JP7393043B2 - オニノヤガラの有機栽培方法 - Google Patents
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Description
本発明は、オニノヤガラ栽培の技術分野に関し、具体的には、オニノヤガラの有機栽培方法に関する。
オニノヤガラ（Ｇａｓｔｒｏｄｉａ ｅｌａｔａ Ｂｌ．）はラン科（Ｏｒｃｈｉｄａｃｅａｅ）に属する多年生の草本植物で、中国の伝統的な漢方薬の１つであり、最初に赤箭の名で『神農本草経』に始めて載せられ、上品に収められており、塊茎で薬用になることが多く、医学的、健康管理的価値が極めて高い。オニノヤガラにはガストロジン、ｐ－ヒドロキシベンジルアルコール、多糖類、タンパク質、アミノ酸及び微量元素等の複数種の成分が含まれており、そのうち、ガストロジン（ｇａｓｔｒｏｄｉｎ，ＧＡＳ）、ｐ－ヒドロキシベンジルアルコール（ｐ－ｈｙｄｒｏｘｙｂｅｎｚｙｌ ａｌｃｏｈｏｌ，ＨＢＡ）はオニノヤガラの主な薬学的活性成分で、オニノヤガラの品質を評価する重要な指標である。過去にオニノヤガラはほとんど野生であったが、近年では人工栽培が成功している。オニノヤガラは根のない植物で、その塊茎が成長サイクル全体にわたって地下に埋められ、それに成長に必要な栄養を供給するためにナラタケ菌糸に依存しており、菌糸はその塊茎の皮質細胞内に生存することしかできず、オニノヤガラの茎の内部にさらに深く入ることができない。成長しているナラタケ菌糸束がオニノヤガラに触れると、菌糸束の分岐先端の成長点がオニノヤガラの元の球茎又は塊茎に侵入してから、オニノヤガラとナラタケの共生結合が始まる。オニノヤガラの栽培の主な段階は、発菌が迅速で、成長が旺盛で雑菌による汚染のない優れたナラタケ材料を栽培することである。ナラタケ材料は、オニノヤガラの人工栽培の品質に大きな影響を与え、特にオニノヤガラの効果成分の含有量に一定の影響を与え、したがって、適切なナラタケ材料をどのように栽培するかは、オニノヤガラの人工栽培の品質を向上させるための鍵となる。
本発明は、従来技術における、ナラタケ材料のオニノヤガラに対する成長促進効果が限られているという技術的問題を解決するために、オニノヤガラの有機栽培方法を提供することを目的とする。
上記目的を達成するために、本発明は以下の技術的解決手段を用いる。
オニノヤガラの有機栽培方法であって、クヌギの枝を棒材に切断し、棒材に魚鱗口を切り取って魚鱗口付きの棒材を得、次に沸騰水及び成長促進液で魚鱗口付きの棒材を順に浸漬し、成長促進処理後の棒材を得、次に成長促進処理後の棒材の各魚鱗口にナラタケ菌種及び接種基質を入れて菌材を得るという菌材の調製ステップを含み、
前記成長促進液及び前記接種基質は、新鮮なオニノヤガラの茎を細断して処理対象材料を得、バチルス・プミルス菌液を前記処理対象材料にスプレーし、発酵・培養して発酵後の材料を得、溶媒としてエタノールを使用して発酵後の材料に対して熱浸漬抽出を行い、次に固液分離して残渣及び抽出液を得、前記残渣を湿熱滅菌、乾燥処理及び粉砕して前記接種基質を得、前記抽出液を濃縮、再溶解及び湿熱滅菌して成長促進液を得ることによって調製される。
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本解決手段の原理及び利点は以下のとおりである。
バチルス・プミルスを用いたオニノヤガラの茎の発酵により、オニノヤガラの茎の物質を成長促進機能のある複数の成分に変換し、次にエタノールによってこれらの成分を抽出して、成長促進液を形成することができる。成長促進液で棒材を処理し、菌材を調製することで、オニノヤガラの成長及び効果成分の蓄積を促進することができる。また、エタノールで抽出した薬渣で栽培基質を調製することで、ナラタケの成長に栄養を供給することもできる。オニノヤガラの成長過程で、ナラタケ菌糸から成長に必要な栄養を供給し、本技術的解決手段の菌材を用いることにより、オニノヤガラとナラタケの共生過程におけるオニノヤガラへの栄養の供給を促進するとともに、オニノヤガラの二次代謝産物の蓄積を促進することができる。本技術的解決手段で調製された菌材を用いてオニノヤガラを培養して得られたオニノヤガラ完成品の塊茎のガストロジン（Ｃ１３Ｈ１８Ｏ７）及びｐ－ヒドロキシベンジルアルコール（Ｃ７Ｈ８Ｏ２）の総含有量は理想的である。また、バチルス・プミルス、バチルス・サブチリス、バチルス・サーキュランス及びバチルス・マイコイデスはいずれもオニノヤガラ野生の成長環境で一般的な微生物であり、本発明者らはこれらの微生物を利用してオニノヤガラ栽培の品質を向上させようとした。スクリーニングにより、バチルス・プミルスでオニノヤガラの茎を処理することによって得られた微生物変換産物の成長促進効果が最適であることが分かった。
栽培されたオニノヤガラは中国のオニノヤガラ薬材商品の主な供給源となり、オニノヤガラの塊茎が大量に収穫されると同時に、オニノヤガラの地上部分（茎を含む）の副産物が毎年大量に生産されており、製紙、メタンガス又は飼料に用いられ、オニノヤガラの茎の付加価値は十分に開発されておらず、本技術的解決手段はバチルス・プミルスを発酵させて、オニノヤガラの茎を成長促進効果のある物質に変換し、オニノヤガラの茎の使用を拡大し、オニノヤガラ資源の総合的利用に条件を作り出す。
要約すると、本技術的解決手段で調製された菌材はオニノヤガラの成長及び効果成分の蓄積を促進する上で積極的な役割を果たすことができ、また本技術的解決手段はオニノヤガラ栽培の廃棄部分を回収し、廃棄物を宝に変え、さらにオニノヤガラ資源の総合利用率及び栽培されたオニノヤガラの品質を向上させる。
さらに、前記発酵培養の温度が４０～４５℃であり、回転数が１００ｒｐｍであり、時間が４８ｈであり、発酵培養過程で、２～３ｈごとに前記処理対象材料にバチルス・プミルス菌液をスプレーし、毎回スプレーする時、処理対象材料とバチルス・プミルス菌液の使用量比は１００ｇ：１５～２０ｍｌである。
上記技術的解決手段を用いることにより、上記発酵及び培養条件下で、バチルス・プミルスはオニノヤガラの茎の成分に対して微生物変換を行い、成長促進効果のある物質を生成することができる。発酵培養過程で、処理対象材料にバチルス・プミルス菌液をスプレーして、新鮮な菌種を補充するだけでなく、発酵培養過程で損失した水分も補充する。
さらに、バチルス・プミルス菌液のＯＤ６００値は１である。
上記技術的解決手段を用いることにより、上記濃度のバチルス・プミルス菌液を用いてオニノヤガラの茎を十分に発酵させることができる。ＯＤ６００値が１である場合、細菌は比較的理想的な活性を有する。一般的に、ＯＤ６００値が１であることは２×１０９ｃｆｕ／ｍｌの細菌数を表す。
さらに、前記熱浸漬抽出の温度は８０～９０℃であり、時間は１０～１２ｈである。
上記技術的解決手段を用いることにより、発酵後の材料の成長促進効果のある成分を十分に抽出することができる。
さらに、熱浸漬抽出において、前記エタノールの体積百分率は８０％であり、発酵後の材料とエタノールの使用量比は１ｇ：２５ｍＬである。
上記技術的解決手段を用いることにより、上記エタノールの濃度と使用量は、溶剤による発酵後の材料の効果成分の浸出を保証することができる。
さらに、前記抽出液を相対密度１．１０のエキスに濃縮し、次にエキス１ｇ当たり２５ｍＬの水で再溶解し、さらに湿熱滅菌して前記成長促進液を得る。
上記技術的解決手段を用いることにより、濃縮、滅菌処理を経て、材料のエチルアルコールを十分に揮発させ、且つその中の雑菌を除去し、雑菌がオニノヤガラ及びナラタケ等の成長に影響を与えることを避ける。
さらに、前記残渣を湿熱滅菌した後、５０℃の条件下で含水量が５％未満になるまで乾燥させ、さらに粉砕して１番篩にかけて前記接種基質を得る。
上記技術的解決手段を用いることにより、残渣を滅菌して、その中の雑菌を除去し、雑菌がオニノヤガラ及びナラタケ等の成長に影響を与えることを避ける。残渣を乾燥させ、粉砕することで、その後のナラタケ菌種との混合を容易にする。
さらに、ナラタケ菌種と接種基質の質量比は２～４：１である。
上記技術的解決手段を用いることにより、上記配合比で、接種基質はその成長促進効果を十分に発揮することができる。
さらに、沸騰水及び成長促進液で魚鱗口付きの棒材を順に浸漬する方法は、沸騰水で棒材を５ｍｉｎ浸漬し、棒材が冷却した後、成長促進液で棒材を１２ｈ浸漬することである。
上記技術的解決手段を用いることにより、まず沸騰水で浸漬し、棒材の微生物や虫卵などを最初に除去する。上記浸漬時間を用いることで、棒材が成長促進液の成長促進物質を十分に吸収することを保証できる。
さらに、前記棒材の直径は８～１０ｃｍであり、長さは６０～７０ｃｍであり、前記魚鱗口は棒材の長さ方向に沿って配列され、隣接する魚鱗口は２～３ｃｍ離れている。
上記技術的解決手段を用いることにより、直径８～１０ｃｍは従来技術における菌材（棒材）の一般的なサイズであり、長さ６０～７０ｃｍはインキュベータのサイズに適している。隣接する魚鱗口は菌材に十分なナラタケが接種されることを確保するために２～３ｃｍ離れている。
以下、実施例を参照しながら本発明をさらに詳細に説明するが、本発明の実施形態はこれに限定されるものではない。特に指定しない限り、下記実施例及び実験例に用いられる技術的手段は当業者に周知の一般的な手段であり、用いられる材料、試薬等はいずれも商業的に入手可能である。
以下、具体的な実施形態によってさらに詳細に説明する。
実施例１
（１）菌材の調製：クヌギ（Ｑｕｅｒｃｕｓ ａｃｕｔｉｓｓｉｍａ Ｃａｒｒｕｔｈ．）の枝を選択して菌材を調製し、具体的には、直径８～１０ｃｍのクヌギの新鮮な枝を選択し、且つ枝を長さが６０～７０ｃｍ程度の棒材に切断した。棒材に複数の魚鱗口を切り取った。魚鱗口は棒材の長さ方向に沿って配列され、隣接する魚鱗口は２～３ｃｍ離れていた。次に棒材を沸騰水に入れて５ｍｉｎ浸漬し、取り出して冷却した後、さらに成長促進液で棒材を１２ｈ浸漬して、成長促進処理後の棒材を得た。次に成長促進処理後の棒材を、棒材の含水量が７０％に低下するまで乾燥させる。次にナイフで魚鱗口をこじ開け、各魚鱗口に小指サイズのナラタケ菌種を入れ、同時に接種基質を入れ、接種基質とナラタケ菌種の質量比は１：２であった（操作しやすくするために、一般的に、接種基質をナラタケ菌種の外側に塗布し、次に魚鱗口に入れる）。接種が完了した後、力を入れて魚鱗口に押し付けて、菌材の調製が完了した。菌材を得た後、オニノヤガラの種球を栽培するか又は完成品オニノヤガラを栽培するステップをできるだけ早く行う必要がある。
成長促進液及び接種基質の調製はオニノヤガラの栽培に廃棄されたオニノヤガラの茎を利用し、方法は具体的には以下のとおりである。
新鮮なオニノヤガラの茎を細断し、処理対象材料を得た。処理対象材料を３～４ｃｍの厚さで培養プレート上に平らに広げ、次に処理対象材料の表面にバチルス・プミルス菌液をスプレーし、処理対象材料とバチルス・プミルス菌液の使用量比は１００ｇ：２０ｍｌであった。次に４０℃の恒温振とう器に置き、１００ｒｐｍで４８ｈ培養し（ガーゼで処理対象材料の上を覆う必要がある）、３ｈごとに等量のバチルス・プミルス菌液を追加してスプレーした。発酵処理を行った後、発酵後の材料を得た。バチルス・プミルス菌液の取得方法は以下のとおりである。バチルス・プミルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｐｕｍｉｌｕｓ Ｍｅｙｅｒ ｍｅｄｉｕｍ，ＡＴＣＣ ７０６１）を５％の接種量で通常のＬＢ培地に接種し、３７℃、１００ｒｐｍで恒温培養して、ＯＤ６００値が１程度になるまで培養を停止し、バチルス・プミルス菌液を得た。
発酵後の材料を体積分率８０％のエタノールに入れ、発酵後の材料１ｇ当たり２５ｍＬのエタノールを加え、９０℃で１０ｈ浸漬し、濾過して固液分離して、残渣及び抽出液を得た。抽出液を通常の減圧蒸留によってそれを相対密度が１．１０程度のエキスに濃縮し、次に純水でエキスを十分に溶解し（エキスと純水の使用量比は１ｇ：２５ｍＬである）、さらに１２１℃、０．１ＭＰａの条件下で３０ｍｉｎ湿熱滅菌して、成長促進液を得た。残渣を１２１℃、０．１ＭＰａの条件下で３０ｍｉｎ湿熱滅菌し、次に５０℃のオーブンで恒量になるまで乾燥させ、さらに粉砕して１番篩にかけて接種基質を得た。
（２）オニノヤガラの種球の栽培：１０月下旬に栽培し、まず栽培箱に１層の厚さ４～６ｃｍの土壌（第１土壌層）を敷き、菌材を栽培箱の底部に敷き（第１菌材層を形成する）、隣接する菌材の間に１～２ｃｍの間隔をあけ、さらに浸漬したオニノヤガラの種子及びシロコナカブリ菌種（オニノヤガラの発芽菌）を均一に撒いた。オニノヤガラの種子の播種量は０．５ｋｇ／ｍ２程度（重量は浸漬していない種子で計算する）であり、シロコナカブリ菌種を小さなブロックに切った後に播種し、播種量は０．３ｋｇ／ｍ２程度であった。次に厚さ１～２ｃｍの土壌で覆い（第２土壌層）、第２土壌層に菌材を平らに敷き（第２菌材層を形成する）、隣接する菌材の間に３～４ｃｍの間隔をあけ、最後に第２菌材層に厚さ５～７ｃｍの土壌を覆った（第３土壌層）。栽培箱内の含水量を６０％程度に制御するように栽培箱をタイムリーに適量の水をスプレーし、栽培箱の温度を２５℃程度に制御して、６ヶ月の培養を経て、オニノヤガラの種球（即ち、球茎、又はイチビと呼ばれる）を得た。ここで、オニノヤガラノの種子を浸漬する方法は、清水でオニノヤガラノの種子を８ｈ浸漬することである。
（３）完成品オニノヤガラの栽培：翌年４月下旬に栽培し、まず栽培箱に１層の厚さ４～６ｃｍの土壌を敷き（第１土壌層）、菌材を栽培箱の底部に平らに敷き（第１菌材層を形成する）、隣接する菌材の間に１～２ｃｍの間隔をあけ、次に第１菌材層にオニノヤガラの種球（隣接するオニノヤガラの種球の間隔は７ｃｍである）を均一に置き、次に厚さ５～７ｃｍの土壌を覆った（第２土壌層）。栽培箱内の含水量を６０％程度に制御するように栽培箱をタイムリーに適量の水をスプレーし、栽培箱の温度を２５℃程度に制御して、７ヶ月の培養を経て、完成品オニノヤガラの種球を得ることができ、その塊茎を採取して実験研究を行った。
（４）完成品の検出：本実施例で得られたオニノヤガラ塊茎の効果成分を検出し、合計１０個のサンプル（１０個のオニノヤガラの塊茎）を選択して検出した。検出方法は『中国薬典』におけるオニノヤガラの含有量の測定部分を参照した。
高速液体クロマトグラフィーの条件は具体的には以下のとおりである。オクタデシルシラン結合シリカゲルを充填剤とし、アセトニトリル－０．０５％リン酸溶液（３：９７）を移動相とし、検出波長は２２０ｎｍであった。
対照品溶液の調製方法は以下のとおりである。ガストロジン対照品、ｐ－ヒドロキシベンジルアルコール対照品を適量取り、精密に秤量し、アセトニトリル－水（３：９７）の混合溶液を加えて１ｍｌあたりガストロジン５０μｇ、ｐ－ヒドロキシベンジルアルコール２５μｇを含む混合溶液に調製すると得られた。
供試品溶液の調製方法は以下のとおりである。オニノヤガラの塊茎粉末（３番篩にかけ）約２ｇを取り、精密に秤量し、共栓付き三角フラスコに入れ、希エタノール５０ｍｌを精密に加え、重量を秤量し、３０ｍｉｎ超音波処理し（電力１２０Ｗ、周波数４０ｋＨｚ）、冷やし、次に重量を秤量し、希エタノールで損失した重量を補い、濾過し、次の濾液１０ｍｌを精密に量り取り、ほぼ乾燥してアルコール臭がなくなるまで濃縮し、残渣にアセトニトリル－水（３：９７）の混合溶液を加えて溶解し、２５ｍｌのメスフラスコに移し、アセトニトリル－水（３：９７）の混合溶液で目盛りまで希釈し、均一に振盪し、濾過し、次の濾液を取ると得られた。オニノヤガラの塊茎粉末はオニノヤガラの塊茎を５０℃の恒温で恒量になるまで乾燥させた後、粉砕して得られた。
測定法は以下のとおりである。それぞれ対照品溶液と供試品溶液を５μｌずつ精密に吸引し、液体クロマトグラフに注入し、測定すると得られた。検出結果を表１に示した。
実施例２
本実施例は基本的に実施例１と同じであり、相違点は、成長促進液及び接種基質の調製方法にあり、具体的には以下のとおりである。
新鮮なオニノヤガラの茎を細断して処理対象材料を得た。処理対象材料を３～４ｃｍの厚さで培養プレート上に平らに広げ、次に処理対象材料の表面にバチルス・プミルス菌液をスプレーし、処理対象材料とバチルス・プミルス菌液の使用量比は１００ｇ：１５ｍｌであった。次に４５℃の恒温振とう器に置き、１００ｒｐｍで４８ｈ培養し、２ｈごとに等量のバチルス・プミルス菌液を追加してスプレーした。発酵処理を行った後、発酵後の材料を得た。バチルス・プミルス菌液の取得方法は以下のとおりである。バチルス・プミルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｐｕｍｉｌｕｓ Ｍｅｙｅｒ ｍｅｄｉｕｍ，ＡＴＣＣ ７０６１）を５％の接種量で通常のＬＢ培地に接種して、ＯＤ６００値が１になるまで培養を停止し、バチルス・プミルス菌液を得た。
発酵後の材料を体積分率８０％のエタノールに入れ、発酵後の材料１ｇ当たり２５ｍＬのエタノールを加え、８０℃で１２ｈ浸漬し、濾過して固液分離して、残渣及び抽出液を得た。抽出液を相対密度が１．１０程度のエキスに濃縮し、次に純水でエキスを十分に溶解し（エキスと純水の使用量比は１ｇ：２５ｍＬである）、さらに１２１℃、０．１ＭＰａの条件下で３０ｍｉｎ湿熱滅菌して成長促進液を得た。残渣を１２１℃、０．１ＭＰａの条件下で３０ｍｉｎ湿熱滅菌し、次に５０℃のオーブンで恒量になるまで乾燥させ、さらに粉砕して１番篩にかけて接種基質を得た。
実施例３
本実施例は基本的に実施例１と同じであり、相違点は、成長促進液及びナラタケ菌種の質量比が１：４であることにある。
比較例１
本比較例は基本的に実施例１と同じであり、相違点は、棒材が成長促進浸漬処理を行わないことにあり、菌材の調製過程は、具体的には、以下のとおりである。
クヌギの枝を選択して菌材を調製し、具体的には、直径８～１０ｃｍのクヌギの新鮮な枝を選択し、且つ枝を長さが７０ｃｍ程度の棒材に切断した。棒材に複数の魚鱗口を切り取り、次に棒材を沸騰水に入れて５ｍｉｎ浸漬し、取り出して冷却した後、棒材の含水量が７０％に低下するまで棒材を乾燥させた。次にナイフで魚鱗口をこじ開け、各魚鱗口に小指サイズのナラタケ菌種を入れた。接種が完了した後、力を入れて魚鱗口に押し付けて、菌材の調製が完了した。菌材を得た後、オニノヤガラの種球を栽培するか又は完成品オニノヤガラを栽培するステップをできるだけ早く行う必要がある。
比較例２
本比較例は基本的に実施例１と同じであり、相違点は、バチルス・サブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ（Ｅｈｒｅｎｂｅｒｇ）Ｃｏｈｎ，ＡＴＣＣ ６０５１）を用いてバチルス・プミルスを等量置換することにある。
比較例３
本比較例は基本的に実施例１と同じであり、相違点は、バチルス・サーキュランス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｉｒｃｕｌａｎｓＪｏｒｄａｎ，ＡＴＣＣ ４５１３）を用いてバチルス・プミルスを等量置換することにある。
比較例４
本比較例は基本的に実施例１と同じであり、相違点は、バチルス・マイコイデス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｙｃｏｉｄｅｓＦｌｕｇｇｅ，ＡＴＣＣ １９６４７）を用いてバチルス・プミルスを等量置換することにある。
比較例５
本比較例は基本的に実施例１と同じであり、相違点は以下の技術的段階にある。
発酵後の材料を純水に入れ、発酵後の材料１ｇあたり２５ｍＬの純水を加え、９０℃で１０ｈ浸漬し、濾過して固液分離して、残渣及び抽出液を得た。抽出液を相対密度が１．１０程度のエキスに濃縮し、次に純水でエキスを十分に溶解し（エキスと純水の使用量比は１ｇ：２５ｍＬである）、次に１２１℃、０．１ＭＰａの条件下で３０ｍｉｎ湿熱滅菌して成長促進液を得た。残渣を１２１℃、０．１ＭＰａの条件下で３０ｍｉｎ湿熱滅菌し、次に５０℃のオーブンで含水量が５％（質量百分率）未満になるまで乾燥させ、さらに粉砕して１番篩にかけて接種基質を得た。
実施例１～３、比較例１～５で得られたオニノヤガラの塊茎を検出し（実験の平行性を保証するために、実施例１～３及び比較例１～５で使用したオニノヤガラの種子はいずれも同一バッチである）、結果を表１に示し、ガストロジン（Ｃ１３Ｈ１８Ｏ７）とｐ－ヒドロキシベンジルアルコール（Ｃ７Ｈ８Ｏ２）の総量は、乾燥品の２種類の物質の質量分率で計算し、表中の「総含有量」とは、ガストロジン及びｐ－ヒドロキシベンジルアルコールの総量を指す。
表１：実施例１～３、比較例１～５のオニノヤガラの塊茎の検出結果（平均総含有量（％）の表示形式は平均値±標準偏差である）
表１の実験結果から分かるように、実施例１～３を用いて、本技術的解決手段のオニノヤガラの有機栽培方法を使用して得られたオニノヤガラ完成品の塊茎のガストロジン（Ｃ１３Ｈ１８Ｏ７）及びｐ－ヒドロキシベンジルアルコール（Ｃ７Ｈ８Ｏ２）の総含有量は理想的である。これは、バチルス・プミルスを用いたオニノヤガラの茎の発酵により、オニノヤガラの茎の物質を成長促進機能のある複数の成分に変換し、次にエタノールによってこれらの成分を抽出して、成長促進液を形成できることを示している。成長促進液で棒材を処理し、菌材を調製することで、オニノヤガラの成長及び効果成分の蓄積を促進できる。また、エタノールで抽出した薬渣で栽培基質を調製することで、ナラタケの成長に栄養を供給することもできる。オニノヤガラの成長過程で、ナラタケ菌糸から成長に必要な栄養を供給し、本技術的解決手段の菌材を用いることにより、オニノヤガラとナラタケの共生過程におけるオニノヤガラへの栄養供給を促進するとともに、オニノヤガラの二次代謝物の蓄積を促進することができる。比較例１では、本解決手段の成長促進液及び接種基質を使用せずに得られたオニノヤガラのガストロジン及びｐ－ヒドロキシベンジルアルコールの総含有量は低かった。比較例２～４では、それぞれバチルス・サブチリス、バチルス・サーキュランス及びバチルス・マイコイデスを使用してオニノヤガラの茎を発酵処理したが、その効果はバチルス・プミルスに及ばなかった。バチルス・プミルス、バチルス・サブチリス、バチルス・サーキュランス及びバチルス・マイコイデスはいずれもオニノヤガラの野生の成長環境で一般的な微生物で、本発明者らはこれらの微生物を利用してオニノヤガラ栽培品質を向上させようとした。実験により、これらのバチルスの発酵効果に差異があり、バチルス・プミルスの効果は他のものより有意に優れていることが分かった（ｔ検定、ｐ＜０．０１）。比較例５では、純水を使用して発酵後の材料を抽出し、その効果はあまり理想的ではなく、これは成長促進効果のある成分の多くがアルコール可溶性であり、エタノールで抽出することがより適していることを示した。
以上述べたのは本発明の実施例に過ぎず、解決手段における周知の具体的な技術的解決手段及び／又は特性等の一般的な知識はここでは詳細に説明していない。なお、当業者であれば、本発明の技術的解決手段から逸脱することなく、複数の変形及び改良を行うことができ、これらは、本発明の実施効果及び特許の実用性に影響を与えないため、本発明の保護範囲と見なすべきである。本出願の保護範囲はその請求項の内容に準じて、明細書における具体的な実施形態等の説明は請求項の内容を解釈するために用いることができる。
Claims (10)
- オニノヤガラの有機栽培方法であって、クヌギの枝を棒材に切断し、棒材に魚鱗様の開口である魚鱗口を切り取って魚鱗口付きの棒材を得、次に沸騰水及び成長促進液で魚鱗口付きの棒材を順に浸漬し、成長促進処理後の棒材を得、次に成長促進処理後の棒材の各魚鱗口にナラタケ種及び接種基質を入れて菌材を得るという菌材の調製ステップを含み、
前記成長促進液及び前記接種基質は、新鮮なオニノヤガラの茎を細断して処理対象材料を得、バチルス・プミルス菌液を前記処理対象材料にスプレーし、発酵・培養して発酵後の材料を得、エタノールを溶媒として発酵後の材料に対して熱浸漬抽出を行い、次に固液分離して残渣及び抽出液を得、前記残渣を湿熱滅菌、乾燥処理及び粉砕して前記接種基質を得、前記抽出液を濃縮、再溶解及び湿熱滅菌して成長促進液を得ることによって調製されることを特徴とするオニノヤガラの有機栽培方法。 - 前記発酵培養の温度が４０～４５℃であり、回転数が１００ｒｐｍであり、時間が４８ｈであり、発酵培養過程で、２～３ｈごとに前記処理対象材料にバチルス・プミルス菌液をスプレーし、毎回スプレーする時、処理対象材料とバチルス・プミルス菌液の使用量比は１００ｇ：１５～２０ｍｌであることを特徴とする請求項１に記載のオニノヤガラの有機栽培方法。
- バチルス・プミルス菌液のＯＤ６００値が１であることを特徴とする請求項２に記載のオニノヤガラの有機栽培方法。
- 前記熱浸漬抽出の温度が８０～９０℃であり、時間が１０～１２ｈであることを特徴とする請求項３に記載のオニノヤガラの有機栽培方法。
- 熱浸漬抽出において、前記エタノールの体積百分率が８０％であり、発酵後の材料とエタノールの使用量比が１ｇ：２５ｍＬであることを特徴とする請求項４に記載のオニノヤガラの有機栽培方法。
- 前記抽出液を相対密度１．１０のエキスに濃縮し、次にエキス１ｇ当たり２５ｍＬの水で再溶解し、さらに湿熱滅菌して前記成長促進液を得ることを特徴とする請求項５に記載のオニノヤガラの有機栽培方法。
- 前記残渣を湿熱滅菌した後、５０℃の条件下で含水量が５％未満になるまで乾燥させ、さらに粉砕して１番篩にかけて前記接種基質を得ることを特徴とする請求項６に記載のオニノヤガラの有機栽培方法。
- ナラタケ菌種と接種基質の質量比が２～４：１であることを特徴とする請求項７に記載のオニノヤガラの有機栽培方法。
- 沸騰水及び成長促進液で魚鱗口付き棒材を順に浸漬する方法は、沸騰水で棒材を５ｍｉｎ浸漬し、棒材が冷却した後、成長促進液で棒材を１２ｈ浸漬することであることを特徴とする請求項８に記載のオニノヤガラの有機栽培方法。
- 前記棒材の直径が８～１０ｃｍであり、長さが６０～７０ｃｍであり、前記魚鱗口は棒材の長さ方向に沿って配列され、隣接する魚鱗口は２～３ｃｍ離れていることを特徴とする請求項９に記載のオニノヤガラの有機栽培方法。
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