JPH03160368A - 成人型t細胞性白血病関連抗体の測定方法 - Google Patents
成人型t細胞性白血病関連抗体の測定方法Info
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- JPH03160368A JPH03160368A JP30055489A JP30055489A JPH03160368A JP H03160368 A JPH03160368 A JP H03160368A JP 30055489 A JP30055489 A JP 30055489A JP 30055489 A JP30055489 A JP 30055489A JP H03160368 A JPH03160368 A JP H03160368A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、戒人型T細胞性白血病関連抗体の測定方法、
特に合成ペプチドを用いた成人型T細胞性白血病関連抗
体の測定方法に関する。
特に合成ペプチドを用いた成人型T細胞性白血病関連抗
体の測定方法に関する。
成人型T細胞性白血病ウィルス■型(HTLV一1)は
成人型T細胞性白血病、すなわちT細胞の悪性化による
疾病と密接に関連したレトロウィルスであり、このウィ
ルスは母親から乳児に、夫から妻に、また輸血によって
感染することが知られている。そして、輸血による感染
を防止するために、供血者の抗HTLV−1抗体スクリ
ーニングを行なってHTLV−1キャリアー患者の確認
作業が実施されている。従来、HTLV−1に対する抗
体スクリーニングは、粒子免疫測定法(PA法)、酵素
免疫測定法(ELISA法)あるいは間接免疫蛍光測定
法(IF法)で行われていた。
成人型T細胞性白血病、すなわちT細胞の悪性化による
疾病と密接に関連したレトロウィルスであり、このウィ
ルスは母親から乳児に、夫から妻に、また輸血によって
感染することが知られている。そして、輸血による感染
を防止するために、供血者の抗HTLV−1抗体スクリ
ーニングを行なってHTLV−1キャリアー患者の確認
作業が実施されている。従来、HTLV−1に対する抗
体スクリーニングは、粒子免疫測定法(PA法)、酵素
免疫測定法(ELISA法)あるいは間接免疫蛍光測定
法(IF法)で行われていた。
また、近年、抗HTLV−1抗体と反応するHTLv−
1のgag(コア)蛋白質の特定の領域に相応するペプ
チドを合威し、この合成ペブチドを用いたHTLV−1
に対する抗体スクリーニングが報告されている(The
Journ!l OFImmunoLolY,Mo1
、H6.No, 7,Apti1 1.I9116
PP.2393〜2397 T[IOMAS J. P
ALKER ett1、 )。
1のgag(コア)蛋白質の特定の領域に相応するペプ
チドを合威し、この合成ペブチドを用いたHTLV−1
に対する抗体スクリーニングが報告されている(The
Journ!l OFImmunoLolY,Mo1
、H6.No, 7,Apti1 1.I9116
PP.2393〜2397 T[IOMAS J. P
ALKER ett1、 )。
しかしながら、従来行われていたPA法、EL I S
A法においては、細胞膜面の蛋白質がウィルス粒子と絡
み合っているため抗原陽性率の変動が避けられず、しば
しば偽陽性になるという問題があり、またIF法におい
ては、ウィルスを産生ずる細胞系を維持することが難し
いという問題があった。
A法においては、細胞膜面の蛋白質がウィルス粒子と絡
み合っているため抗原陽性率の変動が避けられず、しば
しば偽陽性になるという問題があり、またIF法におい
ては、ウィルスを産生ずる細胞系を維持することが難し
いという問題があった。
また、上述のパーカーらの合戒ペプチドを用いたHTL
V−1に対する抗体スクリーニングでは、IF法により
陰性と判定された血清を100%陰性と判定するために
は、2種類の合成ペプチド、すなわちgag蛋白質のC
末端から102番目乃至115番目までのアミノ酸配列
に相当する合成ペプチドと、gag蛋白質のC末端から
120番目乃至130番目までのアミノ酸配列に相当す
る合成ペプチドとについて、それぞれ別個にHTLV−
1に対する抗体スクリーニングを行なう必要があり、操
作が繁雑であるという問題があった。
V−1に対する抗体スクリーニングでは、IF法により
陰性と判定された血清を100%陰性と判定するために
は、2種類の合成ペプチド、すなわちgag蛋白質のC
末端から102番目乃至115番目までのアミノ酸配列
に相当する合成ペプチドと、gag蛋白質のC末端から
120番目乃至130番目までのアミノ酸配列に相当す
る合成ペプチドとについて、それぞれ別個にHTLV−
1に対する抗体スクリーニングを行なう必要があり、操
作が繁雑であるという問題があった。
本発明は、このような事情に鑑み創案されたものであり
、面倒な細胞培養を必要とせず、抗HTLV−1抗体の
検出精度が高くtかつ操作が簡便な成人型T細胞性白血
病関連抗体の測定方法を提供することを目的とする。
、面倒な細胞培養を必要とせず、抗HTLV−1抗体の
検出精度が高くtかつ操作が簡便な成人型T細胞性白血
病関連抗体の測定方法を提供することを目的とする。
本発明は、成人型T細胞性白血病ウィルスの構成蛋白質
の成分ペプチドを合成し、該合成ペプチドの少なくとも
1種を不溶性担体に固定化した不溶化抗原を用いるよう
に構威した。
の成分ペプチドを合成し、該合成ペプチドの少なくとも
1種を不溶性担体に固定化した不溶化抗原を用いるよう
に構威した。
本発明で用いる合成ペブチドは、成人型T細胞性白血病
ウィルスの構成蛋白質の成分ペブチドであり、成人型T
細胞性白血病ウィルス■型(HTLV−1)のgag
(コア)蛋白質のC末端から100番目乃至130番目
までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチド、gag蛋
白質のC末端から100番目乃至119番目までのアミ
ノ酸配列に相当する合成ペプチドおよびHTLV−1の
env (エンベロープ)蛋白質のC末端から175番
目乃至199番目までのアミノ酸配列に相当する合成ペ
プチドである。
ウィルスの構成蛋白質の成分ペブチドであり、成人型T
細胞性白血病ウィルス■型(HTLV−1)のgag
(コア)蛋白質のC末端から100番目乃至130番目
までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチド、gag蛋
白質のC末端から100番目乃至119番目までのアミ
ノ酸配列に相当する合成ペプチドおよびHTLV−1の
env (エンベロープ)蛋白質のC末端から175番
目乃至199番目までのアミノ酸配列に相当する合成ペ
プチドである。
このような合成ペブチドは、HTLV−1のgag遺伝
子およびenv遺伝子の核酸配列を基に予測したアミノ
酸配列に従って合成される。ペプチド合成は、公知の固
相法、縮合法、この画法を組み合わせた方法、液相法等
により行うことができ、例えば段階的固相法( Mcr
riftelt R. B( 1963) J.AlI
I, Chew.Sac. 85. 2149 〜21
54)により、固相としてt−ブトキシカルボニルアミ
ノアシル−4−(オキシメチル)一パム樹脂を用いて行
ってもよい。この場合、合成ペプチドの前記樹脂からの
解離は、例えばフッ化水素水を用いて凍結乾燥操作によ
って行うことができる。このようにして得られた合成ペ
プチドは、低分子量の副生成物を取り除いて精製した後
、高速液体クロマトグラフィーにより純度検定が行われ
、単一ピークが認められた合成ペプチドが本発明に用い
られる。
子およびenv遺伝子の核酸配列を基に予測したアミノ
酸配列に従って合成される。ペプチド合成は、公知の固
相法、縮合法、この画法を組み合わせた方法、液相法等
により行うことができ、例えば段階的固相法( Mcr
riftelt R. B( 1963) J.AlI
I, Chew.Sac. 85. 2149 〜21
54)により、固相としてt−ブトキシカルボニルアミ
ノアシル−4−(オキシメチル)一パム樹脂を用いて行
ってもよい。この場合、合成ペプチドの前記樹脂からの
解離は、例えばフッ化水素水を用いて凍結乾燥操作によ
って行うことができる。このようにして得られた合成ペ
プチドは、低分子量の副生成物を取り除いて精製した後
、高速液体クロマトグラフィーにより純度検定が行われ
、単一ピークが認められた合成ペプチドが本発明に用い
られる。
合戊ペプチドを固定化するための不溶性担体としては、
物理的吸着法または化学的結合法、もしくは両法同時に
用いられるボリスチレン、ボリカーボネート、ガラス、
ボリプロビレン等の多孔性担体、あるいは赤血球、ラテ
ックス、ゼラチン、寒天等の微細粒子等を用いることが
できる。そして、不溶性担体への合威ペプチドの固定化
、すなわち不溶化抗原の調製は、物理的吸着法において
は接触、化学的結合法では架橋剤を用いて結合すること
により行うことができる。合戒ペプチドの固定化後、不
溶性担体の残存する吸着部位はヤギ血清等によってブロ
ッキングされる。
物理的吸着法または化学的結合法、もしくは両法同時に
用いられるボリスチレン、ボリカーボネート、ガラス、
ボリプロビレン等の多孔性担体、あるいは赤血球、ラテ
ックス、ゼラチン、寒天等の微細粒子等を用いることが
できる。そして、不溶性担体への合威ペプチドの固定化
、すなわち不溶化抗原の調製は、物理的吸着法において
は接触、化学的結合法では架橋剤を用いて結合すること
により行うことができる。合戒ペプチドの固定化後、不
溶性担体の残存する吸着部位はヤギ血清等によってブロ
ッキングされる。
本発明は、上述の不溶化抗原と成人型T細胞性白血病関
連抗体との抗原抗体反応により生成された抗原一抗体反
応物を公知の酵素免疫測定法(ELISA法)あるいは
間接免疫蛍光測定法(IF法)により標識化し、この標
識活性を測定することによって実施される。また、凝集
反応像、沈降線、濁度等を観察することによっても実施
される。
連抗体との抗原抗体反応により生成された抗原一抗体反
応物を公知の酵素免疫測定法(ELISA法)あるいは
間接免疫蛍光測定法(IF法)により標識化し、この標
識活性を測定することによって実施される。また、凝集
反応像、沈降線、濁度等を観察することによっても実施
される。
本発明で対象とする成人型T細胞性白血病関連抗体は、
HTLV−1に対する抗体である。また、測定試料血清
は、被検者から常法に従って採血した血液から分離され
た血清、あるいは、この血清をリン酸緩衝溶液(P B
S)等の緩衝溶液で希釈したものを用いることができ
る。測定試料血清は、またトウイーン系界面活性剤、動
物血清、動物蛋白質、ゼラチン、デキストラン等が添加
されていてもよい。
HTLV−1に対する抗体である。また、測定試料血清
は、被検者から常法に従って採血した血液から分離され
た血清、あるいは、この血清をリン酸緩衝溶液(P B
S)等の緩衝溶液で希釈したものを用いることができ
る。測定試料血清は、またトウイーン系界面活性剤、動
物血清、動物蛋白質、ゼラチン、デキストラン等が添加
されていてもよい。
不溶化抗原と抗HTLV−1抗体との抗原抗体反応は、
通常4〜40℃で5分〜48時間の条件で行われる。
通常4〜40℃で5分〜48時間の条件で行われる。
生成された抗原一抗体反応物の標識化は、抗f{ T
L V − 1抗体と特異的に結合しうる物質と酵素標
識物質または蛍光標識物質とが結合した結合体を抗原一
抗体反応物と混合して反応させることにより行われる。
L V − 1抗体と特異的に結合しうる物質と酵素標
識物質または蛍光標識物質とが結合した結合体を抗原一
抗体反応物と混合して反応させることにより行われる。
抗HTLV−1抗体と特異的に結合しうる物質としては
、抗ヒト免疫グロブリンG(抗ヒトIgG)ヤギ抗体、
抗ヒトIgGウサギ抗体、抗ヒトIgGヒツジ抗体、抗
ヒトIgGマウス抗体、抗ヒトIgGウマ抗体、抗ヒト
IgGモルモット抗体、抗ヒトIgGブタ抗体等の抗ヒ
トIgG抗体、あるいは上記各動物の抗ヒト免疫グロブ
リンM(抗ヒトIgM)抗体等を用いることができる。
、抗ヒト免疫グロブリンG(抗ヒトIgG)ヤギ抗体、
抗ヒトIgGウサギ抗体、抗ヒトIgGヒツジ抗体、抗
ヒトIgGマウス抗体、抗ヒトIgGウマ抗体、抗ヒト
IgGモルモット抗体、抗ヒトIgGブタ抗体等の抗ヒ
トIgG抗体、あるいは上記各動物の抗ヒト免疫グロブ
リンM(抗ヒトIgM)抗体等を用いることができる。
酵素標識物質としては、ベルオキシダーゼ、アルカリホ
スファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、キモトリプシノ
ーゲン、プロカルボキシペプチダーゼ、グリセロアルデ
ヒド−3−リン酸脱水素酵素、アミラーゼ、ホスホリラ
ーゼ、テキサスレッド等を用いることができる。また、
蛍光標識物質としては、フルオレセイン・イソチオシア
ネート、テトラメチルローダミン・イソチオシアネート
、置換ローダミン・イソチオシアネート、ローダミンB
・イソチオシアネート、ジクロロトリアジンフルオレセ
イン等を用いることができる。
スファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、キモトリプシノ
ーゲン、プロカルボキシペプチダーゼ、グリセロアルデ
ヒド−3−リン酸脱水素酵素、アミラーゼ、ホスホリラ
ーゼ、テキサスレッド等を用いることができる。また、
蛍光標識物質としては、フルオレセイン・イソチオシア
ネート、テトラメチルローダミン・イソチオシアネート
、置換ローダミン・イソチオシアネート、ローダミンB
・イソチオシアネート、ジクロロトリアジンフルオレセ
イン等を用いることができる。
抗HTLV−4抗体と特異的に結合しうる上記の物質と
上記の酵素標識物質または蛍光標識物質との結合体は、
公知の方法によって作成することができ、また市販のこ
のような各種結合体を用いてもよい。
上記の酵素標識物質または蛍光標識物質との結合体は、
公知の方法によって作成することができ、また市販のこ
のような各種結合体を用いてもよい。
このような結合体と抗原一抗体反応物との反応は、通常
4〜40℃で5分〜48時間の条件で行われる。この反
応終了後は充分に洗浄することが好ましい。また、上述
した凝集反応像、沈降線、濁度等を観察する場合は、反
応終了後すみやかに観察することが好ましい。そして、
標識化された抗原一抗体反応物の標識活性(酵素活性ま
たは蛍光活性)の測定等は公知の方法に従って行うこと
ができる。
4〜40℃で5分〜48時間の条件で行われる。この反
応終了後は充分に洗浄することが好ましい。また、上述
した凝集反応像、沈降線、濁度等を観察する場合は、反
応終了後すみやかに観察することが好ましい。そして、
標識化された抗原一抗体反応物の標識活性(酵素活性ま
たは蛍光活性)の測定等は公知の方法に従って行うこと
ができる。
以下、本発明の実施例を示して本発明を更に詳細に説明
する。
する。
実施例1(ペプチド合成)
HTLV−1のgag遺伝子およびenv遺伝子の核酸
配列を基に想定した27種類(gag蛋白質23種類、
env蛋白質4種類)のアミノ酸配列(第1表参照)の
ペプチドを合威した。
配列を基に想定した27種類(gag蛋白質23種類、
env蛋白質4種類)のアミノ酸配列(第1表参照)の
ペプチドを合威した。
第 1 表
ペプチドの合成は、上述したMe口i1ieldの段階
的固相法に従って、固相としてt−プトキシカルボニル
アミノアシル−4−(オキシメチル)一パム樹脂を用い
て行った。原料アミノ酸にはアミノ酸保護剤(蛋白工学
研究所製)を添加した。この結果、αアミノ基は固相中
のt−ブトキシカルボニル基によって保護され、側鎖は
各アミノ酸において下記の保護基によって保護された。
的固相法に従って、固相としてt−プトキシカルボニル
アミノアシル−4−(オキシメチル)一パム樹脂を用い
て行った。原料アミノ酸にはアミノ酸保護剤(蛋白工学
研究所製)を添加した。この結果、αアミノ基は固相中
のt−ブトキシカルボニル基によって保護され、側鎖は
各アミノ酸において下記の保護基によって保護された。
(アミノ酸) (保護基)
リシン(LYS)
システイン(C▼$)
二N−2−クロロベンゾ
オキシカルボニル基
:S−4−メチル
ベンジル基
・トリプトファン(Tap) : N−ホルミル
基固相としてのt−ブトキシカルボニルアミノアシル−
4−(オキシメチル)一パム樹脂からの合成ペブチドの
解離は、液体フッ化水素を用いて凍結乾燥操作によって
行った。このようにして得られた合成ペプチドを5%酢
酸水溶液の溶解し、ファルマシア社製Sephadex
G−25等のゲルロ過カラムを用いて低分子量の副生
成物を取り除いて精製した。その後、逆相カラム(オク
タデシルシランC18)を用いた高速液体クロマトグラ
フイーにより純度検定を行って、単一ピークが認められ
た合成ペプチドを本発明に用いる合成ペプチドとした。
基固相としてのt−ブトキシカルボニルアミノアシル−
4−(オキシメチル)一パム樹脂からの合成ペブチドの
解離は、液体フッ化水素を用いて凍結乾燥操作によって
行った。このようにして得られた合成ペプチドを5%酢
酸水溶液の溶解し、ファルマシア社製Sephadex
G−25等のゲルロ過カラムを用いて低分子量の副生
成物を取り除いて精製した。その後、逆相カラム(オク
タデシルシランC18)を用いた高速液体クロマトグラ
フイーにより純度検定を行って、単一ピークが認められ
た合成ペプチドを本発明に用いる合成ペプチドとした。
実施例2(ELISA法)
実施例lにおいて合成した27種類の合成ペプチド50
0ngを各々0. 1mlの0.01M炭酸水素ナト
リウム緩衝液( pH9. 55)に溶解したものを、
不溶性担体である96穴EIAプレート(Nunc社製
)に塗布し、4℃で一晩放置して固定化し不溶化抗原と
した。この不溶化抗原の不溶性担体の残存する吸着部位
は20%ヤギ血清によつてブロッキング処理した。
0ngを各々0. 1mlの0.01M炭酸水素ナト
リウム緩衝液( pH9. 55)に溶解したものを、
不溶性担体である96穴EIAプレート(Nunc社製
)に塗布し、4℃で一晩放置して固定化し不溶化抗原と
した。この不溶化抗原の不溶性担体の残存する吸着部位
は20%ヤギ血清によつてブロッキング処理した。
一方、被検者から常法に従って採血した血液から分離さ
れた血清をリン酸緩衝溶液(P B S)で8倍希釈し
て測定試料血清とした。この測定試料血清は、トゥイー
ン20界面活性剤を0.05▼t%、ヤギ血清を101
1%それぞれ含有する。なお、採血した血液から分離さ
れた血清は、PA法(富士レビオ製セロディアALTA
を使用)およびIF法(MT−1細胞をアセトンで固定
したスライドを使用)により検査し、測定値の評価は日
本赤十字の標準判定法に従って行った。
れた血清をリン酸緩衝溶液(P B S)で8倍希釈し
て測定試料血清とした。この測定試料血清は、トゥイー
ン20界面活性剤を0.05▼t%、ヤギ血清を101
1%それぞれ含有する。なお、採血した血液から分離さ
れた血清は、PA法(富士レビオ製セロディアALTA
を使用)およびIF法(MT−1細胞をアセトンで固定
したスライドを使用)により検査し、測定値の評価は日
本赤十字の標準判定法に従って行った。
つぎに、前記不溶化抗原と前記測定試料血清とを37℃
で1時間反応させた後、酵素標識物質としてベルオキシ
ダーゼで標識化した抗ヒトIgGヤギ抗体を添加して3
7℃で0.5時間反応させた。そして、トゥイーン20
界面活性剤を0.05v+%含有したリン酸緩衝溶液を
用いて洗浄を6回行った後、過酸化水素を0.1vt%
、O−フェニレンジアミンを0.04v+%含有した0
.1Mクエン酸ナトリウム緩衝液(pll5.5)を1
50μl添加して37℃で0.5時間反応させ、更に2
.5M過酸化水素を50μl添加して37℃で5分反応
させた後、反応を停止した。
で1時間反応させた後、酵素標識物質としてベルオキシ
ダーゼで標識化した抗ヒトIgGヤギ抗体を添加して3
7℃で0.5時間反応させた。そして、トゥイーン20
界面活性剤を0.05v+%含有したリン酸緩衝溶液を
用いて洗浄を6回行った後、過酸化水素を0.1vt%
、O−フェニレンジアミンを0.04v+%含有した0
.1Mクエン酸ナトリウム緩衝液(pll5.5)を1
50μl添加して37℃で0.5時間反応させ、更に2
.5M過酸化水素を50μl添加して37℃で5分反応
させた後、反応を停止した。
ツキに、O−フエニレンジアミンを基質として492n
mの吸光度を測定することによって、標識化された抗原
一抗体反応物の標識活性(ベルオキシダーゼ活性)を算
出した。4 9 2 amでの吸光度測定はプレートリ
ーダー( SLT−Lxbinsjrumeロ【S(オ
ーストリア)製)を用い、陽性血清を判定するためのカ
ットオフ値は統計処理を施して算出した。すなわち、上
記PA法およびIF法においてともに陰性と判定された
血清31例の平均吸光度値に標準偏差を加えたものと、
PA法およびIF法でともに陽性と判定された血清31
例の平均吸光度値の10%とを加算した値をカットオフ
値とした。また、確認試験として、合成ペプチド抗原に
よる抗体吸収前処理血清を用いる競合反応を利用したE
L I SA法を行った。すなわち、測定試料血清と、
合威ペプチドまたは溶媒のみを反応させて上述のEL
I SA法を行い、合成ベブチドを用いた場合の吸光度
が溶媒を用いた場合の吸光度に対して30%以上減少し
た場合に陽性とした。
mの吸光度を測定することによって、標識化された抗原
一抗体反応物の標識活性(ベルオキシダーゼ活性)を算
出した。4 9 2 amでの吸光度測定はプレートリ
ーダー( SLT−Lxbinsjrumeロ【S(オ
ーストリア)製)を用い、陽性血清を判定するためのカ
ットオフ値は統計処理を施して算出した。すなわち、上
記PA法およびIF法においてともに陰性と判定された
血清31例の平均吸光度値に標準偏差を加えたものと、
PA法およびIF法でともに陽性と判定された血清31
例の平均吸光度値の10%とを加算した値をカットオフ
値とした。また、確認試験として、合成ペプチド抗原に
よる抗体吸収前処理血清を用いる競合反応を利用したE
L I SA法を行った。すなわち、測定試料血清と、
合威ペプチドまたは溶媒のみを反応させて上述のEL
I SA法を行い、合成ベブチドを用いた場合の吸光度
が溶媒を用いた場合の吸光度に対して30%以上減少し
た場合に陽性とした。
上述の測定結果を第2表に示した。
第2表には、PA法およびIF法でともに陽性と判定さ
れた31例の血清中の抗体と反応性を示した合威ペプチ
ド8種類が示されている。第2表から明らかなように、
PA法およびIF法でともに陽性と判定された31例の
血清中の抗体と全て反応したのはgag蛋白質のC末端
から100番目乃至130番目までのアミノ酸配列に相
当する合威ペブチドP19−too nであった。また
、gag蛋白質のC末端から100番目乃至119番目
までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチドであってP
l9−10O nよりアミノ酸数の少ない合成ペプチド
P19−1[10 Iでも31例中22例に反応性(7
1%)が認められた。さらに、env蛋白質のC末端か
ら175番目乃至199番目までのアミノ酸配列に相当
する合成ペブチドでは31例中26例に反応性(84%
)が認められた。
れた31例の血清中の抗体と反応性を示した合威ペプチ
ド8種類が示されている。第2表から明らかなように、
PA法およびIF法でともに陽性と判定された31例の
血清中の抗体と全て反応したのはgag蛋白質のC末端
から100番目乃至130番目までのアミノ酸配列に相
当する合威ペブチドP19−too nであった。また
、gag蛋白質のC末端から100番目乃至119番目
までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチドであってP
l9−10O nよりアミノ酸数の少ない合成ペプチド
P19−1[10 Iでも31例中22例に反応性(7
1%)が認められた。さらに、env蛋白質のC末端か
ら175番目乃至199番目までのアミノ酸配列に相当
する合成ペブチドでは31例中26例に反応性(84%
)が認められた。
他方、合成ペプチドPl9−IH IIとのみ反応した
9例は、合戒ペプチドPl9−100 IIを用いた確
認試験で吸光度の減少が認められたが、合成ペプチドP
I9−100 Iを用いた確認試験では吸光度の減少が
認められなかった。これに対して、合成ペプチドP19
−100 Iと合成ペプチド[9−10fl IIの双
方と反応した21例は、合成ペプチドPl9−100
Iおよび合成ペプチドPl9−10[1 nのいずれを
用いた確認試験でも吸光度の減少が認められた。このこ
とより、合成ペプチドPl9−100 IIには2つ以
上の強い抗原決定基領域が存在すると考えられる。
9例は、合戒ペプチドPl9−100 IIを用いた確
認試験で吸光度の減少が認められたが、合成ペプチドP
I9−100 Iを用いた確認試験では吸光度の減少が
認められなかった。これに対して、合成ペプチドP19
−100 Iと合成ペプチド[9−10fl IIの双
方と反応した21例は、合成ペプチドPl9−100
Iおよび合成ペプチドPl9−10[1 nのいずれを
用いた確認試験でも吸光度の減少が認められた。このこ
とより、合成ペプチドPl9−100 IIには2つ以
上の強い抗原決定基領域が存在すると考えられる。
実施例3(合成ペプチドP19−100 Itを用いた
スクリーニング) 合成ペプチドP19−100 Iを輸血者のHTLV−
■抗体検出用抗原として使用し得ることを確認するため
に、合成ペプチドPl9−100 nのみを用いて不溶
化抗原を作成したこと、および測定試料血清の範囲を拡
大して下記の4種の供血者からの血清を用いた他は実施
例2と同様にしてEL I SA法を実施した。
スクリーニング) 合成ペプチドP19−100 Iを輸血者のHTLV−
■抗体検出用抗原として使用し得ることを確認するため
に、合成ペプチドPl9−100 nのみを用いて不溶
化抗原を作成したこと、および測定試料血清の範囲を拡
大して下記の4種の供血者からの血清を用いた他は実施
例2と同様にしてEL I SA法を実施した。
・PA陰性、IF陰性の供血者 (対照血清)・PA陽
性、IF陰性の供血者 (中位血清)・PA陰性、IF
陽性の供血者 ( pros++ne血清)この血清は
IITLV−1抗体過剰のため凝集阻害を示している。
性、IF陰性の供血者 (中位血清)・PA陰性、IF
陽性の供血者 ( pros++ne血清)この血清は
IITLV−1抗体過剰のため凝集阻害を示している。
・PA陽性、IF陽性の供血者 (陽性血清)陽性血清
を判定するカットオフ値を0.522とした場合の49
2nmでの吸光度測定の結果を図に示した。図から明ら
かなように、陽性血清は94例中94(100%) 、
pto!oae血清は9例中9(100%)において抗
HTLV−I抗体が検出され、かつ、その陽性例(10
3例)中約80%がELISA値2以上を示している。
を判定するカットオフ値を0.522とした場合の49
2nmでの吸光度測定の結果を図に示した。図から明ら
かなように、陽性血清は94例中94(100%) 、
pto!oae血清は9例中9(100%)において抗
HTLV−I抗体が検出され、かつ、その陽性例(10
3例)中約80%がELISA値2以上を示している。
これに対して、中位血清は96例全てにおいてカットオ
フ値11.522を下回るEL I SA値が検出され
た。また対照血清は96例中1例を除いてカットオフ値
0.522を下回るEL I SA値が検出され、合威
ペプチドP19−100 nとの反応が認められた1例
についても、上述の競合反応を利用したELISA法に
よる測定の結果は陰性と判定された。
フ値11.522を下回るEL I SA値が検出され
た。また対照血清は96例中1例を除いてカットオフ値
0.522を下回るEL I SA値が検出され、合威
ペプチドP19−100 nとの反応が認められた1例
についても、上述の競合反応を利用したELISA法に
よる測定の結果は陰性と判定された。
すなわち、合成ペブチドPl9−IN mを用いた本発
明によるEL I SA法測定結果は、従来から抗HT
LV− I抗体の信頼できる検出法とされているIF法
による結果と完全に一致しており、従来のPA法に比べ
て精度が高い。また、本発明によるEL I SA法の
測定操作は、従来のPA法と同様に簡便なものであり、
IF法に比べて操作が大幅に簡便なものとなっている。
明によるEL I SA法測定結果は、従来から抗HT
LV− I抗体の信頼できる検出法とされているIF法
による結果と完全に一致しており、従来のPA法に比べ
て精度が高い。また、本発明によるEL I SA法の
測定操作は、従来のPA法と同様に簡便なものであり、
IF法に比べて操作が大幅に簡便なものとなっている。
HTLV−Iのgag蛋白質のC末端から100番目乃
至130番目までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチ
ドPI9−fOG n, g a g蛋白質のC末端か
ら100番目乃至119番目までのアミノ酸配列に相当
する合成ペプチドであってP.l9−IQO nよりア
ミノ酸数の少ない合成ペプチドP19−100 Iおよ
びenv蛋白質の175番目乃至199番目までのアミ
ノ酸配列に相当する合成ペプチドは、抗HTLV−1抗
体と高い反応性を示す。特に、合成ペプチド[’l9−
100 nには2つ以上の強い抗原決定基領域が存在す
ると考えられる。
至130番目までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチ
ドPI9−fOG n, g a g蛋白質のC末端か
ら100番目乃至119番目までのアミノ酸配列に相当
する合成ペプチドであってP.l9−IQO nよりア
ミノ酸数の少ない合成ペプチドP19−100 Iおよ
びenv蛋白質の175番目乃至199番目までのアミ
ノ酸配列に相当する合成ペプチドは、抗HTLV−1抗
体と高い反応性を示す。特に、合成ペプチド[’l9−
100 nには2つ以上の強い抗原決定基領域が存在す
ると考えられる。
そして、上記の合成ペプチドを固定化抗原として健全者
であるHTLV− Iキャリャーの血清中抗体の検出に
用いると、抗HTLV−I抗体を効率よく検出し得る。
であるHTLV− Iキャリャーの血清中抗体の検出に
用いると、抗HTLV−I抗体を効率よく検出し得る。
上記のように構成した本発明によれば、IF法における
ウィルスを産生ずる細胞系の維持といった繁雑な操作を
行うことなく、従来のPA法、ELISA法と同様の簡
便な測定操作によって、高精度な抗HTLV−I抗体の
検出が可能であり、かつ用いる合成ペプチドの種類また
は組み合わせを選定することによって、一回の操作で抗
HTLV−I抗体スクリーニングを行うことができる。
ウィルスを産生ずる細胞系の維持といった繁雑な操作を
行うことなく、従来のPA法、ELISA法と同様の簡
便な測定操作によって、高精度な抗HTLV−I抗体の
検出が可能であり、かつ用いる合成ペプチドの種類また
は組み合わせを選定することによって、一回の操作で抗
HTLV−I抗体スクリーニングを行うことができる。
図は、合成ベブチドI’l9−IN nを用いたELI
SA法の吸光度測定結果を示すグラフである。
SA法の吸光度測定結果を示すグラフである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、成人型T細胞性白血病ウィルスの構成蛋白質の成分
ペプチドを合成し、該合成ペプチドの少なくとも1種を
不溶性担体に固定化した不溶化抗原を用いることを特徴
とする成人型T細胞性白血病関連抗体の測定方法。 2、前記合成ペプチドが、成人型T細胞性白血病ウィル
スI型(HTLV−1)のgag(コア)蛋白質のC末
端から100番目乃至130番目までのアミノ酸配列に
相当する合成ペプチド、該gag蛋白質のc末端から1
00番目乃至119番目までのアミノ酸配列に相当する
合成ペプチドおよび成人型T細胞性白血病ウィルスI型
(HTLV−1)のenv(エンベロープ)蛋白質のC
末端から175番目乃至199番目までのアミノ酸配列
に相当する合成ペプチドであることを特徴とする請求項
1記載の成人型T細胞性白血病関連抗体の測定方法。 3、前記合成ペプチドが、2つ以上の強い抗原決定基領
域を有することを特徴とする請求項2記載の成人型T細
胞性白血病関連抗体の測定方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP30055489A JPH03160368A (ja) | 1989-11-18 | 1989-11-18 | 成人型t細胞性白血病関連抗体の測定方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP30055489A JPH03160368A (ja) | 1989-11-18 | 1989-11-18 | 成人型t細胞性白血病関連抗体の測定方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03160368A true JPH03160368A (ja) | 1991-07-10 |
Family
ID=17886230
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP30055489A Pending JPH03160368A (ja) | 1989-11-18 | 1989-11-18 | 成人型t細胞性白血病関連抗体の測定方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH03160368A (ja) |
-
1989
- 1989-11-18 JP JP30055489A patent/JPH03160368A/ja active Pending
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