JP2001521367A

JP2001521367A - ヒトビクニン

Info

Publication number: JP2001521367A
Application number: JP53280497A
Authority: JP
Inventors: ピー．タンブリーニ、ポール; デイヴィス、ゲイリー．; エイ．デラリア、キャスリーン; ダブリュー．マーラー、クリストファー; ケイ．ミューラー、ダニエル
Original assignee: Bayer Corp
Current assignee: Bayer Corp
Priority date: 1996-03-11
Filing date: 1997-03-10
Publication date: 2001-11-06
Anticipated expiration: 2017-03-10
Also published as: AU716923B2; IL126115A0; AR006188A1; PA8426301A1; PL328822A1; KR100356956B1; AR053063A2; TR199801794T2; HRP970144B1; ES2263174T3; HU226419B1; AU2207797A; US20030194398A1; JP2004000208A; BR9708021A; EP0891426A2; US6583108B1; DE69735996D1; SV1997000018A; NZ331540A

Abstract

(57)【要約】本発明は、ヒト胎盤ビクニン、セリンプロテアーゼインヒビタードメイン、および、その断片を用いるための、タンパク質、ポリペプチド、塩基配列、構築物、発現ベクター、宿主細胞、薬剤組成物、および方法を提供する。

Description

【発明の詳細な説明】ヒトビクニン発明の分野本発明の組成物は、セリンプロテアーゼ活性を阻害するタンパク質の分野に関する。本発明は、また、セリンプロテアーゼを阻害するタンパク質を産生するための核酸構築物、ベクターおよび宿主細胞、このタンパク質を含む薬剤組成物、ならびに、それらを使用するための方法の分野に関する。発明の背景取り組んだ問題血液損失は、心臓切開手術のような大手術や、その他の複雑な処置の重大な合併症である。心臓手術患者はかなりの輸血された供血を使う。輸血は伝染病や副作用を起こす危険性がある。さらに、供血は高価で、しばしば、過剰な量の供給を必要とする。血液損失を抑えるための薬学的方法と、その結果生じる輸血の必要性について説明されている（Scottら、Ann．Thorac．Surg．50:843-851，1990 年）。タンパク質のセリンプロテアーゼ阻害剤クニッツ（Kunitz）ファミリーのウシセリンプロテアーゼ阻害剤であるアプロチニンが、薬剤Trasylol（登録商標）における活性物質である。アプロチニン（Trasylol（登録商標））は、手術時の血液損失を抑制する効果があることが報告されている（Roystonら、Lance t ii:1289-1291，1987；Dietrichら、Thorac．Cardiovasc．Surg．37:92-98，19 89；W．van Oeverenら、(1987),Ann．Thorac．Surg．44．pp 640-645；Bistrup ら、（1988）Lancet I，366-367）。一方、低血圧や潮紅を含む副作用（Bohrer ら、Anesthesia 45:853-854，1990）とアレルギー反応（Dietrichら、前掲）があることも報告されている。以前にアプロチニンを施用した患者にアプロチニンを使用することは勧められない（Dietrichら、前掲）。また、Trasylol（登録商標）は、線溶冗進性出血と外傷性出血ショックを治療するためにも使用されている。アプロチニンは、トリプシン、キモトリプシン、プラスミン、およびカリクレインなど、いくつかのセリンプロテアーゼを阻害することが知られており、急性膵炎、様々なショック症候群、線溶冗進性出血、および心筋梗塞の治療における治療薬として用いられている(Trapnell ら、（1974）Brit．J．Surg．61:177；J ．McMichanら、（1982）Circulatory Shock 9:107；Auerら、（1979）Acta Neur ochir．49:207；Sher、（1977）Am．J．Obstet．Gynecol．129:164；Schneider 、(l976)，Artzneim.-Firsch．26:1606)。Trasylol（登録商標）は、一般的に、カリクレインとプラスミンとを阻害することによって、生体内で血液損失を抑制すると考えられている。アプロチニン（３−５８、Ａｒｇ１５、Ａｌａ１７、Ｓｅｒ４２）は、天然のアプロチニンそのものに比べて、強い血漿カリクレイン阻害能力を示すことが分かっている（WO 89/10374 ）。アプロチニンに伴う問題アプロチニンはウシに由来するため、人間の患者では、薬剤との再接触によって、アナフィラキシーが誘導されるという限定された危険がある。したがって、アナフィラキシーの危険を低くするために、ヒトにおける機能的なアプロチニンの等価物が最も有用で望ましい。アプロチニンは、また、齧歯類や犬に、繰り返し高用量で投与すると、腎臓毒性がある（バイエル社（Bayer）、Trasylol（登録商標）、プロテイナーゼの阻害剤；Glasserら、in“erhandlungen der Deutshen Gesellschaft fur Innere M edizin，78．Kongress”，Bergmann，Munchen，1972，pp．1612-1614）。この効果は、正味にして高い正の電荷をもつために、アプロチニンが負に荷電している近位尿細管に蓄積することが原因だという説がある（WO 93/14120）。したがって、本発明の目的の一つは、アプロチニンと同じ機能活性をもつヒトのタンパク質を同定することである。また、荷電の程度は低いが、アプロチニンで見つけられたのと同一の、または同様の、特にプラスミンとカリクレインの阻害能力に関し、向上したプロテアーゼ特異性を示すヒトのタンパク質を同定することも本発明の目的である。このような阻害剤は、有害な免疫反応の危険と腎臓毒性とを低下させて、人間の患者に薬剤として繰り返し使用できるようになるであろう。発明の簡単な概要本発明は、特にカリクレインを特異的に阻害することができる、精製したヒトのセリンプロテアーゼ阻害剤を提供するためのものであって、この阻害剤はアフィニティークロマトグラフィーによってヒトの胎盤組織から単離されたものである。本発明は、クニッツ型の２つのセリンプロテアーゼ阻害領域をもち、本明細書においてヒト胎盤ビクニンと名付けられた、新たに同定されたヒトのタンパク質を提供する。特定の態様において、本発明は、具体的には、次のアミノ酸配列をもつタンパク質である。好ましい態様において、本発明は、次のアミノ酸配列をもつ、天然のヒト胎盤ビクニンを提供するためのものである。一つの局面において、本発明のタンパク質の生物学的活性は、トリプシン、ヒト血漿および組織カリクレイン、ヒトプラスミン、ならびに第ＸIIａ因子に結合して、実質的にこれらの生物学的活性を阻害できることである。好ましい態様において、本発明は、天然のヒト胎盤ビクニンタンパク質をグルコシル化された状態で提供するためのものである。本発明の更なる態様において、本発明には、少なくとも一つのシステイン−システインのジスルフィド結合をもつように形成された、天然のヒトのビクニンタンパク質が含まれる。好ましい態様において、このタンパク質は、ＣＹＳ１１−ＣＹＳ６１、ＣＹＳ２０−ＣＹＳ４４、ＣＹＳ３６−ＣＹＳ５７、ＣＹＳ１０６−ＣＹＳ１５６、ＣＹＳ１１５−ＣＹＳ１３９、およびＣＹＳ１３１−ＣＹＳ１５２からなるグループより選択されるシステイン対の間に形成される、少なくとも一つの鎖内のシステイン−システインのジスルフィド結合を有する。なお、システインの番号は、天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸配列に従っている。当業者は、本発明のタンパク質が、天然のヒト胎盤ビクニンの生物学的活性が維持されるように、適切な３次元構造に折り畳まれていることを理解し、天然の鎖内システイン−システインのジスルフィド結合は一つもないか、あるいは一つ以上有しているものであるか、あるいはすべての結合を有するものであることも理解することができる。最も好ましい態様において、本発明のタンパク質は、適切に折り畳まれて、すべての正しいシステイン− システインのジスルフィド結合を形成している。本発明の活性をもつタンパク質は、胎盤などのヒトの組織から精製することによって、または、下記の実施例によって例示されているような合成タンパク質化学技術によって得ることができる。本発明のタンパク質は、自己複製するベクターに、形質転換された細胞から、本発明のタンパク質を発現させるという、分子生物学的技術を用いても得られることが分かる。このようなタンパク質は、形質転換させた細胞から分泌されない状態にも、分泌される状態にも作製することができる。形質転換細胞からの分泌を促進するか、翻訳されたタンパク質の機能的安定性を高めるか、または、ビクニンタンパク質の折畳みを補助するために、天然のヒト胎盤ビクニンタンパク質のＮＨ２−末端に、ある種のシグナルペプチドを付加することができる。従って、一つの態様において、本発明は、天然のシグナルペプチド配列の少なくとも一部をそのままもつ、天然のヒト胎盤ビクニンタンパク質を提供するためのものである。つまり、本発明の一つの態様は、シグナルペプチドの少なくとも一部をもつ天然のヒトビクニンで、以下のアミノ酸配列をもつものを提供するものである。好ましい態様において、本発明は、完全なリーダー配列の部分をもつ天然のヒト胎盤ビクニンタンパク質で、以下のアミノ酸配列の完全なリーダーセグメントをもつ配列番号：５２（SEQ ID NO:52）のアミノ酸配列をもつものを提供するものである。もう一つの態様において、本発明は、完全なリーダー配列の部分をもつビクニンタンパク質で、以下のアミノ酸配列の完全なリーダーセグメントをもつ配列番号：５２（SEQ ID NO:52）のアミノ酸配列をもつものを提供するものである。本明細書において使用される好ましい番号システムでは、天然のヒト胎盤ビクニンに対するアミノ酸配列のＮＨ２−末端をアミノ酸番号＋１と指定している。天然のヒト胎盤ビクニンの生物学的活性の少なくとも一部をもち続け、セリンプロテアーゼ阻害因子として作用する、機能的なタンパク質の断片が天然のヒト胎盤ビクニンから得られることが容易に認識されるであろう。一つの態様において、本発明のタンパク質は、少なくとも一つの機能的なクニッツ様ドメインをもち、天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸７〜１５９のアミノ酸配列（以後、ビクニン（７−１５９）という）を持つ天然のヒト胎盤ビクニンの断片を含んでいる。従って、本発明は以下のアミノ酸配列を有するタンパク質となる。ここでのアミノ酸の番号は、天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸配列の番号に対応している。この態様の別の機能的な変異体は、少なくとも一つの機能的なクニッツ様ドメインをもち、天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸１１〜１５６のアミノ酸配列「ビクニン（１１−１５６）」をもつ天然のヒト胎盤ビクニンの断片でもある。個々のクニッツ様ドメインは天然のヒト胎盤ビクニンの断片でもあることが分かる。特に、本発明は、天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸７〜６４のアミノ酸配列からなる第一のクニッツ様ドメイン（以下、ビクニン（７−６４）という）のアミノ酸配列をもつタンパク質を提供するものである。したがって、一つの態様において、本発明は、以下のアミノ酸配列をもつクニッツ様ドメインを少なくとも一つもつタンパク質を含む。ここで、アミノ酸番号は、天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸配列の番号に対応している。本発明のタンパク質のもう一つの形は、以下のアミノ酸配列である天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸１１〜６１のアミノ酸配列からなる第一のクニッツ様ドメイン、ビクニン（１１−６１）であってもよい。また、本発明は、天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸１０２〜１５９のアミノ酸配列（以下、ビクニン（１０２−１５９という）からなるクニッツ様ドメインのアミノ酸配列をもつタンパク質を提供するものである。したがって、一つの態様において、本発明は、以下のアミノ酸配列をもつクニッツ様ドメインを少なくとも一つもつタンパク質を含む。ここで、アミノ酸番号は、天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸配列の番号に対応している。このドメインのもう一つの形は、以下のアミノ酸配列である天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸１０６〜１５６のアミノ酸配列、ビクニン（１０６− １５６）からなるクニッツ様ドメインであってもよい。このように、当業者は、天然のタンパク質の生物学的活性の少なくともいくつかを保持している天然のヒトビクニンの断片が作出できることを認めるであろう。また、天然のヒトビクニンタンパク質の生物学的活性のいくつか、または同じ活性、またはより強い活性を保持している別の形のタンパク質を提供するために、このような断片を、異なった方向や複数の組合せに組み合わせることができる。本発明の生物学的に活性のあるタンパク質は、一個以上の本発明のクニッツ様ドメインと、別の生物に由来する他のクニッツ様ドメインとが結合されていてもよいことは、容易に認識されよう。本発明の生物学的活性をもつタンパク質は、さまざまな生物学的活性をもつ別の生物源に由来する他のタンパク質部位と結合した、一個以上の本発明のクニッツ様ドメインを含んでいてもよい。予測可能な生物学的活性をもつ多機能性融合タンパク質を提供するために、本発明のタンパク質の生物学的活性を、他の既知のタンパク質の生物学的活性と組み合わせることができる。したがって、一つの態様において、本発明は、配列番号：５、または配列番号：７のいずれかのアミノ酸配列と、同一か、または機能的に同等のアミノ酸配列を少なくとも一つもつタンパク質を含む。早期の終止コドンで終結するオープンリーディングフレームでも、機能的なタンパク質をコードすることができる。本発明には、このような選択的な終結も含まれ、一つの態様として、以下のアミノ酸配列のタンパク質を提供する。一つの態様において、本発明は、実質的に精製された、または、完全なリーダー配列の一部と、天然の膜貫通領域の少なくとも一部とで組換えられ、産生された天然のヒトのビクニンを提供する。したがって、本発明の一つの態様は、完全なリーダー配列と、膜貫通ドメインの少なくとも一部（下線部）をもち、下記のものから選択されたアミノ酸配列を有する天然のヒトのビクニンを提供するものである。ここで、配列１）は、共通配列番号：４５由来のＥＳＴで、２）は、ＰＣＲクローン配列番号：４７で、および３）は、ラムダｃＤＮＡクローン配列番号：４９である。好ましい態様において、本発明のタンパク質は、配列番号：４５、４７、または４９のアミノ酸配列の一つであって、タンパク質はクニッツドメインの最後と膜貫通領域との間の領域で切断されているものである。本発明は、また、シグナルペプチドが欠失したタンパク質を具体化している。すなわち、本発明は、膜貫通アミノ酸配列が続く、配列番号：５２のアミノ酸配列を有するタンパク質を提供する。膜貫通アミノ酸配列：または、膜貫通アミノ酸配列：本発明のタンパク質のアミノ酸配列は、本発明のタンパク質を産生するための分子生物学的手法において用いることのできる適切な塩基配列を、当業者に教示する。したがって、本発明の一つの態様は、図３（配列番号：１０）の天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸配列に翻訳される、図３（配列番号：９）のＤＮＡ共通配列をもつヒトのビクニンをコードする塩基配列を提供する。別の態様において、本発明は、図４Ｄ（配列番号：４５）のアミノ酸配列をコードする、図４Ｃ（配列番号：５１）の塩基共通配列を提供する。好ましい態様において、本発明は、配列番号：４９のタンパク質配列をコードする図４Ｆ（配列番号：４８）のＤＮＡ配列をもつ天然のヒト胎盤ビクニンをコードする塩基配列を提供する。別の態様において、本発明は、配列番号：４７のタンパク質配列をコードする、図４Ｅ（配列番号：４６）の塩基配列を提供する。塩基配列中に作出された対立遺伝子突然変異、および保存的な置換により、本発明に包含されるタンパク質のアミノ酸配列となるような塩基配列を作出することができることは、簡単に認識できる。当業者は、本発明のタンパク質の自然の対立遺伝子突然変異、および、本発明のタンパク質におけるアミノ酸の保存的な置換は、タンパク質の生物学的活性を有意に変更するものではなく、本発明に包含されるものであることが認識される。本発明は、また、手術を受けている患者における手術時の出血を低減させるのに有用なヒト胎盤ビクニンとその断片を含む薬剤組成物を提供する。本発明は、また、本発明に係る公開されたヒトセリンプロテアーゼ阻害因子を有効量を、生物学的に適合性のあるビヒクル中に入れて、患者に投与して、手術を受けている患者における手術時の出血を低減させるための方法を提供する。本発明は、また、プロテアーゼ特異性を変更するアミノ酸置換を含む、胎盤ビクニンの変異体と、上記の特異的なクニッツドメインとを提供する。好ましい置換部位は、下記に、天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸配列中に、Ｘａａ¹からＸａａ³²の位置で示されている。Ｘａａ¹からＸａａ¹⁶での置換は、ビクニン（７−６４）の変異体として好まく、一方、Ｘａａ¹⁷からＸａａ³²での置換は、ビクニン（１０２−１５９）の変異体として好ましいものである。すなわち、本発明は、以下のアミノ酸配列をもつタンパク質を実現する。ここで、Ｘａａ¹〜Ｘａａ³²は、Ｘａａ¹〜Ｘａａ³²の少なくとも一つのアミノ酸残基が、対応する天然の配列のアミノ酸残基とは異なるという条件付きで、それぞれ独立に、Ｃｙｓ以外の天然のアミノ酸残基を表す。本明細書において、「天然のアミノ酸残基」という語は、普遍的に存在する２０種のアミノ酸、すなわち、Ａｌａ、Ａｒｇ、Ａｓｎ、Ａｓｐ、Ｃｙｓ、Ｇｌｎ、Ｇｌｕ、Ｇｌｙ、Ｈｉｓ、Ｉｌｅ、Ｌｅｕ、Ｌｙｓ、Ｍｅｔ、Ｐｈｅ、Ｐｒｏ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ｔｒｐ、Ｔｙｒ、およびＶａｌのいずれか一つを示すものである。上で示した一つ以上の位置で、一つ以上のアミノ酸を置換することによって、天然のヒト胎盤ビクニンの阻害因子特異性プロファイルや、個々のクニッツ様ドメイン、ビクニン（７−６４）、またはビクニン（１０２−１５９）の阻害因子特異性プロファイルを変化させることができ、限定はされないが好ましくは例えば、補体カスケードの酵素、ＴＦ／ＦＶIIａ、ＦＸａ、トロンビン、好中球エラスターゼ、カテプシンＧ、またはプロテアーゼ−３などの別のセリンプロテアーゼを阻害するようにすることができる。胎盤ビクニン変異体の好ましい例には、Ｘａａ¹は、Ｈｉｓ、Ｇｌｕ、Ｐｒｏ、Ａｌａ、ＶａｌまたはＬｙｓからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ¹がＨｉｓまたはＰｒｏであり；もしくは、Ｘａａ²は、Ｖａｌ、Ｔｈｒ、Ａｓｐ、Ｐｒｏ、Ａｒｇ、Ｔｙｒ、Ｇｌｕ、Ａｌａ、Ｌｙｓからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ²がＶａｌまたはＴｈｒであり；もしくは、Ｘａａ³は、Ａｒｇ、Ｐｒｏ、Ｉｌｅ、Ｌｅｕ、Ｔｈｒからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ³がＡｒｇまたはＰｒｏであり；もしくは、Ｘａａ⁴は、Ａｒｇ、Ｌｙｓ、Ｓｅｒ、Ｇｌｎからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ⁴がＡｒｇまたはＬｙｓであり；もしくは、Ｘａａ⁵は、Ａｌａ、Ｇｌｙ、Ａｓｐ、Ｔｈｒからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ⁵がＡｌａであり；もしくは、Ｘａａ⁶は、Ｓｅｒ、Ｉｌｅ、Ｔｙｒ、Ａｓｎ、Ｌｅｕ、Ｖａｌ、Ａｒｇ、Ｐｈｅからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ⁶がＳｅｒまたはＡｒｇであり；もしくは、Ｘａａ⁷は、Ｍｅｔ、Ｐｈｅ、Ｉｌｅ、Ｇｌｕ、Ｌｅｕ、ＴｈｒおよびＶａｌからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ⁷がＭｅｔまたはＩｌｅであり；もしくは、Ｘａａ⁸は、Ｐｒｏ、Ｌｙｓ、Ｔｈｒ、Ｇｌｎ、Ａｓｎ、Ｌｅｕ、Ｓｅｒ、またはＩｌｅからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ⁸がＰｒｏまたはＩｌｅであり；もしくは、Ｘａａ⁹が、Ａｒｇ、ＬｙｓまたはＬｅｕからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ⁹ がＡｒｇであり；もしくは、Ｘａａ¹⁰は、Ｖａｌ、Ｉｌｅ、Ｌｙｓ、Ａｌａ、Ｐｒｏ、Ｐｈｅ、Ｔｒｐ、Ｇｌｎ、ＬｅｕおよびＴｈｒからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ¹⁰がＶａｌであり；もしくは、Ｘａａ¹¹は、Ｇｌｙ、Ｓｅｒ、およびＴｈｒからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ¹¹がＧｌｙであり；もしくは、Ｘａａ¹²は、Ａｓｐ、Ａｒｇ、Ｇｌｕ、Ｌｅｕ、Ｇｌｎ、Ｇｌｙからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ¹² が、ＡｓｐまたはＡｒｇであり；もしくは、Ｘａａ¹³は、ＧｌｙおよびＡｌａからなる群より選択されるアミノ酸残基であり；もしくは、Ｘａａ¹⁴は、ＡｓｎまたはＬｙｓからなる群より選択されるアミノ酸残基であり；もしくは、Ｘａａ¹⁵は、Ｇｌｙ、Ａｓｐ、Ｌｅｕ、Ａｒｇ、Ｇｌｕ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、ＶａｌおよびＬｙｓからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ¹⁵が、ＬｅｕまたはＬｙｓであり；もしくは、Ｘａａ¹⁶が、Ｖａｌ、Ｇｌｎ、Ａｓｐ、Ｇｌｙ、Ｉｌｅ、Ａｌａ、ＭｅｔおよびＶａｌからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ¹⁶が、ＶａｌまたはＡｌａであり；もしくは、Ｘａａ¹⁷は、Ｈｉｓ、Ｇｌｕ、Ｐｒｏ、Ａｌａ、ＬｙｓおよびＶａｌからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ¹⁷が、ＧｌｕまたはＰｒｏであり；もしくは、Ｘａａ¹⁸は、Ｖａｌ、Ｔｈｒ、Ａｓｐ、Ｐｒｏ、Ａｒｇ、Ｔｙｒ、Ｇｌｕ、ＡｌａまたはＬｙｓからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ¹⁸が、Ｔｈｒであり；もしくは、Ｘａａ¹⁹は、Ａｒｇ、Ｐｒｏ、Ｉｌｅ、ＬｅｕまたはＴｈｒからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ¹⁹が、Ｐｒｏであり；もしくは、Ｘａａ²⁰は、Ａｒｇ、Ｌｙｓ、Ｇｌｎ、およびＳｅｒからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ²⁰が、ＡｒｇまたはＬｙｓであり；もしくは、Ｘａａ²¹は、Ａｌａ、Ａｓｐ、Ｔｈｒ、またはＧｌｙからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ²¹が、Ａｌａであり；もしくは、Ｘａａ²²は、Ｓｅｒ、Ｉｌｅ、Ｔｙｒ、Ａｓｎ、Ｌｅｕ、Ｖａｌ、ＡｒｇまたはＰｈｅからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ²² が、ＳｅｒまたはＡｒｇであり；もしくは、Ｘａａ²³は、Ｍｅｔ、Ｐｈｅ、Ｉｌｅ、Ｇｌｕ、Ｌｅｕ、ＴｈｒおよびＶａｌからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ²³が、ＰｈｅまたはＩｌｅであり；もしくは、Ｘａａ²⁴は、Ｐｒｏ、Ｌｙｓ、Ｔｈｒ、Ａｓｎ、Ｌｅｕ、Ｇｌｎ、ＳｅｒまたはＩｌｅからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ²⁴が、Ｐｒｏまたはｌｌｅであり；もしくは、Ｘａａ²⁵は、Ａｒｇ、ＬｙｓまたはＬｅｕからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ²⁵が、Ａｒｇであり；もしくは、Ｘａａ²⁶ は、Ｖａｌ、Ｉｌｅ、Ｌｙｓ、Ｌｅｕ、Ａｌａ、Ｐｒｏ、Ｐｈｅ、Ｇｌｎ、ＴｒｐおよびＴｈｒからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ²⁶が、ＶａｌまたはＩｌｅであり；もしくは、Ｘａａ²⁷は、Ｇｌｙ、ＳｅｒおよびＴｈｒからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ²⁷が、Ｇｌｙであり；もしくは、Ｘａａ²⁸は、Ａｓｐ、Ａｒｇ、Ｇｌｕ、Ｌｅｕ、ＧｌｙまたはＧｌｎからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ²⁸が、Ａｒｇであり；もしくは、Ｘａａ²⁹は、ＧｌｙおよびＡｌａからなる群より選択されるアミノ酸残基であり；もしくは、Ｘａａ³⁰は、ＡｓｎまたはＬｙｓからなる群より選択されるアミノ酸残基であり；もしくは、Ｘａａ³¹が、Ｇｌｙ、Ａｓｐ、Ｌｅｕ、Ａｒｇ、Ｇｌｕ、Ｔｈｒ、Ｔｙｒ、ＶａｌおよびＬｙｓからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ³¹が、ＡｒｇまたはＬｙｓであり；もしくは、Ｘａａ³²は、Ｖａｌ、Ｇｌｎ、Ａｓｐ、Ｇｌｙ、Ｉｌｅ、Ａｌａ、ＭｅｔおよびＴｈｒからなる群より選択されるアミノ酸残基で、特に、Ｘａａ³²は、ＧｌｎまたはＡｌａであるものを含む。図面の説明本発明は、以下の図面とともに、その後の詳細な説明および請求の範囲を考慮すれば、よりよく理解されるであろう。図１は、ＥＳＴＲ３５４６４（配列番号：１２）の塩基配列と、アプロチニンにいくらか配列が類似したオープンリーディングフレームを与えるこのＤＮＡ配列の翻訳（配列番号：１３）を示している。翻訳産物は、クニッツ様阻害因子ドメインに特徴的な、６個のシステインのうち５個（太字で示されている）を正しい間隔でもっていた。通常、残りのシステインによって占められている位置（コドン３８）には、代りに、フェニルアラニンが含まれていた（アスタリスクで示されている）。図２は、ＥＳＴＲ７４５９３（配列番号：１４）の塩基配列と、クニッツ型のセリンプロテアーゼ阻害因子ドメインに相同なオープンリーディングフレームを与えるこのＤＮＡ配列の翻訳（配列番号：１５）を示している。翻訳産物は、クニッツ様阻害因子ドメインに特徴的な６個のシステイン（太字で示されている）を正しい間隔でもっていた。しかし、このリーディングフレームの配列には、コドン３と２３に終止コドンが含まれている。図３は、「共通（consensus）」と表示された、ヒト胎盤ビクニンの推定塩基配列（配列番号：９）と、それに一致する、「翻訳された（translated）」と表示された、タンパク質アミノ酸配列（配列番号：１０）を示している。また、ＥＳＴＨ９４５１９（配列番号：１６）、Ｎ３９７９８（配列番号：１７）、Ｒ７４５９３（配列番号：１４）、およびＲ３５４６４（配列番号：１２）の塩基配列が比較のために示されている。共通配列中の下線を施した塩基は、実施例で説明されるＰＣＲプライマーの部位に対応している。翻訳された共通配列の下線を施したアミノ酸は、その同一性が、精製した天然のヒト胎盤ビクニンのアミノ酸の配列決定によって確認された残基である。塩基（ヌクレオチド）とアミノ酸のコードは標準の一文字法であり、塩基コード中の「Ｎ」は、特定されなかった核酸を示し、「＊」は、アミノ酸配列中の終止コドンを示す。図４Ａは、ヒト胎盤ビクニンをコードするＥＳＴもしくはその一部にいくらかの塩基配列相同性を有する一連のＥＳＴのオリジナルの重ね合わせを示したものである。参照のために示されているのは、それぞれ、ＫＩＤ１およびＫＩＤ２と表示されている、ビクニン（７−６４）とビクニン（１０２−１５９）の相対的な位置である。図４Ｂは、別のＥＳＴを組み込んだ、より包括的なＥＳＴの重ね合わせのまとめを示している。上側のＸ軸上の数字は、最も５’側のＥＳＴ配列からの最初の塩基から始まる、塩基対の長さである。各バーの長さは、ギャップを含む各ＥＳＴの塩基対の長さに比例している。ＥＳＴのアクセション番号は、それぞれのＥＳＴバーの右に示されている。図４Ｃは、図４Ｂに概略的に示された、重複するＥＳＴの各々の塩基配列に対応するアラインメントを示している。ビクニンと表示された上側の配列（配列番号：５１）は、各位置で重複するヌクレオチドに由来する共通のオリゴヌクレオチド配列を表している。数字は、ＥＳＴ地図の中の塩基対の位置を表している。太線で下線を施してある、ＥＳＴＲ７４５９３のオリゴヌクレオチド（地図上の位置９９４と１００５）は、別の重複するＥＳＴのいずれにも一致して存在しない、Ｒ７４５９３で見られた塩基の挿入である。図４Ｄは、図４Ｃ（配列番号：４５）に示したビクニンに共通するオリゴヌクレオチド配列をアミノ酸に翻訳したものを示している。図４Ｅは、ＰＣＲに基づく増幅によって、ヒト胎盤ｃＤＮＡライブラリーから採られた胎盤ビクニンをコードする塩基配列（配列番号：４６）と、それに対応するアミノ酸翻訳（配列番号：４７）とを示している。図４Ｆは、ヒト胎盤ラムダｃＤＮＡライブラリーから、コロニーハイブリダイゼーションによって単離された、天然のヒト胎盤ビクニンをコードするクローンの塩基配列（配列番号：４８）と、それに対応するアミノ酸翻訳（配列番号：４９）とを示している。図４Ｇは、ＥＳＴの重ね合わせ（配列番号：４５）、ＰＣＲに基づくクローニング（配列番号：４７）、および、従来のラムダコロニーハイブリダイゼーション（配列番号：４９）によって得られた、胎盤ビクニンに対するオリゴヌクレオチド配列をアミノ酸に翻訳したもののアラインメントを比較している。図５は、スーパーデックス（Superdex）７５ゲル濾過の後の、胎盤組織にからのヒト胎盤ビクニンの精製のグラフを示している。図は、ＯＤ２８０ｎｍで測定した、タンパク質の溶出プロファイル（実線）と、トリプシン阻害アッセイでの溶出したタンパク質の活性（阻害率％が丸で示されている）と、および、カリクレイン阻害アッセイでの溶出したタンパク質の活性（阻害率％が四角で示されている）とを重ね合わせたものである。図６は、Ｃ１８逆相クロマトグラフィーを用いた、胎盤組織からのヒト胎盤ビクニンの精製を表示するグラフを示している。図は、ＯＤ２１５ｎｍで測定した、タンパク質の溶出したプロファイル（実線）と、トリプシン阻害アッセイでの溶出タンパク質の活性（阻害率％が丸で示されている）と、および、カリクレイン阻害アッセイでの溶出したタンパク質の活性（阻害率％が四角で示されている）とを重ね合わせたものである。図７は、高度に精製された胎盤ビクニンのＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルを銀染色したもの（レーン２）と、キロダルトンで示された一連の分子サイズマーカータンパク質（レーン１）とを示す。図８は、胎盤ビクニン（１０２−１５９）の発現を指令するプラスミド（ｐＳ６０４）で安定的に形質転換された酵母菌株ＳＣ１０１（パネル８Ａ）またはＷＨＬ３４１（パネル８Ｂ）を増殖させた、無細胞発酵ブロス中に存在するトリプシン阻害活性の量を示している。図９は、銀染色したＳＤＳ−ＰＡＧＥ（左側パネル）と、ウシのアプロチニンまたは胎盤ビクニン（１０２−１５９）のいずれかの発現を指令するプラスミドで安定的に形質転換した酵母菌株ＳＣ１０１（組換え体２．４と２．５）を増殖させた無細胞発酵ブロスの抗−胎盤ビクニン（１０２−１５９）ｐＡｂによるウエスタンブロット（右側パネル）とを示している。泳動は上から下の方向に行われている。図１０は、高度に精製された胎盤ビクニン（１０２−１５９）のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルを銀染色したもの（レーン２）と、キロダルトンで示された一連の分子サイズマーカータンパク質（レーン１）とを示す写真である。泳動は上から下の方向に行われている。図１１は、胎盤ビクニン（１０２−１５９）（パネル１１Ａ）または胎盤ビクニン（１−２１３）（パネル１１Ｂ）のいずれかをコードしている、³²Ｐ標識化ｃＤＮＡプローブにハイブリダイズした、ヒトのさまざまな組織からのｍＲＮＡのノーザンブロットの結果を示す写真である。泳動は上から下の方向に行われている。各ブロットの右側の数字は、その隣のＲＮＡマーカーのサイズをキロベースで表している。ｍＲＮＡが得られた器官が、ブロットの各レーンの下に記載されている。図１２は、合成的に短くされた胎盤ビクニン（７−６４）（パネルＡ）または１０２−１５９（パネルＢ）のいずれかに対して作製されたウサギの抗血清による、胎盤由来の胎盤ビクニンの免疫ブロットを示している。各パネルでレーン毎の内容は、分子サイズマーカー（レーン１）；ヒトの胎盤から分離された天然のヒト胎盤ビクニン（レーン２）；合成された胎盤ビクニン（７−６４）（レーン３）；および合成された胎盤ビクニン（１０２−１５９）（レーン４）である。トリシン１０−２０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルをブロットして、プロテインＡで精製された一次ポリクローナル抗体（２０ｍｌの０．１ＢＳＡ／トリス緩衝食塩水（ｐＨ７．５）中の８μｇのＩｇＧ）で処理し、その後、アルカリホスファターゼ結合ヤギ抗−ウサギ二次抗体で現像した。泳動は上から下の方向に行われている。図１３は、バキュロウイルス／Ｓｆ９発現系から得た３μｇの高度に精製した胎盤ビクニン（１−１７０）の、クーマシーブルー染色したトリシン１０−２０％ＳＤＳ −ＰＡＧＥゲルを示したものである（レーン２）。レーン１は、分子サイズマーカーを含んでいる。泳動は上から下の方向に行われている。図１４は、Ｓｆ９由来のヒト胎盤ビクニン（１−１７０）（黒丸）、合成した胎盤ビクニン（１０２−１５９）（白丸）、またはアプロチニン（白四角）のいずれかの濃度を増加させたときの、ヒト血漿のトロンボプラスチンが部分的に活性化される時間に対する効果を比較して示したものである。凝血はＣａＣｌ₂によって起こる。タンパク質の濃度が、凝血時間の延長倍数に対して示されている。阻害を受けない凝血時間は３０．８秒であった。発明の詳細な説明本発明は、本明細書においてヒト胎盤ビクニンと名付けられた新たに同定されたヒトのタンパク質を含み、これは、クニッツ型の２つのセリンプロテアーゼ阻害因子ドメインを有している。本発明は、また、手術を受けて．いる患者や重症な外傷を負った患者の、手術時の出血を低減させるのに有用な胎盤ビクニンとその断片を含む薬剤組成物を含む。また、本発明は、手術を受けている患者や重症な外傷を負った患者の手術時の出血を低減させるための方法で、有効な量の、本発明で開示されたヒトセリンプロテアーゼ阻害因子を生物学的に適合性のあるビヒクルに入れて、患者に投与するための方法を提供する。胎盤ビクニン、分離されたドメイン、およびその他の変異体の好ましい応用は、大量の出血の可能性がある外傷や手術によって起こる出血の低減を図るためのものである。これらの方法と組成物により、全供血や血液製剤に対する需要を減少させるか消滅させ、それによって、手術費用だけでなく、感染の危険やその他の有害な副作用を減少させる。このように、この方法は、先天性の、または、その他の手術前に血液凝固因子の欠乏を患っていない通常の患者の出血を減少させるのに有用である。出血の低減は、手術時の出血の低減として、また、手術後の出血の減少として、または、その両方に見られる。好ましい手術上の応用には、胸部および腹部の手術、全部または一部の股関節部置換手術、ならびに、眼の上皮に傷害をもつ患者を治療するための手術に用いることを含むが、これらに限定はされない。好ましい胸部手術には、冠状大動脈のバイパス、心臓および大動脈の動脈瘤の切除、および食道の静脈瘤の手術、および、冠状動脈のバイパス手術が含まれるが、これらに限定はされない。好ましい腹部手術には、肝臓移植、根治的な前立腺の切除、結腸の憩室炎に対する手術、腫瘍の縮小、腹部大動脈の手術と十二指腸潰瘍手術、および、肝臓または脾臓の外傷の修復が含まれるが、これらに限定はされない。外傷を治療するための好ましい利用には、事故現場で、例えば、四肢の喪失や重大な胸部／腹部傷害で、苦しむ重症患者を安定させるための使用が含まれるが、これらに限定はされない。手術によって起こる出血の低減させるために用いる場合には、手術の前、または手術の最中に、胎盤ビクニン、分離されたドメイン、またはその他の変異体を投与することが好ましいが、一方、外傷の場面で用いる場合には、胎盤ビクニンの変異体、分離されたドメイン、またはその他の変異体を、事故現場に向かう救急車に持ち込み、傷害が起きたらできるだけ早く投与するべきである。第ＸII因子（ヘイグマン因子としても知られている）は、循環血の中に、約２９〜４０μｇ／ｍｌで、チモーゲンの形（８０ｋＤ）で見出されるセリンプロテアーゼで（Pixleyら、（1993）Meth．in Enz.，222,51-64参照）、組織および血漿のカリクレインによって活性化される。いったん活性化されると、第ＸII因子は、血液または血漿が「異物」または陰イオンを帯びた表面に接触すると活性化される内因性凝固経路に関与する。いったん活性化されると、次に、第ＸIIａ因子が、第ＸＩ因子、プレカリクレイン、および補体系のＣ１とを含む、数多くその他の血漿プロテアーゼを切断し、活性化させることができる。このように、活性化されたカリクレインが、ブラジキニンを放出するキニノーゲンを切断できるため、第ＸII因子は、低血圧反応の原因に含まれるのかもしれない（Colman、（ 1984）J．Clin．Invest.，73,1249参照）。敗血症は、細菌の内毒素またはリポ多糖（ＬＰＳ）が原因の細菌感染により生じる疾患である。第ＸII因子をＬＰＳと接触させると、第ＸII因子の活性化がもたらされる。敗血症患者は、しばしば、ＬＰＳによる第ＸII因子の活性化が原因かもしれない血管内凝固という病徴を示す。敗血性ショックは、細菌感染によって起き、発熱、全身性血管抵抗の低下、および動脈血圧の低下と関連している。これは、米国の集中治療室での死亡のごく普通の原因であり、敗血性ショックで死ぬ患者の７５％が、持続性の低血圧症に罹っている（ Parilloら、（1989）Ann．Rev．Med.，40,469-485を参照）。成人呼吸窮迫症候群（adult respiratory distress syndrome）は、肺水腫、低酸素血症、および、肺のコンプライアンスの減少などによって特徴づけられる。この病気の原因は、今のところ未知であるが、血液凝固のタンパク質分解性の経路とフィブリン溶解系が関係していると考えられている(Carvalhoら、（1988 ）J．Lab．Clin．Med.，112:270-277を参照）。本発明のタンパク質は、また、第ＸII因子の活性因子であるカリクレインの新規なヒトのクニッツ型阻害因子でもある。したがって、本発明のもう一つの目的は、敗血性ショック、成人呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）、子かん前症、多臓器不全、および汎発性血管内凝固症候群（ＤＩＣ）などの、全身性炎症反応の予防的または治療的な処置をするための方法を提示することである。本発明のペプチドを、予防または治療のために投与することは、これらの炎症状態を緩和し、患者にとっては有益である。プラスミンは、細胞外の基質分解と、基質−金属プロテアーゼ（matrix-metal lo protease、ＭＭＰ）カスケードの活性化において、重要な役割を果たしている。これらのプロテアーゼは、まとまって、血管形成／新生血管形成の過程にある内皮細胞と、転移過程にある癌細胞との両者による移動と組織侵襲を媒介する。新生血管形成は、腫瘍の増殖を支えるのに不可欠であり、転移は、腫瘍が広がるのを媒介する過程であり、患者の予後が非常に悪いことに関連する。いくつかの臨床前の研究によって、アプロチニンに類似したプロテアーゼ特異性をもつクニッツ様セリンプロテアーゼ阻害因子が、癌に対する薬剤として有用なことが示唆された。例えば、アプロチニンは、非常に侵襲性が高い線維肉腫を罹ったハムスターか、または、同じような悪性の強い乳がんを罹ったマウスに投与すると、腫瘍壊死が増加するとともに、腫瘍の増殖と侵襲を抑えた（Latnerら、(1974)，Br．J．Cancer30:60-67；Latner及びTurner、(1976)，Br．J．Cancer 33:535-538）。さらに、ルイス肺癌細胞を接種したオスのＣ５７Ｂ１／６Ｃｒマウスに、接種後１日から１４日目に、腹腔内からアプロチニン２００,０００ＫＩＵを投与すると、肺への転移は５０％抑制されたが、原発性の腫瘍塊には何の効果もなかった（Giraldiら、（1977）Eur．J．Cancer, 13:1321-1323）。同様に、Ｃ５７Ｂ１／６Jマウスにルイス肺癌細胞を接種した１３日から１６日後の毎日、腹腔内から１０,０００ＫＩＵを投与すると、原発性の腫瘍の増殖へは影響することなく、肺への転移を９０％抑制した（Uetsuji ら、(1992)，Jpn．J．Surg．22:429-442）。この同じ実験において、プラスミンかカリクレインを同じ投薬スケジュールで投与すると、肺への転移が増加することが示された。これらの結果から、著者らは、癌患者への手術時のアプロチニン投与は、転移の可能性を低下させるであろうと示唆していると考えた。BlackとS teger（1976，Eur．J．Pharmacol.，38:313-319）は、ラットにおいて、アプロチニンが、移植した齧歯類のマーフィー−シュトラムリンパ肉腫（Murphy-Strum lymphosarcoma）の増殖を阻害することを発見し、この効果が、キニン形成酵素の阻害に関わることを示唆した。３−メチルコラントレン処理によって生じた自発性の扁平上皮細胞癌を一つずつもつメスのｄｄＹマウスに、１０,０００ＫＩＵのアプロチニンを一日２回ずつ毎日、７週間、腹腔内注射したところ、原発性腫瘍の増殖を９０％抑えた。腫瘍の後退が見られた動物もいた。ビヒクルだけで処理した動物は、７週間以内に死んだが、アプロチニンで処理したグループはすべて生き残った。腫瘍増殖の減少は、角質増殖を伴っていた（Ohkoshi、Gann(19 80)，71:246-250）。臨床的には、手術によって治癒したグループの２６人の患者で、アプロチニンを静脈注射により受け入れた患者は、腫瘍の再発なしに、術後２年で７０％の生存率を示したが、同時に偽薬を与えられた２６人の患者グループは、かなりの腫瘍再発率を伴いながら、３８％の生存率しか示さなかった（Freemanら、Br．Soc．Gastroenterol．（1980）supｐＩement A:902）。ある症例研究（Guthrieら、J．Clin．Pract．（1981）35:330-332）において、頸部に進行した癌をもつ患者に、ブロモクリプチンとアプロチニンとを投与したところ、緩解がもたらされた。１カ月に全部で７日間、５００,０００ＫＩＵの腹腔内丸薬を８時間おきに、それと同時に、６時間につき２００,０００ＫＩＵの量で、継続的にアプロチニンを静脈注射して、アプロチニンを投与した。アプロチニンに対するアレルギー反応が発生したために、４か月目の終わりに、処置を止めた。より新しい証拠は、転移に対する、アプロチニンのこれらの効果を標的とするプラスミンの役割を、さらに強調している。これらの現象のメカニズムは、アプロチニンが癌細胞系の侵襲能力を遮断するという事実に関連するかもしれない（Llu G．ら、Int．J．Cancer（1995）60:50 1-506）。さらに、本発明のタンパク質は、プラスミンとカリクレインの強力な阻害因子でもあるため、抗癌剤として使用することも考えられる。例えば、当初の腫瘍侵襲である新生血管形成を制限することにより、原発癌の増殖を阻害するときや、および、組織浸潤を阻害して、転移を遮断するときに使用することが考えられる。この化合物は、腫瘍に局所的に投与してもよいし、また、全身的に投与してもよい。好ましい治療方式において、腫瘍縮小させる手術時に、転移の危険を最小限にするために、このタンパク質を投与してもよい。このような養生法においては、この化合物の血液を節約できるという特質が、より明快な外科分野という観点を提供するときに、さらなる長所となるだろう。もう一つの好ましい投与方式は、ＭＭＰ阻害因子、または化学療法のいずれかと組み合わせた治療方式であろう。さらに好ましい投与方式は、腫瘍細胞、または、それらに関連する間質および脈管床の中で、胎盤ビクニンの選択的な発現を実現するために設計された、局所的に投与された遺伝子治療の方式である。治療の標的となる癌の好ましいタイプは、高い転移能力を示す乳がん、結腸癌、肺癌、前立腺癌、および卵巣癌などの、血管に依存する固形の腫瘍で、肺への輸送による肺癌、肝臓の転移部位に対する肝臓への輸送による結腸癌、または、皮下への輸送による頭や首の癌、またはメラノーマなどの皮膚癌などに、高濃度のタンパク質を局所的に輸送できるものであろう。本発明のタンパク質は、ヒトに由来するものであるため、再使用に際して、Guthrieら、前掲、によって観察されたような、アレルギーやアナフィラキシー反応を伴う可能性はより低いであろう。さらに、本発明のタンパク質を、内因性凝固経路の活性化を伴う血栓塞栓症の合併症を低減するのに使用することが考えられる。これには、末期癌患者における、頻度の高い死亡原因である肺塞栓症を防止することが含まれる（Donati MB.、(1994)，Haemostasis 24:128-131）。脳および脊椎の水腫は、外傷性の脳および脊髄損傷、発作、大脳虚血、大脳およびクモ膜下出血、外科手術（開心手術を含む）、脳炎や髄膜炎などの感染症、ならびに、サルコイドや病巣または散在性腫瘍などの慢性肉芽腫によって起きる合併症であり、これらの病気の後に、再発病率や死亡率のレベルが高いことの原因となっている。ブラジキニンは、血液脳関門を破壊することが、実験的に知られており（Greenwood J.、(1991)，Neuroradiology，33:95-100；Whlttleら、(1 992)，Acta Neurochir.，115:53-59）、頚動脈の中へのブラジキニンの注入は、普通の頚動脈閉塞を起こさせた突発性高血圧症ラット（ＳＨＲ）において、脳水腫を誘発した（Kamiya、(1990)，Nippon Ika Daigaku Zasshi 57:180-191）。ブラジキニンの濃度の上昇が、外傷をつけたラットの脊髄を含むモデルにおいて、外傷の後、細胞外液の中（Xuら、(1991)，J．Neurochem.,57:975-980）、および、脳虚血の結果脳水腫を起こしたラットの血漿と組織の中で（Kamiyaら、(1993) ，Stroke，24:571-575）見られた。ブラジキニンは、高分子量キニノーゲンから、カリタレインを含むセリンプロテアーゼによって放出され（Coleman(1984)J． Clin．Invest.，73:1249）、セリンプロテアーゼ阻害因子のアプロチニンが、ＳＨＲラット（Kamiya、(1990)， Nippon Ika Daigaku Zasshi 57:180-191；Kamiya、(1993)，Stroke，24:571-575 ）と、脳に低温傷害を起こしたウサギ（Uterbergら、(1986),J．Neurosurgery， 64:269-276）とにおいて、脳虚血から起きる脳水腫を大幅に阻害することが分かった。これらの観察は、ブラジキニンなどのキニンが、高分子量キニノーゲンから局部的なタンパク質分解によって放出され、その後、ブラジキニンに誘導された血液脳関門の透過性の上昇が起きることによって、脳水腫が起きることを示している。したがって、胎盤ビクニンと、その断片は、水腫を起こす危険のある患者、特に、死亡や脳損傷の危険性が高い患者における水腫を予防するための薬剤と考えられる。これには、頭部と脊髄の外傷患者、多外傷患者、脳または脊髄およびそれに結合した血管の手術、または、開心手術を含む、一般的な手術を受けている患者、発作、脳またはクモ膜下出血、脳の感染症、脳の慢性肉芽腫、または病巣または散在性腫瘍、および、脳腫瘍、または血液脳関門の崩壊を含む多発性硬化症を患う患者、または、その他、脳または脊髄の炎症作用を患う患者が含まれる。患者は、輸液または丸薬注射で、静脈内または頭蓋内への胎盤ビクニンの投与を受ける。その後１週間から３週間にわたり、胎盤ビクニンの追加用量の投与を受けることもできる。用量レベルは、循環する濃度が、ブラジキニンや、セリンプロテアーゼの作用によって形成される、その他の血管作用性ペプチドの、血漿におけるレベルの上昇を中和するのに必要な濃度を越え、水腫を抑えるのに十分になるよう設計されていよう。このタンパク質は、ヒトに由来するため、この治療過程における反復投与は、このタンパク質に対する免疫反応の発生をもたらさない。胎盤ビクニンとその断片は、単一治療法、または予防法のため、および、神経治療薬や神経保護薬などのその他の薬剤とを組み合わせて用いるためのものと考えられる。新しい証拠（Dela Cadena R．A．ら、（1995）FASEB J.9:446-452）によって、接触活性化経路が、関節炎と貧血の病因に寄与するかもしれないこと、および、カリクレイン阻害因子が、治療上有益であるかもしれないことが示されている。したがって、本発明のプロテアーゼ阻害因子は、ヒトのカリクレインを阻害することができるために、人間の関節炎と貧血の治療薬と考えられる。アプロチニンによる、男性の非インシュリン依存性糖尿病（ＮＩＤＤＭ）の治療により、全グルコース摂取量が有意に向上し、インシュリンの代謝除去率が減少した（Laurentiら、(1996)，Diabetic Medicine 13:642-645）。したがって、本発明に係るヒトのタンパク質は、ＮＩＤＤＭを治療するための薬剤として継続的に使用されることが考えられる。早産の危険がある患者を、尿トリプシン阻害因子で、２週間の間、毎日治療したところ、子宮収縮の再発を有意に低下させた（Kanayamaら、Eur．J．Obstet．Gynecol．& Reprod．BIol．67: 133-138）。したがって、本発明のヒトタンパク質は、早産の防止に用いられることが考えられる。アプロチニンは、ＴＧＦｂによって阻害されるプロセスである、マウスの筋原細胞の培養で分化を刺激することが分かっている（Wells及びStrickl、Developm ent,(1994)，120:3639-3647）。ＴＧＦｂは、限定的なタンパク質分解によって活性化される、不活性なポリペプチド前駆体として存在する。アプロチニンの作用機構には、ＴＧＦｂ前駆体を成熟した活性型にするプロテアーゼを阻害することが含まれると提言されている。ＴＧＦｂは、さまざまな線維症傷害部において上昇制御されることが分かっており、抗線維症治療の標的である可能性があると長い間考えられていた。例えば、肺線維症のラットのモデルにおいて、ＴＧＦｂの濃度は、ブレオマイシンによって誘導される炎症の程度に比例していた。さらに、肺胞マクロファージにおけるプラスミンのレベルは、成熟したＴＧＦｂのレベルと一致しており、プラスミン阻害因子ａ−２−抗プラスミンの添加によって、マクロファージによるＴＧＦｂ前駆体の翻訳後の活性化を排除した（Khalら、 (1996)，Am．J．Respir．Cell Mol．Biol.15:252-259）。このデータは、プラスミンが、肺胞マクロファージによる活性ＴＧＦｂの形成に寄与していることを示唆しており、また、この過程が、ブレオマイシンにより誘導される肺の炎症において、病原としての役割を果たしていることを示唆している。これらの観察を考慮すると、胎盤ビクニンとその断片は、肺、肝臓、腎臓、皮膚（強皮症）の線維症を含む、さまざまな線維症障害に対する治療薬と考えられる。エアロゾル化されたアプロチニンは、致死量のインフルエンザウイルスまたはパラミクソウイルスのいずれかに感染したマウスの５０％以上を防御することが示された（Ovcharenko及びZhirnov、Antiviral Research，(1994)，23:107-118 ）。致命的な出血性気管支肺炎の発生が抑制されること、および、体重当りの摂取量が標準化されることも、エアロゾル化したアプロチニンによる治療で注目された。これらの観察に照らして、胎盤ビクニンとその断片は、さまざまな呼吸器に関連した、インフルエンザ様疾患に対する治療薬と考えられる。本発明のヒト胎盤ビクニン、その単離されたドメイン、およびその他の変異体は、天然のアプロチニン、または別の阻害プロファイル、特に大量の使用を必要とするプロファイルをもつアプロチニンの類似体について示唆されている、医学／治療に応用するために使用することが考えられる。これらには、トリプシン、プラスミン、カリクレイン、エラスターゼ、カテプシンＧ、およびプロテイナーゼ−３などのヒトのセリンプロテアーゼを阻害する能力によって、ヒトのタンパク質の使用が指示される病気が含まれ、急性膵炎（膵臓エラスターゼとトリプシン）、炎症、血小板減少症、血小板の機能の保存、臓器保存、傷害の治癒、ショック肺、内毒素ショックおよび手術後の合併症を含むさまざまな形のショック；線溶冗進性出血などの血液凝固阻害；特に、例えば、膵炎および放射線によって誘発された腸炎などの、臓器傷害の治療と予防のための、急性または慢性の炎症反応、免疫性脈管炎、糸球体腎炎、および関節炎のいくつかのタイプのような、複合体によって媒介される炎症性反応；特にリューマチ性関節炎における膠原病；代謝に関連した沈着物によって起きる関節炎のいくつかのタイプ（例えば、通風）；アテローム性硬化症（血清エラスターゼ）または肺気腫（好中球エラスターゼ）などの、臓器の結合組織部分の弾性成分の変性；成人呼吸窮迫症候群、炎症性腸疾患、および乾癬が含まれるが、これらに限定はされない。主な思いがけない発見は、ビクニン（７−６４）とビクニン（１０２−１５９）をコードする合成ペプチドは、活性のあるプロテアーゼ阻害因子の生物活性をもつ、適正な３次元構造に正しく折り畳まれることである（それぞれ、実施例２と１）。折畳みに当たって、ビクニンのこれらの断片の各々は、各場合における形成と一致して、各断片の６個のシステイン残基の間にできる、３つの鎖内ジスルフィド結合に、６マスユニットの減量が起きた。もう一つの驚くべき発見は、ビクニン（７−６４）、ビクニン（１０２−１５９）、およびビクニン（１−１７０）をコードする合成ペプチドは、プラスミンと、組織カリクレインと血漿カリクレインの両方とを強度に阻害する（それぞれ、実施例４、３および１０）。Tr asylol（登録商標）によるプラスミンとカリクレインの阻害は、Trasylol（登録商標）が、開心手術の最中の血液損失を低減するメカニズムに関係すると考えられている。本発明者らは、思いがけずに、本発明のクニッツドメインの特異性を発見したことから、これらの部位は、かなりの出血がある手術や外傷の過程で血液を節約するための、または、プラスミンおよび／またはカリクレインが有益である、別の症状のための適当な治療薬となる。さらに、本発明者らは、本開示（実施例１０）において、胎盤ビクニン（１− １７０）が第ＸＩａ因子の強力な阻害因子であり、第Ｘａ因子の中程度の阻害因子であることを明らかにした。第ＸＩａ因子は、血液凝固の内因性経路において、不可欠な役割をもち、不活性な第IX因子を、活性のある第IXａ因子に相互転換させる役目を果たしている。このように、胎盤ビクニンは、この内因性経路の２つの主要酵素であるカリクレインと第ＸＩａ因子を阻害する。これらの観察に一致して、本発明者らは、胎盤ビクニン（１−１７０）が、内因性経路によって起こる凝固の速さの測定値である、活性化された部分的なトロンボプラスチン時間の強力な阻害因子であることも示した。一方、本発明者らは、胎盤ビクニン（１ −１７０）が組織因子VIIａ複合体の非常に弱い阻害因子であることを示し、外因性の凝固カスケードの制御において重要ではないことを示唆した。これらの予期できない発見に基づくと、胎盤ビクニンは、凝固の内因性経路の活性化が病気のメカニズムに有意に寄与する病気のための治療薬になると考えられる。このような病気の例には、外傷後ショック、および汎発性血管内凝固症候群が含まれるであろう。本発明のクニッツドメインの重要な利点は、それらがヒトのタンパク質であり、Trasylol（登録商標）よりも正の荷電度が低いこと（実施例１）であるが、これらによって、タンパク質を大量に投与しても腎臓に与える危険が少なくなる。ヒトに由来するため、本発明のタンパク質は、Trasylol（登録商標）を同量投与したときに較べると、望ましくない免疫学的反応の危険をかなり減らして、人間の患者に投与することができる。さらに、ビクニン（１０２−１５９）、ビクニン（７−６４）およびビクニン（１−１７０）は、生体外で、Trasylol（登録商標）よりも有意に強力な、血漿カリクレインの阻害因子である（実施例３、４、および１０）。したがって、ビクニンと、その断片は、生体内で患者の出血を低下させるに当たって、より有効であると期待される。投与されるセリンプロテアーゼ阻害剤の量は、上記の正常な血漿レベルを提供するために十分な量でなければならない。冠状動脈バイパス手術（ＣＡＢＧ）の最中と術後の出血を予防的に減少させるために、能力の差異を考慮に入れながら、Trasylol（登録商標）の代りに、本発明のタンパク質を用いることができる。Trasylol（登録商標）の用法は、Trasylol（登録商標）補遺Ａとして載せてある医学用卓上参考書（Physicians Desk Reference）（1995）に概説されている。簡単にいうと、仰向けに寝せた患者に、麻酔を誘導した後、胸骨切開を行なう前に、施用量のヒト胎盤ビクニン、その単離されたドメイン、またはその他の変異体を、約２０〜３０分かけてゆっくりと投与する。一般的に、全投与量は、患者の体重や、手術時間の長さなどの要素に応じて、約２×１０⁶ ＫＩＵ（カリクレイン阻害単位）と約８×１０⁶ＫＩＵとの間になるよう用いる。好ましい施用量は、全部で、１００万から２００万カリクレイン阻害単位（ＫＩＵ）である。施用量が完全であれば、次に、定常的に輸液投与し、手術が完了し、患者が手術室を出るまで注入を続ける。好ましい定常的な注入量は、１時間当り約２５０,０００から５００,０００ＫＩＵの範囲である。心肺バイパス回路の呼び水の中に、心肺バイパスを作る前に呼び水の一部を置き換えて、ポンプの呼び水となる量を加える。好ましいポンプの呼び水となる量は、全部で、約１００万から２００万ＫＩＵを含む用量である。本発明のタンパク質は、当技術分野において既知の態様に処方された薬剤組成物に用いられる。このような組成物は、活性成分と、想定された投与方式と投薬形態に応じて、薬学上許容される、一つ以上の担体、希釈剤、充填剤、結合剤、およびその他の賦形剤を含む。当業者によって知られている、治療薬としての活性のない無機または有機の担体には、ラクトース、コーンスターチ、またはそれらの派生物、タルク、植物油、蝋、油脂、ポリエチレングリコールなどのポリオール、水、ショ糖、アルコール類、グリセリンなどが含まれるが、これらに限定はされない。さまざまな保存剤、乳化剤、分散剤、着香剤、湿潤剤、抗酸化剤、甘味料、着色料、安定剤、塩類、緩衝液なども、処方剤の安定性を補助したり、活性成分の生物学的有効性を高めるのを補助したり、また、経口投与の場合には、受け入れやすい風味と香りの処方剤をえるための必要に応じて加えることができる。このような組成物で用いられる阻害剤は、もともとの化合物そのものの形状にあるかもしれないし、場合によっては、治療薬として許容される塩の状態になっているかもしれない。本発明のタンパク質は、単独で投与することも、さまざまな組み合わせで投与することも、また、別の治療薬組成物と組み合わせて投与することもできる。このように処方された組成物が、当業者により既知の適当な方式に応じて、阻害剤の投与に必要なものとして選ばれる。非経口投与法には、静脈内（ｉ．ｖ．）、皮下（ｓ．ｃ．）、腹腔内（ｉ．ｐ．）、および筋肉内（ｉ．ｍ．）経路が含まれる。静脈内投与は、薬剤のピークの血漿内濃度を、必要に応じて、急速に制御するために用いることができる。または、静脈内カテーテルによって、望みの速度で、継続的に薬剤を投与することもできる。適当なビヒクルには、注射用の滅菌水、滅菌された緩衝液、または、滅菌した整生理食塩水などの滅菌した、非発熱性の液状希釈剤が含まれる。得られた組成物を、注射または輸液によって、手術前、および／または手術中に患者に投与する。半減期を改善させ、炎症に関係する好中球やマクロファージなどの食作用胞へ薬剤を向かわせるには、リポソーム中の薬剤が捕捉されることで促進することができる。リポソームの外側に、胃腸管や肺のような、臓器／組織特異的な高分子に結合するリガンドを結合させることによって、リポソーム指向性の選択性を向上させることが可能なはずである。あるいは、分解性のミクロスファー（小球体、例えば、ポリ−ＤＬ−ラクチド−コ−グリコリドを含む）の中に薬剤を包み込むか、包み込まないで、または、コラーゲンを含む保護的処方剤による、筋肉内、または皮下への沈着物の注射を用いて、薬剤の放出を長時間維持するようにできる。投薬形態の利便さを向上させるために、パーキュシールシステム（percus eal system）のように、腹腔内に埋め込んだ貯臓器と隔膜を使用することができる。インジェクターペン（例えば、NovoPinまたはQ-pen）、または、針なしジェットインジェクター（例えば、Biojet、Mediject、またはBecton Dickinson）のいずれかを用いて、便利さと患者のコンプライアンスの向上をもたらすこともできる。カニューレによって、望みの部位に輸送する、埋め込み可能なポンプを用いて、正確に制御された放出の実現も可能になる。実施例には、ALZET浸透圧ポンプなど、ALZAから購入可能な、皮下に埋め込まれた浸透圧ポンプが含まれる。セルロース、ポリアクリル酸、またはポリカーボフィルを含む、生物性接着性の粒状の担体（＜２００ｍｍ）に、リン脂質やアシルカルニチンなどの吸着促進剤とともに、薬剤を取り込ませることによって、鼻からの輸送を行なうことができる。市販で利用可能なシステムには、Dan BiosysとScios Novaによって開発されたシステムがある。肺への輸送は、循環血液の中に薬剤を投与する非経口法の代表である。気道下部の上皮は、非常に透過性が高く、分子量が約２０ｋＤａまでの広い範囲のタンパク質を透過させる。マンニトール、スクロース、またはラクトースなどの適当な担体の中に薬剤を含む、ミクロンサイズの乾燥粉末が、Inhale（登録商標）、 Dura（登録商標）、Fison（Spinhaler（登録商標））、およびGlaxo（Rotahaler （登録商標））などの乾燥粉末吸入器、またはAstra（Turbohaler（登録商標））プロペラントによるメーター付き薬剤吸入器を用いて、遠隔の肺胞表面に輸送することができる。リポソーム入り、または、リポソームなしの溶液処方剤が、超音波噴霧器を用いて輸送されうる。消化用プロテアーゼの活性が低い結腸の中に薬剤を放出するように設計された錠剤、コートされた錠剤、糖衣錠、硬いあるいは柔らかいゼラチンカプセル、溶液、乳剤、懸濁剤、または腸溶性のコートされたカプセルの中に薬剤を組み込み、経口輸送を行なうことができる。後者の実施例には、ALZA社のOROS-CT/Osmet （登録商標）システム、および、シエーラードラッグデリバリーシステム（Sche rer Drug Delivery Systems）のPULSINCAP（登録商標）システムが含まれる。別のシステムでは、結腸特異的なバクテリアのアゾレダクターゼによって分解されるアゾ−架橋されたポリマー、または、結腸でのｐＨの上昇によって活性化される、ｐＨ感受性のポリアクリレートリマーが用いられる。上記のシステムは、広い範囲の有効な吸着促進剤とともに用いることができる。直腸への輸送は、座薬の中に薬剤を取り込ませることによって行なうことができる。好ましい医学的な応用において、手術時の出血を低減させるための、本発明の胎盤ビクニン変異体の好ましい投与方法は、非経口的に、好ましくは中枢ラインを通る静脈内経路によるものである。用いられるべき薬剤組成物の量は、受容者と治療を受けている病状とによる。必要量は、当業者に既知のプロトコールによって、不必要な実験をすることなく決定することができる。あるいは、病状を治療するために阻害されなければならないプラスミンまたはカリクレインなどの標的プロテアーゼの量を決定して、計算することができる。本発明において考えられている活性物質は、無毒であると考えられるので、治療には、好ましくは、活性剤としての最適な必要量よりも過剰に投与することが含まれる。さらに、胎盤ビクニン、単離されたドメイン、その他の変異体を、親和性に基づいた分離法を用いて、ヒトを材料として採った同族のプロテアーゼなど天然の物質を単離するために用いてもよいし、また、さらに、組織分布と胎盤ビクニンの有用な機能を探すために用いることができる、プロテアーゼに対する抗体を誘導するために用いることもできる。ヒト配列データの検索機能においてアプロチニンと相同なヒトのタンパク質とはっきりしたわかるものが存在することを、ＮＣＢＩ（メリーランド州、国立生物学情報センター）の発現配列データベース（以後、ｄｂＥＳＴという）に対して、以下に示す独自の配列エントリーの解析行い、導き出した。ＴＢｌａｓｔＮアルゴリズム（ＢＬＡＳＴ、すなわち、基本的な部分配列比較検索ツールは、問い合わせ配列とデータベース中のすべての配列、タンパク質または塩基配列のどのような組み合わせとの間の類似性を検索するために、Altschulら、(1990)J．Mol．Blol．215:403-41 0の方法を用いている）を用いて、ウシのプレプロアプロチニンであるTrasylol（登録商標）の配列に相同性がある塩基配列を得るために、データベースを調べた。この多数のクローンを検索し、アプロチニンと相同な機能を有するヒトのタンパク質に相当するような推定アミノ酸配列をコードする可能性がある２つの特定のクローンに絞り込んだ。選択された塩基配列は、ヒト胎盤ＤＮＡライブラリーから作成されたＲ３５４６４（配列番号：１２）とＲ７４５９３（配列番号：１４）であった。Ｒ３５４６４に関して、最も長いオープンリーディングフレームの翻訳タンパク質配列（配列番号：１３）は、クニッツドメイン共有結合構造を形成するのに重要な６個のシステインのうち１個を失っており、これは、Ｒ３５４６４の塩基配列からは、機能的な阻害因子を得られないことを意味している。同様に、クローンＲ７４５９３の最も長いオープンリーディングフレームの翻訳したもの（配列番号：１５）は、クニッツ様配列コードしている領域の５’側に終止コドンを含んでいた。これは、この配列が、機能的な分泌型クニッツドメインが得られるようには翻訳されないことを意味している。これらの配列の意義自体は不明である。それらは、ａ）偽遺伝子の産物である、ｂ）ｍＲＮＡの非翻訳領域である、または、ｃ）不正確に配列決定された翻訳可能なｍＲＮＡの産物であることを示している可能性がある。ヒトビクニンの発見実際のヒトの配列を特異的に分離し、決定するため、Ｒ３５４６４とＲ７４５９３の中にある、発明者らがクニッツ様配列であると提唱している配列をコードするｃＤＮＡのセグメントの５’と３’に位置する配列にハイブリダイズできるようにｃＤＮＡプライマーを設計した。Ｒ７４５９３のクニッツ様配列をコードする断片を増幅するために用いられたプライマーは、ＣＧＡＡＧＣＴＴＣＡＴＣＴＣＣＧＡＡＧＣＴＣＣＡＧＡＣＧ（ＨｉｎｄIII部位をもつ３’側プライマー、配列番号：３３）と、ＡＧＧＡＴＣＴＡＧＡＣＡＡＴＡＡＴＴＡＣＣＴＧＡＣＣＡＡＧＧＡ（ＸｂａＩ部位をもつ５’側プライマー、配列番号：３４）であった。これらのプライマーは、クローンテック（Clontech）社のヒト胎盤ｃＤＮＡライブラリー（MATCHMAKER、カタログ番号HL4003AB、Clonetech Laboratories、カリフォルニア州パロアルト）からの５００塩基対の産物を、ＰＣＲ（３０サイクル）で増幅するために用いられ、この産物は、ブルースクリプト−ＳＫ⁺（Blues cript-SK⁺）にサブクローニングされて、シーケナーゼ（登録商標）（Sequenase ）キットバージョン２.０を用いて、Ｔ３プライマーによって配列決定された。驚いたことに、本発明者らのプライマーを用いて得られた断片の配列は、ｄｂＥＳＴデータベースに載せられているＲ７４５９３クローンの配列とは異なっていた。特に、本発明者らの新しい配列は、終止コドンと推定されるものに対して３ ’ に挿入されたグアノシン塩基をもう一つもっていたが、クニッツ様配列をコードしているセグメントの５’側には無かった（図３）。付加的なＧの挿入によって、終止コドンがずれて、クニッツ様ドメインに関するリーディングフレームからなくなった（Ｒ７４５９３の修正された配列の１１４番目の塩基対にあるＧ；図３）。その後、Ｒ７４５９３のクニッツ様ペプチド配列に相同な配列をｄｂＥＳＴに照会したところ、ヒトの網膜ライブラリーに由来するＨ９４５１９が得られ、またＮ３９７９８が得られた。これらの配列は、Ｒ３５４６４が特徴的なシステイン６個を全て含んでいる以外、Ｒ３５４６４にコードされているクニッツ様ドメインと殆ど同一のクニッツ様配列を含んでいた。各々の塩基配列を、Ｒ７４５９３（１１４番目の塩基対にＧを挿入して修正したもの）とＲ３５４６４の配列とに重ね合わせたものを用いて、部分的なヒト胎盤ビクニン（配列番号：９；図３）の共通配列を得た。共通配列を翻訳すると、それぞれ、アミノ酸残基１７〜６４と１０２〜１５９の領域にある、２つの完全なクニッツ様ドメイン配列を含む、−１８残基から＋１７９残基の範囲にあるオープンリーディングフレームが得られた（図３；完全な翻訳、配列番号：１０）。Ｒ３５４６４の配列で、ｄｂＥＳＴを検索して、さらに５’側配列を得ようとさらに努力してみた。この検索から得た可能な組み合わせで、付加的な５’配列をもつものを、さらに交替して用いて、ｄｂＥＳＴを再検索した。このように巡回するような方法で、一連の５’側で重複する配列が同定された。これには、クローンＨ１６８６６、Ｔ６６０５８、Ｒ３４８０８、Ｒ８７８９４、Ｎ４０８５１およびＮ３９８７６が含まれる（図４）。これらの配列のいくつかのアラインメントは、共通の翻訳タンパク質配列の合成の開始部位として使われている５’ＡＴＧが存在することを示唆している。この選ばれた情報から、今や、ヒトアプロチニンに相同な機能をもつヒトタンパク質の塩基配列とポリペプチド配列とを、選択的にスクリーニングし、決定することが可能になった。ｄｂＥＳＴを再検索したところ、図４Ｂに概略を示した、多数の新しいＥＳＴが明らかになった。これらの追加的なＥＳＴとの重複によって、図３に示された最初のオリゴヌクレオチド配列の５’端と３’端を超えて延びた、ずっと長い共通のオリゴヌクレオチド配列（図４Ｃ）を構築することが可能になった。実際、全長１．６キロ塩基の新しい配列は、３’ポリ−Ａテールまで延びていた。配列に沿って、各塩基対の位置で重複するＥＳＴの数が増加したために、ＥＳＴＲ７４５９３の３’末端で重複する配列のような、一定の位置での信頼性のレベルが向上した（図３）。この領域にある重複ＥＳＴのいくつかで、Ｒ７４５９３と比較すると、２つの重要な塩基の欠失があるのが確認された（図４Ｃに太線で下線を施して位置を示した、地図上の位置は９９４と１００５）。ビクニンをコードしているフレームの、新しい共通配列の翻訳（図４Ｄ）により、本来の共通配列（配列番号：１）でコードされているた成熟配列（１７９アミノ酸）よりも大きな（２４８アミノ酸）形の胎盤ビクニンが得られ、また、この翻訳は、共通オリゴヌクレオチド配列のフレーム内の終止コドンによって終結していた。サイズの増加は、ＥＳＴＲ７４５９３に固有な２塩基の挿入を除去して生じた３’コーディング領域におけるフレームシフトによるものであった。このフレームシフトによって、最初の共通配列（図３）の終止コドンが、フレームのリードスルーによって、付加的なアミノ酸配列をコードする新しいフレームに移動した。新しい翻訳産物（図４Ｄ）は、最初のタンパク質の共通配列（配列番号：１）と、＋１から＋１７５残基のところ（クニッツドメインをコードしている）で一致していたが、新しくＣ末側に延びて、２４残基の長さの膜貫通ドメインと推定される部位（図４Ｄの下線部）を示し、その後に、短い３１残基の細胞質ドメインをもっていた。開始のメチオニンとシグナルペプチドの付近の正確な配列は、この領域で重複するＥＳＴ配列の間にかなりの不均一性が見られたため、いくらか仮想的なものになった。 Geneworks（登録商標）によるタンパク質配列の解析は、Ｎ−結合グリコシル化の推定共通部位として、３０番目と６７番目のアスパラギン残基が強調された。３０番目のアスパラギンは、ヒト胎盤から分離された完全長のタンパク質のＮ末端の配列決定をしたときには見られなかったので、グリコシル化されていることと矛盾しない。ヒトビクニンのクローニング図３の解析から推定されたヒトビクニンの塩基配列に対応する、ヒトのｍＲＮＡが存在することが、以下のようにして確認された。Ｒ３５４６４のクニッツをコードするｃＤＮＡ配列の５’側にハイブリダイズする核酸プライマー（図３の共通塩基配列の３〜２７塩基目）：ＧＧＴＣＴＡＧＡＧＧＣＣＧＧＧＴＣＧＴＴＴＣＴＣＧＣＣＴＧＧＣＴＧＧＧＡ（ＸｂａＩ部位をもつ、Ｒ３５４６４の配列に由来する５’プライマー；配列番号：３５）と、Ｒ７４５９３のクニッツをコードする配列の３’側にハイブリダイズする核酸プライマー（図３の共通塩基配列の６８０〜７００塩基目）とを用いて、クローンテック社のヒト胎盤ライブラリーから、図３の胎盤ビクニンの配列をコードしているｃＤＮＡの共通塩基配列から予想される長さ（約６７０塩基対）の断片をＰＣＲ増幅した（概略的に図４Ａに示されている）。上述したＡＴＧの推定開始部位から、５’側に１２６塩基対長いＲ８７８９４の配列にハイブリダイズする５’側プライマー（１１０塩基対のところで、概略的に図４Ａに示されている）と、上で使用されたものと同じ、Ｒ７４５９３に対する３’側プライマーとを用いて、ＥＳＴを重ね合わせて示した配列（概略的に図４Ａに示されている）から推定された大きさ（約８７２塩基対）の断片を、クローンテック社のヒト胎盤ライブラリーから増幅することができた。この８７２塩基対の断片の配列決定によって、この断片が、ＥＳＴＲ８７８９４の１１０〜２１８塩基対目に対応するヌクレオチドセグメントを５’末端にもち、またＥＳＴ重ね合わせてまとめた（図３の）配列から推定された、ヒト胎盤ビクニンの共通配列の３１０〜５４２塩基対の配列を３’末端にもつことが示された。この３’ヌクレオチド配列は、胎盤ビクニン（１０２−１５９）によってコードされているクニッツ様ドメインのすべてを含んでいた。タンパク質の細胞外の全領域をコードするｃＤＮＡを得るために、ＥＳＴＲ３４８０８の中の配列にハイブリダイズするよう設計された、次の５’プライマー：ＣＡＣＣＴＧＡＴＣＧＣＧＡＧＡＣＣＣＣ（配列番号：３６）と、ＥＳＴ７４５９３に対する同じ３’側プライマーとを用いて、ヒト胎盤ｃＤＮＡライブラリーからの、約７８０塩基対のｃＤＮＡ産物を増幅した（３０サイクル）。この産物をゲル精製して、ＴＡベクター（InVitrogen社）にクローニングし、以下のプライマーを用いて、ジデオキシ法（Sanger F．ら、（1997）Proc．Natl.Aca d．Sci．(USA)，74:5463-5467）によってＤＮＡ配列決定を行なった：ベクター特異的遺伝子特異的得られたｃＤＮＡ配列を、翻訳産物とともに図４Ｅに示す。塩基配列のレベルでは、この配列は、共通のＥＳＴ配列と、わずかな違いを示しただけであった（図４Ｄ）。この配列の翻訳すると、フレーム内に、開始ＡＴＧ部位、シグナルペプチドと成熟胎盤ビクニン配列、および膜貫通ドメインを含む配列が得られた。ＰＣＲ産物を翻訳した配列は、ＰＣＲ増幅のための３’プライマーを選択した結果、細胞質ドメインから、最後の１２アミノ酸残基が失われていた。この３’ＰＣＲプライマー（Ｒ７４５９３の配列に基づいて設計されている）の選択は、ＰＣＲに由来する配列を翻訳した配列の２１１番目のアミノ酸で、ＳからＦへの人為的な突然変異が導入される原因ともなった。ＰＣＲ断片の翻訳から導き出されたシグナルペプチドは、ＥＳＴ共通配列とは幾分異なっていた。完全長の胎盤ビクニンｃＤＮＡを得るために、ＰＣＲに由来する産物（図４Ｅ）をゲル精製して、ビクニン配列を発現する、ＰＣＲに基づかない、完全長のクローンを単離するために用いた。ＰＣＲで得られたｃＤＮＡ配列を、ハイプライム（High Prime）ベーリンガーマンハイム社（Boehring er Mannheim）によって、³²Ｐ−ＣＴＰで標識し、コロニーハイブリダイゼーション技術を用いて、胎盤ｃＤＮＡライブラリー（Stratagene社、ユニザップλライブラリー（Unizap^TMλ library）を探索した。およそ、２×１０⁶個のファージプラークを３回スクリーニングして、プラーク精製した。制限酵素解析、およびＥＳＴの共通配列の長さの比較（上記参照）によって判定すると、２個のクローンが完全長（〜１．５キロ塩基）だと考えられた。ジデオキシ法によって、これらのクローンの一つを配列決定すると、図４Ｆに示されたオリゴヌクレオチド配列が得られた。この配列からの翻訳産物は、フレーム内に開始メチオニン、シグナルペプチド、および、成熟胎盤ビクニン配列をもつタンパク質を与える。成熟胎盤ビクニン配列は、ＥＳＴ共通配列の翻訳によって得られた成熟タンパク質の配列と同一であったが、シグナルペプチドの配列長と配列とは異なっていた。ＰＣＲに由来する産物とは異なって、コロニーハイブリダイゼーションによって得られたｃＤＮＡは、外部部位の全部、膜貫通ドメイン、細胞質ドメイン、および、フレーム内の終止コドンを含んでいた。実際、このクローンは、ポリ−Ａテールまで延びていた。開始メチオニンの後に、ＰＣＲ由来のクローンにコードされているシグナルペプチドと同一の疎水性シグナルペプチドが続いていた。次に、本発明者らは、Ｓｆ９細胞から採ったビクニン（１−１７０）である胎盤ビクニン（実施例９）の可溶性断片を発現、精製して、それが、機能的なプロテアーゼ阻害因子であることを見つけた（実施例１０）。さらに、本発明者らは、これもまた、活性のあるプロテアーゼ阻害因子である胎盤ビクニンの可溶性断片を、ヒト胎盤から単離した（実施例７）。天然のタンパク質、およびＳｆ９細胞で発現されるタンパク質の形の両者は、Ｎ−末側の配列決定におけるＰＴＨ−アミノ酸の回収に基づけば、おそらく、３０番目の位置にあるアスパラギン残基でグリコシル化されているであろう（実施例７と９）。上記の観察に基づけば、完全長の胎盤ビクニンは、細胞の表面上で膜貫通タンパク質として存在することも、可溶性タンパク質として存在することもできると思われる。クニッツドメインをもつ別の膜貫通タンパク質は、タンパク質分解処理を受け、可溶化した形と膜に結合した形との混合物が得られることが知られている。これらには、ＡＰＰ７５１（Esch F．ら、（1990）Science，248:1122-11 24）およびＡＰＰ７７０（Wang R．ら、（1991）J．Biol．Chem.，266:16960-16 964）と名付けられたアミロイド前駆体タンパク質の２つの形状が含まれる。接触活性化とは、損傷を受けた血管の表面が、凝固カスケードの成分に接触することにより活性化されるプロセスである。血管形成は、内皮の表面で、プラスミンを局所的に活性化することを含むプロセスである。胎盤ビクニンの特異性と細胞表面に定着すると推定される能力とは、膜貫通する胎盤ビクニンの生理学的な機能に接触活性化と血管形成の調節とが含まれていることを示唆する。 Gentics Computer GroupのプログラムであるTFastAを用いて、ＰＩＲ（バージョン４６.０）、PatchＸ（バージョン４６.０）タンパク質データベースと、Gen eSeq（バージョン２０.０）特許の配列タンパク質データベースに対して、胎盤ビクニン（７−６４）、ビクニン（１０２−１５９）、および完全長の胎盤ビクニン（図４Ｆ）のアミノ酸配列を検索した。Gentics Computer GroupのプログラムであるTFastA（Peason及びLipman、1988，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 85:24 44-2448）を用いて、GenBank（１／２６／９６に更新されたバージョン９２.０）、およびＥＭＢＬ（更新されたバージョン４５.０）の塩基配列データベースと、特許の配列の塩基配列データベースであるGeneSeq（バージョン２０.０）の６フレームに対して、これらの同じタンパク質配列を検索した。GenBankおよびＥＭＢＬの、ＥＳＴおよびＳＴＳのサブセットは、このときの検索の中には含まれなかった。これらの検索の結果、最もよくマッチした配列には、本発明者らによる、クローンＲ７４５９３とＲ３５４６４の解析から得られた５８アミノ酸のタンパク質配列に対して、それらの全長にわたってわずかに約５０％が一致した配列が含まれていただけであった。ヒトビクニンの単離上述したように、ビクニン（図３）に共通な配列を翻訳して決めた、ビクニン（７−６４）とビクニン（１０２−１５９）に相当する合成ペプチドは、再び折り畳まれて（それぞれ、実施例２と１）、活性カリクレイン阻害因子タンパク質（それぞれ、実施例４と３）が得られた。本発明者らは、ヒトの組織から採った天然の胎盤ビクニンを単離するための精製スキームを考案するために、この思いがけない特性を利用した。第一ステップとして、カリクレイン−セファロースアフィニティークロマトグラフィーを用いた精製スキームを用いて、高度に精製された天然の強力なカリクレイン阻害因子を単離した。単離された天然のヒトビクニンは、共通塩基配列（図３）の翻訳によって予測された配列のアミノ酸残基＋１から＋５０（実施例７）と同じＮ−末（５０アミノ酸残基を配列決定した）をもっていた。これによって、ヒトの胎盤から単離した、新しい天然のカリクレイン阻害因子の存在が初めて確認された。既知のクニッツ様ドメインを下記に列挙する。標的となるプロテアーゼと接触すると考えられている残基を、特に興味あるものとして強調してある（太字／下線）。これら特定の残基は、下にＸａａと表示して示されているように、特別の参照としてＸａａ^1-16の位置と名付けられている。ここで、配列１）は、ビクニン（７−６４）（配列番号：４）；配列２）は、ビクニン（１０２−１５９）（配列番号：６）；配列３）は、組織因子経路阻害因子前駆体１（配列番号：１８）；配列４）は、組織因子経路阻害因子前駆体１（配列番号：１９）；配列５）は、組織因子経路阻害因子前駆体（配列番号：２０）；配列６）は、組織因子経路阻害因子前駆体２（配列番号：２１）；配列７）は、組織因子経路阻害因子前駆体２（配列番号：２２）；配列８）は、アミロイド前駆体タンパク質相同体（配列番号：２３）；配列９）は、アプロチニン（配列番号：２４）；配列１０）は、インター−α−トリプシン阻害因子前駆体（配列番号：２５）；配列１１）は、インター−α−トリプシン阻害因子前駆体（配列番号：２６）；配列１２）は、アミロイド前駆体タンパク質（配列番号：２７）；配列１３）は、コラーゲンα−３（VI）前駆体（配列番号：２８）；および、配列１４）は、ＨＫＩ−Ｂ９（配列番号：２９）である。胎盤ビクニン（７−６４）と（１０２−１５９）とは、クニッツ型のセリンプロテアーゼ阻害因子のメンバーに見られるように、それぞれ、同じ数（６個）のシステイン残基を同じ間隔でもっているのが見られる。３つの鎖内ジスルフィド結合を形成するための、システイン残基の適正な結合が知られており、以前から知られているクニッツファミリーの全メンバーで不変である（Laskowski，M．ら、1980，Ann．Rev．Biochem．49:593-626）。この既知の結合パターンと、胎盤ビクニン（７−６４）と（１０２−１５９）が折り畳まれると、３つの鎖内ジスルフィド結合（実施例２と１）が形成されるのと一致して、質量の減少を伴いながら、活性のあるプロテアーゼ阻害因子になるという事実に基づくと、胎盤ビクニンのクニッツドメインの中でのジスルフィド結合は、次のシステイン残基の間で起こる可能性が高い：Ｃ１１とＣ６１；Ｃ２０とＣ４４；Ｃ３６とＣ５７；Ｃ１０６とＣ１５６；Ｃ１１５とＣ１３９；Ｃ１３１とＣ１５２。さらに、このジスルフィド結合パターンは、両方のクニッツドメインを含む、より大きな形の胎盤ビクニンの中にある可能性が高いが、これは、このような形状のタンパク質が活性セリンプロテアーゼ阻害因子でもあり、また、天然の胎盤ビクニンのＮ−末端を、５０サイクルの間だけ配列決定すると、システイン残基があると思われる位置で、配列が得られないからである。本発明の胎盤ビクニン、単離されたドメイン、または、その他の変異タンパク質は、Merrifield R.B.とBarany G.によって、Academic Press（1980）Gross E. ら編、第１章、ペプチド、分析、合成、生物学、２で説明されているようなｔ− Ｂｏｃ化学法、または、Carpino L.A.とHan G.Y.、（1970）J．Amer．Chem．Soc .，92:5748-5749で説明されているようなＦ−ｍｏｃ化学法のいずれかを用いる標準的な固相ペプチド合成によって産生され、これは、実施例２に例示されている。または、胎盤ビクニン変異タンパク質をコードしているＤＮＡの発現を用いて、組換え胎盤ビクニン変異タンパク質を産生してもよい。本発明は、また、本発明の胎盤ビクニン変異タンパク質をコードするＤＮＡ構築物に関する。これらの構築物は、Beaucage S.L.とCaruthers M.H.、（1981）T etrahedron Lett．22，pp1859-1862；Matteucci M.D.とCaruthers M.H.、(1981) ，J．Am．Chem．Soc.103，p 3185で説明されている方法などの合成法によって調製してもよく、胎盤ビクニンをコードしているＤＮＡ配列とハイブリダイズするように設計されたｃＤＮＡプローブによって、ゲノミックライブラリーまたはｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングして得られたゲノム、またはｃＤＮＡから調製してもよい。本開示において説明されているアミノ酸の置換や欠失のいずれかをコードしているｃＤＮＡを得るために、一つ以上の部位で、ゲノムまたはｃＤＮＡの配列を改変することができる。本発明は、また、組換え胎盤ビクニン変異体の産生に用いることができる、本発明の胎盤ビクニン、単離されたドメイン、または、その他の変異タンパク質をコードしているＤＮＡ構築物を含む発現ベクターに関する。このｃＤＮＡは、選択した宿主細胞における転写活性を示す、適当なプロモーター配列に結合されており、適当なターミネーターとポリアデニル化シグナルをもっていなければならない。ｃＤＮＡによってコードされるタンパク質が分泌されるよう、５’シグナルペプチドに、胎盤ビクニン変異体をコードするｃＤＮＡを融合させることができる。シグナルペプチドは、宿主生物によって認識されるものにすることができる。哺乳動物の宿主細胞のときには、シグナルペプチドは、また、完全長の胎盤ビクニンに見られる天然のシグナルペプチドでもよい。このようなベクターを、胎盤ビクニン変異体が発現されるよう調製するために用いられる手順は、当技術分野においてよく知られており、例えば、Smbrookら、の分子クローニング：実験マニュアル、Cold Spring Harbor，NeW York(1989)で説明されいる。本発明は、また、組換え胎盤ビクニン変異体の産生に用いることができる、本発明の胎盤ビクニン、単離されたドメイン、または、その他の変異タンパク質をコードしているＤＮＡ構築物を含む形質転換された細胞に関する。胎盤ビクニン変異体の産生に用いることができる、発現ベクターと宿主細胞のさまざまな組み合わせがある。適切な宿主細胞には、バキュロウイルスに感染したＳｆ９昆虫細胞、ＢＨＫ、ＣＨＯ、ＨｅＬａおよびＣ−１２７などの哺乳動物細胞、大腸菌などのバクテリア、サッカロミセス・セルビシェ（Saccharomyces cervisiae）などの酵母が含まれる。胎盤ビクニンの発現を実現させるのに必要な哺乳動物や昆虫または微生物の発現系を用いるための方法は、当技術分野において、よく知られており、例えば、Ausubel F.M.ら、分子生物学の最新プロトコール、John Wil ey & Sons(1995)、第１６章で説明されている。胎盤ビクニン（７−６４）と（１０２−１５９）のような、単独のクニッツ阻害因子ドメインを含む、胎盤ビクニンの断片については、酵母と大腸菌の発現系が好ましく、酵母の系が最も好ましい。典型的には、酵母の発現系は、アプロチニン変異体について、米国特許５ ,１６４,４８２号で説明され、本明細書の実施例５で胎盤ビクニン（１０２−１５９）に関して適用したようにして実施されよう。大腸菌での発現は、米国特許５, ０３２,５７３号で説明されている方法を用いて実施されよう。変異体ビクニン（７−１５９）などのように阻害因子ドメインの両方を含む、より大きな胎盤ビクニン変異体の発現には、哺乳動物の系と酵母の系が最も好ましい。天然のアミノ酸配列を置換したアミノ酸をもつ胎盤ビクニンの変異体をコードするＤＮＡを、Kunkel T.A.ら、（1985）Proc．Natl．Acad．Sci USA 82:488-492の方法を用いて、組換えタンパク質を発現させるために調製することができる。簡単にいうと、変異させようとするＤＮＡを、Ｍ１３などの一本鎖のバクテリオファージの中にクローニングする。変更を加えようとする領域を含み、置換するアミノ酸をコードするオリゴヌクレオチドを、標準的な分子生物学的手法によって、一本鎖ＤＮＡにハイブリダイズさせ、二本鎖にする。次に、このＤＮＡを、適当なバクテリア宿主に形質転換させ、ジオキシヌクレオチド配列決定法によって確認する。そして、適正なＤＮＡを、発現プラスミドにクローニングする。あるいは、標準的なＰＣＲ技術によって、標的ＤＮＡを変異させ、配列決定し、適当な発現プラスミドに挿入してもよい。以下の個別の実施例は、本発明のある局面と好ましい態様を例示するために提示されているものであって、制限はない。実施例１合成胎盤ビクニン（１０２−１５９）の調製材料および使用した方法／試薬蛍光性基質（fluorogenic substrate）Ｔｏｓ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｌｙｓ−ＡＭＣは、Bachem BioScience Inc（King of Prussia，PA）から入手した。ＰＮＧＢ、Ｐｒｏ−Ｐｈｅ−Ａｒｇ−ＡＭＣ、Ａｌａ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｍｅｔ−ＡＭＣ、ウシトリプシン（III型）、ヒト血漿カリクレイン、およびヒトプラスミンは、Sigma（St.Louis，MO）から入手した。組み換えアプロチニン（Trasylol（登録商標））は、Bayer AG（Wuppertal，G ermany）から入手した。予備充填ＧｌｎＷａｎｇ樹脂は、Novabiochem(La Jol la，CA)から入手した。チオアニソール、エタンジチオール、およびｔ−ブチルメチルエーテルは、Aldrich（Milwaukee，WI）から入手した。機能性胎盤ビクリン（７−６４）および（１０２−１５９）の定量化：精製の種々の段階において、再折り畳み試料中に存在するトリプシン阻害活性の量を、ＧＰＫ−ＡＭＣを基質として用いて測定した。ウシトリプシン（２００ｐｍｏｌｅ）を、精製の種々の段階からのビクニン（７−６４）または（１０２ −１５９）を用いて、３７℃において、緩衝液Ａ（５０ｍＭＨｅｐｅｓ、ｐＨ７．５、０．１ＭＮａＣｌ、２ｍＭＣａＣｌ₂、および０．０１％トリトンＸ−１００）中で５分間インキュベートした。ＧＰＫ−ＡＭＣを加え（最終２０μＭ）、Perkin -Elmer LS-50B蛍光計で２分間、蛍光（ｅｘ＝３７０ｎｍ、ｅｍ＝４３２ｎｍ）を測定することによって、生成されるクマリンの量を求めた。試験される試料に関して、それぞれの％阻害を、式１によって計算した［式中、Ｒ₀は、阻害剤の存在下における蛍光の増加率であり、Ｒ₁は添加試料の不存在下において求められた率である］。阻害剤の活性の１単位は、記載された条件を用いたアッセイにおいて、５０％阻害を達成するのに必要とされる量として定義される。％阻害＝１００ｘ[１−Ｒ₀／Ｒ₁］ (１) 合成：胎盤ビクニン（１０２−１５９）を、ApｐＩied Biosystemsモデル４２０Ａペプチド合成機によって、ＮＭＰ−ＨＢＴＵＦｍｏｃ品を用いて合成した。各カップリングおいて、８倍過剰のアミノ酸を用いて、予備充填したＧｌｎ樹脂上でペプチドを合成した。８４．６％トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）、４．４％チオアニソール、２．２％エタンジチオール、４．４％液体のフェノール、および４．４％Ｈ₂Ｏの中で、開裂および脱保護を、室温で２時間行った。粗ペプチドを沈殿させ、遠心分離し、ｔ−ブチルメチルエーテルで２回洗浄した。Dynamax 60A C18逆相ＨＰＬＣカラムによって、ＴＦＡ／アセトニトリル勾配を用いて、ペプチドを精製した。最終調製品（６１．０ｍｇ）は電子噴射質量分析（Electrospray mass spectroscopy ）によって、以下の予測配列に関して正確なアミノ酸組と分子質量とを示した（ＭＨ＋＝６８３６．１；計算値＝６８３５．５）：精製：胎盤ビクニン（１０２−１５９）の再折り畳みを、Tamら（J.Am.Chem.Soc.199 1,113:6657-62）の方法に従って行った。精製ペプチドの一部（１５．２ｍｇ）を、４．０ｍＬの０．１Ｍトリス、ｐＨ６．０、および８Ｍ尿素中に溶解した。２３％ＤＭＳＯ、および０．１Ｍトリス、ｐＨ６．０を含有する溶液の滴下によって、ジスルフィドの酸化を行って、２０％ＤＭＡＳＯ、０．１Ｍトリス、ｐＨ６．０、および１Ｍ尿素中で、０．５ｍｇ／ｍＬペプチドの最終濃度を得た。溶液を２５℃で２４時間攪拌し、その後、５０ｍＭトリス、ｐＨ８．０、および０．１ＭＮａＣｌを含有する緩衝液中で１：１０に稀釈した。製造者の指示に従って、３０ｍｇのウシ膵臓カリクレイン（Bayer AG）と３．５ｍＬのＣＮＢｒ活性化セファロース（Pharmacia）とを共有結合させることによって調製されるカリクレイン親和性カラムを用いて、物質を精製した。再折り畳み物を１ｍＬ／分の流量において親和性カラムに充填し、洗浄液の２８０ｎｍにおける吸収が検出されなくなるまで、５０ｍＭトリス、ｐＨ８．０、および０．１ＭＮａＣｌで洗浄した。カラムを０．２Ｍ酢酸、ｐＨ４．０および１．７の各３容量で溶離した。活性画分を溜め（下記参照）、溶液のｐＨを２．５に調節した。０．１％ＴＦＡ中の２２．５％アセトニトリルで平衡化したVydac Ｃ１８逆相カラム（５ミクロン、０．４６ｘ２５ｃｍ）に、物質を直接充填した。０．１％ＴＦＡ中の２２．５％〜４０％アセトニトリルの直線勾配を１．０ｍＬ／分で４０分間用いて、分離を行った。活性画分を溜め、凍結乾燥し、０．１％ＴＦＡに再溶解し、必要になるまで−２０℃で保管した。結果：前記のように、酸化剤として２０％ＤＭＳＯを用いて、合成胎盤ビクニン（１０２−１５９）を再折り畳みを行い、下記に示される２段階精製プロトコールによって精製して、活性トリプシン阻害剤を得た（下記表１）。ａＡＡＡによって求めたタンパク質。ｂ精製タンパク質に関して求めた吸光係数を用いて、ＯＤ２８０ｎｍによって求めたタンパク質（１．７ｘ１０⁴Ｌｍｏ１^-1ｃｍ^-1）。ｃ１単位は、標準アッセイにおいて５０％のトリプシン活性を阻害するのに必要とされる物質の量として定義される。固定化ウシ膵臓カリクレインカラム上での、折り畳まれた粗再生物質のクロマトグラフィーでは、タンパク質の６．０％を選択的に単離し、トリプシン阻害活性は９７％であった。その後の、Ｃ１８逆相を用いるクロマトグラフィーによって、全回収率７４％で、さらに２倍の精製を得た。ＲＰＨＰＬＣにおいて、還元されたおよび再生された胎盤ビクニン（１０２−１５９）が、溶離時間２６．３分および２０．１分をそれぞれ示した。精製物質の質量分析は、分子質量６８２９．８を示し、出発物質から６質量単位の損失であった。これはペプチド配列から予測される３つのジスルフィドの完全な形成を示す。製造者の指示によって操作されるMultiphor II電気泳動装置（Paramacia）を用い、ｐＩ標準と共にプレキャストAmphorine PAGｐＩat e（登録商標）（ｐＨ３．５〜９．５）を用い、１．５時間集中させて、精製され再生された合成胎盤ビクニン（１０２−１５９）の等電点を求めた。染色後、ゲルの陰極端から種々のタンパク質バンドへの移動距離が測定された。対応するｐＩに対する標準の移動距離のプロットによって生じる標準曲線を用いて、未知のそれぞれのｐＩが求められた。この方法によって、胎盤ビクニン（１０２−１５９）のｐＩが８．３であることが求められ、アミノ酸配列から予測される値と一致した。これは、アプロチニンのｐＩに関して確定されている１０．５の値よりも低い（Testadら、1994，Acta Physiol．Scand．152:33-50）。実施例２合成胎盤ビクニン（７−６４）の調製胎盤ビクニン（１０２−１５９）に関して記載したのと本質的に同様であるが、下記の変更を加えて、胎盤ビクニン（７−６４）を合成し、再生し、精製した：再生の間に、合成ペプチドを、２０％ＤＭＳＯ中の溶液として、２５℃で３０時間攪拌した；Ｃ１８ＲＰ−ＨＰＬＣによる精製を、０．１％ＴＦＡ中の２５％〜４５％アセトニトリルの直線勾配を用いて４０分間（１ｍＬ／分）で行った。最初のＣ１８の実験からの活性画分を、カラムに再充填し、０．１％ＴＦＡ中の２０％〜４０％アセトニトリルの直線勾配（６０分、１ｍＬ／分）で分別した。結果：最終精製還元ペプチドは、ＭＨ＋＝６５６３を示し、下記配列と一致した：再生および精製は、トリプシンの阻害剤として活性な、機能的なクニッツドメインを生じた（下記表２）。精製再生タンパク質は、ＭＨ＋＝６５５８を示し、即ち、還元ペプチドよりも５±１質量単位少なかった。このことは、再生によって、少なくとも１つの適切なジスルフィド結合が形成されたことを示している。胎盤ビクニン（７−６４）のｐＩは、胎盤ビクニン（１０２−１５９）のｐＩを求めるために用いた方法によって求められた。胎盤ビクニン（７−６４）は、予測値（ｐＩ＝７．９）よりもかなり高いｐＩを示した。再生胎盤ビクニン（７ −６４）は、ゲル（ｐＨ９．５）の陰極端に移動し、これらの条件下において正確なｐＩを求めることができなかった。合成胎盤ビクニン（７−６４）の調製の継続合成胎盤ビクニン（７−６４）は、精製および再生の前に、完全な脱保護を受けていない場合があるので、完全に脱保護されたことが確かなタンパク質を用いて、再生を繰り返した。胎盤ビクニン（１０２−１５９）に関して記載したのと本質的に同様であるが、下記の変更を加えて、胎盤ビクニン（７−６４）を合成し、再生し、精製した：再生の間に、合成ペプチド（０．２７ｍｇ／ｍＬ）を、２０％ＤＭＳＯ中の溶液として、２５℃で３０時間攪拌した；Ｃ１８ＲＰ−ＨＰＬＣによる精製を、０．１％ＴＦＡ中の２２．５％〜５０％アセトニトリルの直線勾配を用いて４０分間（１ｍＬ／分）で行った。結果：最終精製還元ペプチドは、ＭＨ＋＝６５６７．５を示し、下記配列と一致した：再生および精製は、トリプシンの阻害剤と同様の活性の、機能性クニッツドメインを生じた（下記表２Ｂ）。精製再生タンパク質は、ＭＨ＋＝６５６１．２を示し、即ち、還元ペプチドよりも６．３質量単位少なかった。このことは、再生によって、予測される３つのジスルフィド結合が形成されたことを示している。胎盤ビクニン（７−６４）のｐＩは、胎盤ビクニン（１０２−１５９）のｐＩを求めるために用いた方法によって求められた。再生胎盤ビクニン（７−６４）は、予測値（ｐＩ＝７．９）よりも僅かに高い８．８５のｐＩを示した。実施例３機能性胎盤ビクニン断片（１０２−１５９）の生体外特異性プロテアーゼ：以前に記載されているように、ｐ−ニトロフェニルｐ’−グアニジノベンゾエートＨＣｌを用いて、活性部位滴定によって、ウシトリプシン、ヒトプラスミン、およびウシ膵臓カリクレインを定量した（Chase,T.およびShaw,E.、（1970 ）Methods Enzmol.,19:20-27）。１：１の複合体を想定して、標準としてウシアプロチニンおよび基質としてＰＦＲ−ＡＭＣを用いて、活性部位滴定によって、ヒトカリクレインを定量した。各酵素に関して使用される条件下において、トリプシンおよびプラスミンでのＧＰＫ−ＡＭＣのＫ_mは、それぞれ２９μＭおよび７２６μＭであり；ヒト血漿カリクレインおよびウシ膵臓カリクレインでのＰＦＲ−ＡＭＣのＫ_mは、それぞれ４５７μＭおよび８１．５μＭであり；エラスターゼでのＡＡＰＲ−ＡＭＣのＫ_mは、１６００μＭであった。以前に記載されているように、ｐ’ニトロフェニルｐ’−グアニジノベンゾエートＨＣｌを用いて、ヒト組織カリクレイン（Bayer,Germany）の定量を行った（Chase,T.およびShaw,E.、(1970)Methods Enzmol.19:20-27）。阻害速度論：胎盤ビクニン（１０２−１５９）またはアプロチニンによるトリプシンの阻害を、合計容量１．０ｍＬの緩衝液Ａ中において、胎盤ビクニン（１０２−１５９）（０〜２ｎＭ）またはアプロチニン（０〜３ｎＭ）を用いて、５０ｐＭトリプシンとインキュベーションすることによって測定した。３７℃で５分後、１５μＬの２ｍＭＧＰＫ−ＡＭＣを加え、蛍光の変化（前述）を監視した。５０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、０．１ＭＮａＣｌ、および０．０２％トリトンｘ−１００を含有する緩衝液中で、プラスミン（５０ｐＭ）と胎盤ビクニン（１０２−１５９）（０〜１０ｎＭ）もしくはアプロチニン（０〜４ｎＭ）を用いて、胎盤ビクニン（１０２−１５９）およびアプロチニンによるヒトプラスミンの阻害を測定した。３７℃で５分間のインキュベーション後、２５μＬの２０ｍＭＧＰＫ−ＡＭＣを加え、蛍光の変化を監視した。５０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、５０ｍＭＮａＣｌ、および０．０２％トリトンｘ−１００中において、カリクレイン（２．５ｎＭ）と胎盤ビクニン（１０２−１５９）（０〜３ｎＭ）もしくはアプロチニン（０〜４５ｎＭ）を用いて、胎盤ビクニン（１０２−１５９）またはアプロチニンによるヒト血漿カリクレインの阻害を測定した。３７℃で５分後、１５μＬの２０ｍＭＰＦＲ−ＡＭＣを加え、蛍光の変化を監視した。胎盤ビクニン（１０２−１５９）およびアプロチニンによるウシ膵臓カリクレインの阻害を、カリクレイン（９２ｐＭ）、胎盤ビクニン（１０２−１５９）（０〜１．６ｎＭ）およびアプロチニン（０〜１４ｐＭ）を用いて、最終基質濃度１００μＭで、同様に測定した。見掛の阻害定数Ｋ_i ^*を、非直線回帰データ分析プログラムエンツフィッターソフトウエア（nonlinear regression data analysis program Enzfitter software）（Biosoft,Cambridge，UK）を用いて求めた。各実験からの動力学データを、密結合阻害剤（tight binding inhibitor）に関する式によって分析した： V_i/V_o=1-(E_o+I_o+K_i ^*-[(E_o+I_o+K_i ^*)²-4E_oI_o]^1/2)/2E_o (2) ［式中、Ｖ_i／Ｖ_oは、酵素活性比（阻害対非阻害の比）であり、Ｅ_oおよびＩ_oは、それぞれ酵素および阻害剤の合計濃度である。Ｋ_i値は、式：Ｋ_i＝Ｋ_i ^*／（１＋［Ｓ₀］／Ｋ_m） (3) によって、基質の効果に関して修正することによって得られた。］（Boudier,C. およびBieth,J.G.、（1989）Biochim Biophys Acta.,995:36-41）。胎盤ビクニン（１０２−１５９）およびアプロチニンによるヒト好中球エラスターゼの阻害のために、０．１Ｍトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）および０．０５％トリトンＸ−１００を含有する緩衝液中において、胎盤ビクニン（１０２−１５９）（１５０ｎＭ）またはアプロチニン（０〜７．５μＭ）を用いて、エラスターゼ（１９ｎＭ）とインキュベーションした。３７％Ｃで５分後、ＡＡＰＭ−ＡＭＣ（５００μＭまたは１０００μ Ｍ）を加え、蛍光を２分間測定した。２つの異なる基質濃度において行ったフォーム１／Ｖ対［Ｉ］のディクソン（Dixon）プロットから、Ｋ_i値を求めた（Dixo nら、1979）。５０ｍＭトリス−ＨＣｌ緩衝液ｐＨ９．０、５０ｍＭＮａＣｌ、および０．１％トリトンｘ−１００を含有する１ｍＬ反応容量中において、胎盤ビクニン（７−６４）（０〜４０ｎＭ）または胎盤ビクニン（１０２−１５９）（０〜２．５ｎＭ）、またはアプロチニン（０〜０．５ｎＭ）を用いて、０．３５ｎＭヒト組織カリクレインとインキュベーションすることによって、アプロチニン、胎盤ビクニン断片（７−６４）または胎盤ビクニン断片（１０２−１５９）による、ヒト組織カリクレインの阻害を測定した。３７℃で５分後、５μＬの２ｍＭＰＦＲ−ＡＭＣを加えて、最終１０μＭとし、蛍光の変化を監視した。用いた条件下における、ヒト組織カリクレインでのＰＦＲ−ＡＭＣのＫ_mは５．７μＭであった。２０ｍＭトリス（ｐＨ７．５）、０．１ＭＮａＣｌ、および０．１％ＢＳＡを含有する緩衝液中において、阻害剤の量を増加ながら、０．８７ｎＭのヒト第Ｘａ因子とインキュベーションすることによって、合成胎盤ビクニン（１０２−１５９）、組み換え胎盤ビクニン、およびアプロチニンによる、ヒト第Ｘａ因子（American Diagnostica,InC,Greenwich，CT）の阻害を測定した。３７℃で５分後、３０μ Ｌの２０ｍＭＬＧＲ−ＡＭＣ（Sigma）を加え、蛍光の変化を監視した。５０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、５０ｍＭＮａＣｌ、および０．１％トリトンｘ−１００を含有する合計容量１ｍＬの緩衝液中において、ウロキナーゼ（２．７ｎｇ）を阻害剤を用いてインキュベーションすることによって、クニッツ阻害剤によるヒトウロキナーゼ（Sigma）の阻害を測定した。３７℃で５分後、３５μＬの２０ｍＭＧＧＲ−ＡＭＣ（sigma）を加え、蛍光の変化を監視した。合計容量１ｍＬ中に、５０ｍＭＨｅｐｅｓｐＨ７．５、１００ｍＭＮａＣｌ、２ｍＭＣａＣｌ₂、０．０１％トリトンｘ−１００、１％ＢＳＡを含有する緩衝液中において、０〜８００ｎＭ胎盤ビクニン（７−６４）、０〜１４０ｎＭ胎盤ビクニン（１０２−１５９）または０〜４０μＭアプロチニンを用いて、第ＸＩａ因子（０．１ｎＭ）とインキュベーションすることによって、第ＸＩａ因子（Enzyme Research Labs,Southbend,INから入手）の阻害を測定した。３７ ℃で５分後、１０μＬの４０ｍＭＢｏｃ−Ｇｌｕ（ＯＢｚｌ）−Ａｌａ−Ａｒｇ−ＡＭＣ（Bachem Biosciences,King of Prussia，PA）を加え、蛍光の変化を監視した。結果：胎盤ビクニン（１０２−１５９）およびアプロチニンの阻害プロフィールの直接比較を、同一条件下において種々のプロテアーゼを用いて、それらの阻害定数を測定することによって行った。Ｋ_i値を下記表３に示す。胎盤ビクニン（１０２−１５９）およびアプロチニンは、ウシトリプシンおよびヒトブラスミンを、用いた条件下において同等程度に阻害する。アプロチニンは、８．５μＭのＫ_iでエラスターゼを阻害した。胎盤ビクニン（１０２−１５９）は３２３ｎＭのｋ_iでエラスターゼを阻害した。ウシ膵臓カリクレインの胎盤ビクニン（１０２−１５９）阻害のＫ_i値は、アプロチニン阻害のＫ_i値よりも２０倍高かった。対照的に、胎盤ビクニン（１０２−１５９）は、アプロチニンよりもヒト血漿カリクレインのより有効な阻害剤であり、５６倍高い親和性で結合する。胎盤ビクニン（１０２−１５９）が、カリクレインの阻害剤としてTrasylol（登録商標）よりも５０倍以上有効であるので、ＫＩＵでの阻害剤の有効患者投与用量を維持するために、Trasylol（登録商標）よりも少ない量のヒト胎盤ビクニンまたはその断片が必要とされる。このことは、薬剤の用量当たりのコストを減少させ、患者への薬剤の再曝露時の有害な腎毒性効果の可能性を減少させる。さらに、このタンパク質はヒト由来であり、従って、雌ウシ由来のアプロチニンよりもヒトにおける免疫原性がより少ないである。この結果として、患者への薬剤の再曝露時の、有害な免疫学的事象の誘発の危険性を、有意に減少させる。実施例４機能性胎盤ビクニン断片（７−６４）の生体外特異性機能性ヒト胎盤ビクニン（７−６４）の生体外特異性を、前記実施例に記載の物質および方法を用いて測定した。結果：下記表は、生体外における種々のセリンプロテアーゼの阻害剤としての、胎盤ビクニン（７−６４）の有効性を示す。胎盤ビクニン（１０２−１５９）またはアプロチニン（Trasylol（登録商標））のどちらかを用いた阻害のスクリーニングに関して得たデータと比較して、データが示されている。結果は、胎盤ビクニン（７−６４）をコードするアミノ酸配列が再生され、少なくとも４つのトリプシン様セリンプロテアーゼに対して有効な、活性セリンプロテアーゼ阻害剤が得られることを示している。下記表４Ｂも、生体外での、種々のセリンプロテーアーゼの阻害剤としての、再生胎盤ビクニン（７−６４）の有効性を示している。再生胎盤ビクニン（７− ６４）は、精製および再生の前に、完全に脱保護されることが確実なタンパク質から調製された。胎盤ピクニン（１０２−１５９）またはアプロチニン（Trasyl ol（登録商標））のどちらかを用いての阻害のスクリーニングに関して得たデータと比較して、データが示されている。驚くべきことに、胎盤ビクニン（７−６４）は、ヒト血漿カリクレインの阻害において、アプロチニンよりも有効であり、プラスミン阻害剤としての有効性において、少なくとも同様であった。これらのデータは、胎盤ビクニン（７−６４）が、生体外アッセイを用いた場合に、アプロチンと少なくとも同様の有効性であること、および生体内においてより良好な、または同様の有効性が期待できることを示している。実施例５酵母における胎盤ビクニン変異体（１０２−１５９）の発現胎盤ビクニン１０２−１５９をコードするＤＮＡ配列（配列番号：６）は、合成オリゴヌクレオチドを使用して得られた。最終ＤＮＡ生産物（５’から３’）は、胎盤ビクニン（１０２−１５９）をコードするフレーム内ｃＤＮＡ配列、続くフレーム内停止コドンに融合された酵母α接合因子プロペプチド配列からの１５のヌクレオチドから成る。酵母発現ベクターｐＳ６０４へのクローニングの際に、ｃＤＮＡが、胎盤ビクニン（１０２−１５９）の５８アミノ酸配列に融合したＮ末端の酵母α接合因子プロペプチドを含んで成る融合タンパク質の発現を導く。α接合因子とクニッツドメインとの間の接合部での、ＫＥＸ−２切断部位における、この融合タンパク質のプロセッシングは、クニッツドメインを、それの自然なＮ末端に生じるようになっている。下記配列を有し、クローニングのためのＨｉｎｄIII部位を有する、５’センスオリゴヌクレオチドを合成した下記配列を有し、クローニングのためのＢａｍＨＩ部位と停止コドンとの両方を有する、３’アンチセンスオリゴヌクレオチドを合成した：１ｍＭＥＤＴＡを含有する１０ｍＭトリス緩衝液ｐＨ８．０に、オリゴヌクレオチドを溶解し、各オリゴ１２μｇを加え、混合し、０．２５ＭＮａＣｌを入れた。ハイブリダイズさせるために、オリゴヌクレオチドを５分間煮沸することによって変性し、６５℃から室温に２時間かけて冷ました。オーバーラップ部をクレノウフラグメントを用いて伸長し、ＨｉｎｄIIIおよびＢａｍＨＩで消化した。得られた消化された二本鎖の断片を、ｐＵＣ１９にクローニングし、配列を確認した。正確な配列の断片を有するクローンを、ＢａｍＨＩ／ＨｉｎｄIIIで消化して、下記の十鎖配列を有するビクニン含有フラグメントを得た：次に、ゲル精製し、ＢａｍＨＩ／ＨｉｎｄIIIで切断されたｐＳ６０４に連結した。連結混合物を、フェノール／クロロホルム中で抽出し、Ｓ−２００ミニスピンカラムで精製した。連結産物を、酵母菌株ＳＣ１０１およびＷＨＬ３４１に形質転換し、ｕｒａ選択プレートにまいた。各菌株からの１２のコロニーを、ｕｒａ欠如（dropout）プレート上で再び画線培養した。単一コロニーをｕｒａＤＯ培地２ｍＬ中に植え込み、３０℃で一晩増殖させた。細胞を２分間、１４０００ｘｇにおいてペレット化し、胎盤ビクニン（１０２−１５９）の含量に関して上澄みを評価した。形質転換酵母における胎盤ビクニン（１０２−１５９）の発現の検出初めに、実施例１（アッセイ容量１ｍＬ）に記載のアッセイ方法によって、トリプシンの生体外活性を阻害する能力に関して、上澄み（５０μＬ／アッセイ）を評価した。未使用の培地のみのサンプル、およびアプロチニンの不活性変異体を発現する酵母クローンとはネガティブ対照としての役割を果たした。天然アプロチニンを発現する酵母クローンは、ポジティブ対照としての役割を果たし、比較のために示される。胎盤ビクニン（１０２−１５９）発現を定量する第二の方法は、合成ペプチドに対するポリクローナル抗体（ｐＡｂ）を使用して、ウエスタンブロットを用いて組み換えペプチドの蓄積を監視した。これらの試験は、ＳＣ１０１菌株由来の組み換え体のみを用いて行われたが、その理由は、これらがＷＨＬ３４１菌株由来の組み換え体よりも高い阻害活性を生じたからである。ｐＡｂを調製するために、２匹の６〜８週のニュージーランドホワイト（New Zealand White）雌ウサギ（Hazelton Research Labs,Denver,Pa）を、０日目に、完全フロイントアジュバント中の、精製された、短くした合成胎盤ビクニン（１０２−１５９）２５０μｇを用いてで免疫化し、続いて、１４、３５および５６および７７日目にそれぞれ、不完全フロイントアジュバント中の同じ抗原１２５μｇを用いて追加免疫した。この実験に使用された抗血清を、確立した方法によって、第三の追加免疫後に集めた。ポリクローナル抗体を、タンパク質Ａ上で抗血清から精製した。酵母ＳＣ１０１の形質転換からのコロニー２．４および２．５（図８）、ならびにアプロチニン対照を、ｕｒａＤＯ培地５０ｍＬ中、３０℃で一晩増殖させた。細胞をペレット化し、Centri prep 3（Amicon,Beverly,MA）濃縮機を用いて、上澄みを１００倍に濃縮した。製造者が提供する手順に従い、各サンプル（３０μＬ）を、１０％〜２０％トリシン緩衝化ゲル（Novex,San Diego,CA）上でＳＤＳ−ＰＡＧＥにかけた。ゲルの複製を、銀染色キット（Integrated Separation Systems,Nantick,MA）で現像するか、またはニトロセルロースに移し、合成ビクニン（１０２−１５９）で誘発された精製ポリクローナル抗体を用いて現像した。アルカリ性ホスファターゼ結合ヤギ抗ウサギ抗体を、製造者の指示（Kirkegaard and Perry,Gaithersburg,MD ）に従い、第二の抗体として使用した。ＳＣ１０１の形質転換菌株からの胎盤ビクニン（１０２−１５９）の精製ＳＣ１０１菌株２．４のＩＬ培養物からの発酵ブロスを遠心分離（４，０００ｇｘ３０分）によって採収し、次に、０．１ＭＮａＣｌ、２ｍＭＣａＣｌ₂ 、および０．０１％（ｖ／ｖ）トリトンＸ−１００を含有する５０ｍＭＨｅｐｅｓ緩衝液ｐＨ７．５で予め平衡化したアンハイドロキモトリプシン−セファロース（Takara Biochemical Inc.,CA）の１．０ｍＬカラムにかけた。Ａ２８０ｎｍが０に低下するまで、１．０ＭＮａＣｌを含有する以外は同じ緩衝液を用いてカラムを洗浄し、その後、０．１Ｍ蟻酸ｐＨ２．５によりカラムを溶離した。溶離画分を集め、０．１％ＴＦＡで予め平衡化したＣ１８カラム（Vydac、５μｍ、４．６ｘ２５０ｍｍ）に入れ、０．１％ＴＦＡ中の２０％〜８０％アセトニトリルの直線勾配で５０分間溶離した。胎盤ビクニン（１０２−１５９）を含有する画分を集め、０．１％ＴＦＡ中の２２．５％〜５０％アセトニトリルの直線勾配を用いて、再度Ｃ１８クロマトグラフを行った。結果：図８は、ＳＣ１０１およびＷＨＬ３４１の各菌株の形質転換から誘導された１２個のコロニーによって阻害されるトリプシン活性％を示す。結果は、トリプシン阻害剤胎盤ビクニン（１０２−１５９）で形質転換された酵母菌株ＳＣ１０１の１２個の全てのコロニーが、トリプシンを阻害する能力を示さなかった両方のネガティブ対照と比較して、有意な量のトリプシン阻害活性を生じる能力を有することを示している。従って、活性は、胎盤ビクニン変異体（１０２−１５９）改質転換細胞中の特異的阻害剤の発現に関係している。酵母ＷＨＬ３４１サンプルは、最少のトリプシン阻害活性を有した。このことは、使用した条件下において、この菌株に観察された遅い増殖に関係していると考えられる。図９は、酵母ＳＣ１０１上澄みの、ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびウエスタン分析を示す。胎盤ビクニン（１０２− １５９）を発現する組み換え酵母２．４および２．５からと、アプロチニンを発現する酵母からとの上澄みの銀染色ＳＤＳ−ＰＡＧＥは、各組み換えクニッツ阻害剤ドメインに関して予測されるサイズに対応する、約６ｋＤａのタンパク質バンドを生じていた。ウエスタン分析は、菌株２．４および２．５によって発現される６ｋＤａバンドが、胎盤ビクニン（１０２−１５９）に誘発されたｐＡｂと反応することを示した。アプロチニン対照の同じ６ｋＤａバンドは同じ抗体と反応せず、胎盤ビクニン変異体（１０２−１５９）に関する抗体の特異性を示していた。胎盤ビクニンＣ末端ドメインの最終調製品は、銀染色ＳＤＳ−ＰＡＧＥによると、非常に純粋であった（図１０）。最終調製品におけるブロス誘導トリプシン阻害活性の全回収率は３１％であった。精製阻害剤のＮ末端配列決定により、タンパク質の４０％が正確にプロセッシングされて、胎盤ビクニン（１０２−１５９）の正確なＮ末端を生じ、一方、この物質の約６０％は酵母α接合因子の一部を含むことが分かった。精製物質は、血漿カリクレインの生体外阻害に関して０．３５ｎＭの見掛Ｋ_iを示す活性なセリンプロテアーゼ阻害剤であった。結論として、発酵ブロス中の胎盤ビクニン（１０２−１５９）に免疫化学的に関係するプロテアーゼ阻害剤活性とタンパク質との両方の蓄積、ならびに、形質転換系の１つからの胎盤ビクニン（１０２−１５９）の単離は、本明細書に記載の組み換え酵母中の胎盤ビクニンの発現を証明するものであり、胎盤ビクニン断片の生産における酵母の有効性を初めて示したものである。胎盤ビクニン１０２−１５９中に含まれるクニッツドメインの発現レベルを増加させるため、ならびに、正確なＮ末端を有するタンパク質の収量を増加させるために、追加の構築体が調製された。胎盤ビクニン１０２−１５９のＮ末端残基（ＹＥＥＹ−−）は、酵母ａ因子プロ領域を酵素的に除去する酵母ＫＥＸ−２プロテアーゼによってほんの僅かに認識されるにすぎない切断部位しか与えないと我々は推測した。従って、ＫＥＸ−２切断部位の周囲のＰ’サブサイトを修飾するために、胎盤ビクニン１０３−１５９（ＥＥＹ．．．のＮ末端）、１０１−１５９（ＮＹＥＥＹ．．．のＮ末端）、および９８−１５９（ＤＭＦＮＹＥＥＹ．．）を生産する酵母発現構築体を調製した。組み換えタンパク質発現のレベルを増加させるために、下記の構築物のいくつかの調製において、哺乳類の優先コドンよりもむしろ酵母の優先コドンを使用した。構築物は、本質的に、胎盤ビクニン１０２−１５９（構成物＃１とする）に関して前記に記載したように調製されたが、下記の変更を加えた：構築体＃２胎盤ビクニン１０３−１５９、酵母のコドン使用Ａ５’センスオリゴヌクレオチドおよび、３’アンチセンスオリゴヌクレオチドを、胎盤ビクニン１０２−１５９の発現のための発現構築体（上記、構築体＃１）の調製に関して記載したように操作した。構築体＃３胎盤ビクニン１０１−１５９、酵母のコドン使用Ａ５’センスオリゴヌクレオチドおよび、構築体＃２に関して使用したのと同じ３’アンチセンスオリゴヌクレオチドを、胎盤ビクニン１０２−１５９の発現のための発現構築体（上記、構築体＃１）の調製に関して記載したように操作した。構築体＃４胎盤ビクニン９８−１５９、酵母のコドン使用Ａ５’センスオリゴヌクレオチドおよび、構築体＃２に関して使用したのと同じ３’アンチセンスオリゴヌクレオチドを、発現構築体（上記、構築体＃１）の調製に関して記載したように操作した。酵母菌株ＳＣ１０１（ＭＡＴα、ｕｒａ３−５２、ｓｕｃ２）を、前記ｃＤＮＡをそれぞれ含有するプラスミドを用いて形質転換し、ヒトのコドンを使用した胎盤ビクニン１０２−１５９の調製に関して前記に記載した方法によって、タンパク質を発現させた。約２５０ｍＬの各酵母培養物を採収し、遠心分離（１５分ｘ３０００ＲＰＭ）からの上澄みを、前記した１ｍＬのカリクレイン−セファロースカラムで個々に精製した。得られたもののトリプシン阻害活性の相対量、回収された精製タンパク質の量、および精製タンパク質のＮ末端配列を求め、下記表７に示す。結果は、Ｃ末端クニッツドメインを有する種々の長さの胎盤ビクニン断片により、機能的な分泌タンパク質を発現する能力が広範囲に変動することを示している。断片１０１−１５９および断片１０３−１５９を発現する構築体は、精製前の上澄み中でほとんど無いかまたは低い酵素活性であり、各精製画分の０．０５ｍＬアリコートのＮ末端配列決定では、阻害剤は検出不可能な量であった。一方、胎盤ビクニン１０２−１５９または９８−１５９のいずれかの発現は、精製前に有意量のプロテアーゼ活性を生じた。しかし、Ｎ末端配列決定では、１０２− １５９の発現から回収される精製タンパク質が、再び非常に不正確にプロセッシングされていることを示し、酵母α接合因子プロ配列内の部位で大部分のプレタンパク質のプロセッシング一致するＮ末端であることを示していた。しかし、胎盤ビクニン９８−１５９の発現から回収される精製タンパク質は、完全に正確な部位においてプロッセシングされて、正確なＮ末端を生じていた。さらに、胎盤ビクニン１０２−１５９の回収と比較して、ほぼ２倍のタンパク質が回収された。従って、胎盤ビクニン９８−１５９は、α接合因子プレープロ配列／Ｓ．セルビシェ（S.cerevisiae）のＫＥＸ−２プロセッシング系による、胎盤ビクニンのＣ末端クニッツドメインの産生のための、好ましい断片長であることを示す。実施例６酵母発現の他の手順Ｒ７４５９３翻訳産物に由来する５８アミノ酸ペプチドは、ＤＮＡ配列決定された後にＴＡベクター（登録商標、Invitrogen,San Diego,CA）にクローニングされたＲ８７８９４−Ｒ７４５９３のＰＣＲ産物から、またはヒト胎盤ｃＤＮＡからのいずれかから増幅されたＰＣＲ体であってもよい。増幅ＤＮＡ産物は、翻訳産物をフレーム内に形成するように、ＹＥＥＹ−−ＣＦＲＱ（５８残基）をコードするＲ７４５９３配列に接合された酵母α接合因子のリーダー配列からの１９のヌクレオチドからなり、α接合因子／クニッツドメイン融合タンパク質を構成する。タンパク質配列は、クニッツドメインをその天然のＮ末端において切り離すｋｅｘ２開裂部も有する。クローニングのためのＨｉｎｄIII部位を有する５’センスオリゴヌクレオチドは、下記の配列を有する：３’アンチセンスオリゴヌクレオチドは、クローニングのためのＢａｍＨＩ部位と、停止コドンとを有し、下記配列を有する：酵母発現ベクターにクローニングされる全２０６ヌクレオチドのｃＤＮＡ配列は、下記配列である。ＰＣＲ増幅した後で、このＤＮＡはＨｉｎｄIII、ＢａｍＨＩで消化され、ＨｉｎｄIIIおよびＢａｍＨＩで消化された酵母発現ベクターｐＭＴ１５にクローニングされる（本明細書の開示の一部を構成する米国特許第５，１６４，４８２号を参照）。得られたプラスミドベクターを仲用して、米国特許第５，１６４，４８２号に開示されている方法によって、酵母菌株ＳＣ１０６を形質転換する。ＵＲＡ３＋酵母形質転換体を単離し、誘導条件下で培養した。前記した生体外アッセイ法を用い、全時間にわたり培養上澄み中に蓄積したトリプシン阻害活性の量により、組み換え胎盤ビクニン変異体の収量を求める。発酵ブロスを９０００ｒｐｍで３０分間遠心分離する。次に、上澄みを、０．４μｍフィルター、次いで０．２μｍフィルターで濾過し、７．５ｍｓの導電率に希釈し、クエン酸でｐＨ３に調節する。次に、５０ｍＭクエン酸ナトリウム、ｐＨ３中の、２００ｍＬのＳ−セファロース・ファーストフロー（S-sepharose fast flow、Pharmacia）上で、サンプルをバッチ吸収し、６０分間攪拌する。続いて、各２Ｌの、５０ｍＭクエン酸ナトリウム、ｐＨ３．０；５０ｍＭトリス−ＨＣｌ、ｐＨ９．０；２０ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ６．０で、ゲルを連続して洗浄する。洗浄したゲルを、適切なカラムに移し、２０ｍＭＨＥＰＥＳｐＨ６．０中の０〜１Ｍ塩化ナトリウムの直線勾配で溶離する。次に、生体外トリプシン阻害活性を有する溶離画分を溜め、ａ）アンハイドロトリプシン固定化カラム（実施例２で述べたもの）でのクロマトグラフィー；ｂ）ウシカリクレイン固定化カラムでのクロマトグラフィー；またはｃ）ゲル濾過を含む通常のクロマトグラフィー段階の組み合わせ、および／またはアニオン交換クロマトグラフィーによって、さらに精製する。実施例７胎盤からの天然ヒト胎盤ビクニンの単離および特性決定ビクニンタンパク質を、凍結された全胎盤（Analytical Biological Services ,Inc.,Wilmington，DE）から精製して見掛上均質にした。胎盤（７４０ｇｍ）を室温に溶かし、０．５ｃｍ〜１．０ｃｍの片に切り、氷の上にのせ、ＰＢＳ緩衝液６００ｍＬで洗浄した。洗液をデカンテーションし、胎盤片２４０ｍＬをワーリングブレンダー（Waring blender）ブレンダーに入れた。０．１Ｍトリス（ｐＨ８．０）および０．１ＭＮａＣｌからなる緩衝液３００ｍＬを加えた後、混合物を高速で２分間混合し、７５０．０ｍＬ遠心分離管にデカンテーションして入れ、氷の上にのせた。全物質が処理されるまで、この手順を繰り返した。合わせたスラリーを、４℃において、４５００ｘｇで６０分間遠心分離にかけた。上澄みをチーズクロスで濾過し、製造者の指示に従って、７０ｍｇのウシ膵臓カリクレイン（Bayer AG）を５．０ｍＬのＣＮＢｒ活性化セファロース（Pharmacia ）に共有結合させることによって作られるカリクレインアフィニティーカラムを用いて胎盤ビクニンを精製した。流量２．０ｍＬ／分において、物質をアフィニティーカラムに入れ、洗液の２８０ｎｍにおける吸収が検出されなくなるまで、０．１Ｍトリス（ｐＨ８．０）、０．１ＭＮａＣｌで洗浄した。０．１Ｍトリス（ｐＨ８．０）、０．５ＭＮａＣｌでカラムをさらに洗浄し、次に、０．２Ｍ酢酸、ｐＨ４．０の３容量を用いて溶離した。カリクレインおよびトリプシン阻害（下記参照）活性を有する画分を集め、凍結し、凍結乾燥した。Beckman System Gold HPLC装置に取付けたスーパーデックス７５１０／３０（Superdex 75 10/30、Pharmacia）カラムを用いるゲル濾過クロマトグラフィーによって、胎盤ビクニンをさらに精製した。簡単にいうと、０．１Ｍトリス、０．１５ＭＮａＣｌ、および０．１％トリトンＸ−１００中で、流量０．５ｍＬ／分で、カラムを平衡化した。凍結乾燥サンプルを、１．０ｍＬの０．１Ｍトリス、ｐＨ８．０中で再構成し、２００μＬアリコートをゲル濾過カラムに注入した。画分を集め（０．５ｍＬ）、トリプシンおよびカリクレイン阻害活性に関して分析した。活性画分を溜め、ＴＦＡを加えることによって、溶液のｐＨを２．５に調節した。０．１％ＴＦＡ中の２０％アセトニトリル中で平衡化されたVydac C18逆相カラム（５ミクロン、０．４６ｘ２５ｃｍ）に、物質を直接入れた。０．１％ＴＦＡ中の２０％アセトニトリルで２０分間初期洗浄した後に、０．１％ＴＦＡ中の２０％〜８０％アセトニトリルの直線勾配を用いて、１．０ｍＬ／分において５０分間分離を行った。画分（１ｍＬ）を集め、トリプシンおよびカリクレイン阻害活性に関して分析した。阻害活性を有する画分を、speed-vac濃縮機（Savant）を用いて濃縮し、Ｎ末端配列分析にかけた。胎盤ビクニンの機能アッセイ：ウシトリプシンおよびヒト血漿カリクレインを阻害する能力を測定することによって、機能性胎盤ビクニンの同定を行った。アッセイ用緩衝液（５０ｍＭＨｅｐｅｓ、ｐＨ７．５、０．１ＭＮａＣｌ、２．０ｍＭＣａＣｌ₂、０．１％トリトンｘ−１００）中、室温において、９６ウェルミクロタイタープレート（Perkin Elemer）で、基質としてＧｌｙ−Ｐｒｏ−Ｌｙｓ−アミノメチルクマリンを用いトリプシン阻害活性を実施した。プレートリーダーを備えたPerkin-E lemer LS-50B蛍光計で、蛍光（ｅｘ＝３７０ｎｍ、ｅｍ＝４３２ｎｍ）を測定することによって、トリプシンにより生成されるクマリンの量を求めた。トリプシン（１００μＬ緩衝液中に２３μｇ）を、試験されるサンプル２０μＬと混合し、２５℃で１０分間インキュベートした。アッセイ用緩衝液中に、５０μＬの基質ＧＰＫ−ＡＭＣ（最終３３μＭ）を加えることによって、反応を開始した。蛍光強度を測定し、各画分の％阻害を、下式によって求めた：％阻害＝１００ｘ［１−Ｆ_o／Ｆ₁］［式中、Ｆ_oは、未知の蛍光であり、Ｆ₁は、トリプシンのみの対照の蛍光である。］。アッセイ用緩衝液（５０ｍＭトリス、ｐＨ８．０、５０ｍＭＮａＣｌ、０．１％トリトンｘ−１００）中の７．０ｎＭカリクレイン、および基質として６６．０μＭのＰｒｏ−Ｐｈｅ−Ａｒｇ−ＡＭＣとを用いて画分のカリクレイン阻害活性を同様に測定した。胎盤ビクニンの生体外特異性の測定天然ヒト胎盤ビクニンの生体外特異性を、前記実施例に記載の物質および方法を用いて測定した。ＧＰＫ−ＡＭＣを基質として用いて、トリプシンの既知濃度に対する活性部位滴定によって、胎盤ビクニンを定量して、未結合トリプシンの画分を監視した。タンパク質の配列決定１ｍＬ画分（C18-29 Delaria）をSpeed Vacで３００ｍＬ容量に希釈して、有機溶媒の量を減少させた。次に、サンプルをHewlett-Packard小型二相反応カラムに入れ、２％トリフルオロ酢酸１ｍＬで洗浄した。エドマン分解を使って、He wlett-Packard Model G1005Aタンパク質配列決定装置で、サンプルの配列決定を行った。バージョン３．０の配列決定法および全試薬は、Hewlett-Packardから入手した。配列を５０サイクルで確認した。結果：連続的なカリクレイン親和性、ゲル濾過、および逆相クロマトグラフィーによって、胎盤ビクニンを見掛上均質に精製した（下記の精製表を参照）。ａ１単位は、標準アッセイにおいて、トリプシン活性の５０％を阻害する量として定義される。大部分のカリクレインおよびトリプシンの阻害活性が、ｐＨ４．０溶離におけるカリクレインアフィニティーカラムから溶離した。続くゲル濾過クロマトグラフィー（図５）は、同一条件下において分子量標準で実施することによって生じる標準曲線から判断して、１０〜４０ｋＤａの分子量範囲で、カリクレインおよびトリプシンの阻害活性のピークを生じた。逆相Ｃ１８クロマトグラフィー（図６）は、約３０％アセトニトリルでの最も有効な溶離によって、阻害活性の４つのピークを生じた。Ｃ１８から溶離する最初のピーク（画分２９）に伴う活性は、胎盤ビクニンの予測されるアミノ酸配列のアミノ酸１で開始するアミノ酸配列を示し（ＡＤＲＥＲ．．．；配列番号：１）、配列分析の５０サイクルに関して予測される配列と同一であった（図３中の下線を引いたアミノ酸）。この配列ストレッチ中のシステイン残基は、酸化されたタンパク質の配列決定に関して予測されるようにサイレントであった。成長胎盤ビクニンのアミノ酸の１１位および２０位におけるシステイン残基は、後に、Ｓ−ピリジルエチル化タンパク質の配列決定から同定され、そのときにＰＴＨ−ピリジルエチル−システインがサイクル１１および２０において回収された。興味深いことに、配列（図３）のアミノ酸残基番号３０におけるアスパラギンはサイレントであり、この位置がグリコシル化されている可能性があることを示した。画分２９は、残基＃１において開始する胎盤ビクニンの配列に対応する１つの主要な配列（サイクル１において２７ｐｍｏｌ）と、残基６において開始する胎盤ビクニン（ＳＩＨＤ．．．）から導かれる副配列（２ｐｍｏｌ）とを生じた。このことは、画分２９中に配列した最終調製品が非常に純粋であり、この画分に関係するプロテアーゼ阻害活性に最も関係していると考えられることを示している（図６）。従って、Ｃ１８クロマトグラフィーからの胎盤ビクニンの最終調製品は、銀染色ＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析に基づいて非常に純粋であり（図７）、この分析において、以下の分子量マーカー：インシュリン（２．９ｋＤａ）；ウシトリブシン阻害剤（５．８ｋＤａ）；リゾチーム（１４．７ｋＤａ）；β− ラクタグロブリン（１８．４ｋＤａ）；カルボニックアンヒドラーゼ（２９ｋＤａ）；およびオボアルブミン（４３ｋＤａ）；で校正された１０％〜２０％アクリルアミドトリシンゲル（Novex,San Diego,CA）上で、タンパク質は２４ｋＤａの見掛Ｍｒで移行している。ＳＤＳ−ＰＡＧＥにおける胎盤ビクニンの前記サイズは、全長コード配列から予測されるサイズと一致する（図４Ｆ）。前記のＮ末端配列決定結果に基づいて予測されるように、精製タンパク質は、胎盤ビクニン（７−６４）に誘発される抗体と反応して、銀染色によってゲル上に検出される、精製調製品で観察されたのと同じＭｒ（図１２Ａ）を有するバンドを生じた（図７）。しかし、同じ調製品を、合成胎盤ビクニン（１０２−１５９）に誘発された抗体と反応させた場合には、全長タンパク質に対応するバンドが観察されなかった。むしろ、約６ｋＤａの合成ビクニン（１０２−１５９）と共に移動する断片が観察された。これらの結果を単純に解釈すると、精製調製品が、精製後に分解して、Ｎ末端ドメインを含んでいるＮ末端断片と、Ｃ末端ドメインを含んでいるＣ末端断片とを生じたということである。胎盤ビクニン（７− ６４）に対する抗血清に対して反応性の断片が、全長タンパク質のＣ末端を欠失していると考えるならば、このサイズ（２４ｋＤａ）は高いグリコシル化状態を示唆している。下記表６は、胎盤ビクニンによる、種々のセリンプロテアーゼの生体外阻害の有効性を示している。データは、アプロチニン（Trasylol（登録商標））を用いて得たデータと比較されている。結果は、天然源（ヒト胎盤）から単離された胎盤ビクニンが、トリプシン様セリンプロテアーゼの有効な阻害剤であることを示している。実施例８種々のヒト臓器および組織中における、胎盤ビクニンの発現パターンヒトの心臓、脳、胎盤、肺、肝臓、骨格筋、腎臓、および膵臓からの、ポリＡ＋ＲＮＡ２μｇを含有する、多種組織ノーザン製品（multiple tissue northern ）を、 Clontechから購入した。２種の異なるｃＤＮＡプローブを使用した：１）胎盤ビクニン（１０２−１５９）をコードしているゲル精製されたｃＤＮＡ；２）ＥｃｏＲＩでの消化によりＴＡクローンから得られ、ゲル精製された、７８０塩基対のＰＣＲ由来ｃＤＮＡ（図４Ｅ）。各プローブを、Boehringer Mannheim Bioche micals(Indiana)から入手できるランダムプライミング標識キットと、³²Ｐ−ｄＣＴＰとを用いて標識し、次に、製造者の仕様に従い多種組織ノーザン製品にハイブリダイズさせるのに使用した。Biomaxフィルムを用い、１８時間の曝露してオートラジオグラフを得、Umaxスキャナーを用いて現像し、Adobe Photoshopを用いてスキャンした。結果：胎盤ビクニン（１０２−１５９）プローブ（図１１Ａ）または胎盤ビクニン（図１１Ｂ）の両方のクニッツドメインを有するより大きいプローブを使用して観察された組織発現のパターンは、予測したものと本質的に同じであった。胎盤ビクニンｍＲＮＡは、膵臓および胎盤において、最も多かった。有意なレベルが、肺、脳、および腎臓においても観察され、一方、心臓および肝臓においては、より低いレベルであった。また、骨格筋においてはｍＲＮＡが検出されなかった。転写サイズは全ての場合において１．９５キロベースであり、ＥＳＴの重ね合わせ（overlay）および前記の全長ｃＤＮＡのクローニングの両方から推定される胎盤ビクニンの予測サイズと近似していた。ｍＲＮＡの広い組織分布は、胎盤ビクニンが広範囲に発現されることを示す。このタンパク質はリーダー配列をも有するので、ヒト免疫系に充分に提示し、自己タンパク質として認識される必要がある。胎盤ビクニンｍＲＮ発現の広い組織分布をさらに証拠づけるのは、胎盤ビクニンに相同のＥＳＴエントリーのいくつかが（図４Ｂ）、ヒト成人および幼児の脳、ヒトの網膜、乳房、卵巣、嗅覚上皮、および胎盤に由来したという事実である。従って、天然ヒトタンパク質のヒト患者への投与は、免疫応答を誘起させないであろうと結論づけられる。興味深いことに、胎盤ビクニンの発現パターンは、ウシの肺および膵臓において高レベルに見い出されるウシアプロチニンの発現パターンを幾分想起させるものである。胎盤ピクニンの発現パターンをさらに解明するために、下記のヒト細胞からの全ＲＮＡのＲＴ−ＰＣＲを決定した：非刺激のヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）、ＨＫ−２（腎臓近位尿細管に由来する系）、ＴＦ−１（赤白血病系）、およびホルボールエステル（ＰＭＡ）刺激のヒト末梢血液白血球。使用したプローブは、で、６００ｂ．ｐの胎盤ビクニンをコードするｃＤＮＡ断片を増幅するようにデザインされている。８００ｂ．ｐ．のアクチン断片を増幅するアクチンプライマーを包含することによって、比較を標準化した。アガロースゲル上において臭化エチジウムで同定される８００ｂ．ｐ．の断片は全てのレーンで等しい強度であったが、６００ｂ．ｐ．の胎盤ビクニン断片は、ＨＵＶＥＣに存在しなかったが、他の各細胞系には有意量で存在した。胎盤ビクニンは、少なくともいくつかの内皮細胞において発現されないが、いくつかの白血球集団では発現されると我々は結論付けた。実施例９バキュロウイルス／Ｓｆ９発現系から高度に精製された胎盤ビクニン（１−１７０）の精製および特性両方のクニッツドメインを有する胎盤ビクニン（胎盤ピクニン１−１７０）の大きいフラグメントを、下記のようにＳｆ９で発現させた。ＰＣＲ（図４Ｅ）によって得られ、ＴＡベクター（前記実施例を参照）中に含まれる胎盤ピクニンｃＤＮＡを、ＨｉｎｄIIIおよびＸｂａｌでの消化によって、５’Ｘｂａｌ部位および３’ＨｉｎｄIII部位が隣接した断片をを得た。この断片をゲル精製し、次に、Ｍ１３ｍｐ１９ベクター（New England Biolabs,Beverly,MA）にクローニングした。生体外突然変異誘発法（Kunkel T.A.，(1985)Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 8 2:488-492）を用いて、５’末端においてＸｂａＩ部位に対して３’にＰｓｔＩ部位を生じさせたが、ＡＴＧ開始部位、天然胎盤ビクニンシグナルペプチドおよび成熟胎盤ビクニンをコードする配列に対して５’には生じさなかった。突然変異誘発に使用されたオリゴヌクレオチドは、下記配列を有した：停止コドン（ＴＡＧ）およびＢＧｌII／ＸｍａＩ部位も、以下のオリゴヌクレオチドを用いて、ｃＤＮＡの３’末端において同様に処理した。停止コドンは、胎盤ビクニンをコードする配列と共にフレーム内にあり、アミノ酸残基１７０におけるリジンの直ぐ後で終結を生じさ、従って、推定膜貫通ドメインを欠失したトランケートされた胎盤ビクニン断片をコードしているものである。ＰｓｔＩおよびＢｇｌIIによる消化からの産物を単離し、両方のクニッツドメインを有するが、推定膜貫通セグメントのＮ末端で直ぐにトランケートされた胎盤ビクニン断片（１−１７０）を発現するためのＢａｃＰａｃ８ベクターにクローニングした。Ｓｆ−９昆虫細胞によるビクニンの発現は、感染後７２時間で培地が採収された場合に、１：１の感染多重度において最適であった。採収後、バキュロウイルス細胞培養上澄み（２Ｌ）を、トリス−ＨＣｌを加えることによってｐＨ８．０に調節した。胎盤からの天然胎盤ビクニンの精製に関して実施例７に記載したように、５ｍＬのウシ膵臓カリクレインアフィニティーカラムを用いるクロマトグラフィーによって、ビクニンを精製した。溶離された物質を、ＴＦＡでｐＨ２．５に調節し、流量１ｍＬ／分で、０．１％ＴＦＡ中１０％アセトニトリル中で平衡化したＣ１８逆相カラム（１．０ｘ２５ｃｍ）でクロマトグラフィーにかけた。０．１％ＴＨＦ中１０％〜８０％アセトニトリルの直線勾配を用い、４０分間でビクニンを溶離した。活性画分を溜め、凍結乾燥し、５０ｍＭＨｅｐｅｓ（ｐＨ７．５）、０．１ＭＮａＣｌ、２ｍＭＣａＣｌ₂、および０．１％トリトンｘ−１００中に再溶解し、必要になるまで−２０ ℃で保管した。組み換えビクニンの濃度はアミノ酸分析によって求めた。結果：下記に示す２段階精製プロトコールを用いて、組み換えビクニンをバキュロウイルス細胞培養上澄みから精製し、活性なトリプシン阻害剤を得た（下記表８参照）。ウシ膵臓カリクレイン固定化アフィニティーカラムでの粗物質のクロマトグラフィーによって、タンパク質の０．０１３％および存在するトリプシン阻害活性の０．６７％を選択的に単離した。出発上澄み中に存在するトリプシン阻害活性の大部分は、固定化カリクレインと結合せず、ビクニンと関係がない（結果を示さず）。続くＣ１８逆相を用いたクロマトグラフィーによって、さらに５倍の精製を０．２％の回収率で得た。最終調製品は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって高純度であり（図１３）、２１．３ｋＤａのＭｒを示し、イムノブロットにおいて、ウサギ抗胎盤ビクニン１０２−１５９に反応した（図示せず）。Ｎ末端配列決定（２６サイクル）によって、残基＋１（ＡＤＲＥＰ．．．）で開始する成熟胎盤ビクニンの予測される配列（図４Ｆ）が得られ、シグナルペプチドがＳｆ９細胞において正確に処理されたことを示している。Ｓｆ９細胞からの精製胎盤ビクニン（１００ｐｍｏｌ）を、ピリジルエチルアルキル化し、ＣＮＢｒ化し、次に、得られた断片を分別することなしに配列決定を行った。２０サイクルの配列決定によって、下記のＮ末端を得た：従って、予測される４つの断片にそれぞれ対応するＮ末端が回収された。このことは、Ｓｆ９発現タンパク質が、胎盤ビクニン（１−１７０）の全エクトドメイン配列を有することを確認するものである。未消化の胎盤ビクニン（１−１７０）の追加サンプルのＮ末端配列決定（５０サイクル）は、サイクル３０においてＰＴＨ−アミノ酸（ＰＴＨ−アスパラギンが予測された）が欠失したアミノ酸配列を生じた。同様の結果が、ヒト胎盤からの天然タンパク質の配列決定時に得られ（実施例７）、また、このアスパラギン残基を囲むアミノ酸配列から予測して、グリコシル化されているこの残基と一致した。さらに、この領域内のシステイン残基も、ジスルフィド結合へのそれらの参加と一致してサイレントであった。実施例１０Ｓｆ９細胞由来の精製胎盤ビクニンの阻害特異性実施例３、４、および７に記載の物質および方法を使って、組み換えビクニンの生体外特異性を測定した。さらに、ビクニンによるヒト組織カリクレインの阻害を、５０ｍＭトリス（ｐＨ９．０）、５０ｍＭＮａＣｌ、および０．０１％トリトンｘ−１００を含有する緩衝液中で、０．３５ｎＭのヒト組織カリクレイン組み換えビクニンをインキュベーションすることによって測定した。５分後、３７℃において、５μＬの２ｍＭＰＥＲ−ＡＭＣを加え、蛍光の変化を監視した。組織プラスミノーゲン活性化因子（ｔｐＡ）の阻害も、下記のように測定した：ｔＰＡ（Sigma Chemical Co，St Louis，MOから入手されるヒトメラノーマ細胞培養物からの一本鎖形）を、１５０ｍＭＮａＣｌおよび０．０２％アジ化ナトリウムを含有する２０ｍＭトリス緩衝液ｐＨ７．２中において、室温で２時間、阻害剤と予備インキュベーションした。続いて、下記の開始成分濃度：０．００４％（ｖ／ｖ）トリトンｘ−１００および０．００５％（ｖ／ｖ）アジ化ナトリウムを含有する２８ｍＭトリス緩衝液ｐＨ８．５中の、ｔＰＡ（７．５ｎＭ）、阻害剤０〜６．６μＭ、ＤＩｌｅ−Ｌｐｒｏ−Ｌａｒｇ−ｐニトロアニリン（１ｍＭ）、を含む反応系に移すことによって反応を開始した。ｐ−ニトロアニリンの形成を、３７℃で２時間のインキュベーション後に測定されたＡ４０５ｎｍから求めた。下記表は、種々のセリンプロテアーゼの阻害剤としての組み換えビクニンの生体外での有効性を示している。組み換えビクニンまたはアプロチニンのどちらかを用いての阻害のスクリーニングに関して得たデータと比較して、データが示されている。結果は、組み換えビクニンが昆虫細胞に発現されて、少なくとも５種類のセリンプロテアーゼ阻害剤に対して有効な、活性プロテアーゼ阻害剤を生じ得ることを示している。組み換えビクニンは、ヒト血漿カリクレイン、トリプシン、およびプラスミンに対して、アプロチニンよりも有効であった。驚くべきことに、組み換えビクニンは、試験された全ての酵素に対して、合成的に誘導されたビクニンフラグメント（７−６４）および（１０２−１５９）よりも有効であった。これらのデータは、生体外アッセィを用いて、組み換えビクニンがアプロチニンよりも有効であること、および、より良好な生体内有効性が期待できることを示している。特定のプロテアーゼに対する有効性の測定に加えて、活性化部分トロンボプラスチン時間（activated partial thromboplastin time、ＡＰＴＴ）を延長する胎盤ビクニン（１−１７０）の能力を、評価し、アプロチニンに関係する活性と比較した。１５０ｍＭＮａＣｌおよび０．０２％アジ化ナトリウムを含有する２０ｍＭトリス緩衝液ｐＨ７．２中で、阻害剤を稀釈し、ＭＬＡ Electra（登録商標）800 Automatic Coagulation Timer coagulometer（Medical Laboratory Automation,Inc.,Pleasantville,N.Y.）内のキュベットに入れた（０．１ｍＬ）。装置を、３００秒の活性化時間でのＡＰＴＴモード、および繰り返し（dupl icate）モードにセットした。０．１ｍＬの血漿（Specialty Assayed Reference Plasma lot 1-6-5185,Helena Laboratories,Beaumont,TX）の添加に続いて、ＡＰＴＴ試薬（Automated APTT−lot 102345,Organon Teknika Corp.,Durhan,NC）および２５ｍＭＣａＣｌ₂を、自動的に供給して、血液凝固を開始させ、凝固時間を自動的に監視した。結果（図１４）は、凝固時間を２倍にするには、約２μＭの最終アプロチニンを必要とするが、Ｓｆ９からの胎盤ビクニンは０．３μＭのみでよいことを示している。これらのデータは、胎盤ビクニンが有効な抗凝固物質であり、凝固の内因性経路の病理学的活性化を含む病気のための薬剤として有用であることを示している。本発明のいくつかの実施態様を、例示を目的として詳細に説明したが、本明細書に記載されている方法および製剤が、本発明の意図および範囲を逸脱することなく変更できることは当業者に明らかである。従って、本発明は、請求の範囲による以外は制限されるものではない。

【手続補正書】特許法第１８４条の８第１項【提出日】平成１０年６月８日（１９９８．６．８）【補正内容】請求の範囲６．セリンプロテアーゼと、請求項１または２に記載の少なくとも１つのタンパク質の有効量とを接触させることを備えるセリンプロテアーゼ活性を阻害する方法。７．脳水腫、脊髄水腫、多発性硬化症、虚血、手術時の血液損失、敗血症、敗血症性ショック、繊維症、病理学的血液凝固または凝血に関連する疾病、多外傷、卒中、大脳またはクモ膜下出血、脳の炎症、脊髄の炎症、大脳感染、大脳肉芽種症、脊髄感染、脊髄肉芽種症、心臓切開手術、胃ガン、頸部ガン、または転移予防の状態を処置する方法であって、請求項１または２に記載のタンパク質の有効量を、そのような状態を有する患者に投与することを備える方法。８．前記状態が、脳水腫、脊髄水腫、多発性硬化症、虚血、手術時の血液損失、敗血症、敗血症性ショック、繊維症、病理学的血液凝固または凝血に関連する疾病、卒中、大脳またはクモ膜下出血、脳の炎症、脊髄の炎症、大脳感染、大脳肉芽種症、脊髄感染、脊髄肉芽種症、または心臓切開手術である請求項７に記載の方法。９．前記状態が、胃ガン、頸部ガン、または転移予防である請求項７に記載の方法。１０．脳水腫、脊髄水腫、多発性硬化症、虚血、手術時の血液損失、敗血症、敗血症性ショック、繊維症、病理学的血液凝固または凝塊に関連する疾病、卒中、大脳またはクモ膜下出血、脳の炎症、脊髄の炎症、大脳感染、大脳肉芽種症、脊髄感染、脊髄肉芽種症、心臓切開手術、胃ガン、頸部ガン、または転移予防の処置のための薬剤を調製する方法であって、請求項１または２に記載のタンパク質の有効量と、製薬上好ましい担体または賦形剤とを組み合わせること備える方法。１１．組み換えＤＮＡ技術を用いて、請求項１または２に記載のタンパク質を調製する方法。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ａ６１Ｐ 9/10 Ａ６１Ｐ 29/00 25/00 31/04 29/00 35/00 31/04 35/04 35/00 43/00 １０５ 35/04 １１１ 43/00 １０５Ｃ０７Ｋ 14/81 １１１Ｃ０７Ｋ 14/81 (31)優先権主張番号０８／７２５，２５１ (32)優先日平成８年10月４日(1996．10．4) (33)優先権主張国米国（ＵＳ） (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者デラリア、キャスリーンエイ. アメリカ合衆国 06516 コネティカット州ウエストヘイヴンウエストウォークストリート 180 (72)発明者マーラー、クリストファーダブリュー. アメリカ合衆国 06524 コネティカット州ベサニーロバートスンドライブ 11 (72)発明者ミューラー、ダニエルケイ. アメリカ合衆国 06477 コネティカット州オレンジヘムロックヒルロード 253

Claims

【特許請求の範囲】１．下記アミノ酸配列の１つをそれぞれ含む物質からなるタンパク質の群から選択され、セリンプロテアーゼ阻害活性を有する実質的に精製されたタンパク質。上記配列中、前記配列のアミノ酸は、シグナルペプチドの除去によって得られるＮ末端残基が残基１として指定されており、図４Ｆに示されている天然ヒト胎盤ビクニンのアミノ酸配列に従って番号付けされている。２．前記タンパク質が、グリコシル化されるか、または少なくとも１つの鎖内システイン−システインジスルフィド結合を有するか、あるいは、グリコシル化され、かつ少なくとも１つの鎖内システイン−システインジスルフィド結合を有するかのいずれかである請求項１に記載のタンパク質。３．請求項１または２に記載のタンパク質と、医薬的に許容される担体とを含むセリンプロテアーゼ活性を阻害する医薬組成物。４．請求項１に記載のタンパク質をコードする単離された核酸配列。５．請求項１または２に記載のタンパク質を、コードし、発現することができる核酸配列を有する自己複製タンパク質発現ベクター。６．セリンプロテアーゼと、請求項１または２に記載の少なくとも１つのタンパク質の有効量とを接触させることを備えるセリンプロテアーゼ活性を阻害する方法。７．脳水腫、脊髄水腫、多発性硬化症、虚血、手術時の血液損失、敗血症、敗血症性ショック、繊維症、病理学的血液凝固または凝血に関連する疾病、多外傷、卒中、大脳またはクモ膜下出血、脳の炎症、脊髄の炎症、大脳感染、大脳肉芽種症、脊髄感染、脊髄肉芽種症、心臓切開手術、胃ガン、頸部ガン、または転移予防の状態を処置する方法であって、請求項１または２に記載のタンパク質の有効量を、そのような状態を有する患者に投与することを備える方法。８．前記状態が、脳水腫、脊髄水腫、多発性硬化症、虚血、手術時の血液損失、敗血症、敗血症性ショック、繊維症、病理学的血液凝固または凝血に関連する疾病、卒中、大脳またはクモ膜下出血、脳の炎症、脊髄の炎症、大脳感染、大脳肉芽種症、脊髄感染、脊髄肉芽種症、または心臓切開手術である請求項７に記載の方法。９．前記状態が、胃ガン、頸部ガン、または転移予防である請求項７に記載の方法。１０．脳水腫、脊髄水腫、多発性硬化症、虚血、手術時の血液損失、敗血症、敗血症性ショック、繊維症、病理学的血液凝固または凝塊に関連する疾病、卒中、大脳またはクモ膜下出血、脳の炎症、脊髄の炎症、大脳感染、大脳肉芽種症、脊髄感染、脊髄肉芽種症、心臓切開手術、胃ガン、頸部ガン、または転移予防の処置のための薬剤を調製する方法。１１．組み換えＤＮＡ技術を用いて、請求項１または２に記載のタンパク質を調製する方法。