欠失してなる」とは、当該の塩基
の欠失が、人工的に形成されたものであっても、天然に
おいて生じたものであってもよいことを意味する。本発
明第２の態様の新規ＤＮＡは、前記式２の塩基配列から
１つ以上の塩基が欠失してなる塩基配列のみで規定され
るものであってもよいし、前記式２の塩基配列から１つ
以上の塩基が欠失してなる塩基配列に加え、その５’末
端、３’末端もしくはその両方に、任意の１つ以上の塩
基が追加された塩基配列で規定されるものであってもよ
い。例えば、本発明第２の態様の新規ＤＮＡは、前記式
２の塩基配列から１つ以上の塩基が欠失してなる塩基配
列に加え、その５’末端に、リボゾーム、プロモータ
ー、開始コドン結合部位あるいはシグナルペプチドをコ
ードする配列が追加された塩基配列を有していてもよい
し、３’末端に終止コドンが追加された塩基配列を有し
ていてもよい。また、本発明第２の態様の新規ＤＮＡ
は、前記式２の塩基配列から１つ以上の塩基が欠失して
なる塩基配列の５’末端、３’末端もしくはその両方
に、適当な制限酵素によって認識される塩基配列や他の
ポリペプチドをコードする塩基配列が追加された塩基配
列を有していてもよい。
【００２６】前記式２の塩基配列から欠失させる塩基の
位置、種類および数は、最終的に得られる塩基配列が本
発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードするもので
あれば特に限定されない。しかしながら、好ましくは、
１つ以上の塩基の欠失は、前記式２の塩基配列中、下記
（１）ないし（５）の、いずれか、１箇所以上の部位で
生じている事がよい。すなわち、本発明の新規ＤＮＡ
は、前記式２中、下記（１）ないし（５）より選ばれる
いずれか１箇所の部位で、１つ以上の塩基が欠失してな
る塩基配列を有するＤＮＡであってもよいし、下記
（１）ないし（５）より選ばれる任意の２箇所以上の部
位で、同時に１つ以上の塩基が欠失してなる塩基配列を
有するＤＮＡであってもよい。 （１）前記式２の塩基配列の５’末端より数えて４番目
のA から２７番目のC までの間 （２）前記式２の塩基配列の５’末端より数えて３１番
目のC から７５番目のGまでの間 （３）前記式２の塩基配列の５’末端より数えて７９番
目のG から９９番目のCまでの間 （４）前記式２の塩基配列のＮ末端より数えて１０３番
目のC から１３８番目のG までの間 （５）前記式２の塩基酸配列のＮ末端より数えて１４２
番目のA から１５０番目のC までの間
位置、種類および数は、最終的に得られる塩基配列が本
発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードするもので
あれば特に限定されない。しかしながら、好ましくは、
１つ以上の塩基の欠失は、前記式２の塩基配列中、下記
（１）ないし（５）の、いずれか、１箇所以上の部位で
生じている事がよい。すなわち、本発明の新規ＤＮＡ
は、前記式２中、下記（１）ないし（５）より選ばれる
いずれか１箇所の部位で、１つ以上の塩基が欠失してな
る塩基配列を有するＤＮＡであってもよいし、下記
（１）ないし（５）より選ばれる任意の２箇所以上の部
位で、同時に１つ以上の塩基が欠失してなる塩基配列を
有するＤＮＡであってもよい。 （１）前記式２の塩基配列の５’末端より数えて４番目
のA から２７番目のC までの間 （２）前記式２の塩基配列の５’末端より数えて３１番
目のC から７５番目のGまでの間 （３）前記式２の塩基配列の５’末端より数えて７９番
目のG から９９番目のCまでの間 （４）前記式２の塩基配列のＮ末端より数えて１０３番
目のC から１３８番目のG までの間 （５）前記式２の塩基酸配列のＮ末端より数えて１４２
番目のA から１５０番目のC までの間
【００２７】欠失させる塩基の好ましい例としては、下
記（１）または（２）より選ばれるいずれか１組以上の
塩基があげられる。 （１）前記式１の塩基配列の５’末端より数えて６４か
ら６６番目のG 、T 、C。 （２）前記式１の塩基配列の５’末端より数えて１４８
から１５０番目のT 、A、C 。 したがって、本発明の新規ＤＮＡは、好ましくは、前記
式２の塩基配列から、少なくとも前記（１）または
（２）より選ばれる、いずれか、１組以上の塩基が欠失
した塩基配列を有するＤＮＡがよい。すなわち、本発明
の新規ＤＮＡは、前記式２の塩基配列から、前記（１）
または（２）より選ばれる、いずれか、１組の塩基が欠
失してなる塩基配列を有するＤＮＡであっても、前記式
２から、前記式（１）および（２）の２組の塩基が同時
に欠失してなる塩基配列を有するものであってもよい。
また、本発明の新規ＤＮＡは、前記式２の塩基配列か
ら、前記式（１）または（２）の、いずれか、１組以上
の塩基配列、および、式２の塩基配列中の任意の１つ以
上の塩基が欠失した塩基配列を有するＤＮＡであっても
よい。本発明第２の態様の新規ＤＮＡのより好ましい例
として、具体的には下記式５または６より選ばれる塩基
配列を有するＤＮＡがあげられる。 式５ TGT AAT CTA CCA ATA GTC CGG GGC CCC TGC CGA GCC TTC ATC CAG CTC TGG GCA TTT GAT GCT AAG GGG AAG TGC GTC CTC TTC CCC TAC GGG GGC TGC CAG GGC AAC GGG AAC AAG TTC TAC TCA GAG AAG GAG TGC AGA GAG TAC TGC 式６ TGT AAT CTA CCA ATA GTC CGG GGC CCC TGC CGA GCC TTC ATC CAG CTC TGG GCA TTT GAT GCT GTC AAG GGG AAG TGC GTC CTC TTC CCC TAC GGG GGC TGC CAG GGC AAC GGG AAC AAG TTC TAC TCA GAG AAG GAG TGC AGA GAG TGC 先にも述べたように、本発明の新規ＤＮＡは、前記式２
から１つ以上の塩基を欠失させてなる塩基配列の、５’
末端、３’末端、もしくはその両方に、任意の１つ以上
の塩基が付加された塩基配列を有するものであってもよ
い。付加される塩基は、最終的に得られる塩基配列が本
発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードし得る限り
においては、その数および種類は限定されない。しかし
ながら、５’末端側に付加される塩基配列としては下記
式（１）ないし（５）より選ばれる、いずれかの塩基配
列が好ましい。５’末端に付加する塩基配列は、下記式
（１）ないし（５）より選ばれる塩基配列中、１つ以上
の塩基が他の塩基に置換されてなる塩基配列であって
も、１つ以上の塩基が欠失してなる塩基配列であって
も、また、１つ以上の塩基の置換と欠失が同時に生じて
なる塩基配列であってもよい。これらの塩基配列は、本
発明第１の態様の新規ポリペプチドを大腸菌で産生させ
る場合に有用である。なかでも、下記式（１）の塩基配
列は、ポリペプチドを宿主細胞より効率的に分泌発現さ
せるために有用である。もちろん、５’末端に付加する
塩基配列は、下記式（１）ないし（５）より選ばれる塩
基配列に加え、その５’末端に、開始コドンや制限酵素
認識部位、他のポリペプチドをコードする塩基配列等、
任意の１つ以上の塩基が付加されてなる塩基配列であっ
てもよい。
記（１）または（２）より選ばれるいずれか１組以上の
塩基があげられる。 （１）前記式１の塩基配列の５’末端より数えて６４か
ら６６番目のG 、T 、C。 （２）前記式１の塩基配列の５’末端より数えて１４８
から１５０番目のT 、A、C 。 したがって、本発明の新規ＤＮＡは、好ましくは、前記
式２の塩基配列から、少なくとも前記（１）または
（２）より選ばれる、いずれか、１組以上の塩基が欠失
した塩基配列を有するＤＮＡがよい。すなわち、本発明
の新規ＤＮＡは、前記式２の塩基配列から、前記（１）
または（２）より選ばれる、いずれか、１組の塩基が欠
失してなる塩基配列を有するＤＮＡであっても、前記式
２から、前記式（１）および（２）の２組の塩基が同時
に欠失してなる塩基配列を有するものであってもよい。
また、本発明の新規ＤＮＡは、前記式２の塩基配列か
ら、前記式（１）または（２）の、いずれか、１組以上
の塩基配列、および、式２の塩基配列中の任意の１つ以
上の塩基が欠失した塩基配列を有するＤＮＡであっても
よい。本発明第２の態様の新規ＤＮＡのより好ましい例
として、具体的には下記式５または６より選ばれる塩基
配列を有するＤＮＡがあげられる。 式５ TGT AAT CTA CCA ATA GTC CGG GGC CCC TGC CGA GCC TTC ATC CAG CTC TGG GCA TTT GAT GCT AAG GGG AAG TGC GTC CTC TTC CCC TAC GGG GGC TGC CAG GGC AAC GGG AAC AAG TTC TAC TCA GAG AAG GAG TGC AGA GAG TAC TGC 式６ TGT AAT CTA CCA ATA GTC CGG GGC CCC TGC CGA GCC TTC ATC CAG CTC TGG GCA TTT GAT GCT GTC AAG GGG AAG TGC GTC CTC TTC CCC TAC GGG GGC TGC CAG GGC AAC GGG AAC AAG TTC TAC TCA GAG AAG GAG TGC AGA GAG TGC 先にも述べたように、本発明の新規ＤＮＡは、前記式２
から１つ以上の塩基を欠失させてなる塩基配列の、５’
末端、３’末端、もしくはその両方に、任意の１つ以上
の塩基が付加された塩基配列を有するものであってもよ
い。付加される塩基は、最終的に得られる塩基配列が本
発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードし得る限り
においては、その数および種類は限定されない。しかし
ながら、５’末端側に付加される塩基配列としては下記
式（１）ないし（５）より選ばれる、いずれかの塩基配
列が好ましい。５’末端に付加する塩基配列は、下記式
（１）ないし（５）より選ばれる塩基配列中、１つ以上
の塩基が他の塩基に置換されてなる塩基配列であって
も、１つ以上の塩基が欠失してなる塩基配列であって
も、また、１つ以上の塩基の置換と欠失が同時に生じて
なる塩基配列であってもよい。これらの塩基配列は、本
発明第１の態様の新規ポリペプチドを大腸菌で産生させ
る場合に有用である。なかでも、下記式（１）の塩基配
列は、ポリペプチドを宿主細胞より効率的に分泌発現さ
せるために有用である。もちろん、５’末端に付加する
塩基配列は、下記式（１）ないし（５）より選ばれる塩
基配列に加え、その５’末端に、開始コドンや制限酵素
認識部位、他のポリペプチドをコードする塩基配列等、
任意の１つ以上の塩基が付加されてなる塩基配列であっ
てもよい。
【００２８】 （１） GAC GAC GCC GCC （２） ACC GTC GCC GCC （３） GTC GCC GCC （４） GCC GCC （５） GCC
【００２９】また、３’末端に付加される塩基配列とし
ては、下記（６）ないし（20）より選ばれる、いずれか
の塩基配列が好ましい。３’末端に付加する塩基配列
は、下記式（６）ないし（20）より選ばれる塩基配列
中、任意の１つ以上の塩基が他の塩基に置換されてなる
塩基配列であっても、任意の１つ以上の塩基が欠失して
なる塩基配列であっても、１つ以上の塩基の置換と欠失
が同時に生じてなる塩基配列であっても良い。これらの
塩基配列は、本発明第１の態様の新規ポリペプチドを大
腸菌で産生させる場合に有用である。もちろん、３’末
端に付加される塩基配列は、下記（６）ないし（20）よ
り選ばれる塩基配列に加え、その３’末端に終止コド
ン、制限酵素認識部位、他のポリペプチドをコードする
塩基配列等、任意の１つ以上の塩基が付加されてなる塩
基配列であってもよい。
ては、下記（６）ないし（20）より選ばれる、いずれか
の塩基配列が好ましい。３’末端に付加する塩基配列
は、下記式（６）ないし（20）より選ばれる塩基配列
中、任意の１つ以上の塩基が他の塩基に置換されてなる
塩基配列であっても、任意の１つ以上の塩基が欠失して
なる塩基配列であっても、１つ以上の塩基の置換と欠失
が同時に生じてなる塩基配列であっても良い。これらの
塩基配列は、本発明第１の態様の新規ポリペプチドを大
腸菌で産生させる場合に有用である。もちろん、３’末
端に付加される塩基配列は、下記（６）ないし（20）よ
り選ばれる塩基配列に加え、その３’末端に終止コド
ン、制限酵素認識部位、他のポリペプチドをコードする
塩基配列等、任意の１つ以上の塩基が付加されてなる塩
基配列であってもよい。
【００３０】 （６） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CGC TTC TCC AAC （７） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CGC TTC TCC （８） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CGC TTC （９） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CGC （10） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG （11） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG （12） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG （13） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG （14） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT （15） GGT GTC CCT GGT GAT GGT （16） GGT GTC CCT GGT GAT （17） GGT GTC CCT GGT （18） GGT GTC CCT （19） GGT GTC （20） GGT
【００３１】これらの塩基配列の追加は、５’末端ある
いは３’末端のみに生じていてもよく、また、５’末端
と３’末端の両方に生じていてもよい。例えば、本発明
第２の態様の新規ＤＮＡのより好ましい例として、前記
式５または６の塩基配列の５’末端に、上述の（４）の
塩基配列GCC GCC が、３’末端に、上述の（６）の塩基
配列GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CG
C TTC TCC AAC が付加された塩基配列を有するＤＮＡが
あげられる。
いは３’末端のみに生じていてもよく、また、５’末端
と３’末端の両方に生じていてもよい。例えば、本発明
第２の態様の新規ＤＮＡのより好ましい例として、前記
式５または６の塩基配列の５’末端に、上述の（４）の
塩基配列GCC GCC が、３’末端に、上述の（６）の塩基
配列GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CG
C TTC TCC AAC が付加された塩基配列を有するＤＮＡが
あげられる。
【００３２】本発明の新規ＤＮＡは、いかなる方法で得
られたものであってもよい。例えば、化学的に合成され
たものであってもよく、適当な組織や細胞から得たもの
であっても、また、組み換えＤＮＡの技術を使用して作
成されたものであってもよい。本発明の新規ＤＮＡを化
学合成するには、例えば、次のように行なう。すなわ
ち、所望の塩基配列を適当な断片に分割して設計し、そ
れらに相当するオリゴマーを、全自動ＤＮＡ化学合成機
（例えば、３９４型、アプライドバイオシステムズ社
製）を用いて化学合成する。必要があれば、Ｔ４ポリヌ
クレオチドキナーゼを用いて、得られたＤＮＡ断片の
５’末端をリン酸化した後、アニーリングさせる。つい
で、必要があれば、Ｔ４ＤＮＡリガーゼを用いてアニー
リングさせた各断片を結合させた後、適当なベクターに
クローン化する。一方、本発明第２の態様の新規ＤＮＡ
を組換えＤＮＡ技術を用いて作成するには、例えば、適
当なｃＤＮＡライブラリー、染色体ＤＮＡライブラリー
または前記式１のアミノ酸配列をコードするＤＮＡを材
料に、部位特異的突然変異誘発(Site-directed mutagen
esis) 法（例えば、Kramer. W 等、Nucleic Acid Res.
、１２巻、９４４１ー９４５６頁、１９８４年あるい
はKunkel, T.A.等、Methodsin Enzymology 、１５４
巻、３６７ー３８２頁、１９８７年参照）やポリメラー
ゼチェインリアクション(Polymerase Chain Reaction、
ＰＣＲ）法等の公知の方法で、１つ以上の塩基の欠失と
ＤＮＡの増幅を行い、必要があれば、適当なベクターに
クローン化する。ここで用いるＤＮＡライブラリーは、
市販のｃＤＮＡライブラリー、染色体ＤＮＡライブラリ
ー等から適当なものを選択すればよい。また、公知方法
（例えばMolecular Cloning 、a laboratory manual 、
T.Maniatis等編、Cold Spring Harbor Laboratory 、１
９８２年）に準じて、適当な組織あるいは細胞からｃＤ
ＮＡライブラリーまたは染色体ライブラリーを作成し
て、使用してもよい。また、前記式１のアミノ酸配列を
コードするＤＮＡは、化学合成されたものであっても、
ハイブリダイゼーション法（例えば、Wallace R. B.
等、Nucleic Acid Res. 、９巻、８７９−８９４頁、１
９８１年参照）等の公知の組換えＤＮＡの技術を適宜使
用して、適当なＤＮＡライブラリーから得られたもので
あってもよい。もちろん、本発明第２の態様の新規ＤＮ
Ａの一部分を化学合成法で作成し、残りの部分のＤＮＡ
断片を組み換えＤＮＡ技術を用いて作成し、公知の手法
によりライゲーションさせて本発明第２の態様の新規Ｄ
ＮＡを得、適当なベクターにクローニングしてもよい。
られたものであってもよい。例えば、化学的に合成され
たものであってもよく、適当な組織や細胞から得たもの
であっても、また、組み換えＤＮＡの技術を使用して作
成されたものであってもよい。本発明の新規ＤＮＡを化
学合成するには、例えば、次のように行なう。すなわ
ち、所望の塩基配列を適当な断片に分割して設計し、そ
れらに相当するオリゴマーを、全自動ＤＮＡ化学合成機
（例えば、３９４型、アプライドバイオシステムズ社
製）を用いて化学合成する。必要があれば、Ｔ４ポリヌ
クレオチドキナーゼを用いて、得られたＤＮＡ断片の
５’末端をリン酸化した後、アニーリングさせる。つい
で、必要があれば、Ｔ４ＤＮＡリガーゼを用いてアニー
リングさせた各断片を結合させた後、適当なベクターに
クローン化する。一方、本発明第２の態様の新規ＤＮＡ
を組換えＤＮＡ技術を用いて作成するには、例えば、適
当なｃＤＮＡライブラリー、染色体ＤＮＡライブラリー
または前記式１のアミノ酸配列をコードするＤＮＡを材
料に、部位特異的突然変異誘発(Site-directed mutagen
esis) 法（例えば、Kramer. W 等、Nucleic Acid Res.
、１２巻、９４４１ー９４５６頁、１９８４年あるい
はKunkel, T.A.等、Methodsin Enzymology 、１５４
巻、３６７ー３８２頁、１９８７年参照）やポリメラー
ゼチェインリアクション(Polymerase Chain Reaction、
ＰＣＲ）法等の公知の方法で、１つ以上の塩基の欠失と
ＤＮＡの増幅を行い、必要があれば、適当なベクターに
クローン化する。ここで用いるＤＮＡライブラリーは、
市販のｃＤＮＡライブラリー、染色体ＤＮＡライブラリ
ー等から適当なものを選択すればよい。また、公知方法
（例えばMolecular Cloning 、a laboratory manual 、
T.Maniatis等編、Cold Spring Harbor Laboratory 、１
９８２年）に準じて、適当な組織あるいは細胞からｃＤ
ＮＡライブラリーまたは染色体ライブラリーを作成し
て、使用してもよい。また、前記式１のアミノ酸配列を
コードするＤＮＡは、化学合成されたものであっても、
ハイブリダイゼーション法（例えば、Wallace R. B.
等、Nucleic Acid Res. 、９巻、８７９−８９４頁、１
９８１年参照）等の公知の組換えＤＮＡの技術を適宜使
用して、適当なＤＮＡライブラリーから得られたもので
あってもよい。もちろん、本発明第２の態様の新規ＤＮ
Ａの一部分を化学合成法で作成し、残りの部分のＤＮＡ
断片を組み換えＤＮＡ技術を用いて作成し、公知の手法
によりライゲーションさせて本発明第２の態様の新規Ｄ
ＮＡを得、適当なベクターにクローニングしてもよい。
【００３３】本発明第３の態様は、本発明第２の態様の
新規ＤＮＡを含むことを特徴とするベクターである。通
常、所望のポリペプチドをコードするＤＮＡを含むベク
ターで宿主を形質転換して所望のポリペプチドを発現さ
せる場合には、ベクターとしては、所望のポリペプチド
をコードするＤＮＡに加え、発現に必要なプロモーター
や任意のリボソーム結合部位等の塩基配列をも含有する
ベクターが使用される。また、所望のポリペプチドを、
宿主体内より分泌させるためには、通常、ベクターとし
ては、シグナルペプチドをコードする塩基配列を有する
ベクターが使用される。したがって、本発明のベクター
は、好ましくは、本発明第２の態様の新規ＤＮＡに加え
て、リボゾーム、プロモーター結合部位等の塩基配列
を、また、必要があれば、シグナルペプチドをコードす
る塩基配列をも含有するベクターがよい。なお、上記リ
ボゾーム、プロモーター結合部位、シグナルペプチドを
コードする塩基配列等は、使用する宿主内で機能する配
列でありさえすれば、いかなるものであってもよい。
新規ＤＮＡを含むことを特徴とするベクターである。通
常、所望のポリペプチドをコードするＤＮＡを含むベク
ターで宿主を形質転換して所望のポリペプチドを発現さ
せる場合には、ベクターとしては、所望のポリペプチド
をコードするＤＮＡに加え、発現に必要なプロモーター
や任意のリボソーム結合部位等の塩基配列をも含有する
ベクターが使用される。また、所望のポリペプチドを、
宿主体内より分泌させるためには、通常、ベクターとし
ては、シグナルペプチドをコードする塩基配列を有する
ベクターが使用される。したがって、本発明のベクター
は、好ましくは、本発明第２の態様の新規ＤＮＡに加え
て、リボゾーム、プロモーター結合部位等の塩基配列
を、また、必要があれば、シグナルペプチドをコードす
る塩基配列をも含有するベクターがよい。なお、上記リ
ボゾーム、プロモーター結合部位、シグナルペプチドを
コードする塩基配列等は、使用する宿主内で機能する配
列でありさえすれば、いかなるものであってもよい。
【００３４】本発明のベクターであって好適なものを得
るには、リボゾームやプロモーター結合部位、シグナル
ペプチドをコードする塩基配列等、本発明第１の態様の
新規ポリペプチドの発現や分泌に必要な塩基配列を予め
有するプラスミドベクター、ファージベクター、ウイル
スベクター等に、本発明第２の態様の新規ＤＮＡを導入
する。もしくは、上記発現に必要な塩基配列を化学的に
合成し、本発明第２の態様の新規ＤＮＡとともに、プラ
スミドベクター、ファージベクター、ウイルスベクター
等の適当な位置に導入してもよい。ベクターは、現在、
種々のベクターが市販されているので、これらの中から
適宜選択して用いることができる。なお、ベクターにＤ
ＮＡを導入するには、公知方法（例えば、Molecular Cl
oning 、a laboratory manual 、T.Maniatis等編、Cold
Spring Harbor Laboratory、１９８２年）を参考にす
ればよい。
るには、リボゾームやプロモーター結合部位、シグナル
ペプチドをコードする塩基配列等、本発明第１の態様の
新規ポリペプチドの発現や分泌に必要な塩基配列を予め
有するプラスミドベクター、ファージベクター、ウイル
スベクター等に、本発明第２の態様の新規ＤＮＡを導入
する。もしくは、上記発現に必要な塩基配列を化学的に
合成し、本発明第２の態様の新規ＤＮＡとともに、プラ
スミドベクター、ファージベクター、ウイルスベクター
等の適当な位置に導入してもよい。ベクターは、現在、
種々のベクターが市販されているので、これらの中から
適宜選択して用いることができる。なお、ベクターにＤ
ＮＡを導入するには、公知方法（例えば、Molecular Cl
oning 、a laboratory manual 、T.Maniatis等編、Cold
Spring Harbor Laboratory、１９８２年）を参考にす
ればよい。
【００３５】本発明第４の態様は、本発明第２の態様の
新規ＤＮＡによって形質転換された形質転換体である。
本発明第４の態様の形質転換体は、本発明の新規ポリペ
プチドを産生し、それを体内に蓄積するものであって
も、体外に分泌するものであってもよい。本発明第４の
態様の形質転換体は、塩化カルシウム法、リン酸カルシ
ウム−ＤＮＡ複合体を用いる方法、マイクロインジェク
ション法、電気パルスによる穿孔法等の公知の方法で、
適当な宿主細胞に本発明第２の態様の新規ＤＮＡを導入
することにより作成することができる。なお、ここで用
いる本発明第２の態様の新規ＤＮＡは、本発明第１の態
様の新規ポリペプチドをコードする塩基配列に加え、リ
ボゾーム、プロモーター結合部位等、本発明第１の態様
の新規ポリペプチドの発現に必要な塩基配列を有するも
のが好ましい。得られた形質転換体に本発明のポリペプ
チドを産生させ、分泌させることを目的とする場合に
は、ここで用いるＤＮＡは、発現に必要な塩基配列に加
えて、シグナルペプチドをコードする塩基配列を有する
ものが好ましい。上記リボゾーム、プロモーター結合部
位、シグナルペプチドをコードする塩基配列等は、使用
する宿主内で機能する配列であればいかなるものであっ
てもよい。また、本発明第２の態様の新規ＤＮＡを導入
する宿主細胞は、本発明第１の態様の新規ポリペプチド
の発現に適した細胞であれば、ＨｅＬａ細胞、ＣＯＳ細
胞、ＣＨＯ細胞、酵母等に代表される真核生物細胞であ
っても、また、大腸菌、枯草菌等に代表される原核生物
細胞であってもよい。これらの細胞から適当な細胞を選
択し、宿主細胞として使用すればよい。
新規ＤＮＡによって形質転換された形質転換体である。
本発明第４の態様の形質転換体は、本発明の新規ポリペ
プチドを産生し、それを体内に蓄積するものであって
も、体外に分泌するものであってもよい。本発明第４の
態様の形質転換体は、塩化カルシウム法、リン酸カルシ
ウム−ＤＮＡ複合体を用いる方法、マイクロインジェク
ション法、電気パルスによる穿孔法等の公知の方法で、
適当な宿主細胞に本発明第２の態様の新規ＤＮＡを導入
することにより作成することができる。なお、ここで用
いる本発明第２の態様の新規ＤＮＡは、本発明第１の態
様の新規ポリペプチドをコードする塩基配列に加え、リ
ボゾーム、プロモーター結合部位等、本発明第１の態様
の新規ポリペプチドの発現に必要な塩基配列を有するも
のが好ましい。得られた形質転換体に本発明のポリペプ
チドを産生させ、分泌させることを目的とする場合に
は、ここで用いるＤＮＡは、発現に必要な塩基配列に加
えて、シグナルペプチドをコードする塩基配列を有する
ものが好ましい。上記リボゾーム、プロモーター結合部
位、シグナルペプチドをコードする塩基配列等は、使用
する宿主内で機能する配列であればいかなるものであっ
てもよい。また、本発明第２の態様の新規ＤＮＡを導入
する宿主細胞は、本発明第１の態様の新規ポリペプチド
の発現に適した細胞であれば、ＨｅＬａ細胞、ＣＯＳ細
胞、ＣＨＯ細胞、酵母等に代表される真核生物細胞であ
っても、また、大腸菌、枯草菌等に代表される原核生物
細胞であってもよい。これらの細胞から適当な細胞を選
択し、宿主細胞として使用すればよい。
【００３６】本発明第５の態様は、本発明第３の態様の
ベクターによって形質転換された形質転換体である。本
発明第５の態様の形質転換体は、本発明の新規ポリペプ
チドを産生し、それを体内に蓄積するものであっても、
体外に分泌するものであってもよい。本発明第５の態様
の形質転換体は、塩化カルシウム法、塩化ルビジウム
法、ハナハン(Hanahan) の方法（Hanahan, D著、Techni
ques for Transformation of E. coli. In: DNA clonin
g, vol 1, Glover, D. M. (ed.),１０９−１３６頁、IR
L Press 、１９８５年）等の公知方法に従い、本発明第
３の態様のベクターで適当な宿主を形質転換することに
より得られる。本発明第３の態様のベクターを導入する
宿主細胞は、本発明第１の態様の新規ポリペプチドの発
現に適した細胞であれば、ＨｅＬａ細胞、ＣＯＳ細胞、
ＣＨＯ細胞、酵母等に代表される真核生物細胞であって
も、また、大腸菌、枯草菌等に代表される原核生物細胞
であってもよいが、好ましくは、当該宿主細胞は大腸菌
がよい。周知のように、宿主細胞とベクターとは、互い
に機能し合うので、それを考慮し、本発明第１の態様の
新規ポリペプチドが発現し得るように、ベクターと宿主
細胞とを組み合わせ、本発明の形質転換体を得ることが
好ましい。特に、ベクターの由来、発現に必要な配列、
および宿主細胞の組み合わせは重要である。例えば、宿
主細胞として哺乳動物細胞を使用する時に、本発明第３
の態様のベクターが、ウイルスベクターを使用したもの
である場合には、当該ベクターは、本発明第２の態様の
ＤＮＡに加え、プロモーター、リボソーム結合部位等の
発現に必要な配列、さらには、ＲＮＡスプライシング領
域およびポリＡ付加シグナルを有するベクターであるの
がよい。
ベクターによって形質転換された形質転換体である。本
発明第５の態様の形質転換体は、本発明の新規ポリペプ
チドを産生し、それを体内に蓄積するものであっても、
体外に分泌するものであってもよい。本発明第５の態様
の形質転換体は、塩化カルシウム法、塩化ルビジウム
法、ハナハン(Hanahan) の方法（Hanahan, D著、Techni
ques for Transformation of E. coli. In: DNA clonin
g, vol 1, Glover, D. M. (ed.),１０９−１３６頁、IR
L Press 、１９８５年）等の公知方法に従い、本発明第
３の態様のベクターで適当な宿主を形質転換することに
より得られる。本発明第３の態様のベクターを導入する
宿主細胞は、本発明第１の態様の新規ポリペプチドの発
現に適した細胞であれば、ＨｅＬａ細胞、ＣＯＳ細胞、
ＣＨＯ細胞、酵母等に代表される真核生物細胞であって
も、また、大腸菌、枯草菌等に代表される原核生物細胞
であってもよいが、好ましくは、当該宿主細胞は大腸菌
がよい。周知のように、宿主細胞とベクターとは、互い
に機能し合うので、それを考慮し、本発明第１の態様の
新規ポリペプチドが発現し得るように、ベクターと宿主
細胞とを組み合わせ、本発明の形質転換体を得ることが
好ましい。特に、ベクターの由来、発現に必要な配列、
および宿主細胞の組み合わせは重要である。例えば、宿
主細胞として哺乳動物細胞を使用する時に、本発明第３
の態様のベクターが、ウイルスベクターを使用したもの
である場合には、当該ベクターは、本発明第２の態様の
ＤＮＡに加え、プロモーター、リボソーム結合部位等の
発現に必要な配列、さらには、ＲＮＡスプライシング領
域およびポリＡ付加シグナルを有するベクターであるの
がよい。
【００３７】発現用ベクタ−と宿主細胞の組み合わせの
具体的例を挙げると、シミアンウイルス４０（ＳＶ４
０）の初期プロモーターを含有する発現用ベクターとＣ
ＯＳ−７細胞の組み合わせ、プラスミドｐＢＲ３２２由
来であってトリプトファンプロモーターおよびトリプト
ファンＳＤ配列をコ−ドする塩基配列を含有する発現用
ベクターと大腸菌ＨＢ１０１株との組み合わせ等があ
る。
具体的例を挙げると、シミアンウイルス４０（ＳＶ４
０）の初期プロモーターを含有する発現用ベクターとＣ
ＯＳ−７細胞の組み合わせ、プラスミドｐＢＲ３２２由
来であってトリプトファンプロモーターおよびトリプト
ファンＳＤ配列をコ−ドする塩基配列を含有する発現用
ベクターと大腸菌ＨＢ１０１株との組み合わせ等があ
る。
【００３８】本発明第６の態様および第７の態様は、い
ずれも、組換えＤＮＡ技術を使用した本発明第１の態様
の新規ポリペプチドの製造方法である。まず、本発明第
６の態様について説明する。本発明第６の態様の製造方
法は、下記ａ）〜ｃ）の工程を行うことを特徴とする本
発明第１の態様の新規ポリペプチドの製造方法である。 ａ）本発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードする
塩基配列を有するＤＮＡを得る。 ｂ）ａ）で得たＤＮＡで宿主細胞を形質転換させて形質
転換体を得る。 ｃ）ｂ）で得た形質転換体を培養して本発明第１の態様
のポリペプチドを産生させ、当該ポリペプチドを培養混
合物から回収する。
ずれも、組換えＤＮＡ技術を使用した本発明第１の態様
の新規ポリペプチドの製造方法である。まず、本発明第
６の態様について説明する。本発明第６の態様の製造方
法は、下記ａ）〜ｃ）の工程を行うことを特徴とする本
発明第１の態様の新規ポリペプチドの製造方法である。 ａ）本発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードする
塩基配列を有するＤＮＡを得る。 ｂ）ａ）で得たＤＮＡで宿主細胞を形質転換させて形質
転換体を得る。 ｃ）ｂ）で得た形質転換体を培養して本発明第１の態様
のポリペプチドを産生させ、当該ポリペプチドを培養混
合物から回収する。
【００３９】上記ａ）の本発明第１の態様の新規ポリペ
プチドをコードする塩基配列を有するＤＮＡとは、好ま
しくは、本発明第２の態様のＤＮＡである。なかでも、
本発明第１の態様のポリペプチドをコードする塩基配列
に加えて、発現に必要な塩基配列を、また、必要があれ
ば、それらに加え、シグナルペプチドをコードする塩基
配列を有するＤＮＡが好ましい。上記ｂ）の形質転換体
は、好ましくは、本発明第４の態様の形質転換体であ
る。当該形質転換体の作成方法は公知方法に従えばよ
く、その詳細は本発明第４の態様で述べたとおりであ
る。上記ｃ）の工程で行う形質転換体の培養は、微生物
あるいは動物細胞を培養するのに用いられる一般的方
法、すなわち、「生物化学工学」（合葉修一等著、１９
７６年、東京大学出版会）、あるいは「組織培養」（中
井準之助等編、１９７６年、朝倉書店）等に記載された
方法に準じて行なえばよい。続いて、当該形質転換体に
よって産生された本発明のポリペプチドを形質転換体の
培養混合物から回収する。産生されたポリペプチドが形
質転換体の体外に分泌されない場合は当該形質転換体か
ら、分泌される場合はその培養上清中から単離すること
が好ましい。本発明第１の態様の新規ポリペプチドを含
む培養混合物からの当該新規ポリペプチドの精製および
回収は、ポリペプチドの精製のために通常用いられてい
る手段、例えば、「生化学実験講座１タンパク質の化
学」（日本生化学会編、１９７６年、東京化学同人）等
の多くの文献や成書に記載された方法を参考にして実施
すればよい。本発明のポリペプチドが、インクルージョ
ンボディ（inclusionbody）となっている場合等には、
精製の前もしくは後に、可溶化、デネイチャー、リフォ
ールディングを行ってもよい（例えば、Thomas E. Crei
gton、J. Mol.Biol. 、８７巻、５６３−５７７頁、１
９７４年参照）。ポリペプチドの精製法の一例をあげる
と、塩析法、限外濾過法、等電点沈澱法、ゲル濾過法、
イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフ
ィーや抗体クロマトグラフィー等の各種アフィニティー
クロマトグラフィー、クロマトフォ−カシング法、吸着
クロマトグラフィーおよび逆相クロマトグラフィー等が
あるので、これらの中から、本発明第１の態様の新規ポ
リペプチドを得ることが可能な方法を適宜選択し、必要
により、ＨＰＬＣシステム等を使用して適当な順序で行
なえばよい。
プチドをコードする塩基配列を有するＤＮＡとは、好ま
しくは、本発明第２の態様のＤＮＡである。なかでも、
本発明第１の態様のポリペプチドをコードする塩基配列
に加えて、発現に必要な塩基配列を、また、必要があれ
ば、それらに加え、シグナルペプチドをコードする塩基
配列を有するＤＮＡが好ましい。上記ｂ）の形質転換体
は、好ましくは、本発明第４の態様の形質転換体であ
る。当該形質転換体の作成方法は公知方法に従えばよ
く、その詳細は本発明第４の態様で述べたとおりであ
る。上記ｃ）の工程で行う形質転換体の培養は、微生物
あるいは動物細胞を培養するのに用いられる一般的方
法、すなわち、「生物化学工学」（合葉修一等著、１９
７６年、東京大学出版会）、あるいは「組織培養」（中
井準之助等編、１９７６年、朝倉書店）等に記載された
方法に準じて行なえばよい。続いて、当該形質転換体に
よって産生された本発明のポリペプチドを形質転換体の
培養混合物から回収する。産生されたポリペプチドが形
質転換体の体外に分泌されない場合は当該形質転換体か
ら、分泌される場合はその培養上清中から単離すること
が好ましい。本発明第１の態様の新規ポリペプチドを含
む培養混合物からの当該新規ポリペプチドの精製および
回収は、ポリペプチドの精製のために通常用いられてい
る手段、例えば、「生化学実験講座１タンパク質の化
学」（日本生化学会編、１９７６年、東京化学同人）等
の多くの文献や成書に記載された方法を参考にして実施
すればよい。本発明のポリペプチドが、インクルージョ
ンボディ（inclusionbody）となっている場合等には、
精製の前もしくは後に、可溶化、デネイチャー、リフォ
ールディングを行ってもよい（例えば、Thomas E. Crei
gton、J. Mol.Biol. 、８７巻、５６３−５７７頁、１
９７４年参照）。ポリペプチドの精製法の一例をあげる
と、塩析法、限外濾過法、等電点沈澱法、ゲル濾過法、
イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフ
ィーや抗体クロマトグラフィー等の各種アフィニティー
クロマトグラフィー、クロマトフォ−カシング法、吸着
クロマトグラフィーおよび逆相クロマトグラフィー等が
あるので、これらの中から、本発明第１の態様の新規ポ
リペプチドを得ることが可能な方法を適宜選択し、必要
により、ＨＰＬＣシステム等を使用して適当な順序で行
なえばよい。
【００４０】次に、本発明第７の態様の製造方法を説明
する。本発明第７の態様の製造方法は、下記ａ）〜ｄ）
の工程を行うことを特徴とする本発明第１の態様の新規
ポリペプチドの製造方法である。 ａ）本発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードする
塩基配列を有するＤＮＡを得る。 ｂ）ａ）で得たＤＮＡを含むベクターを得る。 ｃ）ｂ）で得たベクターで宿主細胞を形質転換させて形
質転換体を得る。 ｄ）ｃ）で得た形質転換体を培養して本発明第１の態様
のポリペプチドを産生させ、当該ポリペプチドを培養混
合物から回収する。
する。本発明第７の態様の製造方法は、下記ａ）〜ｄ）
の工程を行うことを特徴とする本発明第１の態様の新規
ポリペプチドの製造方法である。 ａ）本発明第１の態様の新規ポリペプチドをコードする
塩基配列を有するＤＮＡを得る。 ｂ）ａ）で得たＤＮＡを含むベクターを得る。 ｃ）ｂ）で得たベクターで宿主細胞を形質転換させて形
質転換体を得る。 ｄ）ｃ）で得た形質転換体を培養して本発明第１の態様
のポリペプチドを産生させ、当該ポリペプチドを培養混
合物から回収する。
【００４１】上記ａ）の本発明第１の態様の新規ポリペ
プチドをコードする塩基配列を有するＤＮＡとは、好ま
しくは、本発明第２の態様のＤＮＡである。上記ｂ）の
ベクターとは、好ましくは、本発明第３の態様のベクタ
ーである。なかでも、本発明第１の態様のポリペプチド
をコードする塩基配列に加えて、発現に必要な塩基配
列、また、必要があれば、それらに加え、シグナルペプ
チドをコードする塩基配列を有するベクターが好まし
い。当該ベクターの作成は、公知方法に従って行えばよ
く、その詳細は、本発明第３の態様で説明した通りであ
る。上記ｃ）の形質転換体は、好ましくは、本発明第５
の態様の形質転換体である。当該形質転換体の作成は公
知方法に従って行えばよく、その詳細は、本発明第５の
態様で説明した通りである。上記ｄ）の工程では、ｃ）
で得られた形質転換体を使用する。当該形質転換体の培
養および培養混合物からの本発明の新規ポリペプチドの
回収あるいは精製方法は、本発明第６の態様で説明した
通りである。
プチドをコードする塩基配列を有するＤＮＡとは、好ま
しくは、本発明第２の態様のＤＮＡである。上記ｂ）の
ベクターとは、好ましくは、本発明第３の態様のベクタ
ーである。なかでも、本発明第１の態様のポリペプチド
をコードする塩基配列に加えて、発現に必要な塩基配
列、また、必要があれば、それらに加え、シグナルペプ
チドをコードする塩基配列を有するベクターが好まし
い。当該ベクターの作成は、公知方法に従って行えばよ
く、その詳細は、本発明第３の態様で説明した通りであ
る。上記ｃ）の形質転換体は、好ましくは、本発明第５
の態様の形質転換体である。当該形質転換体の作成は公
知方法に従って行えばよく、その詳細は、本発明第５の
態様で説明した通りである。上記ｄ）の工程では、ｃ）
で得られた形質転換体を使用する。当該形質転換体の培
養および培養混合物からの本発明の新規ポリペプチドの
回収あるいは精製方法は、本発明第６の態様で説明した
通りである。
【００４２】ところで、本発明第６の態様および第７の
態様、いずれの製造方法においても、本発明第１の態様
の新規ポリペプチドは、他のポリペプチド（例えば、大
腸菌βガラクトシダーゼ）との融合蛋白質として形質転
換体に産生させることができる。この場合には、本発明
第１の態様のポリペプチドをコードする塩基配列と、他
のポリペプチド（例えば、大腸菌βガラクトシダーゼ）
やその一部をコードする塩基配列とが融合した塩基配列
を有するＤＮＡを、本発明第１の態様の新規ポリペプチ
ドをコードする塩基配列を有するＤＮＡとして使用すれ
ばよい。当該ＤＮＡもしくはそれを含むベクターで形質
転換させた形質転換体は融合蛋白質を産生するので、産
生された融合蛋白質を回収した後、適当な化学物質や酵
素等で処理して他のポリペプチド部分を切断、除去し、
精製して本発明第１の態様の新規ポリペプチドを得るこ
とができる。
態様、いずれの製造方法においても、本発明第１の態様
の新規ポリペプチドは、他のポリペプチド（例えば、大
腸菌βガラクトシダーゼ）との融合蛋白質として形質転
換体に産生させることができる。この場合には、本発明
第１の態様のポリペプチドをコードする塩基配列と、他
のポリペプチド（例えば、大腸菌βガラクトシダーゼ）
やその一部をコードする塩基配列とが融合した塩基配列
を有するＤＮＡを、本発明第１の態様の新規ポリペプチ
ドをコードする塩基配列を有するＤＮＡとして使用すれ
ばよい。当該ＤＮＡもしくはそれを含むベクターで形質
転換させた形質転換体は融合蛋白質を産生するので、産
生された融合蛋白質を回収した後、適当な化学物質や酵
素等で処理して他のポリペプチド部分を切断、除去し、
精製して本発明第１の態様の新規ポリペプチドを得るこ
とができる。
【００４３】次に、本発明第８の態様の医薬組成物につ
いて説明する。本発明が提供する医薬組成物は、本発明
第１の態様の新規ポリペプチドを有効成分として含有す
る。含有される本発明第１の態様の新規ポリペプチド
は、１種類に限らず、複数種類であってもよい。例え
ば、前記式３のアミノ酸配列を有するポリペプチドと前
記式４のアミノ酸配列を有するポリペプチドをともに含
有するものであってもよい。本発明第８の態様の医薬組
成物は、本発明第１の態様の新規ポリペプチド（例え
ば、凍結乾燥や除菌濾過等の製剤学的に必要な工程で処
理されたもの）のみで構成されていても、充分、その効
果を有するが、上記のポリペプチドに加えて、製剤学的
に許容され得る量の製剤学的に許容されうる補助成分を
含んでいてもよい。本発明第８の態様の医薬組成物中に
含有され得る補助成分とは、基剤、安定化剤、防腐剤、
保存剤、乳化剤、懸濁化剤、溶解剤、溶解補助剤、滑沢
剤、矯味剤、着色剤、芳香剤、無痛化剤、賦形剤、結合
剤、粘稠剤、緩衝剤等のことであり、具体的には、炭酸
カルシウム、乳糖、庶糖、ソルビット、マンニトール、
デンプン、アミロペクチン、セルロース誘導体、ゼラチ
ン、カカオ脂、注射用蒸留水、塩化ナトリウム水溶液、
リンゲル溶液、グルコース溶液、ヒト血清アルブミン等
である。なかでもゼラチン、ヒト血清アルブミンは、安
定化剤として有用である。当該新規医薬組成物に使用す
る補助成分の選択に際しては、医薬品添加物一覧表（財
団法人東京医薬品工業協会薬事法規委員会および大阪医
薬品協会薬事法規研究委員会発行）を参考にするとよ
く、医薬組成物の薬剤形態等に応じて、適宜決定すれば
よい。
いて説明する。本発明が提供する医薬組成物は、本発明
第１の態様の新規ポリペプチドを有効成分として含有す
る。含有される本発明第１の態様の新規ポリペプチド
は、１種類に限らず、複数種類であってもよい。例え
ば、前記式３のアミノ酸配列を有するポリペプチドと前
記式４のアミノ酸配列を有するポリペプチドをともに含
有するものであってもよい。本発明第８の態様の医薬組
成物は、本発明第１の態様の新規ポリペプチド（例え
ば、凍結乾燥や除菌濾過等の製剤学的に必要な工程で処
理されたもの）のみで構成されていても、充分、その効
果を有するが、上記のポリペプチドに加えて、製剤学的
に許容され得る量の製剤学的に許容されうる補助成分を
含んでいてもよい。本発明第８の態様の医薬組成物中に
含有され得る補助成分とは、基剤、安定化剤、防腐剤、
保存剤、乳化剤、懸濁化剤、溶解剤、溶解補助剤、滑沢
剤、矯味剤、着色剤、芳香剤、無痛化剤、賦形剤、結合
剤、粘稠剤、緩衝剤等のことであり、具体的には、炭酸
カルシウム、乳糖、庶糖、ソルビット、マンニトール、
デンプン、アミロペクチン、セルロース誘導体、ゼラチ
ン、カカオ脂、注射用蒸留水、塩化ナトリウム水溶液、
リンゲル溶液、グルコース溶液、ヒト血清アルブミン等
である。なかでもゼラチン、ヒト血清アルブミンは、安
定化剤として有用である。当該新規医薬組成物に使用す
る補助成分の選択に際しては、医薬品添加物一覧表（財
団法人東京医薬品工業協会薬事法規委員会および大阪医
薬品協会薬事法規研究委員会発行）を参考にするとよ
く、医薬組成物の薬剤形態等に応じて、適宜決定すれば
よい。
【００４４】本発明の医薬組成物の剤型は、使用方法に
応じた形態であれば特に限定されない。一般には、医薬
組成物の剤型は、注射剤、錠剤、カプセル剤、丸剤、顆
粒剤、坐剤、溶液、懸濁液、乳濁液、散剤、軟膏、クリ
ーム、ゲル、発布剤、ローション等があり、本発明の医
薬組成物はその何れの形態を取ることも可能である。本
発明の医薬組成物の投与量は、有効成分含有量、治療を
受ける患者の状態、年齢、性別、体重等に応じ、適宜、
選択される。その投与量の好ましい一例は、有効成分量
で０．１ｍｇ〜１０００ｍｇ／ｋｇであり、より好まし
くは、０．２ｍｇ〜５０ｍｇ／ｋｇ、さらに好ましくは
０．２ｍｇ〜２０ｍｇである。また、本発明の医薬組成
物は、患者の状態に応じて、経口投与、筋肉内投与、腹
腔内投与、皮内投与、皮下投与、静脈内投与、動脈内投
与、直腸内投与、膣内投与、さらには、エアゾールとし
て気道吸入する、口腔内で溶解させる、経皮的に吸収さ
せる、経粘膜的に吸収させる等、様々な投与方法にて使
用され得るが、静脈内に投与する方法にて使用されるこ
とが好ましい。
応じた形態であれば特に限定されない。一般には、医薬
組成物の剤型は、注射剤、錠剤、カプセル剤、丸剤、顆
粒剤、坐剤、溶液、懸濁液、乳濁液、散剤、軟膏、クリ
ーム、ゲル、発布剤、ローション等があり、本発明の医
薬組成物はその何れの形態を取ることも可能である。本
発明の医薬組成物の投与量は、有効成分含有量、治療を
受ける患者の状態、年齢、性別、体重等に応じ、適宜、
選択される。その投与量の好ましい一例は、有効成分量
で０．１ｍｇ〜１０００ｍｇ／ｋｇであり、より好まし
くは、０．２ｍｇ〜５０ｍｇ／ｋｇ、さらに好ましくは
０．２ｍｇ〜２０ｍｇである。また、本発明の医薬組成
物は、患者の状態に応じて、経口投与、筋肉内投与、腹
腔内投与、皮内投与、皮下投与、静脈内投与、動脈内投
与、直腸内投与、膣内投与、さらには、エアゾールとし
て気道吸入する、口腔内で溶解させる、経皮的に吸収さ
せる、経粘膜的に吸収させる等、様々な投与方法にて使
用され得るが、静脈内に投与する方法にて使用されるこ
とが好ましい。
【００４５】本発明の医薬組成物は、手術侵襲、多臓器
不全、ショック、膵炎、播種性血管内凝固症候群、虚血
性心疾患、腎炎、肝硬変、血行再建術時の再閉塞、血管
透過性の昂進による浮腫、成人呼吸困難症候群、慢性関
節リウマチ、関節炎、アレルギー等、プロテアーゼが関
与する疾患の予防または治療あるいはその両方に使用す
ることができる。
不全、ショック、膵炎、播種性血管内凝固症候群、虚血
性心疾患、腎炎、肝硬変、血行再建術時の再閉塞、血管
透過性の昂進による浮腫、成人呼吸困難症候群、慢性関
節リウマチ、関節炎、アレルギー等、プロテアーゼが関
与する疾患の予防または治療あるいはその両方に使用す
ることができる。
【００４６】次に、本発明第９の態様を説明する。本発
明第９の態様の酵素阻害方法は、本発明第１の態様の新
規ポリペプチドを用いることを特徴とする。すなわち、
本発明の酵素阻害方法は、本発明第１の態様の新規ポリ
ペプチドを酵素と反応させることにより、酵素活性を阻
害する方法である。本発明第１の態様の新規ポリペプチ
ドは、特徴ある阻害様式を有するので、当該酵素阻害方
法は、単に酵素活性を阻害するだけでなく、試料中の酵
素を定性、定量的に検出したり、酵素が関与する疾患の
診断を行う際にも利用する事ができる。当該方法は、酵
素と本発明第１の態様の新規ポリペプチドを適当な条件
下、例えば、適当な温度、適当なｐＨおよび適当な時間
にて反応させることにより、酵素活性を阻害する方法で
あって、反応は、試験管内等のin vitroで行なっても、
動物体内（in vivo 、ex vivo) で行なってもよい。ま
た、必要に応じて本発明第１の態様のポリペプチドの他
に、他の物質や薬剤を加えて反応を行ってもよい。当該
酵素阻害方法で用いる新規ポリペプチドは、補助成分等
を含む、組成物の形態になってもよい。本発明の新規酵
素阻害方法において、阻害の対象となる酵素は、本発明
第１の態様の新規ポリペプチドが阻害し得る酵素であれ
ば、いかなる酵素であってもよいが、好ましくは１種以
上のプロテアーゼであることがよい。
明第９の態様の酵素阻害方法は、本発明第１の態様の新
規ポリペプチドを用いることを特徴とする。すなわち、
本発明の酵素阻害方法は、本発明第１の態様の新規ポリ
ペプチドを酵素と反応させることにより、酵素活性を阻
害する方法である。本発明第１の態様の新規ポリペプチ
ドは、特徴ある阻害様式を有するので、当該酵素阻害方
法は、単に酵素活性を阻害するだけでなく、試料中の酵
素を定性、定量的に検出したり、酵素が関与する疾患の
診断を行う際にも利用する事ができる。当該方法は、酵
素と本発明第１の態様の新規ポリペプチドを適当な条件
下、例えば、適当な温度、適当なｐＨおよび適当な時間
にて反応させることにより、酵素活性を阻害する方法で
あって、反応は、試験管内等のin vitroで行なっても、
動物体内（in vivo 、ex vivo) で行なってもよい。ま
た、必要に応じて本発明第１の態様のポリペプチドの他
に、他の物質や薬剤を加えて反応を行ってもよい。当該
酵素阻害方法で用いる新規ポリペプチドは、補助成分等
を含む、組成物の形態になってもよい。本発明の新規酵
素阻害方法において、阻害の対象となる酵素は、本発明
第１の態様の新規ポリペプチドが阻害し得る酵素であれ
ば、いかなる酵素であってもよいが、好ましくは１種以
上のプロテアーゼであることがよい。
【００４７】
【実施例】以下に、実施例をもって本発明を一層具体的
に説明するが、これらは一例として示すものであり、本
発明はこれらにより何等限定されるものではない。ま
た、以下の記載において用いる略号は、当該分野におけ
る慣用略号に基づくものである。なお、以下に示す実施
例中の諸操作は、下記の雑誌、成書を参考として実施し
た。
に説明するが、これらは一例として示すものであり、本
発明はこれらにより何等限定されるものではない。ま
た、以下の記載において用いる略号は、当該分野におけ
る慣用略号に基づくものである。なお、以下に示す実施
例中の諸操作は、下記の雑誌、成書を参考として実施し
た。
【００４８】１．ラボマニュアル遺伝子工学、村松正實
著、1989年、丸善株式会社 ２．遺伝子操作実験法、高木康敬編著、１９８０年、講
談社 ３．遺伝子操作マニュアル、高木康敬編著、１９８２
年、講談社 ４．Molecular Cloning, a laboratory manual、T. Man
iatis 等編、１９８２年、Cold Spring Harbor Laborat
ory ５．Methods in Enzymology 、６５巻、L. Grossman 等
編、１９８０年、Academic Press ６．Methods in Enzymology 、６８巻、R. Wu 編、１９
７９年、Academic Press ７．PCR Protocols 、a guide to methods and applica
tions 、Michadel A. I 等編、１９９０年、Academic P
ress ８．Molecular Cloning, a laboratory manual、Second
edition T. Maniatis 等編、１９８９年、Cold Spring Harbor L
aboratory
著、1989年、丸善株式会社 ２．遺伝子操作実験法、高木康敬編著、１９８０年、講
談社 ３．遺伝子操作マニュアル、高木康敬編著、１９８２
年、講談社 ４．Molecular Cloning, a laboratory manual、T. Man
iatis 等編、１９８２年、Cold Spring Harbor Laborat
ory ５．Methods in Enzymology 、６５巻、L. Grossman 等
編、１９８０年、Academic Press ６．Methods in Enzymology 、６８巻、R. Wu 編、１９
７９年、Academic Press ７．PCR Protocols 、a guide to methods and applica
tions 、Michadel A. I 等編、１９９０年、Academic P
ress ８．Molecular Cloning, a laboratory manual、Second
edition T. Maniatis 等編、１９８９年、Cold Spring Harbor L
aboratory
【００４９】実施例１．ポリペプチドＡＮ６８の製造
【００５０】（１）ポリペプチドＡＮ６８をコードする
遺伝子のクローニング プラスミドｐＭ５５２（特願平３−３２５２２０）を用
い、ポリペプチドＡＮ６８をコードするＤＮＡを以下の
ように調製した。なお、プラスミドｐＭ５５２は、ｐＭ
４６９（特願平３−３２５２２０）由来のプラスミドで
あり、下記式７のアミノ酸配列をコードする塩基配列、
すなわち下記式８の塩基配列に加え大腸菌内にて複製す
るための配列、カナマイシン耐性遺伝子、トリプトファ
ンプロモーター、アルカリフォスファターゼシグナルペ
プチドをコードする塩基配列をコードする塩基配列を有
するプラスミドである（図１参照）。 式７ Thr Val Ala Ala Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser Asn 式８ ACC GTC GCC GCC TGC AAT CTC CCC ATA GTC CGG GGC CCC TGC CGA GCC TTC ATC CAG CTC TGG GCA TTT GAT GCT GTC AAG GGG AAG TGC GTC CTC TTC CCC TAC GGG GGC TGC CAG GGC AAC GGG AAC AAG TTC TAC TCA GAG AAG GAG TGC AGA GAG TAC TGC GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CGC TTC TCC AAC まず、第一次ＰＣＲ用のセンスプライマーとして、Ｈｉ
ｎｄIII プライマー（図２）をＤＮＡ化学合成機（３９
４型、アプライドバイオシステムズ社）を用いて化学合
成し、ＯＰＣカラム（アプライドバイオシステムズ社）
を用いて精製した。次に、アンチセンスプライマーとし
てＡＮ６８プライマー（図３）を同様に化学合成し、精
製した。得られた２種のプライマーを用い、プラスミド
ｐＭ５５２（既出）をテンプレートとする第一次ＰＣＲ
をジーンアンプキットR （Gene AmpR PCR Reagent Ki
t）（宝酒造株式会社）を使用して、その使用説明書に
従って行った。反応は９４℃、１分間、５５℃、２分
間、７２℃、３分間を１サイクルとし、３０サイクル繰
り返した。第一次ＰＣＲ後の増幅産物の一部を１．５％
アガロースゲル電気泳動に供したところ、目的とする、
サイズ約１２０ｂｐのＤＮＡ断片が確認された。増幅産
物をフェノール処理／エタノール沈殿で精製した後、Ｔ
Ｅバッファーに溶解した。引き続いて、先と同様にプラ
スミドｐＭ５５２をテンプレートとして第二次ＰＣＲ反
応を行い、増幅産物として約３４０ｂｐのＤＮＡ断片を
得た。なお、この時センスプライマーとしては第一次Ｐ
ＣＲで得た約１２０ｂｐのＤＮＡ断片を用いた。また、
アンチセンスプライマーとしてはｐＢＲＢａｍＨＩプラ
イマー（図４）を化学合成し、精製して用いた。第二次
ＰＣＲによって得た約３４０ｂｐのＤＮＡ断片を制限酵
素ＢａｍＨＩおよびＨｉｎｄIII を用いて２重消化し約
３００ｂｐのＤＮＡ断片を得た。
遺伝子のクローニング プラスミドｐＭ５５２（特願平３−３２５２２０）を用
い、ポリペプチドＡＮ６８をコードするＤＮＡを以下の
ように調製した。なお、プラスミドｐＭ５５２は、ｐＭ
４６９（特願平３−３２５２２０）由来のプラスミドで
あり、下記式７のアミノ酸配列をコードする塩基配列、
すなわち下記式８の塩基配列に加え大腸菌内にて複製す
るための配列、カナマイシン耐性遺伝子、トリプトファ
ンプロモーター、アルカリフォスファターゼシグナルペ
プチドをコードする塩基配列をコードする塩基配列を有
するプラスミドである（図１参照）。 式７ Thr Val Ala Ala Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser Asn 式８ ACC GTC GCC GCC TGC AAT CTC CCC ATA GTC CGG GGC CCC TGC CGA GCC TTC ATC CAG CTC TGG GCA TTT GAT GCT GTC AAG GGG AAG TGC GTC CTC TTC CCC TAC GGG GGC TGC CAG GGC AAC GGG AAC AAG TTC TAC TCA GAG AAG GAG TGC AGA GAG TAC TGC GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CGC TTC TCC AAC まず、第一次ＰＣＲ用のセンスプライマーとして、Ｈｉ
ｎｄIII プライマー（図２）をＤＮＡ化学合成機（３９
４型、アプライドバイオシステムズ社）を用いて化学合
成し、ＯＰＣカラム（アプライドバイオシステムズ社）
を用いて精製した。次に、アンチセンスプライマーとし
てＡＮ６８プライマー（図３）を同様に化学合成し、精
製した。得られた２種のプライマーを用い、プラスミド
ｐＭ５５２（既出）をテンプレートとする第一次ＰＣＲ
をジーンアンプキットR （Gene AmpR PCR Reagent Ki
t）（宝酒造株式会社）を使用して、その使用説明書に
従って行った。反応は９４℃、１分間、５５℃、２分
間、７２℃、３分間を１サイクルとし、３０サイクル繰
り返した。第一次ＰＣＲ後の増幅産物の一部を１．５％
アガロースゲル電気泳動に供したところ、目的とする、
サイズ約１２０ｂｐのＤＮＡ断片が確認された。増幅産
物をフェノール処理／エタノール沈殿で精製した後、Ｔ
Ｅバッファーに溶解した。引き続いて、先と同様にプラ
スミドｐＭ５５２をテンプレートとして第二次ＰＣＲ反
応を行い、増幅産物として約３４０ｂｐのＤＮＡ断片を
得た。なお、この時センスプライマーとしては第一次Ｐ
ＣＲで得た約１２０ｂｐのＤＮＡ断片を用いた。また、
アンチセンスプライマーとしてはｐＢＲＢａｍＨＩプラ
イマー（図４）を化学合成し、精製して用いた。第二次
ＰＣＲによって得た約３４０ｂｐのＤＮＡ断片を制限酵
素ＢａｍＨＩおよびＨｉｎｄIII を用いて２重消化し約
３００ｂｐのＤＮＡ断片を得た。
【００５１】（２）発現ベクターｐＭ５９４の作成 プラスミドｐＢＲ３２２の誘導体であり、大腸菌内で複
製するための配列、アンピシリン耐性遺伝子、トリプト
ファンプロモーター、アルカリフォスファターゼのシグ
ナルペプチドをコードする塩基配列およびヒト膵臓分泌
性トリプシンインヒビターをコードする塩基配列を有す
るプラスミドｐＭ４６３（Kanamori T.等、Gene、66
巻、2295-300頁、1988年）を制限酵素ＨｉｎｄIII およ
びＢａｍＨＩで二重消化した。得られたＤＮＡ断片の混
合物を０．７％低融点アガロースゲル電気泳動に供し、
サイズ約３．３ｋｂのＤＮＡ断片を含んだアガロースゲ
ルを切り出し、６５℃でゲルを融解後、フェノール処理
／エタノール沈澱により目的のＤＮＡ断片を精製した。
（１）で得られたサイズ約３００ｂｐのＤＮＡ断片と、
前述のサイズ約３．３ｋｂのＤＮＡ断片とをＴ４ＤＮＡ
リガーゼ（宝酒造株式会社）を用いて、ライゲーション
した。これを用いて、ハナハンの方法（Hanahan, D著、
Techniques forTransformation of E, coli. In: DNA c
loning, vol 1, Glover, D. M. (ed.),109-136 頁、IRL
Press 、1985年）により大腸菌ＪＥ５５０５株を形質
転換し、所望の形質転換体としてアンピシリン耐性コロ
ニーを分離した。得られた形質転換体からプラスミドＤ
ＮＡを分離し、プラスミドｐＭ５９４と命名した（図５
参照）。プラスミドｐＭ５９４を制限酵素ＨｉｎｄIII
およびＢａｍＨＩで二重消化した後、目的とするサイズ
約３００ｂｐの断片を抽出、精製した。これを、Ｈｉｎ
ｄIII およびＢａｍＨＩで二重消化したファージベクタ
ーＭ１３ｍｐ１８およびファージベクターＭ１３ｍｐ１
９（宝酒造株式会社）とライゲーションさせ、それぞれ
大腸菌株ＪＭ１０９（宝酒造株式会社）にトラスフェク
ションした。得られたそれぞれのプラークよりｓｓＤＮ
Ａを調製し、ＤＮＡシークエンサ−（アプライドバイオ
システムズ社、３７０Ａ型）にてシークエンシングを行
なった。その結果、プラスミドｐＭ５９４の制限酵素Ｈ
ｉｎｄIII およびＢａｍＨＩ認識配列にはさまれたクロ
ーニングサイトにポリペプチドＡＮ６８をコードするＤ
ＮＡが挿入されていた。プラスミドｐＭ５９４の、ポリ
ペプチドＡＮ６８をコードするＤＮＡを含むＨｉｎｄII
I 消化部位からＢａｍＨＩ消化部位までの確認された塩
基配列、および対応するアミノ酸配列を図６に示した
（配列表の配列番号１参照）。
製するための配列、アンピシリン耐性遺伝子、トリプト
ファンプロモーター、アルカリフォスファターゼのシグ
ナルペプチドをコードする塩基配列およびヒト膵臓分泌
性トリプシンインヒビターをコードする塩基配列を有す
るプラスミドｐＭ４６３（Kanamori T.等、Gene、66
巻、2295-300頁、1988年）を制限酵素ＨｉｎｄIII およ
びＢａｍＨＩで二重消化した。得られたＤＮＡ断片の混
合物を０．７％低融点アガロースゲル電気泳動に供し、
サイズ約３．３ｋｂのＤＮＡ断片を含んだアガロースゲ
ルを切り出し、６５℃でゲルを融解後、フェノール処理
／エタノール沈澱により目的のＤＮＡ断片を精製した。
（１）で得られたサイズ約３００ｂｐのＤＮＡ断片と、
前述のサイズ約３．３ｋｂのＤＮＡ断片とをＴ４ＤＮＡ
リガーゼ（宝酒造株式会社）を用いて、ライゲーション
した。これを用いて、ハナハンの方法（Hanahan, D著、
Techniques forTransformation of E, coli. In: DNA c
loning, vol 1, Glover, D. M. (ed.),109-136 頁、IRL
Press 、1985年）により大腸菌ＪＥ５５０５株を形質
転換し、所望の形質転換体としてアンピシリン耐性コロ
ニーを分離した。得られた形質転換体からプラスミドＤ
ＮＡを分離し、プラスミドｐＭ５９４と命名した（図５
参照）。プラスミドｐＭ５９４を制限酵素ＨｉｎｄIII
およびＢａｍＨＩで二重消化した後、目的とするサイズ
約３００ｂｐの断片を抽出、精製した。これを、Ｈｉｎ
ｄIII およびＢａｍＨＩで二重消化したファージベクタ
ーＭ１３ｍｐ１８およびファージベクターＭ１３ｍｐ１
９（宝酒造株式会社）とライゲーションさせ、それぞれ
大腸菌株ＪＭ１０９（宝酒造株式会社）にトラスフェク
ションした。得られたそれぞれのプラークよりｓｓＤＮ
Ａを調製し、ＤＮＡシークエンサ−（アプライドバイオ
システムズ社、３７０Ａ型）にてシークエンシングを行
なった。その結果、プラスミドｐＭ５９４の制限酵素Ｈ
ｉｎｄIII およびＢａｍＨＩ認識配列にはさまれたクロ
ーニングサイトにポリペプチドＡＮ６８をコードするＤ
ＮＡが挿入されていた。プラスミドｐＭ５９４の、ポリ
ペプチドＡＮ６８をコードするＤＮＡを含むＨｉｎｄII
I 消化部位からＢａｍＨＩ消化部位までの確認された塩
基配列、および対応するアミノ酸配列を図６に示した
（配列表の配列番号１参照）。
【００５２】（３）形質転換体の作成および培養 （２）で得たプラスミドｐＭ５９４を用いて、ハナハン
の方法により大腸菌ＪＥ５５０５株を形質転換させ、大
腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ５９４）を調製した。得られ
た形質転換体、大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ５９４）を
アンピシリン５０μｇ／ｍｌ含有Ｌ−ブロースにて３７
℃、約８時間、前々培養した後、前培養として約１００
倍量の同培地に植菌し、３７℃で終夜培養した。主培養
として、アンピシリン５０μｇ／ｍｌを含む５０倍量の
Ｍ９ＣＡ培地に植菌し、３７℃、約１時間培養した。培
地に３β−インドールアクリル酸（和光純薬工業株式会
社製）を終濃度１０μｇ／ｍｌとなるように添加し、さ
らに１６時間培養した。得られた培養混合物を遠心分離
し、上清を回収した。０．１％ＢＳＡ（ウシ血清アルブ
ミン）／０．２Ｍトリエタノールアミン−塩酸緩衝液
（ｐＨ７．８）を用いて培養上清を種々の濃度に希釈
し、実施例６（１）および（２）の方法に準じて、トリ
プシン阻害活性を測定した。なお、プラスミドｐＭ５９
４からポリペプチドＡＮ６８をコードする塩基配列を削
除したプラスミドｐＭ４６３Ｃを作成し、これで形質転
換させた大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ４６３Ｃ）を上述
の方法と同様に培養し、得られた培養上清を活性測定の
際のコントロールとして用いた。大腸菌株ＪＥ５５０５
（ｐＭ５９４）の培養上清には、コントロールと比較し
て、顕著なトリプシン阻害活性が認められた。
の方法により大腸菌ＪＥ５５０５株を形質転換させ、大
腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ５９４）を調製した。得られ
た形質転換体、大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ５９４）を
アンピシリン５０μｇ／ｍｌ含有Ｌ−ブロースにて３７
℃、約８時間、前々培養した後、前培養として約１００
倍量の同培地に植菌し、３７℃で終夜培養した。主培養
として、アンピシリン５０μｇ／ｍｌを含む５０倍量の
Ｍ９ＣＡ培地に植菌し、３７℃、約１時間培養した。培
地に３β−インドールアクリル酸（和光純薬工業株式会
社製）を終濃度１０μｇ／ｍｌとなるように添加し、さ
らに１６時間培養した。得られた培養混合物を遠心分離
し、上清を回収した。０．１％ＢＳＡ（ウシ血清アルブ
ミン）／０．２Ｍトリエタノールアミン−塩酸緩衝液
（ｐＨ７．８）を用いて培養上清を種々の濃度に希釈
し、実施例６（１）および（２）の方法に準じて、トリ
プシン阻害活性を測定した。なお、プラスミドｐＭ５９
４からポリペプチドＡＮ６８をコードする塩基配列を削
除したプラスミドｐＭ４６３Ｃを作成し、これで形質転
換させた大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ４６３Ｃ）を上述
の方法と同様に培養し、得られた培養上清を活性測定の
際のコントロールとして用いた。大腸菌株ＪＥ５５０５
（ｐＭ５９４）の培養上清には、コントロールと比較し
て、顕著なトリプシン阻害活性が認められた。
【００５３】（４）大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ５９
４）の培養上清からの本発明のポリペプチドの精製 塩析 （３）で得た培養上清に硫酸アンモニウムを８０％飽和
になるように加え、完全に溶解するまで撹拌した後、４
℃、一晩、静置した。４℃、１２０００×ｇ、３０分間
遠心分離し、得られた沈澱を蒸留水に溶解、不溶物を遠
心除去した後、上清を分画分子量１０００の限外ろ過膜
（ダイアフローメンブレンＹＭ−１、グレース社）を用
いて濃縮した。ついで、４℃、５８６０×ｇ、１０分間
遠心分離し、上清を回収した。
４）の培養上清からの本発明のポリペプチドの精製 塩析 （３）で得た培養上清に硫酸アンモニウムを８０％飽和
になるように加え、完全に溶解するまで撹拌した後、４
℃、一晩、静置した。４℃、１２０００×ｇ、３０分間
遠心分離し、得られた沈澱を蒸留水に溶解、不溶物を遠
心除去した後、上清を分画分子量１０００の限外ろ過膜
（ダイアフローメンブレンＹＭ−１、グレース社）を用
いて濃縮した。ついで、４℃、５８６０×ｇ、１０分間
遠心分離し、上清を回収した。
【００５４】ゲル濾過 セファデックス(Sephadex)Ｇ−５０（ファルマシア社
製）を充填したカラム（１ｃｍφ×１１５ｃｍ）をＰＢ
Ｓ- （Phosphate Buffered Saline ）にて平衡化した
後、で得た濃縮液を添加した。ＰＢＳ- を用いて、流
速０．２ｍｌ／分にて展開し、２ｍｌずつ分画した。各
画分の一部を採取して実施例６（１）の方法に準じてト
リプシン阻害活性を測定し、活性画分をプールした。分
画分子量１０００の透析膜（スペクトラム社製）を用い
て、この活性画分を、２０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ
８．０）に対して、４℃、一晩透析した。透析後、の
陰イオン交換クロマトグラフィーに供した。
製）を充填したカラム（１ｃｍφ×１１５ｃｍ）をＰＢ
Ｓ- （Phosphate Buffered Saline ）にて平衡化した
後、で得た濃縮液を添加した。ＰＢＳ- を用いて、流
速０．２ｍｌ／分にて展開し、２ｍｌずつ分画した。各
画分の一部を採取して実施例６（１）の方法に準じてト
リプシン阻害活性を測定し、活性画分をプールした。分
画分子量１０００の透析膜（スペクトラム社製）を用い
て、この活性画分を、２０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ
８．０）に対して、４℃、一晩透析した。透析後、の
陰イオン交換クロマトグラフィーに供した。
【００５５】陰イオン交換クロマトグラフィー ２０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）で予め平衡化
したＭｏｎｏＱカラム（５ｍｍφ×５０ｍｍ、ファルマ
シア社製）による陰イオン交換クロマトグラフィーを、
ＦＰＬＣシステム（ファルマシア社製）を用い、以下の
ように行った。すなわち、で得た透析後の活性画分
を、ＭｏｎｏＱカラムに添加し、０−０．４ＭＮａＣｌ
／２０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）／４８分間
の直線濃度勾配法にて、流速１ｍｌ／分で、溶出を行な
った。溶出液の波長２８０ｎｍにおける吸光度を指標と
して、溶出液中の蛋白質含量をモニターしながら溶出を
行ない、ピーク毎に分取した。各画分の一部を採取し
て、実施例６（１）の方法に準じて、トリプシン阻害活
性を測定し、活性の認められた画分をの逆相クロマト
グラフィーに供した。
したＭｏｎｏＱカラム（５ｍｍφ×５０ｍｍ、ファルマ
シア社製）による陰イオン交換クロマトグラフィーを、
ＦＰＬＣシステム（ファルマシア社製）を用い、以下の
ように行った。すなわち、で得た透析後の活性画分
を、ＭｏｎｏＱカラムに添加し、０−０．４ＭＮａＣｌ
／２０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）／４８分間
の直線濃度勾配法にて、流速１ｍｌ／分で、溶出を行な
った。溶出液の波長２８０ｎｍにおける吸光度を指標と
して、溶出液中の蛋白質含量をモニターしながら溶出を
行ない、ピーク毎に分取した。各画分の一部を採取し
て、実施例６（１）の方法に準じて、トリプシン阻害活
性を測定し、活性の認められた画分をの逆相クロマト
グラフィーに供した。
【００５６】逆相クロマトグラフィー ０．０４％トリフルオロ酢酸溶液にて予め平衡化したバ
イダックＣ１８カラム（４．６ｍｍφ×２５．０ｃｍ、
ザセパレーショングループ社）による逆相クロマトグラ
フィーを、ウォーターズ６２５ＬＣシステム（ウォータ
ーズ社）を用いて以下のように行った。すなわち、で
得た活性画分を、バイダックＣ１８カラムに添加し、０
〜１００％アセトニトリル／０．０４％トリフルオロ酢
酸／３０分間の直線濃度勾配法にて流速１ｍｌ／分で溶
出を行なった。溶出液の波長２８０ｎｍにおける吸光度
を指標として、溶出液中の蛋白質含量をモニターしなが
ら溶出を行ない、ピーク毎に分取した。分取した各画分
の一部を採取し、トリプシン阻害活性を実施例６（１）
の方法に準じて測定し、活性画分を遠心濃縮器（株式会
社トミー精工製）にて減圧乾固し、精製ポリペプチドと
した。得られた精製ポリペプチドを、（５）のＳＤＳ−
ポリアクリルアミドゲル電気泳動、（６）のアミノ酸配
列分析および実施例６の活性測定に供した。
イダックＣ１８カラム（４．６ｍｍφ×２５．０ｃｍ、
ザセパレーショングループ社）による逆相クロマトグラ
フィーを、ウォーターズ６２５ＬＣシステム（ウォータ
ーズ社）を用いて以下のように行った。すなわち、で
得た活性画分を、バイダックＣ１８カラムに添加し、０
〜１００％アセトニトリル／０．０４％トリフルオロ酢
酸／３０分間の直線濃度勾配法にて流速１ｍｌ／分で溶
出を行なった。溶出液の波長２８０ｎｍにおける吸光度
を指標として、溶出液中の蛋白質含量をモニターしなが
ら溶出を行ない、ピーク毎に分取した。分取した各画分
の一部を採取し、トリプシン阻害活性を実施例６（１）
の方法に準じて測定し、活性画分を遠心濃縮器（株式会
社トミー精工製）にて減圧乾固し、精製ポリペプチドと
した。得られた精製ポリペプチドを、（５）のＳＤＳ−
ポリアクリルアミドゲル電気泳動、（６）のアミノ酸配
列分析および実施例６の活性測定に供した。
【００５７】（５）ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電
気泳動 レムリ(Laemmli) の方法（Laemmli U. K., Nature, 227
巻, 680-685 頁, 1970年）を参考にして、（４）で得ら
れた精製ポリペプチドをＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲ
ル電気泳動（以後ＳＤＳ−ＰＡＧＥと略す）に供した。
すなわち、精製ポリペプチドを１００μｌの蒸留水に溶
解した後、その一部に等容量のセプラゾル（Seprasol)
II（第一化学薬品株式会社製）を添加し、１００℃、５
分間加熱処理した後、１５％ゲル（８ｃｍ×９ｃｍ、厚
さ１ｍｍ）に供し、１５ｍＡにて５０分間、ついで、３
０ｍＡにて３５分間電気泳動した。なお、分子量マーカ
ーとして、市販のキット(Electrophoresis Calibration
Kit、ファルマシア社製）を使用した。電気泳動終了
後、市販の銀染色キット（2D- 銀染色試薬・II「第
一」、第一化学薬品株式会社製）にて染色を行ない、電
気泳動像を観察した。その結果、単一のバンドが確認さ
れた。
気泳動 レムリ(Laemmli) の方法（Laemmli U. K., Nature, 227
巻, 680-685 頁, 1970年）を参考にして、（４）で得ら
れた精製ポリペプチドをＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲ
ル電気泳動（以後ＳＤＳ−ＰＡＧＥと略す）に供した。
すなわち、精製ポリペプチドを１００μｌの蒸留水に溶
解した後、その一部に等容量のセプラゾル（Seprasol)
II（第一化学薬品株式会社製）を添加し、１００℃、５
分間加熱処理した後、１５％ゲル（８ｃｍ×９ｃｍ、厚
さ１ｍｍ）に供し、１５ｍＡにて５０分間、ついで、３
０ｍＡにて３５分間電気泳動した。なお、分子量マーカ
ーとして、市販のキット(Electrophoresis Calibration
Kit、ファルマシア社製）を使用した。電気泳動終了
後、市販の銀染色キット（2D- 銀染色試薬・II「第
一」、第一化学薬品株式会社製）にて染色を行ない、電
気泳動像を観察した。その結果、単一のバンドが確認さ
れた。
【００５８】（６）アミノ酸配列の分析 （４）で得た精製ポリペプチドを５０％酢酸に溶解し、
モデル477Aプロテインシークエンシングシステム−120A
PTHアナライザー（アプライドバイオシステムズ社）を
用いてアミノ酸配列の分析を行なった。ＰＴＨアミノ酸
を270nm の紫外部吸収にて検出して、その保持時間を測
定し、予め同一の方法で分離した標準ＰＴＨアミノ酸
（アプライドバイオシステムズ社）の保持時間を基準に
してアミノ酸の同定を行なった。その結果、（４）で得
た精製ポリペプチドが目的とするポリペプチドＡＮ６８
であることが確認された（配列表の配列番号２参照）。
モデル477Aプロテインシークエンシングシステム−120A
PTHアナライザー（アプライドバイオシステムズ社）を
用いてアミノ酸配列の分析を行なった。ＰＴＨアミノ酸
を270nm の紫外部吸収にて検出して、その保持時間を測
定し、予め同一の方法で分離した標準ＰＴＨアミノ酸
（アプライドバイオシステムズ社）の保持時間を基準に
してアミノ酸の同定を行なった。その結果、（４）で得
た精製ポリペプチドが目的とするポリペプチドＡＮ６８
であることが確認された（配列表の配列番号２参照）。
【００５９】実施例２．本発明の新規ポリペプチド、Ｖ
２６ｄｅｌの作成 前記式３のアミノ酸配列を有する本発明の新規ポリペプ
チド、Ｖ２６ｄｅｌを以下のように作成した。 （１）本発明の新規ポリペプチド、Ｖ２６ｄｅｌをコー
ドする遺伝子のクローニング プラスミドｐＭ５９４をテンプレートとする二度のＰＣ
Ｒを実施例１（１）と同様に行って、本発明の新規ポリ
ペプチド、Ｖ２６ｄｅｌをコードする塩基配列を有する
ＤＮＡを作成した。なお、第一次ＰＣＲは、センスプラ
イマーとして新たに化学合成して得たＶ２６ｄｅｌプラ
イマー（図７）を用い、アンチセンスプライマーとして
実施例１（１）で作成したｐＢＲＢａｍＨＩプライマー
を用いた。また、第二次ＰＣＲは、センスプライマーと
して実施例１（１）で作成したＨｉｎｄIII プライマー
を用い、アンチセンスプライマーとして第一次ＰＣＲで
得た約１９０ｂｐのＤＮＡ断片を用いて行った。第二次
ＰＣＲによって得られた増幅産物を制限酵素ＢａｍＨＩ
およびＨｉｎｄIII を用いて２重消化し約３００ｂｐの
ＤＮＡ断片を得た。
２６ｄｅｌの作成 前記式３のアミノ酸配列を有する本発明の新規ポリペプ
チド、Ｖ２６ｄｅｌを以下のように作成した。 （１）本発明の新規ポリペプチド、Ｖ２６ｄｅｌをコー
ドする遺伝子のクローニング プラスミドｐＭ５９４をテンプレートとする二度のＰＣ
Ｒを実施例１（１）と同様に行って、本発明の新規ポリ
ペプチド、Ｖ２６ｄｅｌをコードする塩基配列を有する
ＤＮＡを作成した。なお、第一次ＰＣＲは、センスプラ
イマーとして新たに化学合成して得たＶ２６ｄｅｌプラ
イマー（図７）を用い、アンチセンスプライマーとして
実施例１（１）で作成したｐＢＲＢａｍＨＩプライマー
を用いた。また、第二次ＰＣＲは、センスプライマーと
して実施例１（１）で作成したＨｉｎｄIII プライマー
を用い、アンチセンスプライマーとして第一次ＰＣＲで
得た約１９０ｂｐのＤＮＡ断片を用いて行った。第二次
ＰＣＲによって得られた増幅産物を制限酵素ＢａｍＨＩ
およびＨｉｎｄIII を用いて２重消化し約３００ｂｐの
ＤＮＡ断片を得た。
【００６０】（２）発現ベクターｐＭ７０４Ａの作成 （１）で得たサイズ約３００ｂｐのＤＮＡ断片を実施例
１（２）と同様の方法で、制限酵素ＢａｍＨＩおよびＨ
ｉｎｄIII にて二重消化したプラスミドｐＭ４６３とラ
イゲーションさせ、プラスミドｐＭ７０４Ａを作成し
た。（図８参照）。 プラスミドｐＭ７０４Ａのクロー
ニングサイトに挿入された配列を実施例１（２）と同様
に確認したところ、ポリペプチドＶ２６ｄｅｌをコード
するＤＮＡであった。確認されたプラスミドｐＭ７０４
Ａの、ポリペプチドＶ２６ｄｅｌをコードするＤＮＡを
含むＨｉｎｄIII 消化部位からＢａｍＨＩ消化部位まで
の塩基配列、および対応するアミノ酸配列を図９に示し
た（配列表の配列番号３参照）。
１（２）と同様の方法で、制限酵素ＢａｍＨＩおよびＨ
ｉｎｄIII にて二重消化したプラスミドｐＭ４６３とラ
イゲーションさせ、プラスミドｐＭ７０４Ａを作成し
た。（図８参照）。 プラスミドｐＭ７０４Ａのクロー
ニングサイトに挿入された配列を実施例１（２）と同様
に確認したところ、ポリペプチドＶ２６ｄｅｌをコード
するＤＮＡであった。確認されたプラスミドｐＭ７０４
Ａの、ポリペプチドＶ２６ｄｅｌをコードするＤＮＡを
含むＨｉｎｄIII 消化部位からＢａｍＨＩ消化部位まで
の塩基配列、および対応するアミノ酸配列を図９に示し
た（配列表の配列番号３参照）。
【００６１】（３）形質転換体の作成および培養 （２）で得たプラスミドｐＭ７０４Ａを用いて、実施例
１（３）と同様の方法により大腸菌ＪＥ５５０５株を形
質転換させ、大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７０４Ａ）を
調製した。得られた形質転換体、大腸菌株ＪＥ５５０５
（ｐＭ７０４Ａ）を実施例１（３）の方法で培養、発現
誘導しその培養上清を回収した。得られた培養上清のト
リプシン阻害活性を実施例６（１）の方法で測定した。
なお、コントロールとしては、実施例１（３）で作成し
た大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ４６３Ｃ）から得られた
培養上清を用いた。大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７０４
Ａ）の培養上清には、コントロールと比較して、顕著な
トリプシン阻害活性が認められた。
１（３）と同様の方法により大腸菌ＪＥ５５０５株を形
質転換させ、大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７０４Ａ）を
調製した。得られた形質転換体、大腸菌株ＪＥ５５０５
（ｐＭ７０４Ａ）を実施例１（３）の方法で培養、発現
誘導しその培養上清を回収した。得られた培養上清のト
リプシン阻害活性を実施例６（１）の方法で測定した。
なお、コントロールとしては、実施例１（３）で作成し
た大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ４６３Ｃ）から得られた
培養上清を用いた。大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７０４
Ａ）の培養上清には、コントロールと比較して、顕著な
トリプシン阻害活性が認められた。
【００６２】（４）本発明のポリペプチドの精製、ＳＤ
Ｓ−ＰＡＧＥ、アミノ酸配列の分析 （３）で得た培養上清から本発明のポリペプチドを実施
例１（４）の方法に準じて精製した。得られた精製ポリ
ペプチドを、実施例１（５）の方法でＳＤＳ−ＰＡＧＥ
に供した。その結果、単一のバンドが確認された。ま
た、得られた精製ポリペプチドのアミノ酸配列の分析
を、実施例１（６）と同様に行なった。その結果、得ら
れた精製ポリペプチドが、目的とするポリペプチドＶ２
６ｄｅｌであることが確認された（配列表の配列番号４
参照）。
Ｓ−ＰＡＧＥ、アミノ酸配列の分析 （３）で得た培養上清から本発明のポリペプチドを実施
例１（４）の方法に準じて精製した。得られた精製ポリ
ペプチドを、実施例１（５）の方法でＳＤＳ−ＰＡＧＥ
に供した。その結果、単一のバンドが確認された。ま
た、得られた精製ポリペプチドのアミノ酸配列の分析
を、実施例１（６）と同様に行なった。その結果、得ら
れた精製ポリペプチドが、目的とするポリペプチドＶ２
６ｄｅｌであることが確認された（配列表の配列番号４
参照）。
【００６３】実施例３．本発明の新規ポリペプチド、Ｙ
５４ｄｅｌの作成 前記式４のアミノ酸配列を有する本発明の新規ポリペプ
チド、Ｙ５４ｄｅｌを以下の方法で作成した。 （１）Ｙ５４ｄｅｌをコードする遺伝子のクローニング プラスミドｐＭ５９４をテンプレートとする二度のＰＣ
Ｒを実施例１（１）と同様に行って、本発明の新規ポリ
ペプチド、Ｙ５４ｄｅｌをコードする塩基配列を有する
ＤＮＡを調製した。なお、第一次ＰＣＲは、センスプラ
イマーとして、新たに化学合成して得たＹ５４ｄｅｌプ
ライマー（図１０）を、アンチセンスプライマーとし
て、実施例１（１）で作成したｐＢＲＢａｍＨＩプライ
マーを用いて行った。また、第二次ＰＣＲは、センスプ
ライマーとして実施例１（１）で作成したＨｉｎｄIII
プライマーを、アンチセンスプライマーとして第一次の
ＰＣＲで得た約９０ｂｐのＤＮＡ断片を用いて行った。
第二次ＰＣＲによって得られた増幅産物を制限酵素Ｂａ
ｍＨＩおよびＨｉｎｄIII で２重消化し約３００ｂｐの
ＤＮＡ断片を得た。
５４ｄｅｌの作成 前記式４のアミノ酸配列を有する本発明の新規ポリペプ
チド、Ｙ５４ｄｅｌを以下の方法で作成した。 （１）Ｙ５４ｄｅｌをコードする遺伝子のクローニング プラスミドｐＭ５９４をテンプレートとする二度のＰＣ
Ｒを実施例１（１）と同様に行って、本発明の新規ポリ
ペプチド、Ｙ５４ｄｅｌをコードする塩基配列を有する
ＤＮＡを調製した。なお、第一次ＰＣＲは、センスプラ
イマーとして、新たに化学合成して得たＹ５４ｄｅｌプ
ライマー（図１０）を、アンチセンスプライマーとし
て、実施例１（１）で作成したｐＢＲＢａｍＨＩプライ
マーを用いて行った。また、第二次ＰＣＲは、センスプ
ライマーとして実施例１（１）で作成したＨｉｎｄIII
プライマーを、アンチセンスプライマーとして第一次の
ＰＣＲで得た約９０ｂｐのＤＮＡ断片を用いて行った。
第二次ＰＣＲによって得られた増幅産物を制限酵素Ｂａ
ｍＨＩおよびＨｉｎｄIII で２重消化し約３００ｂｐの
ＤＮＡ断片を得た。
【００６４】（２）発現ベクターｐＭ７０５Ａの作成 （１）で得たサイズ約３００ｂｐのＤＮＡ断片を実施例
１（２）と同様の方法で、制限酵素ＢａｍＨＩおよびＨ
ｉｎｄIII にて２重消化したプラスミドｐＭ４６３にラ
イゲーションさせ、プラスミドｐＭ７０５Ａを作成し
た。（図８参照）。 プラスミドｐＭ７０５Ａのクロー
ニングサイトに挿入された配列を実施例１（２）と同様
に確認したところポリペプチドＹ５４ｄｅｌをコードす
るＤＮＡであった。確認されたプラスミドｐＭ７０５Ａ
の、ポリペプチドＹ５４ｄｅｌをコードするＤＮＡを含
むＨｉｎｄIII 消化部位からＢａｍＨＩ消化部位までの
塩基配列、および対応するアミノ酸配列を図１１に示し
た（配列表の配列番号５参照）。
１（２）と同様の方法で、制限酵素ＢａｍＨＩおよびＨ
ｉｎｄIII にて２重消化したプラスミドｐＭ４６３にラ
イゲーションさせ、プラスミドｐＭ７０５Ａを作成し
た。（図８参照）。 プラスミドｐＭ７０５Ａのクロー
ニングサイトに挿入された配列を実施例１（２）と同様
に確認したところポリペプチドＹ５４ｄｅｌをコードす
るＤＮＡであった。確認されたプラスミドｐＭ７０５Ａ
の、ポリペプチドＹ５４ｄｅｌをコードするＤＮＡを含
むＨｉｎｄIII 消化部位からＢａｍＨＩ消化部位までの
塩基配列、および対応するアミノ酸配列を図１１に示し
た（配列表の配列番号５参照）。
【００６５】（３）形質転換体の作成および培養 （２）で得たプラスミドｐＭ７０５Ａを用いて、実施例
１（３）と同様の方法により大腸菌ＪＥ５５０５株を形
質転換させ、大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７０５Ａ）を
調製した。得られた形質転換体、大腸菌株ＪＥ５５０５
（ｐＭ７０５Ａ）を実施例１（３）の方法で培養、発現
誘導しその培養上清を回収した。得られた培養上清のト
リプシン阻害活性を実施例６（１）の方法で測定した。
なお、コントロールとしては、実施例１（３）で作成し
た大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ４６３Ｃ）から得られた
培養上清を用いた。大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７０５
Ａ）の培養上清には、コントロールと比較して、顕著な
トリプシン阻害活性が認められた。
１（３）と同様の方法により大腸菌ＪＥ５５０５株を形
質転換させ、大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７０５Ａ）を
調製した。得られた形質転換体、大腸菌株ＪＥ５５０５
（ｐＭ７０５Ａ）を実施例１（３）の方法で培養、発現
誘導しその培養上清を回収した。得られた培養上清のト
リプシン阻害活性を実施例６（１）の方法で測定した。
なお、コントロールとしては、実施例１（３）で作成し
た大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ４６３Ｃ）から得られた
培養上清を用いた。大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７０５
Ａ）の培養上清には、コントロールと比較して、顕著な
トリプシン阻害活性が認められた。
【００６６】（４）本発明のポリペプチドの精製、ＳＤ
Ｓ−ＰＡＧＥ、アミノ酸配列の分析 （３）で得た培養上清から本発明のポリペプチドを、実
施例１（４）の方法に準じて精製した。得られた精製ポ
リペプチドを、実施例１（５）の方法でＳＤＳ−ＰＡＧ
Ｅに供した。その結果、単一のバンドが確認された。ま
た、得られた精製ポリペプチドのアミノ酸配列の分析
を、実施例１（６）と同様に行なった。その結果、得ら
れた精製ポリペプチドが、目的とするポリペプチドＹ５
４ｄｅｌであることが確認された（配列表の配列番号６
参照）。
Ｓ−ＰＡＧＥ、アミノ酸配列の分析 （３）で得た培養上清から本発明のポリペプチドを、実
施例１（４）の方法に準じて精製した。得られた精製ポ
リペプチドを、実施例１（５）の方法でＳＤＳ−ＰＡＧ
Ｅに供した。その結果、単一のバンドが確認された。ま
た、得られた精製ポリペプチドのアミノ酸配列の分析
を、実施例１（６）と同様に行なった。その結果、得ら
れた精製ポリペプチドが、目的とするポリペプチドＹ５
４ｄｅｌであることが確認された（配列表の配列番号６
参照）。
【００６７】実施例４．酵素阻害活性の測定 本発明の新規ポリペプチドの酵素阻害活性の測定は、お
のおのについて、以下のように行った。なお、コントロ
ールとして、ポリペプチドＡＮ６８もしくはＵＴＩ（持
田製薬株式会社製；大西等、日本薬理学雑誌、８５巻、
１−６頁、１９８５年）を使用した。また、活性測定に
用いたポリペプチド溶液のポリペプチドの濃度は、ＵＴ
Ｉを標準品として下記（１）の方法により測定したウシ
トリプシン阻害活性から算出し、Ｕ／ｍＬで表示した。
酵素阻害活性測定の結果を表１および表２に示した。本
発明の新規ポリペプチドは、コントロールと比べて、酵
素阻害様式が変化したことが確認された。
のおのについて、以下のように行った。なお、コントロ
ールとして、ポリペプチドＡＮ６８もしくはＵＴＩ（持
田製薬株式会社製；大西等、日本薬理学雑誌、８５巻、
１−６頁、１９８５年）を使用した。また、活性測定に
用いたポリペプチド溶液のポリペプチドの濃度は、ＵＴ
Ｉを標準品として下記（１）の方法により測定したウシ
トリプシン阻害活性から算出し、Ｕ／ｍＬで表示した。
酵素阻害活性測定の結果を表１および表２に示した。本
発明の新規ポリペプチドは、コントロールと比べて、酵
素阻害様式が変化したことが確認された。
【００６８】（１）ウシトリプシン阻害活性 本発明の新規ポリペプチドを蒸留水１００μｌに溶解し
た後、０．１％ＢＳＡ／０．２Ｍトリエタノールアミン
−塩酸緩衝液（ｐＨ７．８）で段階希釈し、阻害活性測
定に供した。カッセル(Kassell) の方法（Kassell B.
等、Methods in Enzymol.,１９巻、８４４−８５２頁、
１９７０年）に準じ、合成基質Ｓ−２４４４（第一化学
薬品株式会社製）を基質として、本発明の新規ポリペプ
チドのウシトリプシン阻害活性を測定した。すなわち、
濃度が１３６００ＢＡＥＥＵ／ｍｌとなるように１ｍＭ
ＨＣｌに溶解したウシトリプシン（Type XIII 、シグマ
社製）を０．１％ＢＳＡ／０．２Ｍトリエタノールアミ
ン−塩酸緩衝液（ｐＨ７．８）を用いて希釈し、１．２
ＢＡＥＥＵ／ｍｌのウシトリプシン溶液とした。別に、
合成基質Ｓ−２４４４をその濃度が２ｍＭとなるように
蒸留水に溶解し、基質溶液とした。前述のポリペプチド
溶液１００μｌとウシトリプシン溶液１００μｌとを混
合し、３７℃、１０分間静置した後、基質溶液５０μｌ
を加え、３７℃、１５分間反応させた。５０％酢酸５０
μｌを加えて反応を停止させた後、分光光度計を用いて
波長４０５ｎｍにおける吸光度を測定した。なお、ここ
で用いた各溶液が吸光度におよぼす影響を差し引くた
め、ウシトリプシン溶液１００μｌに５０％酢酸５０μ
ｌを予め加えた後、ポリペプチド溶液１００μｌおよび
基質溶液５０μｌを加えた液をブランクとして使用し
た。
た後、０．１％ＢＳＡ／０．２Ｍトリエタノールアミン
−塩酸緩衝液（ｐＨ７．８）で段階希釈し、阻害活性測
定に供した。カッセル(Kassell) の方法（Kassell B.
等、Methods in Enzymol.,１９巻、８４４−８５２頁、
１９７０年）に準じ、合成基質Ｓ−２４４４（第一化学
薬品株式会社製）を基質として、本発明の新規ポリペプ
チドのウシトリプシン阻害活性を測定した。すなわち、
濃度が１３６００ＢＡＥＥＵ／ｍｌとなるように１ｍＭ
ＨＣｌに溶解したウシトリプシン（Type XIII 、シグマ
社製）を０．１％ＢＳＡ／０．２Ｍトリエタノールアミ
ン−塩酸緩衝液（ｐＨ７．８）を用いて希釈し、１．２
ＢＡＥＥＵ／ｍｌのウシトリプシン溶液とした。別に、
合成基質Ｓ−２４４４をその濃度が２ｍＭとなるように
蒸留水に溶解し、基質溶液とした。前述のポリペプチド
溶液１００μｌとウシトリプシン溶液１００μｌとを混
合し、３７℃、１０分間静置した後、基質溶液５０μｌ
を加え、３７℃、１５分間反応させた。５０％酢酸５０
μｌを加えて反応を停止させた後、分光光度計を用いて
波長４０５ｎｍにおける吸光度を測定した。なお、ここ
で用いた各溶液が吸光度におよぼす影響を差し引くた
め、ウシトリプシン溶液１００μｌに５０％酢酸５０μ
ｌを予め加えた後、ポリペプチド溶液１００μｌおよび
基質溶液５０μｌを加えた液をブランクとして使用し
た。
【００６９】（２）ヒトトリプシン阻害活性 本発明の新規ポリペプチドを蒸留水１００μｌに溶解し
た。（１）の方法により測定したウシトリプシン阻害活
性から、このポリペプチド溶液のポリペプチドの濃度を
算出した。ついで０．０３％ＢＳＡ／０．２Ｍトリエタ
ノールアミン−塩酸緩衝液（ｐＨ７．８）を用いて、ポ
リペプチド溶液を種々の濃度に希釈し、阻害活性測定に
供した。濃度が１０００ＳＵ／ｍｌとなるように１ｍＭ
ＨＣｌに溶解したヒトトリプシン（カルビオケム社製）
を０．０３％ＢＳＡ／０．２Ｍトリエタノールアミン−
塩酸緩衝液（ｐＨ７．８）を用いて希釈し、１．２５Ｓ
Ｕ／ｍｌのヒトトリプシン溶液を調製した。合成基質Ｓ
−２４４４（既出）を基質として、（１）と同様の方法
で、ヒトトリプシン阻害活性を測定した。
た。（１）の方法により測定したウシトリプシン阻害活
性から、このポリペプチド溶液のポリペプチドの濃度を
算出した。ついで０．０３％ＢＳＡ／０．２Ｍトリエタ
ノールアミン−塩酸緩衝液（ｐＨ７．８）を用いて、ポ
リペプチド溶液を種々の濃度に希釈し、阻害活性測定に
供した。濃度が１０００ＳＵ／ｍｌとなるように１ｍＭ
ＨＣｌに溶解したヒトトリプシン（カルビオケム社製）
を０．０３％ＢＳＡ／０．２Ｍトリエタノールアミン−
塩酸緩衝液（ｐＨ７．８）を用いて希釈し、１．２５Ｓ
Ｕ／ｍｌのヒトトリプシン溶液を調製した。合成基質Ｓ
−２４４４（既出）を基質として、（１）と同様の方法
で、ヒトトリプシン阻害活性を測定した。
【００７０】（３）ヒトエラスターゼ阻害活性 本発明の新規ポリペプチドを蒸留水１００μｌに溶解し
た。（１）の方法により測定したウシトリプシン阻害活
性から、このポリペプチド溶液のポリペプチドの濃度を
算出した。ついで、０．１％ＢＳＡ／２７ｍＭ ＣａＣ
ｌ2 ／１３３ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．５）で種
々の濃度に希釈し、阻害活性に供した。オガワ(Ogawa)
等の方法(Ogawa M.等、Res. Commun. Chem. Pathol. P
harmacol., 55 巻、271-274 頁、1987年）に準じ、合成
基質ＳＴＡＮＡ（ペプチド研究所製）を基質として、本
発明の新規ポリペプチドのエラスターゼ阻害活性を測定
した。すなわち、濃度が１００μｇ／ｍｌになるように
２７ｍＭ ＣａＣｌ2 ／１３３ｍＭトリス塩酸緩衝液
（ｐＨ７．５）にて溶解したヒト好中球エラスターゼ
（カルビオケム社製）を、さらに、０．１％ＢＳＡ／２
７ｍＭ ＣａＣｌ2 ／１３３ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐ
Ｈ７．５）にて希釈し、４μｇ／ｍｌのエラスターゼ溶
液を調製した。別に、合成基質ＳＴＡＮＡをＮ−メチル
−２−ピロリドン(N-methyl-2-pyrrolidone)で１００ｍ
Ｍになるように溶解し、さらに、０．１％ＢＳＡ／２７
ｍＭ ＣａＣｌ2 ／１３３ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ
７．５）で希釈して２０ｍＭの基質溶液とした。前述の
ポリペプチド溶液５０μｌ、エラスターゼ溶液５０μ
ｌ、および０．１％ＢＳＡ／２７ｍＭ ＣａＣｌ2 ／１
３３ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．５）５０μｌを混
合し、３７℃、１０分間静置した。次いで基質溶液５０
μｌを加え、３７℃にて２０分間反応させた。５０％酢
酸５０μｌを加えて反応を停止させた後、分光光度計を
用いて、波長４０５ｎｍにおける吸光度を測定した。な
お、ここで用いた各溶液の吸光度への影響を差し引くた
め、エラスターゼ溶液５０μｌに５０％酢酸５０μｌを
予め加えた後、ポリペプチド溶液５０μｌ、０．１％Ｂ
ＳＡ／２７ｍＭ ＣａＣｌ2 ／１３３ｍＭトリス塩酸緩
衝液（ｐＨ７．５）５０μｌ、基質溶液５０μｌを加え
た液をブランクとして使用した。
た。（１）の方法により測定したウシトリプシン阻害活
性から、このポリペプチド溶液のポリペプチドの濃度を
算出した。ついで、０．１％ＢＳＡ／２７ｍＭ ＣａＣ
ｌ2 ／１３３ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．５）で種
々の濃度に希釈し、阻害活性に供した。オガワ(Ogawa)
等の方法(Ogawa M.等、Res. Commun. Chem. Pathol. P
harmacol., 55 巻、271-274 頁、1987年）に準じ、合成
基質ＳＴＡＮＡ（ペプチド研究所製）を基質として、本
発明の新規ポリペプチドのエラスターゼ阻害活性を測定
した。すなわち、濃度が１００μｇ／ｍｌになるように
２７ｍＭ ＣａＣｌ2 ／１３３ｍＭトリス塩酸緩衝液
（ｐＨ７．５）にて溶解したヒト好中球エラスターゼ
（カルビオケム社製）を、さらに、０．１％ＢＳＡ／２
７ｍＭ ＣａＣｌ2 ／１３３ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐ
Ｈ７．５）にて希釈し、４μｇ／ｍｌのエラスターゼ溶
液を調製した。別に、合成基質ＳＴＡＮＡをＮ−メチル
−２−ピロリドン(N-methyl-2-pyrrolidone)で１００ｍ
Ｍになるように溶解し、さらに、０．１％ＢＳＡ／２７
ｍＭ ＣａＣｌ2 ／１３３ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ
７．５）で希釈して２０ｍＭの基質溶液とした。前述の
ポリペプチド溶液５０μｌ、エラスターゼ溶液５０μ
ｌ、および０．１％ＢＳＡ／２７ｍＭ ＣａＣｌ2 ／１
３３ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．５）５０μｌを混
合し、３７℃、１０分間静置した。次いで基質溶液５０
μｌを加え、３７℃にて２０分間反応させた。５０％酢
酸５０μｌを加えて反応を停止させた後、分光光度計を
用いて、波長４０５ｎｍにおける吸光度を測定した。な
お、ここで用いた各溶液の吸光度への影響を差し引くた
め、エラスターゼ溶液５０μｌに５０％酢酸５０μｌを
予め加えた後、ポリペプチド溶液５０μｌ、０．１％Ｂ
ＳＡ／２７ｍＭ ＣａＣｌ2 ／１３３ｍＭトリス塩酸緩
衝液（ｐＨ７．５）５０μｌ、基質溶液５０μｌを加え
た液をブランクとして使用した。
【００７１】（４）ヒトプラスミン阻害活性 本発明の新規ポリペプチドを蒸留水１００μｌに溶解し
た。（１）の方法により測定したウシトリプシン阻害活
性から、このポリペプチド溶液のポリペプチドの濃度を
算出した。ついで、０．１１Ｍ ＮａＣｌ／５０ｍＭト
リス塩酸緩衝液（ｐＨ７．４）を用いてポリペプチド溶
液を種々の濃度に希釈し、阻害活性測定に供した。フリ
バーガー(Friberger) 等の方法(Friberger P. 等、 Hae
mostasis、７巻、１３８−１４５頁、１９７８年) に準
じ、合成基質Ｓ−２２５１（第一化学薬品株式会社製）
を基質とし、本発明の新規ポリペプチドのヒトプラスミ
ン阻害活性を以下のように測定した。すなわち、濃度が
１Ｕ／ｍｌとなるように生理食塩水に溶解したヒト血漿
プラスミン（シグマ社製）を、５０％グリセロール／２
ｍＭ ＨＣｌを用いて希釈し、０．１Ｕ／ｍｌのヒトプ
ラスミン溶液とした。別に、合成基質Ｓ−２２５１をそ
の濃度が３．５ｍＭとなるように蒸留水に溶解し、基質
溶液とした。ついでポリペプチド溶液５０μｌと、ヒト
プラスミン溶液５０μｌ、および０．１１Ｍ ＮａＣｌ
／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．４）１００μｌ
とを混合し、３７℃、１０分間静置した。ついで、基質
溶液５０μｌを加え、３７℃、２分間反応させた。５０
％酢酸２５μｌを加えて反応を停止させた後、分光光度
計を用いて、波長４０５ｎｍにおける吸光度を測定し
た。 なお、ここで用いた各溶液が吸光度におよぼす影
響を差し引くため、プラスミン溶液５０μｌに、５０％
酢酸２５μｌを予め加えた後、ポリペプチド溶液５０μ
ｌ、０．１１Ｍ ＮａＣｌ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液
（ｐＨ７．４）１００μｌおよび基質溶液５０μｌを加
えた液をブランクとして使用した。
た。（１）の方法により測定したウシトリプシン阻害活
性から、このポリペプチド溶液のポリペプチドの濃度を
算出した。ついで、０．１１Ｍ ＮａＣｌ／５０ｍＭト
リス塩酸緩衝液（ｐＨ７．４）を用いてポリペプチド溶
液を種々の濃度に希釈し、阻害活性測定に供した。フリ
バーガー(Friberger) 等の方法(Friberger P. 等、 Hae
mostasis、７巻、１３８−１４５頁、１９７８年) に準
じ、合成基質Ｓ−２２５１（第一化学薬品株式会社製）
を基質とし、本発明の新規ポリペプチドのヒトプラスミ
ン阻害活性を以下のように測定した。すなわち、濃度が
１Ｕ／ｍｌとなるように生理食塩水に溶解したヒト血漿
プラスミン（シグマ社製）を、５０％グリセロール／２
ｍＭ ＨＣｌを用いて希釈し、０．１Ｕ／ｍｌのヒトプ
ラスミン溶液とした。別に、合成基質Ｓ−２２５１をそ
の濃度が３．５ｍＭとなるように蒸留水に溶解し、基質
溶液とした。ついでポリペプチド溶液５０μｌと、ヒト
プラスミン溶液５０μｌ、および０．１１Ｍ ＮａＣｌ
／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．４）１００μｌ
とを混合し、３７℃、１０分間静置した。ついで、基質
溶液５０μｌを加え、３７℃、２分間反応させた。５０
％酢酸２５μｌを加えて反応を停止させた後、分光光度
計を用いて、波長４０５ｎｍにおける吸光度を測定し
た。 なお、ここで用いた各溶液が吸光度におよぼす影
響を差し引くため、プラスミン溶液５０μｌに、５０％
酢酸２５μｌを予め加えた後、ポリペプチド溶液５０μ
ｌ、０．１１Ｍ ＮａＣｌ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液
（ｐＨ７．４）１００μｌおよび基質溶液５０μｌを加
えた液をブランクとして使用した。
【００７２】（５）ヒト血漿カリクレイン阻害活性 本発明の新規ポリペプチドを蒸留水１００μｌに溶解し
た。この溶液のポリペプチドの濃度を（１）の方法によ
り測定したウシトリプシン阻害活性から算出した。つい
で、０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５０ｍＭ
トリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）を用いて、ポリペプチ
ド溶液を種々の濃度に希釈し、阻害活性測定に供した。
オーノ（Ｏｈｎｏ）等の方法（Ohno H. 等、Thromb. Re
s.１９巻、５７９−５８８頁、１９８０年）に準じ、合
成基質Ｓ−２３０２（第一化学薬品株式会社製）を基質
とし、本発明の新規ポリペプチドのヒト血漿カリクレイ
ン阻害活性を、以下のように測定した。すなわち、０．
２６Ｕ／ｍｌのヒト血漿カリクレイン溶液（シグマ社
製）を０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５０ｍ
Ｍトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）を用いて希釈し、
０．０８Ｕ／ｍｌの血漿カリクレイン溶液とした。別
に、合成基質Ｓ−２３０２をその濃度が４ｍＭとなるよ
うに蒸留水に溶解し、さらに０．１％ＢＳＡ／１５０ｍ
Ｍ ＮａＣｌ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．
３）を用いて希釈し、２ｍＭの基質溶液とした。前述の
ポリペプチド溶液２５μｌ、０．１％ＢＳＡ／１５０ｍ
Ｍ ＮａＣｌ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．
３）７５μｌおよびヒト血漿カリクレイン溶液５０μｌ
を混合し、３７℃、１０分間静置した。ついで、基質溶
液５０μｌを加え、３７℃、８分間反応させた。５０％
酢酸２５μｌを加えて反応を停止させた後、分光光度計
を用いて、波長４０５ｎｍにおける吸光度を測定した。
なお、ここで用いた各溶液の吸光度におよぼす影響を差
し引くためにカリクレイン溶液５０μｌに、５０％酢酸
２５μｌを予め加えた後、ポリペプチド溶液２５μｌ、
０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５０ｍＭトリ
ス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）７５μｌ、基質溶液５０μ
ｌを加えた液をブランクとして使用した。
た。この溶液のポリペプチドの濃度を（１）の方法によ
り測定したウシトリプシン阻害活性から算出した。つい
で、０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５０ｍＭ
トリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）を用いて、ポリペプチ
ド溶液を種々の濃度に希釈し、阻害活性測定に供した。
オーノ（Ｏｈｎｏ）等の方法（Ohno H. 等、Thromb. Re
s.１９巻、５７９−５８８頁、１９８０年）に準じ、合
成基質Ｓ−２３０２（第一化学薬品株式会社製）を基質
とし、本発明の新規ポリペプチドのヒト血漿カリクレイ
ン阻害活性を、以下のように測定した。すなわち、０．
２６Ｕ／ｍｌのヒト血漿カリクレイン溶液（シグマ社
製）を０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５０ｍ
Ｍトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）を用いて希釈し、
０．０８Ｕ／ｍｌの血漿カリクレイン溶液とした。別
に、合成基質Ｓ−２３０２をその濃度が４ｍＭとなるよ
うに蒸留水に溶解し、さらに０．１％ＢＳＡ／１５０ｍ
Ｍ ＮａＣｌ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．
３）を用いて希釈し、２ｍＭの基質溶液とした。前述の
ポリペプチド溶液２５μｌ、０．１％ＢＳＡ／１５０ｍ
Ｍ ＮａＣｌ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．
３）７５μｌおよびヒト血漿カリクレイン溶液５０μｌ
を混合し、３７℃、１０分間静置した。ついで、基質溶
液５０μｌを加え、３７℃、８分間反応させた。５０％
酢酸２５μｌを加えて反応を停止させた後、分光光度計
を用いて、波長４０５ｎｍにおける吸光度を測定した。
なお、ここで用いた各溶液の吸光度におよぼす影響を差
し引くためにカリクレイン溶液５０μｌに、５０％酢酸
２５μｌを予め加えた後、ポリペプチド溶液２５μｌ、
０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５０ｍＭトリ
ス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）７５μｌ、基質溶液５０μ
ｌを加えた液をブランクとして使用した。
【００７３】（６）ヒトＦＸａに対する阻害活性 本発明の新規ポリペプチドを蒸留水１００μｌに溶解し
た。（１）の方法により測定したウシトリプシン阻害活
性から、この溶液のポリペプチド濃度を算出した。つい
で、０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５ｍＭ
ＣａＣｌ2 ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）
を用いて、ポリペプチド溶液を各種濃度に希釈し、阻害
活性測定に供した。オーノ（Ｏｈｎｏ）等の方法（Ohno
H.等、Thromb. Res.,１９巻、５７９−５８８、１９
９０年）に準じ、合成基質Ｓ−２２２２（第一化学薬品
株式会社製）を用いて、本発明の新規ポリペプチドのＦ
Ｘａ阻害活性を以下のように測定した。すなわち、濃度
が１０ＰＥＵ／ｍｌとなるように蒸留水に溶解したヒト
ＦＸａ（アメリカンダイアグノスティカ社製）を、０．
１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５ｍＭ ＣａＣｌ
2 ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）を用いて
希釈し、０．１ＰＥＵ／ｍｌのＦＸａ溶液とした。別
に、合成基質Ｓ−２２２２を、その濃度が４ｍＭとなる
ように蒸留水に溶解し、さらに０．１％ＢＳＡ／１５０
ｍＭ ＮａＣｌ／５ｍＭ ＣａＣｌ2 ／５０ｍＭトリス
塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）を用いて希釈し、２ｍＭの基
質溶液とした。前述のポリペプチド溶液２５μｌ、０．
１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５ｍＭ ＣａＣｌ
2 ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）１００μ
ｌおよびＦＸａ溶液２５μｌを混合し、３７℃、１０分
間静置した。ついで、基質溶液１００μｌを加え、３７
℃、３０分間反応させた。５０％酢酸５０μｌを加えて
反応を停止させた後、分光光度計を用いて、波長４０５
ｎｍにおける吸光度を測定した。なお、ここで用いた各
溶液が吸光度におよぼす影響を差し引くためにＦＸａ溶
液２５μｌに、５０％酢酸５０μｌを予め加えた後、ポ
リペプチド溶液２５μｌ、０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ
ＮａＣｌ／５ｍＭＣａＣｌ2 ／５０ｍＭトリス塩酸緩
衝液（ｐＨ８．３）１００μｌおよび基質溶液１００μ
ｌを加えた液をブランクとして使用した。
た。（１）の方法により測定したウシトリプシン阻害活
性から、この溶液のポリペプチド濃度を算出した。つい
で、０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５ｍＭ
ＣａＣｌ2 ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）
を用いて、ポリペプチド溶液を各種濃度に希釈し、阻害
活性測定に供した。オーノ（Ｏｈｎｏ）等の方法（Ohno
H.等、Thromb. Res.,１９巻、５７９−５８８、１９
９０年）に準じ、合成基質Ｓ−２２２２（第一化学薬品
株式会社製）を用いて、本発明の新規ポリペプチドのＦ
Ｘａ阻害活性を以下のように測定した。すなわち、濃度
が１０ＰＥＵ／ｍｌとなるように蒸留水に溶解したヒト
ＦＸａ（アメリカンダイアグノスティカ社製）を、０．
１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５ｍＭ ＣａＣｌ
2 ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）を用いて
希釈し、０．１ＰＥＵ／ｍｌのＦＸａ溶液とした。別
に、合成基質Ｓ−２２２２を、その濃度が４ｍＭとなる
ように蒸留水に溶解し、さらに０．１％ＢＳＡ／１５０
ｍＭ ＮａＣｌ／５ｍＭ ＣａＣｌ2 ／５０ｍＭトリス
塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）を用いて希釈し、２ｍＭの基
質溶液とした。前述のポリペプチド溶液２５μｌ、０．
１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ ＮａＣｌ／５ｍＭ ＣａＣｌ
2 ／５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．３）１００μ
ｌおよびＦＸａ溶液２５μｌを混合し、３７℃、１０分
間静置した。ついで、基質溶液１００μｌを加え、３７
℃、３０分間反応させた。５０％酢酸５０μｌを加えて
反応を停止させた後、分光光度計を用いて、波長４０５
ｎｍにおける吸光度を測定した。なお、ここで用いた各
溶液が吸光度におよぼす影響を差し引くためにＦＸａ溶
液２５μｌに、５０％酢酸５０μｌを予め加えた後、ポ
リペプチド溶液２５μｌ、０．１％ＢＳＡ／１５０ｍＭ
ＮａＣｌ／５ｍＭＣａＣｌ2 ／５０ｍＭトリス塩酸緩
衝液（ｐＨ８．３）１００μｌおよび基質溶液１００μ
ｌを加えた液をブランクとして使用した。
【００７４】 表１ ヒトＦＸａに対する阻害活性 ──────────────────────────── ポリペプチド ヒトＦＸａ阻害活性 （抑制率* ） ──────────────────────────── ＵＴＩ −（０％） Ｖ２６ｄｅｌ（ＡＮ６８） ＋（４０％） Ｙ５４ｄｅｌ（ＡＮ６８） ＋（１９％） ──────────────────────────── ＊：各ポリペプチドの濃度２０U/mlにおける阻害率を示す。
【００７５】 表２ 酵素阻害様式の変化** ─────────────────────────────── ヒトプラスミン ヒトＦＸａ ─────────────────────────────── Ｖ２６ｄｅｌ＞ＡＮ６８ Ｖ２６ｄｅｌ＞ＡＮ６８ ─────────────────────────────── **：ヒトトリプシン５０％阻害濃度を１として、各酵素５０％ 阻害濃度を求め、その逆数値を比較した。
【００７６】実施例５．安全性 実施例１（３）の方法に準じて大腸菌株ＪＥ５５０５
（ｐＭ７０４Ａ）および大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７
０５Ａ）を培養して得た培養上清を、実施例１（４）の
方法に準じて精製した後、減圧乾固し、精製ポリペプチ
ドを得た。得られたこれらの精製ポリペプチドを、おの
おの、生理食塩水に溶解し、分画分子量２００００のパ
イロザルトユニット（ザルトリウス社製）を用いてリポ
ポリサッカライド（以後ＬＰＳと略す）を除去し、以下
の実験に供した。１週間予備飼育した雄性および雌性の
Ｗｉｓｔａｒ系ラットを１群１０匹として群分けした。
各精製ポリペプチドの投与量が１００ｍｇ／ｋｇ／日と
なるようにポリペプチド溶液を静脈内投与したラットを
ポリペプチド投与群とし、１週間にわたって症状と体重
変化を観察した。また、生理食塩水を投与した同数の動
物を対照群とした。その結果、いずれのポリペプチド投
与群においても、顕著な副作用は認められず、その生存
率および体重変化は対照群のそれと同程度であった。
（ｐＭ７０４Ａ）および大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７
０５Ａ）を培養して得た培養上清を、実施例１（４）の
方法に準じて精製した後、減圧乾固し、精製ポリペプチ
ドを得た。得られたこれらの精製ポリペプチドを、おの
おの、生理食塩水に溶解し、分画分子量２００００のパ
イロザルトユニット（ザルトリウス社製）を用いてリポ
ポリサッカライド（以後ＬＰＳと略す）を除去し、以下
の実験に供した。１週間予備飼育した雄性および雌性の
Ｗｉｓｔａｒ系ラットを１群１０匹として群分けした。
各精製ポリペプチドの投与量が１００ｍｇ／ｋｇ／日と
なるようにポリペプチド溶液を静脈内投与したラットを
ポリペプチド投与群とし、１週間にわたって症状と体重
変化を観察した。また、生理食塩水を投与した同数の動
物を対照群とした。その結果、いずれのポリペプチド投
与群においても、顕著な副作用は認められず、その生存
率および体重変化は対照群のそれと同程度であった。
【００７７】実施例６．製剤の作成 実施例１（３）の方法に準じて大腸菌株ＪＥ５５０５
（ｐＭ７０４Ａ）および大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７
０５Ａ）を培養して得た培養上清を実施例１（４）の方
法に準じて精製した後、減圧乾固し、精製ポリペプチド
を得た。得られたこれらの精製ポリペプチドを、おのお
の、生理食塩水に溶解し、分画分子量２００００のパイ
ロザルトユニット（既出）を用いてＬＰＳを除去した
後、減圧乾固し、下記（１）および（２）に従って製剤
とした。
（ｐＭ７０４Ａ）および大腸菌株ＪＥ５５０５（ｐＭ７
０５Ａ）を培養して得た培養上清を実施例１（４）の方
法に準じて精製した後、減圧乾固し、精製ポリペプチド
を得た。得られたこれらの精製ポリペプチドを、おのお
の、生理食塩水に溶解し、分画分子量２００００のパイ
ロザルトユニット（既出）を用いてＬＰＳを除去した
後、減圧乾固し、下記（１）および（２）に従って製剤
とした。
【００７８】（１）注射用蒸留水を用いて調製した発熱
性物質不含ゼラチン０．１％（ｗ／ｖ）を含む１／１５
Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．４）に精製ポリペプチドを溶
解し、最終濃度２ｍｇ／ｍｌのポリペプチド溶液とし
た。ＮａＣｌをその最終濃度が７５ｍＭとなるように、
また、マンニトールをその最終濃度が２％（ｗ／ｖ）と
なるように、おのおの、ポリペプチド溶液に加え、滅菌
した孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（ディス
ポーザブル・ステライル・フィルターシステム、コーニ
ング社製）を用いて濾過滅菌した後、ガラス容器に５ｍ
ｌずつ分注した。
性物質不含ゼラチン０．１％（ｗ／ｖ）を含む１／１５
Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．４）に精製ポリペプチドを溶
解し、最終濃度２ｍｇ／ｍｌのポリペプチド溶液とし
た。ＮａＣｌをその最終濃度が７５ｍＭとなるように、
また、マンニトールをその最終濃度が２％（ｗ／ｖ）と
なるように、おのおの、ポリペプチド溶液に加え、滅菌
した孔径０．２２μｍのメンブランフィルター（ディス
ポーザブル・ステライル・フィルターシステム、コーニ
ング社製）を用いて濾過滅菌した後、ガラス容器に５ｍ
ｌずつ分注した。
【００７９】（２）注射用蒸留水を用いて調製した０．
１４ＭＮａＣｌ含有０．０１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．
４）に精製ポリペプチドを溶解し、最終濃度２ｍｇ／ｍ
ｌのポリペプチド溶液とした。ヒト血清アルブミンを最
終濃度が１％（ｗ／ｖ）となるように、おのおの、ポリ
ペプチド溶液に加え、滅菌した孔径０．２２μｍのメン
ブランフィルター（ディスポーザブブル・ステライル・
フィルターシステム、既出）を用いて濾過滅菌した後、
ガラス容器に５ｍｌずつ分注し、無菌状態で凍結乾燥し
て、密封した。
１４ＭＮａＣｌ含有０．０１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．
４）に精製ポリペプチドを溶解し、最終濃度２ｍｇ／ｍ
ｌのポリペプチド溶液とした。ヒト血清アルブミンを最
終濃度が１％（ｗ／ｖ）となるように、おのおの、ポリ
ペプチド溶液に加え、滅菌した孔径０．２２μｍのメン
ブランフィルター（ディスポーザブブル・ステライル・
フィルターシステム、既出）を用いて濾過滅菌した後、
ガラス容器に５ｍｌずつ分注し、無菌状態で凍結乾燥し
て、密封した。
【００８０】
【発明の効果】本発明により、新規ポリペプチドおよび
その製造方法が提供される。また、本発明により、上記
新規ポリペプチドをコードするＤＮＡ、該ＤＮＡの配列
を含むことを特徴とするベクターおよび該ＤＮＡまたは
該ベクターによって形質転換された形質転換体が提供さ
れる。さらに、本発明により、上記ポリペプチドを有効
成分として含有する新規医薬組成物および上記ポリペプ
チドを用いることを特徴とする新規酵素阻害方法が提供
される。本発明の新規ポリペプチドは、プロテアーゼが
関与する各種疾患の予防や治療を目的とした医薬品の開
発に新しい道を開くものである。
その製造方法が提供される。また、本発明により、上記
新規ポリペプチドをコードするＤＮＡ、該ＤＮＡの配列
を含むことを特徴とするベクターおよび該ＤＮＡまたは
該ベクターによって形質転換された形質転換体が提供さ
れる。さらに、本発明により、上記ポリペプチドを有効
成分として含有する新規医薬組成物および上記ポリペプ
チドを用いることを特徴とする新規酵素阻害方法が提供
される。本発明の新規ポリペプチドは、プロテアーゼが
関与する各種疾患の予防や治療を目的とした医薬品の開
発に新しい道を開くものである。
【００８１】配列番号：１ 配列の長さ：３０７ 配列の型：核酸 配列の種類：他の核酸 起源 生物名：大腸菌 株 名：ＪＥ５５０５（ｐＭ５９４） 配列 AAGCTTAAAA AAGGGTATAA AATAAA ATG AAA CAA AGT ACT ATT GCA CTG 50 Met Lys Gln Ser Thr Ile Ala Leu -20 -15 GCA CTC TTA CCG TTA CTG TTT ACC CCT GTG ACA AAG GCC GCG GCC 95 Ala Leu Leu Pro Leu Leu Phe Thr Pro Val Thr Lys Ala Ala Ala -10 - 5 1 TGT AAT CTA CCA ATA GTC CGG GGC CCC TGC CGA GCC TTC ATC CAG 140 Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln 5 10 15 CTC TGG GCA TTT GAT GCT GTC AAG GGG AAG TGC GTC CTC TTC CCC 185 Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro 20 25 30 TAC GGG GGC TGC CAG GGC AAC GGG AAC AAG TTC TAC TCA GAG AAG 230 Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys 35 40 45 GAG TGC AGA GAG TAC TGC GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG 275 Glu Cys Arg Glu Tyr Cys Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu 50 55 60 CTG CTG CGC TTC TCC AAC TGACAACTGG ATCC 307 Leu Leu Arg Phe Ser Asn 65 68
【００８２】配列番号：２ 配列の長さ：６８ 配列の型：アミノ酸 配列の種類：ペプチド 配列 Ala Ala Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe 1 5 10 15 Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu 20 25 30 Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser 35 40 45 Glu Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp 50 55 60 Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser Asn 65 68
【００８３】配列番号：３ 配列の長さ：３０４ 配列の型：核酸 配列の種類：他の核酸 起源 生物名：大腸菌 株 名：ＪＥ５５０５（ｐＭ７０４Ａ） 配列 AAGCTTAAAA AAGGGTATAA AATAAA ATG AAA CAA AGT ACT ATT GCA CTG 50 Met Lys Gln Ser Thr Ile Ala Leu -20 -15 GCA CTC TTA CCG TTA CTG TTT ACC CCT GTG ACA AAG GCC GCG GCC 95 Ala Leu Leu Pro Leu Leu Phe Thr Pro Val Thr Lys Ala Ala Ala -10 - 5 1 TGT AAT CTA CCA ATA GTC CGG GGC CCC TGC CGA GCC TTC ATC CAG 140 Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln 5 10 15 CTC TGG GCA TTT GAT GCT AAG GGG AAG TGC GTC CTC TTC CCC TAC 185 Leu Trp Ala Phe Asp Ala Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr 20 25 30 GGG GGC TGC CAG GGC AAC GGG AAC AAG TTC TAC TCA GAG AAG GAG 230 Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu 35 40 45 TGC AGA GAG TAC TGC GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG 275 Cys Arg Glu Tyr Cys Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu 50 55 60 CTG CGC TTC TCC AAC TGACAACTGG ATCC 304 Leu Arg Phe Ser Asn 65 68
【００８４】配列番号：４ 配列の長さ：６７ 配列の型：アミノ酸 配列の種類：ペプチド 配列 Ala Ala Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe 1 5 10 15 Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe 20 25 30 Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Tyr 35 40 45 Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu 50 55 60 Glu Leu Leu Arg Phe Ser Asn 65 67
【００８５】配列番号：５ 配列の長さ：３０４ 配列の型：核酸 配列の種類：他の核酸 起源 生物名：大腸菌 株 名：ＪＥ５５０５（ｐＭ７０５Ａ） 配列 AAGCTTAAAA AAGGGTATAA AATAAA ATG AAA CAA AGT ACT ATT GCA CTG 50 Met Lys Gln Ser Thr Ile Ala Leu -20 -15 GCA CTC TTA CCG TTA CTG TTT ACC CCT GTG ACA AAG GCC GCG GCC 95 Ala Leu Leu Pro Leu Leu Phe Thr Pro Val Thr Lys Ala Ala Ala -10 - 5 1 TGT AAT CTA CCA ATA GTC CGG GGC CCC TGC CGA GCC TTC ATC CAG 140 Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln 5 10 15 CTC TGG GCA TTT GAT GCT GTC AAG GGG AAG TGC GTC CTC TTC CCC 185 Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro 20 25 30 TAC GGG GGC TGC CAG GGC AAC GGG AAC AAG TTC TAC TCA GAG AAG 230 Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys 35 40 45 GAG TGC AGA GAG TGC GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG 275 Glu Cys Arg Glu Cys Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu 50 55 60 CTG CGC TTC TCC AAC TGACAACTGG ATCC 304 Leu Arg Phe Ser Asn 65 67
【００８６】配列番号：６ 配列の長さ：６７ 配列の型：アミノ酸 配列の種類：ペプチド 配列 Ala Ala Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe 1 5 10 15 Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu 20 25 30 Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser 35 40 45 Glu Lys Glu Cys Arg Glu Cys Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu 50 55 60 Glu Leu Leu Arg Phe Ser Asn 65 67
【図１】プラスミドｐＭ５５２を示す図。
【図２】ＨｉｎｄIII プライマーの塩基配列を示す図。
【図３】ＡＮ６８プライマーの塩基配列を示す図。
【図４】ｐＢＲＢａｍＨＩプライマーの塩基配列を示す
図。
図。
【図５】プラスミドｐＭ５９４の構築方法を示す図。
【図６】プラスミドｐＭ５９４のＨｉｎｄIII 消化部位
からＢａｍＨＩ消化部位までの塩基配列および対応する
アミノ酸配列を示す図。
からＢａｍＨＩ消化部位までの塩基配列および対応する
アミノ酸配列を示す図。
【図７】Ｖ２６ｄｅｌプライマーの塩基配列を示す図。
【図８】プラスミドｐＭ７０４ＡおよびプラスミドｐＭ
７０５Ａの構築方法を示す図。
７０５Ａの構築方法を示す図。
【図９】プラスミドｐＭ７０４ＡのＨｉｎｄIII 消化部
位からＢａｍＨＩ消化部位までの塩基配列および対応す
るアミノ酸配列を示す図。
位からＢａｍＨＩ消化部位までの塩基配列および対応す
るアミノ酸配列を示す図。
【図１０】Ｙ５４ｄｅｌプライマーの塩基配列を示す
図。
図。
【図１１】プラスミドｐＭ７０５ＡのＨｉｎｄIII 消化
部位からＢａｍＨＩ消化部位までの塩基配列および対応
するアミノ酸配列を示す図。
部位からＢａｍＨＩ消化部位までの塩基配列および対応
するアミノ酸配列を示す図。
Claims (20)
- 【請求項１】下記式１のアミノ酸配列から１つ以上のア
ミノ酸が欠失してなるアミノ酸配列を有することを特徴
とする新規ポリペプチド。 式１ Cys Asn Leu Pro Ile Val Arg Gly Pro Cys Arg Ala Phe Ile Gln Leu Trp Ala Phe Asp Ala Val Lys Gly Lys Cys Val Leu Phe Pro Tyr Gly Gly Cys Gln Gly Asn Gly Asn Lys Phe Tyr Ser Glu Lys Glu Cys Arg Glu Tyr Cys - 【請求項２】前記アミノ酸の欠失が、下記（１）ないし
（５）より選ばれる、いずれか、１箇所以上の部位で１
つ以上生じている請求項１に記載の新規ポリペプチド。 （１）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて２番
目のAsn から９番目のPro までの間。 （２）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて１１
番目のArg から２５番目のLys までの間。 （３）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて２７
番目のVal から３３番目のGly までの間。 （４）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて３５
番目のGln から４６番目のGlu までの間。 （５）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて４８
番目のArg から５０番目のTyr までの間。 - 【請求項３】少なくとも、下記（１）または（２）より
選ばれる、いずれか、１つ以上のアミノ酸が、前記式１
から欠失してなるアミノ酸配列を有する請求項１または
２、いずれか、に記載の新規ポリペプチド。 （１）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて２２
番目のVal 。 （２）前記式１のアミノ酸配列のＮ末端より数えて５０
番目のTyr 。 - 【請求項４】前記式１のアミノ酸配列から１つ以上の前
記アミノ酸が欠失したアミノ酸配列のＮ末端に下記
（１）ないし（５）より選ばれるアミノ酸配列が付加さ
れたアミノ酸配列を有する請求項１ないし３、いずれ
か、に記載の新規ポリペプチド。 （１） Asp Asp Ala Ala （２） Thr Val Ala Ala （３） Val Ala Ala （４） Ala Ala （５） Ala - 【請求項５】前記式１のアミノ酸配列から１つ以上の前
記アミノ酸が欠失したアミノ酸配列のＣ末端に下記
（６）ないし（20）より選ばれるアミノ酸配列が追加さ
れたアミノ酸配列を有する請求項１ないし４、いずれ
か、に記載の新規ポリペプチド。 （６）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser Asn （７）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe Ser （８）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg Phe （９）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu Arg （10）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu Leu （11）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu Leu （12）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu Glu （13）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp Glu （14）Gly Val Pro Gly Asp Gly Asp （15）Gly Val Pro Gly Asp Gly （16）Gly Val Pro Gly Asp （17）Gly Val Pro Gly （18）Gly Val Pro （19）Gly Val （20）Gly - 【請求項６】ポリペプチドが、少なくとも、プロテアー
ゼに対する阻害活性を有する請求項１ないし５、いずれ
か、に記載の新規ポリペプチド。 - 【請求項７】請求項１ないし６、いずれか、に記載の新
規ポリペプチドをコードする塩基配列を有することを特
徴とする新規ＤＮＡ。 - 【請求項８】下記式２に記載の塩基配列から１つ以上の
塩基を欠失させてなる塩基配列を有する請求項７に記載
の新規ＤＮＡ。 式２ TGT AAT CTA CCA ATA GTC CGG GGC CCC TGC CGA GCC TTC ATC CAG CTC TGG GCA TTT GAT GCT GTC AAG GGG AAG TGC GTC CTC TTC CCC TAC GGG GGC TGC CAG GGC AAC GGG AAC AAG TTC TAC TCA GAG AAG GAG TGC AGA GAG TAC TGC - 【請求項９】前記塩基の欠失が下記（１）ないし（５）
より選ばれる、いずれか、１箇所以上で１つ以上生じて
いる請求項７または８、いずれか、に記載の新規ＤＮ
Ａ。 （１）前記式２の塩基配列の５’末端より数えて４番目
のA から２７番目のC までの間 （２）前記式２の塩基配列の５’末端より数えて３１番
目のC から７５番目のGまでの間 （３）前記式２の塩基配列の５’末端より数えて７９番
目のG から９９番目のCまでの間 （４）前記式２のアミノ酸配列のＮ末端より数えて１０
３番目のC から１３８番目のG までの間 （５）前記式２のアミノ酸配列のＮ末端より数えて１４
２番目のA から１５０番目のC までの間 - 【請求項１０】少なくとも下記（１）または（２）より
選ばれる、いずれか、１組以上の塩基が前記式２から欠
失してなる塩基配列を有する請求項７ないし９、いずれ
か、に記載の新規ＤＮＡ。 （１）前記式１の塩基配列の５’末端より数えて６４か
ら６６番目のG 、T 、C （２）前記式１の塩基配列の５’末端より数えて１４８
から１５０番目のT 、A、C - 【請求項１１】前記式２の塩基配列から１つ以上の前記
塩基を欠失させてなる塩基配列の５’末端に下記（１）
ないし（５）より選ばれる、いずれか、の塩基配列が追
加された塩基配列を有する請求項７ないし１０、いずれ
か、に記載の新規ＤＮＡ。 （１） GAC GAC GCC GCC （２） ACC GTC GCC GCC （３） GTC GCC GCC （４） GCC GCC （５） GCC - 【請求項１２】前記式２の塩基配列から１つ以上の前記
塩基を欠失させてなる塩基配列の３’末端に下記（６）
ないし（20）より選ばれる、いずれか、の塩基配列が追
加された塩基配列を有することを特徴とする請求項７な
いし１１、いずれか、に記載の新規ＤＮＡ。 （６） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CGC TTC TCC AAC （７） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CGC TTC TCC （８） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CGC TTC （９） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG CGC （10） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG CTG （11） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG CTG （12） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG GAG （13） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT GAG （14） GGT GTC CCT GGT GAT GGT GAT （15） GGT GTC CCT GGT GAT GGT （16） GGT GTC CCT GGT GAT （17） GGT GTC CCT GGT （18） GGT GTC CCT （19） GGT GTC （20） GGT - 【請求項１３】請求項７ないし１２、いずれか、に記載
のＤＮＡを含むことを特徴とするベクター。 - 【請求項１４】請求項７ないし１２、いずれか、に記載
のＤＮＡによって形質転換されたことを特徴とする形質
転換体。 - 【請求項１５】請求項１３に記載のベクターによって形
質転換されたことを特徴とする形質転換体。 - 【請求項１６】下記ａ）〜ｃ）の工程を行うことを特徴
とする請求項１ないし６、いずれか、に記載の新規ポリ
ペプチドの製造方法。 ａ）請求項１ないし６、いずれか、に記載の新規ポリペ
プチドをコードする塩基配列を有するＤＮＡを得る。 ｂ）ａ）で得たＤＮＡで宿主細胞を形質転換させて形質
転換体を得る。 ｃ）ｂ）で得た形質転換体を培養して請求項１ないし
６、いずれか、に記載の新規ポリペプチドを産生させ、
当該ポリペプチドを培養混合物から回収する。 - 【請求項１７】下記ａ）〜ｄ）の工程を行うことを特徴
とする請求項１ないし６、いずれか、に記載の新規ポリ
ペプチドの製造方法。 ａ）請求項１ないし６、いずれか、に記載の新規ポリペ
プチドをコードする塩基配列を有するＤＮＡを得る。 ｂ）ａ）で得たＤＮＡを含むベクターを得る。 ｃ）ｂ）で得たベクターで宿主細胞を形質転換させて形
質転換体を得る。 ｄ）ｃ）で得た形質転換体を培養して請求項１ないし
６、いずれか、に記載の新規ポリペプチドを産生させ、
当該ポリペプチドを培養混合物から回収する。 - 【請求項１８】請求項１ないし６、いずれか、に記載の
新規ポリペプチドを有効成分として含有することを特徴
とする医薬組成物。 - 【請求項１９】前記医薬組成物が手術侵襲、多臓器不
全、ショック、膵炎、播種性血管内凝固症候群、虚血性
心疾患、腎炎、肝硬変、血行再建術時の再閉塞、血管透
過性の昂進による浮腫、成人呼吸困難症候群、慢性関節
リウマチ、関節炎およびアレルギーのうち、少なくと
も、１つ以上の疾患の予防および／または治療に使用さ
れる請求項１８に記載の医薬組成物。 - 【請求項２０】請求項１ないし６、いずれか、に記載の
新規ポリペプチドを用いることを特徴とする酵素阻害方
法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4146587A JPH05308988A (ja) | 1992-05-12 | 1992-05-12 | 新規ポリペプチド、新規ｄｎａ、新規ベクター、新規形質転換体、新規医薬組成物、および新規ポリペプチドの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4146587A JPH05308988A (ja) | 1992-05-12 | 1992-05-12 | 新規ポリペプチド、新規ｄｎａ、新規ベクター、新規形質転換体、新規医薬組成物、および新規ポリペプチドの製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05308988A true JPH05308988A (ja) | 1993-11-22 |
Family
ID=15411089
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4146587A Withdrawn JPH05308988A (ja) | 1992-05-12 | 1992-05-12 | 新規ポリペプチド、新規ｄｎａ、新規ベクター、新規形質転換体、新規医薬組成物、および新規ポリペプチドの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH05308988A (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1996026273A1 (en) * | 1995-02-23 | 1996-08-29 | Adeza Biomedical Corporation | Polypeptides derived from urinastatin having calcium channel blocking activity and their use to delay premature delivery |
| US5650394A (en) * | 1993-11-04 | 1997-07-22 | Adeza Biomedical | Use of urinastatin-like compounds to prevent premature delivery |
| JP2002065281A (ja) * | 2000-09-01 | 2002-03-05 | Seikagaku Kogyo Co Ltd | ビクニン遺伝子のターゲッティング用ｄｎａ |
| WO2006129849A1 (ja) * | 2005-06-03 | 2006-12-07 | Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. | 抗ｃｄ１４抗体融合蛋白質 |
-
1992
- 1992-05-12 JP JP4146587A patent/JPH05308988A/ja not_active Withdrawn
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5650394A (en) * | 1993-11-04 | 1997-07-22 | Adeza Biomedical | Use of urinastatin-like compounds to prevent premature delivery |
| WO1996026273A1 (en) * | 1995-02-23 | 1996-08-29 | Adeza Biomedical Corporation | Polypeptides derived from urinastatin having calcium channel blocking activity and their use to delay premature delivery |
| JP2002065281A (ja) * | 2000-09-01 | 2002-03-05 | Seikagaku Kogyo Co Ltd | ビクニン遺伝子のターゲッティング用ｄｎａ |
| JP4565531B2 (ja) * | 2000-09-01 | 2010-10-20 | 生化学工業株式会社 | ビクニン遺伝子のターゲッティング用ｄｎａ |
| WO2006129849A1 (ja) * | 2005-06-03 | 2006-12-07 | Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. | 抗ｃｄ１４抗体融合蛋白質 |
| US8252905B2 (en) | 2005-06-03 | 2012-08-28 | Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. | Anti-CD14 antibody fusion protein |
| US8541565B2 (en) | 2005-06-03 | 2013-09-24 | Mochida Pharmaceutical Co., Ltd. | Polynucleotide encoding anti-CD14 antibody fusion protein |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP3126975B2 (ja) | プロテイナーゼ阻害因子、それらの調製方法およびそれらを含有する薬物 | |
| US5409895A (en) | Protease inhibitory polypeptides derived from urinary trypsin inhibitor and compositions thereof | |
| JP3929484B2 (ja) | エコチンおよびその同族体を含む医薬的組成物 | |
| JP2001521367A (ja) | ヒト ビクニン | |
| CZ284911B6 (cs) | Lidská varianta inhibitoru proteasy Kunitzova typu | |
| JPH11511963A (ja) | クニッツタイプのプラスマカリクレイン阻害剤 | |
| EP0687731B1 (en) | Secretion vector, transformed microorganisms containing said vector and manufacture of products from said microorganism | |
| JPH08504568A (ja) | ウシ膵トリプシン阻害因子から誘導される因子ＶＩＩａ−組織因子複合体の阻害因子 | |
| US5278285A (en) | Variant of Kunitz-type inhibitor derived from the α3-chain of human type VI collagen produced by recombinant DNA technology | |
| WO1992007935A1 (en) | Glycosaminoglycan-targeted fusion proteins, their design, construction and compositions | |
| EP0393431A1 (de) | Gentechnologisch hergestellte Homologe des Alzheimer-Protease-Inhibitors, Wirtstämme sowie Expressionsvektoren für ihre Herstellung für ihre Verwendung als Arzneimittel | |
| JP2916228B2 (ja) | 遺伝子操作した組み換えアプロチニン変異型、均質に処理されたアプロチニン変異型の微生物調製の方法およびその治療学的使用 | |
| JP2567263B2 (ja) | ヒルジンの変異体、その使用及びその製造方法 | |
| NZ269619A (en) | Alpha-1-antichymotrypsin (serine protease inhibitor) and its use | |
| AU661515B2 (en) | Polypeptide, DNA fragment encoding the same, drug composition containing the same and process for producing the same | |
| EP0297362A2 (de) | Human-Aprotinin, dessen Lys-Rest in Position 15 gegen einen anderen protogenen Aminosäurerest ausgetauscht ist | |
| JPH05308988A (ja) | 新規ポリペプチド、新規ｄｎａ、新規ベクター、新規形質転換体、新規医薬組成物、および新規ポリペプチドの製造方法 | |
| JP3490444B2 (ja) | 昆虫類の唾液からのトロンビン阻害剤 | |
| KR20090009796A (ko) | 키메라 쿠니츠 도메인 및 그의 용도 | |
| JPH08511157A (ja) | Ｘａファクター阻害活性を有する新規ポリペプチド | |
| JP2798573B2 (ja) | ヒト好中球エラスターゼ阻害活性を有する天然型ポリペプチドおよびそれを含有する医薬製剤 | |
| US5231010A (en) | Recombinant aprotinin variants genetically engineered process for the microbial preparation of homogeneously processed aprotinin variants and the therapeutic use thereof | |
| JPH06321989A (ja) | 新規ポリペプチド、新規ｄｎａおよび医薬組成物 | |
| US5679770A (en) | Polypeptide, DNA fragment encoding the same, drug composition containing the same and process for producing the same | |
| JPH0625289A (ja) | 新規ポリペプチド、新規ｄｎａ、医薬組成物およびポリペプチドの製造方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A300 | Withdrawal of application because of no request for examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A300 Effective date: 19990803 |