JP7565147B2 - 宿主細胞タンパク質の検出のための組成物及び方法 - Google Patents
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Description
本出願は、2016年4月14日に出願された米国仮特許出願第62/322,621号の優先権を主張するものであり、その内容は、参照することによってその全体が本明細書に組込まれる。
(発明の分野)
本開示は、産物、例えば、組換えタンパク質、例えば、抗体の産生の間の宿主細胞タンパク質不純物を検出する及び/又は定量する方法に関する。
いくつかの実施形態では、サンプルは、組換えポリペプチドの産生プロセスにおける下流の処理ステップから得られる。いくつかの実施形態では、サンプルは、組換えポリペプチドの産生プロセスにおける上流の処理ステップから得られる。いくつかの実施形態では、サンプルは、組換えポリペプチドの最終産物から得られる。いくつかの実施形態では、方法は、組換えポリペプチドの産生プロセスにおける1つ又は複数のステップから得られる、2、3、4、5、6、7、8、9、10、又は10を超えるサンプルを含む。いくつかの実施形態では、検出可能な抗体は、直接的に検出可能である。いくつかの実施形態では、検出可能な抗体は、蛍光試薬によって増幅される。いくつかの実施形態では、検出可能な抗体はビオチン化され、検出手段はアビジン又はストレプトアビジン-ペルオキシダーゼ及び3,3’,5,5’-テトラメチルベンジジンである。
別途規定しない限り、本明細書で使用される全ての技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書に記載される方法及び材料と類似又は均等な任意の方法及び材料が、本発明の実施又は試験において使用され得るが、好ましい材料及び方法は、本明細書に記載される。本発明の記載及び請求項において、以下の用語は、ある規定が提供される場合、どのように用語が規定されるかに応じて使用される。
本明細書に記載される方法は、酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)として特徴付けされ得る。ELISA及びELISAバリエーションの一般的な方法は、当業者に公知である。以下は、方法に関与するステップの時系列を説明する単に本明細書に記載される方法の一般的な記載である。開示は、この記載に何らか、限定され又は制限されるべきでない。要素は、説明の目的のために単に記載される。
本明細書に記載される方法は、HCPの検出のための、抗GS-CHO HCP抗体を提供することができる。抗GS-CHO HCP抗体は、標準的な分子生物学技術によって作製することができる。抗体は、任意の種から由来し得る。抗体は、モノクローナル若しくはポリクローナル又は本明細書に記載される「抗体」の任意のバリエーションであってもよい。いくつかの実施形態では、抗体は、ポリクローナル抗体である。いくつかの実施形態では、抗体は、ヒツジにおいて作製されるポリクローナル抗体である。抗体は、検出可能な標識、例えば、化学修飾、酵素コンジュゲーション、蛍光色素標識化、ルミネセンス標識化などの付着により直接的に検出可能であり得る。抗体は、直接的に検出可能でなく、検出のための二次的な手段を必要としてもよい。これらのさまざまな特性を有する抗体は、購入又は標準的な分子生物学技術によって作製することができる。
サンプルには、組換えタンパク質産生の間の任意の期間(上流又は下流の処理するステップの間の任意の時点)での細胞培養から取られるサンプルが含まれるが、限定されない。例えば、サンプルは、細胞培養(例えば、組換えタンパク質産物の分離の前)から取られ得る。サンプルは、下流の処理するステップの間、例えば、組換えタンパク質産物を含有する培地からの細胞の分離ののちに取られ得る。サンプルは、精製プロセスの間の任意の及び複数の時点に取られ得る。サンプルには、最終産物のサンプルが含まれ得る。したがって、サンプルには、インプロセス産物(最終的な配合の前)及び最終産物(例えば、全ての精製ステップののちの最終的な配合産物)の両方が含まれ得る。
固体支持体には、コーティング剤、例えば、抗GS-CHO HCP抗体、又はその均等物が固定化され得る、任意の表面が含まれ得る。固定化のために使用される固体支持体は、本質的に水不溶性であり、イムノメトリックアッセイに有用である、任意の不活性な支持体又は担体であってもよく、例えば、表面、粒子、多孔性マトリックスなどの形態における支持体を含む。一般に使用される支持体の例には、96ウェルマイクロタイタープレート、並びに粒子性材料、例えば、濾紙、アガロース、架橋デキストラン、及び他の多糖を含む、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリスチレンなどから製造された、小シート、セファデックス、塩化ビニル、プラスチックビーズ、及びアッセイプレート又は試験管が含まれる。或いは、反応性水不溶性マトリックス(reactive water insoluble matrix)、例えば、臭化シアン活性化炭水化物が、試薬固定化のコーティングのため適切に利用される。固定化コーティング剤は、マイクロタイタープレート、一例を挙げると、いくつかのサンプルを一度に分析するため使用することができるマルチウェルマイクロタイタープレートにコーティングすることができる。固体支持体表面には、膜、例えば、ニトロセルロース膜、ポリテトラフルオロエチレン(polytetraluorethylene)膜、セルロースアセテート膜、硝酸セルロース膜、疎水性基を含有する分子でコーティングされた固体表面、親水性基を含有する分子でコーティングされた固体表面も含まれ得るが、限定されない。固体支持体表面は、マイクロタイタープレート、例えば、ポリスチレンマイクロタイタープレート、細胞培養プレート、又は任意のそのバリエーションの形態においてであってもよい。
用語「捕捉試薬」は、対象とする抗原(例えば、GS-CHO HCP)に直接的に結合する抗体を指す。捕捉抗体はまた、タンパク質修飾、例えば、ビオチン標識を有する検出抗体であり得る。抗体は、ヒト、ウサギ、マウス、ラット、ヒツジ、ヤギ、ニワトリ、ヒト、ウマ、イヌ、ネコ、ハムスター、サル、チンパンジー、ヒツジ、ウマ、ブタ、ウシ、霊長類などを含むが、限定されない、異なる種から由来し得る。いくつかの実施形態では、一次抗体は、ヒツジにおいて産生され、親和性精製される抗GS-CHO HCP抗体である。
用語「検出試薬(detecting reagent)」又は「検出試薬(detection reagent)」は、「抗原」又は「抗体」を検出するため使用される標識抗体を指す。検出抗体はまた、一次抗体であり得る。抗体は、ヒト、ウサギ、マウス、ラット、ヒツジ、ヤギ、ニワトリ、ヒト、ウマ、イヌ、ネコ、ハムスター、サル、チンパンジー、ヒツジ、ウマ、ブタ、ウシ、霊長類などを含むが、限定されない、異なる種から由来し得る。検出抗体において使用される標識は、抗体に対するHCPの結合に干渉しない、任意の検出可能な機能性であってもよい。適切な標識の例は、直接的に検出され得る部分、例えば、蛍光染料、化学発光(chemiluminscent)、及び放射性標識、並びに検出されるため反応又は誘導体化されなければならない部分、例えば、酵素を含む、イムノアッセイを使用するため公知の多数の標識である。本発明において使用し得る適切な標識化方法には、同位体標識化、化学修飾、酵素コンジュゲーション、蛍光色素標識化、ルミネセンス標識化、及び当業者に一般に公知の他の標識化方法が含まれるが、限定されない。
用語「検出系」は、サンプル中のタンパク質又は因子の量又は相対量に関連する情報を含む読み出し情報を与えるため使用することができる手段を指す。検出系の選択は、使用される検出抗体の選択に依存する。例えば、検出抗体が酵素での標識である場合、化学反応が色又は化学発光シグナルをもたらし得る;検出系には、適切な基質及び化学反応に関連する任意の必要な試薬及び化学反応を検出する手段、例えば、視覚的検査、シグナルを検出することが可能な装置、例えば、吸光度プレートリーダー、化学発光プレートリーダー、CCDカメラなどが含まれ得る;或いは、検出抗体が蛍光性に標識される場合、蛍光顕微鏡、蛍光プレートリーダー、蛍光セルソーター、蛍光スキャナー、カメラなどが使用され得る;或いは、検出抗体が同位体標識される場合、X線フィルム又は他の同位体感受性材料が使用され得る。
コーティング剤でのインキュベーションののちに、固体支持体における残存するいかなる結合部位もブロックするため使用されるブロッキング緩衝剤が、使用され得る。ブロッキング緩衝剤の例には、カゼイン、例えば、1XPBS中のカゼイン、1XPBS中の0.1~1%カゼイン、1XPBS中の0.1~0.5%カゼイン、1XPBS中の0.2%カゼイン;BSA、例えば、1XPBS中のBSA、例えば、1XPBS中の1%BSA、1XPBS中の1~10%BSA、1XPBS中の1~20%BSA、1XPBS中の1~50%BSA;脱脂乳、魚ゼラチン、又は他の化学試薬が含まれるが、限定されない。上記の任意の試薬又は他の適切な化学試薬は、任意の適切な緩衝剤、例えば、リン酸緩衝食塩水(PBS)又はトリス緩衝食塩水(TBS)中に希釈され得る。
さまざまなステップのための適切なインキュベーション期間は、当業者によって決定され得る。特定のインキュベーションステップのための期間は、インキュベーションステップの温度における変化に起因して変更されてもよく、同様に、インキュベーションステップの時間における変化は、インキュベーションステップの温度における変化を必要としてもよい。コーティングステップは、例えば、4℃又は約4℃で終夜、2~10℃又は約2~10℃で終夜、37℃又は約37℃で4時間、37℃又は約37℃で2~4時間、37℃又は約37℃で1~4時間、32℃又は約32℃で4時間、32℃又は約32℃で2~4時間、32℃又は約32℃で1~4時間実施されてもよい。ブロッキングステップは、例えば、32℃又は約32℃で1時間;32℃又は約32℃で1~2時間;4℃又は約4℃で終夜実施されてもよい。標準/サンプルインキュベーションステップは、例えば、32℃又は約32℃で2時間;32℃又は約32℃で1~2時間;4℃又は約4℃で終夜実施されてもよい。一次抗体又は一次/検出抗体インキュベーションステップは、例えば、32℃又は約32℃で1時間;32℃又は約32℃で1~2時間;4℃又は約4℃で終夜実施されてもよい。いかなる検出系のインキュベーション期間及び温度も、厳密に利用される検出抗体に依存的であり、当業者に公知である。
本明細書に記載される方法を実施するため有用な1つ又は複数の要素を含むキットは、任意の必要な成分、試薬、又は本明細書に記載される方法を実施するため必要な材料、及び/又は本明細書に記載される方法を実施するための説明書を含み得るが、限定されない。キットは、任意選択で、本明細書に記載される方法を実施するための、任意の追加の洗浄剤、インキュベーション容器、固体支持体表面などを含み得る。
産物を産生することが可能な細胞又は細胞系を、同定する、選択する、又は作製するための方法が本明細書において提供される。本発明の開示によって包含される産物には、細胞によって産生され得る、例えば、細胞において発現される、分子、核酸、ポリペプチド(例えば、組換えポリペプチド)、又はそのハイブリッドが含まれるが、限定されない。いくつかの実施形態では、細胞は、産物を産生させるため、操作される又は修飾される。そのような修飾には、産物の産生を制御する又はもたらす分子を導入することが含まれる。例えば、細胞は、ポリペプチド、例えば、組換えポリペプチドをコードする外来性核酸を導入することによって修飾され、細胞は、ポリペプチド、例えば、組換えポリペプチドの産生、例えば、発現及び分泌に適切な条件下で培養される。別の例では、細胞が、例えば、未修飾細胞において、内因性に産生されるレベル又は量よりも高いレベル又は量のポリペプチドを産生するように、細胞によって内因性に発現されるポリペプチドの発現を制御、例えば、増加させる外来性核酸を導入することによって細胞は修飾される。
実施形態では、細胞は、哺乳動物細胞である。他の実施形態では、細胞は、哺乳動物細胞以外の細胞である。一実施形態では、細胞は、マウス、ラット、チャイニーズハムスター、シリアンハムスター、サル、類人猿(ape)、イヌ、ウマ、フェレット、又はネコである。実施形態では、細胞は、哺乳動物細胞、例えば、ヒト細胞又はげっ歯類細胞、例えば、ハムスター細胞、マウス細胞、又はラット細胞である。別の実施形態では、細胞は、カモ、オウム、魚、昆虫、植物、真菌、又は酵母からの細胞である。一実施形態では、細胞は、古細菌である。一実施形態では、細胞は、アクチノバクテリアの種である。
哺乳動物及び微生物選択系の両方における当技術分野における現在の最新技術は、RNAへのDNAの転写のレベルで選択圧を適用することである。対象とする遺伝子は、対象とする遺伝子の高発現をもたらす可能性が高い、選択マーカーを高レベルで発現させる選択マーカーに厳密に連結される。高レベルで選択マーカーを発現する細胞は、生存及び増殖することができ、発現しないものは、生存及び増殖する可能性が低く、例えば、アポトーシス(apoptose)及び/又は死亡する。このような方法で、細胞の集団は、選択マーカーを発現する細胞に関して富化され得ることから、対象とする遺伝子が高レベルであることが含意され得る。この方法は、直接的なタンパク質の発現について非常に成功することが証明されている。
抗GS-CHO宿主細胞タンパク質ポリクローナル抗体の調製
この例に提供される方法は、抗GS-CHO宿主細胞タンパク質(HCP)ポリクローナル抗体の調製に関する。抗体を、例2に記載されるELISA実験に使用した。
3頭のヒツジを、GS-CHOヌル細胞系(すなわち、ブランクGSベクターをトランスフェクトされたCHO-K1SV細胞)からのHCPで免疫化した。抗原として使用されたHCPは、細胞抽出物(CE)又は細胞上清(SN)からのHCPであった。抗原を、標準方法(例えば、米国薬局方(USP)を参照されたい、米国薬局方(USP)は、公式のアッセイ手順及びガイドラインに関する全てのガイドラインを公開している。USP<1132>は、「生物製剤中の残留宿主細胞タンパク質測定」(USP38-NF33に対する第二補遺、7647~7667)を記載し、2015年12月に公開された)に従って調製した。
ヒツジ抗血清を、さまざまな日付で放血させ、収集した。貯蔵したヒツジ抗血清を、抗GS CHO HCP抗体を親和性精製するために使用した。
精製プロセスは、MabSelect SuRe(MSS)アフィニティークロマトグラフィー、濃縮/ダイアフィルトレーション、臭化シアン(CNBr)アフィニティークロマトグラフィー及び最終的なダイアフィルトレーションステップから構成された。独自に、本発明の例示的なプロセスは、プロテインA及びCNBrクロマトグラフィーを、2ステップ親和性精製に組み合わせた。この2ステップ親和性精製により、大多数の非特異的なIgG(すなわち、HCPに対して結合しないIgG)が除去された。現行の精製方法は、粗抗血清(すなわち、精製なし)又は全IgG(これは、およそ99%の非特異的なIgGを有する)の混合物からのHCP抗体を利用する。
GS-CHO HCP ELISA
この例に提供される方法は、GS-CHO HCPを検出し、定量化するため開発されたサンドイッチELISAに関連する。ELISAアッセイ条件が、現行の方法に対して優れた性能であるためであった(例えば、例3を参照されたい)。
ELISAを、例1に記載した親和性精製したGS-CHO HCP抗体で最適化した。ELISAプレートを、1ウェル当たり炭酸塩/炭酸水素塩(biocarbonate)緩衝剤中の2μg/ml GS-CHO HCP抗体の100μlでコーティングし、5±3℃で終夜(18±2時間)インキュベートした。コーティングしたプレートを、300μlの洗浄緩衝剤(1X DPBS中の0.05% Tween20)で3回洗浄し、続いて1ウェル当たり300μlのブロッキング緩衝剤(1X DPBS中の0.2%カゼイン)を添加し、60±5分間、23±2℃で300±50rpmで振盪してインキュベートした。9つの標準(80ng/mlから0.31ng/ml)を、ブロッキング緩衝剤でのGS-CHO HCP標準の2分の1段階希釈によって調製した。例の希釈スキームは、表3に提供される。
GS-CHO HCP ELISAの評価
以下の例は、例2に記載したGS-CHO HCPサンドイッチELISAの評価を提供する。評価の結果は、以下に記載される。
ELISAの正確性を、全て5つのスパイクレベルの回収により分析した。スパイクレベル5、10、及び20ng/mlの正確性は、75%から125%回収の許容される範囲内であった。2ng/mlに関して、大多数の産物希釈は、75%から125%回収内の許容される回収を有していた。高レベルの内因性HCP濃度は、スパイク2ng/mlの正確性に影響を及ぼした。1ng/mlでのスパイクレベルの全体的な正確性は、高い内因性HCPレベルの影響に起因して許容されるものではなかった。
4つのGS-CHO BDS(バルク精製)産物におけるHCP測定を、再現性精度(repeatability precision)及び中間精度(intermediate precision)について分析した。再現性及び中間精度の両方は、20%CV未満であった。GS-CHO産物におけるHCP濃度の再現性は、20%CVの許容される範囲の上限であった。精度を、評価全体にわたってアッセイ間対照及びスパイク対照からのHCP測定で更に分析した。再現性及び中間精度は、高い及び低いアッセイ間対照(IAC)の両方に関して15%CV未満であった。1、2、5、10及び20ng/mlのスパイク対照に関して、再現性精度及び中間精度は、全て15%CV未満であった。
直線性は重要なアッセイパラメータであり、これにより、アッセイ応答が、試験サンプル中の分析物濃度と比例し、したがって、サンプルからの応答は、用量反応キャリブレーション曲線から直接的に解釈できることが実証される。GS-CHO HCP ELISAの直線性を、5つのレベルのHCPスパイクGS-CHO産物でのHCP測定で評価した。直線性(r2)値は、正確性調査及び4つの試験したGS-CHO HCP産物の各アッセイにおいて、0.984から1.000の範囲であった。
GS-CHO HCP ELISA標準曲線の作用範囲は、許容される正確性を伴って、2ng/mlから80ng/mlの範囲と決定された。作用範囲は、GS-CHO BDS産物についてのHCP測定でも試験され、確認された。
GS-CHO HCP ELISAの検出限界(LOD)は0.9ng/mlと決定され、これは、4つのGS-CO BDS産物についての41プレートでの6つ全てのアッセイ機会における標準曲線から算出された最大LODであった。各アッセイ(プレート)のLODを、ブランク対照(0ng/mlの標準)の平均吸光度プラスその標準偏差の2.5倍(有意に異なるシグナルを提供する)での標準曲線から解釈したHCP濃度から算出した。全ての試験したプレートからの最大LODは0.875ng/mlであり、これは0.9ng/mlに切り上げられた。0.9 ng/mlは、GS-CHO HCP ELISAのLODと規定された。
GS-CHO HCP ELISAの検出限界(LOQ)は、2ng/mlと決定された。GS-CHO HCP ELISAの定量化限界(LOQ)を、試験したGS-CHO産物に関する、許容される逆算した標準及び許容される正確性の組合せと規定した。許容される逆算(%RE≦15%)及び再現性精度(%CV≦20%)でのGS-CHO HCP ELISAの最低標準は、1.25ng/mlであった。許容される回収(6回の機会のうち少なくとも3回において75%から125%の間)での各産物についてのLOQは、表12に要約される。現行の標準CHO HCP ELISAについてのLOQは、約200ng/mlである。
GS-CHO HCP ELISAの特異性を、精製プロセス中にCHPと共精製される可能性がある、プロテインA及びCHO DNAの不純物について試験した。プロテインA及びCHO DNA両方に関する特異性%は、97%から103%以内であった。交差反応性%は、プロテインA及びCHO DNA両方において1%未満であった。プロテインA及びCHO DNAからの潜在的な陰性又は陽性バイアスは、抗体産物中のHCPを測定している間にGS-CHO HCP ELISAにおいて観察されなかったことを特異性の結果は示唆した。
GS-CHO HCP ELISA試薬(具体的にはHCP分析物)を、貯蔵温度、時間、及び凍結融解条件について試験した。MAbサンプル内のGS-CHO HCPの又はMAbサンプル中にスパイクした追加のGS-CHO HCPの安定性を、5±3℃又は-65℃以下のいずれかで保存された後のさまざまな時点で評価した。結果は、t=0日からt=1日貯蔵期間において両方の温度でHCP不安定性及び潜在的な分解を示したが、t=1日からt=85日貯蔵期間においてHCP安定性を示した。追加のHCPがサンプル中にスパイクされない3つのMAbサンプルのうちの2つに関して、HCPにおける変化は、両方の貯蔵温度で30%未満又は30%と等しく、許容された。これにより、MAbサンプル中に存在する内因性HCPが、5±3℃又は-65℃以下で85日まで貯蔵する間に安定であることが実証された。HCP試験のため-65℃以下の貯蔵温度がバルク精製サンプルの試験に適切であることが結論付けられ、そのサンプルは-65℃以下で85日まで保存することができる。
サンプル調製手順における小さいバリエーションが方法の性能に影響しないことを実証するため、アッセイドリフト、アッセイインキュベーション時間、アッセイインキュベーション温度、及びアッセイ試薬寿命(assay reagent age)における頑健性を評価した。
Claims (16)
- ポリクローナル抗宿主細胞タンパク質(HCP)抗体調製物を産生する方法であって、該方法は、
a)宿主細胞のHCPで免疫化したヒツジ又はヤギから、抗体を含むサンプルを獲得するステップ;
b)該サンプルをプロテインA親和性試薬と接触させることによって、該サンプルから抗体を分離して抗体調製物を得るステップ;及び
c)ステップb)により得られた該抗体調製物を、基質連結したHCPを含むHCP親和性試薬と接触させることによって、ポリクローナル抗HCP抗体調製物を分離するステップ
を含み、それにより、ポリクローナル抗HCP抗体調製物を産生する方法。 - 前記HCPに連結した基質は、臭化シアン(CNBr)誘導体化基質又はN-ヒドロキシスクシンイミド(NHS)誘導体化基質である、請求項1に記載の方法。
- 前記HCPに連結した基質は、臭化シアン(CNBr)誘導体化基質である、請求項1または2に記載の方法。
- 前記宿主細胞は、哺乳動物細胞である、請求項1から3のいずれか1項に記載の方法。
- 前記哺乳動物細胞は、CHO細胞である、請求項4に記載の方法。
- 前記精製が、
i)少なくとも50%、60%、70%、80%、90%、95%、96%、97%、98%、若しくは99%の非HCP特異的IgG、又は
ii)50%、60%、70%、80%、90%、95%、96%、97%、98%、若しくは99%を超える非HCP特異的IgG
を除去する、請求項1から5までのいずれか一項に記載の方法。 - 前記ポリクローナル抗HCP抗体が、
i)0.5%、1%、2%、3%、5%、10%、20%、30%、40%、又は50%以下の非HCP特異的IgGを含有する、又は
ii)50%、40%、30%、20%、10%、5%、4%、3%、2%、1%、0.5%未満の非HCP特異的IgGを含有する、請求項1から5までのいずれか一項に記載の方法。 - 請求項1から7までのいずれか一項に記載の方法によって産生される、ポリクローナル抗HCP抗体調製物。
- 組換えポリペプチドを含むサンプル中の宿主細胞タンパク質(HCP)を検出、モニタリング、同定、又は定量する方法であって、
a)組換えポリペプチドを含むサンプルを準備又は取得するステップ;
b)該サンプルを、固体支持体に固定化された請求項1から7までのいずれか一項に記載の方法によって産生されたポリクローナル抗HCP抗体調製物と接触させインキュベートして、固定化された抗体-HCP複合体を形成するステップ;
c)該サンプルを該固定化された抗体-HCP複合体から分離するステップ;
d)該固定化された抗体-HCP複合体を該HCPに結合する検出可能な抗体と接触させるステップ;及び
e)該検出可能な抗体に結合したHCPの存在を該検出可能な抗体を検出手段を使用して検出するステップ
を含む方法。 - 組換えポリペプチドを含むサンプル中の宿主細胞タンパク質(HCP)を検出、モニタリング、同定、又は定量する方法であって、
a)組換えポリペプチドを含むサンプルを準備又は取得するステップ;
b)請求項1から7までのいずれか一項に記載の方法によって、ポリクローナル抗HCP抗体調製物を産生するステップ;
c)該サンプルを、固体支持体に固定化された該ポリクローナル抗HCP抗体調製物と接触させインキュベートして、固定化された抗体-HCP複合体を形成するステップ;
d)該サンプルを該固定化された抗体-HCP複合体から分離するステップ;
e)該固定化された抗体-HCP複合体を該HCPに結合する検出可能な抗体と接触させるステップ;及び
f)該固定化された抗体に結合したHCPの存在を、該検出可能な抗体を検出する手段を利用して検出するステップ
を含む方法。 - 前記検出可能な抗体は、i)直接的に検出可能である、ii)蛍光試薬によって増幅される、又はiii)ビオチン化され、検出手段は、アビジン又はストレプトアビジン-ペルオキシダーゼ及び3,3’,5,5’-テトラメチルベンジジンである、請求項9または10に記載の方法。
- 前記HCPは、CHO細胞HCPである、請求項9から11までのいずれか一項に記載の方法。
- i)前記サンプルは、組換えポリペプチドの産生プロセスにおける下流の処理ステップから得られる、
ii)前記サンプルは、組換えポリペプチドの産生プロセスにおける上流の処理ステップから得られる、
iii)前記サンプルは、組換えポリペプチドの最終産物から得られる、又は
iv)前記サンプルは、組換えポリペプチドの産生プロセスにおける1つ又は複数のステップから得られる、少なくとも2つのサンプルを含む、請求項9から12までのいずれか一項に記載の方法。 - 組換えポリペプチドを含むサンプル中の宿主細胞タンパク質(HCP)を検出、モニタリング、同定、又は定量するための、請求項1から7までのいずれか一項に記載の方法によって産生されたポリクローナル抗HCP抗体調製物の使用。
- 前記組換えポリペプチドは、モノクロナール抗体である、請求項9から13までのいずれか一項に記載の方法、又は請求項14に記載の使用。
- 前記組換えポリペプチドは、治療抗体である、請求項9から13までのいずれか一項に記載の方法、又は請求項14に記載の使用。
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