JP2013018753A - 過敏性腸症候群の予防又は改善剤 - Google Patents
過敏性腸症候群の予防又は改善剤 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2013018753A JP2013018753A JP2011154945A JP2011154945A JP2013018753A JP 2013018753 A JP2013018753 A JP 2013018753A JP 2011154945 A JP2011154945 A JP 2011154945A JP 2011154945 A JP2011154945 A JP 2011154945A JP 2013018753 A JP2013018753 A JP 2013018753A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- stress
- irritable bowel
- bowel syndrome
- extract
- lychee
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
Abstract
【課題】ストレス性大腸運動亢進、ストレス性大腸知覚過敏等の炎症を伴わない過敏性腸症候群の予防又は改善剤の提供。
【解決手段】ライチ果実又はその抽出物を有効成分とする過敏性腸症候群の予防又は改善剤。
【選択図】なし
【解決手段】ライチ果実又はその抽出物を有効成分とする過敏性腸症候群の予防又は改善剤。
【選択図】なし
Description
本発明は、過敏性腸症候群の予防又は改善剤に関する。
下痢には病原性微生物の感染、炎症性腸疾患などの炎症性の下痢の他に、過敏性腸症候群（ＩＢＳ）、機能性下痢など、炎症を伴わない非炎症性の下痢がある。これらの非炎症性の下痢発症には、ストレスの関与が大きいと考えられており、ストレスがその症状を増悪させることが報告されている（非特許文献１−３）。また近年、ストレスは、視床下部室傍核のcorticotropin-releasing factor（ＣＲＦ）分泌を介して、大腸運動亢進（下痢）と大腸知覚過敏を招くことが報告されている（非特許文献４）。
従来、斯かる過敏性腸症候群の治療方法としては、心理療法、食餌療法などのほか、薬物療法として下痢等の症状を緩和するための対症療法が行われているに過ぎない。例えば、オンダンセトロン（Ondansetron）等のセロトニン（５−ＨＴ）受容体拮抗薬、トリメブチン（Trimebutine）、ロペラミド（Loperamide）等のオピオイド受容体作動薬の投与が行われているが、これらは腸の筋層間神経叢に存在する受容体の調節により、大腸運動亢進（下痢）を改善するものであり、原因を制御する薬物療法は未だ確立されていない。
一方、ライチ（学名：Litchi chinensis Sonn.）は、ムクロジ科（Sapindaceae）レイシ属の常緑小高木植物で、その果実は古くから食用に供されている。ライチの果実、種子、果皮にはポリフェノール類を多く含むことが知られており（非特許文献5）、これらにチロジナーゼ阻害作用（特許文献１）やプロテアーゼ阻害作用（特許文献２）等の薬理作用があることが報告されている。
しかしながら、ライチ果実やそれ由来のポリフェノールが、過敏性腸症候群の予防や改善に有効であることは全く知られていない。
Ｍｉｎｅｒｖａ Ｍｅｄ．２００４；９５：４４３−４５０
Ｇｕｔ ２００４；５３：１１０２−１１０８
Ｃｕｒｒ Ｐｓｙｃｈｉａｔｒｙ Ｒｅｐ．２００４；６：２１０−２１５
過敏性腸症候群 脳と腸の対話を求めて ２００６；９−１５
Ｊ． Ｎｕｔｒ． ２００６；１３６：２３６８
本発明は、ストレス性大腸運動亢進、ストレス性大腸知覚過敏等の炎症を伴わない過敏性腸症候群の予防又は改善剤を提供することに関する。
本発明者は、ストレスが大腸機能に与える影響について検討した結果、大腸内のマスト細胞の脱顆粒が炎症を伴わないストレス性の大腸機能低下に関与しており、マスト細胞の安定化とストレス性大腸運動亢進の改善及び大腸知覚過敏の改善には正の相関関係があることを明らかにしている（特願２０１０−０５３０６６、後記参考例参照）。そして、更に研究を進めたところ、ライチ果実の抽出物にマスト細胞の安定化作用があり、且つ大腸知覚過敏改善作用があることを見出し、これが、過敏性腸症候群の予防又は改善に有用であることを見出した。
すなわち、本発明は、以下の１）−３）に係るものである。
１）ライチ果実又はその抽出物を有効成分とする過敏性腸症候群の予防又は改善剤。
２）ライチ果実抽出物が、ライチ果実由来ポリフェノールである上記１）の予防又は改善剤。
３）過敏性腸症候群が、ストレス性大腸運動亢進又はストレス性大腸知覚過敏である上記１）又は２）の予防又は改善剤。
１）ライチ果実又はその抽出物を有効成分とする過敏性腸症候群の予防又は改善剤。
２）ライチ果実抽出物が、ライチ果実由来ポリフェノールである上記１）の予防又は改善剤。
３）過敏性腸症候群が、ストレス性大腸運動亢進又はストレス性大腸知覚過敏である上記１）又は２）の予防又は改善剤。
本発明によれば、ストレス性大腸運動亢進、ストレス性大腸知覚過敏等の過敏性腸症候群を予防又は改善することができる食品、医薬品、医薬部外品、飼料又はこれらに配合して使用される素材を提供することができる。
本発明において、ライチ果実とは、ムクロジ科（Sapindaceae）レイシ属のライチ（Litchi chinensis Sonn.）の果実を意味し、成熟果実、未熟果実の何れでも良い。
斯かるライチ果実は、ライチの果実、好ましくは果皮をそのまま若しくはそれを圧搾することにより得られる搾汁、植物自身を乾燥した乾燥物若しくはその粉砕物、あるいはこれらから抽出した抽出物として用いることができるが、抽出物として用いるのが好ましい。
斯かるライチ果実は、ライチの果実、好ましくは果皮をそのまま若しくはそれを圧搾することにより得られる搾汁、植物自身を乾燥した乾燥物若しくはその粉砕物、あるいはこれらから抽出した抽出物として用いることができるが、抽出物として用いるのが好ましい。
抽出物としては、ライチ果実を常温又は加温下にて抽出するか又はソックスレー抽出器等の抽出器具を用いて抽出すること等公知の抽出方法により得られる各種溶剤抽出液、その希釈液、その濃縮液又はその乾燥末が挙げられる。
公知の抽出方法としては、例えば、浸漬、煎出、浸出、還流抽出、超臨界抽出、超音波抽出及びマイクロ波抽出等が挙げられる。
公知の抽出方法としては、例えば、浸漬、煎出、浸出、還流抽出、超臨界抽出、超音波抽出及びマイクロ波抽出等が挙げられる。
抽出溶剤としては、例えば、水；メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール等のアルコール類；エチレングリコール、プロピレングリコール、ブチレングリコール等の多価アルコール類；アセトン、メチルエチルケトン等のケトン類；酢酸メチル、酢酸エチル等のエステル類；テトラヒドロフラン、ジエチルエーテル等の鎖状及び環状エーテル類；ポリエチレングリコール等のポリエーテル類；ジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素等のハロゲン化炭化水素類；ヘキサン、シクロヘキサン、石油エーテル等の炭化水素類等が挙げられ、これらは単独で又は２種以上を組み合わせて使用でき、溶剤を変えて繰り返し行うことも可能である。このうち、水；メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール等のアルコール類等を用いるのが好ましく、特に水、エタノール混液、例えば２０〜５０ｖ／ｖ％エタノール水を用いるのが好ましい。
抽出は、例えばライチの果皮や種子１質量部に対して１〜１０質量部の溶剤を用い、０〜７０℃、好ましくは１０〜３０℃で数時間〜数週間、好ましくは１２時間〜２日間、浸漬又は加熱還流することにより行うことができる。なお、水蒸気蒸留によって得ることもできる。
得られた粗抽出物は減圧濃縮などの方法で濃縮して、抽出に用いた有機溶媒を除去し、静置して、水可溶部と水不溶部に分画し、水不溶部を除去することでポリフェノールの純度を上げることができる。静置するのは室温で１２時間以上おけば良いが、必要に応じて凍結しない程度の低温下に静置してもよい。澱（水不溶部）を除去する方法は様々あり、濾紙や濾布で濾過したり、遠心分離することができる。
濾別した残渣（水不溶部）にもポリフェノール成分が含まれているので、この不溶成分に溶媒、好ましくは低級アルコールまたは低級アルコールと水との混合液、より好ましくはエタノールまたは水−エタノールを加えてさらに抽出した物を濾液に加えることでポリフェノール含有量が増加する。
本発明のライチ果実中に含有されるライチ果実由来ポリフェノールは、例えば、上記ライチ果実粗抽出液を減圧濃縮した後、膜処理（限外濾過、逆浸透等）、吸着剤で処理する等によりポリフェノールを分離濃縮し、精製することにより得ることができる。また、当該ポリフェノールを更に緑茶抽出物等を用いて低分子化したものであってもよい。尚、ポリフェノールを吸着する吸着剤としては、例えばスチレン−ビニルベンゼン系吸着剤、メタクリル酸系吸着剤、親水性ビニルポリマー、修飾デキストランゲル、ポリアクリルアミドゲル、逆相系シリカゲル、イオン交換樹脂、芳香族系合成吸着剤等が用いられる。これらの吸着剤で調製したカラムに粗抽出液をチャージし、低濃度の含水アルコール、好ましくは１０〜６０％、より好ましくは３０〜４０％の水−エタノールで溶出する。
また、ライチ果実由来ポリフェノールとしてはオリゴノール（アミノアップ化学社）等の市販品を用いることも可能である。
過敏性腸症候群（ＩＢＳ）は、一般的には、下腹部を中心とした腹痛あるいは腹部不快感、便秘あるいは下痢などの便通異常、そして排便による腹部症状の改善、の症状があり、その病態を説明しうる器質的疾患や血液生化学的異常がないもので、症状が慢性的に持続する疾患と定義されている（日本臨床 ２００６；８：１４１５）。斯かる過敏性腸症候群は、炎症を伴わないものであり、炎症を伴う下痢や知覚過敏、すなわち病原性微生物の感染や炎症性腸疾患などの炎症性の下痢や知覚過敏とは区別される。この観点から、本発明における過敏性腸症候群（ＩＢＳ）は、非炎症性の過敏性腸症候群と称することもある。
ストレスを負荷すると、脳内でcorticotropin-releasing factor（ＣＲＦ）が放出される。ＣＲＦにより仙髄副交感神経が刺激され、筋層間神経叢のアセチルコリン性ニューロンを刺激して、輪状筋の収縮を起こすことにより大腸運動亢進が起こると考えられている（日本臨床 ２００６；６４：１４０６−１４０８）。また、同時にストレスはＣＲＦの分泌を介して大腸知覚過敏を招くと考えられている（前記非特許文献４）。本発明の過敏性腸症候群には、このように、身体的あるいは精神的に与えられたストレスによって惹起される大腸運動亢進（下痢）及び大腸知覚過敏等が包含される。また、従来、痙攣性大腸、痙攣性大腸炎、神経性大腸炎、神経性下痢、粘液性大腸炎、機能性大腸炎、大腸神経症、刺激結腸症候群などと称されてきた疾患についても、炎症を伴わない限りこれらを含むものである。
そして、前述のごとく、炎症を伴わない、ストレス性の大腸機能低下は、大腸内のマスト細胞の脱顆粒と関係し、マスト細胞の安定化とストレス性大腸運動亢進の改善及び大腸知覚過敏の改善には正の相関関係が認められている（特願２０１０−０５３０６６、後記参考例参照）。
ストレスを負荷すると、脳内でcorticotropin-releasing factor（ＣＲＦ）が放出される。ＣＲＦにより仙髄副交感神経が刺激され、筋層間神経叢のアセチルコリン性ニューロンを刺激して、輪状筋の収縮を起こすことにより大腸運動亢進が起こると考えられている（日本臨床 ２００６；６４：１４０６−１４０８）。また、同時にストレスはＣＲＦの分泌を介して大腸知覚過敏を招くと考えられている（前記非特許文献４）。本発明の過敏性腸症候群には、このように、身体的あるいは精神的に与えられたストレスによって惹起される大腸運動亢進（下痢）及び大腸知覚過敏等が包含される。また、従来、痙攣性大腸、痙攣性大腸炎、神経性大腸炎、神経性下痢、粘液性大腸炎、機能性大腸炎、大腸神経症、刺激結腸症候群などと称されてきた疾患についても、炎症を伴わない限りこれらを含むものである。
そして、前述のごとく、炎症を伴わない、ストレス性の大腸機能低下は、大腸内のマスト細胞の脱顆粒と関係し、マスト細胞の安定化とストレス性大腸運動亢進の改善及び大腸知覚過敏の改善には正の相関関係が認められている（特願２０１０−０５３０６６、後記参考例参照）。
本発明のライチ果実又はその抽出物は、後記実施例に示すように、マスト細胞を安定化すると共に、ラットを用いた大腸拡張試験によりＡＷＲスコアを有意に低下させストレス性の大腸知覚過敏を改善する作用を有する。
よって、本発明のライチ果実又はその抽出物は、ヒトを含む動物に摂取又は投与して、過敏性腸症候群の予防又は改善のために使用でき、非炎症性の過敏性腸症候群の予防又は改善剤となり得る。
よって、本発明のライチ果実又はその抽出物は、ヒトを含む動物に摂取又は投与して、過敏性腸症候群の予防又は改善のために使用でき、非炎症性の過敏性腸症候群の予防又は改善剤となり得る。
当該過敏性腸症候群の予防又は改善剤は、それ自体、過敏性腸症候群の予防又は改善のための、ヒト若しくは動物用の医薬品、医薬部外品であってもよく、又は当該医薬品、医薬部外品、食品又は飼料に配合して使用される素材又は製剤であってもよい。
また、当該食品には、過敏性腸症候群の予防又は改善、ストレス性大腸運動亢進の予防又は改善、ストレス性大腸知覚過敏の予防又は改善等をコンセプトとし、必要に応じてその旨を表示した美容食品、病者用食品若しくは特定保健用食品等の機能性食品が包含される。
また、当該食品には、過敏性腸症候群の予防又は改善、ストレス性大腸運動亢進の予防又は改善、ストレス性大腸知覚過敏の予防又は改善等をコンセプトとし、必要に応じてその旨を表示した美容食品、病者用食品若しくは特定保健用食品等の機能性食品が包含される。
本発明のライチ果実又はその抽出物を含有する上記医薬品の投与形態としては、例えば錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤、シロップ剤、腸溶剤、トローチ剤、ドリンク剤等による経口投与又は注射剤、坐剤、経皮吸収剤、外用剤等による非経口投与が挙げられる。
また、このような種々の剤型の医薬製剤を調製するには、本発明のライチ果実又はその抽出物を単独で、又は他の薬学的に許容される賦形剤（ソルビトール、グルコース、乳糖、デキストリン、澱粉等の糖類、炭酸カルシウム等の無機物、結晶セルロース、蒸留水、ゴマ油、とうもろこし油、オリーブ油、菜種油等）、結合剤、滑沢剤、増量剤、崩壊剤、界面活性剤、滑沢剤、分散剤、懸濁剤、乳化剤、緩衝剤、保存剤、嬌味剤、香料、被膜剤、担体、希釈剤、抗酸化剤、細菌抑制剤等を適宜組み合わせて用いることができる。
これらの投与形態のうち、好ましい形態は経口投与であり、経口投与用製剤中の本発明のライチ果実又はその抽出物の含有量は、一般的に０．００１〜５０質量％とするのが好ましく、０．０１〜１０質量％とするのがより好ましい。
また、このような種々の剤型の医薬製剤を調製するには、本発明のライチ果実又はその抽出物を単独で、又は他の薬学的に許容される賦形剤（ソルビトール、グルコース、乳糖、デキストリン、澱粉等の糖類、炭酸カルシウム等の無機物、結晶セルロース、蒸留水、ゴマ油、とうもろこし油、オリーブ油、菜種油等）、結合剤、滑沢剤、増量剤、崩壊剤、界面活性剤、滑沢剤、分散剤、懸濁剤、乳化剤、緩衝剤、保存剤、嬌味剤、香料、被膜剤、担体、希釈剤、抗酸化剤、細菌抑制剤等を適宜組み合わせて用いることができる。
これらの投与形態のうち、好ましい形態は経口投与であり、経口投与用製剤中の本発明のライチ果実又はその抽出物の含有量は、一般的に０．００１〜５０質量％とするのが好ましく、０．０１〜１０質量％とするのがより好ましい。
本発明のライチ果実又はその抽出物を含有する食品の形態としては、例えば、パン、麺類等に代表される小麦粉加工食品、お粥、炊き込みご飯等の米加工食品、ビスケット、ケーキ、ゼリー、チョコレート、せんべい、アイスクリーム等の菓子類、豆腐、その加工食品等の大豆加工食品、清涼飲料、果汁飲料、乳飲料、炭酸飲料等の飲料類、ヨーグルト、チーズ、バター、牛乳等の乳製品、醤油、ソース、味噌、マヨネーズ、ドレッシング等の調味料、ハム、ベーコン、ソーセージ等の蓄肉、蓄肉加工食品、はんぺん、ちくわ、魚の缶詰等の水産加工食品、調理油ならびにフライ用油等が挙げられる。また、この他、当該製剤を配合して、カプセル等の錠剤食、濃厚流動食、自然流動食、半消化態栄養食、成分栄養食、ドリンク栄養食等の経口経腸栄養食品、機能性食品等の形態とすることもできる。
また、飼料としては、ウサギ、ラット、マウス等に用いる小動物用飼料、犬、猫、小鳥、リス等に用いるペットフード等の飼料等が挙げられる。
種々の形態の食品や飼料を調製するには、本発明のライチ果実又はその抽出物を単独で、又は他の食品材料や、溶剤、軟化剤、油、乳化剤、防腐剤、香科、安定剤、着色剤、酸化防止剤、保湿剤、増粘剤等を適宜組み合わせて用いることができる。当該食品中の本発明のライチ果実又はその抽出物の含有量は、一般的に固形分濃度として０．００１〜５０質量％とするのが好ましく、０．０１〜１０質量％とするのがより好ましい。
また、飼料としては、ウサギ、ラット、マウス等に用いる小動物用飼料、犬、猫、小鳥、リス等に用いるペットフード等の飼料等が挙げられる。
種々の形態の食品や飼料を調製するには、本発明のライチ果実又はその抽出物を単独で、又は他の食品材料や、溶剤、軟化剤、油、乳化剤、防腐剤、香科、安定剤、着色剤、酸化防止剤、保湿剤、増粘剤等を適宜組み合わせて用いることができる。当該食品中の本発明のライチ果実又はその抽出物の含有量は、一般的に固形分濃度として０．００１〜５０質量％とするのが好ましく、０．０１〜１０質量％とするのがより好ましい。
上記医薬品、医薬部外品、食品又は飼料における本発明のライチ果実又はその抽出物の摂取・投与量は、効果が得られる量であれば特に限定されない。また、その摂取・投与量は、対象者の状態、体重、性別、年齢又はその他の要因に従って変動し得るが、成人（６０ｋｇ）１人当たりの１日の投与又は摂取量としては、本発明のライチ果実又はその抽出物（乾燥物換算）として、例えば０．００１〜１００００ｍｇとするのが好ましく、更に０．０１〜５０００ｍｇ、特に０．３〜３０００ｍｇとするのが好ましい。また、当該製剤は、任意の摂取・投与計画に従って摂取・投与され得るが、１日１回〜数回に分け、数週間〜数カ月間継続して摂取・投与することが好ましい。
また、上記医薬品、医薬部外品又は食品の摂取又は投与対象者としては、それを必要としていれば特に限定されないが、過敏性腸症候群、ストレス性大腸運動亢進（下痢）及び大腸知覚過敏等の予防又は改善又は治療を目的とするヒトやヒト以外の哺乳動物が好ましい。尚、当該対象者には、過敏性腸症候群の症状が認められる者及びそのおそれがある者やその疾患・症状の予防を期待する者も含まれる。
また、上記医薬品、医薬部外品又は食品の摂取又は投与対象者としては、それを必要としていれば特に限定されないが、過敏性腸症候群、ストレス性大腸運動亢進（下痢）及び大腸知覚過敏等の予防又は改善又は治療を目的とするヒトやヒト以外の哺乳動物が好ましい。尚、当該対象者には、過敏性腸症候群の症状が認められる者及びそのおそれがある者やその疾患・症状の予防を期待する者も含まれる。
参考例１
＜ストレスが血中成分に与える影響解析＞
１．方法
雄性Ｗｉｓｔａｒラット（９−１０週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で７日間飼育した後、各群間に体重差がないように４群に群分け（Ｎ＝１０匹/群）した。２群は自由摂食下で、２群は絶食下で２０時間飼育した。
自由摂食群、絶食群各１群は、イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した（部分拘束ストレス、ストレス群）。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の固定を解除した。対照群は、自由摂食群、絶食群各１群をイソフルラン吸入麻酔処理した後、覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した。
麻酔下で腹部大動脈より全採血し、血中ヒスタミン、セロトニン、（ＥＬＩＳＡ法：Ｈ
ｉｓｔａｍｉｎｅ ＥＩＡ Ｋｉｔ;Ｏｘｆｏｒｄ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ、Ｓｅｒｏｔｏｎｉｎ ＥＬＩＳＡ；ＤＲＧ）、ＣＲＦ量（ＥＬＩＳＡ法：Ｍｏｕｓｅ／Ｒａｔ ＣＲＦ−ＨＳ＿ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ、矢内原研究所）、血中サイトカイン量（ＩＬ−１β，ＩＬ−２，ＩＬ−４，ＩＬ−６，ＩＬ−１０，ＩＬ−１３，ＴＮＦ−α）（マイクロビーズアレイ: Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）をそれぞれ定量した。
＜ストレスが血中成分に与える影響解析＞
１．方法
雄性Ｗｉｓｔａｒラット（９−１０週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で７日間飼育した後、各群間に体重差がないように４群に群分け（Ｎ＝１０匹/群）した。２群は自由摂食下で、２群は絶食下で２０時間飼育した。
自由摂食群、絶食群各１群は、イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した（部分拘束ストレス、ストレス群）。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の固定を解除した。対照群は、自由摂食群、絶食群各１群をイソフルラン吸入麻酔処理した後、覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した。
麻酔下で腹部大動脈より全採血し、血中ヒスタミン、セロトニン、（ＥＬＩＳＡ法：Ｈ
ｉｓｔａｍｉｎｅ ＥＩＡ Ｋｉｔ;Ｏｘｆｏｒｄ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ、Ｓｅｒｏｔｏｎｉｎ ＥＬＩＳＡ；ＤＲＧ）、ＣＲＦ量（ＥＬＩＳＡ法：Ｍｏｕｓｅ／Ｒａｔ ＣＲＦ−ＨＳ＿ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ、矢内原研究所）、血中サイトカイン量（ＩＬ−１β，ＩＬ−２，ＩＬ−４，ＩＬ−６，ＩＬ−１０，ＩＬ−１３，ＴＮＦ−α）（マイクロビーズアレイ: Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）をそれぞれ定量した。
雄性Ｗｉｓｔａｒラット（９週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で７日間飼育した後、各群間に体重差がないように２群に群分け（Ｎ＝３匹/群）した。
ストレス群は、イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の固定を解除した。麻酔下にて腹部大動脈からの全採血により安楽死させた後、結腸7区画（盲結腸移行部より１ｃｍ下流から１ｃｍ長に７分割）を摘出後、各区画を０．５ ｍＬ ｓｕｂｓｔａｎｃｅ Ｐ/Ｒｉｎｇｅｒ ｓｏｌｕｔｉｏｎ(６０μＭ)中で６０分間インキュベートした。上清を回収し、ＥＬＩＳＡ法（Ｈｉｓｔａｍｉｎｅ ＥＩＡ Ｋｉｔ;Ｏｘｆｏｒｄ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ）により結腸組織からのヒスタミン放出量を定量した。
ストレス群は、イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の固定を解除した。麻酔下にて腹部大動脈からの全採血により安楽死させた後、結腸7区画（盲結腸移行部より１ｃｍ下流から１ｃｍ長に７分割）を摘出後、各区画を０．５ ｍＬ ｓｕｂｓｔａｎｃｅ Ｐ/Ｒｉｎｇｅｒ ｓｏｌｕｔｉｏｎ(６０μＭ)中で６０分間インキュベートした。上清を回収し、ＥＬＩＳＡ法（Ｈｉｓｔａｍｉｎｅ ＥＩＡ Ｋｉｔ;Ｏｘｆｏｒｄ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ）により結腸組織からのヒスタミン放出量を定量した。
２．結果
部分拘束ストレスを負荷した場合、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、血中ＩＬ−４，ＩＬ−６，ＩＬ−１３量が絶食時、非絶食時共に高い傾向であった（表１）。絶食時の血中ＩＬ−１，ＩＬ−２量は、ストレス負荷群で低い傾向であった。その他のサイトカイン及びＣＲＦ量は、両群で差がなかった。
部分拘束ストレスを負荷した場合、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、血中ヒスタミン量（表２）が有意に高く、血中セロトニン量は増加傾向であった（表２）。また、Ｓｕｂｓｔａｎｃｅ Ｐ刺激による摘出結腸からのヒスタミン放出量が有意に高かった（表３）。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、対照群に対するＳｔｕｄｅｎｔ‘ｓ ｔ−ｔｅｓｔを行なった（＊ｐ＜０．０５）。
部分拘束ストレスを負荷した場合、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、血中ＩＬ−４，ＩＬ−６，ＩＬ−１３量が絶食時、非絶食時共に高い傾向であった（表１）。絶食時の血中ＩＬ−１，ＩＬ−２量は、ストレス負荷群で低い傾向であった。その他のサイトカイン及びＣＲＦ量は、両群で差がなかった。
部分拘束ストレスを負荷した場合、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、血中ヒスタミン量（表２）が有意に高く、血中セロトニン量は増加傾向であった（表２）。また、Ｓｕｂｓｔａｎｃｅ Ｐ刺激による摘出結腸からのヒスタミン放出量が有意に高かった（表３）。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、対照群に対するＳｔｕｄｅｎｔ‘ｓ ｔ−ｔｅｓｔを行なった（＊ｐ＜０．０５）。
参考例２
＜ストレスが大腸運動に与える影響解析＞
１．方法
雄性Ｗｉｓｔａｒラット（９−１０週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で７日間飼育した後、各群間に体重差がないように２群に群分け（Ｎ＝１０匹/群）した。１群（ストレス群）は、イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置し、その間の排泄糞便数を測定した（Ｗｉｌｌｉａｍｓ ＣＬ． ｅｔ ａｌ. Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ １９８８; ９４: ６１１−６２１）。なお、排泄糞便数は、大腸運動の指標である。対照群は、イソフルラン吸入麻酔処理した後、覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した。
雄性ＷｓＲＣ−＋／＋（野生型）ラット、ＷｓＲＣ−Ｗｓ／Ｗｓ（マスト細胞欠損）ラット（９−１２週齢: 日本ＳＬＣ）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で７日間飼育した後、各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝９匹/群、平均体重２６０ｇ）した。
ストレス群は、イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置し、その間の排泄糞便数を測定した。
＜ストレスが大腸運動に与える影響解析＞
１．方法
雄性Ｗｉｓｔａｒラット（９−１０週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で７日間飼育した後、各群間に体重差がないように２群に群分け（Ｎ＝１０匹/群）した。１群（ストレス群）は、イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置し、その間の排泄糞便数を測定した（Ｗｉｌｌｉａｍｓ ＣＬ． ｅｔ ａｌ. Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ １９８８; ９４: ６１１−６２１）。なお、排泄糞便数は、大腸運動の指標である。対照群は、イソフルラン吸入麻酔処理した後、覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した。
雄性ＷｓＲＣ−＋／＋（野生型）ラット、ＷｓＲＣ−Ｗｓ／Ｗｓ（マスト細胞欠損）ラット（９−１２週齢: 日本ＳＬＣ）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で７日間飼育した後、各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝９匹/群、平均体重２６０ｇ）した。
ストレス群は、イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置し、その間の排泄糞便数を測定した。
２．結果
Ｗｉｓｔａｒラットに、部分拘束ストレスを負荷した場合、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、排泄糞便数が有意に増加していた（表４）。
野生型（＋／＋）ラットでは、部分拘束ストレス負荷により、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、排泄糞便数が有意に増加していた（表５）。このストレス負荷による排便数の増加は、マスト細胞欠損（Ｗｓ／Ｗｓ）ラットでは認められなかった。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、対照群に対するＳｔｕｄｅｎｔ‘ｓ ｔ−ｔｅｓｔを行なった（＊＊＊ｐ＜０．００１）。
Ｗｉｓｔａｒラットに、部分拘束ストレスを負荷した場合、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、排泄糞便数が有意に増加していた（表４）。
野生型（＋／＋）ラットでは、部分拘束ストレス負荷により、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、排泄糞便数が有意に増加していた（表５）。このストレス負荷による排便数の増加は、マスト細胞欠損（Ｗｓ／Ｗｓ）ラットでは認められなかった。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、対照群に対するＳｔｕｄｅｎｔ‘ｓ ｔ−ｔｅｓｔを行なった（＊＊＊ｐ＜０．００１）。
参考例３ ストレスが大腸知覚に与える影響解析
＜ストレスが大腸知覚に与える影響解析＞
１．方法
２０時間絶食させた雄性Ｗｉｓｔａｒラット（８−１０週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝８匹/群）した。
ストレス群は、イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の固定を解除し、大腸拡張試験により大腸知覚を既報の方法（Ｗｉｎｓｔｏｎ Ｊ ｅｔ ａｌ．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ ２００７； １３２： ６１５−６２７）で評価した。すなわち、麻酔下ラットの大腸に経肛門的にバルーンカテーテル（シリコーンフォーリーカテーテル、２．０ ｍｍ（６Ｆｒ）、東レ・メディカル）を４cm挿入した。覚醒後、測定用ケージ内でバルーンカテーテルへの注水により、大腸を段階的に拡張させた。下記に示す各拡張容量における「Ａｂｄｏｍｉｎａｌ Ｗｉｔｈｄｒａｗａｌ Ｒｅｆｌｅｘ （ＡＷＲ）スコア」をブラインド評価し、大腸知覚を半定量的に評価した。
２０時間絶食させた、雄性ＷｓＲＣ−＋／＋（野生型）ラット、ＷｓＲＣ−Ｗｓ／Ｗｓ（マスト細胞欠損）ラット（９−１３週齢: 日本ＳＬＣ）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で飼育した後、各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝８−１２匹/群、平均体重２５０ｇ）した。
イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の拘束を解除し、大腸拡張試験により大腸知覚を評価した。
＜ストレスが大腸知覚に与える影響解析＞
１．方法
２０時間絶食させた雄性Ｗｉｓｔａｒラット（８−１０週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝８匹/群）した。
ストレス群は、イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の固定を解除し、大腸拡張試験により大腸知覚を既報の方法（Ｗｉｎｓｔｏｎ Ｊ ｅｔ ａｌ．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ ２００７； １３２： ６１５−６２７）で評価した。すなわち、麻酔下ラットの大腸に経肛門的にバルーンカテーテル（シリコーンフォーリーカテーテル、２．０ ｍｍ（６Ｆｒ）、東レ・メディカル）を４cm挿入した。覚醒後、測定用ケージ内でバルーンカテーテルへの注水により、大腸を段階的に拡張させた。下記に示す各拡張容量における「Ａｂｄｏｍｉｎａｌ Ｗｉｔｈｄｒａｗａｌ Ｒｅｆｌｅｘ （ＡＷＲ）スコア」をブラインド評価し、大腸知覚を半定量的に評価した。
２０時間絶食させた、雄性ＷｓＲＣ−＋／＋（野生型）ラット、ＷｓＲＣ−Ｗｓ／Ｗｓ（マスト細胞欠損）ラット（９−１３週齢: 日本ＳＬＣ）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で飼育した後、各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝８−１２匹/群、平均体重２５０ｇ）した。
イソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の拘束を解除し、大腸拡張試験により大腸知覚を評価した。
≪Ａｂｄｏｍｉｎａｌ Ｗｉｔｈｄｒａｗａｌ Ｒｅｆｌｅｘ （ＡＷＲ）スコア≫
０：ｎｏ ｂｅｈａｖｉｏｒａｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅ （変化なし）
１：ｂｒｉｅｆ ｈｅａｄ ｍｏｖｅｍｅｎｔｓ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ
ｉｍｍｏｂｉｌｉｔｙ （頭を動かした後、静止）
２：ｃｏｎｔｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ａｂｄｏｍｉｎａｌ ｍｕｓｃｌｅ
ｗｉｔｈｏｕｔ ｌｉｆｔｉｎｇ ｏｆ ａｂｄｏｍｅｎ （腹筋の収縮）
３：ｌｉｆｔｉｎｇ ｏｆ ａｂｄｏｍｅｎ （腹部を上げる）
４：ｂｏｄｙ ａｒｃｈｉｎｇ ａｎｄ ｌｉｆｔｉｎｇ ｏｆ
ｐｅｌｖｉｃ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ （体をアーチ状にし、骨盤を持ち上げる）
０：ｎｏ ｂｅｈａｖｉｏｒａｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅ （変化なし）
１：ｂｒｉｅｆ ｈｅａｄ ｍｏｖｅｍｅｎｔｓ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ
ｉｍｍｏｂｉｌｉｔｙ （頭を動かした後、静止）
２：ｃｏｎｔｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ａｂｄｏｍｉｎａｌ ｍｕｓｃｌｅ
ｗｉｔｈｏｕｔ ｌｉｆｔｉｎｇ ｏｆ ａｂｄｏｍｅｎ （腹筋の収縮）
３：ｌｉｆｔｉｎｇ ｏｆ ａｂｄｏｍｅｎ （腹部を上げる）
４：ｂｏｄｙ ａｒｃｈｉｎｇ ａｎｄ ｌｉｆｔｉｎｇ ｏｆ
ｐｅｌｖｉｃ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ （体をアーチ状にし、骨盤を持ち上げる）
２．結果
Ｗｉｓｔａｒラットに、部分拘束ストレスを負荷した場合、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、より少ない拡張容量で大きなＡＷＲ応答を示した（図１）。
野生型（＋／＋）ラットでは、部分拘束ストレス負荷により、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、各拡張容量におけるＡＷＲスコアが有意に高かった（図１）。このストレス負荷によるＡＷＲ応答の上昇は、マスト細胞欠損（Ｗｓ／Ｗｓ）ラットでは認められなかった（図１）。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、対照群に対するＭａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙ Ｕ ｔｅｓｔを行なった（＊ｐ＜０．０５、＊＊ｐ＜０．０１、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
Ｗｉｓｔａｒラットに、部分拘束ストレスを負荷した場合、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、より少ない拡張容量で大きなＡＷＲ応答を示した（図１）。
野生型（＋／＋）ラットでは、部分拘束ストレス負荷により、対照群（ストレス負荷なし）に比べて、各拡張容量におけるＡＷＲスコアが有意に高かった（図１）。このストレス負荷によるＡＷＲ応答の上昇は、マスト細胞欠損（Ｗｓ／Ｗｓ）ラットでは認められなかった（図１）。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、対照群に対するＭａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙ Ｕ ｔｅｓｔを行なった（＊ｐ＜０．０５、＊＊ｐ＜０．０１、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
参考例４
＜ストレス性大腸運動亢進に対する各種薬剤の影響＞
１．方法
雄性Ｗｉｓｔａｒラット（９週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で５日間飼育した後、各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝１０匹/群）した。
ストレス群は、イソフルラン吸入麻酔下、表６示す各種薬剤（メチルセルロース水溶液（和光純薬、０．５ ｗ／ｖ％ メチルセルロース４００溶液、０．５ ｗ／ｖ％）に懸濁）又はメチルセルロース０．５ ｗ／ｖ％水溶液を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）し、覚醒下にて個別ケージ内に１時間静置した。対照群には、メチルセルロース０．５ ｗ／ｖ％水溶液を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）した。ストレス群はイソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置し、その間の排泄糞便数を測定した。
＜ストレス性大腸運動亢進に対する各種薬剤の影響＞
１．方法
雄性Ｗｉｓｔａｒラット（９週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で５日間飼育した後、各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝１０匹/群）した。
ストレス群は、イソフルラン吸入麻酔下、表６示す各種薬剤（メチルセルロース水溶液（和光純薬、０．５ ｗ／ｖ％ メチルセルロース４００溶液、０．５ ｗ／ｖ％）に懸濁）又はメチルセルロース０．５ ｗ／ｖ％水溶液を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）し、覚醒下にて個別ケージ内に１時間静置した。対照群には、メチルセルロース０．５ ｗ／ｖ％水溶液を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）した。ストレス群はイソフルラン吸入麻酔下、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置し、その間の排泄糞便数を測定した。
２．結果
薬剤非投与群（メチルセルロース投与）では、部分拘束ストレス負荷により、対照群に対して排泄糞便数が有意に増加した。５−ＨＴ３受容体拮抗薬（ｏｎｄａｎｓｅｔｒｏｎ）、マスト細胞安定化剤（ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ）、５−ＨＴ４受容体作動薬（ｍｏｓａｐｒｉｄｅ）、オピオイド受容体作動薬（ｔｒｉｍｅｂｕｔｉｎｅ）、オピオイド受容体作動薬（ｌｏｐｅｒａｍｉｄｅ）を前投与した場合、ストレス負荷による排便数の増加は有意に抑制された(表７)。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、Ｓｃｈｅｆｆｅ ｔｅｓｔを行なった（＊ｐ＜０．０５、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
薬剤非投与群（メチルセルロース投与）では、部分拘束ストレス負荷により、対照群に対して排泄糞便数が有意に増加した。５−ＨＴ３受容体拮抗薬（ｏｎｄａｎｓｅｔｒｏｎ）、マスト細胞安定化剤（ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ）、５−ＨＴ４受容体作動薬（ｍｏｓａｐｒｉｄｅ）、オピオイド受容体作動薬（ｔｒｉｍｅｂｕｔｉｎｅ）、オピオイド受容体作動薬（ｌｏｐｅｒａｍｉｄｅ）を前投与した場合、ストレス負荷による排便数の増加は有意に抑制された(表７)。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、Ｓｃｈｅｆｆｅ ｔｅｓｔを行なった（＊ｐ＜０．０５、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
参考例５
＜定常時の大腸運動に対する各種薬剤の影響＞
１．方法
雄性Ｗｉｓｔａｒラット（９週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で５日間飼育した後、各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝５匹/群）した。
表６に示す各種薬剤を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）し、覚醒下にて個別ケージ内にて１２時間（暗期）飼育し、その間の排泄糞便数を測定した。対照群には、メチルセルロース０．５ ｖ／ｗ ％水溶液を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）した。
＜定常時の大腸運動に対する各種薬剤の影響＞
１．方法
雄性Ｗｉｓｔａｒラット（９週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）自由摂食下で５日間飼育した後、各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝５匹/群）した。
表６に示す各種薬剤を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）し、覚醒下にて個別ケージ内にて１２時間（暗期）飼育し、その間の排泄糞便数を測定した。対照群には、メチルセルロース０．５ ｖ／ｗ ％水溶液を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）した。
２．結果
オピオイド受容体作動薬（ｌｏｐｅｒａｍｉｄｅ）を前投与した場合、排泄糞便数は対照群（メチルセルロース投与）に比べて有意に少なかった（表８）。一方、マスト細胞安定化剤（ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ）、５−ＨＴ３受容体拮抗薬（ｏｎｄａｎｓｅｔｒｏｎ）、５−ＨＴ４受容体作動薬（ｍｏｓａｐｒｉｄｅ）、及びオピオイド受容体作動薬（ｔｒｉｍｅｂｕｔｉｎｅ）は排泄糞便数に影響が認められなかった。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、Ｓｃｈｅｆｆｅ ｔｅｓｔを行なった（＊＊＊ｐ＜０．００１）。
オピオイド受容体作動薬（ｌｏｐｅｒａｍｉｄｅ）を前投与した場合、排泄糞便数は対照群（メチルセルロース投与）に比べて有意に少なかった（表８）。一方、マスト細胞安定化剤（ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ）、５−ＨＴ３受容体拮抗薬（ｏｎｄａｎｓｅｔｒｏｎ）、５−ＨＴ４受容体作動薬（ｍｏｓａｐｒｉｄｅ）、及びオピオイド受容体作動薬（ｔｒｉｍｅｂｕｔｉｎｅ）は排泄糞便数に影響が認められなかった。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、Ｓｃｈｅｆｆｅ ｔｅｓｔを行なった（＊＊＊ｐ＜０．００１）。
参考例６
＜ストレス性大腸知覚過敏に対するマスト細胞安定化剤の影響＞
１．方法
２０時間絶食させた雄性Ｗｉｓｔａｒラット（８−１０週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝８匹/群）した。
マスト細胞安定化剤投与群は、イソフルラン吸入麻酔下、マスト細胞安定化剤（ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ，メチルセルロース溶液に懸濁）を胃内投与（５ｍｇ／ｋｇ体重）と同時に、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。対照群には、メチルセルロース０．５ ｗ／ｖ％水溶液を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）と同時に、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の固定を解除し、参考例３と同様に大腸拡張試験により大腸知覚を評価した。
＜ストレス性大腸知覚過敏に対するマスト細胞安定化剤の影響＞
１．方法
２０時間絶食させた雄性Ｗｉｓｔａｒラット（８−１０週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝８匹/群）した。
マスト細胞安定化剤投与群は、イソフルラン吸入麻酔下、マスト細胞安定化剤（ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ，メチルセルロース溶液に懸濁）を胃内投与（５ｍｇ／ｋｇ体重）と同時に、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。対照群には、メチルセルロース０．５ ｗ／ｖ％水溶液を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）と同時に、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の固定を解除し、参考例３と同様に大腸拡張試験により大腸知覚を評価した。
２．結果
Ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ投与ラットでは、対照群（メチルセルロース投与）に比べて、各拡張容量におけるＡＷＲスコアが有意に低かった（図２）。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、対照群に対するＭａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙ Ｕ ｔｅｓｔを行なった（＊＊ｐ＜０．０１、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
Ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ投与ラットでは、対照群（メチルセルロース投与）に比べて、各拡張容量におけるＡＷＲスコアが有意に低かった（図２）。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、対照群に対するＭａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙ Ｕ ｔｅｓｔを行なった（＊＊ｐ＜０．０１、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
以上の結果から、マスト細胞の安定化がストレス性の大腸運動亢進改善及びストレス性の大腸知覚過敏改善に寄与しているものと考えられた。
参考例７
＜マスト細胞安定化剤のスクリーニング系の構築＞
１．方法
ラット好塩基球性白血病細胞ＲＢＬ−２Ｈ３細胞（ＡＴＣＣ）を１０％ ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ）、ペニシリン（１００ ｕｎｉｔ／ｍＬ）、ストレプトマイシン（１００ μｇ／ｍＬ）を含むＭＥＭ培地中で増殖させた後、２４−ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅにＲＢＬ−２Ｈ３細胞を８×１０3 ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌ（Ｎ＝３）となるように播き、１０％ ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ）、ペニシリン（１００ ｕｎｉｔ／ｍＬ）、ストレプトマイシン（１００ μｇ／ｍＬ）を含むＲＰＭＩ１６４０培地で３日間培養した。ＰＢＳ（−）で２回洗浄した後、ｃｏｍｐｏｕｎｄ ４８／８０（０〜１５０μg／ｍＬ フェノールレッド、血清、抗生物質を含まないＲＰＭＩ培地）で１５分間インキュベートした。
また、同様に、ＲＰＭＩ１６４０培地で３日間培養したＲＢＬ−２Ｈ３細胞を、ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ（０−４００μＭ）を含むＲＰＭＩ培地で室温で３０分間インキュベートした後、ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ（０−４００μＭ）＋１５μｇ／ｍＬ ｃｏｍｐｏｕｎｄ ４８／８０を含むＲＰＭＩ培地（フェノールレッド、血清、抗生物質不含）で、室温で１５分間インキュベートした。
各ｗｅｌｌより培養上清を５０μＬずつ、次に各ｗｅｌｌに５００μＬの０．１％ Ｔ
ｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を加えて細胞を溶解させ５０μＬずつを採取した。これにβ−ヘキソサミニダーゼの基質である２ｍＭ ｐ−ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓａｍｉｎｉｄｅを含む０．２Ｍ クエン酸緩衝液（ｐＨ４．５）５０μＬを加えて３７℃で２時間反応させた。反応終了後、１５０μＬ １Ｍ トリス緩衝液（ｐＨ９．０）で停止後、マイクロプレートリーダーにて４０５ｎｍの吸光度を測定し、細胞内外のβ−ヘキソサミニダーゼ活性を測定し、β−ヘキソサミニダーゼ分泌（脱顆粒）（Ｏ．Ｄ．上清/(Ｏ．Ｄ．上清＋Ｏ．Ｄ．細胞溶解液)×１００(％)）を算出した。
＜マスト細胞安定化剤のスクリーニング系の構築＞
１．方法
ラット好塩基球性白血病細胞ＲＢＬ−２Ｈ３細胞（ＡＴＣＣ）を１０％ ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ）、ペニシリン（１００ ｕｎｉｔ／ｍＬ）、ストレプトマイシン（１００ μｇ／ｍＬ）を含むＭＥＭ培地中で増殖させた後、２４−ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅにＲＢＬ−２Ｈ３細胞を８×１０3 ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌ（Ｎ＝３）となるように播き、１０％ ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ）、ペニシリン（１００ ｕｎｉｔ／ｍＬ）、ストレプトマイシン（１００ μｇ／ｍＬ）を含むＲＰＭＩ１６４０培地で３日間培養した。ＰＢＳ（−）で２回洗浄した後、ｃｏｍｐｏｕｎｄ ４８／８０（０〜１５０μg／ｍＬ フェノールレッド、血清、抗生物質を含まないＲＰＭＩ培地）で１５分間インキュベートした。
また、同様に、ＲＰＭＩ１６４０培地で３日間培養したＲＢＬ−２Ｈ３細胞を、ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ（０−４００μＭ）を含むＲＰＭＩ培地で室温で３０分間インキュベートした後、ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ（０−４００μＭ）＋１５μｇ／ｍＬ ｃｏｍｐｏｕｎｄ ４８／８０を含むＲＰＭＩ培地（フェノールレッド、血清、抗生物質不含）で、室温で１５分間インキュベートした。
各ｗｅｌｌより培養上清を５０μＬずつ、次に各ｗｅｌｌに５００μＬの０．１％ Ｔ
ｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を加えて細胞を溶解させ５０μＬずつを採取した。これにβ−ヘキソサミニダーゼの基質である２ｍＭ ｐ−ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓａｍｉｎｉｄｅを含む０．２Ｍ クエン酸緩衝液（ｐＨ４．５）５０μＬを加えて３７℃で２時間反応させた。反応終了後、１５０μＬ １Ｍ トリス緩衝液（ｐＨ９．０）で停止後、マイクロプレートリーダーにて４０５ｎｍの吸光度を測定し、細胞内外のβ−ヘキソサミニダーゼ活性を測定し、β−ヘキソサミニダーゼ分泌（脱顆粒）（Ｏ．Ｄ．上清/(Ｏ．Ｄ．上清＋Ｏ．Ｄ．細胞溶解液)×１００(％)）を算出した。
２．結果
ｃｏｍｐｏｕｎｄ ４８／８０は濃度依存的に脱顆粒を促進した（表９）。ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅは濃度依存的に脱顆粒を抑制した（表１０）。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、Ｆｉｓｈｅｒ’ｓ ＰＬＳＤを行なった（＊＊ｐ＜０．０１、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
ｃｏｍｐｏｕｎｄ ４８／８０は濃度依存的に脱顆粒を促進した（表９）。ｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅは濃度依存的に脱顆粒を抑制した（表１０）。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、Ｆｉｓｈｅｒ’ｓ ＰＬＳＤを行なった（＊＊ｐ＜０．０１、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
実施例１ ライチ果実抽出物の調製
（１）ライチ果実抽出物１
ライチ（ムクロジ科レイシ（Litchi chinensis）の果実、中国産）４９５ｇを凍結乾燥後、ミルにて粉砕し、５０％エタノール水１Ｌを加え、室温下、１日間浸漬抽出した。不溶物をろ別したのち、減圧濃縮、凍結乾燥を行い、ライチ果実抽出物６２．５ｇを得た。得られたライチ果実抽出物を５０ｖ／ｖ％エタノール水にエキス濃度１ｗ／ｖ％となるように溶解して、ライチ果実抽出物１とした。
（１）ライチ果実抽出物１
ライチ（ムクロジ科レイシ（Litchi chinensis）の果実、中国産）４９５ｇを凍結乾燥後、ミルにて粉砕し、５０％エタノール水１Ｌを加え、室温下、１日間浸漬抽出した。不溶物をろ別したのち、減圧濃縮、凍結乾燥を行い、ライチ果実抽出物６２．５ｇを得た。得られたライチ果実抽出物を５０ｖ／ｖ％エタノール水にエキス濃度１ｗ／ｖ％となるように溶解して、ライチ果実抽出物１とした。
（２）ライチ果実抽出物２
市販の「オリゴノール」（アミノアップ化学社製）を、５０ｖ／ｖ％エタノール水に濃度１ｗ／ｖ％となるように溶解して、ライチ果実抽出物２とした。
市販の「オリゴノール」（アミノアップ化学社製）を、５０ｖ／ｖ％エタノール水に濃度１ｗ／ｖ％となるように溶解して、ライチ果実抽出物２とした。
実施例２ ライチ果実抽出物のマスト細胞安定化作用
１．方法
ラット好塩基球性白血病細胞ＲＢＬ−２Ｈ３細胞（ＡＴＣＣ）を１０％ ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ）、ペニシリン（１００ ｕｎｉｔ／ｍＬ）、ストレプトマイシン（１００ μｇ／ｍＬ）を含むＭＥＭ培地中で増殖させた後、２４−ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅにＲＢＬ−２Ｈ３細胞を８×１０3 ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌ（Ｎ＝３）となるように播き、１０％ ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ）、ペニシリン（１００ ｕｎｉｔ／ｍＬ）、ストレプトマイシン（１００ μｇ／ｍＬ）を含むＲＰＭＩ１６４０培地で２日間培養した。ＰＢＳ（−）で２回洗浄した後、実施例１で調製したライチ果実抽出物１及び２（０．００１％）を其々含むＲＰＭＩ１６４０培地で３０分間インキュベートした後、同ライチ抽出物サンプル１又は２（０．００１％）、及びｃｏｍｐｏｕｎｄ ４８／８０（５０ μｇ/ｍL）を含むＲＰＭＩ培地（フェノールレッド、血清、抗生物質を含まない）で１５分間インキュベートした。
各ｗｅｌｌより培養上清を５０μＬずつ、次に各ｗｅｌｌに５００μＬの０．１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を加えて細胞を溶解させ５０μＬずつを採取した。これにβ−ヘキソサミニダーゼの基質である２ｍＭ ｐ−ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓａｍｉｎｉｄｅを含む０．２Ｍ クエン酸緩衝液（ｐＨ４．５）５０μＬを加えて３７℃で２時間反応させた。反応終了後、１５０μＬ １Ｍ トリス緩衝液（ｐＨ９．０）で停止後、マイクロプレートリーダーにて４０５ｎｍの吸光度を測定し、細胞内外のβ−ヘキソサミニダーゼ活性を測定し、β−ヘキソサミニダーゼ分泌（脱顆粒）（Ｏ．Ｄ．上清/(Ｏ．Ｄ．上清＋Ｏ．Ｄ．細胞溶解液)×１００(％)）を算出した。ポジティブコントロールとしてｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ（４００μＭ）を用いた。
１．方法
ラット好塩基球性白血病細胞ＲＢＬ−２Ｈ３細胞（ＡＴＣＣ）を１０％ ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ）、ペニシリン（１００ ｕｎｉｔ／ｍＬ）、ストレプトマイシン（１００ μｇ／ｍＬ）を含むＭＥＭ培地中で増殖させた後、２４−ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅにＲＢＬ−２Ｈ３細胞を８×１０3 ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌ（Ｎ＝３）となるように播き、１０％ ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ）、ペニシリン（１００ ｕｎｉｔ／ｍＬ）、ストレプトマイシン（１００ μｇ／ｍＬ）を含むＲＰＭＩ１６４０培地で２日間培養した。ＰＢＳ（−）で２回洗浄した後、実施例１で調製したライチ果実抽出物１及び２（０．００１％）を其々含むＲＰＭＩ１６４０培地で３０分間インキュベートした後、同ライチ抽出物サンプル１又は２（０．００１％）、及びｃｏｍｐｏｕｎｄ ４８／８０（５０ μｇ/ｍL）を含むＲＰＭＩ培地（フェノールレッド、血清、抗生物質を含まない）で１５分間インキュベートした。
各ｗｅｌｌより培養上清を５０μＬずつ、次に各ｗｅｌｌに５００μＬの０．１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を加えて細胞を溶解させ５０μＬずつを採取した。これにβ−ヘキソサミニダーゼの基質である２ｍＭ ｐ−ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓａｍｉｎｉｄｅを含む０．２Ｍ クエン酸緩衝液（ｐＨ４．５）５０μＬを加えて３７℃で２時間反応させた。反応終了後、１５０μＬ １Ｍ トリス緩衝液（ｐＨ９．０）で停止後、マイクロプレートリーダーにて４０５ｎｍの吸光度を測定し、細胞内外のβ−ヘキソサミニダーゼ活性を測定し、β−ヘキソサミニダーゼ分泌（脱顆粒）（Ｏ．Ｄ．上清/(Ｏ．Ｄ．上清＋Ｏ．Ｄ．細胞溶解液)×１００(％)）を算出した。ポジティブコントロールとしてｄｏｘａｎｔｒａｚｏｌｅ（４００μＭ）を用いた。
２．結果
ライチ抽出物１及び２は、β−ヘキソサミニダーゼ分泌率について溶媒対照（ｃｏｍｐｏｕｎｄ ４８／８０（５０ μｇ/ｍL）を含むＲＰＭＩ培地（フェノールレッド、血清、抗生物質を含まない））を1とした相対値が1以下であり、マスト細胞安定化効果を有していた（表１１）。
ライチ抽出物１及び２は、β−ヘキソサミニダーゼ分泌率について溶媒対照（ｃｏｍｐｏｕｎｄ ４８／８０（５０ μｇ/ｍL）を含むＲＰＭＩ培地（フェノールレッド、血清、抗生物質を含まない））を1とした相対値が1以下であり、マスト細胞安定化効果を有していた（表１１）。
実施例３ ライチ果実抽出物のストレス性大腸知覚過敏に対する作用
１．方法
２０時間絶食させた雄性Ｗｉｓｔａｒラット（８−９週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝８匹/群）した。
イソフルラン吸入麻酔下、実施例１で調製したライチ果実抽出物２（メチルセルロース溶液に懸濁）を胃内投与（５０ｍｇ／ｋｇ体重）と同時に、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。対照群には、メチルセルロース０．５ ｗ／ｖ％水溶液を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）と同時に、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の固定を解除し、参考例３と同様に大腸拡張試験により大腸知覚を評価した。
１．方法
２０時間絶食させた雄性Ｗｉｓｔａｒラット（８−９週齢: 日本クレア）を集合ケージ中、ＣＥ−２飼料（日本クレア）各群間に体重差がないように群分け（Ｎ＝８匹/群）した。
イソフルラン吸入麻酔下、実施例１で調製したライチ果実抽出物２（メチルセルロース溶液に懸濁）を胃内投与（５０ｍｇ／ｋｇ体重）と同時に、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。対照群には、メチルセルロース０．５ ｗ／ｖ％水溶液を胃内投与（４ｍＬ／ｋｇ体重）と同時に、肩、前肢、胸部をテープで軽く固定し、前肢の動きの一部を制限した。覚醒下にて２時間個別ケージ内に静置した後、動物の固定を解除し、参考例３と同様に大腸拡張試験により大腸知覚を評価した。
２．結果
ライチ果実抽出物を投与したラットでは、対照群（メチルセルロース投与）に比べて、各拡張容量におけるＡＷＲスコアが有意に低かった（図３）。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、対照群に対するＭａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙ Ｕ ｔｅｓｔを行なった（＊＊ｐ＜０．０１、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
以上の結果から、ライチ果実抽出物がストレス性の大腸知覚過敏の改善に寄与しているものと考えられた。
ライチ果実抽出物を投与したラットでは、対照群（メチルセルロース投与）に比べて、各拡張容量におけるＡＷＲスコアが有意に低かった（図３）。
なお、各ポイントは平均±標準誤差で示し、群間の統計学的有意差については、対照群に対するＭａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙ Ｕ ｔｅｓｔを行なった（＊＊ｐ＜０．０１、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
以上の結果から、ライチ果実抽出物がストレス性の大腸知覚過敏の改善に寄与しているものと考えられた。
Claims (3)
- ライチ果実又はその抽出物を有効成分とする過敏性腸症候群の予防又は改善剤。
- ライチ果実抽出物がライチ果実由来ポリフェノールである請求項１記載の予防又は改善剤。
- 過敏性腸症候群が、ストレス性大腸運動亢進又はストレス性大腸知覚過敏である請求項１又は２記載の予防又は改善剤。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2011154945A JP2013018753A (ja) | 2011-07-13 | 2011-07-13 | 過敏性腸症候群の予防又は改善剤 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2011154945A JP2013018753A (ja) | 2011-07-13 | 2011-07-13 | 過敏性腸症候群の予防又は改善剤 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2013018753A true JP2013018753A (ja) | 2013-01-31 |
Family
ID=47690558
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2011154945A Pending JP2013018753A (ja) | 2011-07-13 | 2011-07-13 | 過敏性腸症候群の予防又は改善剤 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2013018753A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN104740619A (zh) * | 2015-03-17 | 2015-07-01 | 华中农业大学 | 一种炎症诱导蛋白组分、其制备方法及产品 |
| WO2018111557A1 (en) * | 2016-12-16 | 2018-06-21 | Hill's Pet Nutrition, Inc. | Pet food compositions |
| CN114642260A (zh) * | 2022-05-24 | 2022-06-21 | 仙乐健康科技股份有限公司 | 荔枝酵素、其制备方法和用途 |
-
2011
- 2011-07-13 JP JP2011154945A patent/JP2013018753A/ja active Pending
Non-Patent Citations (6)
| Title |
|---|
| JPN6014011774; 医学のあゆみ Ｖｏｌ．２２０ Ｎｏ．１２, 2007, ｐ．９８６ * |
| JPN6015022184; 日本補完代替医療学雑誌 第５巻第３号, 2008, ｐｐ．１６３-１７１ * |
| JPN6016002099; Ｊ． Ｆｏｏｄ Ｓｃｉ． Ｖｏｌ．７４ Ｎｒ．８, 2009, ｐｐ．Ｈ２５３-Ｈ２５８ * |
| JPN6016002103; Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ Ｖｏｌ．１２, 2007, ｐｐ．７４５-７５８ * |
| JPN6016002105; Ｐｈｙｔｏｍｅｄｉｃｉｎｅ Ｖｏｌ．７ Ｎｏ．４, 2000, ｐｐ．２９７-３０２ * |
| JPN6016002107; Ｂｉｏｓｃｉ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． Ｖｏｌ．６２ Ｎｏ．７, 1998, ｐｐ．１２８４-１２８９ * |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN104740619A (zh) * | 2015-03-17 | 2015-07-01 | 华中农业大学 | 一种炎症诱导蛋白组分、其制备方法及产品 |
| WO2018111557A1 (en) * | 2016-12-16 | 2018-06-21 | Hill's Pet Nutrition, Inc. | Pet food compositions |
| CN114642260A (zh) * | 2022-05-24 | 2022-06-21 | 仙乐健康科技股份有限公司 | 荔枝酵素、其制备方法和用途 |
| CN114642260B (zh) * | 2022-05-24 | 2022-09-09 | 仙乐健康科技股份有限公司 | 荔枝酵素、其制备方法和用途 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| KR101740893B1 (ko) | Ａｋｋｅｒｍａｎｓｉａ ｍｕｃｉｎｉｐｈｉｌａ 균에서 유래하는 세포밖 소포를 유효성분으로 함유하는 대사질환의 치료 또는 예방용 조성물 | |
| EP2546330A1 (en) | Lactic acid bacterium-containing preparation | |
| US20200009210A1 (en) | Pharmaceutical Composition Comprising Indigo Pulverata Levis Extract or Fraction Thereof as Effective Ingredient for Preventing or Treating Inflammatory Bowel Disease | |
| CN112672749A (zh) | 具有肥胖预防或治疗效果的新的长双歧杆菌菌株或鼠李糖乳杆菌菌株及其用途 | |
| KR20180056972A (ko) | 포름산 생성능이 우수한 균주를 유효성분으로 포함하는 비만 또는 비만으로 야기된 대사증후군의 예방 또는 치료용 조성물 | |
| JP5940347B2 (ja) | 過活動膀胱の予防又は改善剤 | |
| US20070059393A1 (en) | Composition for inhibition or prevention of bone density | |
| KR101746388B1 (ko) | 쑥부쟁이 디클로로메탄 분획물을 유효성분으로 포함하는 면역증강용 약학적 조성물 | |
| JP2013071909A (ja) | 脳内過酸化脂質蓄積抑制剤 | |
| JP2013018753A (ja) | 過敏性腸症候群の予防又は改善剤 | |
| JP2021514993A (ja) | 悪液質および筋損失の予防、改善または治療用組成物 | |
| JP6062065B2 (ja) | 過敏性腸症候群を治療するためのアルピニア種抽出物 | |
| JP6735224B2 (ja) | アストロサイトのグルコース代謝活性化剤 | |
| JP2013063941A (ja) | 過敏性腸症候群の予防又は改善剤 | |
| JP2022522151A (ja) | 新規なラクトバチルスサケイｃｖｌ－００１菌株又はその培養液を含む骨疾患又は代謝性疾患改善、予防又は治療用組成物 | |
| JP6366279B2 (ja) | 過活動膀胱の予防又は改善剤 | |
| CN103191175B (zh) | 一种腹泻停中药组合、胶囊剂及其应用 | |
| JPWO2005051405A1 (ja) | Ｉｌ−８産生促進剤とその用途 | |
| KR20180050272A (ko) | 국화잎 추출물을 유효성분으로 포함하는 항비만 조성물 | |
| JP5606005B2 (ja) | メタボリックシンドローム改善又は予防剤 | |
| KR101543509B1 (ko) | 금은화 발효물을 유효성분으로 함유하는 비만, 내독소혈증 또는 대사성 질환의 예방 또는 치료용 조성물 | |
| KR102208654B1 (ko) | Tph1 유전자, ddc 유전자 및/또는 aanat 유전자의 발현을 조절하기 위한 바나나 껍질 추출물을 포함하는 조성물 | |
| JP2005206493A (ja) | 抗ヘリコバクター・ピロリ剤 | |
| CN111246849A (zh) | 学习记忆能力增强组合物 | |
| JP2013177369A (ja) | 一酸化窒素産生抑制剤 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20140620 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20150609 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20160126 |
|
| A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20160607 |