JPH0471519B2 - - Google Patents
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Description
産業上の利用分野
本発明は卵胞刺激ホルモンの測定法、測定試
薬、これに好適なモノクロナール抗体、その取得
法に関する。 従来の技術 体液、例えば尿、血清及び同様に血漿中の卵胞
刺激ホルモン(FSH)の測定は、主として、視
床下部、下垂体及び性腺の内分泌状態を評価する
ために使用される。この試験は、特に性腺機能低
下、不育症等の鑑別診断に役立つ。更に、この
FSH−測定は、妊婦の誘導の際の排卵時点の測
定のために使用される。 これらのすべての場合に、血清値は生理学的範
囲内に存在する。更に、血清中のFSHの濃度も、
このホルモンの生物学的作用に関する情報を得る
ための目的だけにも測定される。従つて、実質的
に、自然のホルモンの血清濃度の認識は、診断上
重要である。 血清中のヒトFSHの生理学的濃度は次の範囲
内にある: 男性 15mlU/ml 閉経期前の婦人(周期) 10mlU/ml 排卵ピーク時の婦人 20〜30mlU/ml 閉経期後の婦人 30〜80mlU/ml FSHの測定のためには、特に抗原としてのこ
のホルモンがこれを認識する抗体1種以上を用い
て測定される免疫学的試験法が好適である。この
ポリペプチド−ホルモンを用いる抗体取得は、す
べてのポリペプチド−ホルモンは免疫性が悪いの
で、困難と結びついている。FSHと他の糖蛋白
質ホルモン例えば黄体形成ホルモン(LH)、甲
状腺刺激ホルモン(TSH)又はヒト絨毛性ゴナ
ドトロピン(hCG)との間のホルモン学に基づ
き、これらホルモンの1種に対する特異抗体を得
ることは非常に困難である。これら糖蛋白質−ホ
ルモンを認識する抗体は、通例、多かれ少なかれ
他の糖蛋白質−ホルモンとの交叉反応を有する。 特異的にFSHを認識し、他の糖蛋白質−ホル
モンとの交叉反応をしないモノクロナール抗体
は、従来は知られていない。従つて、現在までの
ところでは、他の糖蛋白質ホルモンを多かれ少な
かれ共に検出することなしにFSHを免疫学的に
測定することは可能ではない。 発明が解決しようとする問題点 本発明の課題は、それを用いて、他の糖蛋白質
−ホルモンの存在でもFSHを特異的に測定する
ことのできる新規の免疫学的方法及び試薬を得る
ことであつた。 問題点を解決するための手段 この課題は、本発明による免疫学的方法及び試
薬で解決される。 従つて、本発明の目的は、特異的にFSHを認
識し、他の糖蛋白質−ホルモン即ちLH,TSH又
はhCGとは3%より少なく交叉反応するモノクロ
ナール抗体少なくとも1種を用いる卵胞刺激ホル
モンの免疫学的測定法並びにこれに好適な試薬で
ある。 免疫学的測定法としては、原則的には、すべて
の慣用のイムノアツセイ例えばラジオイムノアツ
セイ、酵素−イムノアツセイ、螢光−イムノアツ
セイ等が好適である。更に、全体的な変法例えば
競争的イムノアツセイ、サンドイツチ−法等も使
用可能である。標識付けのためには、それぞれの
測定法に慣用の手段が好適である。従つて、ラジ
オ−イムノアツセイの場合には、ラジオアイソト
ープ例えば125Jが標識付けのために使用される。
酵素−イムノアツセイのためには、このために通
例使用されるすべての酵素、例えばペルオキシダ
ーゼ又はβ−ガラクトシダーゼが好適である。螢
光−イムノアツセイのためには、慣用の発光団が
マーカーとして使用可能である。これら種々の試
験法及び変法の詳細は当業者にとつて公知であ
る。FSHの種々の抗原決定因を認識し、そのう
ちの少なくとも1種が他の糖蛋白質−ホルモンと
は3%より少なく交叉反応する、少なくとも2種
の本発明によるモノクロナール抗体を使用する試
験変法が有利である。 FSHの測定のためには、測定すべき抗原を担
体結合され、標識付けされた抗体と接触させるサ
ンドイツチ−法が特に好適であると立証された。
このような測定法のために、例えば本発明による
特異的なモノクロナール抗体を固定相に結合させ
ることができる。これを、第1のインキユベーシ
ヨン工程で、測定すべきFSH及び一般に他の糖
蛋白質ホルモンを含有する試料と共にインキユベ
ートする。この際、特異的抗体により選択的に
FSHが結合される。慣用の洗浄工程の後に、こ
の標識された抗体と共にインキユベートする。こ
れは、必ずしも特異的にFSHを認識する必要は
なく、他の糖蛋白質ホルモンと交叉反応してもよ
い。 この方法は、非特異的に担体結合する抗体を用
いても実施できる。しかしながら、標識された抗
体として、本発明による特異的にFSHを認識す
る抗体を使用することが必要である。 このサンドイツチ法の変法は、同様に、FSH
の測定のために好適である。例えば、差当り、標
識されていない可溶性抗体で、かつ標識された抗
体で、可溶性サンドイツチ−複合体を形成するこ
とができる。これを、引続き、標識されていない
可溶性抗体のEcγ−部を認識する担体結合抗体を
用いて不溶性にする。この変法では、少なくとも
標識されていない可溶性抗体が本発明の抗体であ
るべきである。この際、標識された抗体を過剰に
使用するのが有利である。 本発明の重要性は、この免疫学的方法のため
に、特異的にFSHを認識し、従つてFSHの特異
的測定を可能とするモノクロナール抗体を提供す
ることが意想外に達成されたことにある。 従つて、本発明のもう1つの目的は、他の糖蛋
白質−ホルモンとの交叉反応性が3%より小さい
FSHを認識するモノクロナール抗体である。 本発明によるモノクロナール抗体を得るため
に、実験動物例えばマウスをFSHで免疫化する。
免疫化のために、この免疫原を例えばアジユバン
スと組合せて常法で付与する。アジユバンスとし
ては、水酸化アルミニウムを百日咳菌
(Bordetella pertussis)又はフロインドの
(Freundschem)アジユバンスと共に使用するの
が有利である。免疫化は、有利に、数ケ月にわた
り、4〜6週間隔での少なくとも4回の免疫化に
より行なう。(腹膜内注射)。 このように免疫化した動物から、B−リンパ球
を得、これを永久骨髄腫細胞系と融合させる。こ
の融合は、ケーラー(Ko¨hler)及びミルスタイ
ン(Milstein)の公知方法〔ネイチユア
(Nature)、256,1975,495〜497頁〕で行なう。
この際生じたハイブリツド細胞の1次培養物を常
法で、例えば、市販の細胞ソルター
(Zellsorter)の使用下に、又は限定稀釈により
クローン化する。それぞれ、適当な試験法で例え
ば酵素−イムノアツセイ(ELISA−法)で、LH
に対して陽性にかつ他の糖蛋白質−ホルモンとは
陰性にもしくは僅かにのみ反応する培養物を更に
加工する。こうして、本発明によるモノクロナー
ル抗体を産生する多数のハイブリツドーマー細胞
系が得られる。公知方法で、この細胞系を培養
し、これにより産生されたモノクロナール抗体を
単離することができる。 この方法で得られる細胞系の例は次のとおりで
ある: クローン293(NCACC 84122002) クローン163(NCACC 84122006)及び クローン381(NCACC 85022205)。 これらの細胞系は、それぞれの番号で寄託機関
NCACC(Natinal Collection of Animal Cell
Cultures)に寄託されている。 このように得られたモノクロナール抗体は、
FSHに対して非常に高い親和性(109〜1011/
モルの親和性定数)を有し、他の糖蛋白質ホルモ
ンとは3%より少なく交叉反応することで優れて
いる。特に有利なモノクロナール抗体は、他の糖
蛋白質−ホルモン例えばhCG,LH及びTSHに対
する1%より少ない特に有利に0.1%より少ない
交叉反応性を有する。この親和性及び他のホルモ
ンとの交叉反応性の測定のために、当業者に公知
の慣用法が提供される。 本発明によるモノクロナール抗体は、試料例え
ば血清又は血漿中でこのホルモンFSHを他の糖
蛋白質−ホルモンの存在で特異的に測定するため
に極めて好適である。この測定法のために、モノ
クロナール抗体そのもの又はそれからの相応する
免疫学的特性を有するフラグメント例えばFab−
フラグメントを使用することができる。従つて、
「モノクロナール抗体」の概念で、完全抗体もフ
ラグメントも理解される。 実施例 次の実施例につき、本発明を詳説する: 例 1 FSHに対するモノクロナール抗体の取得 生後8〜12週のBalb/c−マウスを、水酸化
アルミニウム及び百日咳菌に吸着されたhFSH
〔イムネツクス社(Firma lmmunex)〕100μgで
腹膜内で免疫化させる。6週後に4週間間隔で更
に3回免疫化させる。この際、各々、水酸化アル
ミニウム及び百日咳菌に吸着されたFSH50μgを
腹膜内に施与する。 最後の免疫化の後約4ケ月に融合させる。この
融合の3日及び4日前に、それぞれ1回、
FSH100μg/PBS(燐酸塩緩衝溶液)により腹膜
内もしくは静脈内で免疫化する。 融合のために、エンツイモロジイ(Enzy−
mology)73(1981)3頁中のガルフレ法
(Galfr′e,Methods)により、免疫化されたマウ
スの脾臓細胞108を骨髄腫(P3×63Ag8−653,
ATCC−CRL8375)2×107と混合し、引続き10
分間遠心分離する(300g,4℃)。細胞をもう一
度BSS(=平衡塩類溶液:balanced salt
solution)で洗浄し、400gで遠心する。上澄み
を除去する。細胞沈殿物に50%PEG−溶液(分
子量4000,Merck)1mlを加える。その後、室
温で、牛胎児血清(FKS)不含のPRMI1640−媒
体(RPMI=Rosewell Parker Memory
Institute)5mlを引続きもう1度10%FKS含有
RPMI1640−媒体5mlを徐々に滴加し、媒体で50
mlまで充たし、400gで10分間遠心分離する。沈
殿した細胞を10%FKS含有RPMI1640−媒体中に
入れる。脾臓細胞各 2×105を24−穴(well)−
細胞培養プレート(ヌンク社:Firma Nunc)上
に播種する。各培養液に、脾臓細胞1×105又は
腹膜滲出液細胞5×104を栄養細胞として添加す
る。次の日に、ヒポキサンチン−アザセリン−選
択媒体(ヒポキサンチン100mM、アザセリン1μ
g/ml)を添加する。 約7〜10日後に、既に多くのクローンが認めら
れる。1次培養液の上澄みを例2に記載の
ELISA法で試験する。抗原特異性抗体を含有す
る1次培養液を螢光活性化細胞ソルターを用いて
96−穴−細胞培養プレート(ヌンク社)上で更に
クローン化する。栄養細胞として、腹膜−滲出液
−細胞1×104又は脾臓細胞2×104を培養液96−
穴−細胞培養プレート当りに使用する。 こうして、双方のハイブリドーマー細胞系クロ
ーン293、クローン163及びクローン381を単離す
ることができ、これらは寄託機関NCACC
(National Collection of Animal Cell
Cultures)に次の寄託番号で寄託されている: NCACC 84122001(=クローン269) NCACC 8422006 (=クローン163)及び NCACC 8502205 (=クローン381)。 腹水を得るために、ハイブリツド細胞5×106
を予めプリスタン(Pristan)0.5mlで1〜2回前
処理されたマウスの腹膜内に注射する。その1〜
3週間後に、このマウスから腹水液を得ることが
できる。これから常法で抗体を単離することがで
きる。このモノクロナール抗体は特異的にFSH
を認識し、他の糖蛋白質−ホルモンとは交叉反応
しないかもしくは僅かに反応するだけである。こ
れらを以後、MAK293(クローン293)、MAK163
(クローン163)のもしくはMAK381(クローン
381の)と称する。 これらのモノクロナール抗体は、サブ群
lgG1/Kに属する。これらの親和性は108/
molである。親和性の測定のために、同族抗原と
の競争曲線をスカツチヤード法(Scatchard:
Ann.N.Y.Acad.Sci.51,1949,660頁参照)で測
定し、評価する。このために必要な測定は例2と
同様に実施する。 例 2 FSHに対する抗体のスクリーニング試験 免疫化されたマウスの血清又はハイブリツド細
胞の培養液上澄み又は腹水中のFSHに対する抗
体の存在及び特異性を知るために、試験原理とし
てELISA−法を用い、マイクロ滴定プレートに
FSH1μg/被覆緩衝液ml(0.2M炭酸ナトリウ
ム/重炭酸ナトリウム、PH9.3〜9.5)を37℃で1
夜重層する。0.9%塩化ナトリウム溶液及び1%
アルブミン溶液で10分間後処理する。引続き、
0.9%塩化ナトリウム溶液で洗浄する。引続き37
℃で1時間、試料100μと共にインキユベート
し、改めて0.9%塩化ナトリウム溶液で洗浄する。
更に、シヤフ(Schaf)−抗−マウス−lgG−ペル
オキシダーゼ−コンジユゲート100〜150mU/ml
と共にインキユベートする(37℃,1時間)。0.9
%塩化ナトリウムでの新たな洗浄工程の後に、ペ
ルオキシダーゼ活性を常法で測定する(例えば
ABTSを用い、室温で30分、405nmでの吸光度差
ΔmEを読む)。 このELISA−試験は次のようにしても実施で
きる: マイクロ滴定プレートにまずシヤフ−抗−マウ
ス−lgGを重層する(20〜30μg/被覆緩衝液ml,
37℃で1時間〜1夜)。その後、前記のように更
に処理し、試料溶液を添加し、改めて洗浄する。
引続き、FSH−ペルオキシダーゼ−コンジユゲ
ート250mU/mlと共にインキユベートする(1
時間、37℃)。これを改めて洗浄し、ペルオキシ
ダーゼ−活性を例えばABTSにより測定する。 例 3 他の糖蛋白質との交叉反応の測定 例2の記載と同様に操作する。差当り、FSH
の反応性を測定する。次いで、それぞれのモノク
ロナール抗体に、それぞれ、交叉反応を試験する
抗原(hCG,TSH,FSH)を上昇性濃度で添加
する。引続き、この交叉反応を次式で計算する: C(LH)/C(交叉反応抗原)×100=交叉反応率(
%) C=最大信号の50%に達するために必要である
抗原の濃度 次に第1表にMAK293,MAK163及び
MAK381に関する測定値をまとめる。
薬、これに好適なモノクロナール抗体、その取得
法に関する。 従来の技術 体液、例えば尿、血清及び同様に血漿中の卵胞
刺激ホルモン(FSH)の測定は、主として、視
床下部、下垂体及び性腺の内分泌状態を評価する
ために使用される。この試験は、特に性腺機能低
下、不育症等の鑑別診断に役立つ。更に、この
FSH−測定は、妊婦の誘導の際の排卵時点の測
定のために使用される。 これらのすべての場合に、血清値は生理学的範
囲内に存在する。更に、血清中のFSHの濃度も、
このホルモンの生物学的作用に関する情報を得る
ための目的だけにも測定される。従つて、実質的
に、自然のホルモンの血清濃度の認識は、診断上
重要である。 血清中のヒトFSHの生理学的濃度は次の範囲
内にある: 男性 15mlU/ml 閉経期前の婦人(周期) 10mlU/ml 排卵ピーク時の婦人 20〜30mlU/ml 閉経期後の婦人 30〜80mlU/ml FSHの測定のためには、特に抗原としてのこ
のホルモンがこれを認識する抗体1種以上を用い
て測定される免疫学的試験法が好適である。この
ポリペプチド−ホルモンを用いる抗体取得は、す
べてのポリペプチド−ホルモンは免疫性が悪いの
で、困難と結びついている。FSHと他の糖蛋白
質ホルモン例えば黄体形成ホルモン(LH)、甲
状腺刺激ホルモン(TSH)又はヒト絨毛性ゴナ
ドトロピン(hCG)との間のホルモン学に基づ
き、これらホルモンの1種に対する特異抗体を得
ることは非常に困難である。これら糖蛋白質−ホ
ルモンを認識する抗体は、通例、多かれ少なかれ
他の糖蛋白質−ホルモンとの交叉反応を有する。 特異的にFSHを認識し、他の糖蛋白質−ホル
モンとの交叉反応をしないモノクロナール抗体
は、従来は知られていない。従つて、現在までの
ところでは、他の糖蛋白質ホルモンを多かれ少な
かれ共に検出することなしにFSHを免疫学的に
測定することは可能ではない。 発明が解決しようとする問題点 本発明の課題は、それを用いて、他の糖蛋白質
−ホルモンの存在でもFSHを特異的に測定する
ことのできる新規の免疫学的方法及び試薬を得る
ことであつた。 問題点を解決するための手段 この課題は、本発明による免疫学的方法及び試
薬で解決される。 従つて、本発明の目的は、特異的にFSHを認
識し、他の糖蛋白質−ホルモン即ちLH,TSH又
はhCGとは3%より少なく交叉反応するモノクロ
ナール抗体少なくとも1種を用いる卵胞刺激ホル
モンの免疫学的測定法並びにこれに好適な試薬で
ある。 免疫学的測定法としては、原則的には、すべて
の慣用のイムノアツセイ例えばラジオイムノアツ
セイ、酵素−イムノアツセイ、螢光−イムノアツ
セイ等が好適である。更に、全体的な変法例えば
競争的イムノアツセイ、サンドイツチ−法等も使
用可能である。標識付けのためには、それぞれの
測定法に慣用の手段が好適である。従つて、ラジ
オ−イムノアツセイの場合には、ラジオアイソト
ープ例えば125Jが標識付けのために使用される。
酵素−イムノアツセイのためには、このために通
例使用されるすべての酵素、例えばペルオキシダ
ーゼ又はβ−ガラクトシダーゼが好適である。螢
光−イムノアツセイのためには、慣用の発光団が
マーカーとして使用可能である。これら種々の試
験法及び変法の詳細は当業者にとつて公知であ
る。FSHの種々の抗原決定因を認識し、そのう
ちの少なくとも1種が他の糖蛋白質−ホルモンと
は3%より少なく交叉反応する、少なくとも2種
の本発明によるモノクロナール抗体を使用する試
験変法が有利である。 FSHの測定のためには、測定すべき抗原を担
体結合され、標識付けされた抗体と接触させるサ
ンドイツチ−法が特に好適であると立証された。
このような測定法のために、例えば本発明による
特異的なモノクロナール抗体を固定相に結合させ
ることができる。これを、第1のインキユベーシ
ヨン工程で、測定すべきFSH及び一般に他の糖
蛋白質ホルモンを含有する試料と共にインキユベ
ートする。この際、特異的抗体により選択的に
FSHが結合される。慣用の洗浄工程の後に、こ
の標識された抗体と共にインキユベートする。こ
れは、必ずしも特異的にFSHを認識する必要は
なく、他の糖蛋白質ホルモンと交叉反応してもよ
い。 この方法は、非特異的に担体結合する抗体を用
いても実施できる。しかしながら、標識された抗
体として、本発明による特異的にFSHを認識す
る抗体を使用することが必要である。 このサンドイツチ法の変法は、同様に、FSH
の測定のために好適である。例えば、差当り、標
識されていない可溶性抗体で、かつ標識された抗
体で、可溶性サンドイツチ−複合体を形成するこ
とができる。これを、引続き、標識されていない
可溶性抗体のEcγ−部を認識する担体結合抗体を
用いて不溶性にする。この変法では、少なくとも
標識されていない可溶性抗体が本発明の抗体であ
るべきである。この際、標識された抗体を過剰に
使用するのが有利である。 本発明の重要性は、この免疫学的方法のため
に、特異的にFSHを認識し、従つてFSHの特異
的測定を可能とするモノクロナール抗体を提供す
ることが意想外に達成されたことにある。 従つて、本発明のもう1つの目的は、他の糖蛋
白質−ホルモンとの交叉反応性が3%より小さい
FSHを認識するモノクロナール抗体である。 本発明によるモノクロナール抗体を得るため
に、実験動物例えばマウスをFSHで免疫化する。
免疫化のために、この免疫原を例えばアジユバン
スと組合せて常法で付与する。アジユバンスとし
ては、水酸化アルミニウムを百日咳菌
(Bordetella pertussis)又はフロインドの
(Freundschem)アジユバンスと共に使用するの
が有利である。免疫化は、有利に、数ケ月にわた
り、4〜6週間隔での少なくとも4回の免疫化に
より行なう。(腹膜内注射)。 このように免疫化した動物から、B−リンパ球
を得、これを永久骨髄腫細胞系と融合させる。こ
の融合は、ケーラー(Ko¨hler)及びミルスタイ
ン(Milstein)の公知方法〔ネイチユア
(Nature)、256,1975,495〜497頁〕で行なう。
この際生じたハイブリツド細胞の1次培養物を常
法で、例えば、市販の細胞ソルター
(Zellsorter)の使用下に、又は限定稀釈により
クローン化する。それぞれ、適当な試験法で例え
ば酵素−イムノアツセイ(ELISA−法)で、LH
に対して陽性にかつ他の糖蛋白質−ホルモンとは
陰性にもしくは僅かにのみ反応する培養物を更に
加工する。こうして、本発明によるモノクロナー
ル抗体を産生する多数のハイブリツドーマー細胞
系が得られる。公知方法で、この細胞系を培養
し、これにより産生されたモノクロナール抗体を
単離することができる。 この方法で得られる細胞系の例は次のとおりで
ある: クローン293(NCACC 84122002) クローン163(NCACC 84122006)及び クローン381(NCACC 85022205)。 これらの細胞系は、それぞれの番号で寄託機関
NCACC(Natinal Collection of Animal Cell
Cultures)に寄託されている。 このように得られたモノクロナール抗体は、
FSHに対して非常に高い親和性(109〜1011/
モルの親和性定数)を有し、他の糖蛋白質ホルモ
ンとは3%より少なく交叉反応することで優れて
いる。特に有利なモノクロナール抗体は、他の糖
蛋白質−ホルモン例えばhCG,LH及びTSHに対
する1%より少ない特に有利に0.1%より少ない
交叉反応性を有する。この親和性及び他のホルモ
ンとの交叉反応性の測定のために、当業者に公知
の慣用法が提供される。 本発明によるモノクロナール抗体は、試料例え
ば血清又は血漿中でこのホルモンFSHを他の糖
蛋白質−ホルモンの存在で特異的に測定するため
に極めて好適である。この測定法のために、モノ
クロナール抗体そのもの又はそれからの相応する
免疫学的特性を有するフラグメント例えばFab−
フラグメントを使用することができる。従つて、
「モノクロナール抗体」の概念で、完全抗体もフ
ラグメントも理解される。 実施例 次の実施例につき、本発明を詳説する: 例 1 FSHに対するモノクロナール抗体の取得 生後8〜12週のBalb/c−マウスを、水酸化
アルミニウム及び百日咳菌に吸着されたhFSH
〔イムネツクス社(Firma lmmunex)〕100μgで
腹膜内で免疫化させる。6週後に4週間間隔で更
に3回免疫化させる。この際、各々、水酸化アル
ミニウム及び百日咳菌に吸着されたFSH50μgを
腹膜内に施与する。 最後の免疫化の後約4ケ月に融合させる。この
融合の3日及び4日前に、それぞれ1回、
FSH100μg/PBS(燐酸塩緩衝溶液)により腹膜
内もしくは静脈内で免疫化する。 融合のために、エンツイモロジイ(Enzy−
mology)73(1981)3頁中のガルフレ法
(Galfr′e,Methods)により、免疫化されたマウ
スの脾臓細胞108を骨髄腫(P3×63Ag8−653,
ATCC−CRL8375)2×107と混合し、引続き10
分間遠心分離する(300g,4℃)。細胞をもう一
度BSS(=平衡塩類溶液:balanced salt
solution)で洗浄し、400gで遠心する。上澄み
を除去する。細胞沈殿物に50%PEG−溶液(分
子量4000,Merck)1mlを加える。その後、室
温で、牛胎児血清(FKS)不含のPRMI1640−媒
体(RPMI=Rosewell Parker Memory
Institute)5mlを引続きもう1度10%FKS含有
RPMI1640−媒体5mlを徐々に滴加し、媒体で50
mlまで充たし、400gで10分間遠心分離する。沈
殿した細胞を10%FKS含有RPMI1640−媒体中に
入れる。脾臓細胞各 2×105を24−穴(well)−
細胞培養プレート(ヌンク社:Firma Nunc)上
に播種する。各培養液に、脾臓細胞1×105又は
腹膜滲出液細胞5×104を栄養細胞として添加す
る。次の日に、ヒポキサンチン−アザセリン−選
択媒体(ヒポキサンチン100mM、アザセリン1μ
g/ml)を添加する。 約7〜10日後に、既に多くのクローンが認めら
れる。1次培養液の上澄みを例2に記載の
ELISA法で試験する。抗原特異性抗体を含有す
る1次培養液を螢光活性化細胞ソルターを用いて
96−穴−細胞培養プレート(ヌンク社)上で更に
クローン化する。栄養細胞として、腹膜−滲出液
−細胞1×104又は脾臓細胞2×104を培養液96−
穴−細胞培養プレート当りに使用する。 こうして、双方のハイブリドーマー細胞系クロ
ーン293、クローン163及びクローン381を単離す
ることができ、これらは寄託機関NCACC
(National Collection of Animal Cell
Cultures)に次の寄託番号で寄託されている: NCACC 84122001(=クローン269) NCACC 8422006 (=クローン163)及び NCACC 8502205 (=クローン381)。 腹水を得るために、ハイブリツド細胞5×106
を予めプリスタン(Pristan)0.5mlで1〜2回前
処理されたマウスの腹膜内に注射する。その1〜
3週間後に、このマウスから腹水液を得ることが
できる。これから常法で抗体を単離することがで
きる。このモノクロナール抗体は特異的にFSH
を認識し、他の糖蛋白質−ホルモンとは交叉反応
しないかもしくは僅かに反応するだけである。こ
れらを以後、MAK293(クローン293)、MAK163
(クローン163)のもしくはMAK381(クローン
381の)と称する。 これらのモノクロナール抗体は、サブ群
lgG1/Kに属する。これらの親和性は108/
molである。親和性の測定のために、同族抗原と
の競争曲線をスカツチヤード法(Scatchard:
Ann.N.Y.Acad.Sci.51,1949,660頁参照)で測
定し、評価する。このために必要な測定は例2と
同様に実施する。 例 2 FSHに対する抗体のスクリーニング試験 免疫化されたマウスの血清又はハイブリツド細
胞の培養液上澄み又は腹水中のFSHに対する抗
体の存在及び特異性を知るために、試験原理とし
てELISA−法を用い、マイクロ滴定プレートに
FSH1μg/被覆緩衝液ml(0.2M炭酸ナトリウ
ム/重炭酸ナトリウム、PH9.3〜9.5)を37℃で1
夜重層する。0.9%塩化ナトリウム溶液及び1%
アルブミン溶液で10分間後処理する。引続き、
0.9%塩化ナトリウム溶液で洗浄する。引続き37
℃で1時間、試料100μと共にインキユベート
し、改めて0.9%塩化ナトリウム溶液で洗浄する。
更に、シヤフ(Schaf)−抗−マウス−lgG−ペル
オキシダーゼ−コンジユゲート100〜150mU/ml
と共にインキユベートする(37℃,1時間)。0.9
%塩化ナトリウムでの新たな洗浄工程の後に、ペ
ルオキシダーゼ活性を常法で測定する(例えば
ABTSを用い、室温で30分、405nmでの吸光度差
ΔmEを読む)。 このELISA−試験は次のようにしても実施で
きる: マイクロ滴定プレートにまずシヤフ−抗−マウ
ス−lgGを重層する(20〜30μg/被覆緩衝液ml,
37℃で1時間〜1夜)。その後、前記のように更
に処理し、試料溶液を添加し、改めて洗浄する。
引続き、FSH−ペルオキシダーゼ−コンジユゲ
ート250mU/mlと共にインキユベートする(1
時間、37℃)。これを改めて洗浄し、ペルオキシ
ダーゼ−活性を例えばABTSにより測定する。 例 3 他の糖蛋白質との交叉反応の測定 例2の記載と同様に操作する。差当り、FSH
の反応性を測定する。次いで、それぞれのモノク
ロナール抗体に、それぞれ、交叉反応を試験する
抗原(hCG,TSH,FSH)を上昇性濃度で添加
する。引続き、この交叉反応を次式で計算する: C(LH)/C(交叉反応抗原)×100=交叉反応率(
%) C=最大信号の50%に達するために必要である
抗原の濃度 次に第1表にMAK293,MAK163及び
MAK381に関する測定値をまとめる。
【表】
例 4
エピトープ特異性(Epitopspezifita¨t)の測定
マイクロ滴定プレートを、0.2M炭酸塩緩衝液
(PH9.6)中のマウス−抗体のFcγ−領域に対する
シヤフ(Schaf)−抗体10μg/mlを、37℃で2時
間又は4℃で1夜重層する。その後、PBS/ツ
イーン(Tween)20(0.1%)(PH7.35)で洗浄す
る。引続き、インキユベーシヨン緩衝液(PBS、
牛血清アルブミン(RSA)0.1%、ツイーン20
0.1%)中のモノクロナール抗体(MAK1、濃度
10μg/ml)100μを加え、37℃で2時間インキ
ユベートする。 FSH−ペルオキシダーゼ−コンジユゲート
(100mU/ml)を溶液中の第2のモノクロナール
抗体(MAK2)10μg/mlと共に4℃で1夜予備
インキユベートする。 MAK1を有するプレートのこのインキユベー
シヨンの後に、過剰のMAK1をPBS−ツイーン
20で除去する。このプレートに、更にPBS−
RSA中の1%マウス−正常血清を30分間室温で
後重層する。予備インキユベートされた
MAK2/FSH−ペルオキシダーゼ−複合体100μ
をプレート上に加え、37℃で2時間インキユベ
ートする。結合したペルオキシダーゼ−活性を基
質としてのABTSで可視にする。測定した色強
度は、MAK1に結合したMAK2/FSH−ペルオ
キシダーゼ−コンジユゲートに正比例する。 種々のモノクロナール抗体で得られた測定結果
を次にまとめる。結合した活性を非競争的に結合
したFSH−ペルオキシダーゼ−活性を百分率で
示す。
(PH9.6)中のマウス−抗体のFcγ−領域に対する
シヤフ(Schaf)−抗体10μg/mlを、37℃で2時
間又は4℃で1夜重層する。その後、PBS/ツ
イーン(Tween)20(0.1%)(PH7.35)で洗浄す
る。引続き、インキユベーシヨン緩衝液(PBS、
牛血清アルブミン(RSA)0.1%、ツイーン20
0.1%)中のモノクロナール抗体(MAK1、濃度
10μg/ml)100μを加え、37℃で2時間インキ
ユベートする。 FSH−ペルオキシダーゼ−コンジユゲート
(100mU/ml)を溶液中の第2のモノクロナール
抗体(MAK2)10μg/mlと共に4℃で1夜予備
インキユベートする。 MAK1を有するプレートのこのインキユベー
シヨンの後に、過剰のMAK1をPBS−ツイーン
20で除去する。このプレートに、更にPBS−
RSA中の1%マウス−正常血清を30分間室温で
後重層する。予備インキユベートされた
MAK2/FSH−ペルオキシダーゼ−複合体100μ
をプレート上に加え、37℃で2時間インキユベ
ートする。結合したペルオキシダーゼ−活性を基
質としてのABTSで可視にする。測定した色強
度は、MAK1に結合したMAK2/FSH−ペルオ
キシダーゼ−コンジユゲートに正比例する。 種々のモノクロナール抗体で得られた測定結果
を次にまとめる。結合した活性を非競争的に結合
したFSH−ペルオキシダーゼ−活性を百分率で
示す。
【表】
得られた結果は、モノクロナール抗体
MAK381が、双方の抗体MAK293及びMAK163
とは異なる抗原FSHのエピトープに対すするモ
ノクロナール抗体であることを示している。 例 5 FSHの測定 A 試薬溶液の製造 1 基質緩衝液: 燐酸ナトリウム緩衝液(PH7.4) 15mM 塩化ナトリウム 15mM EDTA 5mM 牛血清アルブミン(PH7.4) 0.2% o−ニトロフエニルガラクトシド 5mM 2 処方1−溶液 処方1として、本発明によるモノクロナールマ
ウス−抗−FSH−抗体を使用する。この抗体を
含有する腹水液に硫酸アンモニウムを1.8Mまで
加える。沈殿を15mM燐酸ナトリウム(PH7.0)
及び50mM塩化ナトリウムの緩衝液中に入れる。
こうして得た溶液をDEAE−セルロース上から通
過させる。 3 処方3−溶液 処方3として、同様であるが、処方1とは異な
る抗原決定因を確認する本発明のモノクロナール
マウス−抗−FSH−抗体を使用する。この抗体
を含有する腹水液を2)の記載と同様に精製す
る。完全抗体を公知方法で切断してFab−フラグ
メントを得る。得られたFab−フラグメントとβ
−ガラクトシダーゼとを、R.R.ポルター
(Porter)によるビオケミカル・ジヤーナル
(Biochem.J.)73,(1959)119頁の方法で結合さ
せる。 4 活性化された処方2−溶液 シヤフ−抗−マウス−Ecr−抗血清に硫酸アン
モニウムを1.8Mまで加える。沈殿を15mM硫酸
ナトリウム(PH7.0)及び50mM塩化ナトリウム
からの緩衝液中に入れる。こうして得た溶液を
DEAE−セルロース上に通過させる。 B 試薬担持材の製造 1 試薬担持材1 1ml当り 燐酸ナトリウム(PH7.3,37℃) 100μモル 塩化マグネシウム 2μモル 塩化ナトリウム 0.9% 牛血清アルブミン 0.5% マウスからの抗−FSH−モノクロナール抗
体(処方1−溶液) 5μg/ml 抗−FSH−抗体−(マウス)−Fab−フラグメ
ント−β−ガラクトシダーゼ−コンジユゲー
ト(処方3−溶液) 100mU を含有する溶液40μを、市販のポリエステル紙
よりなるフリース上に滴加する。引続き、室温で
乾燥させる。このフリースをその使用まで4℃及
び相対湿度20%に保持する。 2 試薬担持材2 セルロースフリース上に公知のブロムシアン活
性化法(西ドイツ特許出願公開第1768512号明細
書)で、マウス−抗体のEcγ−部に対するシヤフ
−抗体(活性化された処方2−溶液)を固定さ
せ、この際、繊維材料1g当り抗体10μgを固定
のために提供する。洗浄により、結合しなかつた
抗体を除き、フリースを室温で温和に乾燥させ
る。こうして得たフリースの貯蔵は試薬担持材1
と同様に行なう。 この双方の試薬担持材1及び2を用いる測定
は、西ドイツ特許出願第3425008・5号明細書に
記載の分析測定実施用装置を用いて行なう。これ
は、それぞれ特定の1試薬で含浸された吸収性担
持物質を有する多数の試薬領域と連結していて、
挿入素子をローター上に固定する際に、一緒にな
つて内部半径から外部半径方向に通じる試料液体
搬送路を形成する少なくとも1個の混合弁室と混
合室を有する試料装入室及び更に少なくとももう
1つの液体収容室及びこの室から測定室に通じ、
試料液体搬送路と少なくとも部分的に同じ搬送路
を有する成形体よりなる自動遠心分離分析装置用
ローター挿入素子を明らかにしている。ここで、
試料液体搬送路は、試料装入室(P)から吸着性
材料の充填された緩衝液含有室(a)、室(c)及び室(a)
と(c)の間に配置された第1弁室(VK1)を経て、
第2弁室(VK2)に至り、かつここから室(d)及
び収集室(AK)を経て測定室(K)に至る。も
う1つの液体を収容するために、ポンプ室として
構成された基質室(pK)を備えており、これは、
配量室(DK)及び毛細管(Kap)よりなる配量
装置及び溢流室(u¨K)を経て第2弁室と連結し
ている。第1図はこの使用ローター挿入素子を図
示している。ここで、試薬担持材1をこの使い捨
て部品の区分cに配置し、試薬担持材2を区分d
に配置する。この際、試料40μを、上縁の開口
部から直接、区分aにピペツト装入する。この試
料は稀釈されていない。基質溶液270μを室pK
中にピペツト装入する。高回転数が静止状態と交
換する適当なプログラムにより、試料及び基質溶
液は分離マトリツクス及びキユベツトの方向に送
られる。 この際、プログラムの経過で処方1及び3は試
料液により区分cから溶離され、引続きこの均質
混合物が反応される。生じた複合体が区分dで処
方2と結合される。区分cからdへの試料の移動
は非常に抑時間内に行なわれる。 基質溶液は、配量室DKを通つて少部分に分け
られ、その最初のものは、過剰の非複合コンジユ
ゲートの洗浄のために使用される。 複合体形成を介してdで結合したβ−ガラクト
シダーゼ活性は、試料中に含有されるFSH量に
比例する。この活性は、基質が5分間の反応で着
色生成物に変換されるのに充分な、更なる基質量
で測定される。生じる色はキユベツト中、410nm
で測定される。 既知FSH含量を有する検量血清で、第2図の
検量曲線が得られ、これは、FSH0〜4ng/mlの
範囲(FSH68/40に関する第1 IPR−規準で標
準化)を把握し、血清又は血漿中の充分に敏感な
FSH測定を可能にする。この検量曲線を用いて、
体液例えば血清又は血漿中の未知FSH含量を測
定することができる。 例 6 サンドイツチ−原理によるFSHの測定 被覆緩衝液(0.2M炭酸ナトリウム/重炭酸ナ
トリウムPH9.4)中に本発明によるFSHに対する
モノクロナール抗体を50μg/mlの濃度で含有す
る溶液100μをマイクロ滴定プレートの各々の
凹所に入れ、室温で1時間インキユベートする。
引続き、インキユベーシヨン緩衝液(牛血清アル
ブミン1%,Nac0.9%)を後重層し、室温で
30分間インキユベートする。洗浄緩衝液(Nac
0.9%、ツイーン20 0.1%)で洗浄後に、各凹所
に測定すべきFSHを含有する試料100μを入れ、
室温で30分間インキユベートする。洗浄緩衝液で
の再度洗浄の後に、ペルオキシダーゼ(活性
100mU/ml)とFSHとは異なるエピトープを認
識する本発明によるもう1つのモノクロナール抗
体とからのコンジユゲート100μを重層し、室
温で1時間インキユベートする。 このコンジユゲートの製造のために、オランダ
ガラシ(Meerrettich)−ペルオキシダーゼ(E.
C.1.11.1.7)を使用する。このコンジユゲートは
過沃素酸塩での酸化及び引続く水素化ホウ素を用
いる還元により、P.K.ナカネ(Nakane)による
処方〔M.B.ウイルソン(Wilson)及びP.K.ナカ
ネのW.クナツプ(Knapp)発行、イムノフルオ
レツセンス・アンド・リレイテツド・ステイニン
グ・テクニクス(Immunofluorescense and
Related Staining Technics)、1978、エルスヴ
イア/ノース・ホーランド・ビオメデイカル・プ
レス(Elsevier/North Holland,Biochemical
Press)215〜224頁〕に応じて製造する。 洗浄緩衝液を用いる洗浄の後に、ABTS−標
準溶液100μを重層し、1時間の呈色反応後に、
405nmでの吸光度をELISA−リーダー(ダイナ
テツク:Dynatec)で測定する。 検量曲線を得るために、前記の方法で、試料の
代りに、FSHを種々の限定された濃度で含有す
る溶液を用いる。
MAK381が、双方の抗体MAK293及びMAK163
とは異なる抗原FSHのエピトープに対すするモ
ノクロナール抗体であることを示している。 例 5 FSHの測定 A 試薬溶液の製造 1 基質緩衝液: 燐酸ナトリウム緩衝液(PH7.4) 15mM 塩化ナトリウム 15mM EDTA 5mM 牛血清アルブミン(PH7.4) 0.2% o−ニトロフエニルガラクトシド 5mM 2 処方1−溶液 処方1として、本発明によるモノクロナールマ
ウス−抗−FSH−抗体を使用する。この抗体を
含有する腹水液に硫酸アンモニウムを1.8Mまで
加える。沈殿を15mM燐酸ナトリウム(PH7.0)
及び50mM塩化ナトリウムの緩衝液中に入れる。
こうして得た溶液をDEAE−セルロース上から通
過させる。 3 処方3−溶液 処方3として、同様であるが、処方1とは異な
る抗原決定因を確認する本発明のモノクロナール
マウス−抗−FSH−抗体を使用する。この抗体
を含有する腹水液を2)の記載と同様に精製す
る。完全抗体を公知方法で切断してFab−フラグ
メントを得る。得られたFab−フラグメントとβ
−ガラクトシダーゼとを、R.R.ポルター
(Porter)によるビオケミカル・ジヤーナル
(Biochem.J.)73,(1959)119頁の方法で結合さ
せる。 4 活性化された処方2−溶液 シヤフ−抗−マウス−Ecr−抗血清に硫酸アン
モニウムを1.8Mまで加える。沈殿を15mM硫酸
ナトリウム(PH7.0)及び50mM塩化ナトリウム
からの緩衝液中に入れる。こうして得た溶液を
DEAE−セルロース上に通過させる。 B 試薬担持材の製造 1 試薬担持材1 1ml当り 燐酸ナトリウム(PH7.3,37℃) 100μモル 塩化マグネシウム 2μモル 塩化ナトリウム 0.9% 牛血清アルブミン 0.5% マウスからの抗−FSH−モノクロナール抗
体(処方1−溶液) 5μg/ml 抗−FSH−抗体−(マウス)−Fab−フラグメ
ント−β−ガラクトシダーゼ−コンジユゲー
ト(処方3−溶液) 100mU を含有する溶液40μを、市販のポリエステル紙
よりなるフリース上に滴加する。引続き、室温で
乾燥させる。このフリースをその使用まで4℃及
び相対湿度20%に保持する。 2 試薬担持材2 セルロースフリース上に公知のブロムシアン活
性化法(西ドイツ特許出願公開第1768512号明細
書)で、マウス−抗体のEcγ−部に対するシヤフ
−抗体(活性化された処方2−溶液)を固定さ
せ、この際、繊維材料1g当り抗体10μgを固定
のために提供する。洗浄により、結合しなかつた
抗体を除き、フリースを室温で温和に乾燥させ
る。こうして得たフリースの貯蔵は試薬担持材1
と同様に行なう。 この双方の試薬担持材1及び2を用いる測定
は、西ドイツ特許出願第3425008・5号明細書に
記載の分析測定実施用装置を用いて行なう。これ
は、それぞれ特定の1試薬で含浸された吸収性担
持物質を有する多数の試薬領域と連結していて、
挿入素子をローター上に固定する際に、一緒にな
つて内部半径から外部半径方向に通じる試料液体
搬送路を形成する少なくとも1個の混合弁室と混
合室を有する試料装入室及び更に少なくとももう
1つの液体収容室及びこの室から測定室に通じ、
試料液体搬送路と少なくとも部分的に同じ搬送路
を有する成形体よりなる自動遠心分離分析装置用
ローター挿入素子を明らかにしている。ここで、
試料液体搬送路は、試料装入室(P)から吸着性
材料の充填された緩衝液含有室(a)、室(c)及び室(a)
と(c)の間に配置された第1弁室(VK1)を経て、
第2弁室(VK2)に至り、かつここから室(d)及
び収集室(AK)を経て測定室(K)に至る。も
う1つの液体を収容するために、ポンプ室として
構成された基質室(pK)を備えており、これは、
配量室(DK)及び毛細管(Kap)よりなる配量
装置及び溢流室(u¨K)を経て第2弁室と連結し
ている。第1図はこの使用ローター挿入素子を図
示している。ここで、試薬担持材1をこの使い捨
て部品の区分cに配置し、試薬担持材2を区分d
に配置する。この際、試料40μを、上縁の開口
部から直接、区分aにピペツト装入する。この試
料は稀釈されていない。基質溶液270μを室pK
中にピペツト装入する。高回転数が静止状態と交
換する適当なプログラムにより、試料及び基質溶
液は分離マトリツクス及びキユベツトの方向に送
られる。 この際、プログラムの経過で処方1及び3は試
料液により区分cから溶離され、引続きこの均質
混合物が反応される。生じた複合体が区分dで処
方2と結合される。区分cからdへの試料の移動
は非常に抑時間内に行なわれる。 基質溶液は、配量室DKを通つて少部分に分け
られ、その最初のものは、過剰の非複合コンジユ
ゲートの洗浄のために使用される。 複合体形成を介してdで結合したβ−ガラクト
シダーゼ活性は、試料中に含有されるFSH量に
比例する。この活性は、基質が5分間の反応で着
色生成物に変換されるのに充分な、更なる基質量
で測定される。生じる色はキユベツト中、410nm
で測定される。 既知FSH含量を有する検量血清で、第2図の
検量曲線が得られ、これは、FSH0〜4ng/mlの
範囲(FSH68/40に関する第1 IPR−規準で標
準化)を把握し、血清又は血漿中の充分に敏感な
FSH測定を可能にする。この検量曲線を用いて、
体液例えば血清又は血漿中の未知FSH含量を測
定することができる。 例 6 サンドイツチ−原理によるFSHの測定 被覆緩衝液(0.2M炭酸ナトリウム/重炭酸ナ
トリウムPH9.4)中に本発明によるFSHに対する
モノクロナール抗体を50μg/mlの濃度で含有す
る溶液100μをマイクロ滴定プレートの各々の
凹所に入れ、室温で1時間インキユベートする。
引続き、インキユベーシヨン緩衝液(牛血清アル
ブミン1%,Nac0.9%)を後重層し、室温で
30分間インキユベートする。洗浄緩衝液(Nac
0.9%、ツイーン20 0.1%)で洗浄後に、各凹所
に測定すべきFSHを含有する試料100μを入れ、
室温で30分間インキユベートする。洗浄緩衝液で
の再度洗浄の後に、ペルオキシダーゼ(活性
100mU/ml)とFSHとは異なるエピトープを認
識する本発明によるもう1つのモノクロナール抗
体とからのコンジユゲート100μを重層し、室
温で1時間インキユベートする。 このコンジユゲートの製造のために、オランダ
ガラシ(Meerrettich)−ペルオキシダーゼ(E.
C.1.11.1.7)を使用する。このコンジユゲートは
過沃素酸塩での酸化及び引続く水素化ホウ素を用
いる還元により、P.K.ナカネ(Nakane)による
処方〔M.B.ウイルソン(Wilson)及びP.K.ナカ
ネのW.クナツプ(Knapp)発行、イムノフルオ
レツセンス・アンド・リレイテツド・ステイニン
グ・テクニクス(Immunofluorescense and
Related Staining Technics)、1978、エルスヴ
イア/ノース・ホーランド・ビオメデイカル・プ
レス(Elsevier/North Holland,Biochemical
Press)215〜224頁〕に応じて製造する。 洗浄緩衝液を用いる洗浄の後に、ABTS−標
準溶液100μを重層し、1時間の呈色反応後に、
405nmでの吸光度をELISA−リーダー(ダイナ
テツク:Dynatec)で測定する。 検量曲線を得るために、前記の方法で、試料の
代りに、FSHを種々の限定された濃度で含有す
る溶液を用いる。
第1図は本発明の方法を実施する自動遠心分離
分析装置用ローター挿入素子の略示図であり、第
2図は既知のFSH−含分の血清の検量曲線であ
る。
分析装置用ローター挿入素子の略示図であり、第
2図は既知のFSH−含分の血清の検量曲線であ
る。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 卵胞刺激ホルモンFSHを認識し、黄体形性
ホルモン(LH)、甲状腺刺激ホルモン(TSH)
又はヒト絨毛性ゴナドトロピン(hCG)とは3%
より少なく交叉反応するモノクロナール抗体少な
くとも1種を使用することを特徴とする、卵胞刺
激ホルモンの免疫学的測定法。 2 FSHを認識し、LH,TSH又はhCGとは1
%より少なく交叉反応するモノクロナール抗体少
なくとも1種を使用する、特許請求の範囲第1項
記載の方法。 3 そのうちの少なくとも1種はLH,TSH又は
hCGと3%より少なく交叉反応する、FSHを認
識するモノクロナール抗体少なくとも2種を使用
する、特許請求の範囲第1項又は第2項記載の方
法。 4 FSHを認識し、LH,TSH又はhCGとは3
%より少なく交叉反応するモノクロナール抗体少
なくとも1種を含有することを特徴とする、卵胞
刺激ホルモン測定用試薬。 5 FSHを認識し、LH,TSH及びhCGとは1
%より少なく交叉反応するモノクロナール抗体少
なくとも1種を含有する、特許請求の範囲第4項
記載の試薬。 6 そのうちの少なくとも1種がLH,TSH及び
hCGと3%より少なく交叉反応する、FSHを認
識するモノクロナール抗体少なくとも2種を含有
する、特許請求の範囲第4項又は第5項記載の試
薬。 7 LH,TSH及びhCGとは3%より少なく交叉
反応することを特徴とする、卵胞刺激ホルモンを
認識するモノクロナール抗体。 8 1%より低いLH,TSH,hCGとの交叉反応
性を有する、特許請求の範囲第7項記載のモノク
ロナール抗体。 9 LH,TSH及びhCGとは3%より少なく交叉
反応する卵胞刺激ホルモンを認識するモノクロナ
ール抗体を得るために、マウスをFSHで免疫化
し、この免疫化された動物の脾臓からB−リンパ
球を得、これを骨髄腫細胞と融合させ、生じたハ
イブリドーマ細胞をクローン化し、特異的に
FSHを認識する抗体を産生するクローンを選択
し、これにより形成された抗体を取得することを
特徴とする、モノクロナール抗体の取得法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3507849.9 | 1985-03-06 | ||
DE19853507849 DE3507849A1 (de) | 1985-03-06 | 1985-03-06 | Verfahren und reagenz zur bestimmung des follikel stimulierenden hormons sowie hierzu geeignete monoklonale antikoerper |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61218600A JPS61218600A (ja) | 1986-09-29 |
JPH0471519B2 true JPH0471519B2 (ja) | 1992-11-13 |
Family
ID=6264313
Family Applications (1)
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