JPH047677B2 - - Google Patents
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
〔技術分野〕
本発明は、ぺニシリン系やセフアロスポリ系抗
生物質又はエフエドリン等の交感神経作用薬等の
医薬品の原料もしくは合成中間体として有用なマ
ンデル酸の左旋性光学活性体〔(R−左旋性マン
デル酸〕(以下、単に左旋性マンデル酸という)
を酵素を利用して工学的に有利に製造する方法に
関するものである。
生物質又はエフエドリン等の交感神経作用薬等の
医薬品の原料もしくは合成中間体として有用なマ
ンデル酸の左旋性光学活性体〔(R−左旋性マン
デル酸〕(以下、単に左旋性マンデル酸という)
を酵素を利用して工学的に有利に製造する方法に
関するものである。
左旋性のマンデル酸の製造法としては、ラセミ
体の分別結晶による光学分割法、クロマトグラフ
イーによる光学分割法、有機化学的な不斉合成法
等が知られているが、これらの方法は、操作が煩
雑であるとか、収率が低い、生成物の高光純度が
低い等の欠点を有している。
体の分別結晶による光学分割法、クロマトグラフ
イーによる光学分割法、有機化学的な不斉合成法
等が知られているが、これらの方法は、操作が煩
雑であるとか、収率が低い、生成物の高光純度が
低い等の欠点を有している。
一方、左旋性のマンデル酸を得るために、ベン
ゾイルギ酸を微生物菌体を用いて不斉還元する方
法(特開昭57−198096号公報)も知られている。
この方法によれば、前記の公知方法の欠点は除去
されるものの、微生物のプロテアーゼによる自己
消化のための活性低下が避けられず、また菌体内
成分や培地成分による製品の汚染・純度低下の問
題等が残る。
ゾイルギ酸を微生物菌体を用いて不斉還元する方
法(特開昭57−198096号公報)も知られている。
この方法によれば、前記の公知方法の欠点は除去
されるものの、微生物のプロテアーゼによる自己
消化のための活性低下が避けられず、また菌体内
成分や培地成分による製品の汚染・純度低下の問
題等が残る。
そこで、本発明者らは、微生物菌体を用いず
に、微生物から取出した酵素を用いてベンゾイル
ギ酸を還元して左旋性マンデル酸を製造すべく鋭
意研究を重ねた結果、ストレプトコツクス属に属
する微生物から取出した酵素がその目的に適合す
ることを見出し、本発明を完成するに到つた。
に、微生物から取出した酵素を用いてベンゾイル
ギ酸を還元して左旋性マンデル酸を製造すべく鋭
意研究を重ねた結果、ストレプトコツクス属に属
する微生物から取出した酵素がその目的に適合す
ることを見出し、本発明を完成するに到つた。
即ち、本発明によれば、ストレプトコツクス属
細菌の菌体から抽出したベンゾイルギ酸還元酵素
の存在下、還元型のニコチンアミド・アデニン・
ジヌクレオチドを用いてベンゾイルギ酸を還元す
ることを特徴とするマンデル酸の左旋性光学活性
体の製造方法が提供される。
細菌の菌体から抽出したベンゾイルギ酸還元酵素
の存在下、還元型のニコチンアミド・アデニン・
ジヌクレオチドを用いてベンゾイルギ酸を還元す
ることを特徴とするマンデル酸の左旋性光学活性
体の製造方法が提供される。
本発明は、ストレプトコツクス属に属し、ベン
ゾイルギ酸還元酵素生産能を有する細菌に含まれ
ているベンゾイルギ酸還元酵素(以下、単に酵素
Aという)を抽出し、この酵素Aの存在下、還元
型のニコチンアミド・アデニン・ジヌクレオチド
(NADH)を還元剤として用いて次式の反応を触
媒させて左旋性マンデル酸を合成することを骨子
とするものである。
ゾイルギ酸還元酵素生産能を有する細菌に含まれ
ているベンゾイルギ酸還元酵素(以下、単に酵素
Aという)を抽出し、この酵素Aの存在下、還元
型のニコチンアミド・アデニン・ジヌクレオチド
(NADH)を還元剤として用いて次式の反応を触
媒させて左旋性マンデル酸を合成することを骨子
とするものである。
本発明の特徴は次の通りである。即ち、本発明
によれば純化した酵素を使用ているため、他の酵
素の作用による(+)−異性体の副生がなく生成
する左旋性マンデル酸は、完全に100%の光学純
度を有する。また副反応や代謝による基質や生成
物の消費がないから、反応収率は極めて高く、反
応混合物のガスクロマトグラフイーによる分析で
は反応条件によればほぼ100%の変換収率が達成
されていることが明らかにされているほか、結晶
化の収率も通例85%以上であり、95%近い値に達
する場合もある。本発明における生成物は反応に
無関係な菌体成分や培地成分によつて汚染される
ことがなく、有機溶媒による抽出物を濃縮後ただ
再結晶するのみで容易に純品とすることができ
る。さらに、反応液として適当な緩衝液を使用す
れば、NAD+のNADHへの再生系を共存させる
という実際の使用条件下においては、反応液のPH
変動はほとんどなく、PHの維持・調節のためのめ
んどうな操作を必要としない。
によれば純化した酵素を使用ているため、他の酵
素の作用による(+)−異性体の副生がなく生成
する左旋性マンデル酸は、完全に100%の光学純
度を有する。また副反応や代謝による基質や生成
物の消費がないから、反応収率は極めて高く、反
応混合物のガスクロマトグラフイーによる分析で
は反応条件によればほぼ100%の変換収率が達成
されていることが明らかにされているほか、結晶
化の収率も通例85%以上であり、95%近い値に達
する場合もある。本発明における生成物は反応に
無関係な菌体成分や培地成分によつて汚染される
ことがなく、有機溶媒による抽出物を濃縮後ただ
再結晶するのみで容易に純品とすることができ
る。さらに、反応液として適当な緩衝液を使用す
れば、NAD+のNADHへの再生系を共存させる
という実際の使用条件下においては、反応液のPH
変動はほとんどなく、PHの維持・調節のためのめ
んどうな操作を必要としない。
本発明を実施するにあたつては次の3点につい
て考慮しなければならない。(1)ベンゾイルギ酸還
元酵素、(2)NADH再システム、及び(3)反応の実
施条件の3つである。まず(1)のベンゾイルギ酸還
元酵素はストレプトコツクス属の細菌の菌体を破
壊し抽出することによつて調製する。このために
用いる菌株として、例えばストレプトコツクス
フアエカリス(Streotococcus faecales)が挙げ
られる。培地及び培養条件としては菌体の増殖が
良く、目的の酵素活性が高いのであればどのよう
なものでもよく、例えば、トマトジユース培地を
用いて30℃で15〜25時間振とう培養するなどの方
法が挙げられる。集菌した菌体の破壊には超音波
処理など通常の方法を用いればよく、このように
して可溶化された目的酵素を精製するためには、
アフイニテイークロマトグラフイーやイオン交換
クロマトグラフイーなど通常の方法を用いればよ
い。この精製は、必らずしも目的酵素を単一の蛋
白質として単離するほどに行うことを必要としな
い。普通には、菌体に由来する低分子成分、多糖
類、核酸及びプロテアーゼやNADHオキシダー
ゼなどの妨害作用をなす酵素を除いて、比活性を
100U/mg程度に上昇させたものでも十分である。
このためには例えば色素結合樹脂によるアフイニ
テイクロマトグラフイーが効果的である。しかし
本発明は、これらの記述によつて何ら限定される
ものではない。次に(2)のNADH再生システムは、
ベンゾイルギ酸に対するNADHの使用量が等モ
ル又はそれ以上である場合には必要ない。しか
し、NADHのコストの点からそのような使用法
は実際にはありず、反応産物の酸化型NAD
(NAD+)をその場で還元してNADHに再生する
ようにして使用しなければならない。このために
NADH再生システムが必要である。このような
システムとしては、亜ニチオン酸ナトリウムによ
る化学的に還元システム、電解還元を利用するシ
ステム、アルコール脱水素酵素、グルコース脱水
素酵素又はギ酸脱水素酵素などの脱水素酵素を利
用するシステムなどがあり、場合の応じて適当な
システムを使用すればよい。最後に、(3)の実施条
件について説明する。まず緩衝液を選定するが、
中性付近で通常用いられるものならどのようなも
のでもよく、例えばリン酸緩衝液やトリス・塩酸
緩衝液などが挙げられる。緩衝液の濃度は数mM
から2〜300mMの範囲で適当に選べばよい。こ
れよりも高濃度であつてもさしつかえない。PHは
4から8の間の適当な値とする。どの値にするか
は、実施にあたつて要求される反応速度と酵素の
安定性及びNADH再生システムのそのPHに対す
る適合性を考慮して決定する。本発明に用いるベ
ンゾイルギ酸還元酵素の至適PHは4.5付近であり、
また加熱に対して最も安定となるPHは5.8〜6.0で
ある。しかしNADHが酸性において不安定であ
ることを考えると、あまりPHを低くすることは好
ましくない。この緩衝液にベンゾイルギ酸をナト
リウム塩やカリウム塩など適当な塩の形として溶
解させる。その濃度は、ミカエリス定数(30℃、
PH7.5で3.3mM)の10倍程度(約30mMないしは
0.5%)から100倍程度(約300mMないし5%)
とすることが実際的である。もちろんこの範囲以
上でも以下でもさしつかえない。NADH(又は
NAD+)の濃度は使用するNADH再生システム
の活性強度や安定性及び全反応速度として要求さ
れる反応速度等を考慮して適当に決定すればよい
が、普通には、ベンゾイルギ酸還元酵素における
ミカエリス定数(30℃、PH7.5で35μM)の10〜
100倍程度の濃度とすれば十分である。もちろん
これよりもはるかに低い値にして、回転数(ター
ンオーバーナンバー)を向上させることもさしつ
かえない。次にNADH再生システムに必要な試
薬又は基質を反応液に添加する。例えばアルコー
ル脱水素酵素を再生システムに使用する場合に
は、その酵素の基質であるエタノールを添加す
る。濃度としては、原料のベンゾイルギ酸の濃度
以上であつて、かつ再生反応が円滑に進行するよ
うな濃度とする。なお、ベンゾイルギ酸と再生反
応用基質を反応液に添加するにあたつては、反応
開始前に一度に全量を添加してもよく、また反応
の進行に伴つて逐次回分添加するようにしてもよ
い。このようにして原料のベンゾイルギ酸、
NADH(又はNAD+)及び再生反応用の試薬又は
基質を溶解させた反応液の準備ができたら、酵素
を添加して反応を開始する。その前に安定化剤と
して0.1〜2mM程度のメルカプトエタノール及
び/又は0.05%程度の牛血清やアルブミンを添加
しておくことが望ましい場合がある。またメルカ
プトエタノールの代りにジチオスレイトールを用
いてもよい。ベンゾイルギ酸還元酵素及び再生反
応を酵素法で行う場合のその酵素のそれぞれの使
用量は、要求される反応速度に応じて適当に決め
ればよい。なお、基質、酵素の混合順序は上の通
りである必要はなく、場合に応じて適当に行えば
よい。反応温度の上限は40℃付近とする。これよ
り高温だとベンゾイルギ酸還元酵素の失活がすみ
やかである。通常は30℃前後で反応を行うとよ
い。反応が完結するまでに要する時間は用いた酵
素量によつて違つてくることは当然である。反応
終了後生成物の左旋性マンデル酸を単離するのに
は、有機溶媒抽出など通常の方法を応用すればよ
い。例えば、反応液を希塩酸や希硫酸などでPH2
〜1の酸性とし、次で食塩などの塩を飽和濃度に
まで溶かしこんだ酢酸エチルやエーテルなどで抽
出を行うと、反応液中のマンデル酸はほぼ定量的
に回収される。有機層を分け取り、溶媒を留出し
た残渣を熱したベンゼンなどに溶解させ、必要が
あれば活性炭処理を施した上で熱濾過を行い、濾
液を冷却すれば左旋性マンデル酸の美麗な板状晶
を得る。
て考慮しなければならない。(1)ベンゾイルギ酸還
元酵素、(2)NADH再システム、及び(3)反応の実
施条件の3つである。まず(1)のベンゾイルギ酸還
元酵素はストレプトコツクス属の細菌の菌体を破
壊し抽出することによつて調製する。このために
用いる菌株として、例えばストレプトコツクス
フアエカリス(Streotococcus faecales)が挙げ
られる。培地及び培養条件としては菌体の増殖が
良く、目的の酵素活性が高いのであればどのよう
なものでもよく、例えば、トマトジユース培地を
用いて30℃で15〜25時間振とう培養するなどの方
法が挙げられる。集菌した菌体の破壊には超音波
処理など通常の方法を用いればよく、このように
して可溶化された目的酵素を精製するためには、
アフイニテイークロマトグラフイーやイオン交換
クロマトグラフイーなど通常の方法を用いればよ
い。この精製は、必らずしも目的酵素を単一の蛋
白質として単離するほどに行うことを必要としな
い。普通には、菌体に由来する低分子成分、多糖
類、核酸及びプロテアーゼやNADHオキシダー
ゼなどの妨害作用をなす酵素を除いて、比活性を
100U/mg程度に上昇させたものでも十分である。
このためには例えば色素結合樹脂によるアフイニ
テイクロマトグラフイーが効果的である。しかし
本発明は、これらの記述によつて何ら限定される
ものではない。次に(2)のNADH再生システムは、
ベンゾイルギ酸に対するNADHの使用量が等モ
ル又はそれ以上である場合には必要ない。しか
し、NADHのコストの点からそのような使用法
は実際にはありず、反応産物の酸化型NAD
(NAD+)をその場で還元してNADHに再生する
ようにして使用しなければならない。このために
NADH再生システムが必要である。このような
システムとしては、亜ニチオン酸ナトリウムによ
る化学的に還元システム、電解還元を利用するシ
ステム、アルコール脱水素酵素、グルコース脱水
素酵素又はギ酸脱水素酵素などの脱水素酵素を利
用するシステムなどがあり、場合の応じて適当な
システムを使用すればよい。最後に、(3)の実施条
件について説明する。まず緩衝液を選定するが、
中性付近で通常用いられるものならどのようなも
のでもよく、例えばリン酸緩衝液やトリス・塩酸
緩衝液などが挙げられる。緩衝液の濃度は数mM
から2〜300mMの範囲で適当に選べばよい。こ
れよりも高濃度であつてもさしつかえない。PHは
4から8の間の適当な値とする。どの値にするか
は、実施にあたつて要求される反応速度と酵素の
安定性及びNADH再生システムのそのPHに対す
る適合性を考慮して決定する。本発明に用いるベ
ンゾイルギ酸還元酵素の至適PHは4.5付近であり、
また加熱に対して最も安定となるPHは5.8〜6.0で
ある。しかしNADHが酸性において不安定であ
ることを考えると、あまりPHを低くすることは好
ましくない。この緩衝液にベンゾイルギ酸をナト
リウム塩やカリウム塩など適当な塩の形として溶
解させる。その濃度は、ミカエリス定数(30℃、
PH7.5で3.3mM)の10倍程度(約30mMないしは
0.5%)から100倍程度(約300mMないし5%)
とすることが実際的である。もちろんこの範囲以
上でも以下でもさしつかえない。NADH(又は
NAD+)の濃度は使用するNADH再生システム
の活性強度や安定性及び全反応速度として要求さ
れる反応速度等を考慮して適当に決定すればよい
が、普通には、ベンゾイルギ酸還元酵素における
ミカエリス定数(30℃、PH7.5で35μM)の10〜
100倍程度の濃度とすれば十分である。もちろん
これよりもはるかに低い値にして、回転数(ター
ンオーバーナンバー)を向上させることもさしつ
かえない。次にNADH再生システムに必要な試
薬又は基質を反応液に添加する。例えばアルコー
ル脱水素酵素を再生システムに使用する場合に
は、その酵素の基質であるエタノールを添加す
る。濃度としては、原料のベンゾイルギ酸の濃度
以上であつて、かつ再生反応が円滑に進行するよ
うな濃度とする。なお、ベンゾイルギ酸と再生反
応用基質を反応液に添加するにあたつては、反応
開始前に一度に全量を添加してもよく、また反応
の進行に伴つて逐次回分添加するようにしてもよ
い。このようにして原料のベンゾイルギ酸、
NADH(又はNAD+)及び再生反応用の試薬又は
基質を溶解させた反応液の準備ができたら、酵素
を添加して反応を開始する。その前に安定化剤と
して0.1〜2mM程度のメルカプトエタノール及
び/又は0.05%程度の牛血清やアルブミンを添加
しておくことが望ましい場合がある。またメルカ
プトエタノールの代りにジチオスレイトールを用
いてもよい。ベンゾイルギ酸還元酵素及び再生反
応を酵素法で行う場合のその酵素のそれぞれの使
用量は、要求される反応速度に応じて適当に決め
ればよい。なお、基質、酵素の混合順序は上の通
りである必要はなく、場合に応じて適当に行えば
よい。反応温度の上限は40℃付近とする。これよ
り高温だとベンゾイルギ酸還元酵素の失活がすみ
やかである。通常は30℃前後で反応を行うとよ
い。反応が完結するまでに要する時間は用いた酵
素量によつて違つてくることは当然である。反応
終了後生成物の左旋性マンデル酸を単離するのに
は、有機溶媒抽出など通常の方法を応用すればよ
い。例えば、反応液を希塩酸や希硫酸などでPH2
〜1の酸性とし、次で食塩などの塩を飽和濃度に
まで溶かしこんだ酢酸エチルやエーテルなどで抽
出を行うと、反応液中のマンデル酸はほぼ定量的
に回収される。有機層を分け取り、溶媒を留出し
た残渣を熱したベンゼンなどに溶解させ、必要が
あれば活性炭処理を施した上で熱濾過を行い、濾
液を冷却すれば左旋性マンデル酸の美麗な板状晶
を得る。
次に実施例について本発明をさらに詳細に説明
する。
する。
実施例 1
ストレプトコツクス フアエカリス
(Streptococcus faecalis IFO 12964)をトマト
ジュース・麦芽エキス・CoSO4の培地で通気攪拌
培養した。30℃で24時間培養後、集菌し、菌体を
超音波処理してベンゾイルギ酸還元酵素を抽出し
た。これをMatrex RedA樹脂を充填したカラム
によるアフイニテイクロマトグラフイーと、
DEAE−セフアローズカラムによるイオン交換ク
ロマトグラフイーを順次行つて比活性911U/mg
の標品を得た。このものの一部(67U)をとり、
0.5%の牛血清アルブミンと2mMのメルカプトエ
タノールを含む15mMリン酸緩衝液(PH6.3)の
15mlに溶解させておいた。一方、1gのベンゾイ
ルギ酸と0.26gNaOH、及び3.9mlのエタノール
を0.1Mリン酸緩衝液(PH7.5)の20mlと混和し
て、1NNaOHにてPHを7.5にI調節した。上記PH
7.5のリン酸緩衝液で約100mlに希釈後、250mgの
NADH、15mlの上記酵素液、0.333mlの酵母アル
コール脱水素酵素懸濁液(350U、ベーリンガー
社製)及び1Mのメルカプトエタノール水溶液
0.26mlを加え、最後に上記リン酸緩衝液(PH7.5、
0.1M)で全量を133mlとした。トルエン0.6mlを
加え密栓して30℃に2日放置した。6NHClの5
mlを加えてPHを2以下とし、次で塩化ナトリウム
を飽和になるまで溶解させた。これを200ml、200
ml及び100mlの酢酸エチルで3回抽出した。抽出
時に析出した不溶分はセライトを濾過助剤として
用いて濾去した。有機層を合せ、硫酸ナトリウム
上で一夜乾燥した。硫酸ナトリウムを濾別し、溶
媒を減圧留去して得られた結晶製残渣を沸とうベ
ンゼンの約50mlにとかした。少量の活性炭を加え
て熱時に濾過し、濾液を室温に放置しておくと
790mgの板状晶を与えた。母液を濃縮してさらに
64mgの結晶を得た。総収率84%。mp(134〜135
℃)とIRスペクトルはアルドリツチ社から購入
した(R)−(−)−マンデル酸の標準品のそれに
一致した。また比旋光度はD25 D=−149°(C=1.0、
水)であり、標準品の比旋光度に一致した。さら
に光学純度を精密に決定するために、サンプルの
少量をジアゾメタンでメチル化し、次で(R)−
(+)−メトキシトリフルオロフエニルアセチルク
ロライドでジアステレオメリツクなMTPAエス
テルとしてガスクロマトグラフイーで分析した
(カラム:化学結合型OV−1キヤピラリーカラ
ム、0.25mm×25m;キヤリヤ−ガス:ヘリウム、
入口圧:1.4Kg/cm2、入口流速:80ml/min、カ
ラム温度:175℃;保存時間:R−エナンチオマ
ーについて14.70分、S−エナンチオマーについ
て、15.45分)。その結果、本例において合成され
たマンデル酸は100%R−エナンチオマーから成
ることを確認した。
(Streptococcus faecalis IFO 12964)をトマト
ジュース・麦芽エキス・CoSO4の培地で通気攪拌
培養した。30℃で24時間培養後、集菌し、菌体を
超音波処理してベンゾイルギ酸還元酵素を抽出し
た。これをMatrex RedA樹脂を充填したカラム
によるアフイニテイクロマトグラフイーと、
DEAE−セフアローズカラムによるイオン交換ク
ロマトグラフイーを順次行つて比活性911U/mg
の標品を得た。このものの一部(67U)をとり、
0.5%の牛血清アルブミンと2mMのメルカプトエ
タノールを含む15mMリン酸緩衝液(PH6.3)の
15mlに溶解させておいた。一方、1gのベンゾイ
ルギ酸と0.26gNaOH、及び3.9mlのエタノール
を0.1Mリン酸緩衝液(PH7.5)の20mlと混和し
て、1NNaOHにてPHを7.5にI調節した。上記PH
7.5のリン酸緩衝液で約100mlに希釈後、250mgの
NADH、15mlの上記酵素液、0.333mlの酵母アル
コール脱水素酵素懸濁液(350U、ベーリンガー
社製)及び1Mのメルカプトエタノール水溶液
0.26mlを加え、最後に上記リン酸緩衝液(PH7.5、
0.1M)で全量を133mlとした。トルエン0.6mlを
加え密栓して30℃に2日放置した。6NHClの5
mlを加えてPHを2以下とし、次で塩化ナトリウム
を飽和になるまで溶解させた。これを200ml、200
ml及び100mlの酢酸エチルで3回抽出した。抽出
時に析出した不溶分はセライトを濾過助剤として
用いて濾去した。有機層を合せ、硫酸ナトリウム
上で一夜乾燥した。硫酸ナトリウムを濾別し、溶
媒を減圧留去して得られた結晶製残渣を沸とうベ
ンゼンの約50mlにとかした。少量の活性炭を加え
て熱時に濾過し、濾液を室温に放置しておくと
790mgの板状晶を与えた。母液を濃縮してさらに
64mgの結晶を得た。総収率84%。mp(134〜135
℃)とIRスペクトルはアルドリツチ社から購入
した(R)−(−)−マンデル酸の標準品のそれに
一致した。また比旋光度はD25 D=−149°(C=1.0、
水)であり、標準品の比旋光度に一致した。さら
に光学純度を精密に決定するために、サンプルの
少量をジアゾメタンでメチル化し、次で(R)−
(+)−メトキシトリフルオロフエニルアセチルク
ロライドでジアステレオメリツクなMTPAエス
テルとしてガスクロマトグラフイーで分析した
(カラム:化学結合型OV−1キヤピラリーカラ
ム、0.25mm×25m;キヤリヤ−ガス:ヘリウム、
入口圧:1.4Kg/cm2、入口流速:80ml/min、カ
ラム温度:175℃;保存時間:R−エナンチオマ
ーについて14.70分、S−エナンチオマーについ
て、15.45分)。その結果、本例において合成され
たマンデル酸は100%R−エナンチオマーから成
ることを確認した。
実施例 2
1gのベンゾイルギ酸と1.5gのギ酸を0.1Mリ
ン酸緩衝液(PH7.5)の20mlと混和し、等量の
NaOHを加えて中和した。上記緩衝液で約100ml
に希釈後、250mgのNADH、67Uのベンゾイルギ
酸還元酵素を含む15mMリン酸緩衝液の15ml8PH
6.3;酵素の他に0.5%の牛血清アルブミンと2mM
のメルカプトエタノールを含む)、140mgのギ酸脱
水素酵素凍結乾燥物(80U、ベーリンガー社製)
及び1Mのメルカプトエタノール水溶液の0.26ml
を加え、最後に上記0.1Mリン酸緩衝液で全量を
133mlとした。トルエン0.6mlを加えて密栓し、30
℃に2日間保つた。生成したマンデル酸を実施例
1と同様にして抽出して結晶化を行い(活性炭処
理ははぶいた)、総計940mgの板状晶を得た(収率
93%)。mp133〜134℃。IRスペクトルと比旋光
度{〔α〕D25 D=−150°(C=1.1、水)}は標準品
のデータに一致した。また実施例1と同様にして
100%R−エナンチオマーから成ることを確認し
た。
ン酸緩衝液(PH7.5)の20mlと混和し、等量の
NaOHを加えて中和した。上記緩衝液で約100ml
に希釈後、250mgのNADH、67Uのベンゾイルギ
酸還元酵素を含む15mMリン酸緩衝液の15ml8PH
6.3;酵素の他に0.5%の牛血清アルブミンと2mM
のメルカプトエタノールを含む)、140mgのギ酸脱
水素酵素凍結乾燥物(80U、ベーリンガー社製)
及び1Mのメルカプトエタノール水溶液の0.26ml
を加え、最後に上記0.1Mリン酸緩衝液で全量を
133mlとした。トルエン0.6mlを加えて密栓し、30
℃に2日間保つた。生成したマンデル酸を実施例
1と同様にして抽出して結晶化を行い(活性炭処
理ははぶいた)、総計940mgの板状晶を得た(収率
93%)。mp133〜134℃。IRスペクトルと比旋光
度{〔α〕D25 D=−150°(C=1.1、水)}は標準品
のデータに一致した。また実施例1と同様にして
100%R−エナンチオマーから成ることを確認し
た。
実施例 3
1gのベンゾイルギ酸を約5mlの水にとかし、
2NNaOHで中和した。0.2Mのグルコース、0.2M
のNaCl、2mMのメルトカプトエタノール、及び
0.05%の牛血清アルブミンを含む0.1Mリン酸緩
衝液(PH7.5)の160mlを加えた。これにNADH
の250mgを添加し、次で88Uのグルコース脱水素
酵素(天野製薬製)及び64Uのベンゾイルギ酸脱
水素酵素を少量の緩衝液溶液として添加した。よ
く攪拌して均一溶液とした後、トルエン0.8mlを
加えて密栓し、30℃に24時間放置した。生成した
マンデル酸を実施例1と同様にして抽出して結晶
化を行い、総計902mgの板状晶を得た(収率89
%)、mp132〜134℃、〔α〕D25 D=−149°(C=1.0、
水)。
2NNaOHで中和した。0.2Mのグルコース、0.2M
のNaCl、2mMのメルトカプトエタノール、及び
0.05%の牛血清アルブミンを含む0.1Mリン酸緩
衝液(PH7.5)の160mlを加えた。これにNADH
の250mgを添加し、次で88Uのグルコース脱水素
酵素(天野製薬製)及び64Uのベンゾイルギ酸脱
水素酵素を少量の緩衝液溶液として添加した。よ
く攪拌して均一溶液とした後、トルエン0.8mlを
加えて密栓し、30℃に24時間放置した。生成した
マンデル酸を実施例1と同様にして抽出して結晶
化を行い、総計902mgの板状晶を得た(収率89
%)、mp132〜134℃、〔α〕D25 D=−149°(C=1.0、
水)。
実施例 4
ベンゾイルギ酸の2.5gとギ酸の2.3gを2mMの
メルトカルトエタノールを含む15mMのリン酸緩
衝液(PH6.3)の約20mlと混和し、次でNaOHの
約2.7gを加えて中和した。ベンゾイルギ酸還元
酵素56U、0.5%牛血清アルブミン及び2mMメル
カプトエタノールを含む上記リン酸緩衝液の21ml
を加えた。1NNaOHでPH7.5に調整し、
NADH250mgとギ酸脱水素酵素の凍結乾燥粉末70
mg(80U,ベーリンガー社製)を加え均一溶液と
した。全液量は45mlとなつた。トルエン1mlを添
加し、栓をして30℃に42時間保つた。6NHCl約
2.5mlを加えて、PH<2とし、NaClを飽和になる
ように溶かし、酢酸エチルの150ml、150ml及び
100ml3回抽出した。有機層を合し、実施例1と
同様に処理、結晶化させて、左旋性マンデル酸の
板状晶2.30gを得た。収率91%、mp133℃、〔α〕
D27 D=−150.5°(C=1.04、水)。
メルトカルトエタノールを含む15mMのリン酸緩
衝液(PH6.3)の約20mlと混和し、次でNaOHの
約2.7gを加えて中和した。ベンゾイルギ酸還元
酵素56U、0.5%牛血清アルブミン及び2mMメル
カプトエタノールを含む上記リン酸緩衝液の21ml
を加えた。1NNaOHでPH7.5に調整し、
NADH250mgとギ酸脱水素酵素の凍結乾燥粉末70
mg(80U,ベーリンガー社製)を加え均一溶液と
した。全液量は45mlとなつた。トルエン1mlを添
加し、栓をして30℃に42時間保つた。6NHCl約
2.5mlを加えて、PH<2とし、NaClを飽和になる
ように溶かし、酢酸エチルの150ml、150ml及び
100ml3回抽出した。有機層を合し、実施例1と
同様に処理、結晶化させて、左旋性マンデル酸の
板状晶2.30gを得た。収率91%、mp133℃、〔α〕
D27 D=−150.5°(C=1.04、水)。
以上のように、本発明によれば、ベンゾイルギ
酸を原料とし左旋性マンデル酸を光学純度100%
でかつ高収率で製造することができる。
酸を原料とし左旋性マンデル酸を光学純度100%
でかつ高収率で製造することができる。
Claims (1)
- 1 ストレプトコツクス属細菌の菌体から抽出し
たベンゾイルギ酸還元酵素の存在下、還元型のニ
コチンアミド・アデニン・ジヌクレオチドを用い
てベンゾイルギ酸を還元することを特徴とするマ
ンデル酸の左旋性光学活性体の製造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP17734686A JPS6332492A (ja) | 1986-07-28 | 1986-07-28 | 酵素法によるマンデル酸の左旋性光学活性体の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP17734686A JPS6332492A (ja) | 1986-07-28 | 1986-07-28 | 酵素法によるマンデル酸の左旋性光学活性体の製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6332492A JPS6332492A (ja) | 1988-02-12 |
JPH047677B2 true JPH047677B2 (ja) | 1992-02-12 |
Family
ID=16029360
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP17734686A Granted JPS6332492A (ja) | 1986-07-28 | 1986-07-28 | 酵素法によるマンデル酸の左旋性光学活性体の製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
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JP (1) | JPS6332492A (ja) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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JPH06141888A (ja) * | 1992-11-05 | 1994-05-24 | Tanabe Seiyaku Co Ltd | D−マンデル酸の製法 |
JP4154182B2 (ja) | 2002-07-16 | 2008-09-24 | ダイセル化学工業株式会社 | α−ケト酸還元酵素、その製造方法、およびこれを利用した光学活性α−ヒドロキシ酸の製造方法 |
JP4995437B2 (ja) * | 2005-06-13 | 2012-08-08 | 三菱レイヨン株式会社 | シアンヒドリン類濃縮液及びα−ヒドロキシカルボン酸類結晶の製造方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5664791A (en) * | 1979-07-25 | 1981-06-02 | Degussa | Continuous enzymatic conversion of water soluble alphaaketocarboxylic acid to corresponding alphaahydroxycarboxylic acid |
JPS57198096A (en) * | 1981-06-01 | 1982-12-04 | Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd | Preparation of d(-)-mandelic acid |
-
1986
- 1986-07-28 JP JP17734686A patent/JPS6332492A/ja active Granted
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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JPS5664791A (en) * | 1979-07-25 | 1981-06-02 | Degussa | Continuous enzymatic conversion of water soluble alphaaketocarboxylic acid to corresponding alphaahydroxycarboxylic acid |
JPS57198096A (en) * | 1981-06-01 | 1982-12-04 | Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd | Preparation of d(-)-mandelic acid |
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Publication number | Publication date |
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JPS6332492A (ja) | 1988-02-12 |
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