JPH04228097A - ミルク試料からの細胞分離および濃縮方法とそのキット - Google Patents
ミルク試料からの細胞分離および濃縮方法とそのキットInfo
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、生ミルク、殺菌ミルク
および液状に戻した粉末ミルクのようなミルク試料中の
非細胞成分からの細胞分離および濃縮に関する。
および液状に戻した粉末ミルクのようなミルク試料中の
非細胞成分からの細胞分離および濃縮に関する。
【0002】
【従来の技術】ミルク試料中の細胞計数および計量方法
は、2つのカテゴリーのいずれかに属する。第1のカテ
ゴリーでは、生ミルク試料中のウシの体細胞を、種々の
手段により、感染動物におけるミルク生産の質量を制限
する望ましくない条件、ウシの乳腺炎を有するかも知れ
ないミルク生産動物を識別するために計数する。乳腺炎
の試験方法は、細胞のアデノシン3リン酸塩(ATP)
を放出する洗浄剤のような薬剤での細胞溶解を伴う自動
機器および生物発光する体細胞ATP定量を使用して、
直接細胞を計数する。元々試料中に存在する体細胞の数
は、放出されたATPの測定により算定される。
は、2つのカテゴリーのいずれかに属する。第1のカテ
ゴリーでは、生ミルク試料中のウシの体細胞を、種々の
手段により、感染動物におけるミルク生産の質量を制限
する望ましくない条件、ウシの乳腺炎を有するかも知れ
ないミルク生産動物を識別するために計数する。乳腺炎
の試験方法は、細胞のアデノシン3リン酸塩(ATP)
を放出する洗浄剤のような薬剤での細胞溶解を伴う自動
機器および生物発光する体細胞ATP定量を使用して、
直接細胞を計数する。元々試料中に存在する体細胞の数
は、放出されたATPの測定により算定される。
【0003】第2のカテゴリーでは、菌類およびバクテ
リアのような原核生物体が、種々の計数方法を用いてミ
ルク試料中で計数される。これらの方法は、ミルク品質
の評価に、特に全体として汚染されたミルク試料をふる
いにかけるために使用される。
リアのような原核生物体が、種々の計数方法を用いてミ
ルク試料中で計数される。これらの方法は、ミルク品質
の評価に、特に全体として汚染されたミルク試料をふる
いにかけるために使用される。
【0004】微生物検出用の方法では、Breed
Smear(Breed, R.S., Zbl. B
akt.Ilte. Abr.30:337、1911
)が一般には最も速い方法である。この技術では、ミル
ク試料をスライド上になすりつけ、乾燥し、染色し、そ
してバクテリアを顕微鏡検査を用いて計数する。この方
法の欠点は、生存生物体、非生存生物体の両者ともに計
数されること、およびミルク試料が105生物体/ml
よりも少ない生物体を含むときには、十分有効な結果を
得るためには多数の顕微鏡視野で計数しなければならな
いということにある。顕微鏡検査は、退屈であり、操作
者を疲労させる。
Smear(Breed, R.S., Zbl. B
akt.Ilte. Abr.30:337、1911
)が一般には最も速い方法である。この技術では、ミル
ク試料をスライド上になすりつけ、乾燥し、染色し、そ
してバクテリアを顕微鏡検査を用いて計数する。この方
法の欠点は、生存生物体、非生存生物体の両者ともに計
数されること、およびミルク試料が105生物体/ml
よりも少ない生物体を含むときには、十分有効な結果を
得るためには多数の顕微鏡視野で計数しなければならな
いということにある。顕微鏡検査は、退屈であり、操作
者を疲労させる。
【0005】最も広く利用されるミルク微生物の検出方
法は、成長培地中あるいは上に接種した後、直接コロニ
ーを計数する標準プレート法である。標準方法(Sta
ndard Methods for the Exa
mination of Dairy Product
s, 15th Ed., 1985, Rechar
dson, G.H., Ed., American
Public Health Org. Washi
ngton, D.C.)は、ミルク試料用に発展し、
多数の工場が手動または自動の接種方法を使用してミル
ク試料を検査している。これらの方法は全世界的に利用
されているが、利用に当たりある種の欠点がある。第1
に、手動接種方法では、統計的意味のあるプレート数を
得るためにミルク試料の2つまたはそれ以上の希釈液を
接種しなければならないことである。第2に、手動およ
び自動接種方法用プレートは、通常昇温下でインキュベ
ートされ(即ち、米国では35℃:日本では32℃)、
これらの温度で好低温性生物体は抑制され、人工的に低
いプレート計数値が提供される。最終的に、約48時間
というインキュベーション期間が、バクテリアプレート
の計数前に必要であり、菌類に対しては、より長いプレ
ート期間が必要である。このインキュベーション期間中
に、試料が採取された原ミルク中でバクテリア数が増加
し、そして得られた結果は、試験後にミルク中のコロニ
ーを形成する生物体の実際数を過小評価することとなる
。このインキュベーション期間に対応する生ミルク処理
の遅延は、生ミルクの品質を下げ、最終製品の商品寿命
を短くすることとなる。
法は、成長培地中あるいは上に接種した後、直接コロニ
ーを計数する標準プレート法である。標準方法(Sta
ndard Methods for the Exa
mination of Dairy Product
s, 15th Ed., 1985, Rechar
dson, G.H., Ed., American
Public Health Org. Washi
ngton, D.C.)は、ミルク試料用に発展し、
多数の工場が手動または自動の接種方法を使用してミル
ク試料を検査している。これらの方法は全世界的に利用
されているが、利用に当たりある種の欠点がある。第1
に、手動接種方法では、統計的意味のあるプレート数を
得るためにミルク試料の2つまたはそれ以上の希釈液を
接種しなければならないことである。第2に、手動およ
び自動接種方法用プレートは、通常昇温下でインキュベ
ートされ(即ち、米国では35℃:日本では32℃)、
これらの温度で好低温性生物体は抑制され、人工的に低
いプレート計数値が提供される。最終的に、約48時間
というインキュベーション期間が、バクテリアプレート
の計数前に必要であり、菌類に対しては、より長いプレ
ート期間が必要である。このインキュベーション期間中
に、試料が採取された原ミルク中でバクテリア数が増加
し、そして得られた結果は、試験後にミルク中のコロニ
ーを形成する生物体の実際数を過小評価することとなる
。このインキュベーション期間に対応する生ミルク処理
の遅延は、生ミルクの品質を下げ、最終製品の商品寿命
を短くすることとなる。
【0006】プレーティングあるいはコロニー計数方法
は、手動でも自動でもよい。自動方法は、プレートルー
プ方法(Thompson, D. I. Journ
al of Milk and Food Techn
ology 30, P. 273, 1967)およ
び標準プレート計数(上記参照)を含む。
は、手動でも自動でもよい。自動方法は、プレートルー
プ方法(Thompson, D. I. Journ
al of Milk and Food Techn
ology 30, P. 273, 1967)およ
び標準プレート計数(上記参照)を含む。
【0007】半自動あるいは自動コロニー計数方法は、
Spiralプレーティング方法(Gilchrist
, J. E. Appl. Micro. 25,
p244, 1973)および電子コロニー計数器(F
leming, M.G. Ir. J. Agric
. Res. 14, p.21, 1975)により
実施される方法を含む。Direct Epi−Fl
uorescent技術(DEFT)は、手動により、
あるいは自動機器により実施できる蛍光識別技術である
。他の技術は、ミルク生物体の成長後のインピーダンス
測定および放射性グルコースを利用した放射測定法を含
む。
Spiralプレーティング方法(Gilchrist
, J. E. Appl. Micro. 25,
p244, 1973)および電子コロニー計数器(F
leming, M.G. Ir. J. Agric
. Res. 14, p.21, 1975)により
実施される方法を含む。Direct Epi−Fl
uorescent技術(DEFT)は、手動により、
あるいは自動機器により実施できる蛍光識別技術である
。他の技術は、ミルク生物体の成長後のインピーダンス
測定および放射性グルコースを利用した放射測定法を含
む。
【0008】微生物評価への他のアプローチは、蛍ルシ
フェラーゼ(Lumac(商標)bv、オランダ)を用
いたミルク中の生細胞からのATPの生物発光の利用で
あった。この方法では、生ミルク中のウシの体細胞をウ
シの細胞ATPを放出する薬剤で溶解し、このATPお
よび他の非微生物ATPをATPアーゼ、普通ポテトア
ピラーゼで分解する。最終的には、バクテリアの溶解剤
を加えそしてバクテリアATPを蛍ルシフェラーゼで測
定する。多くのデータが、これらの方法に関し文献で蓄
積されているが、ルシフェラーゼ反応のミルクおよび溶
媒阻害、非バクテリアATPの不完全な除去、バクテリ
ア細胞溶解の前および後におけるバクテリア検出に関す
るアピラーゼの有害作用(Theron, D.N.,
J. Food Prot. 49:4−7, 19
86)、およびバクテリアATPの非効率的な抽出によ
り、感度は日常のミルク試験に対しては不充分であった
。このタイプの分析に対する文献値(Webster,
J. A.J.,Hall, M.S., Rich,
C.N., Gilliliar, S.E.,Fo
r, S.R.,Leach、 F.R., J.
FoodProducts 51: 949−954,
1988)は、細胞感度は約1×106細胞/mlで
あり、グレードAの生ミルクに対する受容カットオフは
1×105細胞/mlであるから、この分析は米国では
利用できない。
フェラーゼ(Lumac(商標)bv、オランダ)を用
いたミルク中の生細胞からのATPの生物発光の利用で
あった。この方法では、生ミルク中のウシの体細胞をウ
シの細胞ATPを放出する薬剤で溶解し、このATPお
よび他の非微生物ATPをATPアーゼ、普通ポテトア
ピラーゼで分解する。最終的には、バクテリアの溶解剤
を加えそしてバクテリアATPを蛍ルシフェラーゼで測
定する。多くのデータが、これらの方法に関し文献で蓄
積されているが、ルシフェラーゼ反応のミルクおよび溶
媒阻害、非バクテリアATPの不完全な除去、バクテリ
ア細胞溶解の前および後におけるバクテリア検出に関す
るアピラーゼの有害作用(Theron, D.N.,
J. Food Prot. 49:4−7, 19
86)、およびバクテリアATPの非効率的な抽出によ
り、感度は日常のミルク試験に対しては不充分であった
。このタイプの分析に対する文献値(Webster,
J. A.J.,Hall, M.S., Rich,
C.N., Gilliliar, S.E.,Fo
r, S.R.,Leach、 F.R., J.
FoodProducts 51: 949−954,
1988)は、細胞感度は約1×106細胞/mlで
あり、グレードAの生ミルクに対する受容カットオフは
1×105細胞/mlであるから、この分析は米国では
利用できない。
【0009】試みられてきたこの方法の論理的な改良は
、ATP分析の前にミルクバクテリアを濃縮することで
ある。細胞濾過濃縮を利用する種々の技術が文献に報告
されているが(Peterkin, P.I., Sh
arpe, A.N., Applied and E
nviron. Micro., 39:1138−1
143, 1980)、これらの技術は全く煩わしく、
遅く、そしてまだ上記した技術的問題の多くが残ってい
る。
、ATP分析の前にミルクバクテリアを濃縮することで
ある。細胞濾過濃縮を利用する種々の技術が文献に報告
されているが(Peterkin, P.I., Sh
arpe, A.N., Applied and E
nviron. Micro., 39:1138−1
143, 1980)、これらの技術は全く煩わしく、
遅く、そしてまだ上記した技術的問題の多くが残ってい
る。
【0010】上記技術の全てはある程度成功したが、日
常の試験に満足裡に使用できる試験のタイプをミルク工
業に提供できるに充分な安価さ、簡単さ、正確さ、迅速
さを提供するものではなかった。
常の試験に満足裡に使用できる試験のタイプをミルク工
業に提供できるに充分な安価さ、簡単さ、正確さ、迅速
さを提供するものではなかった。
【0011】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、簡単かつ信
頼できる方法で実施できる、液状ミルク試料からの真核
あるいは原核細胞の濃縮方法を提供する。本発明は、生
ミルク、殺菌されたミルク、液状に戻した乾燥ミルク、
クリーム、アイスクリームおよび他のミルク製品および
誘導体を含む種々のタイプの液状ミルク製品の分析に使
用できる。
頼できる方法で実施できる、液状ミルク試料からの真核
あるいは原核細胞の濃縮方法を提供する。本発明は、生
ミルク、殺菌されたミルク、液状に戻した乾燥ミルク、
クリーム、アイスクリームおよび他のミルク製品および
誘導体を含む種々のタイプの液状ミルク製品の分析に使
用できる。
【0012】
【課題を解決するための手段】本発明は、ミルク試料に
キレート化剤含有透明化溶液を加え、ついで試料を短時
間遠心分離にかける等により他のミルク成分から細胞成
分を分離し、そして細胞ペレットから非細胞ミルク成分
を分離あるいはデカントする方法を提供する。細胞ペレ
ットの成分は、ミルク成分を汚染することに起因する干
渉がないような種々の分析を受けることができる。体細
胞および微生物の両者を含有してもよい細胞ペレットは
、それぞれの相対的濃度を顕微鏡的に検査して決定する
ことができる。体細胞は、体細胞のみを溶解するように
選ばれた洗浄剤のような溶解剤を透明化液中のキレート
剤と共に試料へ加えて除去してもよい。遠心分離後に残
っているペレットは、ほとんど微生物細胞だけを含有し
、これは微生物溶解のようなATP抽出後のATP濃縮
用分析を含む種々の方法で分析できる。濾過は、透明化
液が加えられたミルク試料中での他のミルク成分からの
細胞成分の分離にも利用できる。生ミルク試料でのウシ
体細胞のような真核細胞の存在もまた、迅速かつ簡単な
方法で測定できる。本発明は、バクテリア、イーストお
よびカビのような種々の生物体、およびバクテリア、イ
ーストおよびカビからの種々の胞子によるミルク試料の
汚染分析にも適している。
キレート化剤含有透明化溶液を加え、ついで試料を短時
間遠心分離にかける等により他のミルク成分から細胞成
分を分離し、そして細胞ペレットから非細胞ミルク成分
を分離あるいはデカントする方法を提供する。細胞ペレ
ットの成分は、ミルク成分を汚染することに起因する干
渉がないような種々の分析を受けることができる。体細
胞および微生物の両者を含有してもよい細胞ペレットは
、それぞれの相対的濃度を顕微鏡的に検査して決定する
ことができる。体細胞は、体細胞のみを溶解するように
選ばれた洗浄剤のような溶解剤を透明化液中のキレート
剤と共に試料へ加えて除去してもよい。遠心分離後に残
っているペレットは、ほとんど微生物細胞だけを含有し
、これは微生物溶解のようなATP抽出後のATP濃縮
用分析を含む種々の方法で分析できる。濾過は、透明化
液が加えられたミルク試料中での他のミルク成分からの
細胞成分の分離にも利用できる。生ミルク試料でのウシ
体細胞のような真核細胞の存在もまた、迅速かつ簡単な
方法で測定できる。本発明は、バクテリア、イーストお
よびカビのような種々の生物体、およびバクテリア、イ
ーストおよびカビからの種々の胞子によるミルク試料の
汚染分析にも適している。
【0013】本発明はまた、ミルクから分離された濃縮
細胞材料を、染料または着色を伴う顕微鏡検査、あるい
は色素産生バクテリア(chromogenic)、蛍
光、化学発光あるいは他の検出可能なリポーター分子を
含む他の種々のタイプの分析に利用できる。本発明はさ
らに、濃縮細胞材料のプレーティング用、微生物の広い
スペクトルあるいは特殊なプレーティング用、あるいは
通常使用されるミルク試験方法のいずれにも向く試料の
調整用にも関する。
細胞材料を、染料または着色を伴う顕微鏡検査、あるい
は色素産生バクテリア(chromogenic)、蛍
光、化学発光あるいは他の検出可能なリポーター分子を
含む他の種々のタイプの分析に利用できる。本発明はさ
らに、濃縮細胞材料のプレーティング用、微生物の広い
スペクトルあるいは特殊なプレーティング用、あるいは
通常使用されるミルク試験方法のいずれにも向く試料の
調整用にも関する。
【0014】本発明では、ビートルルシフェラーゼAT
Pの定量方法(DeLuca, M.A., Adva
nces in Enzymology, Meist
er, A., editor, 44, 37−68
, 1976)は、原液状ミルク試料中の細胞数の定量
用に利用できる。このATP定量方法は、真核あるいは
原核細胞数のいずれの定量化にも適用できる。分離され
た細胞材料は、酵素、免疫、あるいは液状ミルク試料中
の特殊生物体タイプを定量あるいは同定する分子生物学
的試験方法のいずれのタイプにも利用できる。
Pの定量方法(DeLuca, M.A., Adva
nces in Enzymology, Meist
er, A., editor, 44, 37−68
, 1976)は、原液状ミルク試料中の細胞数の定量
用に利用できる。このATP定量方法は、真核あるいは
原核細胞数のいずれの定量化にも適用できる。分離され
た細胞材料は、酵素、免疫、あるいは液状ミルク試料中
の特殊生物体タイプを定量あるいは同定する分子生物学
的試験方法のいずれのタイプにも利用できる。
【0015】本発明の方法は、膜、中空繊維あるいは遠
心分離型フィルターのような種々のタイプの濾過マトリ
ックスにおける濾過用種々の試料の前処理方法としても
使用できる。
心分離型フィルターのような種々のタイプの濾過マトリ
ックスにおける濾過用種々の試料の前処理方法としても
使用できる。
【0016】本発明は、本発明方法の実施に使用する新
規なキットをも包含する。このキットは、キレート化剤
および場合によっては体細胞溶解剤を含有する透明化溶
液、細胞ペレット洗浄用溶液、および、ATP検出用に
、微生物細胞ATP抽出剤あるいは溶解剤、緩衝液およ
び蛍ルシフェリンのようなATP検出剤を含む。キット
は、Breed Smear試験あるいは直接の微生
物検査方法の他のタイプ用の試料を調整するための成分
を含んでいてもよい。
規なキットをも包含する。このキットは、キレート化剤
および場合によっては体細胞溶解剤を含有する透明化溶
液、細胞ペレット洗浄用溶液、および、ATP検出用に
、微生物細胞ATP抽出剤あるいは溶解剤、緩衝液およ
び蛍ルシフェリンのようなATP検出剤を含む。キット
は、Breed Smear試験あるいは直接の微生
物検査方法の他のタイプ用の試料を調整するための成分
を含んでいてもよい。
【0017】本発明の他の目的、特徴および利益は添付
図面と共になされる下記の詳細な説明から明らかになる
であろう。
図面と共になされる下記の詳細な説明から明らかになる
であろう。
【0018】総括的には、本発明は液状ミルク試料から
の細胞材料の分離および濃縮方法に関する。細胞は、キ
レート化剤、および場合によっては洗浄剤のような体細
胞溶解剤を含有する透明化溶液をミルク試料に加え、そ
して細胞成分を非細胞成分から、試料を遠心分離にかけ
、そして細胞ペレットから非細胞上澄みを吸引あるいは
デカンティングすることによって細胞成分から非細胞成
分を分離して、ミルク試料から除去される。
の細胞材料の分離および濃縮方法に関する。細胞は、キ
レート化剤、および場合によっては洗浄剤のような体細
胞溶解剤を含有する透明化溶液をミルク試料に加え、そ
して細胞成分を非細胞成分から、試料を遠心分離にかけ
、そして細胞ペレットから非細胞上澄みを吸引あるいは
デカンティングすることによって細胞成分から非細胞成
分を分離して、ミルク試料から除去される。
【0019】定義:
用語“バクテリア”は、単細胞の原核生物を含むことを
意味する。“微生物”あるいは“非真核細胞”という用
語に入れ換えることもまた本発明の範囲に属する。
意味する。“微生物”あるいは“非真核細胞”という用
語に入れ換えることもまた本発明の範囲に属する。
【0020】用語“真核細胞”は、遺伝材料が核により
囲まれている生物体を表示することを意図する。
囲まれている生物体を表示することを意図する。
【0021】用語“アデノシン−5’−3リン酸塩”(
ATP)は、アデニン、D−リボースおよび3個のリン
酸塩基からなるヌクレオチドを表示するように使用され
る。ATPは、呼吸、醗酵および光合成におけるリン酸
化反応によって生成され、生物エネルギー代謝において
重要である。全ての生細胞は、ATPを含有する。
ATP)は、アデニン、D−リボースおよび3個のリン
酸塩基からなるヌクレオチドを表示するように使用され
る。ATPは、呼吸、醗酵および光合成におけるリン酸
化反応によって生成され、生物エネルギー代謝において
重要である。全ての生細胞は、ATPを含有する。
【0022】用語“液状ミルク試料”は、生ミルク、超
高温殺菌ミルク、低温長時間殺菌ミルク、液状に戻した
粉末ミルク、クリーム、スキムミルク、液化されたアイ
スクリームあるいはアイスミルクあるいは関連製品、豆
乳、および液状試料中のミルクあるいは乳製品の懸濁液
を包含する乳の生材料あるいはコーヒー等との混合液、
ミルクの培養液(増菌培養液)等の乳製品を起原とする
全ての液状溶液を含むことを意味する。
高温殺菌ミルク、低温長時間殺菌ミルク、液状に戻した
粉末ミルク、クリーム、スキムミルク、液化されたアイ
スクリームあるいはアイスミルクあるいは関連製品、豆
乳、および液状試料中のミルクあるいは乳製品の懸濁液
を包含する乳の生材料あるいはコーヒー等との混合液、
ミルクの培養液(増菌培養液)等の乳製品を起原とする
全ての液状溶液を含むことを意味する。
【0023】用語“キレーター”あるいは“キレート化
剤”は、カルシウムイオンと結合しあるいは化合し、そ
してマグネシウムイオン、鉄イオン、亜鉛イオン、カド
ミウムイオン、ベリリュームイオン、コバルトイオン、
ニッケルイオン、銅イオン、鉛イオンを包含する他の二
価金属イオン、および他の金属イオンと結合してもよい
全ての分子あるいは巨大分子を含むことを意味する。 “キレーター”あるいは“キレート化剤”は、これらの
イオンと結合すべく知られている全ての合成あるいは天
然の有機化合物、および上記タイプのイオンに結合でき
る蛋白質、糖あるいは炭水化物、リピッドおよび核酸、
およびこれらの組合わせを含む生物起原のいかなる分子
あるいは生物起原分子の副製品あるいは修飾製品を含む
。“キレーター”あるいは“キレート化剤”は、カルシ
ウムと結合し、そしてより少ない程度でマグネシウムお
よび多分上記イオンの1つ以上と結合する天然産あるい
は合成起原のいかなる固体材料をも含有する。
剤”は、カルシウムイオンと結合しあるいは化合し、そ
してマグネシウムイオン、鉄イオン、亜鉛イオン、カド
ミウムイオン、ベリリュームイオン、コバルトイオン、
ニッケルイオン、銅イオン、鉛イオンを包含する他の二
価金属イオン、および他の金属イオンと結合してもよい
全ての分子あるいは巨大分子を含むことを意味する。 “キレーター”あるいは“キレート化剤”は、これらの
イオンと結合すべく知られている全ての合成あるいは天
然の有機化合物、および上記タイプのイオンに結合でき
る蛋白質、糖あるいは炭水化物、リピッドおよび核酸、
およびこれらの組合わせを含む生物起原のいかなる分子
あるいは生物起原分子の副製品あるいは修飾製品を含む
。“キレーター”あるいは“キレート化剤”は、カルシ
ウムと結合し、そしてより少ない程度でマグネシウムお
よび多分上記イオンの1つ以上と結合する天然産あるい
は合成起原のいかなる固体材料をも含有する。
【0024】本発明で利用される種々の方法は、当業者
に知られたものであるが、本発明に従うこれらの方法の
組合わせは予測されたものではない。本発明の検定技術
の一部を担う従来知られた一般的な方法は、乳製品から
の微生物の標準プレーティング技術、微生物用染色およ
び同定方法、バクテリア抽出方法、他の方法における分
離、濃縮細胞材料の使用、および一般的キレート化学を
含有する。上記技術の一つあるいはそれ以上の論考は下
記の文献に記載され、これらは本発明の記載として引用
する: Standard Methods for
the Examination of Dairy
Products, 15th Ed., 1985,
Richardson, G.H., Ed.; A
merican Public Health Ass
oc., Washington, D.C.,; B
acteriological Analytical
Manual, 6th., USDA, 1984
, Marcel Dekker Inc., New
York; Sambrok J., Fritsc
h, E.F., and Maniatis, T.
, Molecular Cloning, 2nd
Ed., Ferguson, M.,Ed., Co
ld Spring Harbor Laborato
ry Press, 1989; O’Connor,
F., Australian J. Dairy
Tech., June 1984, pp.61−6
5, 1984(この文献は、微生物学的ミルク試験方
法および各方法の関連文献を含んでいる。);Micr
obiological Reviews 44, 7
39−769, Karl, D.M., 1980;
Martell, A.E., Chemistry
of the Metal Chelate Comp
ounds, Prentice−Hall,New
York, 1952。
に知られたものであるが、本発明に従うこれらの方法の
組合わせは予測されたものではない。本発明の検定技術
の一部を担う従来知られた一般的な方法は、乳製品から
の微生物の標準プレーティング技術、微生物用染色およ
び同定方法、バクテリア抽出方法、他の方法における分
離、濃縮細胞材料の使用、および一般的キレート化学を
含有する。上記技術の一つあるいはそれ以上の論考は下
記の文献に記載され、これらは本発明の記載として引用
する: Standard Methods for
the Examination of Dairy
Products, 15th Ed., 1985,
Richardson, G.H., Ed.; A
merican Public Health Ass
oc., Washington, D.C.,; B
acteriological Analytical
Manual, 6th., USDA, 1984
, Marcel Dekker Inc., New
York; Sambrok J., Fritsc
h, E.F., and Maniatis, T.
, Molecular Cloning, 2nd
Ed., Ferguson, M.,Ed., Co
ld Spring Harbor Laborato
ry Press, 1989; O’Connor,
F., Australian J. Dairy
Tech., June 1984, pp.61−6
5, 1984(この文献は、微生物学的ミルク試験方
法および各方法の関連文献を含んでいる。);Micr
obiological Reviews 44, 7
39−769, Karl, D.M., 1980;
Martell, A.E., Chemistry
of the Metal Chelate Comp
ounds, Prentice−Hall,New
York, 1952。
【0025】本発明は、液状ミルク試料からの細胞材料
除去用の分離および濃縮技術を包含する。この技術を実
施するには、分析されるミルク試料を図1の10に示す
ような適当な大きさの遠心分離容器に入れ、そしてミル
クにキレート化剤を加える。キレート化剤は上記した種
々のタイプのいずれでもよく、エチレンジアミン四酢酸
(EDTA、商品名Versene)、ビス−(O−ア
ミノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢
酸(BAPTA)、エチレングリコール−ビス−(β−
アミノエチルエーテル)N,N,N’,N’−四酢酸(
EGTA)、ニトリロ酢酸(トリグリシン、アンモニア
三酢酸塩、トリロンA)、トランス−1,2−ジアミノ
シクロヘキサン四酢酸(CDTA)、ジエチレントリア
ミノペンタ酢酸(DTPA)、クエン酸塩、アルギニン
、ハイポザンチン、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1
,3−ジスルフォン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス(g
lass)あるいは“ガラス”またはポリリン酸塩にお
ける分子のいずれか、クラウンエーテルタイプ化合物お
よびこれら分子の全ての誘導体および前駆体を含むこと
ができる。キレート化剤、例えばEDTAは、好ましく
は液状のミルク試料に透明化溶液として添加し、そして
混合物に蓋をし、反転あるいは旋回して混合する。 試料は、ついで適当な大きさの遠心分離器に入れ、最小
限5分間10,000×g(最小相対遠心力)で遠心分
離する。遠心分離後、3つの層に分離する。最上層は図
1の15で示されるようなクリームおよびミルク蛋白質
“パッド”(pad)であり、そしてこのパッドは、液
状試料の上側に浮動する。パッドの下側には、図1の1
6で示されるような第2の“透明”(clear)液領
域があり、これはミルク試料とは異なり、非不透明およ
び半透明である。最後に、遠心分離管の底部には、細胞
ペレット17があり、これの大きさは原ミルク試料の細
胞数およびキレート化剤および/または洗浄剤のタイプ
に依存する。ペレットは少量の細胞と会合した他のミル
ク成分を含んでもよい。代表的な1.0mlの生ミルク
試料の透明化後には、ペレットは約10〜40μlの容
積であり、外観は白色または灰色がかった白色である。
除去用の分離および濃縮技術を包含する。この技術を実
施するには、分析されるミルク試料を図1の10に示す
ような適当な大きさの遠心分離容器に入れ、そしてミル
クにキレート化剤を加える。キレート化剤は上記した種
々のタイプのいずれでもよく、エチレンジアミン四酢酸
(EDTA、商品名Versene)、ビス−(O−ア
ミノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢
酸(BAPTA)、エチレングリコール−ビス−(β−
アミノエチルエーテル)N,N,N’,N’−四酢酸(
EGTA)、ニトリロ酢酸(トリグリシン、アンモニア
三酢酸塩、トリロンA)、トランス−1,2−ジアミノ
シクロヘキサン四酢酸(CDTA)、ジエチレントリア
ミノペンタ酢酸(DTPA)、クエン酸塩、アルギニン
、ハイポザンチン、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1
,3−ジスルフォン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス(g
lass)あるいは“ガラス”またはポリリン酸塩にお
ける分子のいずれか、クラウンエーテルタイプ化合物お
よびこれら分子の全ての誘導体および前駆体を含むこと
ができる。キレート化剤、例えばEDTAは、好ましく
は液状のミルク試料に透明化溶液として添加し、そして
混合物に蓋をし、反転あるいは旋回して混合する。 試料は、ついで適当な大きさの遠心分離器に入れ、最小
限5分間10,000×g(最小相対遠心力)で遠心分
離する。遠心分離後、3つの層に分離する。最上層は図
1の15で示されるようなクリームおよびミルク蛋白質
“パッド”(pad)であり、そしてこのパッドは、液
状試料の上側に浮動する。パッドの下側には、図1の1
6で示されるような第2の“透明”(clear)液領
域があり、これはミルク試料とは異なり、非不透明およ
び半透明である。最後に、遠心分離管の底部には、細胞
ペレット17があり、これの大きさは原ミルク試料の細
胞数およびキレート化剤および/または洗浄剤のタイプ
に依存する。ペレットは少量の細胞と会合した他のミル
ク成分を含んでもよい。代表的な1.0mlの生ミルク
試料の透明化後には、ペレットは約10〜40μlの容
積であり、外観は白色または灰色がかった白色である。
【0026】本発明におけるキレート化剤の作用は、ミ
ルク試料中におけるカゼインミセルのサブミセルへの解
離である(L.C. Chaplin, J. Dai
ry Res. 51: 251−257, 1984
)。キレート処理後には、キレーターの無い状態でペレ
ット化した場合とは反対にミセル状ミルク蛋白質材料は
遠心分離管の上側に登りあるいは溶液中に残存する。キ
レーターは、ミセル構造に寄与する主成分であるカルシ
ウムイオンを結合する(S.H.C. Lia, Bi
ochemistry 11: 1818−1821,
1972)。 従って、本発明ではカルシウムイオ
ンを特によく結合するキレート化剤が好ましい。
ルク試料中におけるカゼインミセルのサブミセルへの解
離である(L.C. Chaplin, J. Dai
ry Res. 51: 251−257, 1984
)。キレート処理後には、キレーターの無い状態でペレ
ット化した場合とは反対にミセル状ミルク蛋白質材料は
遠心分離管の上側に登りあるいは溶液中に残存する。キ
レーターは、ミセル構造に寄与する主成分であるカルシ
ウムイオンを結合する(S.H.C. Lia, Bi
ochemistry 11: 1818−1821,
1972)。 従って、本発明ではカルシウムイオ
ンを特によく結合するキレート化剤が好ましい。
【0027】本発明の分離方法では、キレート化剤がミ
ルクミセルに作用し、一方検査すべき細胞にはネガティ
ブで作用しないことが非常に重要である。例えば、ビー
トルルシフェラーゼのような微生物ATPを測定する検
定方法の場合に、ミルクを透明にするが、微生物細胞A
TPあるいは生存度を除き、低めあるいは消失するキレ
ート化剤は検定方法用候補としては好ましくない。この
理由により、あるタイプの適用に対して、ある種のキレ
ート化剤が他のキレート化剤よりも優れている。特に適
していると見いだされたキレート化剤は、ニトリロトリ
酢酸およびエチレンジアミン四酢酸である。
ルクミセルに作用し、一方検査すべき細胞にはネガティ
ブで作用しないことが非常に重要である。例えば、ビー
トルルシフェラーゼのような微生物ATPを測定する検
定方法の場合に、ミルクを透明にするが、微生物細胞A
TPあるいは生存度を除き、低めあるいは消失するキレ
ート化剤は検定方法用候補としては好ましくない。この
理由により、あるタイプの適用に対して、ある種のキレ
ート化剤が他のキレート化剤よりも優れている。特に適
していると見いだされたキレート化剤は、ニトリロトリ
酢酸およびエチレンジアミン四酢酸である。
【0028】生ミルク試料から体細胞を除去分離し、微
生物細胞のみを分離濃縮する場合には、Triton
X−100あるいはNonidet P−40(N
P−40)のような非イオン性洗浄剤をキレート化剤と
共にミルク試料に加えてもよい。このような洗浄剤は特
に微生物細胞を溶解することなく体細胞を溶解する。何
故なら、体細胞は遠心分離前の処理で溶解され、遠心分
離後にはそのままの体細胞は本質的に残存しない。引き
続くこれらのペレット上でなされるATP定量は、バク
テリア細胞あるいは微生物細胞のみを検出する。
生物細胞のみを分離濃縮する場合には、Triton
X−100あるいはNonidet P−40(N
P−40)のような非イオン性洗浄剤をキレート化剤と
共にミルク試料に加えてもよい。このような洗浄剤は特
に微生物細胞を溶解することなく体細胞を溶解する。何
故なら、体細胞は遠心分離前の処理で溶解され、遠心分
離後にはそのままの体細胞は本質的に残存しない。引き
続くこれらのペレット上でなされるATP定量は、バク
テリア細胞あるいは微生物細胞のみを検出する。
【0029】他方、ミルク試料中の体細胞数を測定ある
いは定量する場合には、上記洗浄剤を細胞ペレットに添
加し、そして体細胞のみを溶解する。体細胞中に含有さ
れるATPのような細胞代謝生成物は、洗浄剤で抽出で
きない微生物ATPにより結果の上昇を伴うことなく、
容易に測定される。試料中に存在する体細胞数は、測定
された既知量のATPおよび体細胞中に存在すると知ら
れたATPの平均量を使用して計算される。この方法は
従来知られた方法の改良である(R. Bossuyt
, Milchwissenschaft 33: 1
1−13, 1978)。
いは定量する場合には、上記洗浄剤を細胞ペレットに添
加し、そして体細胞のみを溶解する。体細胞中に含有さ
れるATPのような細胞代謝生成物は、洗浄剤で抽出で
きない微生物ATPにより結果の上昇を伴うことなく、
容易に測定される。試料中に存在する体細胞数は、測定
された既知量のATPおよび体細胞中に存在すると知ら
れたATPの平均量を使用して計算される。この方法は
従来知られた方法の改良である(R. Bossuyt
, Milchwissenschaft 33: 1
1−13, 1978)。
【0030】本方法は、細胞の濃縮およびカゼインおよ
びカゼインミセル、親油性成分、および塩のようなバッ
クグラウンドのミルク汚染物を除去する有用な方法を提
供する。この濃縮を実施するには、例えばミルク1ml
をキレート化剤と共に遠心分離により透明化し、得られ
たペレットを非常に少量(例えば10μl)の適当な緩
衝液または液体で再度懸濁させる。この例では、全部の
細胞成分がミルク汚染物から除去され、そして100倍
に濃縮される。この濃縮試料は、所望の他の分析に利用
される。
びカゼインミセル、親油性成分、および塩のようなバッ
クグラウンドのミルク汚染物を除去する有用な方法を提
供する。この濃縮を実施するには、例えばミルク1ml
をキレート化剤と共に遠心分離により透明化し、得られ
たペレットを非常に少量(例えば10μl)の適当な緩
衝液または液体で再度懸濁させる。この例では、全部の
細胞成分がミルク汚染物から除去され、そして100倍
に濃縮される。この濃縮試料は、所望の他の分析に利用
される。
【0031】この方法の有用性の一例は、生ミルクから
の微生物を染色し計数することにある。ミルク試料がm
l当たり1×105よりも少ない生物体を含有し、10
μlのミルクが顕微鏡用スライドに載置され、染色され
た場合には、統計的に意味のある計数値を集めるため多
くの視野の染色標本を観察せねばならない。視野は、他
のミルク成分がバックグラウンドで染色されているため
、計数することが難しい。Breed Smear法
は、生ミルク品質検定のために広く、特に日本で広く使
用されている。前記濃縮工程(100倍に濃縮)を利用
することにより、計数用視野はより少ない数でよく、そ
して視野はバックグラウンドがより奇麗なので計数はよ
り容易である。このことは、標本作成を迅速にしかつ操
作者の疲労および誤りを減少する。
の微生物を染色し計数することにある。ミルク試料がm
l当たり1×105よりも少ない生物体を含有し、10
μlのミルクが顕微鏡用スライドに載置され、染色され
た場合には、統計的に意味のある計数値を集めるため多
くの視野の染色標本を観察せねばならない。視野は、他
のミルク成分がバックグラウンドで染色されているため
、計数することが難しい。Breed Smear法
は、生ミルク品質検定のために広く、特に日本で広く使
用されている。前記濃縮工程(100倍に濃縮)を利用
することにより、計数用視野はより少ない数でよく、そ
して視野はバックグラウンドがより奇麗なので計数はよ
り容易である。このことは、標本作成を迅速にしかつ操
作者の疲労および誤りを減少する。
【0032】ミルクの種々の他の成分から全細胞を分離
し、かつ本発明の方法に従って細胞を濃縮することによ
り、標本中の体細胞数を決めることができる。
し、かつ本発明の方法に従って細胞を濃縮することによ
り、標本中の体細胞数を決めることができる。
【0033】汚染する体細胞がないペレット中の微生物
細胞を、微生物抽出剤で溶解し、ATPを検定できる。 微生物細胞の数は、ATP測定および微生物細胞、ある
いは特にミルク微生物細胞に存在すると知られている平
均量を用いて算定される。このタイプの方法は、標準プ
レーティングおよびスパイラルプレーティングのような
他の方法に比して数多くの利点を提供する。第1に、他
の2つの方法の48時間という時間構成とは反対に1時
間という短時間で結果が利用できる。第2に、ATP測
定は、細胞凝集によって影響されることのない結果が得
られる。即ち、ATPは全ての細胞から測定される。;
プレーティング方法では、細胞の対あるいは細胞のグル
ープが1つのコロニーを形成するため、単一の細胞とし
て計数される。第3には、ATP方法では、30℃より
上の温度で培養するプレート計数法では測定されない好
低温性生物体からのATPを測定する。
細胞を、微生物抽出剤で溶解し、ATPを検定できる。 微生物細胞の数は、ATP測定および微生物細胞、ある
いは特にミルク微生物細胞に存在すると知られている平
均量を用いて算定される。このタイプの方法は、標準プ
レーティングおよびスパイラルプレーティングのような
他の方法に比して数多くの利点を提供する。第1に、他
の2つの方法の48時間という時間構成とは反対に1時
間という短時間で結果が利用できる。第2に、ATP測
定は、細胞凝集によって影響されることのない結果が得
られる。即ち、ATPは全ての細胞から測定される。;
プレーティング方法では、細胞の対あるいは細胞のグル
ープが1つのコロニーを形成するため、単一の細胞とし
て計数される。第3には、ATP方法では、30℃より
上の温度で培養するプレート計数法では測定されない好
低温性生物体からのATPを測定する。
【0034】先述したように、本発明を用いて分離濃縮
された細胞には、バックグラウンドを大きく減少し、濃
縮により細胞数を非常に増大することで、他の種々の方
法が適用できる。このことはより大きな感度の可能性と
、バックグラウンドの減少による信頼できかつ再現でき
る結果とを提供する。
された細胞には、バックグラウンドを大きく減少し、濃
縮により細胞数を非常に増大することで、他の種々の方
法が適用できる。このことはより大きな感度の可能性と
、バックグラウンドの減少による信頼できかつ再現でき
る結果とを提供する。
【0035】本発明の方法は、感度、細胞数、あるいは
細胞耐久性を改良する透明化遠心分離の前または後の細
胞濃厚化あるいは細胞増強化(enhancement
)技術を含んでもよい。例えば、細胞を細胞ATPを増
加する処理法(treatments)(D.P. T
eron,J. Food Prot. 46: 19
6−198, 1983)あるいは処理剤(K.M.
Oxley, Bioluminescence an
d Chemiluminescence, Ed.
J. Scholmerich, John Wile
y & Sons, N.Y.,pp. 495−19
8, 1986)で処理することにより、本方法の感度
は増強される。このタイプの方法は、培地の選択、ある
いはポリクローナルまたはモノクローナルでさえも使用
して、特殊な試料中における特殊なタイプの細胞の検出
にも適用できる。
細胞耐久性を改良する透明化遠心分離の前または後の細
胞濃厚化あるいは細胞増強化(enhancement
)技術を含んでもよい。例えば、細胞を細胞ATPを増
加する処理法(treatments)(D.P. T
eron,J. Food Prot. 46: 19
6−198, 1983)あるいは処理剤(K.M.
Oxley, Bioluminescence an
d Chemiluminescence, Ed.
J. Scholmerich, John Wile
y & Sons, N.Y.,pp. 495−19
8, 1986)で処理することにより、本方法の感度
は増強される。このタイプの方法は、培地の選択、ある
いはポリクローナルまたはモノクローナルでさえも使用
して、特殊な試料中における特殊なタイプの細胞の検出
にも適用できる。
【0036】図1を参照して本発明を説明する。この方
法では、ミルク試料をまず遠心分離容器10に入れる。 次にキレート化剤場合により洗浄剤をも加える。内容物
を混合した容器を遠心分離器にかけると得られた試料は
いわゆる透明化される。もしキレート化剤無しのミルク
試料を同様にして遠心分離にかけると、透明化せず、大
きな、拡散したミルク蛋白質および細胞ペレットが管の
底部にたまる。
法では、ミルク試料をまず遠心分離容器10に入れる。 次にキレート化剤場合により洗浄剤をも加える。内容物
を混合した容器を遠心分離器にかけると得られた試料は
いわゆる透明化される。もしキレート化剤無しのミルク
試料を同様にして遠心分離にかけると、透明化せず、大
きな、拡散したミルク蛋白質および細胞ペレットが管の
底部にたまる。
【0037】本発明は、好ましくは液状ミルク試料から
の細胞分離および濃縮に関する。本発明を下記の実施例
によりさらに詳細に説明する。
の細胞分離および濃縮に関する。本発明を下記の実施例
によりさらに詳細に説明する。
【0038】実施例1
この実施例は、人工的に接種されたミルク試料からの微
生物細胞の分離を開示する。加えて、この検定を市販の
利用できるミルクATP検定と比感度について比較した
。
生物細胞の分離を開示する。加えて、この検定を市販の
利用できるミルクATP検定と比感度について比較した
。
【0039】生ミルクを地方の乳牛場から得、そしてそ
の生ミルクを標準方法の寒天で画線培養して、個々のコ
ロニーを分離した(Standard Methods
for the Examinationof Da
iry Products, 上記参照)。11個の視
覚的に異なるコロニーのタイプを取り上げ、標準方法の
ブイヨンで成長させ、生ミルク中で見いだされる異なる
種の代表的試料を得るように試みた。これらの分離物か
ら一細胞タイプ(Serratia liquefac
iens)を実験用に選んだ。
の生ミルクを標準方法の寒天で画線培養して、個々のコ
ロニーを分離した(Standard Methods
for the Examinationof Da
iry Products, 上記参照)。11個の視
覚的に異なるコロニーのタイプを取り上げ、標準方法の
ブイヨンで成長させ、生ミルク中で見いだされる異なる
種の代表的試料を得るように試みた。これらの分離物か
ら一細胞タイプ(Serratia liquefac
iens)を実験用に選んだ。
【0040】殺菌ミルク試料を陰性対照として使用した
。殺菌ミルクの1mlに、10μlの一夜(23℃)成
長させたミルク分離バクテリアを添加した。この人工的
に接種したミルク試料および未接種殺菌ミルクを使用し
て、多数の接種ミルク試料を下記表に示すように調整し
た。
。殺菌ミルクの1mlに、10μlの一夜(23℃)成
長させたミルク分離バクテリアを添加した。この人工的
に接種したミルク試料および未接種殺菌ミルクを使用し
て、多数の接種ミルク試料を下記表に示すように調整し
た。
【0041】
試験管
殺菌ミルク 接種ミルク
(μl) (μl)
1
1000
0 2
999
1 3
998
2 4
995
5 5
990
10
6 980
20
7 950
50
8 900
100
9 80
0 200
10 50
0 500
11
0 1000接種ミルク試
料中の生物体数を計数するため、一夜細胞懸濁後の10
0μlの一連の希釈液(10−3,10−4,10−5
,10−6,10−7および10−8)を標準方法寒天
上におき、37℃で一夜インキュベートした。データを
計数する得られたコロニーは、試験管2−11のバクテ
リア数を計数するために使用した。
殺菌ミルク 接種ミルク
(μl) (μl)
1
1000
0 2
999
1 3
998
2 4
995
5 5
990
10
6 980
20
7 950
50
8 900
100
9 80
0 200
10 50
0 500
11
0 1000接種ミルク試
料中の生物体数を計数するため、一夜細胞懸濁後の10
0μlの一連の希釈液(10−3,10−4,10−5
,10−6,10−7および10−8)を標準方法寒天
上におき、37℃で一夜インキュベートした。データを
計数する得られたコロニーは、試験管2−11のバクテ
リア数を計数するために使用した。
【0042】一連の8個の1.5mlマイクロ遠心分離
管を試験管立におき、番号を付けた。そして1.0ml
の上表の各試料1−8を各試験管に入れた。ミルクを室
温(22℃)で10時間インキュベートし、500μl
の0.25MEDTA、pH8.0、0.5%Noni
det P−40(NP−40)溶液を各試験管に加
えた。試験管に蓋をし、10回逆転して混合し、そして
試験管のヒンジが外側を向くように注意しながら、アン
グルヘッドマイクロ遠心分離器(Wheaton)のロ
ーターにおいた。試験管を12,000gで10分間遠
心分離し、上澄みをフォーシットアスピレーターについ
ている使い捨て式の1000μlピペットチップを使用
して除去した。試験管を僅かに傾けて、得られたペレッ
トを吸引もしくは破壊しないように、最後の残っている
上澄みをアスピレーターに注いだ。
管を試験管立におき、番号を付けた。そして1.0ml
の上表の各試料1−8を各試験管に入れた。ミルクを室
温(22℃)で10時間インキュベートし、500μl
の0.25MEDTA、pH8.0、0.5%Noni
det P−40(NP−40)溶液を各試験管に加
えた。試験管に蓋をし、10回逆転して混合し、そして
試験管のヒンジが外側を向くように注意しながら、アン
グルヘッドマイクロ遠心分離器(Wheaton)のロ
ーターにおいた。試験管を12,000gで10分間遠
心分離し、上澄みをフォーシットアスピレーターについ
ている使い捨て式の1000μlピペットチップを使用
して除去した。試験管を僅かに傾けて、得られたペレッ
トを吸引もしくは破壊しないように、最後の残っている
上澄みをアスピレーターに注いだ。
【0043】各ペレットに500μlの0.1MMgC
l2、0.2%NP−40溶液を加え、試験管に蓋をし
、細胞がペレットに再懸濁するように旋回し、次いで試
験管を前と同じように遠心分離した。遠心分離後、上澄
みを再度吸引し、次いで500μlの0.1MMgCl
2、0.2%NP−40を各試験管に加えた。試験管に
蓋をし、遠心分離し、前と同じように吸引した。
l2、0.2%NP−40溶液を加え、試験管に蓋をし
、細胞がペレットに再懸濁するように旋回し、次いで試
験管を前と同じように遠心分離した。遠心分離後、上澄
みを再度吸引し、次いで500μlの0.1MMgCl
2、0.2%NP−40を各試験管に加えた。試験管に
蓋をし、遠心分離し、前と同じように吸引した。
【0044】各試験管に、細胞ATPを抽出するため、
50μlの1%トリクロロ酢酸(TCA)、1mMED
TA、0.0005%キシレノールブルー溶液を加えた
。試験管を旋回し、室温で10分間インキュベートした
。
50μlの1%トリクロロ酢酸(TCA)、1mMED
TA、0.0005%キシレノールブルー溶液を加えた
。試験管を旋回し、室温で10分間インキュベートした
。
【0045】使い捨てのピペットチップを使用して、T
CA抽出物をルミノメーターキュヴェット(Sarst
edt)に移し、400μlの0.1Mのトリス−酢酸
緩衝液、pH7.75で中和した。ルシフェラーゼ反応
を開始するため、100μlのルシフェラーゼ−ルシフ
ェリン試薬(Promega, Madison, W
I)を加え、次いで10秒のインテグレーション時間を
用いるBerthold 9501 ルミノメータ
ー(Berthold Analytical, Mu
nich, Germany)を用いて放出光を測定し
た。放出光の結果は、相対的光単位(RLU)として、
記録された。
CA抽出物をルミノメーターキュヴェット(Sarst
edt)に移し、400μlの0.1Mのトリス−酢酸
緩衝液、pH7.75で中和した。ルシフェラーゼ反応
を開始するため、100μlのルシフェラーゼ−ルシフ
ェリン試薬(Promega, Madison, W
I)を加え、次いで10秒のインテグレーション時間を
用いるBerthold 9501 ルミノメータ
ー(Berthold Analytical, Mu
nich, Germany)を用いて放出光を測定し
た。放出光の結果は、相対的光単位(RLU)として、
記録された。
【0046】同様に調整された汚染ミルク試料(試験管
1−11)を用いて、各ミルク試料の50μlを市販の
利用できるミルクバクテリア検出キット(商品名Lum
ac bv, オランダ)を使用し、製造者のプロトコ
ルに従い分析した。
1−11)を用いて、各ミルク試料の50μlを市販の
利用できるミルクバクテリア検出キット(商品名Lum
ac bv, オランダ)を使用し、製造者のプロトコ
ルに従い分析した。
【0047】これらの検定結果を図2に要約した。本発
明および市販の利用できるミルク検定キットに対して、
RLU(y軸)をミリリットル当たりのコロニー形成単
位(CFU)におけるバクテリア数(x軸)に対してプ
ロットした。本発明の感度は、1×104細胞/mlよ
りも小さく、一方Lumac検定の感度は約1×106
細胞/mlであることが見いだされた。
明および市販の利用できるミルク検定キットに対して、
RLU(y軸)をミリリットル当たりのコロニー形成単
位(CFU)におけるバクテリア数(x軸)に対してプ
ロットした。本発明の感度は、1×104細胞/mlよ
りも小さく、一方Lumac検定の感度は約1×106
細胞/mlであることが見いだされた。
【0048】実施例2
この実施例は、11個の生ミルク試料および1個の殺菌
ミルク試料からの微生物細胞の分離を開示する。
ミルク試料からの微生物細胞の分離を開示する。
【0049】生ミルク試料を地方の乳牛場から受け取り
、4℃で貯蔵した。殺菌ミルクもまた本検査に含まれる
。各ミルク試料1mlを1.5mlのエッペンドルフ試
験管にピペットで入れた。この操作をそれぞれについて
2回繰り返した。ミルク試料を室温で10分間インキュ
ベートし、次いで0.5mlの0.5%NP−40、3
%ニトリロトリ酢酸(ナトリウム塩)を各試験管に加え
た。試験管に蓋をし、10回逆転して混合した。
、4℃で貯蔵した。殺菌ミルクもまた本検査に含まれる
。各ミルク試料1mlを1.5mlのエッペンドルフ試
験管にピペットで入れた。この操作をそれぞれについて
2回繰り返した。ミルク試料を室温で10分間インキュ
ベートし、次いで0.5mlの0.5%NP−40、3
%ニトリロトリ酢酸(ナトリウム塩)を各試験管に加え
た。試験管に蓋をし、10回逆転して混合した。
【0050】試験管を12,000gで5分間室温で遠
心分離し、上澄みを実施例1と同様にして吸引した。各
ペレットに0.5mlの0.05mMMgCl2、0.
2%NP−40溶液を加え、試験管に蓋をし、旋回し、
上記と同じように5分間遠心分離した。遠心分離後、上
澄みを再吸引し、そして洗浄、遠心分離および吸引をも
う一度繰り返した。
心分離し、上澄みを実施例1と同様にして吸引した。各
ペレットに0.5mlの0.05mMMgCl2、0.
2%NP−40溶液を加え、試験管に蓋をし、旋回し、
上記と同じように5分間遠心分離した。遠心分離後、上
澄みを再吸引し、そして洗浄、遠心分離および吸引をも
う一度繰り返した。
【0051】得られたペレットをTCA溶液で処理し、
実施例1と同様に操作してルミノメーターで測定した。 各試料の結果は、測定を2度繰り返した結果の平均であ
る。各ミルク試料をもまた、無菌の0.8%NaClで
希釈し、1.0mlの10倍希釈液をペトリ皿にピペッ
トで加えた。この操作もそれぞれについて2回繰り返し
た。約20mlの無菌標準法寒天を各皿に加え、混合し
た。プレートを23℃で48時間インキュベートし、コ
ロニーを計数した。結果は2回繰り返したプレート計数
値の平均である。
実施例1と同様に操作してルミノメーターで測定した。 各試料の結果は、測定を2度繰り返した結果の平均であ
る。各ミルク試料をもまた、無菌の0.8%NaClで
希釈し、1.0mlの10倍希釈液をペトリ皿にピペッ
トで加えた。この操作もそれぞれについて2回繰り返し
た。約20mlの無菌標準法寒天を各皿に加え、混合し
た。プレートを23℃で48時間インキュベートし、コ
ロニーを計数した。結果は2回繰り返したプレート計数
値の平均である。
【0052】本実施例の結果を図3に示す。コロニー形
成単位(CFU)とRLUとの間には、検査範囲にわた
る直線状の対応が認められた。本データの相間計数は0
.994であり、2つの方法の間に有意の相間関係があ
ることを示す。
成単位(CFU)とRLUとの間には、検査範囲にわた
る直線状の対応が認められた。本データの相間計数は0
.994であり、2つの方法の間に有意の相間関係があ
ることを示す。
【0053】実施例3
本実施例は、実施例2の方法を変更した方法を使用した
65個の生ミルクからの微生物細胞の分離を開示する。
65個の生ミルクからの微生物細胞の分離を開示する。
【0054】ミルク試料を、微生物ペレットの処理にプ
ロテアーゼ処理を加えた外は実施例2と同様に処理した
。
ロテアーゼ処理を加えた外は実施例2と同様に処理した
。
【0055】第1の遠心分離工程の後に、得られたペレ
ットを500μlの0.05MMgCl2、0.2%N
P−40、および30μgのα−キモトリプシン(Si
gma, Cat. C7762)に溶解した。ペレッ
トを2秒間で3回逆転し、そして試験管を室温で20分
間インキュベートした。残りの工程は実施例2と同様に
操作した。
ットを500μlの0.05MMgCl2、0.2%N
P−40、および30μgのα−キモトリプシン(Si
gma, Cat. C7762)に溶解した。ペレッ
トを2秒間で3回逆転し、そして試験管を室温で20分
間インキュベートした。残りの工程は実施例2と同様に
操作した。
【0056】図4は、この方法による65個の生ミルク
におけるCFU/mlとRLUとの相関関係を示す。2
つの方法の間に正の相関関係があることを示している。
におけるCFU/mlとRLUとの相関関係を示す。2
つの方法の間に正の相関関係があることを示している。
【0057】実施例4
本実施例は、実施例3の方法を変更した方法を使用した
88個の生ミルクからの微生物細胞の分離を開示する。
88個の生ミルクからの微生物細胞の分離を開示する。
【0058】各生ミルク試料1.0mlに500μlの
3%ニトリロトリ酢酸(ナトリウム塩)溶液、0.5%
Triton X−100を加え、ついで実施例3と
同様に処理した。第1の遠心分離工程からの上澄みを吸
引した後、0.05mMMgCl2、0.01%ポリス
チレン粒子(0.984μm、Bangs Labs,
Carmel)を含有する0.2%Triton
X−100および60μg/mlのα−キモトリプシン
の溶液を加えた。ポリスチレン粒子は、遠心分離により
細胞と共に除去された。 試料をインキュベートし、遠心分離し、実施例3と同様
にして吸引し、そしてペレットを0.05mMMgCl
2、0.2%Triton X−100に再懸濁し、
逆転し、再度遠心分離を実施した。残りの工程は、実施
例3と同様に実施した。本実施例の結果を、図5に示す
。 2つの方法間に正の相関関係が認められた。
3%ニトリロトリ酢酸(ナトリウム塩)溶液、0.5%
Triton X−100を加え、ついで実施例3と
同様に処理した。第1の遠心分離工程からの上澄みを吸
引した後、0.05mMMgCl2、0.01%ポリス
チレン粒子(0.984μm、Bangs Labs,
Carmel)を含有する0.2%Triton
X−100および60μg/mlのα−キモトリプシン
の溶液を加えた。ポリスチレン粒子は、遠心分離により
細胞と共に除去された。 試料をインキュベートし、遠心分離し、実施例3と同様
にして吸引し、そしてペレットを0.05mMMgCl
2、0.2%Triton X−100に再懸濁し、
逆転し、再度遠心分離を実施した。残りの工程は、実施
例3と同様に実施した。本実施例の結果を、図5に示す
。 2つの方法間に正の相関関係が認められた。
【0059】実施例5
本実施例は、実施例4の方法を変更した方法を使用して
、18個の生ミルクからの微生物細胞の分離を開示する
。
、18個の生ミルクからの微生物細胞の分離を開示する
。
【0060】本実施例では、第1のミルク処理工程で担
体ポリスチレン粒子(実施例4と同じ)の等量を3%ニ
トリロトリ酢酸(ナトリウム塩)、0.5%Trito
nX−100溶液に加えた。担体は次からの工程では加
えなかった。さらにα−キモトリプシンを第1の洗浄溶
液における150μm/mlの第1の濃縮として使用し
た。残りの方法は、実施例4と同様に操作した。
体ポリスチレン粒子(実施例4と同じ)の等量を3%ニ
トリロトリ酢酸(ナトリウム塩)、0.5%Trito
nX−100溶液に加えた。担体は次からの工程では加
えなかった。さらにα−キモトリプシンを第1の洗浄溶
液における150μm/mlの第1の濃縮として使用し
た。残りの方法は、実施例4と同様に操作した。
【0061】図6に相関関係の結果を示す。2つの方法
の間に相関関係が認められた。
の間に相関関係が認められた。
【0062】実施例6
本実施例は、濾過装置を使用する本発明の有用性を開示
する。
する。
【0063】1組の接種された殺菌ミルク試料を実施例
1と同様にして調製した。実施例1における試験管1ー
11に対応する試料を使用した。
1と同様にして調製した。実施例1における試験管1ー
11に対応する試料を使用した。
【0064】各試料に、300μlの0.5MのEDT
A、pH8.0、および300μlの1%NP−40を
加えた。試験管に蓋をし、混合するために10X旋回し
、そして12,000gで10分間遠心分離した。上澄
みを吸引により除去し、ペレットを200μlの0.1
MMgCl2、0.2%NP−40中に再懸濁するため
に旋回して懸濁させた。細胞懸濁液をスピン濾過装置(
Millipore, UltrafreeMC, 0
.45μm)に入れ、12,000gで10分間遠心分
離した。遠心分離後、フィルターインサートを蓋の無い
無菌のマイクロ遠心分離管に入れ、50μlの1%TC
Aを加え、室温で10分間インキュベートした。フィル
ターおよびホールダーを10分間再度遠心分離してTC
A抽出物を集め、実施例1と同様に操作して分析した。
A、pH8.0、および300μlの1%NP−40を
加えた。試験管に蓋をし、混合するために10X旋回し
、そして12,000gで10分間遠心分離した。上澄
みを吸引により除去し、ペレットを200μlの0.1
MMgCl2、0.2%NP−40中に再懸濁するため
に旋回して懸濁させた。細胞懸濁液をスピン濾過装置(
Millipore, UltrafreeMC, 0
.45μm)に入れ、12,000gで10分間遠心分
離した。遠心分離後、フィルターインサートを蓋の無い
無菌のマイクロ遠心分離管に入れ、50μlの1%TC
Aを加え、室温で10分間インキュベートした。フィル
ターおよびホールダーを10分間再度遠心分離してTC
A抽出物を集め、実施例1と同様に操作して分析した。
【0065】本実施例の結果を図7に、そして濾過タイ
プフォーマットにおける本発明の有用性を示す。本実施
例で検査した細胞範囲にわたって、RLUが投与量と良
い応答を示した。
プフォーマットにおける本発明の有用性を示す。本実施
例で検査した細胞範囲にわたって、RLUが投与量と良
い応答を示した。
【0066】液状ミルク試料からの細胞成分分析用キッ
トは、下記の成分からなる:ATP検出に使用する微生
物試験キットは、 (a) キレート化剤含有透明化溶液およびキレート
化剤および下記洗浄剤のような体細胞溶解洗浄剤、(b
) 場合により、細胞ペレット洗浄用溶液、(c)
微生物細胞放出用の上記したような細胞溶解溶液のよ
うなATP抽出剤、 (d) 場合により、緩衝液、 (e) ルシフェラーゼ−ルシフェリンのようなAT
P検出剤からなる。
トは、下記の成分からなる:ATP検出に使用する微生
物試験キットは、 (a) キレート化剤含有透明化溶液およびキレート
化剤および下記洗浄剤のような体細胞溶解洗浄剤、(b
) 場合により、細胞ペレット洗浄用溶液、(c)
微生物細胞放出用の上記したような細胞溶解溶液のよ
うなATP抽出剤、 (d) 場合により、緩衝液、 (e) ルシフェラーゼ−ルシフェリンのようなAT
P検出剤からなる。
【0067】Breed Smearを使用する微生
物検出キレートは、 (a) キレート化剤含有透明化溶液および上記した
ような体細胞溶解洗浄剤、 (b) 場合により、細胞洗浄用の溶液、(c)
細胞染色用溶液からなる。
物検出キレートは、 (a) キレート化剤含有透明化溶液および上記した
ような体細胞溶解洗浄剤、 (b) 場合により、細胞洗浄用の溶液、(c)
細胞染色用溶液からなる。
【0068】ATP検出を使用するウシ体細胞試験キッ
トは、 (a) 上記したようなキレート化剤を含有する透明
化溶液、 (b) 微生物細胞を溶解しない体細胞溶解溶液、(
c) ルシフェラーゼ−ルシフェリンのようなATP
検出試薬からなる。
トは、 (a) 上記したようなキレート化剤を含有する透明
化溶液、 (b) 微生物細胞を溶解しない体細胞溶解溶液、(
c) ルシフェラーゼ−ルシフェリンのようなATP
検出試薬からなる。
【0069】上記キットのそれぞれは、実施例6に述べ
たようなフィルターを場合により含んでいてもよい。
たようなフィルターを場合により含んでいてもよい。
【0070】本発明は、開示した具体例に限定されるも
のではなく、本発明の範囲に入る各種の変形を包含する
。
のではなく、本発明の範囲に入る各種の変形を包含する
。
【0071】本発明の実施態様を次に示す。
【0072】
【請求項1】 下記工程からなる液状ミルク試料から
細胞を分離濃縮する方法、 (a) キレート化剤をミルク試料と混合する工程、
(b) 試料を遠心分離して、他のミルク成分から遠
心分離により除かれるペレット中の細胞成分を分離する
工程。
細胞を分離濃縮する方法、 (a) キレート化剤をミルク試料と混合する工程、
(b) 試料を遠心分離して、他のミルク成分から遠
心分離により除かれるペレット中の細胞成分を分離する
工程。
【0073】
【請求項2】 おもに細胞成分を含有する遠心分離で
除かれるペレットから上澄みを除去する工程をさらに含
む請求項1記載の方法。
除かれるペレットから上澄みを除去する工程をさらに含
む請求項1記載の方法。
【0074】
【請求項3】 ペレットを液中に再懸濁し、懸濁液を
試験して微生物細胞の濃度を測定する工程をさらに含む
請求項2記載の方法。
試験して微生物細胞の濃度を測定する工程をさらに含む
請求項2記載の方法。
【0075】
【請求項4】 細胞ペレットから上澄みを除去する工
程が、ペレット上の液体を吸引することにより実施され
る請求項2記載の方法。
程が、ペレット上の液体を吸引することにより実施され
る請求項2記載の方法。
【0076】
【請求項5】 遠心分離工程の前に、体細胞を溶解す
るが微生物細胞を溶解しない溶解剤を試料と混合する工
程をさらに含む請求項1記載の方法。
るが微生物細胞を溶解しない溶解剤を試料と混合する工
程をさらに含む請求項1記載の方法。
【0077】
【請求項6】 溶解剤が、非イオン性洗浄剤である請
求項5記載の方法。
求項5記載の方法。
【0078】
【請求項7】 キレート化剤が、エチレンジアミン四
酢酸である請求項1記載の方法。
酢酸である請求項1記載の方法。
【0079】
【請求項8】 キレート化剤が、ニトリロトリ酢酸で
ある請求項1記載の方法。
ある請求項1記載の方法。
【0080】
【請求項9】 キレート化剤が、ビス−(O−アミノ
フェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸、
エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエーテ
ル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2−
ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミノ
ペンタ酢酸、クエン酸塩、アルギニン、ハイポザンチン
、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフォ
ン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテルタ
イプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からなる
群から選ばれたものである請求項1記載の方法。
フェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸、
エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエーテ
ル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2−
ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミノ
ペンタ酢酸、クエン酸塩、アルギニン、ハイポザンチン
、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフォ
ン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテルタ
イプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からなる
群から選ばれたものである請求項1記載の方法。
【0081】
【請求項10】 再懸濁されたペレットを試験して、
細胞タイターを測定する請求項3記載の方法。
細胞タイターを測定する請求項3記載の方法。
【0082】
【請求項11】 試験が、ブリードスミアー試験であ
る請求項10記載の方法。
る請求項10記載の方法。
【0083】
【請求項12】 ペレットから上澄みを除去する工程
が、ペレットを液体中に再懸濁して再懸濁されたペレッ
トにブリードスミアー試験を実施して、細胞タイターを
測定する工程をさらに含む請求項5記載の方法。
が、ペレットを液体中に再懸濁して再懸濁されたペレッ
トにブリードスミアー試験を実施して、細胞タイターを
測定する工程をさらに含む請求項5記載の方法。
【0084】
【請求項13】 ペレットから上澄みを除去する工程
が、細胞ペレットに溶解剤を加えて細胞を溶解し、溶解
した試料を試験して試料中に存在するATPの相対的量
を測定する工程をさらに含む請求項5記載の方法。
が、細胞ペレットに溶解剤を加えて細胞を溶解し、溶解
した試料を試験して試料中に存在するATPの相対的量
を測定する工程をさらに含む請求項5記載の方法。
【0085】
【請求項14】 溶解試料を試験する工程が、試料に
ルシフェラーゼ−ルシフェリン試薬を加え、試料から放
出された相対的光放出量を測定する工程を含む請求項1
3記載の方法。
ルシフェラーゼ−ルシフェリン試薬を加え、試料から放
出された相対的光放出量を測定する工程を含む請求項1
3記載の方法。
【0086】
【請求項15】 液体中に細胞ペレットを懸濁し、体
細胞を溶解するが微生物細胞を溶解しない溶解剤を懸濁
液中に混合する工程をさらに含む請求項2記載の方法。
細胞を溶解するが微生物細胞を溶解しない溶解剤を懸濁
液中に混合する工程をさらに含む請求項2記載の方法。
【0087】
【請求項16】 溶解剤との混合後試料を遠心分離し
、上澄みを除去し、残りのペレットを液体中に再懸濁し
、細胞ペレットに微生物細胞からのATP抽出剤を添加
し、そして試料のATPを定量的に試験する工程をさら
に含む請求項15記載の方法。
、上澄みを除去し、残りのペレットを液体中に再懸濁し
、細胞ペレットに微生物細胞からのATP抽出剤を添加
し、そして試料のATPを定量的に試験する工程をさら
に含む請求項15記載の方法。
【0088】
【請求項17】 ATP抽出工程が、試料にルシフェ
ラーゼ−ルシフェリン試薬を加え、試料から放出された
光の相対的量を測定する請求項16記載の方法。
ラーゼ−ルシフェリン試薬を加え、試料から放出された
光の相対的量を測定する請求項16記載の方法。
【0089】
【請求項18】 ATP抽出剤が、微生物細胞を溶解
する溶解剤である請求項16記載の方法。
する溶解剤である請求項16記載の方法。
【0090】
【請求項19】 懸濁液を遠心分離し、おもに微生物
細胞であるペレット中の細胞から上澄みを分離する工程
をさらに含む請求項15記載の方法。
細胞であるペレット中の細胞から上澄みを分離する工程
をさらに含む請求項15記載の方法。
【0091】
【請求項20】 ペレットから分離された上澄み液を
試験してATP濃度を測定する工程をさらに含む請求項
19記載の方法。
試験してATP濃度を測定する工程をさらに含む請求項
19記載の方法。
【0092】
【請求項21】 ATPの試験工程が、上澄みにルシ
フェラーゼ−ルシフェリン試薬を添加し、試料から放出
された相対的光を測定する工程を含む請求項20記載の
方法。
フェラーゼ−ルシフェリン試薬を添加し、試料から放出
された相対的光を測定する工程を含む請求項20記載の
方法。
【0093】
【請求項22】 微生物細胞からATPを抽出する薬
剤を、ペレット中の細胞に加え、ついでATPの量的水
準を測定する工程をさらに含む請求項19記載の方法。
剤を、ペレット中の細胞に加え、ついでATPの量的水
準を測定する工程をさらに含む請求項19記載の方法。
【0094】
【請求項23】 ATP抽出剤が、溶解剤である請求
項22記載の方法。
項22記載の方法。
【0095】
【請求項24】 ATP水準の試験工程が、試料にル
シフェラーゼ−ルシフェリン試薬を加え、試料から放出
された相対的光を測定する工程からなる請求項22記載
の方法。
シフェラーゼ−ルシフェリン試薬を加え、試料から放出
された相対的光を測定する工程からなる請求項22記載
の方法。
【0096】
【請求項25】 ペレットから上澄みを除去し、体細
胞を溶解するが微生物細胞を溶解しない溶解剤とペレッ
ト中の細胞を混合し、試料を遠心分離し、上澄み液を除
去し、得られたペレット中の細胞に再度体細胞を溶解す
るが微生物細胞を溶解しない溶解剤を添加し、上澄みを
除去し、次いで得られたペレットを微生物細胞の相対的
濃度測定のために試験する工程をさらに含む請求項5記
載の方法。
胞を溶解するが微生物細胞を溶解しない溶解剤とペレッ
ト中の細胞を混合し、試料を遠心分離し、上澄み液を除
去し、得られたペレット中の細胞に再度体細胞を溶解す
るが微生物細胞を溶解しない溶解剤を添加し、上澄みを
除去し、次いで得られたペレットを微生物細胞の相対的
濃度測定のために試験する工程をさらに含む請求項5記
載の方法。
【0097】
【請求項26】 バクテリア細胞を安定化し細胞代謝
物の損失を防止する溶液中に遠心分離されたペレットを
再懸濁する工程をさらに含む請求項25記載の方法。
物の損失を防止する溶液中に遠心分離されたペレットを
再懸濁する工程をさらに含む請求項25記載の方法。
【0098】
【請求項27】 安定化溶液が、マグネシウムイオン
を含有する請求項26記載の方法。
を含有する請求項26記載の方法。
【0099】
【請求項28】 安定化溶液が、プロテアーゼを含有
する請求項26記載の方法。
する請求項26記載の方法。
【0100】
【請求項29】 プロテアーゼ含有溶液に遠心分離さ
れたペレットを再懸濁する工程をさらに含む請求項2記
載の方法。
れたペレットを再懸濁する工程をさらに含む請求項2記
載の方法。
【0101】
【請求項30】 (a) キレート化剤および体細
胞溶解剤を含有する透明化剤; (b) 微生物細胞ATPを放出するATP抽出剤を
含有する溶液; (c) ATP検出試薬 からなるミルク試料の試験に用いる微生物試験キット。
胞溶解剤を含有する透明化剤; (b) 微生物細胞ATPを放出するATP抽出剤を
含有する溶液; (c) ATP検出試薬 からなるミルク試料の試験に用いる微生物試験キット。
【0102】
【請求項31】 (1)遠心分離により得られた細胞
ペレットの洗浄用溶液および(2)緩衝液を含む請求項
30の試験キット。
ペレットの洗浄用溶液および(2)緩衝液を含む請求項
30の試験キット。
【0103】
【請求項32】 ATP検出試薬がルシフェラーゼ−
ルシフェリンである請求項30記載の試験キット。
ルシフェリンである請求項30記載の試験キット。
【0104】
【請求項33】 ATP抽出剤が微生物細胞を溶解す
る溶解剤である請求項30記載の試験キット。
る溶解剤である請求項30記載の試験キット。
【0105】
【請求項34】 体細胞溶解剤が非イオン性洗浄剤で
ある請求項30記載の試験キット。
ある請求項30記載の試験キット。
【0106】
【請求項35】 キレート化剤がエチレンジアミン四
酢酸である請求項30記載の試験キット。
酢酸である請求項30記載の試験キット。
【0107】
【請求項36】 キレート化剤がニトリロトリ酢酸で
ある請求項30記載の試験キット。
ある請求項30記載の試験キット。
【0108】
【請求項37】 キレート化剤が、ビス−(O−アミ
ノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸
、エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエー
テル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2
−ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミ
ンペンタ酢酸、クエン酸塩、アルギニン、ハイポザンチ
ン、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフ
ォン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテル
タイプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からな
る群から選ばれたものである請求項30記載の試験キッ
ト。
ノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸
、エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエー
テル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2
−ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミ
ンペンタ酢酸、クエン酸塩、アルギニン、ハイポザンチ
ン、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフ
ォン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテル
タイプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からな
る群から選ばれたものである請求項30記載の試験キッ
ト。
【0109】
【請求項38】 ATP抽出剤が、トリクロロ酢酸溶
液である請求項30記載の試験キット。
液である請求項30記載の試験キット。
【0110】
【請求項39】 ATP抽出剤溶液が、エチレンジア
ミン四酢酸およびキシレノールブルーをも含有する請求
項38記載の試験キット。
ミン四酢酸およびキシレノールブルーをも含有する請求
項38記載の試験キット。
【0111】
【請求項40】 ミルク成分から細胞を濾過するため
のフィルターをさらに含有する請求項30記載の試験キ
ット。
のフィルターをさらに含有する請求項30記載の試験キ
ット。
【0112】
【請求項41】 (a) キレート化剤および体細
胞溶解剤を含有する透明化剤; (b) 細胞染色用溶液 とからなるブリードスミアーのような細胞計数試験と協
力してミルク試料を試験するための微生物試験キット。
胞溶解剤を含有する透明化剤; (b) 細胞染色用溶液 とからなるブリードスミアーのような細胞計数試験と協
力してミルク試料を試験するための微生物試験キット。
【0113】
【請求項42】 遠心分離から得られた細胞ペレット
の洗浄溶液をさらに含有する請求項41記載の試験キッ
ト。
の洗浄溶液をさらに含有する請求項41記載の試験キッ
ト。
【0114】
【請求項43】 体細胞溶解剤が、非イオン性洗浄剤
である請求項41記載の試験キット。
である請求項41記載の試験キット。
【0115】
【請求項44】 透明化剤が、エチレンジアミン四酢
酸である請求項41記載の試験キット。
酸である請求項41記載の試験キット。
【0116】
【請求項45】 キレート化剤が、ニトリロトリ酢酸
である請求項41記載の試験キット。
である請求項41記載の試験キット。
【0117】
【請求項46】 キレート化剤が、ビス−(O−アミ
ノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸
、エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエー
テル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2
−ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミ
ンペンタ酢酸、クエン酸、アルギニン、ハイポザンチン
、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフォ
ン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテルタ
イプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からなる
群から選ばれたものである請求項30記載の試験キット
。
ノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸
、エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエー
テル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2
−ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミ
ンペンタ酢酸、クエン酸、アルギニン、ハイポザンチン
、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフォ
ン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテルタ
イプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からなる
群から選ばれたものである請求項30記載の試験キット
。
【請求項47】 ミルク成分からの細胞濾過用フィル
ターをさらに含む請求項41記載の試験キット。
ターをさらに含む請求項41記載の試験キット。
【0118】
【請求項48】 (a) キレート化剤を含有する
透明化剤; (b) 体細胞を溶解するが微生物細胞を溶解しない
剤を含有する溶液; (c) ATP検出試薬からなるミルク試料の体細胞
試験用に使用する試験キット。
透明化剤; (b) 体細胞を溶解するが微生物細胞を溶解しない
剤を含有する溶液; (c) ATP検出試薬からなるミルク試料の体細胞
試験用に使用する試験キット。
【0119】
【請求項49】 ATP検出試薬が、ルシフェラーゼ
−ルシフェリンである請求項48記載の試験キット。
−ルシフェリンである請求項48記載の試験キット。
【0120】
【請求項50】 体細胞溶解剤が、非イオン性洗浄剤
である請求項48記載の試験キット。
である請求項48記載の試験キット。
【0121】
【請求項51】 キレート化剤が、エチレンジアミン
四酢酸である請求項48記載の試験キット。
四酢酸である請求項48記載の試験キット。
【0122】
【請求項52】 キレート化剤が、ニトリロトリ酢酸
である請求項48記載の試験キット。
である請求項48記載の試験キット。
【0123】
【請求項53】 キレート化剤が、ビス−(O−アミ
ノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸
、エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエー
テル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2
−ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミ
ンペンタ酢酸、クエン酸、アルギニン、ハイポザンチン
、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフォ
ン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテルタ
イプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からなる
群から選ばれたものである請求項48記載の試験キット
。
ノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸
、エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエー
テル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2
−ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミ
ンペンタ酢酸、クエン酸、アルギニン、ハイポザンチン
、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフォ
ン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテルタ
イプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からなる
群から選ばれたものである請求項48記載の試験キット
。
【請求項54】 ミルク成分からの細胞濾過用のフィ
ルターをさらに含む請求項48記載の試験キット。
ルターをさらに含む請求項48記載の試験キット。
【0124】
【請求項55】 (a) キレート化剤をミルク試
料と混合する工程; (b) ミルク成分から試料中の細胞を分離する工程
、とからなる他のミルク成分から試料中の細胞を分離濃
縮するための液状ミルク試料の処理方法。
料と混合する工程; (b) ミルク成分から試料中の細胞を分離する工程
、とからなる他のミルク成分から試料中の細胞を分離濃
縮するための液状ミルク試料の処理方法。
【0125】
【請求項56】 分離工程が、試料の遠心分離を実施
して、他のミルク成分から遠心分離により除去されるペ
レット中の細胞成分を分離する請求項55記載の処理方
法。
して、他のミルク成分から遠心分離により除去されるペ
レット中の細胞成分を分離する請求項55記載の処理方
法。
【0126】
【請求項57】 細胞の分離工程が、細胞をブロック
し、キレート化剤と結合した他のミルク成分を通過する
フィルターで試料を濾過する工程を含む請求項55記載
の処理方法。
し、キレート化剤と結合した他のミルク成分を通過する
フィルターで試料を濾過する工程を含む請求項55記載
の処理方法。
【0127】
【請求項58】 おもに細胞成分を含有するペレット
から上澄みを除去する工程をさらに含む請求項56記載
の処理方法。
から上澄みを除去する工程をさらに含む請求項56記載
の処理方法。
【0128】
【請求項59】 キレート化剤が、エチレンジアミン
四酢酸である請求項55記載の処理方法。
四酢酸である請求項55記載の処理方法。
【0129】
【請求項60】 キレート化剤が、ニトリロトリ酢酸
である請求項55記載の処理方法。
である請求項55記載の処理方法。
【0130】
【請求項61】 キレート化剤が、ビス−(O−アミ
ノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸
、エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエー
テル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2
−ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミ
ンペンタ酢酸、クエン酸、アルギニン、ハイポザンチン
、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフォ
ン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテルタ
イプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からなる
群から選ばれたものである請求項55記載の処理方法。
ノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸
、エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエー
テル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2
−ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミ
ンペンタ酢酸、クエン酸、アルギニン、ハイポザンチン
、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフォ
ン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテルタ
イプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からなる
群から選ばれたものである請求項55記載の処理方法。
【0131】
【請求項62】 キレート化剤および体細胞溶解剤が
、液体中における溶液であることからなるミルク試料に
使用するための透明化剤。
、液体中における溶液であることからなるミルク試料に
使用するための透明化剤。
【0132】
【請求項63】 体細胞溶解剤が、非イオン性洗浄剤
である請求項62記載の透明化剤。
である請求項62記載の透明化剤。
【0133】
【請求項64】 キレート化剤が、エチレンジアミン
四酢酸である請求項62記載の透明化剤。
四酢酸である請求項62記載の透明化剤。
【0134】
【請求項65】 キレート化剤が、ニトリロトリ酢酸
である請求項62記載の透明化剤。
である請求項62記載の透明化剤。
【0135】
【請求項66】 キレート化剤が、ビス−(O−アミ
ノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸
、エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエー
テル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2
−ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミ
ンペンタ酢酸、クエン酸、アルギニン、ハイポザンチン
、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフォ
ン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテルタ
イプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からなる
群から選ばれたものである請求項62記載の透明化剤。
ノフェノキシ)−エタン−N,N,N’,N’−四酢酸
、エチレングリコール−ビス−(β−アミノエチルエー
テル)N,N,N’,N’−四酢酸、トランス−1,2
−ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ジエチレントリアミ
ンペンタ酢酸、クエン酸、アルギニン、ハイポザンチン
、4、5−ジヒドロキシベンゼン−1,3−ジスルフォ
ン酸、ナトリウムリン酸塩ガラス、クラウンエーテルタ
イプ化合物および誘導体およびこれらの前駆体からなる
群から選ばれたものである請求項62記載の透明化剤。
【図1】 液状ミルク試料を使用する本発明の一般的
工程を示す。
工程を示す。
【図2】 実施例1の試料中の微生物濃度に対して本
発明の方法および他の方法に従って分析された試料中の
相対的光単位(RLU)を示すグラフである。
発明の方法および他の方法に従って分析された試料中の
相対的光単位(RLU)を示すグラフである。
【図3】 実施例2におけるミルクからの微生物細胞
の分離に対するコロニー形成単位(CFU)とRLUと
の相間関係を示すグラフである。
の分離に対するコロニー形成単位(CFU)とRLUと
の相間関係を示すグラフである。
【図4】 実施例3における微生物細胞の分離に対す
るCFUとRLUとの相間関係を示すグラフである。
るCFUとRLUとの相間関係を示すグラフである。
【図5】 実施例4における微生物細胞の分離に対す
るCFUとRLUとの相間関係を示すグラフである。
るCFUとRLUとの相間関係を示すグラフである。
【図6】 実施例5における微生物細胞の分離に対す
るCFUとRLUとの相間関係を示すグラフである。
るCFUとRLUとの相間関係を示すグラフである。
【図7】 実施例6で試験された試料中における人工
的に接種された量とRLUとの相間関係を示すグラフで
ある。
的に接種された量とRLUとの相間関係を示すグラフで
ある。
10:遠心分離容器
15:パッド
16:透明液領域
17:細胞ペレット
Claims (27)
- 【請求項1】 下記工程からなる液状ミルク試料から
細胞を分離濃縮する方法、 (a) キレート化剤をミルク試料と混合する工程、
(b) 試料を遠心分離して、他のミルク成分から遠
心分離により区分されたペレット中の細胞成分を分離す
る工程。 - 【請求項2】 おもに細胞成分を含有する遠心分離で
区分されたペレットから上澄みを除去する工程をさらに
含む請求項1記載の方法。 - 【請求項3】 ペレットを液中に再懸濁し、懸濁液を
試験して微生物細胞の濃度を測定する工程をさらに含む
請求項2記載の方法。 - 【請求項4】 細胞ペレットから上澄みを除去する工
程が、ペレット上の液体を吸引することにより実施され
る請求項2記載の方法。 - 【請求項5】 遠心分離工程の前に、体細胞を溶解す
るが微生物細胞を溶解しない溶解剤を試料と混合する工
程をさらに含む請求項1記載の方法。 - 【請求項6】 再懸濁されたペレットを試験して、細
胞タイターを測定する請求項3記載の方法。 - 【請求項7】 試験が、ブリードスミアー試験である
請求項6記載の方法。 - 【請求項8】 ペレットから上澄みを除去する工程が
、ペレットを液体中に再懸濁して再懸濁されたペレット
にブリードスミアー試験を実施して、細胞タイターを測
定する工程をさらに含む請求項5記載の方法。 - 【請求項9】 ペレットから上澄みを除去する工程が
、細胞ペレットに溶解剤を加えて細胞を溶解し、溶解し
た試料を試験して試料中に存在するATPの相対的量を
測定する工程をさらに含む請求項5記載の方法。 - 【請求項10】 溶解試料を試験する工程が、試料に
ルシフェラーゼ−ルシフェリン試薬を加え、試料から放
出された相対的光放出量を測定する工程を含む請求項9
記載の方法。 - 【請求項11】 液体中に細胞ペレットを懸濁し、体
細胞を溶解するが微生物細胞を溶解しない溶解剤を懸濁
液中に混合する工程をさらに含む請求項2記載の方法。 - 【請求項12】 溶解剤との混合後試料を遠心分離し
、上澄みを除去し、残りのペレットを液体中に再懸濁し
、細胞ペレットに微生物細胞からのATP抽出剤を添加
し、そして試料のATPを定量的に試験する工程をさら
に含む請求項11記載の方法。 - 【請求項13】 ATP抽出工程が、試料にルシフェ
ラーゼ−ルシフェリン試薬を加え、試料から放出された
光の相対的量を測定する請求項12記載の方法。 - 【請求項14】 ATP抽出剤が、微生物細胞を溶解
する溶解剤である請求項12記載の方法。 - 【請求項15】 懸濁液を遠心分離し、おもに微生物
細胞であるペレット中の細胞から上澄みを分離する工程
をさらに含む請求項11記載の方法。 - 【請求項16】 ペレットから分離された上澄み液を
試験してATP濃度を測定する工程をさらに含む請求項
15記載の方法。 - 【請求項17】 微生物細胞からATPを抽出する薬
剤を、ペレット中の細胞に加え、ついでATPの量的水
準を測定する工程をさらに含む請求項15記載の方法。 - 【請求項18】 ペレットから上澄みを除去し、体細
胞を溶解するが微生物細胞を溶解しない溶解剤とペレッ
ト中の細胞を混合し、試料を遠心分離し、上澄み液を除
去し、得られたペレット中の細胞に再度体細胞を溶解す
るが微生物細胞を溶解しない溶解剤を添加し、上澄みを
除去し、次いで得られたペレットを微生物細胞の相対的
濃度測定のために試験する工程をさらに含む請求項5記
載の方法。 - 【請求項19】 バクテリア細胞を安定化し細胞代謝
物の損失を防止する溶液中に遠心分離されたペレットを
再懸濁する工程をさらに含む請求項18記載の方法。 - 【請求項20】 (a) キレート化剤および体細
胞溶解剤を含有する透明化剤; (b) 微生物細胞ATPを放出するATP抽出剤を
含有する溶液; (c) ATP検出試薬からなるミルク試料の試験に
用いる微生物試験キット。 - 【請求項21】 (1)遠心分離により得られた細胞
ペレットの洗浄用溶液および(2)緩衝液を含む請求項
20の試験キット。 - 【請求項22】 ミルク成分から細胞を濾過するため
のフィルターをさらに含有する請求項20記載の試験キ
ット。 - 【請求項23】 (a) キレート化剤および体細
胞溶解剤を含有する透明化剤; (b) 細胞染色用溶液とからなるブリードスミアー
のような細胞計数試験と協力してミルク試料を試験する
ための微生物試験キット。 - 【請求項24】 ミルク成分からの細胞濾過用フィル
ターをさらに含む請求項23記載の試験キット。 - 【請求項25】 (a) キレート化剤を含有する
透明化剤; (b) 体細胞を溶解するが微生物細胞を溶解しない
剤を含有する溶液; (c) ATP検出試薬からなるミルク試料の体細胞
試験用に使用する試験キット。 - 【請求項26】 (a) キレート化剤をミルク試
料と混合する工程; (b) ミルク成分から試料中の細胞を分離する工程
、とからなる他のミルク成分から試料中の細胞を分離濃
縮するための液状ミルク試料の処理方法。 - 【請求項27】 分離工程が、試料の遠心分離を実施
して、他のミルク成分から遠心分離により除去されるペ
レット中の細胞成分を分離する請求項26記載の処理方
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