JPH03150466A - B型肝炎ウイルスPreS2 抗体用ラジオイムノアツセイ - Google Patents
B型肝炎ウイルスPreS2 抗体用ラジオイムノアツセイInfo
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- JPH03150466A JPH03150466A JP2206679A JP20667990A JPH03150466A JP H03150466 A JPH03150466 A JP H03150466A JP 2206679 A JP2206679 A JP 2206679A JP 20667990 A JP20667990 A JP 20667990A JP H03150466 A JPH03150466 A JP H03150466A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
組換えB型肝炎ウィルスワクチン[リコンビバクス(R
ecombivax)IIB ]は、1986イ「から
、ヒト用に使用されている。このワクチンは13型肝炎
ウィルス表面たんぱく質(IIIIsIのみで構成され
る20ナノメータの杓子よりなり、[3型肘炎ウイルス
f HB V l を効果的に導き出すことが立証され
ている。その後、追加的アミノ酸配列、すなわち、1’
rcs2として知られるII B Sたんぱく質のNl
+□末端伸張部分も、IIBV免疫にとって重要である
ことが明らかとなった。さらに、IIIIVワクチンに
l’ r c S 2を包含させることは、イJ益な効
果をもたらすものと考えられた。
ecombivax)IIB ]は、1986イ「から
、ヒト用に使用されている。このワクチンは13型肝炎
ウィルス表面たんぱく質(IIIIsIのみで構成され
る20ナノメータの杓子よりなり、[3型肘炎ウイルス
f HB V l を効果的に導き出すことが立証され
ている。その後、追加的アミノ酸配列、すなわち、1’
rcs2として知られるII B Sたんぱく質のNl
+□末端伸張部分も、IIBV免疫にとって重要である
ことが明らかとなった。さらに、IIIIVワクチンに
l’ r c S 2を包含させることは、イJ益な効
果をもたらすものと考えられた。
現在、絹換えF3型肝炎ウィルスPreS2 + S抗
IQ(PreS2 + S)よりなる第2世代のIIB
Vワクチンが、現代ヒトに使用するために開発されつつ
ある。PreS2 + SのPreS2領域に対して発
生した抗体は、IIBVの感染性をブロックすることが
知られている。たんぱく質のP r e S 2領域は
、最近II l(V中和抗体の発ろ1−のための免役的
慢牛エピトープな含むことが立証されている。ヒトの疾
患の進行においてのP r e S 2領域に対する抗
体の重要性は、B !Fす肝炎ウィルス(IIBV)感
染からの回復と抗P r eS 2抗体の存在の直接的
相関関係により強調される。
IQ(PreS2 + S)よりなる第2世代のIIB
Vワクチンが、現代ヒトに使用するために開発されつつ
ある。PreS2 + SのPreS2領域に対して発
生した抗体は、IIBVの感染性をブロックすることが
知られている。たんぱく質のP r e S 2領域は
、最近II l(V中和抗体の発ろ1−のための免役的
慢牛エピトープな含むことが立証されている。ヒトの疾
患の進行においてのP r e S 2領域に対する抗
体の重要性は、B !Fす肝炎ウィルス(IIBV)感
染からの回復と抗P r eS 2抗体の存在の直接的
相関関係により強調される。
絹換えPrcS2+S抗原でワクヂン接種を受けた後、
抗PrcS2抗体の高力価を生ずる患者の能力は、II
BV感染からの防護あるいは疾患の最小限化と直接的に
相関つけられることとなる。従って、PrcS2に対す
る抗体応答は、P r e S 2とSとが一つの連続
したペプチドの一部であるにもかかわらず、抗S抗体か
らのT渉無しにアッセイされることは重要である。
抗PrcS2抗体の高力価を生ずる患者の能力は、II
BV感染からの防護あるいは疾患の最小限化と直接的に
相関つけられることとなる。従って、PrcS2に対す
る抗体応答は、P r e S 2とSとが一つの連続
したペプチドの一部であるにもかかわらず、抗S抗体か
らのT渉無しにアッセイされることは重要である。
現在、いくつかのアッセイ系が、抗I’rcS2抗体の
検出のために利用されている。これらのアッセイの多く
は、PreS2の一部又は全部よりなる短い合成ペプチ
ドの形態中にPreS2エピトープを組み入れるもので
ある。大たんぱく質の中の小さなペプチド又は断片は、
最大の抗体評価のための適切な構造形態を5えず場合が
あり、従って自然の抗原−抗体相t7作用を正確に示さ
ない場合がある。
検出のために利用されている。これらのアッセイの多く
は、PreS2の一部又は全部よりなる短い合成ペプチ
ドの形態中にPreS2エピトープを組み入れるもので
ある。大たんぱく質の中の小さなペプチド又は断片は、
最大の抗体評価のための適切な構造形態を5えず場合が
あり、従って自然の抗原−抗体相t7作用を正確に示さ
ない場合がある。
さらに、これらのアッセイ系は、検出モードとして、テ
ストサンプル源の抗体に特異的な、放射線標識又は酵素
結合抗体、例えば、1251標識又はアルカリホスファ
ターゼ結合抗ヒトIgGか、ヒト血清中の抗PreS2
抗体を検出するために使用される。これは、以下の理由
から、バッククラランド的な干渉の増大をもたらす。
ストサンプル源の抗体に特異的な、放射線標識又は酵素
結合抗体、例えば、1251標識又はアルカリホスファ
ターゼ結合抗ヒトIgGか、ヒト血清中の抗PreS2
抗体を検出するために使用される。これは、以下の理由
から、バッククラランド的な干渉の増大をもたらす。
■ PreS2に特異的てないテストサンプル中の抗体
との非特異的相互作用: ■ アッセイ装置の成分と、標識された検出抗体とのヒ
非特異的相互作用;および ■ アッセイ装置に非特異的に吸着されたテストサンプ
ルからの抗体と、標識された検出抗体との相互作用 本発明の目的は、抗PreS2抗体用の改良されたラジ
オイムノアッセイを提供することにある。本発明の他の
目的は、非特異的ハックグラウンドの干渉を減したアッ
セイを提供することにある。本発明のさらに他の目的は
、抗PreS2抗体のみを選択的に測定するアッセイを
提供することにある。
との非特異的相互作用: ■ アッセイ装置の成分と、標識された検出抗体とのヒ
非特異的相互作用;および ■ アッセイ装置に非特異的に吸着されたテストサンプ
ルからの抗体と、標識された検出抗体との相互作用 本発明の目的は、抗PreS2抗体用の改良されたラジ
オイムノアッセイを提供することにある。本発明の他の
目的は、非特異的ハックグラウンドの干渉を減したアッ
セイを提供することにある。本発明のさらに他の目的は
、抗PreS2抗体のみを選択的に測定するアッセイを
提供することにある。
本発明のこれら及び他の目的は、以上の記載により明ら
かになるであろう、1 本発明は、生物学的液体中に存在する抗PreS2抗体
量を測定するだめの方法を提供する。ここで、生物学的
液体としては、以−ドのものよりなるが、これらに限定
されるものではない。
かになるであろう、1 本発明は、生物学的液体中に存在する抗PreS2抗体
量を測定するだめの方法を提供する。ここで、生物学的
液体としては、以−ドのものよりなるが、これらに限定
されるものではない。
“血液、血清、プラズマ又は血液生成物、体分泌物及び
排泄物、組織又は組織抽出物並びに細胞槁養液又は細胞
槁養抽出物” 抗11Bs抗体は、基体表面1′、に吸着される。次い
で、PreS2 + Sたんぱく質の限られたMが、P
reS2 + Sたんぱく質の“S”部位と抗11Bs
抗体の相h:作用により、」−記表面に吸着される(P
reS2 +Sの吸着は、例えばr15Aのような非特
異的和げ作用を行うすべての残存部位を占領することが
できる薬剤の存在下で行われる)。次いで、コートされ
た表面は、テストサンプル及び放射線標識抗PreS2
抗体と共に共存的にインキュベーシミ】ンされる。上記
表面に結合した標識放射線量は、テストサンプル中の抗
1’rcS2抗体の量又は有無を決定する。
排泄物、組織又は組織抽出物並びに細胞槁養液又は細胞
槁養抽出物” 抗11Bs抗体は、基体表面1′、に吸着される。次い
で、PreS2 + Sたんぱく質の限られたMが、P
reS2 + Sたんぱく質の“S”部位と抗11Bs
抗体の相h:作用により、」−記表面に吸着される(P
reS2 +Sの吸着は、例えばr15Aのような非特
異的和げ作用を行うすべての残存部位を占領することが
できる薬剤の存在下で行われる)。次いで、コートされ
た表面は、テストサンプル及び放射線標識抗PreS2
抗体と共に共存的にインキュベーシミ】ンされる。上記
表面に結合した標識放射線量は、テストサンプル中の抗
1’rcS2抗体の量又は有無を決定する。
本発明は、抗PreS2抗体用のラジオイムノアッセイ
(RIA) に関する。
(RIA) に関する。
本発明のRIAのための出発物質は、抗B型肝炎ウイル
ス表面たんばり質(抗HBS)抗体である。抗11Bs
抗体は種々の源、すなわち、自然感染又は免疫されたヒ
ト又は実験動物又は、絹換え技術により処理された細胞
又は動物から得られるがこれらには限定されない。抗I
+ 11 S抗体は、限定はされないが、ポリクローナ
ル又はモノクローナル抗体又はその断片であることがで
き、さらに、限定されるものではないが、血清、プラズ
マ、腹水液、細胞培養液、細胞抽]11物又は、−4−
記のものからの抽出物の態であることができる。好まし
い源は、高レベルの抗I+ 113抗体(約I X l
o’MIU/ mlのAUSAB力価)を有することが
判っている個体からのヒト血清又はプラズマである。
ス表面たんばり質(抗HBS)抗体である。抗11Bs
抗体は種々の源、すなわち、自然感染又は免疫されたヒ
ト又は実験動物又は、絹換え技術により処理された細胞
又は動物から得られるがこれらには限定されない。抗I
+ 11 S抗体は、限定はされないが、ポリクローナ
ル又はモノクローナル抗体又はその断片であることがで
き、さらに、限定されるものではないが、血清、プラズ
マ、腹水液、細胞培養液、細胞抽]11物又は、−4−
記のものからの抽出物の態であることができる。好まし
い源は、高レベルの抗I+ 113抗体(約I X l
o’MIU/ mlのAUSAB力価)を有することが
判っている個体からのヒト血清又はプラズマである。
抗11 B S抗体は、適当な基体表面をコートするた
めに使用する。最も一般的な基体のタイプは、プラスチ
ックであり、限定はされないが、ポリエチレン、ポリプ
ロピレン又はポリスチレンが挙げられ、好ましいプラス
チックは、ポリスチレンである。基体は、種々の形状に
形成することができ、限定はされないが、管、皿、級、
マルチウェル(mulLiwell)プレート、ビーズ
及びあらゆる容器が挙げられ、ビーズが最も好ましい形
状である。
めに使用する。最も一般的な基体のタイプは、プラスチ
ックであり、限定はされないが、ポリエチレン、ポリプ
ロピレン又はポリスチレンが挙げられ、好ましいプラス
チックは、ポリスチレンである。基体は、種々の形状に
形成することができ、限定はされないが、管、皿、級、
マルチウェル(mulLiwell)プレート、ビーズ
及びあらゆる容器が挙げられ、ビーズが最も好ましい形
状である。
ビーズは、広範囲のサイズを有することができ、最も好
ましいサイズは、直径約6.3mmである。
ましいサイズは、直径約6.3mmである。
抗11113でコートしたビーズは、次いで、限定はさ
れないが合成技術、組換えDNA技術又は天然源より得
ることのできるPreSZ + Sたんぱく質の溶液と
共にインキュベーションする。このインキュベーション
工程中にPreS2+Sをビーズ表面をコートしている
抗)IBS抗体とPreSZ +Sたんぱく質の“S”
部位の特異的相互作用により、ビーズfr、に吸着させ
る。この吸着操作によりPreSZ+Sたんぱく質の限
られた量がビーズ表面に結合する。PreSZ + S
たんぱく質溶液には、非特異的吸石をする残存部位のす
べてを実質的に占領するだめの材料が含まれる。そのよ
うな材料の例とじては、血清アルブミン、血清及びミル
クが挙げられる。この「1的のための最も好ましい材料
は、約1%濃度の牛血清アルブミン(B5Alである。
れないが合成技術、組換えDNA技術又は天然源より得
ることのできるPreSZ + Sたんぱく質の溶液と
共にインキュベーションする。このインキュベーション
工程中にPreS2+Sをビーズ表面をコートしている
抗)IBS抗体とPreSZ +Sたんぱく質の“S”
部位の特異的相互作用により、ビーズfr、に吸着させ
る。この吸着操作によりPreSZ+Sたんぱく質の限
られた量がビーズ表面に結合する。PreSZ + S
たんぱく質溶液には、非特異的吸石をする残存部位のす
べてを実質的に占領するだめの材料が含まれる。そのよ
うな材料の例とじては、血清アルブミン、血清及びミル
クが挙げられる。この「1的のための最も好ましい材料
は、約1%濃度の牛血清アルブミン(B5Alである。
ビーズの−様なコーディングを確実に行うために、多数
のビーズ群を同時に調製し、コーディング工程は、−・
定かつゆるやかにタンプリングすることにより行われる
。
のビーズ群を同時に調製し、コーディング工程は、−・
定かつゆるやかにタンプリングすることにより行われる
。
1゛記のごとく調製したビーズ(又はいずれかの他の基
体)は、保存することができる。製造後に、基体を乾燥
し、適切な容器に密閉し種々の時間、約−20℃で保存
する。
体)は、保存することができる。製造後に、基体を乾燥
し、適切な容器に密閉し種々の時間、約−20℃で保存
する。
抗PrcS2抗体の有無をテストされるべき生物学的液
体のサンプル(テストサンプル)を、1′I標識抗Pr
eSZ抗体の既知量(典型的には約3 X 10’ c
pm )と混合する。テストサンプルは布釈せずに使用
してもよく、−・連希釈液を調製することもできる。次
いで、この混合物を、[・記のコートしたビーズと共に
インキュベーションする。
体のサンプル(テストサンプル)を、1′I標識抗Pr
eSZ抗体の既知量(典型的には約3 X 10’ c
pm )と混合する。テストサンプルは布釈せずに使用
してもよく、−・連希釈液を調製することもできる。次
いで、この混合物を、[・記のコートしたビーズと共に
インキュベーションする。
抗1’rcs2抗体を標識するのに適切な他の手段の存
在も当業者にとって自明である。標識の他の手段として
は、限定はされないが、異なる放射性同位元素(例えば
311.32P 、 26S 、 14c )、酵素(
例えばベロキシダーセ、アルカリフオスファターセ)、
及び蛍光体(例えばフルオレセイン、ローダミン)が挙
げられる。加えて、抗体断片と同様に、ポリクローナル
又はモノクローナル抗体もまた標識及びこの方法におけ
る使用に適していることは、当業者にとって自明なこと
である。
在も当業者にとって自明である。標識の他の手段として
は、限定はされないが、異なる放射性同位元素(例えば
311.32P 、 26S 、 14c )、酵素(
例えばベロキシダーセ、アルカリフオスファターセ)、
及び蛍光体(例えばフルオレセイン、ローダミン)が挙
げられる。加えて、抗体断片と同様に、ポリクローナル
又はモノクローナル抗体もまた標識及びこの方法におけ
る使用に適していることは、当業者にとって自明なこと
である。
抗PreS2抗体を含まないことがわかっている、異な
るものではあるが近似するテストサンプル(ネカティブ
コントロール)も、同量の放射線標識抗PreS2抗体
と混合し、調製したビーズと共にインキュベーションす
る。さらに別に、抗PrcS2抗体を含むことがわかっ
ている、異なるが近似するテストサンプル(ポジティブ
コントロール)を、同量の放射線標識抗PreS2抗体
と混合し製造したビーズと共にインキュベーションする
。テストサンプルのインキュベーション後、ビーズは、
PBSでていねいに洗浄し、ビーズに結合した放射0 線活性i?を測定する。
るものではあるが近似するテストサンプル(ネカティブ
コントロール)も、同量の放射線標識抗PreS2抗体
と混合し、調製したビーズと共にインキュベーションす
る。さらに別に、抗PrcS2抗体を含むことがわかっ
ている、異なるが近似するテストサンプル(ポジティブ
コントロール)を、同量の放射線標識抗PreS2抗体
と混合し製造したビーズと共にインキュベーションする
。テストサンプルのインキュベーション後、ビーズは、
PBSでていねいに洗浄し、ビーズに結合した放射0 線活性i?を測定する。
本方法は、テストサンプル中に存在する抗PrcS2抗
体が、コートされたビーズ層、のPrcS2結合部位に
ついて、放射線標識抗PreS2抗体と競合する“競合
アッセイ”である。従って、高レベルのビーズ結合放射
活性は、テストサンプル中の抗PreS2抗体が低レベ
ルであることを示し、逆に、低レベルのビーズ結合放射
活性は、テストサンプル中の高レベルの抗PrcS2抗
体を示すことになる6又、ビーズをコートしているPr
eS2+Sの量は限定的であることが重要である。その
理由は、過剰のPreS2+Sはテストサンプル中の抗
PreS2と放射線標識抗体によるPreS2エピトー
プについての競合を妨害するからである。
体が、コートされたビーズ層、のPrcS2結合部位に
ついて、放射線標識抗PreS2抗体と競合する“競合
アッセイ”である。従って、高レベルのビーズ結合放射
活性は、テストサンプル中の抗PreS2抗体が低レベ
ルであることを示し、逆に、低レベルのビーズ結合放射
活性は、テストサンプル中の高レベルの抗PrcS2抗
体を示すことになる6又、ビーズをコートしているPr
eS2+Sの量は限定的であることが重要である。その
理由は、過剰のPreS2+Sはテストサンプル中の抗
PreS2と放射線標識抗体によるPreS2エピトー
プについての競合を妨害するからである。
木アッセイは、自然発生++BV感染又はワクチン接種
患者における抗PrcS2抗体の存在を検出するために
使用することができる。特に、PreS2含有ワクチン
接種を受けたヒトについて、その結果を評価するために
有用である。
患者における抗PrcS2抗体の存在を検出するために
使用することができる。特に、PreS2含有ワクチン
接種を受けたヒトについて、その結果を評価するために
有用である。
以下の実施例は、本発明を説明するためのもの1
であり、本発明を何ら限定するものではない。
尺胤■」
−I゛稈Δ:
高力価の抗HBS抗体(AUSAB力価約l X I
O’MILI/ ml)を含むことがわかっているヒト
血清を希釈剤として炭酸ナトリウノ\のpl+9.6の
緩衝液(約0.08M)で] : 100に希釈する。
O’MILI/ ml)を含むことがわかっているヒト
血清を希釈剤として炭酸ナトリウノ\のpl+9.6の
緩衝液(約0.08M)で] : 100に希釈する。
この希釈血清を使用してポリスチレンビーズ(6,4m
m [e+径)をコートするビーズ層の最上部が、希釈
血清の表面直ドになるまで、希釈血清にビーズを加える
1、典型的には、約150m1の血清溶液を使用する。
m [e+径)をコートするビーズ層の最上部が、希釈
血清の表面直ドになるまで、希釈血清にビーズを加える
1、典型的には、約150m1の血清溶液を使用する。
ビーズは血清溶液中で、−晩(約15時間)、4°Cで
インキュヘーシEJンし、コーティングが施す。次いで
、コーディング溶液を排出し、ビーズを少なくとも5回
蒸留水でていねいに洗浄する。
インキュヘーシEJンし、コーティングが施す。次いで
、コーディング溶液を排出し、ビーズを少なくとも5回
蒸留水でていねいに洗浄する。
次いでビーズを風乾し、−20℃で密閉ガラスびノリ中
で保存する。
で保存する。
抗11Bs抗体でコートしたビーズは、次いで、1%B
SA及び5 ng/ m1Pres2 + Sたんぱく
質を含むPI’+S溶液中でインキュページ三1ンする
。典型的2 には、抗11Bs抗体でコートしたビーズを、ビーズ層
の最上部が、PreSZ +S溶液のちょうど液面直ド
に達するまでl!+OmlのPreSZ + S溶液に
加える。ビーズは、静かに回転させながら室温で約5時
間インキユヘーションする。PreSZ +S溶液を排
出し、ビーズを少なくとも5回蒸留水でていねいに洗浄
する。次いで、ビーズを風乾し、密閉びん中で一20度
℃で保存する。
SA及び5 ng/ m1Pres2 + Sたんぱく
質を含むPI’+S溶液中でインキュページ三1ンする
。典型的2 には、抗11Bs抗体でコートしたビーズを、ビーズ層
の最上部が、PreSZ +S溶液のちょうど液面直ド
に達するまでl!+OmlのPreSZ + S溶液に
加える。ビーズは、静かに回転させながら室温で約5時
間インキユヘーションする。PreSZ +S溶液を排
出し、ビーズを少なくとも5回蒸留水でていねいに洗浄
する。次いで、ビーズを風乾し、密閉びん中で一20度
℃で保存する。
、L程」ユ
約3 X 1105cpを含む放射線標識(+2J)千
ツクローナル抗PreS2抗体の一定量(通例10μ℃
)を、プラスチックマルチウェルプレート(通例20つ
]−ルプレート)の各ウェル中1入れる。
ツクローナル抗PreS2抗体の一定量(通例10μ℃
)を、プラスチックマルチウェルプレート(通例20つ
]−ルプレート)の各ウェル中1入れる。
PreSZ + Sでワクチン接種した患者からの血清
1.2ml (未知のテストサンプル)を個々のウェ
ルに加える。10のウェルに、抗PrcS2抗体を含ま
ないネガデイプ:コントロールサンプル0.2mlを1
ノ。
1.2ml (未知のテストサンプル)を個々のウェ
ルに加える。10のウェルに、抗PrcS2抗体を含ま
ないネガデイプ:コントロールサンプル0.2mlを1
ノ。
え、少なくとも2つのつ上ルに、抗P r c S 2
抗体を含むことがわかっているポジティブコントロール
サンプル0.2mlを1jえる。サンプルを完全に混合
q し、PreSZ +Sたんぱく質でコートしたビーズ1
種を、テストサンプル又はコントロールサンプルを有す
る各ウェルに加える。プレートを密閉し、室温で18〜
24時間インキュベーションする。ビズを5mlの蒸留
水でそれぞれ3回洗浄し、適切なガンマカウンター中で
放射活性(cpm)を測定するために、それぞれプラス
チックデユープに移す。
抗体を含むことがわかっているポジティブコントロール
サンプル0.2mlを1jえる。サンプルを完全に混合
q し、PreSZ +Sたんぱく質でコートしたビーズ1
種を、テストサンプル又はコントロールサンプルを有す
る各ウェルに加える。プレートを密閉し、室温で18〜
24時間インキュベーションする。ビズを5mlの蒸留
水でそれぞれ3回洗浄し、適切なガンマカウンター中で
放射活性(cpm)を測定するために、それぞれプラス
チックデユープに移す。
結果は以下のごとくである。
961(希釈なし) 709 7323 40
162898 (1:21 3533 fl:4) ?+22 (1:8)’ *:カットオフポイントは、ネカディブコントロールの
1と均cpmにホシディブコントロールの平均cpmを
プラスして、2で割ったものとして定義される。未知の
テストサンプルについては、cpm 4 がカットオフより低ければ抗PreS2抗体がポジティ
ブであるとされる。1:この希釈においては、カットオ
フ規準を満足させず、従って抗P r c S 2抗体
はネガデイプであるとされる。
162898 (1:21 3533 fl:4) ?+22 (1:8)’ *:カットオフポイントは、ネカディブコントロールの
1と均cpmにホシディブコントロールの平均cpmを
プラスして、2で割ったものとして定義される。未知の
テストサンプルについては、cpm 4 がカットオフより低ければ抗PreS2抗体がポジティ
ブであるとされる。1:この希釈においては、カットオ
フ規準を満足させず、従って抗P r c S 2抗体
はネガデイプであるとされる。
灸1昨?
4 ptのチンパンジー群を、PreS2 + Sたん
ぱく質のPrcS2領域に相当する合成ペプチドで免疫
する。血清サンプルを免疫チンパンジーから集める。2
匹の免疫されていないチンパンジーからも同様に集める
。+m 2内サンプルを実施例1[稈F3のごとく処理
する。2匹の免疫されていない動物は、抗PrcS2抗
体が検出されないのに対して、4匹の免疫された動物は
、検出可能レベルの抗PrcS2抗体をf」する。
ぱく質のPrcS2領域に相当する合成ペプチドで免疫
する。血清サンプルを免疫チンパンジーから集める。2
匹の免疫されていないチンパンジーからも同様に集める
。+m 2内サンプルを実施例1[稈F3のごとく処理
する。2匹の免疫されていない動物は、抗PrcS2抗
体が検出されないのに対して、4匹の免疫された動物は
、検出可能レベルの抗PrcS2抗体をf」する。
犬籠廻j
チンパンジーが酵母生成の絹換えPreS2 + Sた
んぱく質で免疫されることを除き、実施例2と同様の操
作を行った。免疫チンパンジーからの1f1[清は、検
出if能レしルの抗PrcS2抗体を自する。
んぱく質で免疫されることを除き、実施例2と同様の操
作を行った。免疫チンパンジーからの1f1[清は、検
出if能レしルの抗PrcS2抗体を自する。
5
実]l肌A
11:、常なヒトのボランディアの群を、酵R)生成組
換えPrcS2+Sたんぱく質で免疫する。血清サンプ
ルを集め抗PrcS2抗体のためのアッセイを実施例1
、二F稈Bに従って行う1.血清サンプルには、検出可
能レベルの抗PreS2抗体が含まれることが見い出さ
れた。
換えPrcS2+Sたんぱく質で免疫する。血清サンプ
ルを集め抗PrcS2抗体のためのアッセイを実施例1
、二F稈Bに従って行う1.血清サンプルには、検出可
能レベルの抗PreS2抗体が含まれることが見い出さ
れた。
火胤■1
正常なヒトボランティア群に異なる投与量で酵母生成組
換えPreSZ+Sたんぱく質をワクチン接種する。+
fn清サンプルを1ケ月間隔でワクチン接種者から集め
、実施例1、工程Bに従って、抗PreS2抗体の有無
についてアッセイする。個々の抗体応答曲線が、成功し
た免疫化を示す時間にわたってワクチン接種者から、生
成する。
換えPreSZ+Sたんぱく質をワクチン接種する。+
fn清サンプルを1ケ月間隔でワクチン接種者から集め
、実施例1、工程Bに従って、抗PreS2抗体の有無
についてアッセイする。個々の抗体応答曲線が、成功し
た免疫化を示す時間にわたってワクチン接種者から、生
成する。
平成2年11月20日
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、生物学的液体中の抗PreS2抗体を検出する方法
であって、 (1)ポリスチレンビース表面を抗HBS抗体でコート
し、 (2)PreS2+Sたんぱく質を抗HBS抗体でコー
トされたビーズへ吸着させ、 (3)別に、約3×10^5cpmの^1^2^5I標
識抗PreS2抗体とそれぞれ混合することによるテス
トサンプル、ポジティブコントロール及びネガティブコ
ントロールサンプルを調製し、 (4)(2)のコートされたビーズを(3)で調製した
サンプルとインキュベーションし、 (5)該ビーズに結合した標識抗PreS2抗体の量を
測定し、サンプルの中の抗PreS2抗体レベルを計算
することよりなる方法。 2、抗HBS抗体及び吸着されたPreS2+Sたんぱ
く質でコートされたポリスチレンビーズ。 3、抗PreS2抗体の検出に使用できる請求項2記載
のポリスチレンビーズを含むパッケージ又はキット。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US389,207 | 1989-08-03 | ||
US07/389,207 US5091300A (en) | 1989-08-03 | 1989-08-03 | Radio-immuno assay for hepatitis b virus pres2 antibodies |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03150466A true JPH03150466A (ja) | 1991-06-26 |
Family
ID=23537299
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2206679A Pending JPH03150466A (ja) | 1989-08-03 | 1990-08-03 | B型肝炎ウイルスPreS2 抗体用ラジオイムノアツセイ |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5091300A (ja) |
EP (1) | EP0411938A3 (ja) |
JP (1) | JPH03150466A (ja) |
CA (1) | CA2022343A1 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH08504954A (ja) * | 1993-04-28 | 1996-05-28 | ラッキー リミテッド | B型およびc型肝炎同時診断用診断キットおよび方法 |
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US6066300A (en) * | 1995-07-07 | 2000-05-23 | Bayer Corporation | Reagent handling system and configurable vial carrier for use therein |
US8492098B2 (en) | 2006-02-21 | 2013-07-23 | The Trustees Of Tufts College | Methods and arrays for target analyte detection and determination of reaction components that affect a reaction |
US11237171B2 (en) | 2006-02-21 | 2022-02-01 | Trustees Of Tufts College | Methods and arrays for target analyte detection and determination of target analyte concentration in solution |
EP2201374B1 (en) | 2007-08-30 | 2015-10-07 | Trustees Of Tufts College | Methods for determining the concentration of an analyte in solution. |
US8222047B2 (en) * | 2008-09-23 | 2012-07-17 | Quanterix Corporation | Ultra-sensitive detection of molecules on single molecule arrays |
US8236574B2 (en) | 2010-03-01 | 2012-08-07 | Quanterix Corporation | Ultra-sensitive detection of molecules or particles using beads or other capture objects |
US9678068B2 (en) * | 2010-03-01 | 2017-06-13 | Quanterix Corporation | Ultra-sensitive detection of molecules using dual detection methods |
ES2544635T3 (es) | 2010-03-01 | 2015-09-02 | Quanterix Corporation | Métodos para extender el rango dinámico en ensayos para la detección de moléculas o partículas |
US8415171B2 (en) | 2010-03-01 | 2013-04-09 | Quanterix Corporation | Methods and systems for extending dynamic range in assays for the detection of molecules or particles |
US9952237B2 (en) | 2011-01-28 | 2018-04-24 | Quanterix Corporation | Systems, devices, and methods for ultra-sensitive detection of molecules or particles |
US20140302532A1 (en) | 2011-04-12 | 2014-10-09 | Quanterix Corporation | Methods of determining a treatment protocol for and/or a prognosis of a patient's recovery from a brain injury |
WO2014113502A1 (en) | 2013-01-15 | 2014-07-24 | Quanterix Corporation | Detection of dna or rna using single molecule arrays and other techniques |
CN103616513A (zh) * | 2013-12-06 | 2014-03-05 | 苏州长光华医生物医学工程有限公司 | 乙型肝炎病毒e抗原测定试剂盒以及检测方法 |
Family Cites Families (8)
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US4847080A (en) * | 1984-03-07 | 1989-07-11 | New York Blood Center, Inc. | Pre-S gene coded peptide hepatitis B immunogens, vaccines, diagnostics, and synthetic lipide vesicle carriers |
FI861417A0 (fi) * | 1985-04-15 | 1986-04-01 | Endotronics Inc | Hepatitis b ytantigen framstaelld med rekombinant-dna-teknik, vaccin, diagnostiskt medel och cellinjer samt foerfaranden foer framstaellning daerav. |
IL75828A (en) * | 1985-07-17 | 1991-06-10 | Univ Ramot | Immobilization by biologically active proteins |
EP0288198A3 (en) * | 1987-04-20 | 1989-03-29 | Takeda Chemical Industries, Ltd. | Production of peptide |
US5028524A (en) * | 1987-04-24 | 1991-07-02 | Takeda Chemical Industries, Ltd. | Assay for anti-pre-S antibody |
EP0310178A1 (en) * | 1987-09-30 | 1989-04-05 | Merck & Co. Inc. | Recovery of pres2+S antigen |
US4963483A (en) * | 1987-10-13 | 1990-10-16 | Merck & Co., Inc. | Method for producing hepatitis B virus proteins in yeast |
-
1989
- 1989-08-03 US US07/389,207 patent/US5091300A/en not_active Expired - Fee Related
-
1990
- 1990-07-31 CA CA002022343A patent/CA2022343A1/en not_active Abandoned
- 1990-08-02 EP EP19900308511 patent/EP0411938A3/en not_active Ceased
- 1990-08-03 JP JP2206679A patent/JPH03150466A/ja active Pending
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Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0411938A3 (en) | 1991-03-27 |
US5091300A (en) | 1992-02-25 |
EP0411938A2 (en) | 1991-02-06 |
CA2022343A1 (en) | 1991-02-04 |
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Wands et al. | High affinity monoclonal antibodies to hepatitis B surface antigen (HBsAg) produced by somatic cell hybrids | |
Pujol et al. | Prevalence of antibodies against hepatitis E virus among urban and rural populations in Venezuela | |
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Mannik et al. | IgG rheumatoid factors and self-association of these antibodies | |
Brown et al. | An analysis of the properties of monoclonal antibodies directed to epitopes on influenza virus hemagglutinin | |
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Heijtink et al. | Anti-HBs levels after hepatitis B immunisation depend on test reagents: routinely determined 10 and 100 IU/l seroprotection levels unreliable | |
Madaliński et al. | HBsAg immune complexes in the course of infection with hepatitis B virus | |
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Schmidt et al. | Complement fixation and immunodiffusion tests for assay of hepatitis-associated “Australia” antigen and antibodies | |
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Yeung et al. | The cell attachment proteins of type 1 and type 3 reovirus are differentially susceptible to trypsin and chymotrypsin | |
Dekker et al. | Limitations of different ELISA procedures for localizing epitopes in viral coat protein subunits | |
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Van Regenmortel et al. | Analysis of viral antigens using biosensor technology | |
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Cote Jr et al. | Nonoverlapping antigenic sites of woodchuck hepatitis virus surface antigen and their cross-reactivity with ground squirrel hepatitis virus and hepatitis B virus surface antigens | |
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Poul et al. | Use of monoclonal antibodies for the identification of different antigenic domains in apple chlorotic leaf spot virus |