JPH03107764A - 成人型t細胞性白血病関連抗体の測定方法 - Google Patents
成人型t細胞性白血病関連抗体の測定方法Info
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- JPH03107764A JPH03107764A JP24546389A JP24546389A JPH03107764A JP H03107764 A JPH03107764 A JP H03107764A JP 24546389 A JP24546389 A JP 24546389A JP 24546389 A JP24546389 A JP 24546389A JP H03107764 A JPH03107764 A JP H03107764A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、成人型T細胞性白血病関連抗体の測定方法、
特に合成ペプチドを用いた成人型T細胞性白血病関連抗
体の測定方法に関する。
特に合成ペプチドを用いた成人型T細胞性白血病関連抗
体の測定方法に関する。
成人型T細胞性白血病ウィルス夏型(HTLV−1)は
成人型T細胞性白血病、すなわちT細胞の悪性化による
疾病と密接に関連したレトロウィルスであり、このウィ
ルスは母親から乳児に、夫から妻に、また輸血によって
感染することが知られている。そして、輸血による感染
を防止するために、供血者の抗HTLV−1抗体スクリ
ーニングを行なってHTLV−1キヤリア一患者の確認
作業が実施されている。従来、HTL4−1に対する抗
体スクリーニングは、粒子免疫測定法(PA法)、酵素
免疫測定法(ELISA法)あるいは間接免疫蛍光測定
法(IF法)で行われていた。
成人型T細胞性白血病、すなわちT細胞の悪性化による
疾病と密接に関連したレトロウィルスであり、このウィ
ルスは母親から乳児に、夫から妻に、また輸血によって
感染することが知られている。そして、輸血による感染
を防止するために、供血者の抗HTLV−1抗体スクリ
ーニングを行なってHTLV−1キヤリア一患者の確認
作業が実施されている。従来、HTL4−1に対する抗
体スクリーニングは、粒子免疫測定法(PA法)、酵素
免疫測定法(ELISA法)あるいは間接免疫蛍光測定
法(IF法)で行われていた。
また、近年、抗HTLV−1抗体と反応するF(TLV
−1のgag(:+ア)蛋白質の特定の領域に相応する
ペプチドを合成し、この合成ペプチドを用いたHTLV
−1に対する抗体スクリーニングが報告されている(
The lou+nxl OF1mmunolog7.
Vol、 !38. No、7. Apri l 1
.1986Pt’、 2393〜2397 THOMA
!i J、 PALKERcr al。)。
−1のgag(:+ア)蛋白質の特定の領域に相応する
ペプチドを合成し、この合成ペプチドを用いたHTLV
−1に対する抗体スクリーニングが報告されている(
The lou+nxl OF1mmunolog7.
Vol、 !38. No、7. Apri l 1
.1986Pt’、 2393〜2397 THOMA
!i J、 PALKERcr al。)。
しかしながら、従来行われていたPA法、EL I S
A法においては、細胞膜面の蛋白質がウィルス粒子と絡
み合っているため抗原陽性率の変動が避けられず、しば
しば偽陽性になるという問題があり、またIF法におい
ては、ウィルスを産生ずる細胞系を維持することが難し
いという問題があった。
A法においては、細胞膜面の蛋白質がウィルス粒子と絡
み合っているため抗原陽性率の変動が避けられず、しば
しば偽陽性になるという問題があり、またIF法におい
ては、ウィルスを産生ずる細胞系を維持することが難し
いという問題があった。
また、上述のパーカーらの合成ペプチドを用いたHTL
v−1に対する抗体スクリーニングでは、IF法により
陰性と判定された血清を100%陰性と判定するために
は、2種類の合成ペプチド、すなわちgag蛋白質のC
末端から102番目乃至115番目までのアミノ酸配列
に相当する合成ペプチドと、gag蛋白質のC末端から
120番目乃至130番目までのアミノ酸配列に相当す
る合成ペプチドとについて、それぞれ別個にHTLV−
1に対する抗体スクリーニングを行なう必要があり、操
作が繁雑であるという問題があうた。
v−1に対する抗体スクリーニングでは、IF法により
陰性と判定された血清を100%陰性と判定するために
は、2種類の合成ペプチド、すなわちgag蛋白質のC
末端から102番目乃至115番目までのアミノ酸配列
に相当する合成ペプチドと、gag蛋白質のC末端から
120番目乃至130番目までのアミノ酸配列に相当す
る合成ペプチドとについて、それぞれ別個にHTLV−
1に対する抗体スクリーニングを行なう必要があり、操
作が繁雑であるという問題があうた。
本発明は、このような事情に鑑み創案されたものであり
、面倒な細胞培養を必要とせず、抗HTL’i’−1抗
体の検出精度が高く、かつ操作が簡便な成人型T細胞性
白血病関連抗体の測定方法を提供することを目的とする
。
、面倒な細胞培養を必要とせず、抗HTL’i’−1抗
体の検出精度が高く、かつ操作が簡便な成人型T細胞性
白血病関連抗体の測定方法を提供することを目的とする
。
本発明は、成人型T細胞性白血病ウィルスの構成蛋白質
の成分ペプチドを合成し、該合成ペプチドの少なくとも
1種を不溶性担体に固定化した不溶化抗原を用いるよう
に構成した。
の成分ペプチドを合成し、該合成ペプチドの少なくとも
1種を不溶性担体に固定化した不溶化抗原を用いるよう
に構成した。
本発明で用いる合成ペプチドは、成人型T細胞性白血病
ウィルスの構成蛋白質の成分ペプチドであり、成人型T
細胞性白血病ウィルスl型(i(T L V −1)の
gag(:Iア)蛋白質のC末端から100番目乃至1
30番目までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチド、
gag蛋白質のC末端から100番目乃至119番目ま
でのアミノ酸配列に相当する合成ペプチドおよびHTL
V−1のenv(エンベロープ)蛋白質のC末端から1
75番目乃至199番目までのアミノ酸配列に相当する
合成ペプチドである。
ウィルスの構成蛋白質の成分ペプチドであり、成人型T
細胞性白血病ウィルスl型(i(T L V −1)の
gag(:Iア)蛋白質のC末端から100番目乃至1
30番目までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチド、
gag蛋白質のC末端から100番目乃至119番目ま
でのアミノ酸配列に相当する合成ペプチドおよびHTL
V−1のenv(エンベロープ)蛋白質のC末端から1
75番目乃至199番目までのアミノ酸配列に相当する
合成ペプチドである。
このような合成ペプチドは、HTLV−1のgag遺伝
子およびenv遺伝子の核酸配列を基に予測したアミノ
酸配列に従って合成される。ペプチド合成は、公知の固
相法、縮合法、この画法を組み合わせた方法、液相法等
により行うことができ、例えば段階的固相法(Mer+
1lield、 R,B(1963) 1. Am、
Che@、 Soc、 85.2149〜2154)に
より、固相としてt−ブトキシカルボニルアミノアシル
−4−(オキシメチル)−バム樹脂を用いて行ってもよ
い。この場合、合成ペプチドの前記樹脂からの解離は、
例えばフッ化水素水を用いて凍結乾燥操作によって行う
ことができる。このようにして得られた合成ペプチドは
、低分子量の副生成物を取り除いて精製した後、高速液
体クロマトグラフィーにより純度検定が行われ、単一ピ
ークが認められた合成ペプチドが本発明に用いられる。
子およびenv遺伝子の核酸配列を基に予測したアミノ
酸配列に従って合成される。ペプチド合成は、公知の固
相法、縮合法、この画法を組み合わせた方法、液相法等
により行うことができ、例えば段階的固相法(Mer+
1lield、 R,B(1963) 1. Am、
Che@、 Soc、 85.2149〜2154)に
より、固相としてt−ブトキシカルボニルアミノアシル
−4−(オキシメチル)−バム樹脂を用いて行ってもよ
い。この場合、合成ペプチドの前記樹脂からの解離は、
例えばフッ化水素水を用いて凍結乾燥操作によって行う
ことができる。このようにして得られた合成ペプチドは
、低分子量の副生成物を取り除いて精製した後、高速液
体クロマトグラフィーにより純度検定が行われ、単一ピ
ークが認められた合成ペプチドが本発明に用いられる。
合成ペプチドを固定化するための不溶性担体としては、
物理的吸着法または化学的結合法、もしくは画法同時に
用いられるポリスチレン、ポリカーボネート、ガラス、
ポリプロピレン等の多孔性担体、あるいは赤血球、ラテ
ックス、ゼラチン、寒天等の微細粒子等を用いることが
できる。そして、不溶性担体への合成ペプチドの固定化
、すなわち不溶化抗原の調製は、物理的吸着法において
は接触、化学的結合法では架橋剤を用いて結合すること
により行うことができる。合成ペプチドの固定化後、不
溶性担体の残存する吸着部位はヤギ血清等によってブロ
ッキングされる。
物理的吸着法または化学的結合法、もしくは画法同時に
用いられるポリスチレン、ポリカーボネート、ガラス、
ポリプロピレン等の多孔性担体、あるいは赤血球、ラテ
ックス、ゼラチン、寒天等の微細粒子等を用いることが
できる。そして、不溶性担体への合成ペプチドの固定化
、すなわち不溶化抗原の調製は、物理的吸着法において
は接触、化学的結合法では架橋剤を用いて結合すること
により行うことができる。合成ペプチドの固定化後、不
溶性担体の残存する吸着部位はヤギ血清等によってブロ
ッキングされる。
本発明は、上述の不溶化抗原と成人型T細胞性白血病関
連抗体との抗原抗体反応により生成された抗原−抗体反
応物を公知の酵素免疫測定法(ELISA法)あるいは
間接免疫蛍光測定法(IF法)により標識化し、この標
識活性を測定することによって実施される。また、凝集
反応像、沈降線、濁度等を観察することによっても実施
される。
連抗体との抗原抗体反応により生成された抗原−抗体反
応物を公知の酵素免疫測定法(ELISA法)あるいは
間接免疫蛍光測定法(IF法)により標識化し、この標
識活性を測定することによって実施される。また、凝集
反応像、沈降線、濁度等を観察することによっても実施
される。
本発明で対象とする成人型T細胞性白血病関連抗体は、
HTLV−1に対する抗体である。また、測定試料血清
は、被検者から常法に従って採血した血液から分離され
た血清、あるいは、この血清をリン酸緩衝溶液(P B
S)等の緩衝溶液で希釈したものを用いることができ
る。測定試料血清は、またトウイーン系界面活性剤、動
物血清、動物蛋白質、ゼラチン、デキストラン等が添加
されていてもよい。
HTLV−1に対する抗体である。また、測定試料血清
は、被検者から常法に従って採血した血液から分離され
た血清、あるいは、この血清をリン酸緩衝溶液(P B
S)等の緩衝溶液で希釈したものを用いることができ
る。測定試料血清は、またトウイーン系界面活性剤、動
物血清、動物蛋白質、ゼラチン、デキストラン等が添加
されていてもよい。
不溶化抗原と抗HTLV−1抗体との抗原抗体反応は、
通常4〜40℃で5分〜48時間の条件で行われる。
通常4〜40℃で5分〜48時間の条件で行われる。
生成された抗原−抗体反応物の標識化は、抗HTLV−
1抗体と特異的に結合しうる物質と酵素標識物質または
蛍光標識物質とが結合した結合体を抗原、−抗体反応物
と混合して反応させることにより行われる。
1抗体と特異的に結合しうる物質と酵素標識物質または
蛍光標識物質とが結合した結合体を抗原、−抗体反応物
と混合して反応させることにより行われる。
抗HTLV−1抗体と特異的に結合しつる物質としては
、抗ヒト免疫グロブリンG(抗ヒトIgG)ヤギ抗体、
抗ヒトIgGウマ抗体、抗ヒトIgGヒツジ抗体、抗ヒ
トIgGマウス抗体、抗ヒトIgGウマ抗体、抗ヒトI
gGモルモット抗体、抗ヒトIgGブタ抗体等の抗ヒ)
IgG抗体、あるいは上記各動物の抗ヒト免疫グロブリ
ンM(抗ヒトIgM)抗体等を用いることができる。
、抗ヒト免疫グロブリンG(抗ヒトIgG)ヤギ抗体、
抗ヒトIgGウマ抗体、抗ヒトIgGヒツジ抗体、抗ヒ
トIgGマウス抗体、抗ヒトIgGウマ抗体、抗ヒトI
gGモルモット抗体、抗ヒトIgGブタ抗体等の抗ヒ)
IgG抗体、あるいは上記各動物の抗ヒト免疫グロブリ
ンM(抗ヒトIgM)抗体等を用いることができる。
酵素標識物質としては、ペルオキシダーゼ、アルカリホ
スファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、キモトリプシノ
ーゲン、プロカルボキシペプチダーゼ、グリセロアルデ
ヒド−3−リン酸脱水素酵素、アミラーゼ、ホスホリラ
ーゼ、テキサスレッド等を用いることができる。また、
蛍光標識物質としては、フルオレセイン番イソチオシア
ネート、テトラメチルローダミン−イソチオシアネート
、置換ローダミン・イソチオシアネート、ローダミンB
・イソチオシアネート、ジクロロトリアジンフルオレセ
イン等を用いることができる。
スファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、キモトリプシノ
ーゲン、プロカルボキシペプチダーゼ、グリセロアルデ
ヒド−3−リン酸脱水素酵素、アミラーゼ、ホスホリラ
ーゼ、テキサスレッド等を用いることができる。また、
蛍光標識物質としては、フルオレセイン番イソチオシア
ネート、テトラメチルローダミン−イソチオシアネート
、置換ローダミン・イソチオシアネート、ローダミンB
・イソチオシアネート、ジクロロトリアジンフルオレセ
イン等を用いることができる。
抗HTLV−1抗体と特異的に結合しうる上記の物質ど
上記の酵素標識物質または蛍光標識物質との結合体は、
公知の方法によって作成することができ、また市販のこ
のような各種結合体を用いてもよい。
上記の酵素標識物質または蛍光標識物質との結合体は、
公知の方法によって作成することができ、また市販のこ
のような各種結合体を用いてもよい。
このような結合体と抗原−抗体反応物との反応は、通常
4〜40℃で5分〜48時間の条件で行われる。この反
応終了後は充分に洗浄することが好ましい。また、上述
した凝集反応像、沈降線、濁度等を観察する場合は、反
応終了後すみやかに観察することが好ましい。そして、
標識化された抗原−抗体反応物の標識活性(酵素活性ま
たは蛍光活性)の測定等は公知の方法に従って行うこと
ができる。
4〜40℃で5分〜48時間の条件で行われる。この反
応終了後は充分に洗浄することが好ましい。また、上述
した凝集反応像、沈降線、濁度等を観察する場合は、反
応終了後すみやかに観察することが好ましい。そして、
標識化された抗原−抗体反応物の標識活性(酵素活性ま
たは蛍光活性)の測定等は公知の方法に従って行うこと
ができる。
以下、本発明の実施例を示して本発明を更に詳細に説明
する。
する。
実施例1(ペプチド合成)
HTLV−1のgag遺伝子およびenv遺伝子の核酸
配列を基に想定した27種類(gag蛋白質23種類、
env蛋白質4種類)のアミノ酸配列(第1表参照)の
ペプチドを合成した。
配列を基に想定した27種類(gag蛋白質23種類、
env蛋白質4種類)のアミノ酸配列(第1表参照)の
ペプチドを合成した。
第 1 表
ペプチドの合成は、上述したMerrNieldの段階
的固相法に従って、固相としてt−ブトキシカルボニル
アミノアシル−4−(オキシメチル)−パム樹脂を用い
て行った。原料アミノ酸にはアミノ酸保護剤(蛋白工学
研究新製)を添加した。この結果、αアミノ基は固相中
のt−ブトキシカルボニル基によって保護され、側鎖は
各アミノ酸において下記の保護基によって保護された。
的固相法に従って、固相としてt−ブトキシカルボニル
アミノアシル−4−(オキシメチル)−パム樹脂を用い
て行った。原料アミノ酸にはアミノ酸保護剤(蛋白工学
研究新製)を添加した。この結果、αアミノ基は固相中
のt−ブトキシカルボニル基によって保護され、側鎖は
各アミノ酸において下記の保護基によって保護された。
(アミノ酸) (保護基)
リ
シン(LYS)
システィン(Cys)
;N−2−クロロベンゾ
オキシカルボニル基
:5−4−メチル
ベンジル基
・トリプトファン(Trp) :N−ホルミル基
固相としてのt−ブトキシカルボニルアミノアシル−4
−(オキシメチル)−パム樹脂からの合成ペプチドの解
離は、液体フッ化水素を用いて凍結乾燥操作によって行
った。このようにして得られた合成ペプチドを5%酢酸
水溶液の溶解し、ファルマシア社製Sephgdex
G−25等のゲル口過カラムを用いて低分子量の副生成
物を取り除いて精製した。その後、逆相カラム(オクタ
デシルシランCl8)を用いた高速液体クロマトグラフ
ィーにより純度検定を行って、単一ピークが認められた
合成ペプチドを本発明に用いる合成ペプチドとした。
固相としてのt−ブトキシカルボニルアミノアシル−4
−(オキシメチル)−パム樹脂からの合成ペプチドの解
離は、液体フッ化水素を用いて凍結乾燥操作によって行
った。このようにして得られた合成ペプチドを5%酢酸
水溶液の溶解し、ファルマシア社製Sephgdex
G−25等のゲル口過カラムを用いて低分子量の副生成
物を取り除いて精製した。その後、逆相カラム(オクタ
デシルシランCl8)を用いた高速液体クロマトグラフ
ィーにより純度検定を行って、単一ピークが認められた
合成ペプチドを本発明に用いる合成ペプチドとした。
実施例2(ELISA法)
実施例1において合成した27種類の合成ペプチド50
0mgを各々0. 1mlの0.01M炭酸水素ナトリ
ウム緩衝液(p[I9.55)に溶解したものを、不溶
性担体である96穴EIAプレート(Mane社製)に
塗布し、4℃で一晩放置して固定化し不溶化抗原とした
。この不溶化抗原の不溶性担体の残存する吸着部位は2
0%ヤギ血清によってブロッキング処理した。
0mgを各々0. 1mlの0.01M炭酸水素ナトリ
ウム緩衝液(p[I9.55)に溶解したものを、不溶
性担体である96穴EIAプレート(Mane社製)に
塗布し、4℃で一晩放置して固定化し不溶化抗原とした
。この不溶化抗原の不溶性担体の残存する吸着部位は2
0%ヤギ血清によってブロッキング処理した。
一方、被検者から常法に従って採血した血液から分離さ
れた血清をリン酸緩衝溶液(P B S)で8倍希釈し
て測定試料血清とした。この測定試料血清は、トウビー
ン20界面活性剤を0.05vt%、ヤギ血清を10v
t%それぞれ含有する。なお、採血した血液から分離さ
れた血清は、PA法(富士レビオ製セロディアALTA
を使用)およびIF法(MT−1細胞をアセトンで固定
したスライドを使用)により検査し、測定値の評価は日
本光十字の標準判定法に従って行ワた。
れた血清をリン酸緩衝溶液(P B S)で8倍希釈し
て測定試料血清とした。この測定試料血清は、トウビー
ン20界面活性剤を0.05vt%、ヤギ血清を10v
t%それぞれ含有する。なお、採血した血液から分離さ
れた血清は、PA法(富士レビオ製セロディアALTA
を使用)およびIF法(MT−1細胞をアセトンで固定
したスライドを使用)により検査し、測定値の評価は日
本光十字の標準判定法に従って行ワた。
つぎに、前記不溶化抗原と前記測定試料血清とを37℃
で1時間反応させた後、酵素標識物質としてペルオキシ
ダーゼで標識化した抗ヒトIgGヤギ抗体を添加して3
7℃で0.5時間反応させた。そして、トウビーン20
界面活性剤を0.05vt%含有したリン酸緩衝溶液を
用いて洗浄を6回行った後、過酸化水素を0.1v1%
、0−フェニレンジアミンを0.04vt%含有した0
、1Mクエン酸ナトリウム緩衝液(p)Is。5)を1
50μ!添加して37℃で0.5時間反応させ、更に2
.5M過酸化水素を50μ!添加して37℃で5分反応
させた後、反応を停止した。
で1時間反応させた後、酵素標識物質としてペルオキシ
ダーゼで標識化した抗ヒトIgGヤギ抗体を添加して3
7℃で0.5時間反応させた。そして、トウビーン20
界面活性剤を0.05vt%含有したリン酸緩衝溶液を
用いて洗浄を6回行った後、過酸化水素を0.1v1%
、0−フェニレンジアミンを0.04vt%含有した0
、1Mクエン酸ナトリウム緩衝液(p)Is。5)を1
50μ!添加して37℃で0.5時間反応させ、更に2
.5M過酸化水素を50μ!添加して37℃で5分反応
させた後、反応を停止した。
つぎに、0−フェニレンジアミンを基質として492
amの吸光度を測定することによって、標識化された抗
原−抗体反応物の標識活性(ペルオキシダーゼ活性)を
算出した。492 amでの吸光度測定はプレートリー
ダー(5LT−L*binstroIII@nts(オ
ーストリア)製)を用い、陽性血清を判定するためのカ
ットオフ値は統計処理を施して算出した。すなわち、上
記PA法およびIF法においてともに陰性と判定された
血清31例の平均吸光度値に標準偏差を加えたものと、
PA法およびIF法でともに陽性と判定された血清31
例の平均吸光度値の10%とを加算した値をカットオフ
値とした。また、確認試験として、合成ペプチド抗原に
よる抗体吸収前処理血清を用いる競合反応を利用したE
L I SA法を行った。すなわち、測定試料血清と、
合成ペプチドまたは溶媒、のみを反応させて上述のEL
t SA法を行い、合成ペプチドを用いた場合の吸光
度が溶媒を用いた場合の吸光度に対して30%以上減少
した場合に陽性とした。
amの吸光度を測定することによって、標識化された抗
原−抗体反応物の標識活性(ペルオキシダーゼ活性)を
算出した。492 amでの吸光度測定はプレートリー
ダー(5LT−L*binstroIII@nts(オ
ーストリア)製)を用い、陽性血清を判定するためのカ
ットオフ値は統計処理を施して算出した。すなわち、上
記PA法およびIF法においてともに陰性と判定された
血清31例の平均吸光度値に標準偏差を加えたものと、
PA法およびIF法でともに陽性と判定された血清31
例の平均吸光度値の10%とを加算した値をカットオフ
値とした。また、確認試験として、合成ペプチド抗原に
よる抗体吸収前処理血清を用いる競合反応を利用したE
L I SA法を行った。すなわち、測定試料血清と、
合成ペプチドまたは溶媒、のみを反応させて上述のEL
t SA法を行い、合成ペプチドを用いた場合の吸光
度が溶媒を用いた場合の吸光度に対して30%以上減少
した場合に陽性とした。
上述の測定結果を策2表に示した。
第2表には、PA法およびIF法でともに陽性と判定さ
れた31例の血清中の抗体と反応性を示した合成ペプチ
ド8種類が示されている。第2表から明らかなように、
PA法およびIF法でともに陽性と判定された31例の
血清中の抗体と全て反応したのはgag蛋白質のC末端
から100番目乃至130番目までのアミノ酸配列に相
当する合成ペプチドP19−10[I IIであった。
れた31例の血清中の抗体と反応性を示した合成ペプチ
ド8種類が示されている。第2表から明らかなように、
PA法およびIF法でともに陽性と判定された31例の
血清中の抗体と全て反応したのはgag蛋白質のC末端
から100番目乃至130番目までのアミノ酸配列に相
当する合成ペプチドP19−10[I IIであった。
また、gag蛋白質のC末端から100番目乃至119
番目までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチドであっ
てPl、、9−IQOnよりアミノ酸数の少ない合成ペ
プチドP1.9−IGfl Iでも31例中22例に反
応性(71%)が認められた。さらに、env蛋白質の
C末端から175番目乃至199番目までのアミノ酸配
列に相当する合成ペプチドでは31例中26例に反応性
(84%)が認められた。
番目までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチドであっ
てPl、、9−IQOnよりアミノ酸数の少ない合成ペ
プチドP1.9−IGfl Iでも31例中22例に反
応性(71%)が認められた。さらに、env蛋白質の
C末端から175番目乃至199番目までのアミノ酸配
列に相当する合成ペプチドでは31例中26例に反応性
(84%)が認められた。
他方、合成ペプチドP19−100 nとのみ反応した
9例は、合成ペプチドf’19−1(IQ IIを用い
た確認試験で吸光度の減少が認められたが、合成ペプチ
ドPI9−100 Iを用いた確認試験では吸光度の減
少が認められなかった。これに対して、合成ペプチドP
19−100 Iと合成ペプチドP19−100 II
の双方と反応した21例は、合成ペプチドPI9−10
0 Iおよび合成ペプチドPI9−1.00 Ifのい
ずれを用いた確認試験でも吸光度の減少が認められた。
9例は、合成ペプチドf’19−1(IQ IIを用い
た確認試験で吸光度の減少が認められたが、合成ペプチ
ドPI9−100 Iを用いた確認試験では吸光度の減
少が認められなかった。これに対して、合成ペプチドP
19−100 Iと合成ペプチドP19−100 II
の双方と反応した21例は、合成ペプチドPI9−10
0 Iおよび合成ペプチドPI9−1.00 Ifのい
ずれを用いた確認試験でも吸光度の減少が認められた。
このことより、合成ペプチドP1.9−100 nには
2つ以上の強い抗原決定基領域が存在すると考えられる
。
2つ以上の強い抗原決定基領域が存在すると考えられる
。
実施例3(合成ペプチドP19−100 nを用いたス
クリーニング) 合成ペプチドPI9−100 Iを輸血者のHTLV−
1抗体検出用抗原として使用し得ることを確認するため
に、合成ペプチドP19−1.Hnのみを用いて不溶化
抗原を作成したこと、および測定試料血清の範囲を拡大
して下記の4種の供血者からの血清を用いた他は実施例
2と同様にしてEL I SA法を実施した。
クリーニング) 合成ペプチドPI9−100 Iを輸血者のHTLV−
1抗体検出用抗原として使用し得ることを確認するため
に、合成ペプチドP19−1.Hnのみを用いて不溶化
抗原を作成したこと、および測定試料血清の範囲を拡大
して下記の4種の供血者からの血清を用いた他は実施例
2と同様にしてEL I SA法を実施した。
・PA陰性、IF陰性の供血者 (対照血清)・PA陽
性、IF陰性の供血者 (中位血清)−PA陰性、IF
陽性の供血者 (p+osone血清)この血清はHT
LV−1抗体過剰のため凝集阻害を示している。
性、IF陰性の供血者 (中位血清)−PA陰性、IF
陽性の供血者 (p+osone血清)この血清はHT
LV−1抗体過剰のため凝集阻害を示している。
・PA陽性、IF陽性の供血者 (陽性血清)陽性血清
を判定するカットオフ値を0.522とした場合の49
2++mでの吸光度測定の結果を図に示した。図から明
らかなように、陽性血清は94例中94(100%)
、pro!ons血清は9例中9(100%)において
抗HTLV−1抗体が検出され、かつ、その陽性例(1
03例)巾約80%がELISA値2以上を示している
。
を判定するカットオフ値を0.522とした場合の49
2++mでの吸光度測定の結果を図に示した。図から明
らかなように、陽性血清は94例中94(100%)
、pro!ons血清は9例中9(100%)において
抗HTLV−1抗体が検出され、かつ、その陽性例(1
03例)巾約80%がELISA値2以上を示している
。
これに対して、中位血清は96例全てにおいてカットオ
フ値0.522を下回るEL、ISA値が検出された。
フ値0.522を下回るEL、ISA値が検出された。
また対照血清は966例中1を除いてカットオフ値0.
522を下回るEL I SA値が検出され、合成ペプ
チドI’19−1θOIIとの反応が認められた1例に
ついても、上述の競合反応を利用したELISA法によ
る測定の結果は陰性と判定された。
522を下回るEL I SA値が検出され、合成ペプ
チドI’19−1θOIIとの反応が認められた1例に
ついても、上述の競合反応を利用したELISA法によ
る測定の結果は陰性と判定された。
すなわち、合成ペプチドP1.9−100 nを用いた
本発明によるEL E SA法測定結果は、従来から抗
HTLV−1抗体の信頼できる検出法とされているIF
法による結果と完全に一致しており、従来のPA法に比
べて精度が高い。また、本発明によるELISA法の測
定操作は、従来のPA法と同様に簡便なものであり、I
F法に比べて操作が大幅に簡便なものとなっている。
本発明によるEL E SA法測定結果は、従来から抗
HTLV−1抗体の信頼できる検出法とされているIF
法による結果と完全に一致しており、従来のPA法に比
べて精度が高い。また、本発明によるELISA法の測
定操作は、従来のPA法と同様に簡便なものであり、I
F法に比べて操作が大幅に簡便なものとなっている。
〔作用〕
HTLV−1のgag蛋白質のC末端から100番目乃
至130番目までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチ
ドP19−10On、g a g蛋白質のC末端から1
00番目乃至119番目までのアミノ酸配列に相当する
合成ペプチドであってPl9−100■よりアミノ酸数
の少ない合成ペプチドP19−100 Iおよびenv
蛋白質の175番目乃至199番目までのアミノ酸配列
に相当する合成ペプチドは、抗HTLV−I抗体と高い
反応性を示す。特に、合成ペプチドP19−100 I
Iには2つ以上の強い抗原決定基領域が存在すると考え
られる。
至130番目までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチ
ドP19−10On、g a g蛋白質のC末端から1
00番目乃至119番目までのアミノ酸配列に相当する
合成ペプチドであってPl9−100■よりアミノ酸数
の少ない合成ペプチドP19−100 Iおよびenv
蛋白質の175番目乃至199番目までのアミノ酸配列
に相当する合成ペプチドは、抗HTLV−I抗体と高い
反応性を示す。特に、合成ペプチドP19−100 I
Iには2つ以上の強い抗原決定基領域が存在すると考え
られる。
そして、上記の合成ペプチドを固定化抗原として健全者
であるH、TLV−1キヤリヤーの血清中抗体の検出に
用いると、抗HTLV−I抗体を効率よく検出し得る。
であるH、TLV−1キヤリヤーの血清中抗体の検出に
用いると、抗HTLV−I抗体を効率よく検出し得る。
上記のように構成した本発明によれば、IF法における
ウィルスを産生ずる細胞系の維持といった繁雑な操作を
行うことなく、従来のPA法、ELISA法と同様の簡
便な測定操作によって、高精度な抗HTLV−1抗体の
検出が可能であり、かつ用いる合成ペプチドの種類また
は組み合わせを選定することによって、−回の操作で抗
HTLV−I抗体スクリーニングを行うことができる。
ウィルスを産生ずる細胞系の維持といった繁雑な操作を
行うことなく、従来のPA法、ELISA法と同様の簡
便な測定操作によって、高精度な抗HTLV−1抗体の
検出が可能であり、かつ用いる合成ペプチドの種類また
は組み合わせを選定することによって、−回の操作で抗
HTLV−I抗体スクリーニングを行うことができる。
図は、合成ペプチドP19−100 IIを用いたEL
ISA法の吸光度測定結果を示すグラフである。
ISA法の吸光度測定結果を示すグラフである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、成人型T細胞性白血病ウィルスの構成蛋白質の成分
ペプチドを合成し、該合成ペプチドの少なくとも1種を
不溶性担体に固定化した不溶化抗原を用いることを特徴
とする成人型T細胞性白血病関連抗体の測定方法。 2、前記合成ペプチドが、成人型T細胞性白血病ウィル
スI型(HTLV−1)のgag(コア)蛋白質のC末
端から100番目乃至130番目までのアミノ酸配列に
相当する合成ペプチド、該gag蛋白質のC末端から1
00番目乃至119番目までのアミノ酸配列に相当する
合成ペプチドおよび成人型T細胞性白血病ウィルスI型
(HTLV−1)のenv(エンベロープ)蛋白質のC
末端から175番目乃至199番目までのアミノ酸配列
に相当する合成ペプチドであることを特徴とする請求項
1記載の成人型T細胞性白血病関連抗体の測定方法。 3、前記合成ペプチドが、2つ以上の強い抗原決定基領
域を有することを特徴とする請求項2記載の成人型T細
胞性白血病関連抗体の測定方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP24546389A JPH03107764A (ja) | 1989-09-21 | 1989-09-21 | 成人型t細胞性白血病関連抗体の測定方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP24546389A JPH03107764A (ja) | 1989-09-21 | 1989-09-21 | 成人型t細胞性白血病関連抗体の測定方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03107764A true JPH03107764A (ja) | 1991-05-08 |
Family
ID=17134037
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP24546389A Pending JPH03107764A (ja) | 1989-09-21 | 1989-09-21 | 成人型t細胞性白血病関連抗体の測定方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH03107764A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH07502483A (ja) * | 1990-08-29 | 1995-03-16 | アメリカ合衆国 | 新規ペプチド抗原およびそれを用いるイムノアッセイ、試験キットおよびワクチン |
-
1989
- 1989-09-21 JP JP24546389A patent/JPH03107764A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH07502483A (ja) * | 1990-08-29 | 1995-03-16 | アメリカ合衆国 | 新規ペプチド抗原およびそれを用いるイムノアッセイ、試験キットおよびワクチン |
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