RO122364B1 - Procedeu de imobilizare a tripsinei pe suport biopolimeric - Google Patents
Procedeu de imobilizare a tripsinei pe suport biopolimeric Download PDFInfo
- Publication number
- RO122364B1 RO122364B1 ROA200500923A RO200500923A RO122364B1 RO 122364 B1 RO122364 B1 RO 122364B1 RO A200500923 A ROA200500923 A RO A200500923A RO 200500923 A RO200500923 A RO 200500923A RO 122364 B1 RO122364 B1 RO 122364B1
- Authority
- RO
- Romania
- Prior art keywords
- trypsin
- chitosan
- reaction
- immobilization
- support
- Prior art date
Links
Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
Invenţia se referă la un procedeu de imobilizare a tripsinei pe suport biopolimeric-chitosan în care, în vederea obţinerii de granule, se aplică entraparea enzimei 150...200 mg tripsina tip II S, din pancreas de suine (SIGMA), dizolvată în soluţie de chitosan (SIGMA) 1...1,5 g în tampon acid acetic-acetat de sodiu la pH=5,4, urmată de tratarea cu aldehidă glutarică (FLUKA) 0,375...0,5 g şi soluţie 3% de borohidrură de sodiu.
Description
Invenția se referă o metodă de imobilizare a tripsinei, enzimă din clasa serin proteazelor, pe suport biopolimeric, respectiv chitosan, un polizaharid poliaminic obținut prin Ndiacetilarea chitinei, în vederea utilizării ca biocatalizator atât în reacția de hidroliză proteică, cât și în reacția inversă, de sinteză dipeptidică, constând în entraparea enzimei în gel de chitosan și reticularea cu agent polifuncțional-aldehidă glutarică și tratarea cu un agent de reducere, rezultând un produs granular stabil, ușor de separat din mediul de reacție și ușor de manevrat.
Folosirea enzimelor ca biocatalizatori în sinteză chimică a constituit un succes al ultimelor decenii. în soluție, enzimele solubile se comportă ca orice substanță, adică se dispersează în solvent, având libertate completă de mișcare. Imobilizarea enzimelor poate fi considerată ca o tehnică specială, având ca scop restrângerea libertății de mișcare a enzimelor. Utilizarea unui catalizator enzimatic în formă imobilizată presupune realizarea procesului catalitic într-un sistem bifazic heterogen și permite separarea biocatalizatorului din mediul de reacție.
Sunt cunoscute o serie de metode generale de imobilizare a enzimelor pe suporturi insolubile, care sunt aplicate și în cazul tripsinei, și anume legarea ionică sau adsorbția, legarea covalentă, entraparea, microîncapsularea, reticularea. Acestea sunt însă condiționate de suporturile utilizate, precum și de forma de condiționare a imobilizatului sub formă de membrană, granule, gel etc.
Scopul invenției este acela de a obține un biocatalizator pe bază de tripsină imobilizată pe suport de chitosan, utilizabil în reacția de scindare sau de formare a legăturii dipeptidice.
Modul de acțiune se pare a fi următorul: agentul polifuncțional (aldehidă glutarică) inițiază reticularea chitosanului solubil în prezența tripsinei; resturile lisil ale acesteia participă la reacția de reticulare și se leagă covalent de polimerul chitosan.
Materialul reticulat cu o textură de gel este un polimer bază Schiff, care, prin tratare cu un agent de reducere NaH4B, este redus și stabilizat, rezultând un produs sub formă de granule.
Problema tehnică pe care o rezolvă invenția este aceea că prin tratarea materialului reticulat cu textură de gel chitosan-tripsină cu un agent de reducere, și anume NaH4B, biocatalizatorul se obține sub formă de granule, fără a fi necesară o fază suplimentară de prelucrare, constând în trirurarea acesteia pe dispozitive speciale.
Metoda conform invenției înlătură dezavantajele ce apar prin condiționarea materialului prin triturare, prin aceea că pierderile de biocatalizator sunt mult diminuate, prin faptul că granulele se forează în vasul de reacție și separarea lor este foarte ușoară.
în ceea ce privește tehnologia de imobilizare pentru obținerea tripsinei imobilizate pe chitosan, sub formă de granule, s-au folosit:
- 1-1,5 g chitosan (SIGMA) din carcasă de crab;
- 3,125 ml acid acetic 2M (ICCF);
- 75 ml apă bidistilată;
- 3,125 ml acetat de sodiu 1M (CHIMOPAR S.A.).
Chitosanul s-a dizolvat pe baie de apă (la 50°C), sub agitare continuă, pH-ul final al soluției fiind de 5,4.
La această soluție s-a adăugat 150-200 g tripsină tip II S, din pancreas de suine (SIGMA), dizolvată în 10 ml acid clorhidric 0,001 M, și apoi 7,5 ml glutaraldehidă 50% (FLUKA) dizolvată în 75 ml apă bidistilată. Amestecul rezultat s-a menținut timp de 30 min la temperatură scăzută (4-5°C), pentru formarea gelului, după care s-au adăugat 750 mg borohidrură de sodiu dizolvat în 25 ml apă bidistilată, timp de 15 min, sub agitare continuă și în gheață. Imobilizatul sub formă de granule s-a obținut încă de la începutul adiției borohidrurii de sodiu.
RO 122364 Β1
Imobilizatul granulat astfel obținut s-a separat din amestecul de reacție prin filtrare, după care s-a condiționat prin spălare cu apă bidistilată, tampon fosfat 0,5 M, pH=7, tampon fosfat pH=5,6 și, în final, din nou cu apă bidistilată.
S-au obținut 11,7116 g imobilizat tripsină-chitosan sub formă de granule (greutatea uscată a imobilizatului), cu 1079,23 U activitate totală, ceea ce reprezintă un randament de 90%.
Stabilitatea statică și operațională a biocatalizatorului obținut s-a evaluat prin determinarea influenței pH-ului, a temperaturii și a numărului de reutilizări asupra activității enzimatice a preparatului imobilizat. Activitatea biocatalizatorului s-a determinat în următoarele condiții standard:
1. substrat sintetic: clorhidrarul Na-benzoil-DL-arginin-4-nitoanilidei (DL-ΒΑΡΑ, ales în conformitate cu specificitatea de substrat a tripsinei care hidrolizează legăturile peptidice în care este implicată L-lizina sau L-arginina, precum și grupele ester sau amidă);
2. concentrația substratului: 4 mM;
3. timp de reacție: 5 min;
4. agitare permanentă.
Principiul metodei
4-nitroanilină, produsul reacției de hidroliză enzimatică a Na-benzoil-DL-arginin-4nitroanilidei la nivelul legăturii amidice, se determină spectofotometric prin măsurarea absorbției supernatantului prelevat din mediul de reacție, la 405 nm (lungimea de undă la care 4-nitroanilina prezintă absorbție maximă). Formula de calcul a activității enzimatice este următoarea:
ExV.xdil
A= -------?------9,62 x I x τ x c unde:
E = absobanță la X = 405 nm
Vp = volumul inițial al soluției analizate (ml) = 6 dil = diluția soluției prevăzute după digestie = 50
I = grosimea stratului absorbant (cm) = 1 τ = timpul de reacție (min.) = 5 c = cantitatea de preparat imobilizat, luată în analiză (g): 0,1
9,62 = coeficientul de extincție molară a 4-nitroanilinei (cnr/umoli).
Rezultatele obținute sunt prezentate în tabelele 1,2, 3.
Rezultă că tripsina imobilizată pe chitosan prezintă un pH optim la valoarea 8, ca și enzima liberă, este stabilă la temperatură cuprinsă între 20-30’0, peste 40’C activitatea scade cu 51,5%, iar după 10 cicluri de reacție activitatea scade doar cu 10%.
Tabelul 1
Influența pH-ului de reacție asupra activității tripsinei imobilizate*
| Nr. crt. | pH de reacție | Absorbanța Ă=405 nm | Activ, enz. (pmoli/min/g) |
| 1. | 8 | 0,515 | 32,12 |
| 2. | 7,5 | 0,500 | 31,18 |
| 3. | 7 | 0,470 | 29,31 |
| 4. | 8,5 | 0,500 | 31,18 |
* temperatura de reacție = 25*C;
pH-urile de reacție s-au obținut cu ajutorul unor soluții tampon fosfat Na2HPO4-NaH2PO4, de concentrație 0,2 M.
RO 122364 Β1
Tabelul 2
Influența temperaturii asupra activității tripsinei imobilizate*
| Nr. crt. | Temperatura CC) | Absorbanța Ă=405 nm | Activ, enz. (pmoli/min/g) |
| 1. | 20 | 0,500 | 31,18 |
| 2. | 25 | 0,515 | 32,12 |
| 3. | 30 | 0,500 | 31,18 |
| 4. | 35 | 0,450 | 28,06 |
| 5. | 40 | 0,250 | 15,6 |
*pH-ul de reacție =8, obținut cu ajutorul tamponului Na2HPO4-NaH2PO4 0.2M
Tabelul 3
Comportarea tripsinei imobilizate la recirculări
| Nr. cicluri de reacție | Data | Interval de timp (zile) | Absorbanța Ă=405 nm | Activ, enz. (pmoli/min/g) | Activitate remanentă (%) |
| 1. | 05.05.2005 | - | 0,515 | 32,12 | 100,00 |
| 2. | 06.05.2005 | 1 | 0,498 | 31,05 | 96,66 |
| 3. | 09.05.2005 | 4 | 0,464 | 28,93 | 90,06 |
| 4. | 10.05.2005 | 5 | 0,441 | 27,50 | 85,61 |
| 5. | 11.05.2005 | 6 | 0,424 | 26,44 | 82,32 |
| 6. | 12.05.2005 | 7 | 0,405 | 25,25 | 78,61 |
| 7. | 13.05.2005 | 8 | 0,385 | 24,00 | 74,72 |
| 8. | 16.05.2005 | 11 | 0,365 | 22,80 | 71,00 |
| 9. | 17.05.2005 | 12 | 0,352 | 21,95 | 68,34 |
| 10. | 18.05.2005 | 13 | 0,335 | 20,89 | 65,04 |
După cum se poate observa, pe parcursul celor 10 cicluri de reacție, efectuate în timp de 13 zile, activitatea enzimatică a scăzut cu 35% față de valoarea prezentată în primul ciclu de reacție.
Claims (1)
- RevendicareProcedeu de imobilizare a tripsinei pe suport biopolimeric-chitosan, caracterizat prin aceea că se aplică entraparea a 150-200 mg tripsină tip II S, din pancreas de suine, care apoi se dizolvă în soluție de chitosan 1-1,5 g în tampon acid acetic-acetat de sodiu la pH=5,4, urmată de tratarea cu aldehidă glutarică 0,375-0,5 g și soluție 3% de borohidrură de sodiu, obținându-se granule neuniforme, de culoare galben-maronie, transparente, asemănătoare chihlimbarului, de tripsină, imobilizate pe suport biopolimeric-citosan cu 92,17 U/g activitate, rezistență mecanică bună timp de 10 cicluri de reacție, pH optim 8 și stabilitate la temperatură cuprinsă între 2O...3O°C.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| ROA200500923A RO122364B1 (ro) | 2005-10-31 | 2005-10-31 | Procedeu de imobilizare a tripsinei pe suport biopolimeric |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| ROA200500923A RO122364B1 (ro) | 2005-10-31 | 2005-10-31 | Procedeu de imobilizare a tripsinei pe suport biopolimeric |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RO122364B1 true RO122364B1 (ro) | 2009-04-30 |
Family
ID=40602740
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ROA200500923A RO122364B1 (ro) | 2005-10-31 | 2005-10-31 | Procedeu de imobilizare a tripsinei pe suport biopolimeric |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RO (1) | RO122364B1 (ro) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103352064A (zh) * | 2013-06-25 | 2013-10-16 | 天津大学 | 一种用复合载体固定化双酶制备玉米蛋白活性肽的方法 |
| USD983038S1 (en) * | 2021-03-17 | 2023-04-11 | Cj Cheiljedang Corporation | Container for food packing |
-
2005
- 2005-10-31 RO ROA200500923A patent/RO122364B1/ro unknown
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103352064A (zh) * | 2013-06-25 | 2013-10-16 | 天津大学 | 一种用复合载体固定化双酶制备玉米蛋白活性肽的方法 |
| USD983038S1 (en) * | 2021-03-17 | 2023-04-11 | Cj Cheiljedang Corporation | Container for food packing |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Singh et al. | Glutaraldehyde-activated chitosan matrix for immobilization of a novel cysteine protease, procerain B | |
| Altun et al. | Immobilization of pepsin on chitosan beads | |
| CN102199592B (zh) | 一种制备共固定化葡萄糖氧化酶/过氧化氢酶微球的方法 | |
| Kumar et al. | Immobilization of soybean (Glycine max) urease on alginate and chitosan beads showing improved stability: Analytical applications | |
| Yandri et al. | Immobilization of Aspergillus fumigatus α-amylase via adsorption onto bentonite/chitosan for stability enhancement | |
| JPS6221513B2 (ro) | ||
| CA1289091C (en) | Method for immobilization of enzyme and immobilized enzymes | |
| CN118620979B (zh) | 一种罗汉参多肽的制备方法 | |
| Torabizadeh et al. | Kinetic and thermodynamic features of nanomagnetic cross-linked enzyme aggregates of naringinase nanobiocatalyst in naringin hydrolysis | |
| Husain et al. | Entrapment of concanavalin A‐glycoenzyme complexes in calcium alginate gels | |
| Acharya et al. | Performance evaluation of a silk protein‐based matrix for the enzymatic conversion of tyrosine to l‐DOPA | |
| Intisar et al. | Enzyme immobilization on alginate biopolymer for biotechnological applications | |
| Iyengar et al. | Urease bound to chitin with glutaraldehyde | |
| RO122364B1 (ro) | Procedeu de imobilizare a tripsinei pe suport biopolimeric | |
| Stults et al. | Immobilization of proteins on partially hydrolyzed agarose beads | |
| Weber et al. | Immobilization of horseradish peroxidase on ca alginate-starch hybrid support: biocatalytic properties and application in biodegradation of phenol red dye | |
| RU2711786C1 (ru) | Способ получения гетерогенного препарата бромелайна, ковалентно связанного с матрицей хитозана | |
| CN108588153A (zh) | 一种氨基酸型表面活性剂的酶催化制备方法 | |
| Chen et al. | Improvement of cell lysis activity of immobilized lysozyme with reversibly soluble-insoluble polymer as carrier | |
| JPS5974984A (ja) | 固定化酵素もしくは固定化微生物の製造方法 | |
| RU2712690C1 (ru) | Способ получения препарата папаина в геле на основе пищевого хитозана и сукцината хитозана | |
| CN113667706A (zh) | 载氨甲环酸交联多孔淀粉及其制备方法 | |
| IL43573A (en) | Enzymes fixed on a solid cellulose support | |
| JPS61111686A (ja) | 固定化酵素の製造方法 | |
| CN100387711C (zh) | 一种用于溶菌酶亲和层析的硅胶负载表面大孔甲壳素基质 |