JP7394122B2 - 細胞外小胞の保存安定化剤及び保存安定化方法 - Google Patents
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Description
本発明は、細胞外小胞の保存安定化剤、保存安定化方法に関する。
細胞外小胞は、その粒子内部にタンパク質やｍｉｃｒｏＲＮＡ等の核酸が存在し、細胞間の物質伝達を担っていることが知られている。細胞外小胞は、血液等の体液中にも分泌されており、細胞外小胞中のタンパク質やｍｉｃｒｏＲＮＡ等が疾患の診断マーカーとして注目されている。さらに、一部の幹細胞に由来するエクソソームが組織修復能を有していることや核酸医薬のデリバリーツールとしての利用性が示されていることから、医薬品としての応用も期待されている。
このように細胞外小胞を診断マーカーや医薬品として利用する際、或いは細胞外小胞の機能解析等の基礎研究等を行う上では、細胞外小胞の品質を低下させずに保存する必要がある。その為、細胞外小胞の保存としては、凍結保存が一般的である。
また、トレハロースを細胞外小胞の凍結保存に用いることが知られている（非特許文献１）。
Ｓｔｅｆｆｉ Ｂｏｓｃｈ， Ｌａｕｒｅｎｃｅ ｄｅ Ｂｅａｕｒｅｐａｉｒｅ， Ｍａｒｉｅ Ａｌｌａｒｄ， Ｍａｔｈｉｌｄｅ Ｍｏｓｓｅｒ， Ｃｌａｉｒｅ Ｈｅｉｃｈｅｔｔｅ， Ｄｅｎｉｓ Ｃｈｒｅｔｉｅｎ， Ｄｏｍｉｎｉｑｕｅ Ｊｅｇｏｕ ＆ Ｊｅａｎ－Ｍａｒｉｅ Ｂａｃｈ． Ｔｒｅｈａｌｏｓｅ ｐｒｅｖｅｎｔｓ ａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎ ｏｆ ｅｘｏｓｏｍｅｓ ａｎｄ ｃｒｙｏｄａｍａｇｅ． Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｒｅｐｏｒｔｓ ｖｏｌｕｍｅ ６， Ａｒｔｉｃｌｅ ｎｕｍｂｅｒ： ３６１６２ （２０１６）
細胞外小胞は凍結の影響を受けやすく、凍結融解操作を繰り返すことで、細胞外小胞の粒子数が減少する場合がある。
本発明の課題は、細胞外小胞を安定的に保存することが可能な手段を提供することである。
本発明の課題は、細胞外小胞を安定的に保存することが可能な手段を提供することである。
本発明者らは、上記の課題を解決するため、種々の化合物を用いて細胞外小胞を安定的に保存可能であるか鋭意検討した結果、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーの存在下で、細胞外小胞を保存することにより、細胞外小胞を安定的に保存可能であることを見出した。
本発明は、細胞外小胞の保存安定化剤、保存安定化方法に関する。
［１］ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーを含んでなる、細胞外小胞の保存安定化剤。
［２］前記ポリマーが、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体、又はポリビニルピロリドンである、［１］に記載の保存安定化剤。
［３］前記ポリマーが、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体である、［１］に記載の保存安定化剤。
［４］前記共重合体の前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が、１：０．１～１：３である、［２］又は［３］に記載の保存安定化剤。
［５］前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が、５～５０である、［２］～［４］から選ばれる何れか一つに記載の保存安定化剤。
［６］前記共重合体の重量平均分子量が、３，０００～２５０，０００である、［２］～［５］から選ばれる何れか一つに記載の保存安定化剤。
［７］前記ポリマーが、ポリビニルピロリドンである、［１］に記載の保存安定化剤。
［８］前記ポリビニルピロリドンのフィケンチャーのＫ値が、５～１４０である、［２］又は［７］に記載の保存安定化剤。
［９］前記ポリビニルピロリドンの重量平均分子量が、１，０００～３，０００，０００である、［２］、［７］及び［８］から選ばれる何れか一つに記載の保存安定化剤。
［１０］ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーの存在下、細胞外小胞を凍結保存することを含んでなる、細胞外小胞の保存安定化方法。
［１１］前記ポリマーが、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体、又はポリビニルピロリドンである、［１０］に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１２］前記ポリマーが、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体である、［１０］に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１３］前記共重合体の前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が１：０．１～１：３である、［１１］又は［１２］に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１４］前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が、５～５０である、［１１］～［１３］から選ばれる何れか一つに記載の保存安定化方法。
［１５］前記共重合体の重量平均分子量が、３，０００～２５０，０００である、［１１］～［１４］から選ばれる何れか一つに記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１６］前記ポリマーが、ポリビニルピロリドンである、［１０］に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１７］前記ポリビニルピロリドンのフィケンチャーのＫ値が、５～１４０である、［１１］又は［１６］に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１８］前記ポリビニルピロリドンの重量平均分子量が、１，０００～３，０００，０００である、［１１］、［１６］及び［１７］から選ばれる何れか一つに記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１］ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーを含んでなる、細胞外小胞の保存安定化剤。
［２］前記ポリマーが、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体、又はポリビニルピロリドンである、［１］に記載の保存安定化剤。
［３］前記ポリマーが、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体である、［１］に記載の保存安定化剤。
［４］前記共重合体の前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が、１：０．１～１：３である、［２］又は［３］に記載の保存安定化剤。
［５］前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が、５～５０である、［２］～［４］から選ばれる何れか一つに記載の保存安定化剤。
［６］前記共重合体の重量平均分子量が、３，０００～２５０，０００である、［２］～［５］から選ばれる何れか一つに記載の保存安定化剤。
［７］前記ポリマーが、ポリビニルピロリドンである、［１］に記載の保存安定化剤。
［８］前記ポリビニルピロリドンのフィケンチャーのＫ値が、５～１４０である、［２］又は［７］に記載の保存安定化剤。
［９］前記ポリビニルピロリドンの重量平均分子量が、１，０００～３，０００，０００である、［２］、［７］及び［８］から選ばれる何れか一つに記載の保存安定化剤。
［１０］ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーの存在下、細胞外小胞を凍結保存することを含んでなる、細胞外小胞の保存安定化方法。
［１１］前記ポリマーが、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体、又はポリビニルピロリドンである、［１０］に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１２］前記ポリマーが、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体である、［１０］に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１３］前記共重合体の前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が１：０．１～１：３である、［１１］又は［１２］に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１４］前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が、５～５０である、［１１］～［１３］から選ばれる何れか一つに記載の保存安定化方法。
［１５］前記共重合体の重量平均分子量が、３，０００～２５０，０００である、［１１］～［１４］から選ばれる何れか一つに記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１６］前記ポリマーが、ポリビニルピロリドンである、［１０］に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１７］前記ポリビニルピロリドンのフィケンチャーのＫ値が、５～１４０である、［１１］又は［１６］に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
［１８］前記ポリビニルピロリドンの重量平均分子量が、１，０００～３，０００，０００である、［１１］、［１６］及び［１７］から選ばれる何れか一つに記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
本発明の細胞外小胞の保存安定化剤、及び本発明の細胞外小胞の保存安定化方法によれば、細胞外小胞を安定的に保存することが可能である。
本発明に係る保存安定化とは、細胞外小胞の生理的活性を維持した状態での保存を可能とすることである。具体的には、例えば、細胞外小胞を凍結保存することによる細胞外小胞の生理的活性に対する悪影響を低減することが挙げられる。当該悪影響としては、例えば、細胞小胞の粒子数が減少すること、細胞外小胞を構成する脂質や膜表面に存在するタンパク質、細胞外小胞に内包されるタンパク質やペプチド、核酸等が、保存時の温度等の外的要因により変性したり、経時変化したりすることにより活性を失うこと等が挙げられる。
細胞外小胞の生理活性は、例えば、ＣＤ９、ＣＤ６３、ＣＤ８１等の細胞外小胞の膜表面に存在するマーカータンパク質の活性を測定する、細胞外小胞の粒子数をＮＴＡ（Ｎａｎｏ Ｔｒａｃｋｉｎｇ Ａｎａｌｙｓｉｓ）法により測定する、電気顕微鏡により細胞外小胞の粒子数や形状など状態を観察する、タンパク質やペプチドの数をプロテオーム解析により測定する等により確認することができる。
細胞外小胞の生理活性は、例えば、ＣＤ９、ＣＤ６３、ＣＤ８１等の細胞外小胞の膜表面に存在するマーカータンパク質の活性を測定する、細胞外小胞の粒子数をＮＴＡ（Ｎａｎｏ Ｔｒａｃｋｉｎｇ Ａｎａｌｙｓｉｓ）法により測定する、電気顕微鏡により細胞外小胞の粒子数や形状など状態を観察する、タンパク質やペプチドの数をプロテオーム解析により測定する等により確認することができる。
＜本発明の細胞外小胞の保存安定化剤＞
本発明の細胞外小胞の保存安定化剤（以下、本発明の保存安定化剤と略記する場合がある）は、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーを含んでなる、細胞外小胞の保存安定化剤である。本発明の保存安定化剤によれば、細胞外小胞を安定的に凍結保存することが可能である。
本発明の細胞外小胞の保存安定化剤（以下、本発明の保存安定化剤と略記する場合がある）は、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーを含んでなる、細胞外小胞の保存安定化剤である。本発明の保存安定化剤によれば、細胞外小胞を安定的に凍結保存することが可能である。
本発明の保存安定化剤に用いられるポリマー（以下、本発明に係るポリマーと略記する場合がある）としては、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するものであれば、ホモポリマー（ポリビニルピロリドン）であっても共重合体であってもよい。前記共重合体としては、例えば、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体が挙げられ、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位のみからなる共重合体がより好ましい。
本発明に係るポリマーとしては、細胞外小胞を安定化する効果が高いことからビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体が好ましく、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位のみからなる共重合体がより好ましい。また、本発明に係るポリマーとしては、生体許容性材料として使用されることからポリビニルピロリドンが有用である。
これら本発明に係るポリマーは、１種を単独で用いても、２種以上混合して用いてもよく、１種を単独で用いるのが好ましい。なお、重合開始剤由来の構造等の重合反応に伴い付加される構成単位を含むポリマーも本発明に係るポリマーに包含される。すなわち、ホモポリマー（ポリビニルピロリドン）やビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位のみからなる共重合体は、モノマー単位としては、前記２つのモノマー単位のみからなるが、重合開始剤由来の構造等の重合反応に伴い付加されるモノマー単位以外の構成単位を含んでいてもよい。
本発明に係るポリマーとしては、細胞外小胞を安定化する効果が高いことからビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含む共重合体が好ましく、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位のみからなる共重合体がより好ましい。また、本発明に係るポリマーとしては、生体許容性材料として使用されることからポリビニルピロリドンが有用である。
これら本発明に係るポリマーは、１種を単独で用いても、２種以上混合して用いてもよく、１種を単独で用いるのが好ましい。なお、重合開始剤由来の構造等の重合反応に伴い付加される構成単位を含むポリマーも本発明に係るポリマーに包含される。すなわち、ホモポリマー（ポリビニルピロリドン）やビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位のみからなる共重合体は、モノマー単位としては、前記２つのモノマー単位のみからなるが、重合開始剤由来の構造等の重合反応に伴い付加されるモノマー単位以外の構成単位を含んでいてもよい。
本発明に係るポリマーのフィケンチャーのＫ値は、特に限定されないが、例えば、５～１４０であり、６～１００が好ましく、７～４０がより好ましい。フィケンチャーのＫ値は、分子量と相関する粘性特性値で、毛細管粘度計により測定される相対粘度値（２５℃）を下記のフィケンチャーの式（１）に適用して計算される数値である。
本発明に係るポリマーの重量平均分子量は、特に限定されないが、例えば、１，０００～３，０００，０００であり、１，０００～２，０００，０００が好ましく、１，０００～１５０，０００がより好ましい。
前記共重合体における、前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比は特に限定されないが、例えば、１：０．１～１：３であり、１：０．２～１：２が好ましく、１：０．３～１：１がより好ましく、１：０．４～１：１が更に好ましい。
前記共重合体のフィケンチャーのＫ値は特に限定されないが、例えば、５～５０であり、１０～４５が好ましく、１５～４０がより好ましく、２０～４０が更に好ましい。
前記共重合体の重量平均分子量は特に限定されないが、例えば、３，０００～２５０，０００であり、５，０００～２００，０００が好ましく、１０，０００～１５０，０００がより好ましく、２０，０００～１００，０００が更に好ましく、３０，０００～８０，０００が特に好ましい。
前記共重合体としては、例えば、前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が１：０．１～１：３であって、かつ前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が５～５０又は／及び重量平均分子量が３，０００～２５０，０００である共重合体が挙げられ、前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が１：０．２～１：２であって、かつ前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が１０～４５又は／及び重量平均分子量が５，０００～２００，０００である共重合体が好ましく、前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が１：０．３～１：１であって、かつ前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が１５～４０又は／及び重量平均分子量が１０，０００～１５０，０００である共重合体がより好ましく、前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が１：０．４～１：１であって、かつ前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が２０～４０又は／及び重量平均分子量が２０，０００～１００，０００である共重合体が更に好ましく、前記共重合体における、前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が１：０．４～１：１であって、かつ前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が２０～４０又は／及び重量平均分子量が３０，０００～８０，０００である共重合体が特に好ましい。
前記共重合体としては、例えば、前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が６：４である、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４（ＢＡＳＦ社製）が挙げられる。Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４のフィケンチャーのＫ値は２５．２～３０．８、重量平均分子量は４５，０００～７０，０００である。
前記ポリビニルピロリドンのフィケンチャーのＫ値は特に限定されないが、例えば、５～１４０であり、６～１００が好ましく、７～４０がより好ましく、８～３０が更に好ましく、９～２０が特に好ましい。
前記ポリビニルピロリドンの重量平均分子量は特に限定されないが、例えば、１，０００～３，０００，０００であり、１，０００～２，０００，０００が好ましく、１，０００～１００，０００がより好ましく、１，０００～４０，０００が更に好ましく、１，５００～１５，０００が特に好ましい。
前記ポリビニルピロリドンとしては、例えば、フィケンチャーのＫ値が５～１４０であって、かつ重量平均分子量が１，０００～３，０００，０００であるポリビニルピロリドンが挙げられ、フィケンチャーのＫ値が６～１００であって、かつ重量平均分子量が１，０００～２，０００，０００であるポリビニルピロリドンが好ましく、フィケンチャーのＫ値が７～４０であって、かつ重量平均分子量が１，０００～１００，０００であるポリビニルピロリドンがより好ましく、フィケンチャーのＫ値が８～３０であって、かつ重量平均分子量が１，０００～４０，０００であるポリビニルピロリドンが更に好ましく、フィケンチャーのＫ値が９～２０であって、かつ重量平均分子量が１，５００～１５，０００であるポリビニルピロリドンが特に好ましい。
前記ポリビニルピロリドンとしては、例えば、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦ（分子量２，０００～３，０００、Ｋ値が１０．２～１３．８）、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ（分子量７，０００～１１，０００、Ｋ値が１５．３～１８．０）、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）２５（分子量２８，０００～３４，０００、Ｋ値が２２．５～２７．０）、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）３０（分子量４４，０００～５４，０００、Ｋ値が２７．０～３２．４）、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）９０Ｆ（分子量１，０００，０００～１，５００，０００、Ｋ値が８１．０～９６．３）、ＰＶＰ Ｋ－１２０（分子量２，１００，０００～３，０００，０００、Ｋ値が１１０～１３０）などが挙げられ、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦ、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）２５、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）３０、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）９０Ｆが好ましく、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦ、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）２５、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）３０がより好ましく、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦ、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）２５が更に好ましく、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦ、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦが特に好ましい。
前記本発明の保存安定化剤は、本発明に係るポリマーの他に、水系溶媒を含んでいてもよい。前記水系溶媒としては、水；リン酸緩衝液、炭酸緩衝液、グッド緩衝液（例えば、ＨＥＰＥＳ緩衝液、トリス緩衝液、ＭＥＳ緩衝液）等の緩衝液；生理食塩水が挙げられる。また、前記水系溶媒は、更に増感剤、界面活性剤、防腐剤（例えばアジ化ナトリウム、サリチル酸、安息香酸等）、安定化剤（例えばアルブミン、グロブリン、水溶性ゼラチン、界面活性剤、糖類等）、賦活剤その他この分野で用いられているものであって、本発明に係るポリマーや本発明に係る細胞外小胞の安定性を阻害したり、本発明に係るポリマーによる細胞外小胞の保存安定化効果を阻害したりしないものを含んでいてもよく、通常この分野で用いられる濃度範囲等を適宜選択して用いればよい。
前記本発明の保存安定化剤における、本発明に係るポリマーの濃度は、通常、０．００５～２０％（ｗ／ｖ）であり、０．０１～１５％（ｗ／ｖ）が好ましく、０．０５～１０％（ｗ／ｖ）がより好ましい。
前記本発明の保存安定化剤における、ｐＨは、通常、５～１０であり、５．５～９．５が好ましく、５～９がより好ましい。
＜本発明に係る細胞外小胞＞
本発明に係る細胞外小胞は、細胞に由来する、脂質二重膜で構成される小型膜小胞である。当該細胞外小胞は、通常２０ｎｍ～１０００ｎｍの直径を有するものが挙げられ、５０ｎｍ～８００ｎｍのものが好ましく、５０ｎｍ～５００ｎｍのものがより好ましく、５０ｎｍ～２００ｎｍのものが特に好ましい。本発明に係る細胞外小胞としては、例えば、Ｎａｔｕｒｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ９， ５８１－５９３ （Ａｕｇｕｓｔ ２００９）、「肥満研究」Ｖｏｌ．１３ Ｎｏ．２ ２００７ トピックス 青木直人等に記載の通り、その発生起源や小型膜小胞の大きさ等により様々に分類されるものが挙げられる。具体的には、エクソソーム、微小胞、エクトソーム、膜粒子、エクソソーム様小胞、アポトーシス小体、アディボソーム等が挙げられる。
本発明の保存安定化剤は、これらのうち、エクソソーム、微小胞に対してより有用であり、エクソソームに対して特に有用である。
本発明に係る細胞外小胞は、細胞に由来する、脂質二重膜で構成される小型膜小胞である。当該細胞外小胞は、通常２０ｎｍ～１０００ｎｍの直径を有するものが挙げられ、５０ｎｍ～８００ｎｍのものが好ましく、５０ｎｍ～５００ｎｍのものがより好ましく、５０ｎｍ～２００ｎｍのものが特に好ましい。本発明に係る細胞外小胞としては、例えば、Ｎａｔｕｒｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ９， ５８１－５９３ （Ａｕｇｕｓｔ ２００９）、「肥満研究」Ｖｏｌ．１３ Ｎｏ．２ ２００７ トピックス 青木直人等に記載の通り、その発生起源や小型膜小胞の大きさ等により様々に分類されるものが挙げられる。具体的には、エクソソーム、微小胞、エクトソーム、膜粒子、エクソソーム様小胞、アポトーシス小体、アディボソーム等が挙げられる。
本発明の保存安定化剤は、これらのうち、エクソソーム、微小胞に対してより有用であり、エクソソームに対して特に有用である。
前記エクソソームは、細胞に由来する、脂質二重膜で構成された小型膜小胞であり、例えば、５０ｎｍ～２００ｎｍの直径を有するものが挙げられ、５０ｎｍ～１５０ｎｍのものが好ましく、５０ｎｍ～１００ｎｍのものがより好ましい。なお、エクソソームは、後期エンドソームに由来すると考えられている。
前記微小胞は、細胞に由来する、脂質二重膜で構成された小型膜小胞であり、例えば、１００ｎｍ～１０００ｎｍの直径を有するものが挙げられ、１００ｎｍ～８００ｎｍのものが好ましく、１００ｎｍ～５００ｎｍの直径を有するものがより好ましい。なお、微小胞は、細胞膜に由来すると考えられている。
本発明に係る細胞外小胞は、生体試料に含有されるものであっても、生体試料から単離されたものであってもよく、生体試料から単離されたものが好ましい。
生体試料は、本発明に係る細胞外小胞を含みうるものであれば、特に限定されない。生体試料としては、例えば、体液試料、細胞の培養上清、細胞抽出液が挙げられ、体液試料及び細胞の培養上清が好ましい。体液試料としては、例えば、血液、血清、血漿等の血液由来試料、尿、バフィーコート、唾液、精液、胸部滲出液、脳脊髄液、涙液、痰、粘液、リンパ液、腹水、胸水、羊水、膀胱洗浄液、気管支肺胞洗浄液等の臨床検査の分野で用いられる体液試料が挙げられ、血液由来試料が好ましい。細胞の培養上清としては、例えば、ＣＯＬＯ２０１細胞やＭＭ１細胞、ＢＬＣＬ２１細胞、Ｕ８７ ＭＧ細胞、ＳＫ－Ｎ－ＳＨ細胞、ＨＣＴ１１６細胞、ＰＣ３細胞、ＢＰＨ－１細胞、ＤＡＵＤＩ細胞、Ａ５４９細胞、Ｋ５６２細胞、ｉＰＳ細胞、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）、線維芽細胞、臍帯静脈内皮細胞、Ｔ細胞、マクロファージ、Ｂ細胞、樹状細胞を常法に従い培養した培養上清が挙げられる。細胞抽出液としては、例えば、ＣＯＬＯ２０１細胞やＭＭ１細胞、ＢＬＣＬ２１細胞、Ｕ８７ ＭＧ細胞、ＳＫ－Ｎ－ＳＨ細胞、ＨＣＴ１１６細胞、ＰＣ３細胞、ＢＰＨ－１細胞、ＤＡＵＤＩ細胞、Ａ５４９細胞、Ｋ５６２細胞、ｉＰＳ細胞、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）、線維芽細胞、臍帯静脈内皮細胞、Ｔ細胞、マクロファージ、Ｂ細胞、樹状細胞を常法に従い破砕を行い抽出したものが挙げられる。
生体試料は、例えば、動物から直接採取されたものであっても、回収、濃縮、精製、単離、緩衝液等による希釈、ろ過滅菌等の前処理を行ったものであってもよい。これら前処理は、この分野で用いられる常法に従い、適宜行えばよい。動物としては、細胞外小胞を含みうる動物であれば特に限定されず、例えば、ヒト、ラット、マウス、ウサギ、ウシ、ヤギ、ウマ、ブタ、イヌ、ネコ、ハムスター、ロバ、モルモットが挙げられ、ヒトが好ましい。
生体試料は、例えば、動物から直接採取されたものであっても、回収、濃縮、精製、単離、緩衝液等による希釈、ろ過滅菌等の前処理を行ったものであってもよい。これら前処理は、この分野で用いられる常法に従い、適宜行えばよい。動物としては、細胞外小胞を含みうる動物であれば特に限定されず、例えば、ヒト、ラット、マウス、ウサギ、ウシ、ヤギ、ウマ、ブタ、イヌ、ネコ、ハムスター、ロバ、モルモットが挙げられ、ヒトが好ましい。
生体試料から細胞外小胞を単離する方法としては、常法に従い行えばよく、特に限定されない。生体試料から細胞外小胞を単離する方法としては、例えば、アフィニティー法（例えば、ＰＳアフィニティー法）、分画遠心分離法（例えば、ペレットダウン法、スクロースクッション法、密度勾配遠心法等の超遠心法）、免疫沈降法、クロマトグラフィー法（例えば、イオン交換クロマトグラフィー法、ゲル浸透クロマトグラフィー法）、密度勾配法（例えば、ショ糖密度勾配法）、電気泳動法（例えば、オルガネラ電気泳動法）、磁気分離法（例えば、磁気活性化細胞選別（ＭＡＣＳ）法）、限外濾過濃縮法（例えば、ナノ膜限外濾過濃縮法）、パーコール勾配単離法、マイクロ流体デバイスを利用した方法、ＰＥＧ沈殿法等が挙げられ、高い精製度の細胞外小胞を得られるアフィニティー法、理論的に偏りの無い回収が可能である分画遠心分離法が好ましく、アフィニティー法、超遠心法がより好ましく、アフィニティー法が特に好ましい。アフィニティー法の中でも、ＰＳアフィニティー法が好ましい。アフィニティー法及び分画遠心分離法は、例えば、特開２０１６－０８８６８９に記載の方法に準じておこなえばよい。
これらの単離方法は、１種のみを用いても、２種以上を組み合わせてもよい。また、１種の単離方法による単離を２回以上繰り返してもよい。
これらの単離方法は、１種のみを用いても、２種以上を組み合わせてもよい。また、１種の単離方法による単離を２回以上繰り返してもよい。
本発明の保存安定化剤は、本発明の保存安定化剤の存在下、本発明に係る細胞外小胞を保存する方法に用いられる。本発明に係る細胞外小胞の保存は、細胞外小胞の保存の常法に従って行えばよい。本発明の保存安定化剤によれば、本発明に係る細胞外小胞を安定的に保存することが可能である。
＜本発明の細胞外小胞の保存安定化方法＞
本発明の細胞外小胞の保存安定化方法（以下、「本発明の保存安定化方法」と略記する場合がある）は、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマー（本発明に係るポリマー）の存在下、細胞外小胞を凍結保存することを含んでなる、細胞外小胞の保存安定化方法である。
すなわち、本発明の保存安定化方法は、本発明に係るポリマーと細胞外小胞とを接触させ、本発明に係るポリマーの存在下で細胞外小胞を凍結保存するものである。
具体的には、本発明に係るポリマーと細胞外小胞とを接触させることによって、本発明に係るポリマーと細胞外小胞とを含有する保存溶液（以下、本発明に係る保存溶液と略記する場合がある）を調製し、当該保存溶液を凍結保存するものである。
本発明の細胞外小胞の保存安定化方法（以下、「本発明の保存安定化方法」と略記する場合がある）は、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマー（本発明に係るポリマー）の存在下、細胞外小胞を凍結保存することを含んでなる、細胞外小胞の保存安定化方法である。
すなわち、本発明の保存安定化方法は、本発明に係るポリマーと細胞外小胞とを接触させ、本発明に係るポリマーの存在下で細胞外小胞を凍結保存するものである。
具体的には、本発明に係るポリマーと細胞外小胞とを接触させることによって、本発明に係るポリマーと細胞外小胞とを含有する保存溶液（以下、本発明に係る保存溶液と略記する場合がある）を調製し、当該保存溶液を凍結保存するものである。
本発明の保存安定化方法における、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、前記＜本発明の細胞外小胞の保存安定化剤＞の項において述べたものと同一であり、具体例や好ましいものも同一である。
また、本発明の保存安定化方法に用いられる細胞外小胞は、前記＜本発明に係る細胞外小胞＞の項において述べたものと同一であり、具体例や好ましいものも同一である。
また、本発明の保存安定化方法に用いられる細胞外小胞は、前記＜本発明に係る細胞外小胞＞の項において述べたものと同一であり、具体例や好ましいものも同一である。
本発明に係る保存溶液の調製方法としては、最終的に本発明に係るポリマーと細胞外小胞とを含有する溶液を得る方法であれば、特に限定されない。本発明に係る保存溶液の調製方法は、具体的には、水系溶媒を含む本発明の保存安定化剤と生体試料又は細胞外小胞を含有する溶液とを混合する方法、水系溶媒を含む本発明の保存安定化剤と細胞外小胞とを混合する方法、或いは本発明に係るポリマーと生体試料又は細胞外小胞を含有する溶液とを混合する方法が挙げられ、水系溶媒を含む本発明の保存安定化剤と生体試料又は細胞外小胞を含有する溶液とを混合する方法が好ましい。
前記水系溶媒を含む本発明の保存安定化剤としては、前記＜本発明の細胞外小胞の保存安定化剤＞の項において述べたものと同一であり、好ましいものも同一である。
前記水系溶媒を含む本発明の保存安定化剤としては、前記＜本発明の細胞外小胞の保存安定化剤＞の項において述べたものと同一であり、好ましいものも同一である。
前記細胞外小胞を含有する溶液における溶媒としては、水系溶媒が好ましい。前記水系溶媒としては、例えば、水；リン酸緩衝液、炭酸緩衝液、グッド緩衝液（例えば、ＨＥＰＥＳ緩衝液、トリス緩衝液、ＭＥＳ緩衝液）等の緩衝液；生理食塩水が挙げられる。また、前記水系溶媒には、更に増感剤、界面活性剤、防腐剤（例えばアジ化ナトリウム、サリチル酸、安息香酸等）、安定化剤（例えばアルブミン、グロブリン、水溶性ゼラチン、界面活性剤、糖類等）、賦活剤その他この分野で用いられているものであって、本発明に係るポリマーや本発明に係る細胞外小胞の安定性を阻害したり、本発明に係るポリマーによる細胞外小胞の保存安定化効果を阻害したりしないものを含んでいてもよく、通常この分野で用いられる濃度範囲等を適宜選択して用いればよい。
前記細胞外小胞を含有する溶液のｐＨは、通常、５～１０であり、５．５～９．５が好ましく、５～９がより好ましい。
本発明に係る保存溶液中の本発明に係るポリマーの濃度は特に限定されないが、例えば、０．０００１～１０％（ｗ／ｖ）であり、０．０００２５～５％（ｗ／ｖ）が好ましく、０．０００５～２．５％（ｗ／ｖ）がより好ましく、０．００１～１％（ｗ／ｖ）が更に好ましく、０．００２５～０．５％（ｗ／ｖ）が特に好ましい。
本発明に係る保存溶液の単位体積当たりの細胞外小胞の粒子数は特に限定されないが、例えば、２×１０５～２×１０１６（ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ）であり、２×１０５～２×１０１５（ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ）が好ましく、２×１０６～２×１０１４（ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ）がより好ましい。
本発明に係る保存溶液の調整の際の温度、言い換えれば本発明に係るポリマーと細胞外小胞とを接触させる際の温度は、通常、２℃～４２℃であり、２℃～４０℃が好ましく、２℃～３７℃がより好ましい。
本発明に係るポリマーと細胞外小胞とを接触させる時間は、通常、１秒～３０分であり、１秒～２０分が好ましく、１秒～１０分がより好ましい。
本発明に係る保存溶液のｐＨは、通常、５～１０であり、５．５～９．５が好ましく、５～９がより好ましい。
本発明の保存安定化方法において、本発明に係る保存溶液を凍結保存する際の温度は、特に限定されないが、例えば、－２℃～－１５０℃であり、－５℃～－１５０℃が好ましく、－１０℃～－１５０℃がより好ましい。
本発明の保存安定化方法において、本発明に係る保存溶液の保存期間（前記本発明に係る保存溶液を凍結保存する際の温度下で本発明に係る保存溶液を保存する期間）は特に限定されないが、例えば、１秒～５年であり、５分～２年が好ましい。
本発明の保存安定化方法は、例えば以下の様に行えばよい。
まず、生体試料から常法に従い細胞外小胞を単離し、細胞外小胞を含有する水や緩衝液等の溶液（ｐＨが例えば、５～１０であり、５．５～９．５が好ましく、５～９がより好ましい）を得る。次いで、別途調製した、本発明に係るポリマーを含有する水や緩衝液等の溶液（ｐＨが例えば、５～１０であり、５．５～９．５が好ましく、５～９がより好ましい）を、生体試料又は前記細胞外小胞を含有する溶液に添加し、例えば、２℃～４２℃、好ましくは２℃～４０℃、より好ましくは２℃～３７℃で、例えば、１秒～３０分、好ましくは１秒～２０分、より好ましくは１秒～１０分接触（混合）させる。これにより、例えば、０．０００１～１０％（ｗ／ｖ）、好ましくは０．０００２５～５％（ｗ／ｖ）、より好ましくは０．０００５～２．５％（ｗ／ｖ）、更に好ましくは０．００１～１％（ｗ／ｖ）、特に好ましくは０．００２５～０．５％（ｗ／ｖ）の濃度の本発明に係るポリマーと、例えば、２×１０５～２×１０１６（ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ）、好ましくは２×１０５～２×１０１５（ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ）、より好ましくは２×１０６～２×１０１４の濃度（本発明に係る保存溶液の単位体積当たりの細胞外小胞の粒子数）の細胞外小胞とを含有する保存溶液（ｐＨが例えば、５～１０であり、５．５～９．５が好ましく、５～９がより好ましい）を得る。
次いで、得られた保存溶液（すなわち、本発明に係るポリマーの共存下で細胞外小胞）を、例えば、－２℃～－１５０℃、好ましくは－５℃～－１５０℃、より好ましくは－１０℃～－１５０℃で、例えば、１秒～５年、好ましくは５分～２年、凍結保存する。
まず、生体試料から常法に従い細胞外小胞を単離し、細胞外小胞を含有する水や緩衝液等の溶液（ｐＨが例えば、５～１０であり、５．５～９．５が好ましく、５～９がより好ましい）を得る。次いで、別途調製した、本発明に係るポリマーを含有する水や緩衝液等の溶液（ｐＨが例えば、５～１０であり、５．５～９．５が好ましく、５～９がより好ましい）を、生体試料又は前記細胞外小胞を含有する溶液に添加し、例えば、２℃～４２℃、好ましくは２℃～４０℃、より好ましくは２℃～３７℃で、例えば、１秒～３０分、好ましくは１秒～２０分、より好ましくは１秒～１０分接触（混合）させる。これにより、例えば、０．０００１～１０％（ｗ／ｖ）、好ましくは０．０００２５～５％（ｗ／ｖ）、より好ましくは０．０００５～２．５％（ｗ／ｖ）、更に好ましくは０．００１～１％（ｗ／ｖ）、特に好ましくは０．００２５～０．５％（ｗ／ｖ）の濃度の本発明に係るポリマーと、例えば、２×１０５～２×１０１６（ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ）、好ましくは２×１０５～２×１０１５（ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ）、より好ましくは２×１０６～２×１０１４の濃度（本発明に係る保存溶液の単位体積当たりの細胞外小胞の粒子数）の細胞外小胞とを含有する保存溶液（ｐＨが例えば、５～１０であり、５．５～９．５が好ましく、５～９がより好ましい）を得る。
次いで、得られた保存溶液（すなわち、本発明に係るポリマーの共存下で細胞外小胞）を、例えば、－２℃～－１５０℃、好ましくは－５℃～－１５０℃、より好ましくは－１０℃～－１５０℃で、例えば、１秒～５年、好ましくは５分～２年、凍結保存する。
本発明の保存安定化剤及び保存安定化方法によれば、本発明に係る細胞外小胞を安定的に凍結保存することが可能である。より具体的には、本発明の保存安定化剤及び保存安定化方法によれば、本発明に係る細胞外小胞を凍結保存した場合であっても、本発明の安定化剤を用いない場合に比べて、凍結保存させた本発明に係る細胞外小胞の粒子数の減少を著しく低減できる。また、本発明の保存安定化剤及び保存安定化方法によれば、本発明の安定化剤を用いない場合に比べて、本発明に係る細胞外小胞の膜表面に存在するマーカータンパク質の活性を保ったまま凍結保存することができる。
本発明において、凍結保存された本発明に係る保存溶液を融解する際の融解温度及び融解時間は、細胞外小胞を融解し得る温度及び時間であれば特に限定されないが、融解温度は、例えば、２℃～４２℃であり、２℃～４０℃が好ましく、２℃～３７℃がより好ましく、融解時間は、例えば、１秒～１８０分であり、３０秒～１２０分が好ましく、１分～６０分がより好ましい。
また、本発明に係る保存溶液の凍結融解回数（具体的には、凍結融解をおこなう回数）は特に限定されないが、例えば１回～５０回であり、１回～２０回が好ましい。
また、本発明に係る保存溶液の凍結融解回数（具体的には、凍結融解をおこなう回数）は特に限定されないが、例えば１回～５０回であり、１回～２０回が好ましい。
本発明に係る保存溶液の融解方法は、具体的には、前述のように凍結保存された本発明に係る保存溶液を、例えば、２℃～４２℃、好ましくは２℃～４０℃、より好ましくは２℃～３７℃で、例えば、１秒～１８０分、好ましくは３０秒～１２０分、より好ましくは１分～６０分融解することにより行う。
本発明の保存安定化方法によれば、前述の凍結及び融解を、例えば、１回～５０回、好ましくは１回～２０回繰り返し行うことができる。
すなわち、本発明の保存安定化方法は、本発明に係る細胞外小胞の凍結及び融解における細胞外小胞の保存安定化方法ともいえる。同様に、本発明の保存安定化剤は、本発明に係る細胞外小胞の凍結及び融解に対する保存安定化剤ともいえる。
すなわち、本発明の保存安定化方法は、本発明に係る細胞外小胞の凍結及び融解における細胞外小胞の保存安定化方法ともいえる。同様に、本発明の保存安定化剤は、本発明に係る細胞外小胞の凍結及び融解に対する保存安定化剤ともいえる。
本発明の保存安定化剤及び保存安定化方法は、細胞外小胞を安定的に保存させることが可能であることから、細胞外小胞を用いた診断や医薬品の分野において有用である。
以下、実施例および比較例に基づいて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの例によって何ら限定されない。
＜実施例１．Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を用いたエクソソームの保存安定化試験＞
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４のエクソソームを凍結保存する際の保存安定化効果について、ＣＯＬＯ２０１細胞由来エクソソームを用いて検証した。測定条件の詳細は、表１に示す。
（１）エクソソームの取得
ＣＯＬＯ２０１細胞（ＪＣＲＢ細胞バンクより分譲）を、Ｅｘｐｉ２９３（登録商標） Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｍｅｄｉｕｍ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ社製）を用いて９６時間培養し、培養上清を得た。得られたＣＯＬＯ２０１細胞培養上清１０ｍＬから、ＭａｇＣａｐｔｕｒｅ（登録商標） Ｅｘｏｓｏｍｅ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ Ｋｉｔ ＰＳ（富士フイルム和光純薬株式会社製）を用いて、当該キットに添付の説明書に記載の手順に従ってエクソソームを精製し、１ｍＭ ＥＤＴＡ含有 １×Ｔｒｉｓ ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ７．４）中にエクソソームを得た。得られた溶液を「エクソソーム精製溶液」と略記する場合がある。
（２）エクソソームの凍結保存
得られたエクソソーム精製溶液を、４℃で１６時間インキュベートした。次いで、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液（Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４（ＢＡＳＦ社製）、大塚蒸留水（大塚製薬株式会社製））を調製した。インキュベート後のエクソソーム精製溶液に、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液を終濃度０．０５％（ｗ／ｖ）となるように添加した。得られた溶液を「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」と略記する場合がある。
次いで、得られた安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液を用いて、「－８０℃で５分間凍結した後室温で５分間融解する」条件で２０回凍結融解操作を繰り返した。得られた凍結融解後の溶液を「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」と略記する場合がある。
（３）保存安定化効果の検証
「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」に含まれるエクソソームマーカーであるＣＤ６３を、ＰＳ Ｃａｐｔｕｒｅ（登録商標） エクソソームＥＬＩＳＡキット（ストレプトアビジンＨＲＰ）（富士フイルム和光純薬株式会社製、抗ＣＤ６３抗体を含む）を用いて、当該キットに添付の説明書に記載の手順に従って測定し、吸光度を求めた。
また、抗ＣＤ９，モノクローナル抗体（３０Ｂ）（富士フイルム和光純薬株式会社製）、又は、抗ＣＤ８１，モノクローナル抗体（１７Ｂ１）（０１１－２７７７３，富士フイルム和光純薬株式会社製）をビオチン標識用キット－ＳＨ（ＬＫ１０，株式会社同仁化学研究所製）によりビオチン標識した。得られた標識抗体を抗ＣＤ６３抗体の代わりに使用して、同様の方法によりエクソソームマーカーであるＣＤ９及びＣＤ８１を測定し、それぞれ吸光度を求めた。
更に、コントロールとして、「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」の代わりに「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」を用いて、同様の方法によりＣＤ６３、ＣＤ９及びＣＤ８１を測定し、それぞれ吸光度を求めた。
吸光度から、「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」の吸光度を１００［％］とした場合の、それぞれの溶液の吸光度の相対値［％］を、エクソソームマーカー毎に算出した。算出した値を「シグナル値」と略記する場合がある。
（４）結果
シグナル値の結果を図１Ａのグラフに示す。図１Ａにおいて、横軸はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４の有無および測定したエクソソームマーカーの種類を示し、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実施例１の結果、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する比較例１の結果を示す。縦軸は、シグナル値を示す。
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４のエクソソームを凍結保存する際の保存安定化効果について、ＣＯＬＯ２０１細胞由来エクソソームを用いて検証した。測定条件の詳細は、表１に示す。
（１）エクソソームの取得
ＣＯＬＯ２０１細胞（ＪＣＲＢ細胞バンクより分譲）を、Ｅｘｐｉ２９３（登録商標） Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｍｅｄｉｕｍ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ社製）を用いて９６時間培養し、培養上清を得た。得られたＣＯＬＯ２０１細胞培養上清１０ｍＬから、ＭａｇＣａｐｔｕｒｅ（登録商標） Ｅｘｏｓｏｍｅ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ Ｋｉｔ ＰＳ（富士フイルム和光純薬株式会社製）を用いて、当該キットに添付の説明書に記載の手順に従ってエクソソームを精製し、１ｍＭ ＥＤＴＡ含有 １×Ｔｒｉｓ ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ７．４）中にエクソソームを得た。得られた溶液を「エクソソーム精製溶液」と略記する場合がある。
（２）エクソソームの凍結保存
得られたエクソソーム精製溶液を、４℃で１６時間インキュベートした。次いで、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液（Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４（ＢＡＳＦ社製）、大塚蒸留水（大塚製薬株式会社製））を調製した。インキュベート後のエクソソーム精製溶液に、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液を終濃度０．０５％（ｗ／ｖ）となるように添加した。得られた溶液を「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」と略記する場合がある。
次いで、得られた安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液を用いて、「－８０℃で５分間凍結した後室温で５分間融解する」条件で２０回凍結融解操作を繰り返した。得られた凍結融解後の溶液を「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」と略記する場合がある。
（３）保存安定化効果の検証
「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」に含まれるエクソソームマーカーであるＣＤ６３を、ＰＳ Ｃａｐｔｕｒｅ（登録商標） エクソソームＥＬＩＳＡキット（ストレプトアビジンＨＲＰ）（富士フイルム和光純薬株式会社製、抗ＣＤ６３抗体を含む）を用いて、当該キットに添付の説明書に記載の手順に従って測定し、吸光度を求めた。
また、抗ＣＤ９，モノクローナル抗体（３０Ｂ）（富士フイルム和光純薬株式会社製）、又は、抗ＣＤ８１，モノクローナル抗体（１７Ｂ１）（０１１－２７７７３，富士フイルム和光純薬株式会社製）をビオチン標識用キット－ＳＨ（ＬＫ１０，株式会社同仁化学研究所製）によりビオチン標識した。得られた標識抗体を抗ＣＤ６３抗体の代わりに使用して、同様の方法によりエクソソームマーカーであるＣＤ９及びＣＤ８１を測定し、それぞれ吸光度を求めた。
更に、コントロールとして、「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」の代わりに「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」を用いて、同様の方法によりＣＤ６３、ＣＤ９及びＣＤ８１を測定し、それぞれ吸光度を求めた。
吸光度から、「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」の吸光度を１００［％］とした場合の、それぞれの溶液の吸光度の相対値［％］を、エクソソームマーカー毎に算出した。算出した値を「シグナル値」と略記する場合がある。
（４）結果
シグナル値の結果を図１Ａのグラフに示す。図１Ａにおいて、横軸はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４の有無および測定したエクソソームマーカーの種類を示し、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実施例１の結果、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する比較例１の結果を示す。縦軸は、シグナル値を示す。
＜比較例１．エクソソームの保存安定化試験＞
表１に記載の条件に従い、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液をインキュベート後のエクソソーム精製溶液に添加しない以外は、実施例１と同様の方法により測定を行い、凍結保存後のエクソソーム溶液のシグナル値［％］を算出した。
シグナル値の結果を図１Ａに示す。図中、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－が比較例１の結果を示す。
表１に記載の条件に従い、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液をインキュベート後のエクソソーム精製溶液に添加しない以外は、実施例１と同様の方法により測定を行い、凍結保存後のエクソソーム溶液のシグナル値［％］を算出した。
シグナル値の結果を図１Ａに示す。図中、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－が比較例１の結果を示す。
図１Ａのグラフより、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を添加せずエクソソーム溶液のみを凍結保存した場合（比較例１）、凍結保存後のシグナル値は、凍結保存前のシグナル値に比べて、いずれのエクソソームマーカーにおいても著しく低下した。他方、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を含有させて凍結保存した場合（実施例１）、いずれのエクソソームマーカーにおいても、凍結保存の前後でシグナル値はほぼ変化せず、凍結保存後であっても、エクソソームマーカーの活性は保持されていた。すなわち、エクソソームマーカーであるＣＤ６３、ＣＤ９、ＣＤ８１（テトラスパニン）は、これらに対する各抗体と結合可能な状態が保持されていることが示された。
これらの結果から、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞を凍結保存する際に、細胞外小胞を保存安定化させる効果を有することが判った。
これらの結果から、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞を凍結保存する際に、細胞外小胞を保存安定化させる効果を有することが判った。
＜実験例１．エクソソームの保存安定化試験前後におけるタンパク質濃度の変化＞
細胞外小胞の凍結保存前後における相対シグナル値の変動が、細胞外小胞がサンプルチューブに吸着することによるものではないことを確認する為、プロテインアッセイＢＣＡキット（富士フイルム和光純薬製）を用いて、実施例１における「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」及び「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」のタンパク質濃度を、それぞれＢＣＡプロテインアッセイにより測定した。具体的には、当該キットに添付のプロテインアッセイＢＣＡ試薬Ａに、当該キットに添付のプロテインアッセイＢＣＡ試薬Ｂを１／５０量［ｖ／ｖ］添加して混合液を調製した。当該混合液２００μＬと「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」又は「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」２５μＬを、ＮＵＮＣ ９６ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅ平面プレート（サーフィッシャーサイエンティフィック社製）中でそれぞれ混合し、６０℃条件下で３０分間インキュベートした。その後、プレートリーダーを用いてインキュベート後の溶液の５６２ｎｍの吸光度をそれぞれ測定し、吸光度から「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」及び「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」のタンパク質濃度をそれぞれ算出した。
結果を図１Ｂに示す。図１Ｂにおいて、横軸はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４の有無を示し、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実験例１の結果、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する実験例２の結果を示す。縦軸は、測定した溶液中のタンパク質濃度［ｎｇ／μＬ］を示す。
細胞外小胞の凍結保存前後における相対シグナル値の変動が、細胞外小胞がサンプルチューブに吸着することによるものではないことを確認する為、プロテインアッセイＢＣＡキット（富士フイルム和光純薬製）を用いて、実施例１における「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」及び「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」のタンパク質濃度を、それぞれＢＣＡプロテインアッセイにより測定した。具体的には、当該キットに添付のプロテインアッセイＢＣＡ試薬Ａに、当該キットに添付のプロテインアッセイＢＣＡ試薬Ｂを１／５０量［ｖ／ｖ］添加して混合液を調製した。当該混合液２００μＬと「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」又は「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」２５μＬを、ＮＵＮＣ ９６ｗｅｌｌ ｐｌａｔｅ平面プレート（サーフィッシャーサイエンティフィック社製）中でそれぞれ混合し、６０℃条件下で３０分間インキュベートした。その後、プレートリーダーを用いてインキュベート後の溶液の５６２ｎｍの吸光度をそれぞれ測定し、吸光度から「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」及び「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」のタンパク質濃度をそれぞれ算出した。
結果を図１Ｂに示す。図１Ｂにおいて、横軸はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４の有無を示し、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実験例１の結果、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する実験例２の結果を示す。縦軸は、測定した溶液中のタンパク質濃度［ｎｇ／μＬ］を示す。
＜実験例２．エクソソーム保存安定化試験前後のタンパク質濃度の変化＞
実験例１と同様の方法により、比較例１における凍結保存前のエクソソーム溶液及び凍結保存後のエクソソーム溶液のタンパク質濃度を測定した。測定条件の詳細は、表１に示す。結果を図１Ｂに示す。Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は実験例２の結果を示す。
実験例１と同様の方法により、比較例１における凍結保存前のエクソソーム溶液及び凍結保存後のエクソソーム溶液のタンパク質濃度を測定した。測定条件の詳細は、表１に示す。結果を図１Ｂに示す。Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は実験例２の結果を示す。
図１Ｂより、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を用いるか否かに関わらず、凍結保存の前後でエクソソーム溶液中のタンパク質濃度には変化がないことが判った。図１Ａ及び図１Ｂの結果から、細胞外小胞の凍結保存前後におけるシグナル値の変動は、細胞外小胞がサンプルチューブに吸着することによるものではないことが確認された。
＜実験例３．エクソソームの保存安定化試験前後における粒子数の変化＞
実施例１における「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」及び「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」の単位体積当たりの粒子数を、ＮａｎｏＳｉｇｈｔ（Ｍａｌｖｅｒｎ Ｐａｎａｌｙｔｉｃａｌ社製）を用いて、ナノ粒子トラッキング解析法（Ｎａｎｏ Ｔｒａｃｋｉｎｇ Ａｎａｌｙｓｉｓ法）により、ＮａｎｏＳｉｇｈｔの説明書に記載の手順に従ってそれぞれ３回測定し、単位体積当たりの平均粒子数［Ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ］を算出した。
結果を図１Ｃに示す。図１Ｃにおいて、横軸はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４の有無を示し、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実験例３の結果、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する実験例４の結果を示す。縦軸は、測定した溶液中の粒子数［×１０１１ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ］を示す。
実施例１における「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」及び「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」の単位体積当たりの粒子数を、ＮａｎｏＳｉｇｈｔ（Ｍａｌｖｅｒｎ Ｐａｎａｌｙｔｉｃａｌ社製）を用いて、ナノ粒子トラッキング解析法（Ｎａｎｏ Ｔｒａｃｋｉｎｇ Ａｎａｌｙｓｉｓ法）により、ＮａｎｏＳｉｇｈｔの説明書に記載の手順に従ってそれぞれ３回測定し、単位体積当たりの平均粒子数［Ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ］を算出した。
結果を図１Ｃに示す。図１Ｃにおいて、横軸はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４の有無を示し、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実験例３の結果、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する実験例４の結果を示す。縦軸は、測定した溶液中の粒子数［×１０１１ ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ］を示す。
＜実験例４．エクソソームの保存安定化試験前後における粒子数の変化＞
実験例３と同様の方法により、比較例１における凍結保存前のエクソソーム溶液及び凍結保存後のエクソソーム溶液の単位体積当たりの粒子数を測定し、単位体積当たりの平均粒子数［Ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ］を算出した。
結果を図１Ｃに示す。Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は実験例４の結果を示す。
実験例３と同様の方法により、比較例１における凍結保存前のエクソソーム溶液及び凍結保存後のエクソソーム溶液の単位体積当たりの粒子数を測定し、単位体積当たりの平均粒子数［Ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ］を算出した。
結果を図１Ｃに示す。Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は実験例４の結果を示す。
図１Ｃより、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を添加せずエクソソーム溶液のみを凍結保存した場合（実験例４）、凍結保存後に著しく粒子数が減少した。他方、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を含有させて凍結保存した場合（実験例３）、凍結保存の前後で粒子数はほぼ変わらなかった。
＜実施例２．エクソソームの保存安定化試験前後における粒子数の変化＞
細胞外小胞の凍結保存により粒子数が減少することを検証する為、実施例１における「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」及び「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」を、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）を用いて解析した。透過型電子顕微鏡により観察した像を図１Ｄに示す。図１Ｄ中、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実施例２の結果を示し、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する比較例２の結果を示す。
細胞外小胞の凍結保存により粒子数が減少することを検証する為、実施例１における「安定化剤含有－凍結保存前エクソソーム溶液」及び「安定化剤含有－凍結保存後エクソソーム溶液」を、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）を用いて解析した。透過型電子顕微鏡により観察した像を図１Ｄに示す。図１Ｄ中、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実施例２の結果を示し、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する比較例２の結果を示す。
＜比較例２．エクソソームの保存安定化試験前後における粒子数の変化＞
実施例２と同様の方法により、比較例１における凍結保存前のエクソソーム溶液及び凍結保存後のエクソソーム溶液を、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）を用いて解析した。透過型電子顕微鏡により観察した像を図１Ｄに示す。
実施例２と同様の方法により、比較例１における凍結保存前のエクソソーム溶液及び凍結保存後のエクソソーム溶液を、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）を用いて解析した。透過型電子顕微鏡により観察した像を図１Ｄに示す。
図１Ｄより、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を添加せずエクソソーム溶液のみを凍結保存した場合（比較例２）、凍結保存後に粒子が減少している様子が観察された。他方、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を含有させて凍結保存した場合（実施例２）、凍結保存の前後で大きな変化は観察されなかった。
図１Ｃ及び図１Ｄから、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞を凍結保存させる際に、粒子数をほぼ保ったまま、細胞外小胞を保存安定化させる効果を有することが判った。
また、図１Ｂから図１Ｄより、細胞外小胞の凍結保存前後におけるシグナル値の変動は、細胞外小胞がサンプルチューブに吸着することによるものではなく、細胞外小胞の粒子数の減少が原因であることが判った。
＜実施例３．各種試料由来するエクソソームを用いた保存安定化試験＞
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４によるエクソソームを凍結保存させる際の保存安定化効果が、各種試料に由来するエクソソームに対しても有効であるか検討した。すなわち、試料として、実施例１と同様の方法により得られたＣＯＬＯ２０１細胞培養上清１ｍＬ、実施例１と同様の方法により間葉系幹細胞（ＭＳＣ）（ロンザ製）を培養して得られた間葉系幹細胞培養上清１ｍＬ、血清（ビジコムジャパン製）１ｍＬ、及び血漿（ビジコムジャパン製）１ｍＬをそれぞれ用いて検討した。
具体的には、表１に記載の条件に従い、実施例１記載の方法に準じて吸光度を測定し、シグナル値を算出した。なお、用いた試料の単位体積当たりの粒子数を実験例３と同様の方法により測定した結果、ＣＯＬＯ２０１細胞培養上清の単位体積当たりの粒子数は２×１０１０ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ、間葉系幹細胞培養上清の単位体積当たりの粒子数は、２×１０９ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ、血清の単位体積当たりの粒子数は、２×１０１０ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ、血漿の単位体積当たりの粒子数は、６×１０１０ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬであった。
シグナル値の結果を図２から図５それぞれに示す。図２はＣＯＬＯ２０１細胞由来のエクソソームを用いた場合、図３は間葉系幹細胞（ＭＳＣ）由来エクソソームを用いた場合、図４は血清由来エクソソームを用いた場合、図５は血漿由来エクソソームを用いた場合の結果である。図中、横軸はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４の有無および凍結融解操作の回数を示し、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実施例３の結果、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する比較例３の結果をそれぞれ示す。
縦軸は、シグナル値［％］を示す。
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４によるエクソソームを凍結保存させる際の保存安定化効果が、各種試料に由来するエクソソームに対しても有効であるか検討した。すなわち、試料として、実施例１と同様の方法により得られたＣＯＬＯ２０１細胞培養上清１ｍＬ、実施例１と同様の方法により間葉系幹細胞（ＭＳＣ）（ロンザ製）を培養して得られた間葉系幹細胞培養上清１ｍＬ、血清（ビジコムジャパン製）１ｍＬ、及び血漿（ビジコムジャパン製）１ｍＬをそれぞれ用いて検討した。
具体的には、表１に記載の条件に従い、実施例１記載の方法に準じて吸光度を測定し、シグナル値を算出した。なお、用いた試料の単位体積当たりの粒子数を実験例３と同様の方法により測定した結果、ＣＯＬＯ２０１細胞培養上清の単位体積当たりの粒子数は２×１０１０ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ、間葉系幹細胞培養上清の単位体積当たりの粒子数は、２×１０９ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ、血清の単位体積当たりの粒子数は、２×１０１０ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬ、血漿の単位体積当たりの粒子数は、６×１０１０ｐａｒｔｉｃｌｅｓ／ｍＬであった。
シグナル値の結果を図２から図５それぞれに示す。図２はＣＯＬＯ２０１細胞由来のエクソソームを用いた場合、図３は間葉系幹細胞（ＭＳＣ）由来エクソソームを用いた場合、図４は血清由来エクソソームを用いた場合、図５は血漿由来エクソソームを用いた場合の結果である。図中、横軸はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４の有無および凍結融解操作の回数を示し、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実施例３の結果、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する比較例３の結果をそれぞれ示す。
縦軸は、シグナル値［％］を示す。
＜比較例３．異なる試料に由来するエクソソームを用いた保存安定化試験＞
表１に記載の条件に従い、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液をインキュベート後のエクソソーム精製溶液に添加する操作を行わなかった以外は、実施例３と同様の方法により、凍結保存後のエクソソーム溶液のシグナル値［％］を算出した。
シグナル値の結果を図２から図５にそれぞれ示す。図中、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－が比較例３の結果を示す。
表１に記載の条件に従い、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液をインキュベート後のエクソソーム精製溶液に添加する操作を行わなかった以外は、実施例３と同様の方法により、凍結保存後のエクソソーム溶液のシグナル値［％］を算出した。
シグナル値の結果を図２から図５にそれぞれ示す。図中、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－が比較例３の結果を示す。
図２から図５のグラフより、ＣＯＬＯ２０１細胞由来エクソソームを用いた場合（図２）と同様、間葉系幹細胞（ＭＳＣ）由来エクソソームを用いた場合（図３）、血清由来エクソソームを用いた場合（図４）、血漿由来エクソソームを用いた場合（図５）のいずれの場合にも、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を用いると、凍結保存の前後でシグナル値はほぼ変化しなかった。
これらの結果から、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞の由来によらず、細胞外小胞を凍結保存する際に、細胞外小胞を安定化させる効果を有することが判った。
これらの結果から、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞の由来によらず、細胞外小胞を凍結保存する際に、細胞外小胞を安定化させる効果を有することが判った。
＜実施例４．凍結温度がエクソソームの保存安定化に与える影響＞
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４によるエクソソームを凍結保存する際の保存安定化効果に対して、エクソソームの凍結温度が与える影響について検証した。すなわち、凍結温度を－８０℃又は－２０℃として検討を行った。
具体的には、表１に記載の条件に従い、実施例１記載の方法に準じて吸光度を測定し、シグナル値を算出した。シグナル値の結果を図６及び図７のグラフにそれぞれ示す。図６は－８０℃で凍結保存させた場合の結果、図７は－２０℃で凍結保存させた場合の結果である。図中、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実施例４の結果、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する比較例４の結果をそれぞれ示す。横軸は凍結融解操作の回数、及び検出したエクソソームマーカーの種類を示す。縦軸は、シグナル値［％］を示す。
図６及び図７のグラフより、－２０℃及び－８０℃のいずれの凍結温度においても、エクソソームマーカーであるＣＤ９及びＣＤ６３のいずれについても、凍結保存の前後でシグナル値はほぼ変化しなかった。
これらの結果から、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞の凍結温度によらず、細胞外小胞を凍結保存させる際に、細胞外小胞を安定化させる効果を有することが判った。
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４によるエクソソームを凍結保存する際の保存安定化効果に対して、エクソソームの凍結温度が与える影響について検証した。すなわち、凍結温度を－８０℃又は－２０℃として検討を行った。
具体的には、表１に記載の条件に従い、実施例１記載の方法に準じて吸光度を測定し、シグナル値を算出した。シグナル値の結果を図６及び図７のグラフにそれぞれ示す。図６は－８０℃で凍結保存させた場合の結果、図７は－２０℃で凍結保存させた場合の結果である。図中、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ＋が実施例４の結果、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ－は後述する比較例４の結果をそれぞれ示す。横軸は凍結融解操作の回数、及び検出したエクソソームマーカーの種類を示す。縦軸は、シグナル値［％］を示す。
図６及び図７のグラフより、－２０℃及び－８０℃のいずれの凍結温度においても、エクソソームマーカーであるＣＤ９及びＣＤ６３のいずれについても、凍結保存の前後でシグナル値はほぼ変化しなかった。
これらの結果から、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞の凍結温度によらず、細胞外小胞を凍結保存させる際に、細胞外小胞を安定化させる効果を有することが判った。
＜実施例５．凍結融解操作の回数がエクソソームの保存安定化に与える影響＞
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４によるエクソソームを凍結保存させる際の保存安定化効果に対して、凍結温度が－２０℃の場合に凍結融解操作の回数が与える影響について検証した。すなわち、凍結温度を－２０℃、凍結融解操作の回数を１５回として検討した。具体的には、表１に記載の条件に従い、実施例１記載の方法に準じて吸光度を測定し、シグナル値を算出した。
シグナル値の結果を図８にそれぞれ示す。図中、横軸は凍結融解操作の回数、及び検出したエクソソームマーカーの種類を示す。縦軸は、シグナル値［％］を示す。
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４によるエクソソームを凍結保存させる際の保存安定化効果に対して、凍結温度が－２０℃の場合に凍結融解操作の回数が与える影響について検証した。すなわち、凍結温度を－２０℃、凍結融解操作の回数を１５回として検討した。具体的には、表１に記載の条件に従い、実施例１記載の方法に準じて吸光度を測定し、シグナル値を算出した。
シグナル値の結果を図８にそれぞれ示す。図中、横軸は凍結融解操作の回数、及び検出したエクソソームマーカーの種類を示す。縦軸は、シグナル値［％］を示す。
＜実施例６．凍結融解操作の回数がエクソソームの保存安定化に与える影響＞
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４によるエクソソームを凍結保存させる際の保存安定化効果に対して、凍結融解操作の回数が与える影響について検証した。すなわち、実施例５において凍結融解操作の回数を１５回行った後のエクソソームを、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）を用いて解析した。また、コントロールとして、凍結融解操作を行う前のエクソソームについても、同様の方法により観察した。透過型電子顕微鏡により観察した像を図９に示す。図中、上段が凍結融解操作を行う前（０回）の観察像、下段が凍結融解操作を１５回おこなった後の観察像である。
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４によるエクソソームを凍結保存させる際の保存安定化効果に対して、凍結融解操作の回数が与える影響について検証した。すなわち、実施例５において凍結融解操作の回数を１５回行った後のエクソソームを、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）を用いて解析した。また、コントロールとして、凍結融解操作を行う前のエクソソームについても、同様の方法により観察した。透過型電子顕微鏡により観察した像を図９に示す。図中、上段が凍結融解操作を行う前（０回）の観察像、下段が凍結融解操作を１５回おこなった後の観察像である。
図８のグラフより、凍結温度を－２０℃として凍結融解操作を１５回行った場合においても、いずれのエクソソームマーカーにおいても凍結保存の前後でシグナル値はほぼ変化しなかった。
また、図９の電子顕微鏡により観察した像より、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を用いて、－２０℃で１５回、細胞外小胞の凍結融解操作を行った場合、凍結保存前後で形状の変化は観察されず、粒子数もほぼ保たれていた。
以上の結果から、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞の凍結操作の回数によらず、細胞外小胞を凍結保存させる際に、細胞外小胞を安定化させる効果を有することが判った。
また、図９の電子顕微鏡により観察した像より、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を用いて、－２０℃で１５回、細胞外小胞の凍結融解操作を行った場合、凍結保存前後で形状の変化は観察されず、粒子数もほぼ保たれていた。
以上の結果から、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞の凍結操作の回数によらず、細胞外小胞を凍結保存させる際に、細胞外小胞を安定化させる効果を有することが判った。
＜比較例４．トレハロースを用いたエクソソームの保存安定化試験＞
トレハロースは、エクソソームの凍結保存において、エクソソームの凝集を抑制し粒子数を保持することにより、エクソソームを凍結保存によるダメージから保護し安定化させることが示唆されている（非特許文献１）。そこで、本発明に係る安定化剤と同様、トレハロースが、凍結保存時に粒子数の減少を抑制するのみならず、エクソソームマーカー（エクソソームの表面抗原）の活性を保持可能であるか検証した。
（１）エクソソームの取得
実施例１と同様の方法により、ＣＯＬＯ２０１細胞の培養上清からエクソソームを精製し、エクソソーム精製溶液を取得した。
（２）エクソソームの凍結保存
得られたエクソソーム精製溶液を、４℃で１６時間インキュベートした。次いで、トレハロース（富士フイルム和光純薬株式会社製）を大塚蒸留水（大塚製薬株式会社製）に溶解させ、５００ｍＭトレハロース水溶液を調製した。インキュベート後のエクソソーム精製溶液に、５００ｍＭトレハロース水溶液を、終濃度２５ｍＭとなるように添加した。得られた溶液を「トレハロース含有－凍結保存前エクソソーム溶液」と略記する場合がある。次いで、トレハロースを添加したエクソソーム溶液を用いて、－８０℃で５分間凍結した後室温で５分間融解する条件で３回凍結融解操作を繰り返した。得られた溶液を「トレハロース含有－凍結保存後エクソソーム溶液」と略記する場合がある。
（３）エクソソームマーカーの吸光度測定
「トレハロース含有－凍結保存前エクソソーム溶液」からエクソソームマーカーであるＣＤ９を、ＰＳ Ｃａｐｔｕｒｅ（登録商標）エクソソームＥＬＩＳＡキット（ストレプトアビジンＨＲＰ）（富士フイルム和光純薬株式会社）を用いて、当該キットに添付の説明書に記載の手順に従って測定し、吸光度を算出した。但し、ＣＤ９を検出する為、抗ＣＤ９，モノクローナル抗体（３０Ｂ）（富士フイルム和光純薬株式会社）をビオチン標識用キット－ＳＨ（ＬＫ１０，株式会社同仁化学研究所）によりビオチン標識したものを、キット中の抗ＣＤ６３抗体の代わりに使用した。
更に、コントロールとして、「トレハロース含有－凍結保存後エクソソーム溶液」の代わりに「トレハロース含有－凍結保存前エクソソーム溶液」を用いて、同様の方法によりＣＤ９を測定して吸光度を求めた。
吸光度から、「トレハロース含有－凍結保存前エクソソーム溶液」の吸光度を１００［％］とした場合の、それぞれの溶液の吸光度の相対値［％］を、エクソソームマーカー毎に算出した。算出した値を「シグナル値」と略記する場合がある。
（４）結果
シグナル値の結果を図１０のグラフに示す。図中、トレハロース＋が比較例４の結果を示し、トレハロース－は後述する比較例５の結果を示す。図１０において、横軸はトレハロースの有無を示す。また、縦軸は、シグナル値を示す。
トレハロースは、エクソソームの凍結保存において、エクソソームの凝集を抑制し粒子数を保持することにより、エクソソームを凍結保存によるダメージから保護し安定化させることが示唆されている（非特許文献１）。そこで、本発明に係る安定化剤と同様、トレハロースが、凍結保存時に粒子数の減少を抑制するのみならず、エクソソームマーカー（エクソソームの表面抗原）の活性を保持可能であるか検証した。
（１）エクソソームの取得
実施例１と同様の方法により、ＣＯＬＯ２０１細胞の培養上清からエクソソームを精製し、エクソソーム精製溶液を取得した。
（２）エクソソームの凍結保存
得られたエクソソーム精製溶液を、４℃で１６時間インキュベートした。次いで、トレハロース（富士フイルム和光純薬株式会社製）を大塚蒸留水（大塚製薬株式会社製）に溶解させ、５００ｍＭトレハロース水溶液を調製した。インキュベート後のエクソソーム精製溶液に、５００ｍＭトレハロース水溶液を、終濃度２５ｍＭとなるように添加した。得られた溶液を「トレハロース含有－凍結保存前エクソソーム溶液」と略記する場合がある。次いで、トレハロースを添加したエクソソーム溶液を用いて、－８０℃で５分間凍結した後室温で５分間融解する条件で３回凍結融解操作を繰り返した。得られた溶液を「トレハロース含有－凍結保存後エクソソーム溶液」と略記する場合がある。
（３）エクソソームマーカーの吸光度測定
「トレハロース含有－凍結保存前エクソソーム溶液」からエクソソームマーカーであるＣＤ９を、ＰＳ Ｃａｐｔｕｒｅ（登録商標）エクソソームＥＬＩＳＡキット（ストレプトアビジンＨＲＰ）（富士フイルム和光純薬株式会社）を用いて、当該キットに添付の説明書に記載の手順に従って測定し、吸光度を算出した。但し、ＣＤ９を検出する為、抗ＣＤ９，モノクローナル抗体（３０Ｂ）（富士フイルム和光純薬株式会社）をビオチン標識用キット－ＳＨ（ＬＫ１０，株式会社同仁化学研究所）によりビオチン標識したものを、キット中の抗ＣＤ６３抗体の代わりに使用した。
更に、コントロールとして、「トレハロース含有－凍結保存後エクソソーム溶液」の代わりに「トレハロース含有－凍結保存前エクソソーム溶液」を用いて、同様の方法によりＣＤ９を測定して吸光度を求めた。
吸光度から、「トレハロース含有－凍結保存前エクソソーム溶液」の吸光度を１００［％］とした場合の、それぞれの溶液の吸光度の相対値［％］を、エクソソームマーカー毎に算出した。算出した値を「シグナル値」と略記する場合がある。
（４）結果
シグナル値の結果を図１０のグラフに示す。図中、トレハロース＋が比較例４の結果を示し、トレハロース－は後述する比較例５の結果を示す。図１０において、横軸はトレハロースの有無を示す。また、縦軸は、シグナル値を示す。
＜比較例５．エクソソームの保存安定化試験＞
表１に記載の条件に従い、５００ｍＭトレハロース水溶液をインキュベート後のエクソソーム精製溶液に添加しなかった以外は、比較例４と同様の方法により測定を行い、シグナル値［％］を算出した。
シグナル値の結果を図１０に示す。図中、トレハロース－が比較例５の結果を示す。
図１０のグラフより、トレハロースを添加せずエクソソーム溶液のみを凍結保存した場合（比較例５）、凍結保存後のシグナル値は、凍結保存前のシグナル値に比べて、いずれのエクソソームマーカーにおいても著しく低下した。他方、トレハロースを含有させて凍結保存した場合（比較例４）においても、エクソソームマーカーのシグナル値は著しく低下した。
表１に記載の条件に従い、５００ｍＭトレハロース水溶液をインキュベート後のエクソソーム精製溶液に添加しなかった以外は、比較例４と同様の方法により測定を行い、シグナル値［％］を算出した。
シグナル値の結果を図１０に示す。図中、トレハロース－が比較例５の結果を示す。
図１０のグラフより、トレハロースを添加せずエクソソーム溶液のみを凍結保存した場合（比較例５）、凍結保存後のシグナル値は、凍結保存前のシグナル値に比べて、いずれのエクソソームマーカーにおいても著しく低下した。他方、トレハロースを含有させて凍結保存した場合（比較例４）においても、エクソソームマーカーのシグナル値は著しく低下した。
比較例４及び比較例５の結果から、トレハロースは、エクソソームの凍結保存時に粒子数減少を抑制することが示唆されているが、トレハロースを用いてもエクソソームマーカー（エクソソームの表面抗原）の活性は保持できないことが判った。
＜実施例６．Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦを用いたエクソソームの保存安定化試験＞
ポリビニルピロリドンのエクソソームを凍結保存させる際の保存安定化効果について、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦおよびＣＯＬＯ２０１細胞の培養上清由来エクソソームを用いて検証した。
（１）エクソソームの取得
実施例１と同様の方法により、ＣＯＬＯ２０１細胞の培養上清からエクソソームを精製し、エクソソーム精製溶液を取得した。
（２）エクソソームの凍結保存融解
得られたエクソソーム精製溶液を、４℃で１６時間インキュベートした。次いで、市販のポリビニルピロリドンであるＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ（ＢＡＳＦ社製）を大塚蒸留水に溶解させ、１０％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ １７ＰＦ水溶液を調整した。インキュベート後のエクソソーム精製溶液に、１０％ Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ水溶液を、終濃度０．１％となるように添加した。得られた溶液を、「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存前エクソソーム溶液」と略記する場合がある。次いで、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦを添加したエクソソーム溶液を用いてに対し、－８０℃で５分間凍結させ室温で５分間融解させる－８０℃で５分間凍結した後室温で５分間融解する条件にて、３回凍結融解した。得られた溶液を、「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存後エクソソーム溶液」と略記する場合がある。
（３）保存安定化効果の検証
「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存後エクソソーム溶液」を測定試料として、ＰＳ Ｃａｐｔｕｒｅ（登録商標）エクソソームＥＬＩＳＡキット（ストレプトアビジンＨＲＰ）（富士フイルム和光純薬株式会社、抗ＣＤ６３抗体を含む）における抗ＣＤ６３抗体の代わりに抗ＣＤ９抗体を用いた以外は、当該キットに添付の説明書に記載の手順に従ってエクソソームマーカーであるＣＤ９を測定し、吸光度を得た。抗ＣＤ９抗体は、抗ＣＤ９，モノクローナル抗体（３０Ｂ）（富士フイルム和光純薬株式会社）をビオチン標識用キット－ＳＨ（ＬＫ１０，株式会社同仁化学研究所）によりビオチン標識したものを用いた。更に、コントロールとして、「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存前エクソソーム溶液」を用いて、同様の方法によりＣＤ９をそれぞれ測定して吸光度を得た。
得られた吸光度から、「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存前エクソソーム溶液」の吸光度を１００［％］とした場合の、それぞれの溶液「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存後エクソソーム溶液」の吸光度の相対値［％］（シグナル値）を算出した。
（４）結果
シグナル値の結果を図１１のグラフに示す。図１１において、横軸はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）の種類および有無を示し、縦軸は、シグナル値をそれぞれ示す。図中、１７ＰＦ＋が実施例６の結果を示す。
ポリビニルピロリドンのエクソソームを凍結保存させる際の保存安定化効果について、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦおよびＣＯＬＯ２０１細胞の培養上清由来エクソソームを用いて検証した。
（１）エクソソームの取得
実施例１と同様の方法により、ＣＯＬＯ２０１細胞の培養上清からエクソソームを精製し、エクソソーム精製溶液を取得した。
（２）エクソソームの凍結保存融解
得られたエクソソーム精製溶液を、４℃で１６時間インキュベートした。次いで、市販のポリビニルピロリドンであるＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ（ＢＡＳＦ社製）を大塚蒸留水に溶解させ、１０％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ １７ＰＦ水溶液を調整した。インキュベート後のエクソソーム精製溶液に、１０％ Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ水溶液を、終濃度０．１％となるように添加した。得られた溶液を、「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存前エクソソーム溶液」と略記する場合がある。次いで、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦを添加したエクソソーム溶液を用いてに対し、－８０℃で５分間凍結させ室温で５分間融解させる－８０℃で５分間凍結した後室温で５分間融解する条件にて、３回凍結融解した。得られた溶液を、「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存後エクソソーム溶液」と略記する場合がある。
（３）保存安定化効果の検証
「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存後エクソソーム溶液」を測定試料として、ＰＳ Ｃａｐｔｕｒｅ（登録商標）エクソソームＥＬＩＳＡキット（ストレプトアビジンＨＲＰ）（富士フイルム和光純薬株式会社、抗ＣＤ６３抗体を含む）における抗ＣＤ６３抗体の代わりに抗ＣＤ９抗体を用いた以外は、当該キットに添付の説明書に記載の手順に従ってエクソソームマーカーであるＣＤ９を測定し、吸光度を得た。抗ＣＤ９抗体は、抗ＣＤ９，モノクローナル抗体（３０Ｂ）（富士フイルム和光純薬株式会社）をビオチン標識用キット－ＳＨ（ＬＫ１０，株式会社同仁化学研究所）によりビオチン標識したものを用いた。更に、コントロールとして、「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存前エクソソーム溶液」を用いて、同様の方法によりＣＤ９をそれぞれ測定して吸光度を得た。
得られた吸光度から、「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存前エクソソーム溶液」の吸光度を１００［％］とした場合の、それぞれの溶液「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ含有－凍結融解凍結保存後エクソソーム溶液」の吸光度の相対値［％］（シグナル値）を算出した。
（４）結果
シグナル値の結果を図１１のグラフに示す。図１１において、横軸はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）の種類および有無を示し、縦軸は、シグナル値をそれぞれ示す。図中、１７ＰＦ＋が実施例６の結果を示す。
＜実施例７．Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦを用いたエクソソームの保存安定化試験＞
「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ」の代わりに「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦ」を使用した以外は、実施例６と同様の方法によりＣＤ９を測定し、相対的シグナル値を算出した。相対的シグナル値の結果を図１１のグラフに示す。図中、１２ＰＦ＋が実施例７の結果を示す。
「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ」の代わりに「Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦ」を使用した以外は、実施例６と同様の方法によりＣＤ９を測定し、相対的シグナル値を算出した。相対的シグナル値の結果を図１１のグラフに示す。図中、１２ＰＦ＋が実施例７の結果を示す。
＜比較例６．凍結融解がエクソソームの安定化に与える影響＞
表１に記載の条件に従い、１０％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ １２ＰＦ水溶液をインキュベート後のエクソソーム精製溶液に添加しなかった以外は、実施例６と同様の方法により測定を行い、シグナル値［％］を算出した。シグナル値の結果を図１１のグラフに示す。図中、Ｃｏｎｔｒｏｌが比較例６の結果を示す。
表１に記載の条件に従い、１０％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ １２ＰＦ水溶液をインキュベート後のエクソソーム精製溶液に添加しなかった以外は、実施例６と同様の方法により測定を行い、シグナル値［％］を算出した。シグナル値の結果を図１１のグラフに示す。図中、Ｃｏｎｔｒｏｌが比較例６の結果を示す。
図１１のグラフより、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ又はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦを用いずにエクソソーム溶液のみを凍結保存した場合（比較例６）、凍結保存後のシグナル値は、凍結保存前のシグナル値に比べて著しく低下した。
他方、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を用いて凍結保存した場合と同様、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ又はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦを用いて凍結保存した場合（実施例６、実施例７）、いずれも凍結保存の回数に依らず、凍結保存の前後でシグナル値はほぼ変化しなかった。
これらの結果から、ポリビニルピロリドンも、細胞外小胞を凍結保存する際に、細胞外小胞を保存安定化させる効果を有することが判った。
他方、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を用いて凍結保存した場合と同様、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１７ＰＦ又はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）１２ＰＦを用いて凍結保存した場合（実施例６、実施例７）、いずれも凍結保存の回数に依らず、凍結保存の前後でシグナル値はほぼ変化しなかった。
これらの結果から、ポリビニルピロリドンも、細胞外小胞を凍結保存する際に、細胞外小胞を保存安定化させる効果を有することが判った。
実施例１－８、比較例１－６、および実験例１－４の実験条件、並びに結果を示す図の番号を下記表１に纏めて示す。
＜実施例８．エクソソームの保存安定化試験＞
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４のエクソソームを凍結保存する際の保存安定化効果について、プロテオーム解析により検証した。
（１）エクソソームの取得
実施例１と同様の方法により、ＣＯＬＯ２０１細胞の培養上清からエクソソームを精製し、エクソソーム精製溶液を取得した。
（２）エクソソームの凍結保存
得られたエクソソーム精製溶液を、４℃で１６時間インキュベートした。次いで、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液（Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４（ＢＡＳＦ社製）、大塚蒸留水（大塚製薬株式会社製））を調製した。インキュベート後のエクソソーム精製溶液に、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液を終濃度０．０５％（ｗ／ｖ）となるように添加した。得られた溶液を－８０℃で８日間凍結した後、室温で１０分間融解した。
（３）保存安定化効果の検証
凍結融解後の溶液を用いて、アセトンによるタンパク質沈殿処理を行い、さらにアセトンにより洗浄した。その後、トリプシンによる加水分解処理を行い、ＬＣ－ＭＳ／ＭＳに供した。ＭＳ／ＭＳから抽出したデータを基に配列データベース検索により、ペプチド及びタンパク質を同定した。
（４）結果
同定されたペプチド数及びタンパク質数を下記表２に示す。表中、ＶＡ６４はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を示す。ＶＡ６４添加が実施例８の結果を表す。
Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４のエクソソームを凍結保存する際の保存安定化効果について、プロテオーム解析により検証した。
（１）エクソソームの取得
実施例１と同様の方法により、ＣＯＬＯ２０１細胞の培養上清からエクソソームを精製し、エクソソーム精製溶液を取得した。
（２）エクソソームの凍結保存
得られたエクソソーム精製溶液を、４℃で１６時間インキュベートした。次いで、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液（Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４（ＢＡＳＦ社製）、大塚蒸留水（大塚製薬株式会社製））を調製した。インキュベート後のエクソソーム精製溶液に、５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液を終濃度０．０５％（ｗ／ｖ）となるように添加した。得られた溶液を－８０℃で８日間凍結した後、室温で１０分間融解した。
（３）保存安定化効果の検証
凍結融解後の溶液を用いて、アセトンによるタンパク質沈殿処理を行い、さらにアセトンにより洗浄した。その後、トリプシンによる加水分解処理を行い、ＬＣ－ＭＳ／ＭＳに供した。ＭＳ／ＭＳから抽出したデータを基に配列データベース検索により、ペプチド及びタンパク質を同定した。
（４）結果
同定されたペプチド数及びタンパク質数を下記表２に示す。表中、ＶＡ６４はＫｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を示す。ＶＡ６４添加が実施例８の結果を表す。
＜比較例７．凍結融解がエクソソームの保存安定化に与える影響＞
５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液をインキュベート後のエクソソーム精製溶液に添加しなかった以外は、実施例８と同様の方法によりプロテオーム解析を行い、凍結融解後の溶液に含まれるペプチド及びタンパク質を同定した。
同定されたペプチド数及びタンパク質数を表２に示す。ＶＡ６４非添加が比較例７の結果を表す。
５％（ｗ／ｖ）Ｋｏｌｌｉｄｏｎ水溶液をインキュベート後のエクソソーム精製溶液に添加しなかった以外は、実施例８と同様の方法によりプロテオーム解析を行い、凍結融解後の溶液に含まれるペプチド及びタンパク質を同定した。
同定されたペプチド数及びタンパク質数を表２に示す。ＶＡ６４非添加が比較例７の結果を表す。
表２より、Ｋｏｌｌｉｄｏｎ（登録商標）ＶＡ６４を用いてエクソソームの凍結融解を行った場合（実施例８）は、エクソソーム溶液のみを凍結融解した場合（比較例７）よりも、ペプチド数およびタンパク質数が多かった。
これらの結果から、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞を凍結保存する際に、細胞外小胞に含まれるタンパク質およびペプチドを安定的に保存できることが判った。
これらの結果から、ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーは、細胞外小胞を凍結保存する際に、細胞外小胞に含まれるタンパク質およびペプチドを安定的に保存できることが判った。
Claims (12)
- ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーを含み、
前記ポリマーがビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含み、重量平均分子量が、３，０００～２５０，０００である共重合体、又は重量平均分子量が１，５００～１５，０００であるポリビニルピロリドンであり、
ポリマーと細胞外小胞と水系溶媒とを含有する保存溶液の凍結保存に用いられる
細胞外小胞の保存安定化剤。 - 前記ポリマーが、前記共重合体である、請求項１に記載の保存安定化剤。
- 前記共重合体の前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が、１：０．１～１：３である、請求項２に記載の保存安定化剤。
- 前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が、５～５０である、請求項２に記載の保存安定化剤。
- 前記ポリマーが、前記ポリビニルピロリドンである、請求項１に記載の保存安定化剤。
- 前記ポリビニルピロリドンのフィケンチャーのＫ値が、９～２０である、請求項５に記載の保存安定化剤。
- ビニルピロリドン由来のモノマー単位を有するポリマーの存在下、細胞外小胞を凍結保存することを含んでなり、
前記ポリマーが、ビニルピロリドン由来のモノマー単位及びビニルアセテート由来のモノマー単位を含み、重量平均分子量が、３，０００～２５０，０００である共重合体、又は重量平均分子量が１，５００～１５，０００であるポリビニルピロリドンであり、
前記細胞外小胞を凍結保存することが、ポリマーと細胞外小胞と水系溶剤を含有する保存溶液を調製し、当該保存溶液を凍結保存することである
細胞外小胞の保存安定化方法。 - 前記ポリマーが、前記共重合体である、請求項７に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
- 前記共重合体の前記ビニルピロリドン由来のモノマー単位と前記ビニルアセテート由来のモノマー単位の構成比が１：０．１～１：３である、請求項８に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
- 前記共重合体のフィケンチャーのＫ値が、５～５０である、請求項８に記載の保存安定化方法。
- 前記ポリマーが、前記ポリビニルピロリドンである、請求項７に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
- 前記ポリビニルピロリドンのフィケンチャーのＫ値が、９～２０である、請求項１１に記載の細胞外小胞の保存安定化方法。
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