JPH0453491A - 酵素反応方法 - Google Patents
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- JPH0453491A JPH0453491A JP16179590A JP16179590A JPH0453491A JP H0453491 A JPH0453491 A JP H0453491A JP 16179590 A JP16179590 A JP 16179590A JP 16179590 A JP16179590 A JP 16179590A JP H0453491 A JPH0453491 A JP H0453491A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は酵素反応方法に係り、特に、従来、回収が困難
であったプロテアーゼやアミラーゼ等の酵素を失活させ
ることなく有効に回収、再利用することができる酵素反
応方法に関する。
であったプロテアーゼやアミラーゼ等の酵素を失活させ
ることなく有効に回収、再利用することができる酵素反
応方法に関する。
[従来の技術]
でんぷん、セルロース、蛋白質等を各種酵素により分解
し、得られる低分子分解物を製品とする場合には、従来
、これらの原料液に酵素を加え、分解後、熱変性やその
他の方法により失活させ、分解物と失活酵素とを分離し
、製品としている。
し、得られる低分子分解物を製品とする場合には、従来
、これらの原料液に酵素を加え、分解後、熱変性やその
他の方法により失活させ、分解物と失活酵素とを分離し
、製品としている。
この場合には、酵素は1回限りの使用で失活させるため
、再使用は不可能である。
、再使用は不可能である。
これに対して、酵素の再利用を図る方法として、特公昭
63−62197号には、セルロース性物質の分解にセ
ルラーゼを用い、反応終了後、キトサン溶液を加え、p
)(をアルカリ性に調整し、セルラーゼ凝集物を回収、
再利用する方法が開示されている。
63−62197号には、セルロース性物質の分解にセ
ルラーゼを用い、反応終了後、キトサン溶液を加え、p
)(をアルカリ性に調整し、セルラーゼ凝集物を回収、
再利用する方法が開示されている。
[発明が解決しようとする課題]
特公昭63−62197号の方法よれば、セルラーゼの
回収、再利用が可能ではあるが、この方法は、セルラー
ゼとキトサンとの親和性が特異的に良いことを利用した
発明であり、セルラーゼ以外の、このような特異的な親
和性のない酵素については適用することができない。
回収、再利用が可能ではあるが、この方法は、セルラー
ゼとキトサンとの親和性が特異的に良いことを利用した
発明であり、セルラーゼ以外の、このような特異的な親
和性のない酵素については適用することができない。
一方、可溶不溶可逆担体(ヒドロキシメチルセルロース
系ポリマー : Bio Industry、 6
、 11 。
系ポリマー : Bio Industry、 6
、 11 。
833 (1989))に酵素を固定化する研究がなさ
れているが、完全な溶解性の調節が難しく、反復刊剛性
が十分に解明されていない、可溶状態が不溶状態に変化
するpH域が3〜5でかなり酸性域にあるため、酵素に
よっては失活してしまい、反復利用が不可能である、な
どの問題が残されている。
れているが、完全な溶解性の調節が難しく、反復刊剛性
が十分に解明されていない、可溶状態が不溶状態に変化
するpH域が3〜5でかなり酸性域にあるため、酵素に
よっては失活してしまい、反復利用が不可能である、な
どの問題が残されている。
本発明は上記従来の問題点を解決し、酵素を失活させる
ことなく、有効に回収、再利用することができる酵素反
応方法を提供することを目的とする。
ことなく、有効に回収、再利用することができる酵素反
応方法を提供することを目的とする。
[課題を解決するための手段]
本発明の酵素反応方法は、pH7以下の高分子基質含有
液にキトサンを担体とする固定化酵素を添加して反応さ
せた後、反応生成液のpHを7.5以上に調整して該固
定化酵素を析出させることを特徴とする。
液にキトサンを担体とする固定化酵素を添加して反応さ
せた後、反応生成液のpHを7.5以上に調整して該固
定化酵素を析出させることを特徴とする。
以下に、本発明の詳細な説明する。
まず、本発明で用いるキトサンを担体とする酵素(以下
「キトサン固定化酵素」と称す。)について説明する。
「キトサン固定化酵素」と称す。)について説明する。
キトサン(グルコサミンポリマー)は、通常、広く、カ
ニ、エビ等の甲羅に含まれ、それらを脱タンパク、脱カ
ルシウムすることにより得られるキトサン(N−アセチ
ルグルコサミンポリマー)を脱アセチルすることにより
得られるが、本発明で用いるキトサンはカニ、エビの甲
羅から調製されたものに限らず、広く化学合成品、酵素
合成品等、その構造が同じであればいずれでも良く、特
に限定されるものではない。本発明において、キトサン
は、分子量が5,000〜1,000.Goo脱ア脱ア
セチル化率5エ〜100 従って、通常の場合、このような比較的低分子量のキト
サンを得るために、キチンの脱アセチル化により得られ
た分子量so.ooo〜10 、000 、000、平
均粒径9〜300メツシユ、固有粘度0.25〜2od
x/gーキトサン(30℃、0.2モル酢酸+0.1モ
ル酢酸ナトリウムで測定)、コロイド当量値( p H
4 ) 2 、 5 〜6 、 2 m e g
/ g−キトサンのキトサンを、常法に従って、低分
子化処理する。
ニ、エビ等の甲羅に含まれ、それらを脱タンパク、脱カ
ルシウムすることにより得られるキトサン(N−アセチ
ルグルコサミンポリマー)を脱アセチルすることにより
得られるが、本発明で用いるキトサンはカニ、エビの甲
羅から調製されたものに限らず、広く化学合成品、酵素
合成品等、その構造が同じであればいずれでも良く、特
に限定されるものではない。本発明において、キトサン
は、分子量が5,000〜1,000.Goo脱ア脱ア
セチル化率5エ〜100 従って、通常の場合、このような比較的低分子量のキト
サンを得るために、キチンの脱アセチル化により得られ
た分子量so.ooo〜10 、000 、000、平
均粒径9〜300メツシユ、固有粘度0.25〜2od
x/gーキトサン(30℃、0.2モル酢酸+0.1モ
ル酢酸ナトリウムで測定)、コロイド当量値( p H
4 ) 2 、 5 〜6 、 2 m e g
/ g−キトサンのキトサンを、常法に従って、低分
子化処理する。
本発明において、キトサンに固定化する酵素としては特
に制限はないが、特にα−アミラーゼ等のでんぷん分解
酵素、プロテアーゼ等の蛋白質分解酵素等が好適である
。勿論、前述のセルラーゼにも適用することができる。
に制限はないが、特にα−アミラーゼ等のでんぷん分解
酵素、プロテアーゼ等の蛋白質分解酵素等が好適である
。勿論、前述のセルラーゼにも適用することができる。
本発明は、特に至適pH領域が7.0以下の酵素に有効
である。
である。
酵素をキトサンに固定化するには、pH2.0〜12.
0程度のキトサン液又は懸濁液中に酵素を添加して0〜
90℃程度のもとに攪拌してキトサンに酵素を吸着させ
た後、架橋剤を加えて架橋処理を行なう.なお、酵素の
添加量は、キトサン100gに対して10mg〜10g
程度とする。
0程度のキトサン液又は懸濁液中に酵素を添加して0〜
90℃程度のもとに攪拌してキトサンに酵素を吸着させ
た後、架橋剤を加えて架橋処理を行なう.なお、酵素の
添加量は、キトサン100gに対して10mg〜10g
程度とする。
また、架橋剤としては、エピクロルヒドリン、グルタル
アルデヒド、カルボジイミド、有機ジイソシアネート類
等を用いることができる。架橋処理後は濾過、洗浄を行
なって、キトサン固定化酵素を得る。
アルデヒド、カルボジイミド、有機ジイソシアネート類
等を用いることができる。架橋処理後は濾過、洗浄を行
なって、キトサン固定化酵素を得る。
本発明においては、このようなキトサン固定化酵素をp
H7以下の高分子基質含有液に添加してその酵素の好適
反応条件にて反応させる。その後、適当なアルカリを添
加してpを7,5以上に調整してキトサン固定化酵素を
析出させる。析出させたキトサン固定化酵素は濾過等に
より分離回収し、適当な洗浄液で洗浄することにより、
有効に次の反応に再使用することができる。
H7以下の高分子基質含有液に添加してその酵素の好適
反応条件にて反応させる。その後、適当なアルカリを添
加してpを7,5以上に調整してキトサン固定化酵素を
析出させる。析出させたキトサン固定化酵素は濾過等に
より分離回収し、適当な洗浄液で洗浄することにより、
有効に次の反応に再使用することができる。
[作用]
キトサンはその溶液のpHを変化させることにより可溶
・不溶の状態を調節することができる。
・不溶の状態を調節することができる。
即ち、その可溶・不溶はキトサンの分子量(重合度)に
は左右されず、pH7.0〜7.5にて急激に溶解度が
変化し、このpHよりも酸性域では可溶状態、アルカリ
性域では不溶状態となる。
は左右されず、pH7.0〜7.5にて急激に溶解度が
変化し、このpHよりも酸性域では可溶状態、アルカリ
性域では不溶状態となる。
従フて、このようなキトサンによる可溶・不溶可逆担体
に酵素を固定化したキトサン固定化酵素は、pH7以下
で可溶状態、pH7.5以上で不溶状態の可溶・不溶可
逆酵素であり、単に溶液のpHを調整するのみで、容易
かつ確実に溶解性の調節を行なうことができ、反応への
供与及び回収を効率的に行なうことができる。しかも、
本発明に係るキトサン固定化酵素は可溶・不溶の繰り返
しに対しても失活することはなく、酵素活性回収率は著
しく高い。
に酵素を固定化したキトサン固定化酵素は、pH7以下
で可溶状態、pH7.5以上で不溶状態の可溶・不溶可
逆酵素であり、単に溶液のpHを調整するのみで、容易
かつ確実に溶解性の調節を行なうことができ、反応への
供与及び回収を効率的に行なうことができる。しかも、
本発明に係るキトサン固定化酵素は可溶・不溶の繰り返
しに対しても失活することはなく、酵素活性回収率は著
しく高い。
[実施例]
以下に実験例及び実施例を挙げて本発明をより具体的に
説明する。
説明する。
実験例1
■ キトサンの調製
紅ズワイガニの甲羅を脱タンパク、脱カルシウム、脱ア
セチル化することにより得られた下記物性のキトサンを
原料としてキトサンの低分子化を行なった。
セチル化することにより得られた下記物性のキトサンを
原料としてキトサンの低分子化を行なった。
厚−料キトサン物性
粒径:9メツシュパスル200メツシユオン平均粒径:
16〜24メツシユ 蒸発残分(105℃)/キトサン:90.4%灰分(6
00℃)/蒸発残分:0.2%固有粘度[η] :
13.8dJRg−キトサンコロイド当量値(pH4)
: 5 、 t meq/g−キトサン低分子化反
応は、61の水に原料キトサン400gを添加した液を
攪拌機で攪拌しながら、pH11,0±0.2、反応温
度70℃にて36mでのH2O2(濃度35%)を10
mA/minの速度で添加し、添加終了後更に30分間
保温することにより行なった。反応終了後は、濃塩酸1
60mJ2を用いて溶解し、濾過することによフてキト
サン中の不溶解分を除去した後、Na0Hi液によりp
H11としキトサンを沈殿させた。この沈殿をNaBH
4を添加して還元処理した後、脱イオン水で洗浄を繰り
返し、溶解している極低分子キトサン、NaC1、Na
OH等を除去し、凍結乾燥することによりキトサン粉末
を得た。このキトサンの平均分子量は約63000、脱
アセチル化率は約95%であった。
16〜24メツシユ 蒸発残分(105℃)/キトサン:90.4%灰分(6
00℃)/蒸発残分:0.2%固有粘度[η] :
13.8dJRg−キトサンコロイド当量値(pH4)
: 5 、 t meq/g−キトサン低分子化反
応は、61の水に原料キトサン400gを添加した液を
攪拌機で攪拌しながら、pH11,0±0.2、反応温
度70℃にて36mでのH2O2(濃度35%)を10
mA/minの速度で添加し、添加終了後更に30分間
保温することにより行なった。反応終了後は、濃塩酸1
60mJ2を用いて溶解し、濾過することによフてキト
サン中の不溶解分を除去した後、Na0Hi液によりp
H11としキトサンを沈殿させた。この沈殿をNaBH
4を添加して還元処理した後、脱イオン水で洗浄を繰り
返し、溶解している極低分子キトサン、NaC1、Na
OH等を除去し、凍結乾燥することによりキトサン粉末
を得た。このキトサンの平均分子量は約63000、脱
アセチル化率は約95%であった。
■ キトサンへの酵素の固定化
■で調製したキトサン100gを10mM酢酸緩衝液(
PH7,5)142に懸濁した。そこへ酵素としてα−
アミラーゼ(Liquefying Type;Bac
illus 5ubtilis″ (生化学工業(株)
製))foOmg(比活性600 U / m g以上
)を添加した。4℃にて静かに24時間攪拌し、酵素を
吸着させた。その後、静置し、上清をデカンテーション
により分離し、予め調製しておいた2、5重量%グルタ
ルアルデヒド−5mM酢酸緩衝液(pH7,5)1j2
を加え、架橋を行なった。架橋終了後、濾過した後、4
mMのNa2 SO4溶液で洗浄し、更に100mMの
酢酸緩衝液(pH7,5)で洗浄し、キトサン固定化α
−アミラーゼを得た。このキトサン固定化α−アミラー
ゼを100mM酢酸緩衝液(pH5,0)にて溶解し可
溶状態の酵素とした。
PH7,5)142に懸濁した。そこへ酵素としてα−
アミラーゼ(Liquefying Type;Bac
illus 5ubtilis″ (生化学工業(株)
製))foOmg(比活性600 U / m g以上
)を添加した。4℃にて静かに24時間攪拌し、酵素を
吸着させた。その後、静置し、上清をデカンテーション
により分離し、予め調製しておいた2、5重量%グルタ
ルアルデヒド−5mM酢酸緩衝液(pH7,5)1j2
を加え、架橋を行なった。架橋終了後、濾過した後、4
mMのNa2 SO4溶液で洗浄し、更に100mMの
酢酸緩衝液(pH7,5)で洗浄し、キトサン固定化α
−アミラーゼを得た。このキトサン固定化α−アミラー
ゼを100mM酢酸緩衝液(pH5,0)にて溶解し可
溶状態の酵素とした。
同様に、酵素として酸性プロテアーゼ(“Asp 。
niger”(生化学工業(株)製))を用いて、キト
サン固定化プロテアーゼを得、可溶状態の酵素とした。
サン固定化プロテアーゼを得、可溶状態の酵素とした。
■ 担体固定化酵素の溶解性の変化
■で得られたキトサン固定化α−アミラーゼと、従来の
腸溶性ポリマー(ヒドロキシメチルセルロース系ポリマ
ー。以下rAS−LJと略記することがある。)を担体
として用いてα−アミラーゼを固定化したAS−L固定
化α−アミラーゼとについて、PHに対する溶解性の変
化を、相対濁度及び上清中の相対活性を測定することに
より調べ、結果を第1図に示した。
腸溶性ポリマー(ヒドロキシメチルセルロース系ポリマ
ー。以下rAS−LJと略記することがある。)を担体
として用いてα−アミラーゼを固定化したAS−L固定
化α−アミラーゼとについて、PHに対する溶解性の変
化を、相対濁度及び上清中の相対活性を測定することに
より調べ、結果を第1図に示した。
第1図により明らかなように、本発明に係るキトサン固
定化α−アミラーゼは、腸溶性ポリマーを用いた場合と
異なり、可溶・不溶変化pHは7.0〜7.5であり(
A S −L固定化α−アミラーゼはpH3,0〜5.
0)、こ(7)pHより酸性にて可溶であり、不溶状態
の固定化酵素は存在せず100%の活性が認められた。
定化α−アミラーゼは、腸溶性ポリマーを用いた場合と
異なり、可溶・不溶変化pHは7.0〜7.5であり(
A S −L固定化α−アミラーゼはpH3,0〜5.
0)、こ(7)pHより酸性にて可溶であり、不溶状態
の固定化酵素は存在せず100%の活性が認められた。
■ 繰り返しによる酵素活性回収率
■で得られたキトサン固定化α−アミラーゼをpH6,
0Lで可溶化させ、次に、pHを8. 0にて不溶化さ
せるという操作を5回繰り返し行なった。同様にAS−
L固定化α−アミラーゼをpH6,0にて可溶化しpH
3,0にて不溶化するという操作を5回繰り返し行ない
、各々、可溶状態の時の活性値を測定し、結果を第1表
に示した。
0Lで可溶化させ、次に、pHを8. 0にて不溶化さ
せるという操作を5回繰り返し行なった。同様にAS−
L固定化α−アミラーゼをpH6,0にて可溶化しpH
3,0にて不溶化するという操作を5回繰り返し行ない
、各々、可溶状態の時の活性値を測定し、結果を第1表
に示した。
第1表より明らかなように、キトサン固定化α−アミラ
ーゼは5回の操作で殆ど活性の変化が認められず、酵素
自体の回収率と殆ど等しい酵素活性回収率が得られた。
ーゼは5回の操作で殆ど活性の変化が認められず、酵素
自体の回収率と殆ど等しい酵素活性回収率が得られた。
一方、AS−L固定化α−アミラーゼの場合には、5回
の操作で活性が約1/2以下となった。これは、用いた
α−アミラーゼ(Bacillus 5ubtilis
)の安定pH域が5.0〜10.5であることに由来し
ている。
の操作で活性が約1/2以下となった。これは、用いた
α−アミラーゼ(Bacillus 5ubtilis
)の安定pH域が5.0〜10.5であることに由来し
ている。
なお、■で得られたキトサン固定化プロテアーゼについ
ても同様の操作を行なったが、同様に酵素活性の低下は
殆どなく、良好な酵素活性回収率が得られた。
ても同様の操作を行なったが、同様に酵素活性の低下は
殆どなく、良好な酵素活性回収率が得られた。
第1表 酵素活性回収率(%)
この結果から、本発明に係るキトサン固定化酵素を、α
−アミラーゼの如く、安定pH域が中性付近ないしアル
カリ性域にある酵素に適用した場合には、酵素の失活を
防ぎ、容易にしかも完全かつ確実な溶解性の調節と、可
溶・不溶化の繰り返し使用が可能な、可溶・不溶可逆酵
素を調製できることが明らかである。
−アミラーゼの如く、安定pH域が中性付近ないしアル
カリ性域にある酵素に適用した場合には、酵素の失活を
防ぎ、容易にしかも完全かつ確実な溶解性の調節と、可
溶・不溶化の繰り返し使用が可能な、可溶・不溶可逆酵
素を調製できることが明らかである。
実験例2
■ キトサンへの酵素の固定化
実験例1の■で調製したキトサン100gを10mM酢
酸緩衝液(pH7,5)IJ2に懸濁した。そこへ酵素
としてβ−アミラーゼ(5weetPotato;”5
erva Fe1nbiocheII+ica”(Gm
bH& Co (西独)製))joomg(比活性50
0 U / m g以上)相当を添加した。4℃にて静
かに24時間攪拌し、酵素を吸着させた。その後、静置
し、上滑をデカンテーションにより分離し、予め調製し
ておいた2、5重量%グルタルアルデヒド−5mM酢酸
M衝液(PH7,5)142を加え、架橋を行なった。
酸緩衝液(pH7,5)IJ2に懸濁した。そこへ酵素
としてβ−アミラーゼ(5weetPotato;”5
erva Fe1nbiocheII+ica”(Gm
bH& Co (西独)製))joomg(比活性50
0 U / m g以上)相当を添加した。4℃にて静
かに24時間攪拌し、酵素を吸着させた。その後、静置
し、上滑をデカンテーションにより分離し、予め調製し
ておいた2、5重量%グルタルアルデヒド−5mM酢酸
M衝液(PH7,5)142を加え、架橋を行なった。
架橋終了後、濾過した後、4mMのNa25O+溶液で
洗浄し、更に100 m Mの酢酸t&衝液(pH7,
5)で洗浄し、キトサン固定化β−アミラーゼを得た。
洗浄し、更に100 m Mの酢酸t&衝液(pH7,
5)で洗浄し、キトサン固定化β−アミラーゼを得た。
このキトサン固定化β−アミラーゼを100mM酢酸M
衝液(pH5,0)にて溶解し可溶状態の酵素とした。
衝液(pH5,0)にて溶解し可溶状態の酵素とした。
■ 担体固定化酵素の溶解性の変化
■で得られたキトサン固定化β−アミラーゼと、従来例
に係るAS−L固定化β−アミラーゼとについて、pH
に対する溶解性の変化を、相対濁度及び上清中の相対活
性を測定することにより調べ、結果を第2図に示した。
に係るAS−L固定化β−アミラーゼとについて、pH
に対する溶解性の変化を、相対濁度及び上清中の相対活
性を測定することにより調べ、結果を第2図に示した。
第2図により明らかなように、本発明に係るキトサン固
定化β−アミラーゼは、その酵素β−アミラーゼの至適
pH3,5において可溶である。一方、AS−L固定化
β−アミラーゼはpH3,5では不溶である。
定化β−アミラーゼは、その酵素β−アミラーゼの至適
pH3,5において可溶である。一方、AS−L固定化
β−アミラーゼはpH3,5では不溶である。
この結果から、β−アミラーゼ(至適pH3,5)の如
く、従来のAS−L等では、酵素の至適pHでは不溶と
なってしまうために適用不可能であった酵素にも、本発
明は有効に適用できることが明らかである。
く、従来のAS−L等では、酵素の至適pHでは不溶と
なってしまうために適用不可能であった酵素にも、本発
明は有効に適用できることが明らかである。
■ キトサンへの酵素固定化の効果
本発明に従って、キトサンへ酵素を共有結合により固定
化した場合と、単に吸着により担持した場合とについて
その効果を確認した。即ち、上記■で得られたキトサン
固定化β−アミラーゼと、上記■において、グルタルア
ルデヒドによる架橋処理を省略して調製したキトサン吸
着β−アミラーゼ(この場合、キトサンとβ−アミラー
ゼとに特別な親和性がないため、キトサン吸着β−アミ
ラーゼは、共有結合で固定化したキトサン固定化β−ア
ミラーゼのと比較して活性にして10%以下しか酵素を
固定化することができなかった。)とについてそれぞれ
、pH6,0にて可溶化させ、pH8,0にて不溶化し
、上清を取り除くという操作を3回繰り返し、酵素活性
回収率を求め、結果を第2表に示した。なお、いずれの
場合も、処理回数0の場合の活性を100として相対値
で表示した。
化した場合と、単に吸着により担持した場合とについて
その効果を確認した。即ち、上記■で得られたキトサン
固定化β−アミラーゼと、上記■において、グルタルア
ルデヒドによる架橋処理を省略して調製したキトサン吸
着β−アミラーゼ(この場合、キトサンとβ−アミラー
ゼとに特別な親和性がないため、キトサン吸着β−アミ
ラーゼは、共有結合で固定化したキトサン固定化β−ア
ミラーゼのと比較して活性にして10%以下しか酵素を
固定化することができなかった。)とについてそれぞれ
、pH6,0にて可溶化させ、pH8,0にて不溶化し
、上清を取り除くという操作を3回繰り返し、酵素活性
回収率を求め、結果を第2表に示した。なお、いずれの
場合も、処理回数0の場合の活性を100として相対値
で表示した。
第2表より明らかなように、キトサン固定化β−アミラ
ーゼは、全く活性が変化しなかったのに対し、キトサン
吸着β−アミラーゼは3回の繰り返しで殆ど活性は失わ
れた。これは可溶化、不溶化の操作の中でβ−アミラー
ゼはキトサンへの吸着力のみでは保持できず、損失され
てしまったためと考えられる。
ーゼは、全く活性が変化しなかったのに対し、キトサン
吸着β−アミラーゼは3回の繰り返しで殆ど活性は失わ
れた。これは可溶化、不溶化の操作の中でβ−アミラー
ゼはキトサンへの吸着力のみでは保持できず、損失され
てしまったためと考えられる。
第2表 酵素活性回収率(%)
実施例1
実験例1で調製したキトサン固定化α−アミラーゼを用
いて、本発明の方法に従って酵素反応を行なった。
いて、本発明の方法に従って酵素反応を行なった。
まず、下記高分子基質含有液iflにキトサン固定化α
−アミラーゼ10gを添加し、65℃で5時間反応させ
た。
−アミラーゼ10gを添加し、65℃で5時間反応させ
た。
高 子基質含有液
高分子基質:さつまいもでんぷん
(和光純薬工業(株)製品)
溶媒:0,1モルリン酸緩衝液
濃度:100g/u
p’H:6.0
反応終了後、反応生成液に30%アンモニア水を添加し
てpHを8.0に調整したところ、析出物を得た。得ら
れた析出物を濾過分離した後、0.1モルリン酸緩衝液
(pH8,0)で洗浄した。この析出物は分析の結果、
キトサン固定化α−アミラーゼであり、その回収率は1
00%、酵素活性回収率は100%であることが確認さ
れた。
てpHを8.0に調整したところ、析出物を得た。得ら
れた析出物を濾過分離した後、0.1モルリン酸緩衝液
(pH8,0)で洗浄した。この析出物は分析の結果、
キトサン固定化α−アミラーゼであり、その回収率は1
00%、酵素活性回収率は100%であることが確認さ
れた。
一方、濾液について分析したところ、高分子基質は、グ
ルコース、デキストラン、オリゴ環等に完全に分解され
ていることが確認された。
ルコース、デキストラン、オリゴ環等に完全に分解され
ていることが確認された。
上記で回収したキトサン固定化α−アミラーゼを用いて
、同様の酵素反応を繰り返し行なったところ、第1回目
の反応とほぼ等しい、高い反応効率にて分解を行なうこ
とができた。
、同様の酵素反応を繰り返し行なったところ、第1回目
の反応とほぼ等しい、高い反応効率にて分解を行なうこ
とができた。
[発明の効果]
以上詳述した通り、本発明の酵素反応方法によれば、高
分子基質と酵素との反応において、可溶・不溶可逆性の
キトサン固定化酵素を用いることにより、車にpHを所
定域に調整するのみで、容易かつ確実に、効率的に酵素
反応及び酵素の回収、再利用を実施することが可能とさ
れる。
分子基質と酵素との反応において、可溶・不溶可逆性の
キトサン固定化酵素を用いることにより、車にpHを所
定域に調整するのみで、容易かつ確実に、効率的に酵素
反応及び酵素の回収、再利用を実施することが可能とさ
れる。
しかも、回収にあたり、酵素を失活させることがなく、
その酵素活性の回収率は著しく高い。更に、キトサンは
安価に人手可能であるため、経済的にも極めて有利であ
る。
その酵素活性の回収率は著しく高い。更に、キトサンは
安価に人手可能であるため、経済的にも極めて有利であ
る。
第1図は実験例1で得られた担体固定化α−アミラーゼ
のpHに対する溶解性の変化を示すグラフ、第2図は実
験例2で得られた担体固定化β−アミラーゼのpHに対
する溶解性の変化を示すグラフである。
のpHに対する溶解性の変化を示すグラフ、第2図は実
験例2で得られた担体固定化β−アミラーゼのpHに対
する溶解性の変化を示すグラフである。
Claims (1)
- (1)pH7以下の高分子基質含有液にキトサンを担体
とする固定化酵素を添加して反応させた後、反応生成液
のpHを7.5以上に調整して該固定化酵素を析出させ
ることを特徴とする酵素反応方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP16179590A JPH0453491A (ja) | 1990-06-20 | 1990-06-20 | 酵素反応方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP16179590A JPH0453491A (ja) | 1990-06-20 | 1990-06-20 | 酵素反応方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0453491A true JPH0453491A (ja) | 1992-02-21 |
Family
ID=15742058
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP16179590A Pending JPH0453491A (ja) | 1990-06-20 | 1990-06-20 | 酵素反応方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0453491A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100397167B1 (ko) * | 2000-12-18 | 2003-09-13 | 코스맥 주식회사 | 여과지 공기 역세척용 산기장치 |
-
1990
- 1990-06-20 JP JP16179590A patent/JPH0453491A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100397167B1 (ko) * | 2000-12-18 | 2003-09-13 | 코스맥 주식회사 | 여과지 공기 역세척용 산기장치 |
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