JPH0210157A - ヒトt細胞の分化成熟度検査薬 - Google Patents
ヒトt細胞の分化成熟度検査薬Info
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- JPH0210157A JPH0210157A JP63162222A JP16222288A JPH0210157A JP H0210157 A JPH0210157 A JP H0210157A JP 63162222 A JP63162222 A JP 63162222A JP 16222288 A JP16222288 A JP 16222288A JP H0210157 A JPH0210157 A JP H0210157A
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/18—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
- C07K16/28—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、ヒ)T細胞の分化成熟度検査薬に関する。
例えば、骨髄性白血病、T細胞腫瘍等の造血器の腫瘍は
、極めて多様性に冨む腫瘍で、各腫瘍の種類によって治
療法も異なる。このため、治療方針を決定するにあたっ
ては、対象となる腫瘍化細胞がどのような分化酸μ)段
階にあるかを明らかにする必要がある。
、極めて多様性に冨む腫瘍で、各腫瘍の種類によって治
療法も異なる。このため、治療方針を決定するにあたっ
ては、対象となる腫瘍化細胞がどのような分化酸μ)段
階にあるかを明らかにする必要がある。
従来、造血器腫瘍の分化成熟度の検査には、分化抗原マ
ーカーを認識するモノクローナル抗体が用いられている
。
ーカーを認識するモノクローナル抗体が用いられている
。
本発明の目的は、ヒ1−T細胞の分化成熟度を容易かつ
正確に検査することができる新規な検査薬を提供するこ
とにある。
正確に検査することができる新規な検査薬を提供するこ
とにある。
本発明者らは、特定のモノクローナル抗体が、ヒ)T細
胞の分化成熟度に応じてそのヒトT細胞に結合しあるい
は結合しないことから、分化成熟度の検査に有用である
ことを見出した。
胞の分化成熟度に応じてそのヒトT細胞に結合しあるい
は結合しないことから、分化成熟度の検査に有用である
ことを見出した。
即し、本発明は、ヒト染色体21番が導入されていて該
ヒト染色体21番からコードされる膜タンパク質を合成
するチャイニーズハムスター卵巣細胞(CIIO細胞)
で、免疫された動物から取得した抗体産生細胞と、ミエ
ローマ細胞とを融合させて得られたハイブリドーマによ
り産生され、前記のヒト染色体21番からコードされる
膜タンパク質を合成するCll0細胞に結合するが、正
常なCll0細胞には結合しないモノクローナル抗体か
らなるヒトT細胞の分化成熟度検査薬を提供するもので
ある。
ヒト染色体21番からコードされる膜タンパク質を合成
するチャイニーズハムスター卵巣細胞(CIIO細胞)
で、免疫された動物から取得した抗体産生細胞と、ミエ
ローマ細胞とを融合させて得られたハイブリドーマによ
り産生され、前記のヒト染色体21番からコードされる
膜タンパク質を合成するCll0細胞に結合するが、正
常なCll0細胞には結合しないモノクローナル抗体か
らなるヒトT細胞の分化成熟度検査薬を提供するもので
ある。
本発明に用いられるモノクローナル抗体は、本発明者ら
が先に特願昭62−218149号に開示したものであ
り、その製造は、ヒトの染色体21番が導入されていて
該ヒト染色体21番からコードされる膜タンパク質を合
成するC110細胞で動物を免疫し、該動物から取得し
た抗体産生細胞をミエローマ細胞と融合させてハイブリ
ドーマを形成させ、選択、スクリーニングおよびクロー
ニングにより目的とするモノクローナル抗体産生能を有
するハイブリドーマを得、該ハイブリトーマを培養する
ごとにより行なうことができる。
が先に特願昭62−218149号に開示したものであ
り、その製造は、ヒトの染色体21番が導入されていて
該ヒト染色体21番からコードされる膜タンパク質を合
成するC110細胞で動物を免疫し、該動物から取得し
た抗体産生細胞をミエローマ細胞と融合させてハイブリ
ドーマを形成させ、選択、スクリーニングおよびクロー
ニングにより目的とするモノクローナル抗体産生能を有
するハイブリドーマを得、該ハイブリトーマを培養する
ごとにより行なうことができる。
」二記のスクリーニングは、本発明に用いられるモノク
ローナル抗体が有する、前記の免疫に用いられたCll
0細胞には結合し得るが、正常なC110細胞には結合
し得ないという性質を利用して行なう。
ローナル抗体が有する、前記の免疫に用いられたCll
0細胞には結合し得るが、正常なC110細胞には結合
し得ないという性質を利用して行なう。
上記の製法で、免疫に用いられるヒト染色体21番が導
入されていて該ヒト染色体21番からコ1−′される膜
タンパク質を合成するC110細胞は、公知の細胞融合
技術によって得られる。このようなC110細胞の例と
しては、2Fu’と称されているものがある(D、Pa
Ltersonら、Som、Ce1l Genet、、
−]−91〜110(1975)参照)。
入されていて該ヒト染色体21番からコ1−′される膜
タンパク質を合成するC110細胞は、公知の細胞融合
技術によって得られる。このようなC110細胞の例と
しては、2Fu’と称されているものがある(D、Pa
Ltersonら、Som、Ce1l Genet、、
−]−91〜110(1975)参照)。
上記の方法に用いる免疫される動物としては、例えば、
マウス、ラットなどのげっ菌類があげられるが、通常、
マウスが用いられる。
マウス、ラットなどのげっ菌類があげられるが、通常、
マウスが用いられる。
抗原の動物への投与の経路および計画は種々変えて行う
ことができる。例えば好ましい投与様式では、抗原をマ
イトマイシン処理し、次いで数回に分りで腹腔内に注射
する。抗原の投与により該動物の肺臓に抗体が産生ずる
。抗体産生細胞としては、通常、肺細胞が用いられる。
ことができる。例えば好ましい投与様式では、抗原をマ
イトマイシン処理し、次いで数回に分りで腹腔内に注射
する。抗原の投与により該動物の肺臓に抗体が産生ずる
。抗体産生細胞としては、通常、肺細胞が用いられる。
次に、得られた抗体産生細胞と融合させるミエローマ細
胞としては、例えば、BAl、B/CマウスMOPC2
1骨髄腫から誘導された細胞(MS−1と称される)が
用いられる。このNS−’1は、8−アザグアニンに対
し耐性があり、酵素ヒボキサンチン・グアニン・ホスホ
リボシルトランスフェラーゼを欠くためにヒボキサンチ
ンーアミノプテリンーチミゼンを含h゛する培地(II
AT培地)中で死滅するものであるため、得られるハイ
ブリトーマの選択的培養に好都合である。細胞融合の融
合剤としては、通常、ポリエチレングリコールが用いら
れる。以」二の融合技術および用いられるミエローマ細
胞等はそれ自体公知である〔ミエローマ細胞にδ旧er
et al。
胞としては、例えば、BAl、B/CマウスMOPC2
1骨髄腫から誘導された細胞(MS−1と称される)が
用いられる。このNS−’1は、8−アザグアニンに対
し耐性があり、酵素ヒボキサンチン・グアニン・ホスホ
リボシルトランスフェラーゼを欠くためにヒボキサンチ
ンーアミノプテリンーチミゼンを含h゛する培地(II
AT培地)中で死滅するものであるため、得られるハイ
ブリトーマの選択的培養に好都合である。細胞融合の融
合剤としては、通常、ポリエチレングリコールが用いら
れる。以」二の融合技術および用いられるミエローマ細
胞等はそれ自体公知である〔ミエローマ細胞にδ旧er
et al。
[iur、J、Immunol、、 6,292〜2
95 (1976)。融合方法にδ)IIer et
al、+同上、6.51.1〜516 (1976))
。
95 (1976)。融合方法にδ)IIer et
al、+同上、6.51.1〜516 (1976))
。
次にハイブリドーマをスクリーニングし、前記免疫に用
いられたC110細胞(即ぢ、ヒト染色体21番が導入
されていて該ヒト染色体21番からコードされる膜タン
パク質を合成するC110細胞)には結合するが、正常
なC110細胞には結合しないモノクローナル抗体を産
生ずるものを選択する。こうしてスクリーニングされた
ハイブリドーマは、次いでクローニングされ、各系統か
らの個々のハイフリドーマの子孫が得られる。この細胞
系統部らりじl−ンを細胞培養液(生体外培養)または
in viv。
いられたC110細胞(即ぢ、ヒト染色体21番が導入
されていて該ヒト染色体21番からコードされる膜タン
パク質を合成するC110細胞)には結合するが、正常
なC110細胞には結合しないモノクローナル抗体を産
生ずるものを選択する。こうしてスクリーニングされた
ハイブリドーマは、次いでクローニングされ、各系統か
らの個々のハイフリドーマの子孫が得られる。この細胞
系統部らりじl−ンを細胞培養液(生体外培養)または
in viv。
(生体内培養)において無限に増殖させ、目的とするモ
ノクローナル抗体を合成・分泌させ続りる。
ノクローナル抗体を合成・分泌させ続りる。
産生されたモノクローナル抗体は当該業界で既知の方法
により回収される。
により回収される。
本発明に用いられるモノクローナル抗体は、特願昭62
−21.8149号に開示したように、数が異常である
ヒト染色体21番からコードされる膜タンパク質成分を
有するヒト繊維芽細胞に特異的に結合し、正常なヒト繊
維芽細胞には結合しない性質を有する。
−21.8149号に開示したように、数が異常である
ヒト染色体21番からコードされる膜タンパク質成分を
有するヒト繊維芽細胞に特異的に結合し、正常なヒト繊
維芽細胞には結合しない性質を有する。
また、本発明に用いられるモノクローナル抗体ば、ヒト
]゛細胞への結合性、即ち結合するか否かが、そのヒト
T細胞の分化成熟度に依存することがわかった。このヒ
トT細胞は、正常なT細胞でも腫瘍化した白血病細胞で
もよい。したがって、本発明の検査薬は、腫瘍化T細胞
の分化成熟度を検査するのに有用である。
]゛細胞への結合性、即ち結合するか否かが、そのヒト
T細胞の分化成熟度に依存することがわかった。このヒ
トT細胞は、正常なT細胞でも腫瘍化した白血病細胞で
もよい。したがって、本発明の検査薬は、腫瘍化T細胞
の分化成熟度を検査するのに有用である。
本発明の検査薬の使用法は、いずれの免疫学的試験方法
、例えば、免疫螢光法、免疫粘着血球凝集反応法、放射
性免疫測定法等を利用するものであってもよい。例えば
、免疫螢光法を利用する場合を示すと、ヒトの細胞を本
発明のモノクローナル抗体で処理し、次いで螢光色素(
例えば、FITC)でラヘルされた抗マウスIgGと反
応させ、これを螢光顕微鏡にセットし、発光状態をチエ
ツクすることによりヒトT細胞の分化成熟度を容易に検
査することができる。
、例えば、免疫螢光法、免疫粘着血球凝集反応法、放射
性免疫測定法等を利用するものであってもよい。例えば
、免疫螢光法を利用する場合を示すと、ヒトの細胞を本
発明のモノクローナル抗体で処理し、次いで螢光色素(
例えば、FITC)でラヘルされた抗マウスIgGと反
応させ、これを螢光顕微鏡にセットし、発光状態をチエ
ツクすることによりヒトT細胞の分化成熟度を容易に検
査することができる。
モノクロ−ル の
(1)(抗体の産生)
ヒトの染色体21番が導入されており、この染色体21
番からコードされる膜タンパク質を有するC110細胞
(2Fu’)をマイトマイシンCで処理し、PBS(I
Jン酸緩衡液)で洗浄した。5X106セル10.5c
cの2Fu’のPBS懸濁液をBALB/Cマウスのメ
スの腹腔に注射(免疫化)した。2週間後同様にlX1
0’セル10.5cc、更に2期間後IX’lO7セル
10.5ccを注射し、それから3日後に同マウスの肺
臓を摘出し、RPMT−1640培地中で細砕し、遠心
分離(1500rpm)により3回洗い、同培地中に再
懸濁した。
番からコードされる膜タンパク質を有するC110細胞
(2Fu’)をマイトマイシンCで処理し、PBS(I
Jン酸緩衡液)で洗浄した。5X106セル10.5c
cの2Fu’のPBS懸濁液をBALB/Cマウスのメ
スの腹腔に注射(免疫化)した。2週間後同様にlX1
0’セル10.5cc、更に2期間後IX’lO7セル
10.5ccを注射し、それから3日後に同マウスの肺
臓を摘出し、RPMT−1640培地中で細砕し、遠心
分離(1500rpm)により3回洗い、同培地中に再
懸濁した。
(2)(細胞融合)
前記で得られた肺細胞1. L X103個およびRP
M11640培地で1回洗ったBALB/Cマウスのミ
エローマ細胞(NS−1) 1. OX 107個を混
合し、1500rpmで5分間遠心し、ペレットを調製
した。次いで、RPMI−1640培地にポリエチレン
グリコ−ル(1540)を溶解して50wt%とした液
1mAを撹拌下に加え、さらに総量が10m7!になる
ように!?PMI−1640培地を加え撹拌した。終了
後、11000rpで5分間遠心分離を行い融合剤のポ
リエチレングリコールを除去した後、RPMI−164
0培地にウシ胎児血清(Fe2)20 vo1%を添加
した培地40m1に再懸濁した。
M11640培地で1回洗ったBALB/Cマウスのミ
エローマ細胞(NS−1) 1. OX 107個を混
合し、1500rpmで5分間遠心し、ペレットを調製
した。次いで、RPMI−1640培地にポリエチレン
グリコ−ル(1540)を溶解して50wt%とした液
1mAを撹拌下に加え、さらに総量が10m7!になる
ように!?PMI−1640培地を加え撹拌した。終了
後、11000rpで5分間遠心分離を行い融合剤のポ
リエチレングリコールを除去した後、RPMI−164
0培地にウシ胎児血清(Fe2)20 vo1%を添加
した培地40m1に再懸濁した。
(3)(選択゛、スクリーニング、クローニング)96
穴組織培養平板の192穴の各人に上記懸濁液0.2m
7!(細胞数5X106個)を入れ、2〜3日おきに培
養上清液の半量をIIAT培地(ヒボキサンチン136
.1 mg/mβ、アミノプテリン1.76mg /
m (!、チミジン38.75 mg/ m /l )
で置換した。培養条件ば37°C1100%湿度、CO
□ガス濃度7%である。
穴組織培養平板の192穴の各人に上記懸濁液0.2m
7!(細胞数5X106個)を入れ、2〜3日おきに培
養上清液の半量をIIAT培地(ヒボキサンチン136
.1 mg/mβ、アミノプテリン1.76mg /
m (!、チミジン38.75 mg/ m /l )
で置換した。培養条件ば37°C1100%湿度、CO
□ガス濃度7%である。
10口後、119穴(出現率62%)にハイブリト−マ
が観察された。陽性結果を示した119穴の上清を2F
u’で酵素抗体法(IELISA法)により抗体を産生
ずるか否かをチエツクしなからスクリーニングしたとこ
ろ、20穴がプラスだった(全入の10.6%)。
が観察された。陽性結果を示した119穴の上清を2F
u’で酵素抗体法(IELISA法)により抗体を産生
ずるか否かをチエツクしなからスクリーニングしたとこ
ろ、20穴がプラスだった(全入の10.6%)。
この20穴各々の細胞をB糺B/Cマウス胸腺細胞1.
0X107個/mβを補充した11訂培地で限界希釈し
、96穴組織培養用平板の各人に0.2mffずつ入れ
培養した。この時、ハイプリ1−マの1穴当りの数と穴
数は、1セル/穴が48穴、5セル/穴が45穴、20
セル/穴が3穴であった。培養条件は−1−と同しであ
る。その上清液について前述したELTSA法により、
C110細胞マイナス、2Fu’プラスのものをスクリ
ーニングした結果2穴にクローンが得られた。更に、残
った3穴の細胞を限界希釈法により2回再りローニング
操作を行い、得られたハイブリドーマを夫々0R−1、
OK−2(m工研条寄第1802号)、OK−3(同第
1803号)と命名した。
0X107個/mβを補充した11訂培地で限界希釈し
、96穴組織培養用平板の各人に0.2mffずつ入れ
培養した。この時、ハイプリ1−マの1穴当りの数と穴
数は、1セル/穴が48穴、5セル/穴が45穴、20
セル/穴が3穴であった。培養条件は−1−と同しであ
る。その上清液について前述したELTSA法により、
C110細胞マイナス、2Fu’プラスのものをスクリ
ーニングした結果2穴にクローンが得られた。更に、残
った3穴の細胞を限界希釈法により2回再りローニング
操作を行い、得られたハイブリドーマを夫々0R−1、
OK−2(m工研条寄第1802号)、OK−3(同第
1803号)と命名した。
ハイブリドーマOK−1、OK−2およびOK−3から
産生されるモノクローナル抗体は、抗マウス抗体を用い
た酵素抗体法で調べたところ、それぞれクラスがIgM
、 IgG、およびIgMのものであることが判明した
。
産生されるモノクローナル抗体は、抗マウス抗体を用い
た酵素抗体法で調べたところ、それぞれクラスがIgM
、 IgG、およびIgMのものであることが判明した
。
また、OK−1,OK〜2およびOK−3が産生ずるモ
ノクローナル抗体が認識結合するタンパク質は次のとお
りである。
ノクローナル抗体が認識結合するタンパク質は次のとお
りである。
・OK−1産生モノクロ一ナル抗体:
ヒトの白血病細胞株TALL−1の細胞タンパクのウェ
スタンブロッティングにおいて、4本のハンドを認識す
る。
スタンブロッティングにおいて、4本のハンドを認識す
る。
・OK−2産生モノクロ一ナル抗体:
ヒトの白血病細胞株TALL−1細胞タンパクのウニス
タンプコンテイングにおいて、40および90十ロダル
トンのバンドを認識する。
タンプコンテイングにおいて、40および90十ロダル
トンのバンドを認識する。
・OK−3産生モノクロ一ナル抗体:
TALL−1細胞タンパクのウェスタンブロッティング
において、86.4.74.2.61.4および36.
4キロダルトンの4本のバンドを認識する。2Fu’細
胞タンパクのウェスタンブロッティングにおいては、8
9、82および45キロダルトンの3本のハンドを認識
する。
において、86.4.74.2.61.4および36.
4キロダルトンの4本のバンドを認識する。2Fu’細
胞タンパクのウェスタンブロッティングにおいては、8
9、82および45キロダルトンの3本のハンドを認識
する。
実施例1 (免疫螢光法によるヒ)T細胞分化成熟度の
検査) 分化酸μ)度の異なるT細胞白血病細胞株(NALM1
6、MOLT−10,HPB−八LL、TALL−1,
MO1,T−4,SK誓、MT−2(MAMMALT八
N CIへLL C[ILTURE TECII
NOLOGY、M、5hikita他編集、 5oft
5cience Publications (東京
)発行。
検査) 分化酸μ)度の異なるT細胞白血病細胞株(NALM1
6、MOLT−10,HPB−八LL、TALL−1,
MO1,T−4,SK誓、MT−2(MAMMALT八
N CIへLL C[ILTURE TECII
NOLOGY、M、5hikita他編集、 5oft
5cience Publications (東京
)発行。
p、、141〜162参照)を各々培養した。培地は、
10%ウシ胎児血清を含むRPMI−1640培地を使
用した。
10%ウシ胎児血清を含むRPMI−1640培地を使
用した。
培養後、5X106個の細胞を3%ウシ血清アルブミン
(BSA)を含むリン酸緩衝食塩水(PBS)に浮遊さ
せ、1.00Orpmで、5分間、3回遠心することに
より、細胞の洗浄を行った。前記調製例で得たハイブリ
ドーマOK−1、OK−2およびOK−3から得られた
2種のモノクローナル抗体の各々について、モノクロー
ナル抗体を、0.02Mアジ化ナトリウムおよび3%B
SAを含むPBSで400倍希釈して得たモノクローナ
ル抗体溶液50μlに、前記洗浄後の細胞を浮遊させ、
室温で1時間反応させた。反応後、細胞を上記と同様の
方法で洗浄した。
(BSA)を含むリン酸緩衝食塩水(PBS)に浮遊さ
せ、1.00Orpmで、5分間、3回遠心することに
より、細胞の洗浄を行った。前記調製例で得たハイブリ
ドーマOK−1、OK−2およびOK−3から得られた
2種のモノクローナル抗体の各々について、モノクロー
ナル抗体を、0.02Mアジ化ナトリウムおよび3%B
SAを含むPBSで400倍希釈して得たモノクローナ
ル抗体溶液50μlに、前記洗浄後の細胞を浮遊させ、
室温で1時間反応させた。反応後、細胞を上記と同様の
方法で洗浄した。
洗浄後、細胞を、3%BSAを含むPBSで200倍希
釈したフルオレセインイソチオシア2− ト(FITC
)結合抗マウスLgGあるいばIgM抗体溶液に浮遊さ
せ、室温で30分間反応させた。
釈したフルオレセインイソチオシア2− ト(FITC
)結合抗マウスLgGあるいばIgM抗体溶液に浮遊さ
せ、室温で30分間反応させた。
反応後、細胞を遠心洗浄した。この後、細胞を、7%B
SAを含むPBSに浮遊させ、螢光顕微鏡観察を行った
。
SAを含むPBSに浮遊させ、螢光顕微鏡観察を行った
。
結果を表1に示す。この結果0R−1、OK−2および
OK−3は、それぞれ固有のパターンで、ヒトT細胞白
血病細胞の分化酸v1度を識別することができることが
判明した。
OK−3は、それぞれ固有のパターンで、ヒトT細胞白
血病細胞の分化酸v1度を識別することができることが
判明した。
本発明のヒ)T細胞の分化成熟度検査薬は、用いられる
モノクローナル抗体に応じて異なったパターンで、ヒト
T細胞白血病細胞に結合するので、1種で、または必要
に応じ2種以上併用することによりヒ)T細胞の分化成
熟度を正確かつ簡便に検査することができ、ヒト白血病
の診断等に有用である。
モノクローナル抗体に応じて異なったパターンで、ヒト
T細胞白血病細胞に結合するので、1種で、または必要
に応じ2種以上併用することによりヒ)T細胞の分化成
熟度を正確かつ簡便に検査することができ、ヒト白血病
の診断等に有用である。
代理人 弁理士 岩見谷 同志
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)ヒト染色体21番が導入されていて該ヒト染色体2
1番からコードされる膜タンパク質を合成するチャイニ
ーズハムスター卵巣細胞で、免疫された動物から取得し
た抗体産生細胞と、ミエローマ細胞とを融合させて得ら
れたハイブリドーマにより産生され、 前記のヒト染色体21番からコードされる膜タンパク質
を合成するチャイニーズハムスター卵巣細胞に結合する
が、正常なチャイニーズハムスター卵巣細胞には結合し
ないモノクローナル抗体からなるヒトT細胞の分化成熟
度検査薬。 2)特許請求の範囲第1項記載の検査薬であって、前記
のハイブリドーマがOK−1、OK−2またはOK−3
である検査薬。
Priority Applications (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63162222A JPH0210157A (ja) | 1988-06-28 | 1988-06-28 | ヒトt細胞の分化成熟度検査薬 |
EP19890306496 EP0349258A3 (en) | 1988-06-28 | 1989-06-27 | Method of determining the differentiation of a human t-cell |
DK320389A DK320389A (da) | 1988-06-28 | 1989-06-28 | Fremgangsmaade til bestemmelse af differentieringen af en human t-celle |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63162222A JPH0210157A (ja) | 1988-06-28 | 1988-06-28 | ヒトt細胞の分化成熟度検査薬 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0210157A true JPH0210157A (ja) | 1990-01-12 |
Family
ID=15750289
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63162222A Pending JPH0210157A (ja) | 1988-06-28 | 1988-06-28 | ヒトt細胞の分化成熟度検査薬 |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0349258A3 (ja) |
JP (1) | JPH0210157A (ja) |
DK (1) | DK320389A (ja) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5959630A (ja) * | 1982-06-21 | 1984-04-05 | デイナ−フア−バ−・キヤンサ−・インステイテユ−ト | 特定抗原に特異的なモノクロ−ン抗体 |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4645738A (en) * | 1983-09-30 | 1987-02-24 | Memorial Sloan-Kettering Institute Cancer Center | Method for differential diagnosis of T cell leukemias using monoclonal antibodies |
DE3784502T2 (de) * | 1987-08-31 | 1993-08-05 | Shinetsu Chemical Co | Monoklonaler antikoerper, verfahren zu seiner herstellung und diagnostikum, das ihn enthaelt. |
-
1988
- 1988-06-28 JP JP63162222A patent/JPH0210157A/ja active Pending
-
1989
- 1989-06-27 EP EP19890306496 patent/EP0349258A3/en not_active Withdrawn
- 1989-06-28 DK DK320389A patent/DK320389A/da not_active Application Discontinuation
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5959630A (ja) * | 1982-06-21 | 1984-04-05 | デイナ−フア−バ−・キヤンサ−・インステイテユ−ト | 特定抗原に特異的なモノクロ−ン抗体 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0349258A3 (en) | 1990-10-31 |
EP0349258A2 (en) | 1990-01-03 |
DK320389A (da) | 1989-12-29 |
DK320389D0 (da) | 1989-06-28 |
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