JP7489271B2 - 脂肪線維化抑制剤 - Google Patents
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Description
また、シソの1種であるアオジソ(Perilla frutescens var.crispa f.viridis.Makino)は、大葉とも呼ばれ食用として用いられているが、その抽出物には、発汗、解熱、去痰(きょたん)、健胃、鎮痛などの薬理作用があることが報告されている。
また、シナノキ科の一年生の草本であるモロヘイヤ(Corchorus olitorius L.)は、栄養価の高い緑黄色野菜として知られており、例えば血圧降下作用があることが報告されている(特許文献3)。
1)ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を有効成分とするMincle発現抑制剤。
2)ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を有効成分とする脂肪線維化抑制剤。
3)ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を有効成分とするMincle発現抑制用食品。
4)ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を有効成分とする脂肪線維化抑制用食品。
「アオジソ」とは、シソ科のアオジソ(Perilla frutescens var.crispa f.viridis.Makino)を指し、「大葉」と呼ばれることもある。
「モロヘイヤ」とは、シナノキ科のモロヘイヤ(Corchorus olitorius L.)を指し、別名「タイワンツナソ」とも称される。
斯かる植物は、そのまま若しくはそれを圧搾することにより得られる搾汁、植物体自身を乾燥した乾燥物若しくはその粉砕物、あるいはこれらから抽出した抽出物として用いることができるが、抽出物として用いるのが好ましい。
また、本発明において、上記の植物又はその抽出物は、2種以上を混合して用いてもよい。
抽出手段は、特に限定されないが、例えば、固液抽出、液液抽出、浸漬、煎出、浸出、還流抽出、ソックスレー抽出、超音波抽出、マイクロ波抽出、攪拌等の通常の手段を用いることができる。
また、さらに公知の分離精製方法を適宜組み合わせてこれらの純度を高めてもよい。精製手段としては、有機溶剤沈殿、遠心分離、限界濾過膜、高速液体クロマトグラフやカラムクロマトグラフ等が挙げられる。
また、本発明の植物又はその抽出物は、Mincle発現の抑制、脂肪線維化の抑制のために使用することができ、セルライトの予防又は改善、糖・脂質代謝の改善に応用することができる。ここで、当該使用は、ヒト若しくは非ヒト動物、又はそれらに由来する検体における使用であり得、また治療的使用であっても非治療的使用であってもよい。尚、「非治療的」とは、医療行為を含まない概念、すなわち人間を手術、治療又は診断する方法を含まない概念、より具体的には医師又は医師の指示を受けた者が人間に対して手術、治療又は診断を実施する方法を含まない概念である。
尚、Mincle(C-type lectin domain family 4 member E:CLEC4E)とは、NCBIのデータベース(Protein)[https://www.ncbi.nlm.nih.gov/protein]にNP_055173として登録されているタンパク質を指す。
また、「改善」とは、疾患、症状又は状態の好転、疾患、症状又は状態の悪化の防止又は遅延、あるいは疾患又は症状の進行の逆転、防止又は遅延をいう。
なお、当該食品には、脂肪線維化抑制をコンセプトとし、必要に応じてその旨を表示した食品、機能性表示食品、特定保健用食品、病者用食品、サプリメントが包含される。
このような種々の剤型の医薬製剤は、本発明の植物又はその抽出物と他の薬学的に許容される賦形剤、結合剤、増量剤、崩壊剤、界面活性剤、滑沢剤、分散剤、緩衝剤、保存剤、嬌味剤、香料、被膜剤、担体、希釈剤等を適宜組み合わせて調製することができる。
種々の形態の食品は、本発明の植物又はその抽出物と他の食品材料や溶剤、軟化剤、油、乳化剤、防腐剤、香科、安定剤、着色剤、酸化防止剤、保湿剤、増粘剤等を適宜組み合わせて調製することができる。
<1>ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を有効成分とするMincle発現抑制剤。
<2>ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を有効成分とする脂肪線維化抑制剤。
<3>ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を有効成分とするセルライト予防又は改善剤。
<4>ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物の抽出物を有効成分とするMincle発現抑制用食品。
<5>ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物の抽出物を有効成分とする脂肪線維化抑制用食品。
<6>ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物の抽出物を有効成分とするセルライト予防又は改善用食品。
<8>脂肪線維化抑制剤を製造するための、ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物の使用。
<9>セルライト予防又は改善剤を製造するための、ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物の使用。
<10>Mincle発現抑制用食品を製造するための、ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物の使用。
<11>脂肪線維化抑制用食品を製造するための、ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物の使用。
<12>セルライト予防又は改善用食品を製造するための、ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物の使用。
<14>脂肪線維化抑制に使用するための、ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物。
<15>セルライト予防又は改善に使用するための、ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物。
<17>脂肪線維化を抑制するための、ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物の非治療的使用。
<18>セルライトを予防又は改善するための、ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物の非治療的使用。
<20>ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を、それらを必要とする対象に有効量で投与又は摂取する脂肪線維化抑制方法。
<21>ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を、それらを必要とする対象に有効量で投与又は摂取するセルライトの予防又は改善方法。
<22>投与又は摂取が、経口による投与又は摂取である<19>~<21>の方法。
<23>投与又は摂取する有効量が、成人(体重60kg)1人、1日あたり、乾燥物換算で、好ましくは0.6mg以上、より好ましくは6mg以上であり、より好ましくは30mg以上であり、且つ好ましくは6000mg以下、より好ましくは3000mg以下、より好ましくは1200mg以下である。また、1日あたり好ましくは0.6~6000mg、より好ましくは6~3000mg、より好ましくは30~1200mgである<19>~<22>の方法。
<24>ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物の投与又は摂取期間が1日以上、好ましくは7日以上、より好ましくは30日以上である<23>の方法。
<25>投与又は摂取の対象者が、二の腕、臀部、太もも等の皮下脂肪にできたセルライトの除去を望むヒト、或いはセルライトの発生を予防したいヒト、内臓脂肪の線維化によってもたらされるインスリン抵抗性を示すヒトや、それに起因する糖尿病などの疾患の罹患者又は疾患のおそれがあるヒトである<19>~<24>の方法。
<26>植物抽出物が、ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物の溶媒抽出物であり、抽出のための溶媒が好ましくは極性溶媒であり、より好ましくは水、アルコール類及びその水溶液、さらに好ましくはエタノール及びその水溶液である、<1>~<3>の剤、<4>~<6>の食品、<7>~<12>の使用、<13>~<15>の植物又はその抽出物、<16>~<18>の非治療的使用、<19>~<25>の方法。
(1)ケール抽出物の調製
アブラナ科ケール〔Brassica oleracea L. var. acephala DC.〕の葉乾燥品(中国産)10gに、99.5%(v/v)エタノール水溶液100mLを加え、室温、静置下で、17日間浸漬した。その後、ろ過により抽出残渣と分離した後、抽出液を減圧にて濃縮・乾燥し、エタノール抽出物601.8mgを得た。得られた抽出物を99.5%(v/v)エタノール水溶液にエキス濃度1%(w/v)となるように溶解して、試験サンプルとした。
シソ科アオジソ〔Perilla frutescens var.crispa f.viridis.Makino〕の葉(日本産)の凍結乾燥品10gに、99.5%(v/v)エタノール水溶液150mLを加え、室温、静置下で、7日間浸漬した。その後、ろ過により抽出残渣と分離した後、抽出液を減圧にて濃縮・乾燥し、エタノール抽出物494.1mgを得た。得られた抽出物を99.5%(v/v)エタノール水溶液にエキス濃度1%(w/v)となるように溶解して、試験サンプルとした。
シナノキ科のモロヘイヤ〔Corchorus olitorius L.〕の葉(日本産)の凍結乾燥品10gに99.5%(v/v)エタノール水溶液150mLを加え、室温、静置下で、9日間浸漬した。その後、ろ過により抽出残渣と分離した後、抽出液を減圧にて濃縮・乾燥し、エタノール抽出物246.3mgを得た。得られた抽出物を99.5%エタノール水溶液にエキス濃度1%(w/v)となるように溶解して、試験サンプルとした。
1.細胞培養
細胞はマウス由来マクロファージ様細胞RAW264(DSファーマ メディカル)を用い、DMEM(Gibco)+10%FBS培地にて培養を行った。
RAW264細胞を2×105cells/wellで24 well plate (BD Falcon)に播種し、翌日、無血清培地に交換し、LPSを最終濃度0.5ng/mLで添加するとともに、製造例1で調製された1%植物抽出物溶液を最終濃度0.001%(v/v)で添加し、37℃で静置培養した。なお、植物抽出物を添加せず、LPSのみを添加した細胞をコントロールとした。
LPS添加17時間後に細胞を回収し、RNeasy Mini kit(Qiagen)にてRNAを抽出した。全てのサンプルについて吸光度法NanoDrop(Thermo)を用いてRNA量を測定し、50ng/μLに揃えて逆転写を行った(High Capacity RNA-to-cDNA Kit, Applied Bio Systems)。Mincle遺伝子の発現解析は、Taqman(Life Technologies)を使用した定量PCRにて行い、得られた値は、内部標準であるRplp0の値で補正した。結果は、LPS及び植物抽出物を添加しなかった群を1とした相対値で示し、LPSのみを添加した群をコントロール群として、各植物抽出物のMincle遺伝子発現を評価した。
本試験で使用したTaqman primerプライマー及び遺伝子名は、表1に示す。
RAW264細胞を9×105cells/wellで6 well plate(BD Falcon)に播種し、LPS及び植物抽出物の添加から細胞回収までは、前記2.と同様の方法で行った。得られた細胞は、Protease phosphatase inhibitor(Cell Signaling)を含むRIPA Buffer(Sigma)で溶解後、ソニケーション及び遠心分離(4℃,14000×g,5分)により上清を回収した。BCA Protein Assay Kit(Thermo Fisher Scientific)によりタンパク質濃度を算出後、一定濃度に調整したサンプル溶液にSDS Sample Buffer(Merck)を加え、95℃で5分加熱し、SDS-PAGEに用いた。
SDS-PAGEには、4-15% Criterion TGXゲル(Bio-Rad)を使用し、150V定電圧で展開した。Immuno-Blot PVDF Membrane(Bio-Rad)にCriterion ブロッター(Bio-Rad)を使用して200mA定電流で90分間タンパク質を転写し、5%スキムミルク(Wako)/TBS-T(0.5%(v/v)Tween20含有TBS、Bio-Rad)にてブロッキングを行った。続いて希釈した下記の1次抗体、2次抗体を順次反応させ、ECL prime Western blotting detection system(GE Healthcare)を用いてバンドを検出した。尚、抗体の希釈には、Can Get Signal(TOYOBO)を使用した。
anti Mincle(1B6)Mouse mAb(MBL D266-3)
anti β-actin(13E5) Rabbit mAb(Cell Signaling #4970)
2次抗体(1000倍希釈して使用):
Mouse IgG, HRP Linked F(ab′)2 Fragment(GE Healthcare NA9310-1ML)
Rabbit IgG HRP Linked F(ab′)2(GE Healthcare NA9340-1ML)
Mincle遺伝子発現解析の結果を図1に、Mincleタンパク質発現解析の結果を図2に示す。
ケール抽出物、アオジソ抽出物及びモロヘイヤ抽出物は、遺伝子レベル及びタンパク質レベルでMincleの発現を強く抑制した。
1.培養
細胞はマウス由来マクロファージ様細胞RAW264(DSファーマ メディカル)及び脂肪前駆細胞3T3-L1(DSファーマ メディカル)を用い、DMEM(Gibco)+10%FBS培地にて培養を行った。
RAW264細胞を1.8×106cells/wellで6 well plate(BD Falcon)に播種し、翌日、無血清培地に交換するとともにLPS(Wako)を最終濃度0.5ng/mL、製造例1で調製された1%植物抽出物溶液を最終濃度0.001%(v/v)で添加した。17時間後に培養上清の全量(1mL)を回収し、遠心分離後、上清を使用まで-80℃で保存した。尚、比較対照はLPSのみを添加した細胞の培養上清とした。
3T3-L1細胞を、7.5×104cells/wellで24well plate(BD Falcon)に播種した。翌日、無血清培地に交換するとともに、前記2.で回収したRAW264細胞の培養上清を1/10量(v/v)添加した。17時間後にPBSで細胞を洗浄し、RNeasy Mini kit (Qiagen)にてRNAを抽出した。得られたRNAからのcDNAの合成は、実施例1の2.と同様の方法で行い、線維化抑制能の評価には、筋線維芽細胞特異的に発現する線維化マーカーであるαSMA(actin alpha 2, smooth muscle)の遺伝子発現量を指標として用いた。遺伝子発現解析は、Taqman(Life Technologies)を使用した定量PCRにて行い、得られた値は、内部標準であるRplp0の値で補正した。結果は、LPS及び植物抽出物を含有しない培地で培養したRAW264細胞の培養上清を添加した群を1とした相対値で示し、LPSのみを含有する培地で培養したRAW264細胞の培養上清を添加した群をコントロール群として、各植物抽出物の線維化抑制能を評価した。本試験で使用したTaqmanプライマー及び遺伝子名は、表2に示す。
得られた結果の統計学的解析は、Tukeyの検定で行い、P値が0.05未満である場合、有意差があるとした。
αSMA遺伝子発現解析の結果を図3に示す。
ケール抽出物、アオジソ抽出物及びモロヘイヤ抽出物には優れたαSMA発現抑制活性が認められた。αSMAは筋線維芽細胞マーカーとして特定されていることから、αSMAの発現が抑制されたことは、線維化に伴う脂肪細胞から筋線維芽細胞への形質転換が抑制されたことを示す。
Claims (4)
- ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を有効成分とするMincle発現抑制剤。
- ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物又はその抽出物を有効成分とする脂肪線維化抑制剤。
- ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物の抽出物を有効成分とするMincle発現抑制用食品。
- ケール、アオジソ及びモロヘイヤから選ばれる植物の抽出物を有効成分とする脂肪線維化抑制用食品。
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NATURE COMMUNICATIONS,2014年,5:4982 |
Phytother. Res.,2009年,23,1685-1690 |
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