JPH02191601A - 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンを含有する組織癒着防止剤 - Google Patents
合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンを含有する組織癒着防止剤Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[発明の目的]
(産業上の利用分野)
本発明は、コンドロイチン硫酸と血清アルブミンとを化
学的に結合させてなる合成コンドロイチン硫酸プロテオ
グリカン及びその製造法に関するものである。
学的に結合させてなる合成コンドロイチン硫酸プロテオ
グリカン及びその製造法に関するものである。
(従来の技術及び発明が解決しようとする課題)コンド
ロイチン硫酸は、軟骨、気管5皮膚その他の結合支持組
織から分離され、医薬、医用材料の原料として利用され
ている。
ロイチン硫酸は、軟骨、気管5皮膚その他の結合支持組
織から分離され、医薬、医用材料の原料として利用され
ている。
しかしながら、生体に広(存在することから予想される
生理作用に比1254、コンドロイチン硫酸について臨
床的に認められている薬理効果は少ない。
生理作用に比1254、コンドロイチン硫酸について臨
床的に認められている薬理効果は少ない。
本発明者らは、コンドロイチン硫酸の薬理作用について
鋭意研究を重ねた結果、コンドロイチン硫酸に血清アル
ブミンを結合せしめることにより、従来コンドロイチン
硫酸については認められていない薬理作用が認められる
ことを見出し本発明を完成するに至った。
鋭意研究を重ねた結果、コンドロイチン硫酸に血清アル
ブミンを結合せしめることにより、従来コンドロイチン
硫酸については認められていない薬理作用が認められる
ことを見出し本発明を完成するに至った。
[発明の構成1
(課題を解決するための手段及び作用)本発明は、コン
ドロイチン硫酸と血清アルブミンとを化学的に結合させ
てなることを特徴とする合成コンドロイチン硫酸プロテ
オグリカン及びその製造法に関するものである。
ドロイチン硫酸と血清アルブミンとを化学的に結合させ
てなることを特徴とする合成コンドロイチン硫酸プロテ
オグリカン及びその製造法に関するものである。
本発明に用いるコンドロイチン硫酸としては、特に制限
はなく、例えばコンドロイチン−4−硫酸(コンドロイ
チン硫酸A)、コンドロイチン−〇−硫酸(コンドロイ
チン硫酸C)、コンドロイチン−4,6−二硫酸、デル
マタン硫酸(コンドロイチン硫酸B)、コンドロイチン
硫HD、コンドロイチン硫酸E、コンドロイチン硫酸K
、特開昭63−10601号公報記載のコンドロイチン
硫酸(ナマコ由来)等が挙げられる。
はなく、例えばコンドロイチン−4−硫酸(コンドロイ
チン硫酸A)、コンドロイチン−〇−硫酸(コンドロイ
チン硫酸C)、コンドロイチン−4,6−二硫酸、デル
マタン硫酸(コンドロイチン硫酸B)、コンドロイチン
硫HD、コンドロイチン硫酸E、コンドロイチン硫酸K
、特開昭63−10601号公報記載のコンドロイチン
硫酸(ナマコ由来)等が挙げられる。
血清アルブミンとしては、例えばヒト血清アルブミン、
ウシ血清アルブミン等が挙げられる。
ウシ血清アルブミン等が挙げられる。
本発明の合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンは、
前述のコンドロイチン硫酸と血清アルブミンを化学的に
結合させてなるものであり、かかる結合の様式としては
、カルボジイミド縮合法、臭化シアン活性化法(^xe
n、 R,& Ernback、S、;Eur、 J、
Bioche+w、、 18.351.1971)又
はプロトン化シッフ塩基に続くイソシアン化合物との反
応によるリアレンジメント(Ugi)反応(Axen、
R,etal、; Acta Chem、 5can
d、、 25.1129.1971)等により得られる
共有結合等が挙げられる。
前述のコンドロイチン硫酸と血清アルブミンを化学的に
結合させてなるものであり、かかる結合の様式としては
、カルボジイミド縮合法、臭化シアン活性化法(^xe
n、 R,& Ernback、S、;Eur、 J、
Bioche+w、、 18.351.1971)又
はプロトン化シッフ塩基に続くイソシアン化合物との反
応によるリアレンジメント(Ugi)反応(Axen、
R,etal、; Acta Chem、 5can
d、、 25.1129.1971)等により得られる
共有結合等が挙げられる。
かかる結合手段としては、水系で反応することを求めら
れる物質の縮合に適用する水溶性カルボジイミドを用い
る方法、多糖類の化学的修飾、活性化を経て酵素蛋白、
抗体蛋白、ペプチド等を高分子担体に結合せしめる固定
化酵素、アフィニティークロマト担体調製の技術を適用
することができる。
れる物質の縮合に適用する水溶性カルボジイミドを用い
る方法、多糖類の化学的修飾、活性化を経て酵素蛋白、
抗体蛋白、ペプチド等を高分子担体に結合せしめる固定
化酵素、アフィニティークロマト担体調製の技術を適用
することができる。
カルボジイミド類としては、例えばジエチルカルボジイ
ミド、ジイソプロピルカルボジイミド、メチルプロピル
カルボジイミド、ジシクロへキシルカルボジイミド、ヘ
キサメチレンカルボジイミド、ヘプタメチレンカルボジ
イミド、l−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピ
ル)カルボジイミド、l−シクロへキシル−3−(2−
モルホリノエチル)カルボジイミドメソ−p−トルエン
スルホネート、1−t−ブチル−3−(3−ジメチルア
ミノプロピル)カルボジイミド、ジフェニルカルボジイ
ミド、4゜4′−ジニトロジフェニルカルボジイミド、
ジーp−)リルカルボジイミド、ビス(トリメチルシリ
ル)カルボジイミド等が挙げられる。
ミド、ジイソプロピルカルボジイミド、メチルプロピル
カルボジイミド、ジシクロへキシルカルボジイミド、ヘ
キサメチレンカルボジイミド、ヘプタメチレンカルボジ
イミド、l−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピ
ル)カルボジイミド、l−シクロへキシル−3−(2−
モルホリノエチル)カルボジイミドメソ−p−トルエン
スルホネート、1−t−ブチル−3−(3−ジメチルア
ミノプロピル)カルボジイミド、ジフェニルカルボジイ
ミド、4゜4′−ジニトロジフェニルカルボジイミド、
ジーp−)リルカルボジイミド、ビス(トリメチルシリ
ル)カルボジイミド等が挙げられる。
本発明の合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンは、
医薬等に適用するには、水溶性であること好ましい。
医薬等に適用するには、水溶性であること好ましい。
かかる水溶性の合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカ
ンを得るには、該合成プロテオグリカン中のフンドロイ
チン硫酸含量は1.5〜98171%の範囲であること
が好ましい。
ンを得るには、該合成プロテオグリカン中のフンドロイ
チン硫酸含量は1.5〜98171%の範囲であること
が好ましい。
結合に要する縮合剤は、例えば水溶性カルボジイミドに
よる縮合法では、コンドロイチン硫酸とその0.02〜
lO倍量の血清アルブミンを、水性溶媒に溶解せしめ、
pH5付近に調整し、約3〜6℃の冷温下、コンドロイ
チン硫酸に対し0.05〜5倍量の水溶性カルボジイミ
ドを添加して反応を行うことにより、本発明の合成コン
ドロイチン硫酸プロテオグリカンが得られる。また、臭
化シアン活性化法では、使用するコンドロイチン硫酸重
量の坏以下が好ましい。
よる縮合法では、コンドロイチン硫酸とその0.02〜
lO倍量の血清アルブミンを、水性溶媒に溶解せしめ、
pH5付近に調整し、約3〜6℃の冷温下、コンドロイ
チン硫酸に対し0.05〜5倍量の水溶性カルボジイミ
ドを添加して反応を行うことにより、本発明の合成コン
ドロイチン硫酸プロテオグリカンが得られる。また、臭
化シアン活性化法では、使用するコンドロイチン硫酸重
量の坏以下が好ましい。
合成手法の好ましい態様としては、例えば、臭化シアン
活性化法では、コンドロイチン硫酸を水性溶媒に溶解し
、臭化シアンを前記割合で5〜20%用い、常法により
活性化し、得られた活性化コンドロイチン硫酸を低温下
アセトニトリル、テトラヒドロフラン等の疎水性溶媒を
用い、−旦沈殿分離し、該溶媒で洗浄後、冷水に再溶解
し、コンドロイチン硫酸量の1〜20倍の血清アルブミ
ン中性緩衝液溶液を用いて結合反応を行うことにより合
成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンが得られる。
活性化法では、コンドロイチン硫酸を水性溶媒に溶解し
、臭化シアンを前記割合で5〜20%用い、常法により
活性化し、得られた活性化コンドロイチン硫酸を低温下
アセトニトリル、テトラヒドロフラン等の疎水性溶媒を
用い、−旦沈殿分離し、該溶媒で洗浄後、冷水に再溶解
し、コンドロイチン硫酸量の1〜20倍の血清アルブミ
ン中性緩衝液溶液を用いて結合反応を行うことにより合
成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンが得られる。
以上の結合反応によって得られる合成コンドロイチン硫
酸プロテオグリカンは、常法に従って、透析、アルコー
ル沈殿、ゲルろ過、イオン交換クロマトグラフィー等に
より精製することができる。
酸プロテオグリカンは、常法に従って、透析、アルコー
ル沈殿、ゲルろ過、イオン交換クロマトグラフィー等に
より精製することができる。
本発明の合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンは、
細胞の接着・伸展を促進する作用を有する糖蛋白質フィ
ブロネクチンに対して拮抗性を示し、組織痣着防止剤と
して有用である。コンドロイチン硫酸、血清アルブミン
それ自体には以上のような効果は認められない。
細胞の接着・伸展を促進する作用を有する糖蛋白質フィ
ブロネクチンに対して拮抗性を示し、組織痣着防止剤と
して有用である。コンドロイチン硫酸、血清アルブミン
それ自体には以上のような効果は認められない。
(発明の実施例)
以下、実施例、試験例により本発明を更に詳細に説明す
るが、これらは本発明の範囲を何ら制限するものではな
い。
るが、これらは本発明の範囲を何ら制限するものではな
い。
実施例1 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの
製造(水溶性カルボジイミド縮 合法) クジラ軟骨由来のコンドロイチン硫酸(タイプΔ)、サ
メ軟骨由来のコンドロイチン硫酸(タイプC)、デルマ
タン硫酸(ブタ皮由来;生化学工業■製)を水溶性カル
ボジイミドによる縮合反応によって、ウシ血清アルブミ
ンに結合させた。
製造(水溶性カルボジイミド縮 合法) クジラ軟骨由来のコンドロイチン硫酸(タイプΔ)、サ
メ軟骨由来のコンドロイチン硫酸(タイプC)、デルマ
タン硫酸(ブタ皮由来;生化学工業■製)を水溶性カル
ボジイミドによる縮合反応によって、ウシ血清アルブミ
ンに結合させた。
前述の各グリコサミノグリカン5mg及びウシ血清アル
ブミン(以下rBSAJという)Zo。
ブミン(以下rBSAJという)Zo。
ugを水0.5mlに溶解し、0.1M塩酸でpH5,
0に調整した。この溶液にl−エチル−3−(3−ジメ
チルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩25mgの
水0.5ml溶液(pH5,0)を加え、混合物を4℃
で12時間撹拌した。混合物を20.oooxgで10
分間遠心し、上澄み液を集め、蒸留水に対して完全に透
析した。透析残渣中のグリコサミノグリカン−結合血清
アルブミンを凍結乾燥することによって簗めた。
0に調整した。この溶液にl−エチル−3−(3−ジメ
チルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩25mgの
水0.5ml溶液(pH5,0)を加え、混合物を4℃
で12時間撹拌した。混合物を20.oooxgで10
分間遠心し、上澄み液を集め、蒸留水に対して完全に透
析した。透析残渣中のグリコサミノグリカン−結合血清
アルブミンを凍結乾燥することによって簗めた。
合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの物性を以下
に示す。
に示す。
コンドロイチン硫酸(以下rC3Jという)(タイプA
)由来のプロティグリカ21合成C3−PGIIC5/
BS八重量比 1.4.3(C393,5%、 BSA
6.5%)S含量 6.42% [α]o−29(C・l、 H2O1 C5(タイプC)由来のプロテオグリカン[合成C3−
PG2] C5/BSAJt月1比 14.7(CS 95.
4%、 ロSA 6.5%)S含量 6.59% [α] o −1,4(CJ、 B20)デルマタン
硫酸(以下rDSJという)由来のプロテオグリカン[
合成C3−PG3] DS/BSA重量比 16.2(DS 97.2%、
BSA 6.0%)S含量 6.54% [α] o 42.5 (C;l、 HzO)
実施例2 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの
製造(水溶性カルボジイミド縮 合法) ウシ気管軟骨由来のC8(分子量15000)100m
g及びB5A44mg (0,67umole)又は4
.4mg (0,067μ5ole)をそれぞれ水20
m1に溶解し、O,lN塩酸でpH5,0に調整後、水
冷下l−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)
カルボジイミド塩酸塩各7 、7 m g (40tt
mole)を加えた。
)由来のプロティグリカ21合成C3−PGIIC5/
BS八重量比 1.4.3(C393,5%、 BSA
6.5%)S含量 6.42% [α]o−29(C・l、 H2O1 C5(タイプC)由来のプロテオグリカン[合成C3−
PG2] C5/BSAJt月1比 14.7(CS 95.
4%、 ロSA 6.5%)S含量 6.59% [α] o −1,4(CJ、 B20)デルマタン
硫酸(以下rDSJという)由来のプロテオグリカン[
合成C3−PG3] DS/BSA重量比 16.2(DS 97.2%、
BSA 6.0%)S含量 6.54% [α] o 42.5 (C;l、 HzO)
実施例2 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの
製造(水溶性カルボジイミド縮 合法) ウシ気管軟骨由来のC8(分子量15000)100m
g及びB5A44mg (0,67umole)又は4
.4mg (0,067μ5ole)をそれぞれ水20
m1に溶解し、O,lN塩酸でpH5,0に調整後、水
冷下l−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)
カルボジイミド塩酸塩各7 、7 m g (40tt
mole)を加えた。
この混合物を各々4℃で12時間撹拌した後、20.0
00Xgで20分間遠心し、上澄み液を集め、蒸留水に
対して透析した。透析液を011M食塩を含む0.04
Mトリス塩酸緩衝液(p)I7.4)で平衡化したDE
AE・セルロファイン力ラム(1,5x5.6crn)
にアプライし吸着させた。同緩衝液100m1で洗浄し
て未反応のBSAを除去した後、0.1Mから1.0M
の食塩を含む緩衝液各200rnlの直線濃度勾配によ
り溶出した。求める両分を集め、透析し、エタノールを
加え沈殿させ、沈殿をエタノールで洗浄後、再び水を加
えて凍結乾燥することによりC3−BSA結合物をそれ
ぞれ78.7rng及び69.4mg得た。B5A44
mg使用系の生成物を[合成C3−PG4]とし、B5
A4.4mg使用系の生成物を[合成C3−PO2:l
とした。
00Xgで20分間遠心し、上澄み液を集め、蒸留水に
対して透析した。透析液を011M食塩を含む0.04
Mトリス塩酸緩衝液(p)I7.4)で平衡化したDE
AE・セルロファイン力ラム(1,5x5.6crn)
にアプライし吸着させた。同緩衝液100m1で洗浄し
て未反応のBSAを除去した後、0.1Mから1.0M
の食塩を含む緩衝液各200rnlの直線濃度勾配によ
り溶出した。求める両分を集め、透析し、エタノールを
加え沈殿させ、沈殿をエタノールで洗浄後、再び水を加
えて凍結乾燥することによりC3−BSA結合物をそれ
ぞれ78.7rng及び69.4mg得た。B5A44
mg使用系の生成物を[合成C3−PG4]とし、B5
A4.4mg使用系の生成物を[合成C3−PO2:l
とした。
C3/BSA重量比
BSA使用量44mg 4.2 (C580,9%、
BSA I9.1%)4.4mg 14.0 (C3
93,3%、 BSA 6.7%)S含量 BSA使用m 44+ng 6.38%4゜4II1
g6.77% [αI。
BSA I9.1%)4.4mg 14.0 (C3
93,3%、 BSA 6.7%)S含量 BSA使用m 44+ng 6.38%4゜4II1
g6.77% [αI。
BS^使用量44Il1g −20(C−1,B20
)4.4mg −14(C=1. HxO)実施
例3 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの製造
(水溶性カルボジイミド縮 合法) 実施例1に準じて、サメ軟骨由来のC3(分子量300
00 ;タイプC)、クジラ軟骨由来のC5(分子量3
5000 ;タイプA)から、下記の比率で合成コンド
ロイチン硫酸プロテオグリカンを調製した。
)4.4mg −14(C=1. HxO)実施
例3 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの製造
(水溶性カルボジイミド縮 合法) 実施例1に準じて、サメ軟骨由来のC3(分子量300
00 ;タイプC)、クジラ軟骨由来のC5(分子量3
5000 ;タイプA)から、下記の比率で合成コンド
ロイチン硫酸プロテオグリカンを調製した。
表1
CSタイプC由来の生成物を[合成C3−PG6]とし
、CSタイプA由来の生成物を[合成C5−PG7]と
した。得られた生成物の物性を以下に示す。
、CSタイプA由来の生成物を[合成C5−PG7]と
した。得られた生成物の物性を以下に示す。
[合成CS−PG6]
C3/BSA重量比 10.0(C390,9%、 B
SA9.1%)S含量 6.64% [α] o −15,6(C−1,HtO)[合成C
S−PG71 C3/BS八重量比 8.8(CS 89.8%、 B
SA 10.2%)S含量 6.62% [α] o −16,0(C=1. HtO)実施
例4 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの製造
(臭化シアン活性化法) クジラ軟骨由来のCS1.og及びBSAO,1gをO
,LM炭酸水素ナトリウム水溶液100m1に溶解し、
臭化シアン0.2gを加えて4℃で17時間反応させた
。反応液にエタノールアミン0.1mlを加えて室温で
2時間反応後、0.IN塩酸でpH7,0として、流水
中で2時間透析した。透析内液にエタノールを加えて沈
殿させ、沈殿物を遠心で集めてエタノールで洗浄して乾
燥させた。得られた白色沈殿物[合成(:5−PG8]
の物性を以下に示す。
SA9.1%)S含量 6.64% [α] o −15,6(C−1,HtO)[合成C
S−PG71 C3/BS八重量比 8.8(CS 89.8%、 B
SA 10.2%)S含量 6.62% [α] o −16,0(C=1. HtO)実施
例4 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの製造
(臭化シアン活性化法) クジラ軟骨由来のCS1.og及びBSAO,1gをO
,LM炭酸水素ナトリウム水溶液100m1に溶解し、
臭化シアン0.2gを加えて4℃で17時間反応させた
。反応液にエタノールアミン0.1mlを加えて室温で
2時間反応後、0.IN塩酸でpH7,0として、流水
中で2時間透析した。透析内液にエタノールを加えて沈
殿させ、沈殿物を遠心で集めてエタノールで洗浄して乾
燥させた。得られた白色沈殿物[合成(:5−PG8]
の物性を以下に示す。
C5/BSA重量比 10.3(C392,1%、 B
SA8.9%)S含量 6.8% [α] fi −15,51C=l、 HよO)実施
例5 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの製造
(臭化シアン活性化法) サメ軟骨由来のC51,Ogを5Mリン酸カリウム緩衝
液(pH11,9)に溶解し、4℃に冷却した後、臭化
シアンのアセトニトリル溶液(100mg/ml)2m
lを加えて10分間反応させた。次いで、反応液の5倍
量のアセトニトリルを加えて沈殿物を得た。沈殿物をア
セトニトリルで充分に洗浄し、速やかに0.1M炭酸水
素ナトリウム溶液に溶解した。この水溶液にBSA水溶
液(0,15g/100m1)を加えて4℃で17時間
反応させた。反応液にエタノールアミン0.1mlを加
えて室温で2時間反応し。
SA8.9%)S含量 6.8% [α] fi −15,51C=l、 HよO)実施
例5 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの製造
(臭化シアン活性化法) サメ軟骨由来のC51,Ogを5Mリン酸カリウム緩衝
液(pH11,9)に溶解し、4℃に冷却した後、臭化
シアンのアセトニトリル溶液(100mg/ml)2m
lを加えて10分間反応させた。次いで、反応液の5倍
量のアセトニトリルを加えて沈殿物を得た。沈殿物をア
セトニトリルで充分に洗浄し、速やかに0.1M炭酸水
素ナトリウム溶液に溶解した。この水溶液にBSA水溶
液(0,15g/100m1)を加えて4℃で17時間
反応させた。反応液にエタノールアミン0.1mlを加
えて室温で2時間反応し。
0.1N塩酸でpH7,0として後、エタノールを加え
て沈殿させ、沈殿物を遠心で集めてエタノールで洗浄し
て乾燥させた。得られた白色沈殿物[合成C3−PG9
1の物性を以下に示す。
て沈殿させ、沈殿物を遠心で集めてエタノールで洗浄し
て乾燥させた。得られた白色沈殿物[合成C3−PG9
1の物性を以下に示す。
CS/BS八重量比へ7.0(CS 87.4%、 B
SA 12.6%)S含量 6.6% [’2] e −17(C:1. HtO)実施例6
合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの製造(水
溶性カルボジイミド縮 合法) ブタ皮由来のCS(タイプB)50mg及びヒト血清ア
ルブミン(以下rH3AJという)22mgを水10m
1に溶解し、O,IN塩酸でpH5,0に調整後、水冷
下l−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カ
ルボジイミド塩酸塩7.7mg (40ua+ole)
を加えた。この混合物を4℃で12時間撹拌した後、2
0,000xgで20分間遠心し、上澄み液を集め、蒸
留水に対して透析した。透析液をO,1M食塩を含む0
.04M)−リス塩酸緩衝液(pH7,4)で平衡化し
たDEAE・セルロファイン力ラム(1,5X5.6c
m)にアプライし吸着させた。同緩衝液100m1で洗
浄して未反応のBSAを除去した後、O,1Mから1.
OMの食塩を含む緩衝液各200m1の直線濃度勾配に
より溶出した。求める画分を集め、透析し、凍結乾燥す
ることによりC3(タイプB) −H5A結合物[合成
C5−PGIOI 35 、9 m gを得た。
SA 12.6%)S含量 6.6% [’2] e −17(C:1. HtO)実施例6
合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンの製造(水
溶性カルボジイミド縮 合法) ブタ皮由来のCS(タイプB)50mg及びヒト血清ア
ルブミン(以下rH3AJという)22mgを水10m
1に溶解し、O,IN塩酸でpH5,0に調整後、水冷
下l−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カ
ルボジイミド塩酸塩7.7mg (40ua+ole)
を加えた。この混合物を4℃で12時間撹拌した後、2
0,000xgで20分間遠心し、上澄み液を集め、蒸
留水に対して透析した。透析液をO,1M食塩を含む0
.04M)−リス塩酸緩衝液(pH7,4)で平衡化し
たDEAE・セルロファイン力ラム(1,5X5.6c
m)にアプライし吸着させた。同緩衝液100m1で洗
浄して未反応のBSAを除去した後、O,1Mから1.
OMの食塩を含む緩衝液各200m1の直線濃度勾配に
より溶出した。求める画分を集め、透析し、凍結乾燥す
ることによりC3(タイプB) −H5A結合物[合成
C5−PGIOI 35 、9 m gを得た。
C5/BSA重量比 3.9(C579,6%、 BS
A20,4%)S含量 6.2% [α] D−58(C=l、 H2O)試験例1 フ
ィブロネクチンを予め塗布した培養皿に塗布した合成フ
ンドロイチン硫酸 プロテオグリカンのBHK細胞の接着 に対する効果 96穴培養皿をヒト血漿フィブロネクチン5μg /
m lで塗布した後、実施例1で得た各種合成コンドロ
イチン硫酸プロテオグリカンを第1図に示す各濃度で塗
布した。
A20,4%)S含量 6.2% [α] D−58(C=l、 H2O)試験例1 フ
ィブロネクチンを予め塗布した培養皿に塗布した合成フ
ンドロイチン硫酸 プロテオグリカンのBHK細胞の接着 に対する効果 96穴培養皿をヒト血漿フィブロネクチン5μg /
m lで塗布した後、実施例1で得た各種合成コンドロ
イチン硫酸プロテオグリカンを第1図に示す各濃度で塗
布した。
別に、100mrn径の培養皿に集密状態になるまで培
養したBl’(K細胞(新生ハムスター腎細胞)と0、
frog/rr+1の濃度のトリプシン5mlを加え、
37℃で5分間処理した。次いで、l m g/ m
iの大豆トリプシンインヒビター5mlを加え、トリプ
シンを不活性化した後、遊離した細胞を遠心により集め
た。
養したBl’(K細胞(新生ハムスター腎細胞)と0、
frog/rr+1の濃度のトリプシン5mlを加え、
37℃で5分間処理した。次いで、l m g/ m
iの大豆トリプシンインヒビター5mlを加え、トリプ
シンを不活性化した後、遊離した細胞を遠心により集め
た。
細胞はトリプシンインヒビターを含む溶液で2回洗浄後
、単一細胞懸濁液として、細胞数をカウントした。
、単一細胞懸濁液として、細胞数をカウントした。
得られた単一細胞懸濁液100μl (1×104個細
胞)を、的記フィブロネクチンと合成プロテオグリカン
を塗布した培養皿に加え、37℃で2時間処理した。接
着しなかった細胞を洗除した後、接着した細胞を2%ホ
ルムアルデヒドで固定し1%トルイジンブルーで染色し
、て、その細胞数をカウントした。
胞)を、的記フィブロネクチンと合成プロテオグリカン
を塗布した培養皿に加え、37℃で2時間処理した。接
着しなかった細胞を洗除した後、接着した細胞を2%ホ
ルムアルデヒドで固定し1%トルイジンブルーで染色し
、て、その細胞数をカウントした。
結果を第1図に示す。第1図において、(・)は[合成
C3−PCII )、(0) ii (合成C5−I”
G21の、(Δ)は[合成C3−PG31の、各濃度に
おける細胞接着の変動を示す。値は、2回の測定の平均
を表す。
C3−PCII )、(0) ii (合成C5−I”
G21の、(Δ)は[合成C3−PG31の、各濃度に
おける細胞接着の変動を示す。値は、2回の測定の平均
を表す。
第1図から、本発明の合成コンドロイチン硫酸プロテオ
グリカンは、フィブロネクチンの細胞接着促進作用を阻
害することがオ)かる。
グリカンは、フィブロネクチンの細胞接着促進作用を阻
害することがオ)かる。
なお、l−エチル−3−(3−ジメチルアミ7ノプロビ
ル)カルボジイミドとともにインキュベートしたフンド
ロイチン硫酸Cで培養皿を同様に処理した対照では、細
胞接着は認められなかった。
ル)カルボジイミドとともにインキュベートしたフンド
ロイチン硫酸Cで培養皿を同様に処理した対照では、細
胞接着は認められなかった。
試験例2 各種培養細胞の細胞接着物質に対する合成コ
ンドロイチン硫酸プロテオグリ カンの接着阻害効果 (11BHK21細胞と細胞接着物質に対する効果実施
例2で得た合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンに
ついて、B HK 21細胞(新生ハムスター腎細胞)
とフィブロネクチン、ラミニン、■qコラーゲン及びビ
トロネクチンとの接着に対する阻害効果を検討した。
ンドロイチン硫酸プロテオグリ カンの接着阻害効果 (11BHK21細胞と細胞接着物質に対する効果実施
例2で得た合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンに
ついて、B HK 21細胞(新生ハムスター腎細胞)
とフィブロネクチン、ラミニン、■qコラーゲン及びビ
トロネクチンとの接着に対する阻害効果を検討した。
85μg / m lのヒト血漿フィブロネクチン、マ
ウスrxus腫!細胞由来ラミニン、ラット鍵由来I型
コラーゲン及びウシ血清ビトロネクチンをそれぞれ96
穴培養皿に塗布し、試験例1と同様にして、合成コンド
ロイチン硫酸(タイプA)プロテオグリカンを塗布した
後、BHK2m細胞の単一細胞懸濁液100μlを加え
、細胞接着の変動を見た。対照として合成コンドロイチ
ン硫酸プロテオグリカンを処理しないものを用いた。結
果を表2に示す。
ウスrxus腫!細胞由来ラミニン、ラット鍵由来I型
コラーゲン及びウシ血清ビトロネクチンをそれぞれ96
穴培養皿に塗布し、試験例1と同様にして、合成コンド
ロイチン硫酸(タイプA)プロテオグリカンを塗布した
後、BHK2m細胞の単一細胞懸濁液100μlを加え
、細胞接着の変動を見た。対照として合成コンドロイチ
ン硫酸プロテオグリカンを処理しないものを用いた。結
果を表2に示す。
なお、表中で相対接着細胞数として、全くあるいは殆ど
細胞接着しなかった場合を−、10〜20%の細胞が接
着した場合な+、70〜80%の細胞が接着した場合な
++++、90〜100%の細胞が接着した場合を++
+++と半定量的に表した。
細胞接着しなかった場合を−、10〜20%の細胞が接
着した場合な+、70〜80%の細胞が接着した場合な
++++、90〜100%の細胞が接着した場合を++
+++と半定量的に表した。
表 2
(2)CEF細胞と細胞接着物質に対する効果実施例3
で得た合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンについ
て、CEF細胞にワトリ胚繊維芽細胞)とヒト血漿フィ
ブロネクチン、E i(S腫瘍マウスラミニン、ラット
艇I ?!l′!コラーゲン及びウシ血清ビトロネクチ
ンとの接着に対する阻害効果を検討した。
で得た合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンについ
て、CEF細胞にワトリ胚繊維芽細胞)とヒト血漿フィ
ブロネクチン、E i(S腫瘍マウスラミニン、ラット
艇I ?!l′!コラーゲン及びウシ血清ビトロネクチ
ンとの接着に対する阻害効果を検討した。
処理方法及び測定法は(1)と同様に行った。結果を表
3に示す。
3に示す。
表
表3
果
実施例4.5で得た合成コンドロイチン硫酸プロテオグ
リカンについて、Cl−10−K l細胞(チャイニー
ズハムスター細胞)とヒト血漿フィブロネクチン及びE
H3H3腫瘍マウスラミニン接着に対する阻害効果を検
討した。
リカンについて、Cl−10−K l細胞(チャイニー
ズハムスター細胞)とヒト血漿フィブロネクチン及びE
H3H3腫瘍マウスラミニン接着に対する阻害効果を検
討した。
処理方法及び測定法は(1)と同様に行った。結果を表
4に示す。
4に示す。
果
実施例6で得た合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカ
ンについて、B16FIO細胞(高転移性メラノーマ細
胞)とヒト血漿フィブロネクチン及びEH8腫瘍マウス
ラミニンとの接着に対する阻害効果を検討した。
ンについて、B16FIO細胞(高転移性メラノーマ細
胞)とヒト血漿フィブロネクチン及びEH8腫瘍マウス
ラミニンとの接着に対する阻害効果を検討した。
処理方法及び測定法は(1)と同様に行った。結果を表
5に示す。
5に示す。
表5
[発明の効果]
本発明によれば、フィブロネクチンの細胞接着促進作用
を阻害し1組織!i着防止剤として有用な合成コンドロ
イチン硫酸プロテオグリカンを提供することができる。
を阻害し1組織!i着防止剤として有用な合成コンドロ
イチン硫酸プロテオグリカンを提供することができる。
第1図は、グリコサミノグリカン−結合血清アルブミン
についての各濃度における細胞接着の変動を示す図であ
る。
についての各濃度における細胞接着の変動を示す図であ
る。
Claims (2)
- (1)コンドロイチン硫酸と血清アルブミンとを化学的
に結合させてなることを特徴とする合成コンドロイチン
硫酸プロテオグリカン。 - (2)コンドロイチン硫酸及び血清アルブミンを、カル
ボジイミド縮合法、臭化シアン活性化法又はUgi反応
に従って共有結合せしめることを特徴とする合成コンド
ロイチン硫酸プロテオグリカンの製造法。
Priority Applications (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1009648A JP2953702B2 (ja) | 1989-01-20 | 1989-01-20 | 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンを含有する組織癒着防止剤 |
AU59157/90A AU625386B2 (en) | 1989-01-20 | 1990-07-19 | Synthetic chondroitin sulfate proteoglycan and process for producing the same |
EP90113948A EP0466966A1 (en) | 1989-01-20 | 1990-07-20 | Synthetic chondroitin sulfate proteoglycan and process for producing the same |
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JP1009648A JP2953702B2 (ja) | 1989-01-20 | 1989-01-20 | 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンを含有する組織癒着防止剤 |
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Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02191601A true JPH02191601A (ja) | 1990-07-27 |
JP2953702B2 JP2953702B2 (ja) | 1999-09-27 |
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ID=11726036
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JP1009648A Expired - Fee Related JP2953702B2 (ja) | 1989-01-20 | 1989-01-20 | 合成コンドロイチン硫酸プロテオグリカンを含有する組織癒着防止剤 |
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Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2014141580A (ja) * | 2013-01-24 | 2014-08-07 | Aomori Prefectural Industrial Technology Research Center | プロテオグリカン及び化粧料 |
WO2017154938A1 (ja) * | 2016-03-09 | 2017-09-14 | 株式会社糖鎖工学研究所 | 硫酸基および/またはリン酸基を有する糖の製造方法 |
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JP3714683B2 (ja) * | 1992-07-30 | 2005-11-09 | 生化学工業株式会社 | 抗リウマチ剤 |
JP2002518135A (ja) * | 1998-06-23 | 2002-06-25 | サージカル シーランツ, インコーポレイテッド | 生体接着性の外科用シーラントおよび移植可能デバイスのためのカルボジイミド架橋アルブミン |
WO2000040253A1 (en) * | 1999-01-08 | 2000-07-13 | The Board Of Trustees Of The University Of Arkansas | Synthetic, highly charged molecules and uses thereof |
IT1317358B1 (it) * | 2000-08-31 | 2003-06-16 | Fidia Advanced Biopolymers Srl | Derivati cross-linkati dell'acido ialuronico. |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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US4280954A (en) * | 1975-07-15 | 1981-07-28 | Massachusetts Institute Of Technology | Crosslinked collagen-mucopolysaccharide composite materials |
NL188622C (nl) * | 1981-12-15 | 1992-08-17 | Cordis Europ | Werkwijze ter verbetering van de bloedcompatibiliteit van een materiaaloppervlak door bekleding daarvan met een heparine of heparine-analoga en een eiwit houdende film, alsmede voorwerp, omvattende een oppervlak met verbeterde bloedcompatibiliteit verkregen onder toepassing van een op het oppervlak aangebrachte heparine of heparine-analoga en een eiwit houdende film. |
US4526714A (en) * | 1982-12-13 | 1985-07-02 | Cordis Europa N.V. | Conjugates of anticoagulant and protein |
US4585754A (en) * | 1984-01-09 | 1986-04-29 | Valcor Scientific, Ltd. | Stabilization of proteins and peptides by chemical binding with chondroitin |
US4657820A (en) * | 1986-04-16 | 1987-04-14 | Gregory Halpern | Plastic article containing a top coat comprising an albumin and polysaccharide mixture |
-
1989
- 1989-01-20 JP JP1009648A patent/JP2953702B2/ja not_active Expired - Fee Related
-
1990
- 1990-07-19 AU AU59157/90A patent/AU625386B2/en not_active Expired - Fee Related
- 1990-07-20 EP EP90113948A patent/EP0466966A1/en not_active Withdrawn
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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JP2014141580A (ja) * | 2013-01-24 | 2014-08-07 | Aomori Prefectural Industrial Technology Research Center | プロテオグリカン及び化粧料 |
WO2017154938A1 (ja) * | 2016-03-09 | 2017-09-14 | 株式会社糖鎖工学研究所 | 硫酸基および/またはリン酸基を有する糖の製造方法 |
JPWO2017154938A1 (ja) * | 2016-03-09 | 2019-01-10 | 株式会社糖鎖工学研究所 | 硫酸基および/またはリン酸基を有する糖の製造方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0466966A1 (en) | 1992-01-22 |
AU625386B2 (en) | 1992-07-09 |
JP2953702B2 (ja) | 1999-09-27 |
AU5915790A (en) | 1992-01-23 |
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