JPH0495095A - 新規抗生物質nk130162、その製法及びその用途 - Google Patents
新規抗生物質nk130162、その製法及びその用途Info
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- NWONKYPBYAMBJT-UHFFFAOYSA-L zinc sulfate Chemical compound [Zn+2].[O-]S([O-])(=O)=O NWONKYPBYAMBJT-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229910000368 zinc sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 229960001763 zinc sulfate Drugs 0.000 description 1
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Heterocyclic Carbon Compounds Containing A Hetero Ring Having Oxygen Or Sulfur (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は新規抗生物質NK130162、その製法及び
その用途に関する。
その用途に関する。
本発明の化合物は抗腫瘍、血管新生抑制、殺虫および抗
コクシジウム作用を有し、悪性腫瘍に対する化学療法剤
として、あるいは血管の異常増殖によって発症する疾患
、例えばり=ウマチ性関節炎、糖尿病性網膜症、未熟児
網膜症、老人性黄斑部変性、創傷治癒時の過剰搬痕形成
の予防または治療薬として又、殺虫剤、抗コクシジウム
剤として期待される。
コクシジウム作用を有し、悪性腫瘍に対する化学療法剤
として、あるいは血管の異常増殖によって発症する疾患
、例えばり=ウマチ性関節炎、糖尿病性網膜症、未熟児
網膜症、老人性黄斑部変性、創傷治癒時の過剰搬痕形成
の予防または治療薬として又、殺虫剤、抗コクシジウム
剤として期待される。
従来、抗腫瘍剤としては、シスプラチン、フレオマイシ
ン、アドリアマイシン等々が知られている。また血管新
生抑制作用を有する物質として、例えばイノドメタゾノ
、メトロキンプロゲステロン、コーチシンとヘパリ/の
併用、牛軟骨、大動脈壁の粗抽出液等が知られている。
ン、アドリアマイシン等々が知られている。また血管新
生抑制作用を有する物質として、例えばイノドメタゾノ
、メトロキンプロゲステロン、コーチシンとヘパリ/の
併用、牛軟骨、大動脈壁の粗抽出液等が知られている。
しかし、従来の抗生物質や、抗腫瘍剤はlit性細胞の
出現のため、常(て新しいものが要望されており、又血
管新生抑制剤に至っては、医薬品として実用化されてい
るものは無い。そのため、抗腫瘍作用、血管新生抑制作
用、殺虫作用及び抗コクシジウム作用を有する新規物質
の創生が期待されている。
出現のため、常(て新しいものが要望されており、又血
管新生抑制剤に至っては、医薬品として実用化されてい
るものは無い。そのため、抗腫瘍作用、血管新生抑制作
用、殺虫作用及び抗コクシジウム作用を有する新規物質
の創生が期待されている。
そこで、本発明者らは、微生物の代謝産物について種々
検索した結果、ストレプトミセス(Streptomy
ces )属に属する一菌株が抗腫瘍、血管新生抑制、
殺虫及び抗コクシジウム作用を有する式(1)で示され
る新規物質NK130162を産出することを見い出し
た。
検索した結果、ストレプトミセス(Streptomy
ces )属に属する一菌株が抗腫瘍、血管新生抑制、
殺虫及び抗コクシジウム作用を有する式(1)で示され
る新規物質NK130162を産出することを見い出し
た。
本発明は上記知見に基づいて完成されたものである。
上記新規抗生物質N K 130162は、ストレプト
ミセス属に属するN K 130162生産菌を培養し
、抗生物質N K 130162を生成蓄積せしめこの
培養物より抗生物質N K 130162を採取するこ
と(こより得られる。抗生物質N K 130162の
生産菌の代表的なものとして、昭和61年8月千葉県船
橋市内の土壌より分離したストレプトミセス・ボトロペ
ンシスN K 86−0279(微工研条寄第1785
号;以下r N K 86−0279株」と略称する)
があげられる。
ミセス属に属するN K 130162生産菌を培養し
、抗生物質N K 130162を生成蓄積せしめこの
培養物より抗生物質N K 130162を採取するこ
と(こより得られる。抗生物質N K 130162の
生産菌の代表的なものとして、昭和61年8月千葉県船
橋市内の土壌より分離したストレプトミセス・ボトロペ
ンシスN K 86−0279(微工研条寄第1785
号;以下r N K 86−0279株」と略称する)
があげられる。
以下N K 86−0279株の菌学的性状を示す。
NK86 0279株の菌学的性状
形 態
NK86 0279株は顕微鏡下で分枝した基中菌糸よ
りらせん状の気菌糸を形成し、輪生枝はみとめられない
。成熟した胞子鎖は20個以上の胞子の連鎖をみとめ、
胞子の大きさは06〜0.8 X 1.2〜14ミクロ
7位で胞子の表面は平滑である。また胞子のうはみとめ
られない。
りらせん状の気菌糸を形成し、輪生枝はみとめられない
。成熟した胞子鎖は20個以上の胞子の連鎖をみとめ、
胞子の大きさは06〜0.8 X 1.2〜14ミクロ
7位で胞子の表面は平滑である。また胞子のうはみとめ
られない。
2 各種培地における生育状態
色の記載については(財)日本色彩研死所の色の標準を
用いた。
用いた。
(1) シュクロース・硝酸塩寒天培地(27°C培
養) うす黄茶の発育上に白色の気菌糸を着生し溶解性色素は
わずかに黄色味をおびる程度である。
養) うす黄茶の発育上に白色の気菌糸を着生し溶解性色素は
わずかに黄色味をおびる程度である。
(2) グルコース・アスパラギン寒天培地(270
C培養) うす黄〜うす黄茶の発育上に白〜明るい茶入の気菌糸を
着生し、溶解性色素はみとめられない。
C培養) うす黄〜うす黄茶の発育上に白〜明るい茶入の気菌糸を
着生し、溶解性色素はみとめられない。
(3) スターチ・無機塩寒天培地(ISP−培地4
.27°C培養) うす黄茶の発育上に明るい茶入〜茶入の気菌糸を着生し
、溶解性色素はわずかに茶色味をおびる程度である。
.27°C培養) うす黄茶の発育上に明るい茶入〜茶入の気菌糸を着生し
、溶解性色素はわずかに茶色味をおびる程度である。
(4)チロシン寒天培地(ISP−培地7.270C培
養) 暗い茶入の発育上に灰白〜明るい茶入の気菌糸を着生し
、溶解性色素は黒褐色である。
養) 暗い茶入の発育上に灰白〜明るい茶入の気菌糸を着生し
、溶解性色素は黒褐色である。
(5) 栄養寒天培地(27°C培養)うす黄茶の発
育上に気菌糸は着生せず、溶解性色素は茶色味をおびる
程度である。
育上に気菌糸は着生せず、溶解性色素は茶色味をおびる
程度である。
(6) イースト・麦芽寒天培地(ISP−培地2.
27°C培養) うす黄茶の発育上に灰白〜茶入の気菌糸を着生し、溶解
性色素はみとめられない。
27°C培養) うす黄茶の発育上に灰白〜茶入の気菌糸を着生し、溶解
性色素はみとめられない。
(7) オートミール寒天培地Cl5P−培地3、2
7°C培養) 無色の発育上に灰白〜明るい茶入の気菌糸を着生し、溶
解性色素はみとめられない。
7°C培養) 無色の発育上に灰白〜明るい茶入の気菌糸を着生し、溶
解性色素はみとめられない。
(8)スターチ寒天培地(27°C培養)うす黄〜うす
黄茶の発育上に白〜明るい茶入の気菌糸を着生し、溶解
性色素はわずかに茶色味をおびる程度である。
黄茶の発育上に白〜明るい茶入の気菌糸を着生し、溶解
性色素はわずかに茶色味をおびる程度である。
(9)リンゴ酸石灰寒天培地(27°C培養)うす黄〜
うす黄茶の発育上にうつすらと白色の気菌糸を着生し、
溶解性色素はみとめられない。
うす黄茶の発育上にうつすらと白色の気菌糸を着生し、
溶解性色素はみとめられない。
(10)グリセリン・アスパラギン寒天培地(ISP−
培地5.27°C培養) うす黄の発育上に茶白〜明るい茶入の気菌糸を着生し、
溶解性色素はみとめられな(ゝ。
培地5.27°C培養) うす黄の発育上に茶白〜明るい茶入の気菌糸を着生し、
溶解性色素はみとめられな(ゝ。
(11)グリセリン・硝酸塩寒天培地(27°C培養)
うす黄茶の発育上に白色の気菌糸を着生し、溶解性色素
はわずかに茶色味をおびる程度である。
はわずかに茶色味をおびる程度である。
(12)ゼラチン穿刺培養
単純ゼラチン培地(200C培養)及びグルコース・ペ
プトン・ゼラチン培地(240C培養)双方でうす黄〜
うす黄茶の発育上に、気菌糸は着生せず、溶解性色素は
茶色味をおびる。
プトン・ゼラチン培地(240C培養)双方でうす黄〜
うす黄茶の発育上に、気菌糸は着生せず、溶解性色素は
茶色味をおびる。
(13)脱脂牛乳(32°C培養)
うす黄〜うす黄茶の発育上に白色の気菌糸を着生し、溶
解性色素は茶色味をおびる。
解性色素は茶色味をおびる。
3、生理学的性質
(1)生育温度範囲
イースト・スターチ寒天培地(可溶性デンプン10%、
イースト・エキス(大玉)0、2 %、粉末寒天(栄研
)20%、pH7,0)を用い5. 10. 24.
27. 32. 37. 45℃の各温度で試験の結果
5と45°Cを除いて、そのいずれの温度でも発育した
が、最適温度は24〜32°C付近と思われる。
イースト・エキス(大玉)0、2 %、粉末寒天(栄研
)20%、pH7,0)を用い5. 10. 24.
27. 32. 37. 45℃の各温度で試験の結果
5と45°Cを除いて、そのいずれの温度でも発育した
が、最適温度は24〜32°C付近と思われる。
(2) ゼラチンの液化(15%単純ゼラチン培地、
200C培養、グルコース・ペプトン・ゼラチン培地、
27°C培養) 双方共17日目子ろから液化が始まり、その作用は弱い
方である。
200C培養、グルコース・ペプトン・ゼラチン培地、
27°C培養) 双方共17日目子ろから液化が始まり、その作用は弱い
方である。
(3) スターチの加水分解(スターチ無機塩寒天培
地及びスターチ寒天培地、いずれも27°C培養) いずれの培地においても培養後10日目子から氷解性が
みとめられ、その作用は中等度である。
地及びスターチ寒天培地、いずれも27°C培養) いずれの培地においても培養後10日目子から氷解性が
みとめられ、その作用は中等度である。
(4) 脱脂牛乳の凝固・ペプトン化(脱脂牛乳32
°C培養) 培養21日目子も凝固、ペプトン化はみとめられない。
°C培養) 培養21日目子も凝固、ペプトン化はみとめられない。
(5) メラニン様色素の生成(トリゾ) 7 mイ
ースト・プロスISP−Jam 1 ; ヘット7・イ
′−スト・鉄寒天培地、l5P−培地6;チロシン寒天
培地、l5P=培地7、いずれも27°C培養)いずれ
の培地でもメラニン様色素の生成をみとめる。
ースト・プロスISP−Jam 1 ; ヘット7・イ
′−スト・鉄寒天培地、l5P−培地6;チロシン寒天
培地、l5P=培地7、いずれも27°C培養)いずれ
の培地でもメラニン様色素の生成をみとめる。
(6) 炭素源の利用(プリトノ・ム・ゴトリーフ寒
天培地、l5P−培地9.27°C培養)グルコース、
L−アラビノース、D−キシロース、シュクロース、イ
ノシトール、D−フラジ)−ス、D−マンニトール、ラ
ムノース、ラフィノース、ガラクトースを利用する。
天培地、l5P−培地9.27°C培養)グルコース、
L−アラビノース、D−キシロース、シュクロース、イ
ノシトール、D−フラジ)−ス、D−マンニトール、ラ
ムノース、ラフィノース、ガラクトースを利用する。
(7)リンゴ酸石灰の溶解(リンゴ酸石灰寒天培地、2
7°C培養) 溶解性をみとめる。
7°C培養) 溶解性をみとめる。
(8)硝酸塩の還元反応(01%硝酸カリウム含有ベプ
ト/水、l5P−培地8.27°C培養) 陰性である。
ト/水、l5P−培地8.27°C培養) 陰性である。
以上の性状を要約するとNK86−0279株はストレ
プトミセス(S□treptomyces )属に属し
、細胞壁に含まれる2、6−ジアミツビメリン酸はLL
−型である。又胞子の5をみとめず、気菌糸はらせん状
を有し、輪生枝はみとめられない。
プトミセス(S□treptomyces )属に属し
、細胞壁に含まれる2、6−ジアミツビメリン酸はLL
−型である。又胞子の5をみとめず、気菌糸はらせん状
を有し、輪生枝はみとめられない。
胞子の表面は平滑である。種々の培地でうす黄〜うす黄
茶の発育上に灰白〜明るい茶入の気菌糸を着生し、溶解
性色素はわずかに茶色味をおびる。メラニン様色素は陽
性、蛋白分解力は弱い方で、スターチの氷解性は中等度
である。
茶の発育上に灰白〜明るい茶入の気菌糸を着生し、溶解
性色素はわずかに茶色味をおびる。メラニン様色素は陽
性、蛋白分解力は弱い方で、スターチの氷解性は中等度
である。
これらの性状よりNK86−0279株に近縁の既知菌
種を検索するとインターナンヨナル・ジャーナル・オブ
・システマティク・バクテリオロジー(Interna
tional Journal of Systema
tic Bacter−iology ) 19巻、
410頁、1969年に記載すしているストレプトミセ
ス・ポトロペノシス(Streptomyces bo
ttropensis )があげられる。この菌株と文
献上比較すると、種々の培地上での気菌糸の色、糖の利
用性、メラニン様色素の生成など完全に一致している。
種を検索するとインターナンヨナル・ジャーナル・オブ
・システマティク・バクテリオロジー(Interna
tional Journal of Systema
tic Bacter−iology ) 19巻、
410頁、1969年に記載すしているストレプトミセ
ス・ポトロペノシス(Streptomyces bo
ttropensis )があげられる。この菌株と文
献上比較すると、種々の培地上での気菌糸の色、糖の利
用性、メラニン様色素の生成など完全に一致している。
以上のことにより本[NK86−0279株はストレプ
トミセス・ボトロベ7 シス(Streptomyce
s bottropensis )に属することが明ら
かになり、ストレプトミセス・ポトロベンシスNK86
−0279と命名した。
トミセス・ボトロベ7 シス(Streptomyce
s bottropensis )に属することが明ら
かになり、ストレプトミセス・ポトロベンシスNK86
−0279と命名した。
この発明で使用するストレプトミセス・ボトロベンシス
NK86−0279は例えば、紫外線、co等の照射処
理、ナイトロジエンマスタード、亜硝酸、N−メチル−
N′−二トローN−二トロソグアニジン(NTG)、2
−アミノプリン等の変異誘起剤による変異処理、形質導
入、形質転換、細胞融合等の通常用いられる変異処理手
段によって抗生物質N K 130162の生産能力を
高めることができる@ 本発明の抗生物質NK130162を製造するにはスト
レプトミセス属に属し、抗生物質NK130162を産
生する能力を有する微生物を培地中で培養し、培養物中
に抗生物質NK130162を生成蓄積せしめ、次いで
これを採取すればよい。
NK86−0279は例えば、紫外線、co等の照射処
理、ナイトロジエンマスタード、亜硝酸、N−メチル−
N′−二トローN−二トロソグアニジン(NTG)、2
−アミノプリン等の変異誘起剤による変異処理、形質導
入、形質転換、細胞融合等の通常用いられる変異処理手
段によって抗生物質N K 130162の生産能力を
高めることができる@ 本発明の抗生物質NK130162を製造するにはスト
レプトミセス属に属し、抗生物質NK130162を産
生する能力を有する微生物を培地中で培養し、培養物中
に抗生物質NK130162を生成蓄積せしめ、次いで
これを採取すればよい。
培養方法は原則的には放線菌の培養方法に準するが、通
常は液体培養による深部培養法が有利である。培養に用
いられる培地としては、菌株NK86−0279が利用
する栄養源を含有する培地であればよい。
常は液体培養による深部培養法が有利である。培養に用
いられる培地としては、菌株NK86−0279が利用
する栄養源を含有する培地であればよい。
栄養源としては、従来から放線菌の培養に利用されてい
る公知のものが使用でき、例えば、炭素源としてはグル
コース、ガラクト一ス、マンニトール、デキストリン、
澱粉、水飴(澱粉麦芽糖化物)、大豆油など単独または
組み合せて用いることができる。無機および有機♀素源
としては塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、尿素、
硝酸アンモニウム、硝酸ソーダー ベフトン、肉エキス
、酵母エキス、乾燥酵母、フ/・スチープ・リカー 大
豆油カス、オートミル、カザミノ酸、バクトソイト/、
ソリプル・ベジタブル・プロティンなど単独または組合
せて用(−ることかできる。その他必要に応じて食塩、
硫酸マグネシウム、硫酸銅、硫酸亜鉛、塩化マンガン、
炭酸カルシウム、燐酸塩などの無核酸類、アミノ酸、ビ
タミン類や無機物を適当に添加することができる。培養
中発泡が著しい時には、例えば大豆油、亜麻仁油等の植
物油やプロナール1(東邦化学社製)、シリコンKM7
0(信越化学工業社製)等の石油系消泡剤を適宜添刀口
すればよい。培養温度は25〜300C,pHは中性な
いし微酸性で培養を行うことが望ましい。液体培養では
通常3〜6日間培養を行うと抗生物質NK130162
が菌体中に生成蓄積される。菌体中の生成量が最大に達
したとき培養を停止し菌体をP別し、得られた菌体より
目的物を精製、単離する。
る公知のものが使用でき、例えば、炭素源としてはグル
コース、ガラクト一ス、マンニトール、デキストリン、
澱粉、水飴(澱粉麦芽糖化物)、大豆油など単独または
組み合せて用いることができる。無機および有機♀素源
としては塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、尿素、
硝酸アンモニウム、硝酸ソーダー ベフトン、肉エキス
、酵母エキス、乾燥酵母、フ/・スチープ・リカー 大
豆油カス、オートミル、カザミノ酸、バクトソイト/、
ソリプル・ベジタブル・プロティンなど単独または組合
せて用(−ることかできる。その他必要に応じて食塩、
硫酸マグネシウム、硫酸銅、硫酸亜鉛、塩化マンガン、
炭酸カルシウム、燐酸塩などの無核酸類、アミノ酸、ビ
タミン類や無機物を適当に添加することができる。培養
中発泡が著しい時には、例えば大豆油、亜麻仁油等の植
物油やプロナール1(東邦化学社製)、シリコンKM7
0(信越化学工業社製)等の石油系消泡剤を適宜添刀口
すればよい。培養温度は25〜300C,pHは中性な
いし微酸性で培養を行うことが望ましい。液体培養では
通常3〜6日間培養を行うと抗生物質NK130162
が菌体中に生成蓄積される。菌体中の生成量が最大に達
したとき培養を停止し菌体をP別し、得られた菌体より
目的物を精製、単離する。
菌体より本物質の精製、単離には一般に微生物代謝生産
物をその菌体から単離するために用いられる分離、精製
の方法が利用される。抗生物質NKI30162はメタ
ノール、アセトン、酢酸エチル、エタノールをはじめと
する有機溶媒には溶けるが、水に溶けにくい物質で、そ
の精製には脂溶性物質の精製に用いられる方法により行
なわれる。
物をその菌体から単離するために用いられる分離、精製
の方法が利用される。抗生物質NKI30162はメタ
ノール、アセトン、酢酸エチル、エタノールをはじめと
する有機溶媒には溶けるが、水に溶けにくい物質で、そ
の精製には脂溶性物質の精製に用いられる方法により行
なわれる。
すなわち、各種有機溶媒による抽出、シリカゲルクロマ
トグラフィー分取用高速液体クロマトグラフィーなど適
宜組み合わせて用いることができる。
トグラフィー分取用高速液体クロマトグラフィーなど適
宜組み合わせて用いることができる。
例えば、培養液を沢過し、菌体を集め、アセトンで2回
抽出し、アセトン溶液を減圧濃縮乾固した。
抽出し、アセトン溶液を減圧濃縮乾固した。
得られた褐色の粗粉末をクロロホルムに溶解しシリカゲ
ルカラムクロマトグラフィーにより精製する。展開溶゛
媒は、クロロホルム−メタツルを用い段階的に(100
:1→75:1)溶出した。活性画分を集め、濃縮、乾
固することにより淡褐色粉末を得る。この粉末を再びシ
リカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製する。
ルカラムクロマトグラフィーにより精製する。展開溶゛
媒は、クロロホルム−メタツルを用い段階的に(100
:1→75:1)溶出した。活性画分を集め、濃縮、乾
固することにより淡褐色粉末を得る。この粉末を再びシ
リカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製する。
展開溶媒は、n−ヘキサン−アセト/を用い段階的に(
9:l→7:3)溶出した。活性画分を集め、メタノー
ル−水から結晶化し無色結晶を得た。
9:l→7:3)溶出した。活性画分を集め、メタノー
ル−水から結晶化し無色結晶を得た。
尚、培養及び粗分両生の抗生物質NK130162の力
価は、HeLa S3細胞を用い増殖抑制活性を色素法
にて測定した。
価は、HeLa S3細胞を用い増殖抑制活性を色素法
にて測定した。
以上のようにして得られた抗生物質NK130162の
理化学的性状を次に示す。
理化学的性状を次に示す。
(1)外 観;無色結晶
(2)分子量; F AB M S (M+H) m/
z 789(3)分子式;C46H760,。
z 789(3)分子式;C46H760,。
(41S 点;168゜5〜171.5°C(5)
比施光度;〔α〕佇−−51 、9(C,1,00,
メタノール) (6) 溶解性;メタノール、アセト7 酢酸xチ
ル、ジメチルスルホキシドに 可溶、水、ヘキサノに難溶。
比施光度;〔α〕佇−−51 、9(C,1,00,
メタノール) (6) 溶解性;メタノール、アセト7 酢酸xチ
ル、ジメチルスルホキシドに 可溶、水、ヘキサノに難溶。
(7) シリカゲル薄層クロマトグラフィーによるR
f値。
f値。
ヘキサ/ニア七トノ(4: 1 v/ν・%)、および
クロロホルム−メタノール(50:1v/v%)の展開
溶媒系でそれぞれ0.21および0.53を示す。
クロロホルム−メタノール(50:1v/v%)の展開
溶媒系でそれぞれ0.21および0.53を示す。
(8)紫外線吸収スペクトル
メタノール 1%
図1に示した通り。UV、! (E )ma
x 1c′rn ; 219nm(sh)、225nm(554,1)、
232.5nm(481,6)、 242nm(
sh)。
x 1c′rn ; 219nm(sh)、225nm(554,1)、
232.5nm(481,6)、 242nm(
sh)。
(9)赤外線吸収スペクトル
臭化カリウム錠にて測定した赤外吸収スペクトルを第2
図に示す。その吸収極太値(波数cm()を以下に示す
。
図に示す。その吸収極太値(波数cm()を以下に示す
。
3450.2960,2930,2870. 2150
゜1720、 1690. 1640. 1620.
1450゜1430、 1380. 1370. 13
50. 1340゜1310、 1280. 1230
. 1195. 1175゜1155、 1130.
1100. 1055. 1030゜1005、 99
5. 990. 970. 950. 935゜865
、 840. 830. 800. 770. 735
゜725、 710. 685゜ (10)水素核磁気共鳴スペクトル 重クロロホルム中で測定した水素核磁気共鳴スペクトル
を第3図に示す。
゜1720、 1690. 1640. 1620.
1450゜1430、 1380. 1370. 13
50. 1340゜1310、 1280. 1230
. 1195. 1175゜1155、 1130.
1100. 1055. 1030゜1005、 99
5. 990. 970. 950. 935゜865
、 840. 830. 800. 770. 735
゜725、 710. 685゜ (10)水素核磁気共鳴スペクトル 重クロロホルム中で測定した水素核磁気共鳴スペクトル
を第3図に示す。
(11)炭素核磁気共鳴スペクトル
重クロロホルム中で測定した炭素核磁気共鳴スペクトル
(第4図)の化学シフト(内部標準としてテトラメチル
シランを用いたδ値)は、 222.68. 216,58. 165.52. 1
48.75゜137.93. 132,59. 130
,75. 130.01゜123.26. 100.4
0. 76.80. 73,11゜71.43. 70
.89. 69,26. 67.48゜64.91.
49,44. 49.01. 47,86゜46.24
. 45,57. 44,37. 42,81゜40.
28. 37,56. 36.08. 33.47゜3
1.63. 31.05. 30.63. 28.60
゜26.63. 26.45. 24,86. 21.
69゜18.00. 14,51. 13.67、 1
3,32゜12.80’、 12,12. 11.5
0. 9.69゜8.17. 5.89 である。
(第4図)の化学シフト(内部標準としてテトラメチル
シランを用いたδ値)は、 222.68. 216,58. 165.52. 1
48.75゜137.93. 132,59. 130
,75. 130.01゜123.26. 100.4
0. 76.80. 73,11゜71.43. 70
.89. 69,26. 67.48゜64.91.
49,44. 49.01. 47,86゜46.24
. 45,57. 44,37. 42,81゜40.
28. 37,56. 36.08. 33.47゜3
1.63. 31.05. 30.63. 28.60
゜26.63. 26.45. 24,86. 21.
69゜18.00. 14,51. 13.67、 1
3,32゜12.80’、 12,12. 11.5
0. 9.69゜8.17. 5.89 である。
(12)呈色反応;リンモリブデノ酸反応、硫酸、過マ
/ガ/酸反応に陽性。パウリ−反応、ライド/スミス反
応に陰性を示す。
/ガ/酸反応に陽性。パウリ−反応、ライド/スミス反
応に陰性を示す。
本発明は後記の如(、抗腫瘍、血管新生抑制剤、殺虫剤
又は抗コクシジウム剤などの医薬品として期待される。
又は抗コクシジウム剤などの医薬品として期待される。
本発明化合物を医薬品として使用する場合には、単独ま
たは賦形剤と混合して注射剤、経口剤、坐剤等として投
与する。
たは賦形剤と混合して注射剤、経口剤、坐剤等として投
与する。
賦形剤は薬剤学的に許容されるものであればいずれでも
よく、その種類および組成は投与経路や投与方法によっ
て決まる。例えば、液状賦形削としては水、アルコール
もしくは大豆油、ビーナツツ油、ゴマ油、ミネラル油等
の動植物油または合成油を用いることができる。固体賦
形剤としてはマルトース、シュクロースなどの糖類、各
種アミノ酸類、ヒドロキシフロヒルセることかできる。
よく、その種類および組成は投与経路や投与方法によっ
て決まる。例えば、液状賦形削としては水、アルコール
もしくは大豆油、ビーナツツ油、ゴマ油、ミネラル油等
の動植物油または合成油を用いることができる。固体賦
形剤としてはマルトース、シュクロースなどの糖類、各
種アミノ酸類、ヒドロキシフロヒルセることかできる。
注射剤の場合には、賦形剤としては、生理食塩水、各種
緩衝液、グルコース、イノシトール、マンニトール等の
糖類溶液、エチレ/グυコル、ポリエチレングリコール
等のグリコール類溶液が望ましい。また、イノシトール
、マンニトール、クルコース、マノノース、マルトース
、シュクロース等の糖類やフェニルアラニン等のアミノ
酸類の賦形剤と共に凍結乾燥剤となし、投与時に注射用
の適当な溶剤、例えば、滅菌水、ブドウ糖溶液、電解質
溶液、アミノ酸溶液等に溶解して静脈および筋肉内に投
与することもできる。
緩衝液、グルコース、イノシトール、マンニトール等の
糖類溶液、エチレ/グυコル、ポリエチレングリコール
等のグリコール類溶液が望ましい。また、イノシトール
、マンニトール、クルコース、マノノース、マルトース
、シュクロース等の糖類やフェニルアラニン等のアミノ
酸類の賦形剤と共に凍結乾燥剤となし、投与時に注射用
の適当な溶剤、例えば、滅菌水、ブドウ糖溶液、電解質
溶液、アミノ酸溶液等に溶解して静脈および筋肉内に投
与することもできる。
経口剤の場合には、前記液状賦形剤もしくは固体賦形剤
とともに錠剤、カプセル剤、粉剤、顆粒剤、液剤、ドラ
イシロップ剤等の形態にするのがよい。また、ペレット
剤として経皮、粘膜剤などの局所投与剤としてもよい。
とともに錠剤、カプセル剤、粉剤、顆粒剤、液剤、ドラ
イシロップ剤等の形態にするのがよい。また、ペレット
剤として経皮、粘膜剤などの局所投与剤としてもよい。
製剤中における本化合物の含量は、通常0.001〜1
重量%であり、好ましくは0.01〜0,1重量%であ
る。例えば、注射剤の場合には、通常0601〜0.0
5重量%がよい。経口剤の場合には0.005〜1重量
%、好ましくは0.05〜0.5重量%とし、残部を賦
形剤とする。
重量%であり、好ましくは0.01〜0,1重量%であ
る。例えば、注射剤の場合には、通常0601〜0.0
5重量%がよい。経口剤の場合には0.005〜1重量
%、好ましくは0.05〜0.5重量%とし、残部を賦
形剤とする。
投与量は、患者の年令、体重、症状、治療目的等により
決定されるが、−船釣には、非経口投与で0.1〜5μ
g/kg/日、経口投与で05〜30μg/kg/日で
ある。また、マウスに対する抗生物質NK130162
の半致死量(LDso )は、625〜12.smg/
kg (ip)ノ間テアツタ。
決定されるが、−船釣には、非経口投与で0.1〜5μ
g/kg/日、経口投与で05〜30μg/kg/日で
ある。また、マウスに対する抗生物質NK130162
の半致死量(LDso )は、625〜12.smg/
kg (ip)ノ間テアツタ。
試験例1゜
本化合物のHe La S3培養細胞に対する増殖抑制
作用を検討した。He La S、細胞を1.5X10
’個/穴の割合で96穴テストプレートに接種し1日後
本化合物を種々な濃度で培養液に添加した。添加3日後
細胞数を色素法により測定し、本化合物の種々の濃度に
おける!−16:[、a s3細胞の増殖抑制率を求め
た。
作用を検討した。He La S、細胞を1.5X10
’個/穴の割合で96穴テストプレートに接種し1日後
本化合物を種々な濃度で培養液に添加した。添加3日後
細胞数を色素法により測定し、本化合物の種々の濃度に
おける!−16:[、a s3細胞の増殖抑制率を求め
た。
結果を表1に示した。本化合物のIC,。値は3 、1
6 mcg /mlであり、He La S、細胞に対
し強い増殖抑制作用を認めた。
6 mcg /mlであり、He La S、細胞に対
し強い増殖抑制作用を認めた。
表1
およびヒト大腸ガ/Ia胞(SW1116)に対する増
殖抑制作用を検討した。マウス大腸ガン細胞を1.5X
103個/穴の割合で、またヒト大腸ガン細胞を3.5
X103個/穴で96穴テストプレトに接種し37°0
5%(?02インキュベーター内で24時間培養した後
、本物質を種々な濃度で添加した。添加後、それぞれ6
5時間後、96時間後の細胞数を色素法により測定し、
本化合物の種々の濃度におけるマウス大腸ガン細胞およ
びヒト大腸ガン細胞の増殖抑制率を求めた。
殖抑制作用を検討した。マウス大腸ガン細胞を1.5X
103個/穴の割合で、またヒト大腸ガン細胞を3.5
X103個/穴で96穴テストプレトに接種し37°0
5%(?02インキュベーター内で24時間培養した後
、本物質を種々な濃度で添加した。添加後、それぞれ6
5時間後、96時間後の細胞数を色素法により測定し、
本化合物の種々の濃度におけるマウス大腸ガン細胞およ
びヒト大腸ガン細胞の増殖抑制率を求めた。
結果を表2に示した。本化合物のIC,。値は、マウス
大腸ガン細胞に対して、o、ooc+4mcg/ml以
下、ヒト大腸ガン細胞に対して0.075mcg/ m
lであり、両細胞に対し強い増殖抑制作用を認めた。
大腸ガン細胞に対して、o、ooc+4mcg/ml以
下、ヒト大腸ガン細胞に対して0.075mcg/ m
lであり、両細胞に対し強い増殖抑制作用を認めた。
試験例2
本化合物のマウス大腸ガン細胞((?olon 26
)表2 ュベーター内で24時間培養した後、本化合物を種々な
濃度で培養fi(で添加した。添力[後それぞれ3日後
、4日後の細胞数を色素法にて測定し、本化合物の種々
の濃度におけるマウス肺ガン細胞(LL)、ヒト肺ガン
細胞(PC,”−3)の増殖抑制率を求めた。
)表2 ュベーター内で24時間培養した後、本化合物を種々な
濃度で培養fi(で添加した。添力[後それぞれ3日後
、4日後の細胞数を色素法にて測定し、本化合物の種々
の濃度におけるマウス肺ガン細胞(LL)、ヒト肺ガン
細胞(PC,”−3)の増殖抑制率を求めた。
結果を表3に示した。本化合物のIC,。値は、マウス
肺ガン細胞(LL)に町し、0.0014mcg /
ml 、 ヒト肺ガン細胞(PC>3)に対し、0、8
15 mcg /mjであり、両細胞に対し、強い増殖
抑制作用を認めた。
肺ガン細胞(LL)に町し、0.0014mcg /
ml 、 ヒト肺ガン細胞(PC>3)に対し、0、8
15 mcg /mjであり、両細胞に対し、強い増殖
抑制作用を認めた。
表3
試験例3
本化合物のマウス肺ガン細胞(LL)およびヒト肺ガン
細胞(PC−3)に対する増殖抑制作用を検討した。
細胞(PC−3)に対する増殖抑制作用を検討した。
マウス肺ガン細胞を1. OX 103個/穴、ヒト肺
ガン細胞2.0×103個/穴の割合で96穴テストプ
レートに接種し、37°C5%CO2インキヒトメラノ
ーマ細胞に対して4 、321 mcg /mlと両細
胞に対し増殖抑制作用を示した。
ガン細胞2.0×103個/穴の割合で96穴テストプ
レートに接種し、37°C5%CO2インキヒトメラノ
ーマ細胞に対して4 、321 mcg /mlと両細
胞に対し増殖抑制作用を示した。
表4
試験例4゜
本化合物のマウスメラノーマ細胞(B16)およびヒト
メラノーマ細胞(G361)に対する増殖抑制作用を検
討した。マウスメラノーマ細胞を1、 OX 103個
/穴、ヒトメラノーマ細胞を20×103個/穴の割合
で96穴テストプレートに接種し、37°C15%CO
2イ/キーベーターで培養した後、本化合物を種々な濃
度で培養液に添力口した。添加72時間後、細胞数を色
素法により測定し、本化合物の種々の濃度におけるマウ
スメラノーマ細胞、ヒトメラノーマ細胞の増殖抑制率を
求めた。
メラノーマ細胞(G361)に対する増殖抑制作用を検
討した。マウスメラノーマ細胞を1、 OX 103個
/穴、ヒトメラノーマ細胞を20×103個/穴の割合
で96穴テストプレートに接種し、37°C15%CO
2イ/キーベーターで培養した後、本化合物を種々な濃
度で培養液に添力口した。添加72時間後、細胞数を色
素法により測定し、本化合物の種々の濃度におけるマウ
スメラノーマ細胞、ヒトメラノーマ細胞の増殖抑制率を
求めた。
結果を表4に示した。本化合物のIC3o値は、マウス
メラノーマ細胞に対して0.072mcg/ml、試験
例5 本化合物の内皮細胞に対する増殖抑制作用を検討した。
メラノーマ細胞に対して0.072mcg/ml、試験
例5 本化合物の内皮細胞に対する増殖抑制作用を検討した。
牛大動脈の血管内皮泄胞を2×103個/穴の割合で9
6穴テストプレートに接種し、1日後本物質を種々な濃
度で培養液に添加した。
6穴テストプレートに接種し、1日後本物質を種々な濃
度で培養液に添加した。
添加3目抜細胞数を色素法により測定し、本化合物の種
々の濃度における血管内皮細胞の増殖抑制率を求めた。
々の濃度における血管内皮細胞の増殖抑制率を求めた。
結果を55に示した。本化合物のIC50値は0.05
8mcg/mJであり、内皮細胞に対し強い増殖抑制作
用を認めた。
8mcg/mJであり、内皮細胞に対し強い増殖抑制作
用を認めた。
表5
試験例6
本化合物の血管新生に対する抑生作用をNl、−AQi
mbroneらの家兎角膜内評価法(Journal
Natior+aCancer In5titute
52. 413.1974)を用いて検討した。即ち
、家兎の角膜中央部をメスを用(・て約2wn切開し、
角膜内にポケットを作製した。
mbroneらの家兎角膜内評価法(Journal
Natior+aCancer In5titute
52. 413.1974)を用いて検討した。即ち
、家兎の角膜中央部をメスを用(・て約2wn切開し、
角膜内にポケットを作製した。
ここに、あらかじめRoLangerらの方fP:(N
ature263.797.1979)により作製して
おいたエーリソヒ癌粗抽出物100 mcgを含む徐放
性ペレットを設置した。更に、本化合物03−03−8
lを含有する徐放性ペレットを上記ペレットに接して設
置し、設置後4.6.8および100日目血管新生の程
度を観察した。その結果、エリノヒ癌粗抽出物による血
管の新生は本化合物の4 mcg以上のペレット設置群
で4日目まで、20 mcg以上のペレット設置群では
8日目まで非投与群に比べ有意に遅延した。
ature263.797.1979)により作製して
おいたエーリソヒ癌粗抽出物100 mcgを含む徐放
性ペレットを設置した。更に、本化合物03−03−8
lを含有する徐放性ペレットを上記ペレットに接して設
置し、設置後4.6.8および100日目血管新生の程
度を観察した。その結果、エリノヒ癌粗抽出物による血
管の新生は本化合物の4 mcg以上のペレット設置群
で4日目まで、20 mcg以上のペレット設置群では
8日目まで非投与群に比べ有意に遅延した。
試験例7゜
本発明化合物の殺虫作用を次の方法により試験した。
(1) ナミノ・ダニ成虫(ケルセン耐性種)を供試
虫として茎葉虫体浸漬法により死滅率を検定した。
虫として茎葉虫体浸漬法により死滅率を検定した。
すなわち、処理前日に鉢植したインゲン苗の初生葉の2
葉上(他の葉は切除)に成虫を20〜30頭ずつ接種し
た。成虫の定着を確恒温室(26±1°C; L/D
: 16/ 8 hr)に保持した。成虫の生死束数は
処理2日後に調べその際インゲンに対する薬害の有無も
調べた。
葉上(他の葉は切除)に成虫を20〜30頭ずつ接種し
た。成虫の定着を確恒温室(26±1°C; L/D
: 16/ 8 hr)に保持した。成虫の生死束数は
処理2日後に調べその際インゲンに対する薬害の有無も
調べた。
成虫の生死束数の調査後、生存成虫は除去し、一定面積
上の生卵数を調べ、恒温室に保持した。処理9日後に殺
卵効果を調べ 同時に薬害の有無も調べた。
上の生卵数を調べ、恒温室に保持した。処理9日後に殺
卵効果を調べ 同時に薬害の有無も調べた。
(2) チカイエ力幼虫(感受性様)を供試虫として
虫体浸漬法により死滅率を検定した。
虫体浸漬法により死滅率を検定した。
すなわち、所定濃度に希釈した薬液Q、 1 mlを井
水10m1と3令幼虫3頭のはいったプラスチックケー
ス(6穴プレート;1穴の直径351+01)に所定濃
度になるよう滴下処理した。
水10m1と3令幼虫3頭のはいったプラスチックケー
ス(6穴プレート;1穴の直径351+01)に所定濃
度になるよう滴下処理した。
滴下後、静かに攪拌し、固形飼料を与えて恒温室に保持
した。処理3日後、6日後と9日後に生死束数を調査し
た。試験は1区3連制で実施した。
した。処理3日後、6日後と9日後に生死束数を調査し
た。試験は1区3連制で実施した。
結果を表6に示す。この表から明らかなように本発明化
合物は殺ダニ、殺蚊作用を有する。
合物は殺ダニ、殺蚊作用を有する。
表6゜
試験例8
本発明化合物の抗コクシジウム作用を家禽のコクシジウ
ムによる生存率及び盲腸病変程度により検討した。即ち
、家禽の詳化後、8日令のブロイラー雄雛を次の3群に
分は試験を行った。
ムによる生存率及び盲腸病変程度により検討した。即ち
、家禽の詳化後、8日令のブロイラー雄雛を次の3群に
分は試験を行った。
1)コクシジウム非感染・抗生物質NK130162非
投与群5羽 2)コクシジウム感染・抗生物質NK 1
30162非投薬群5羽 3)コクシジウム感染・抗生
物質NK130162投薬群3羽。
投与群5羽 2)コクシジウム感染・抗生物質NK 1
30162非投薬群5羽 3)コクシジウム感染・抗生
物質NK130162投薬群3羽。
コクシジウム感染は飼料給与と同時に1羽当り5X10
’個のEimeria Tenellaの胞子形成オー
シストを経口投与した。抗生物質NK130162の投
与は、飼料中に抗生物質NK130162をs o p
pmの割合で添加した飼料を屠殺時まで連日与えた。
’個のEimeria Tenellaの胞子形成オー
シストを経口投与した。抗生物質NK130162の投
与は、飼料中に抗生物質NK130162をs o p
pmの割合で添加した飼料を屠殺時まで連日与えた。
計価は3群について試験期間中(8日間)の生存率につ
いて検討した。また、投与後8目子に雛を屠殺剖検し盲
腸病変程度を観察してコクシジウム症の程度を観察した
。盲腸病変の程度は、正常から病変の悪性度の程度が高
くなるに従い度数を0〜4と5段階設定し、次のような
判定基準とした。
いて検討した。また、投与後8目子に雛を屠殺剖検し盲
腸病変程度を観察してコクシジウム症の程度を観察した
。盲腸病変の程度は、正常から病変の悪性度の程度が高
くなるに従い度数を0〜4と5段階設定し、次のような
判定基準とした。
(0)・・・・・・盲腸は全く正常
+(1)・・・・・・盲腸の形は正常。内容物はやや流
動性を帯び色も黄色かがる。
動性を帯び色も黄色かがる。
盲腸粘膜は部分的に軽度の腫張があ
り白っぽくなる。
+(2)・・・・・・盲腸の形はほぼ正常。粘膜の腫張
は全面的にみられる。内容に出血はな く、粘液は黄色みをおびネL色してい る。粘膜内には少数の白色点壊死巣 や出血斑が見られる。
は全面的にみられる。内容に出血はな く、粘液は黄色みをおびネL色してい る。粘膜内には少数の白色点壊死巣 や出血斑が見られる。
+l−+(31・・・・・・盲腸の萎縮・変形は明瞭で
直腸よりもやや長い程度となる。正常な内容 物は全くな(凝血または灰白色チー ズ状の変性物が充満していることが 多い。盲腸壁の肥厚は顕著でもろく なり、点状出血斑がまだ残っている こともある。病変は盲腸基部まで達 するが、直腸までは達しない。
直腸よりもやや長い程度となる。正常な内容 物は全くな(凝血または灰白色チー ズ状の変性物が充満していることが 多い。盲腸壁の肥厚は顕著でもろく なり、点状出血斑がまだ残っている こともある。病変は盲腸基部まで達 するが、直腸までは達しない。
曲(4)・・・・・・盲腸の萎縮・変形は顕著、一般に
ソーセージ状を呈し、その長さは直腸 と同じかまたは短かくなっている。
ソーセージ状を呈し、その長さは直腸 と同じかまたは短かくなっている。
病変は直腸の1/3〜1/4位の所ま
で達する。その他は+l+(31と同様である。
結果は表7に示すように抗生物質NK 130162は
Eimeria Tenellaによるコクシジウム症
に対して明らかな抗コクシジウム作用を示した。
Eimeria Tenellaによるコクシジウム症
に対して明らかな抗コクシジウム作用を示した。
表7゜
非感染・非投薬群 5 100
0.4感染・非投薬群 5 20
4感染ΦNK130162投薬群 3
100 2.3盲腸病変の度数は平均値である。
0.4感染・非投薬群 5 20
4感染ΦNK130162投薬群 3
100 2.3盲腸病変の度数は平均値である。
以上の結果から、本化合物は制癌作用、血管新生に対す
る抑制作用、殺虫作用、抗コクシジウム作用を有し、新
規な制癌剤、血管新生抑制剤、殺虫剤、抗コクシジウム
剤として期待される。
る抑制作用、殺虫作用、抗コクシジウム作用を有し、新
規な制癌剤、血管新生抑制剤、殺虫剤、抗コクシジウム
剤として期待される。
以下本発明の化合物の製法を実施例により示す。
実施例1
500M容三角フラスコに溶性テノン゛/2%、グルコ
ース0.5%、ペプト105%、酵母エキス05%、燐
酸第2カリクム0.05%、硫酸マグネシウム0.05
%、大豆粉05%の培地(pH72)100mlを分注
し、1200C”、20分間オートクレーブにより滅菌
した。これKNK860279株(微工研条寄1785
号)の−白金耳を接種し、ロータリーシェーカーにて1
90回転/分、27°Cの条件下で2日間振盪培養した
。これとは別に51容三角フラスコに前記培地1ノを分
注し、1200c、20分間オートクレーブにより滅菌
した。
ース0.5%、ペプト105%、酵母エキス05%、燐
酸第2カリクム0.05%、硫酸マグネシウム0.05
%、大豆粉05%の培地(pH72)100mlを分注
し、1200C”、20分間オートクレーブにより滅菌
した。これKNK860279株(微工研条寄1785
号)の−白金耳を接種し、ロータリーシェーカーにて1
90回転/分、27°Cの条件下で2日間振盪培養した
。これとは別に51容三角フラスコに前記培地1ノを分
注し、1200c、20分間オートクレーブにより滅菌
した。
これに前記培養液20m1を移殖し、ロータリーシェー
カーにて190回転/分、27°Cの条外下で2日間振
盪培養した。
カーにて190回転/分、27°Cの条外下で2日間振
盪培養した。
次に、1401タンクにグリセリン4%、ポリペプトン
05%、粉末酵母エキス0.3%、肉エキス05%、塩
化ナトリウム03%、硫酸マグ坏シウム0.05%の培
地(pH7,00)120沼を分注し、120°013
0分滅菌した。このタンクに前記培養液2.4 Lを移
殖し、27°Cで5日間通気攪拌培養した。
05%、粉末酵母エキス0.3%、肉エキス05%、塩
化ナトリウム03%、硫酸マグ坏シウム0.05%の培
地(pH7,00)120沼を分注し、120°013
0分滅菌した。このタンクに前記培養液2.4 Lを移
殖し、27°Cで5日間通気攪拌培養した。
(通気120 L /rnin、 270回転/分〕
得られた培養物240Lを濾過助剤3%を用(・濾過し
た。このようにして得られた菌体画分に50Lのアセト
ンを加え、攪拌して抽出を行なった。濾過によりアセト
ン抽出液を集めた後、残直に30Lのアセトンを加え再
び抽出を行なった。以上のようにして得られたアセトン
抽出物を減圧上乾固し、220gの褐色油状物質を得る
。これをクロロホルムに溶解した後、あらかじめクロロ
ホルムで平衡化したシリカゲルカラム(3,5L)Kか
け、クロロホルム−メタノール濃度を100=1.75
:1と段階的にがえ溶出を行なった。
得られた培養物240Lを濾過助剤3%を用(・濾過し
た。このようにして得られた菌体画分に50Lのアセト
ンを加え、攪拌して抽出を行なった。濾過によりアセト
ン抽出液を集めた後、残直に30Lのアセトンを加え再
び抽出を行なった。以上のようにして得られたアセトン
抽出物を減圧上乾固し、220gの褐色油状物質を得る
。これをクロロホルムに溶解した後、あらかじめクロロ
ホルムで平衡化したシリカゲルカラム(3,5L)Kか
け、クロロホルム−メタノール濃度を100=1.75
:1と段階的にがえ溶出を行なった。
活性画分を集め減圧下濃縮乾固し、淡褐色の粉末28.
8 gを得る。
8 gを得る。
これを再びクロロホルムに溶解し、シIj力ゲルを加え
ドライゲルを作製する。これをあらかじめn−ヘキサン
−アセトン(9:1)で平衡化したシリカゲルカラム(
2,5L)にかけ、n−ヘキサン−アセトン8:1.7
:3と段階的にかえながらクロマトグラフィーを行なっ
た。
ドライゲルを作製する。これをあらかじめn−ヘキサン
−アセトン(9:1)で平衡化したシリカゲルカラム(
2,5L)にかけ、n−ヘキサン−アセトン8:1.7
:3と段階的にかえながらクロマトグラフィーを行なっ
た。
活性画分を集め、減圧下濃縮乾固し、淡黄色粉末760
mgを得る。 これを水−メタノールより結晶化しs
o o mgの無色結晶を得た。
mgを得る。 これを水−メタノールより結晶化しs
o o mgの無色結晶を得た。
第1図は、抗生物質NK130162の紫外部吸収スペ
クトルを示す。実11!(→は、20 mcg /mt
のメタノール溶液、破#(・・・・・)は20 mc
g /mAの0、 I N塩酸−90%メタノール溶液
、鎖線(−・−)は20 mcg /mlの0.IN苛
性ソーダー90%メタノール溶液。 第2図は、臭化カリウム錠として測定した抗生物質N
K 130162赤外吸収スペクトルである。 第3図は、抗生物質N K 130162の重クロロホ
ルム中で測定した水素核磁気共鳴スペクトルである。 第4図は、抗生物質N K 130162の重クロロホ
ルム中で測定した炭素核磁気共鳴スペクトルである。 特許出願人 日本化薬株式会社
クトルを示す。実11!(→は、20 mcg /mt
のメタノール溶液、破#(・・・・・)は20 mc
g /mAの0、 I N塩酸−90%メタノール溶液
、鎖線(−・−)は20 mcg /mlの0.IN苛
性ソーダー90%メタノール溶液。 第2図は、臭化カリウム錠として測定した抗生物質N
K 130162赤外吸収スペクトルである。 第3図は、抗生物質N K 130162の重クロロホ
ルム中で測定した水素核磁気共鳴スペクトルである。 第4図は、抗生物質N K 130162の重クロロホ
ルム中で測定した炭素核磁気共鳴スペクトルである。 特許出願人 日本化薬株式会社
Claims (3)
- (1)式 ▲数式、化学式、表等があります▼ で示される新規抗生物質NK130162
- (2)ストレプトミセス属に属し、抗生物質NK130
162を産生する能力を有する微生物を培地中で培養し
、培養物中に抗生物質NK 130162を生成蓄積せしめ、次いでこれを採取する
ことを特徴とする抗生物質NK 130162の製造方法 - (3)抗生物質NK130162を有効成分とする抗腫
瘍剤、血管新生抑制剤、殺虫剤又は抗コクシジウム剤。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP20926990A JPH0495095A (ja) | 1990-08-09 | 1990-08-09 | 新規抗生物質nk130162、その製法及びその用途 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP20926990A JPH0495095A (ja) | 1990-08-09 | 1990-08-09 | 新規抗生物質nk130162、その製法及びその用途 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0495095A true JPH0495095A (ja) | 1992-03-27 |
Family
ID=16570154
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP20926990A Pending JPH0495095A (ja) | 1990-08-09 | 1990-08-09 | 新規抗生物質nk130162、その製法及びその用途 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0495095A (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1078631A1 (en) * | 1999-08-27 | 2001-02-28 | Pfizer Products Inc. | Use of macrolide antibiotics for the treatment or prevention of coccidiosis |
WO2001062950A1 (fr) * | 2000-02-24 | 2001-08-30 | The Kitasato Institute | Nouvel antibiotique wk-6150 et procede de production correspondant |
CN102863458A (zh) * | 2012-09-20 | 2013-01-09 | 福建省微生物研究所 | 他克莫司粗品的纯化方法 |
-
1990
- 1990-08-09 JP JP20926990A patent/JPH0495095A/ja active Pending
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1078631A1 (en) * | 1999-08-27 | 2001-02-28 | Pfizer Products Inc. | Use of macrolide antibiotics for the treatment or prevention of coccidiosis |
US6608033B1 (en) | 1999-08-27 | 2003-08-19 | Pfizer Inc. | Treatment or prevention of coccidiosis |
AU775761B2 (en) * | 1999-08-27 | 2004-08-12 | Pfizer Products Inc. | Treatment or prevention of coccidiosis |
WO2001062950A1 (fr) * | 2000-02-24 | 2001-08-30 | The Kitasato Institute | Nouvel antibiotique wk-6150 et procede de production correspondant |
CN102863458A (zh) * | 2012-09-20 | 2013-01-09 | 福建省微生物研究所 | 他克莫司粗品的纯化方法 |
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