JPH03139298A - 化学発光による酵素測定方法 - Google Patents

化学発光による酵素測定方法

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JPH03139298A
JPH03139298A JP2033599A JP3359990A JPH03139298A JP H03139298 A JPH03139298 A JP H03139298A JP 2033599 A JP2033599 A JP 2033599A JP 3359990 A JP3359990 A JP 3359990A JP H03139298 A JPH03139298 A JP H03139298A
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dioxetane
vinylbenzyl
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Irena Y Bronstein
イレーナ・ワイ・ブロンスタイン
Brooks Edwards
ブルックス・エドワーズ
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Tropix Inc
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明は、エンハンサ−の存在下に1.2−ジオキセタ
ン分子中のホスファターゼによって切断しうる基の酵素
性分解によってもたらされる光学的に検出可能な反応を
用いて特異的結合対の一員を検出し且つ定全化しうる検
定法に関する。
[従来の技術] 1.2−ジオキセタンとして知られる4員環の有機ペル
オキシドは既知化合物であるが、こレマテめったに利用
されたことのない化合物群である。
それらの化合物固有の化学的不安定性ゆえに、いくつか
の1,2−ジオキセタンはある種の条件下で(例えば酵
素の作用により)化学発光分解を示し、このことは“ジ
オキセタンの酵素性分解を用いる物質の検出法“と題す
る係属中の米国特許出願第889823号に開示されて
いる(これらの技術内容は参照によりここに引用される
)。このような化学発光の間に放出される光線の量は発
光物質の濃度の尺度であり、ひいてはその前駆物質(す
なわち1.2−ジオキセタン)の濃度の尺度である。従
って、発光の強度および持続時間を測定することによっ
て、1.2−ジオキセタンの濃度(それゆえに検定すべ
き物質、すなわち特異的結合対の1.2ジオキセタン員
子に結合した物質、の濃度)を求めることができる。■
、2−ジオキセタン環の置換基を適当に選択すると、そ
の分子の化学的安定性を調節することができ、ひいては
化学発光の開始をコントロールすることができ、それに
より実施目的のための、例えば上記出願明細書中にある
化学発光イムノアッセイにおける、この種の化合物の化
学発光作用の有用性を高めることができる。
発光を用いた従来の検定方法として代表的なものは、■
標識酵素としてPODを用い、基質としてH2O2及び
ルミノールを用いるEIA法、■アクリジンエステルを
標識体として用い、H2O2で発光させるCLEIA法
が知られている。
[発明が解決しようとする課題] しかしながら、従来の方法の■の場合、低濃度のリガン
ド測定に対して定量性がなく、■の場合はラベル体自体
の増幅ができない等の欠点を有していた。そのため、高
感度の測定を目指すにはより多くの光量をもった測定法
の開発が望まれていた。
本発明は上述の如き従来方法の欠点を克服し得た。
すなわち、本発明の目的は、エンハンサ−存在下1.2
−ジオキセタンの化学発光分解に基づく検定法を提供す
ることである。
本発明の目的並びにそれらの利点は、以後の説明および
特許請求の範囲を参照することにより十分に理解される
であろう。
[課題を解決するための手段] 前記の目的は、本発明の方法、すなわち、エンハンサ−
の存在下に光を発生させる方法であって:(a)  次
式: (式中RはC1−C4のアルキルであり、Mはアルカリ
金属またはアンモニウムである)で表され、ホスファタ
ーゼと反応して光学的に検出可能なエネルギーを放出し
得るジオキセタン化合物を用意し; (b)その安定な1.2−ジオキセタンをホスファター
ゼにより分解する; ことから成る方法によって発生した光を測定することに
よって達成される。
ここで酵素は酸性あるいはアルカリ性ホスファターゼで
あご。
エンハンサ−は蛋白質、螢光剤またはビニルベンジル四
級アンモニウム塩ポリマーあるいはそれらの混合物であ
る。エンハンサ−の例としては、蛋白質がウシ血清アル
ブミン、螢光剤がフルオレセイン、ビニルベンジル四級
アンモニウム塩ポリマーがポリ〔ビニルベンジル(ベン
ジルジメチルアンモニウムクロライド)〕またはポリ 
〔ビニルベンジル(ベンジルトリメチルアンモニウムク
ロライド)〕の場合がある。
本発明の方法に使用する1、2−ジオキセタンは以下の
ように製造される: OR 式中、R1はRについて先に定義した置換基であり得:
W−はハロゲンイオン(例えば塩素イオン)のような酸
アニオンであり;そしてXおよび“R化剤”は以下で定
義する通りである。
上記1.2−ジオキセタン化合物を使用した本発明の方
法は、試料中の特定の物質の存在または濃度を求めるた
めに視覚的検定方法として利用することができる。上記
の1.2−ジオキセタン類はこれらの検定法のいずれに
も使用しうる。こうした検定法の例には、抗体または抗
原(例、αまたはβ−hCG、TSH,LH等のホルモ
ン、AFP。
CEAのような癌関連抗原)を検出する免疫検定法(酵
素免疫測定法);酵素検定法(例、アルカリホスファタ
ーゼ);カリウムまたはナトリウムイオンなどを検出す
る化学検定法;およびウィルス(例、H8V1.HTL
VIIIもしくはサイトメガロウィルス)または細菌(
例、大腸菌)などを検出するヌクレオチドプローブ法が
含まれる。
検出される物質が抗体、抗原または核酸である場合には
、ジオキセタンの (以下2基と略す) を切断可能な酵素、すなわち酸性又はアルカリ性ホスフ
ァターゼが、検出される物質に特異的な親和性を有する
物質(すなわち検出される物質に特異的に結合する物質
)(例、それぞれ抗原、抗体、または核酸プローブ)に
結合することが好ましい。
酵素を特異的親和性物質に結合させるために常法(例、
カルボジイミドカップリング)が使用される;結合はア
ミド結合を介することが好ましい。
−船内に検定法は下記のように実施することができる。
検出される物質を含む試料と、検出される物質(例えば
抗原)に特異的親和性を有する物質(例えば抗体)に結
合した酵素を含む緩衝液に接触させ更に特異的親和性を
有するもう一つの物質(例えば抗体)を結合した固相(
例えば抗体結合のビーズ)に接触させる。一定時間イン
キュベーションした後過剰の特異的親和性を有する物質
に結合した酵素を洗い流し、その酵素部分によって切断
されうる2基を有する1、2−ジオキセタン類(基質)
を添加する。酵素は2基を切断してジオキセタンを2つ
のケトン(またはX基が水素の場合はアルデヒドとケト
ン)に分解する:ケうして励起されて発光する。この発
光はキュベツトまたはカメラルミノメータ−などを用い
て、試料中に検出される物質が存在することの指標とし
て検出される。物質の濃度を求めるために発光強度を測
定することができる。
検出される物質が酵素である場合には、特異的親和性物
質(例えば抗体)は不必要である。その代わりに検出さ
れる酵素によって切断されうるZ基を有する1、2−ジ
オキセタン類(その酵素の基質)を使用する。そこで、
酵素の検出法は、酵素−含有試料への1,2−ジオキセ
タン類の添加、および酵素の存在と濃度の指標として得
られる発光の検出を含むものである。
[実 施 例] 以下に本発明の詳細な説明するために実施例が記載され
るが、本発明は何らそれらに限定されず、その要旨を逸
脱しない範囲での修飾および変法を含むものと思われる
参考例 1 (A)3−メトキシフェニルアダマント−2−イルケト
ン マグネシウム削り屑(1,84g、 0.067モル)
をアルゴン雰囲気下で火炎乾燥フラスコに入れた。
ヨウ素の小さい結晶および乾燥テトラヒドロフラン(T
HF)(水素化アルミニウムリチウム上で新たに蒸留し
たもの)7m1を加えた。一定量(7ml、 0.05
5モル)の3−ブロモアニソールを注射器から穏やかに
撹拌した金属懸濁液に加えた。
50℃で短時間加熱後発熱反応が始まった。フラスコを
室温の水浴に入れ、その間THF (33ml)を滴下
ロートから細流として添加した。発熱反応がおさまった
後、この混合物を45分間還流した。その還流しつつあ
るグリニヤール試薬へ乾燥THF50ml中の2−シア
ノアダマンタン<8.7g、 0.054モル; “O
rganic 5ynthesis”、 57.8 (
Wiley。
1977)またはvan Leusen、 A、 M、
ら、 J、 Org。
Chem、、  42.3114 (1977)を参照
されたい)の溶液を1.5時間にわたって滴下した。こ
の反応混合物を還流温度で一晩加熱した後、黄色の懸濁
液を得た。フラスコとその内容物を水浴中で冷却してい
る間に、エーテル(50ml)を加えた。濃塩酸(8m
l、 0.096モルHCfりを激しく撹拌しながら2
0分間にわたり滴下した。沈殿物を清適により分離し、
エーテルで洗い、乾燥してケテンイミン塩29.を若干
の残留マグネシウムを含む淡黄色の非吸湿性粉末として
得た。この塩をエタノール90m1と濃塩酸90m1と
の混合物中に懸濁し、3時間還流した。その間に混合物
はかなり薄くなった。水浴で冷却後、得られた固形物を
砕き、ン濾過により分離し、中性になるまで洗浄し、乾
燥して薄い灰色のケトン13.65g (2−シアノア
ダマンタンに基づいて収率93%)を得た(融点111
〜114℃)。
薄層クロマトグラフィー(TLC)はこの生成物がその
後の操作によって十分な純度であることを示した(R,
0,45; K5F−CH2Ca22 :ヘキサン50
 : 50)。ヘキサンから再結晶してプリズム晶とし
て表題化合物を得た(融点113〜cm’ (C= O
) 、 1590cm−’、 1575cm−1により
生成物の構造が次式の通りであることを確認した。
上記(A)に従って製造した一定量(11,3g。
0.042モル)の3−メトキシフェニルアダマント−
2−イルケトンをモレキュラーシーブ乾燥(3人)ジメ
チルスルホキシド(D M S O) 90m1に懸濁
した。懸濁固体を溶解するために加熱した。
撹拌しながら室温へ冷却すると、微細な懸濁液が得られ
た。カリウムt−ブトキシド(8,5g。
0.070モル)をアルゴン雰囲気下に加えた。5分後
、はとんど均質な橙色の溶液が得られ、これを50℃の
水浴に入れた。硫酸ジメチル(4ml。
0.042モル)を注射器から10分間にわたって滴下
した。さらに15分撹拌した後、追加の硫酸ジメチル(
34ml、 0.034モル)を同じやり方で加えた後
、無色の溶液を室温で一晩撹拌した。水浴で冷却後、K
  COs 0.5gおよび氷水125m1を加え、こ
の混合物を50m1ずつの酢酸エチルで3回抽出した。
合わせた有機画分を水で3回、飽和NaCf!水溶液5
0m1で1回洗い、K2CO3上で乾燥した。溶媒を真
空除去して油状物を得た。その油状物をヘキサンに溶か
し、得られた溶液をセライトを通してン戸遇し、真空濃
縮して粘稠性のある淡黄色の油状物11.5g (収率
96%)を得た。TLCは微全のケトン出発物質を含む
エノールエーテル(Rfo、68;E、 Merck 
 A(120s  CH2Ca12 :ヘキサン50 
: 50)へのきれいな転化を示してい1590cm 
 1580cm’、 1570cmへ1095cm−1
10801 cm’ ; ’HNMR(CD CI2 g ) :δ
1.5−2(LII。
12)1)、  δ2.55(s、LH)、  δ3.
2(s、IH) 、  δ3.25(s。
3H)、δ3.75(s、3H)、およびδ6.7−7
.3(m、4)1)。
これらのデータにより、この生成物の構造が次式の通り
であることを確認した。
モレキュラーシーブ乾燥(3人)ジメチルホルムアミド
(DMF)70ml中の上記(B)に従って製造したメ
トキシ(3−メトキシフェニル)メチレンアダマンタン
(14g、 0.049モル)の溶液を、アルゴン雰囲
気下で同じ溶媒中のナトリウムチオエトキシド(7,4
g 、 0.88モル)の溶液に加えた。
この混合物を3時間還流した。撹拌しながら水浴で冷却
後、この反応を水200m1中のNH4C962gで停
止させた。酢酸エチル(120ml)および少是の氷水
を加えた。水層を分離し、酢酸エチル75m!で抽出し
た。有機抽出物を100m1ずつの水で4回、次に飽和
N a C1l (100ml)で洗い、すばやくNa
2SO4上で乾燥させた。この溶液をン濾過し、濃縮し
て油状物を得、それをヘキサン50m1で摩砕した。回
転蒸発器で溶媒を除去すると固体が残り、それを冷ヘキ
サンで細かくすりつぶし、?濾過し、ヘキサンで洗った
。粗製の灰白色フェノール系生成物(lag)は5%M
 e OHCHs CNから再結晶して無色プリズム状
結晶10gを得た(融点131〜133℃)。I R(
CH2CN 2’) : 35801−1 cm  、 3320cm  、 2910cm−1,
1590cm−’、 1580cm−’1440cm’
により生成物の構造が次式の通りであることを確認した
フェート 上記(C)に従って製造したメトキシ(3−ヒドロキシ
フェニル)メチレンアダマンクン(L、1g。
0.004モル)をアルゴン雰囲気下でモレキュラーシ
ーブ乾燥(3人)ベンゼン15m1に溶解した。トリエ
チルアミン(0,57m1.0.004モル)を注射器
から加えた。この撹拌溶液を水浴で0℃に冷却し、2−
クロロ−2−オキソ−1,3−ジオキサホスホラン(0
,37m1.0.004モル)を滴下した。水浴中で1
0分後、粘稠な混合物を室温へ徐々に温め、3.5時間
撹拌した。ベンゼンを真空除去し、アルゴン下でエーテ
ル60m1を加えた。この懸濁液を不活性雰囲気下で一
過し、得られた固形物を20m1ずつのエーテルで3回
洗った。炉液を真空除去してリン酸トリエステル1.6
gを粘稠な無色の油状物1−1 1600cm  、 1575cm  、 1300c
rn−’ (P=0) oフェノール性OHの伸縮また
はC= 0 (1670cm’) ノ吸収はIRスペク
トルに存在しなかった。TLCで出発物質のないことを
確認した。これらのデータは3− (アダマンチリデン
メトキシメチル)フェニルエチレンホスフェートの下記
構造と一致した。
砕してガムを得、そのガムをCH20g2に取り、真空
除去して淡黄色の非晶質発泡体1.5gを得た。
1 1595cm 、 1570cm−1,1475cm−
’、 1275cm−’ (P=0) 、 1235c
rn−1,1100cm−’。これらのデータはナトリ
ウム3− (アダマンチリデンメトキシメチル)フェニ
ル−2′−シアノエチルホスフェートの予測された下記
構造と一致した。
上記の油状物はDMF7mlに溶解し、DMF中のシア
ン化ナトリウム(0,21g 、 0.004モル)を
加え、この混合物を室温で24時間撹拌した。得られた
質色の溶液を50℃で真空除去し、2mlずつのキシレ
ンで数回追い出し、残留物をエーテルで摩この塩(1,
5g、 0.0035モル)は水5mlに溶解した。次
いで、濃水酸化アンモニウム(5ml )を滴下した。
この溶液を室温で一晩撹拌した。
得られた白色スラリーを水浴中で冷却し、アセトニトリ
ル30m1で処理した。一過し、15m1ずつの冷アセ
トニトリルで2回洗浄して、短時間の減圧乾燥後に吸湿
性の白色固体(115°Cで焼結し、130〜133°
Cで融解する)0゜95gを得た。
HPLC(逆相C18−0,1%酢酸アンモニウム/C
H3CN勾配)は1つの主要なピークを示した。
IR(ヌジョール)  : 1595cm−’、  1
575cm−1,12458m−’ 12000m六1
095cm−’、 108108O’、 890cm−
IUV(20%Me(>H−ジオキサン)λmax 2
80/nm ;ε= to、ooooこれらのデータに
より生成物の構造が次式の通りであることを確認した。
大きい培養試験管中で、上記(D)に従って製造したエ
ノールエーテルホスフェート塩0.085g(0,00
017モル)をCHCρs 25m1に溶解した。シリ
カゲル上のメチレンブルー(シリカゲル1g当たり染料
0.0026g) 0.2LOgを増感剤として加えた
。試験管は水冷した浸漬ウェルの内部に250ワツトの
高圧ナトリウムランプを含む銀めっきしたデユワ−フラ
スコに入れた。−枚の5ミルカプトン(Kapton;
 DuPont社)をUVフィルターとしてウェルの内
部に置いた。この装置に氷水をポンプで送り、試料の温
度を150℃以下に保った。乾燥酸素の連続流を毛細管
を通して反応容器に送った。気体流は固相増感剤の均一
懸濁液を維持するように調節した。25分の照射時間後
、出発物質のU V (280nm)吸収が消失した。
淡黄色溶液をン濾過し、蒸発させ、水10m1で再調製
した。この水性試料は0.45ミクロンのナイロンフィ
ルターを通して濾過し、逆相C1g分離用HPLCカラ
ムでクロマトグラフにかけ、水/アセトニトリル勾配で
溶出した。277nmで弱いUV吸収を示す各画分を合
わせ、凍結乾燥してジオキセタンを白色の綿状吸湿性固
体として得た。この固体は融点を示さずに145’〜1
50℃で分解してアダマンタンを生成して昇華し、部分
的に分解して残留した固体は270℃以下では融解しな
い。’HNMR(I20゜ppm) : 0.89−1
.85(m、12H) ; 2.10(s、LH) ;
 3.15(s。
4H)。IR(ヌジョールマル、 cm’)  : 3
120゜1970−1790 (弱い2幅広−NH4)
、1640(幅広)。
1600 (弱い) 、 1580.1284.127
3.1122.980゜895゜この生成物の構造は上
記IRおよびNMRスペクトルにより次式の通りである
と確認した。
参考例 2 メトキシ(3−ホスホリルオキシフェニル)メチレンア
ダマンタンナトリウムアンモニウム塩(3,3g)を1
滴のピリジンを含有する15m1の水に溶解させた。こ
の溶液(該化合物をピリジニウム塩の形で含む)をアン
バーライトlR120(プラス)イオン交換樹脂(アル
ドリッチケミカル社製)の3 cm X 25cm0カ
ラムにゆっくり通した。蒸留水でこのカラムを溶出する
と、280nmに吸収を示すフラクションが得られ、こ
れらをいっしょにして凍結乾燥した。得られたモノピリ
ジニウム塩(1g、2.3ミリモル)の1部をLOOt
nlのCHCg3(A I20 gで乾燥)に溶解した
。得られた溶液を大きなシリンダー状の試験管に入れ、
5,10.L5゜20−テトラフェニル−2111,2
311−ポルフィン(2■、1ml  CHCIa中)
で処理した。得られた均一な緑色の溶液を0℃に冷却し
、スパージャ−管を通して酸素ガスで前辺って飽和した
。この混合物を銀デユワーフラスコ中で一定の02流下
に照射した。このフラスコはデュポンのカプトン(Ka
pton)ポリイミドフィルムの単一シート(5ミル)
で露光された250ワツトナトリウム蒸気ランプの周り
を囲む冷却された浸漬壁をも含んでいる。
デユワ−フラスコ中の温度は、12分間の照射の間0″
〜5℃に維持された。溶媒を真空で除去し、続いて50
0 mgのNa  HCO3を含有する100 mlの
蒸留水を添加した。得られた淡いピンク色の溶液を冷却
し、0.45 ミクロンのテフロン膜を通して濾過した
。得られたジオキセタンの水溶液を、ポリスチレンカラ
ム中CH3−CN−0,5%N a HCOs勾配を使
用した調製用逆相HPLCに付した。続いて2回目は、
CH3CN−H20勾配を使用してカラムに通した。得
られた溶液(無機塩を含まない)を凍結乾燥して800
mgの粒状のかすかに黄色がかった白色固体を得た。こ
の固体は融点を示さずに1456〜150℃で分解して
アダマンタノンを生成して昇華し、部分的に分解して残
留した固体は270℃以下では融解しない。
’HNMR(D20):δ0.85−δ1.75(m、
12B);δ2.15(s、LH) ;δ2.75(s
、LH) ;δ3.10(S、3)1) ;δ7.10
−δ7.35(a+、4H)。IR(ヌジョールマ1 ル)  :lBoocm  (弱い) 、1580cm
−’、 1285cm−1’ 1275cm  、11
20cm−1(幅広) 、980cm−’、895cm
−’01 実施例 1 検定 アルカリ性ホスファターゼ検定は次の方法で実施した。
成分 緩衝液: 0.05M炭酸ナトリウム、1mMMgCρ
2(pH9,5) 基 質: 0.4mM濃度の3−(2’−スピロアダマ
ンクン)−4−メトキシ−4−(3”−ホスホリルオキ
シ)フェニル−1,2−ジオキセタンジナトリウム塩(
AMPPD) アルカリ性ホスファターゼ:緩衝液中1.188μg/
mlの原液 条件: 1、緩衝液のみ(対照) 2、緩衝液+ウシ血清アルブミン(BSA)3、緩衝液
子BSA−フルオレセイン(BSA対フルオレセインの
比1:3) 4、緩衝液子ポリ 〔ビニルベンジル(ベンジルジメチ
ル−アンモニウムクロライド))(BDMQ)5、緩衝
液+BDMQ+フルオレセイン (BDMQl mlと
混合したフルオレセインジナトリウム塩0.01■) アルカリ性ホスファターゼ原液の段階的希釈は試験管中
で次の最終酵素濃度となるように行った:ここで条件2
〜5のエンハンサ−成分(緩衝液以外の成分)は系全体
の0.1重量%存在する。
ポリ 〔ビニルベンジル(ベンジルトリメチル−アンモ
ニウムクロライド)〕も上記条件4のエンハンサ−成分
と同等の作用を有する。
11 4.17xlOM    1.87X10−15M8.
34xlO−12M   8.34X10−16M1.
67xlO−12M   4.17xlO−16M3.
34X10−13M    2.09XlO”’ M6
.88xlO” M    1.0 Xl0−” Ml
、34xlO” M    5.OxlO−’ M3.
34xlO−15M   2.5 Xl0−’ M手順
: いろいろな条件において、上記各種濃度のアルカリ性ホ
スファターゼにり、4mM  AMPPDを加えた2通
りの試験管を30℃でインキュベートした。
条件1.4および5は20分インキュベートし、条件2
および3は90分インキュベートした。
インキュベーション後、ターナ−20Eルミノメータ−
で30秒間の発光積分歯を測定した。アルカリ性ホスフ
ァターゼの検出限界に対するBSA。
BDMQおよびフルオレセインの効果を第1図および表
1に示す。第1図中−口−は上記条件1、−一一■−−
−は条件2、−−−0−−一は条件3、−−−・−−−
は条件4、−一一Δ−−−は条件5を各々示す。
表 ■ 添 加 バックグラウンドの 2倍のカウント量を アルカリ性ホスファ示すアルカリ
性ホス ターゼの最低検出濃度0.1%BSA 0.1%BSA: フルオレセイン 9.5XlO” M 1.3刈0−t5 M 8.34X IQ” M(1,06) 4.17X10” M(1,04) 0.1%BDMQ 0.1%BDMQ: フルオレセイン 4.0刈0−15 M 3.4XlO” M 1、oOX10″″16M(1,07)2.09XlO
” M(1,06) 1、かっこ内の数字は表示濃度でのバックグラウンドレ
ベルの倍数である。
【図面の簡単な説明】
第1図はウシ血清アルブミン、BDMQおよび/または
螢光物質の存在下にアルカリ性ホスファターゼ検定を行
なった結果を示す図である。

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)エンハンサーの存在下に光を発生させる方法であ
    って: (a)次式: ▲数式、化学式、表等があります▼ (式中RはC_1−C_4のアルキルであり、Mはアル
    カリ金属またはアンモニウムである)で表され、ホスフ
    ァターゼと反応して光学的に検出可能なエネルギーを放
    出し得るジオキセタン化合物を用意し; (b)その安定な1,2−ジオキセタンをホスファター
    ゼにより分解する; ことから成る方法。 2、Rはメチルである請求項1の方法。 3、酵素がアルカリ性ホスファターゼである請求項1の
    方法。 4、エンハンサーが蛋白質、螢光剤またはビニルベンジ
    ル四級アンモニウム塩ポリマーあるいはそれらの混合物
    である請求項1の方法。 5、蛋白質がウシ血清アルブミン、螢光剤がフルオレセ
    イン、ビニルベンジル四級アンモニウム塩ポリマーがポ
    リ〔ビニルベンジル(ベンジルジメチルアンモニウムク
    ロライド)〕またはポリ〔ビニルベンジル(ベンジルト
    リメチルアンモニウムクロライド)〕である請求項4の
    方法。
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