JP7303865B2 - 植物性タンパク質を含む多孔質細胞支持体およびそれを用いて製造された培養肉 - Google Patents
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Description
植物性タンパク質を含む多孔質細胞支持体およびそれを用いて製造された培養肉に関する。
２０５０年になると全世界の人口は９０億人に達し、人類の肉類消費量も４６５百万トンに達すると推定される。このため、国際連合食糧農業機構（FAO）は、増加する肉類の需要に合わせるために、毎年2億トンの追加生産が必要であることを発表した。このような未来の肉類不足問題を解決するための案として、最近「培養肉（In Vitro Meat）」が注目されている。「培養肉」とは、生きている動物の細胞を採取した後、細胞工学技術で増殖して得られる食用肉を意味し、家畜を飼育する過程を経ずに肉を得る細胞農業（cellular agriculture）の一つの分野である。
培養肉の開発により、家畜飼育や屠殺過程で発生する各種環境汚染や倫理的な問題を一定部分解決できるという認識が広がっている。家畜飼育が温室効果ガス排出の主な要因として挙げられており、家畜飼育が減ると、農耕地拡大、土壌侵食減少、水質汚染防止などの効果が期待できる。
また、培養肉は、劣悪な飼育環境や屠殺に関連する動物福祉の面でも利点があり、狂牛病、口蹄疫などの家畜感染症の発症リスクを排除することができ、技術レベルに応じて牛肉だけでなく、豚肉、鶏肉、魚類の培養育生産が可能である。したがって、培養肉を大規模に生産することが、資源を節約し、畜産業が環境に与える影響を減らせる有効な方法になると予想されている。
一方、培養肉の製造コストに関しては、２０１３年の初期開発時にハンバーガーパティ１００gを１個作るのに、なんと３２万５千ドルが必要になり、２０１７年時点で１，９８６ドル／１００ｇに減少したが、依然として非常に高いレベルである。また、現在生産されている培養肉は生産技術の限界で、既存の肉類より相対的に味が落ちるという評価を受けているという欠点がある。ステーキのような肉本来の味が重要な食材としては使われず、ハンバーガーパティ用材料として使われているので、既存の肉との味の差をなくすために、筋肉、油、骨などを培養肉と混合しながら、実際の肉と同じ味を出すための研究も活発に行われている。さらに、培養肉製造のために細胞培養培地に馬や牛の胎児血清が必要であり、培養肉製造が増加するほど家畜屠殺も増加する矛盾が発生することになる。
したがって、培養肉製造方法において高いコスト問題を解決しながらも大量生産が可能であり、既存の肉類と同様の味を出すための技術的な研究が求められている状況である。
本発明の目的は、植物性タンパク質を含む多孔質細胞支持体を提供することにある。
別の目的は、前記多孔質細胞支持体を製造する方法を提供することである。
もう一つの目的は、前記多孔質細胞支持体を含む培養肉を提供することである。
もう一つの目的は、前記多孔質細胞支持体を用いて培養肉を製造する方法を提供することにある。
もう一つの目的は、前記培養肉を含む食用製品を提供することである。
別の目的は、前記多孔質細胞支持体を製造する方法を提供することである。
もう一つの目的は、前記多孔質細胞支持体を含む培養肉を提供することである。
もう一つの目的は、前記多孔質細胞支持体を用いて培養肉を製造する方法を提供することにある。
もう一つの目的は、前記培養肉を含む食用製品を提供することである。
一態様は、植物由来タンパク質分離物（plant derived protein isolates）、ポロゲン（porogen）、乳化剤を含む多孔質細胞支持体を提供する。
前記多孔質細胞支持体は凝固剤をさらに含むことができる。
前記多孔質細胞支持体は、植物由来タンパク質分離物、ポロゲンおよび乳化剤を溶剤に加えて攪拌した後、凝固剤を添加して得られたものであってもよい。
前記多孔質細胞支持体は凝固剤をさらに含むことができる。
前記多孔質細胞支持体は、植物由来タンパク質分離物、ポロゲンおよび乳化剤を溶剤に加えて攪拌した後、凝固剤を添加して得られたものであってもよい。
用語「植物由来タンパク質分離物（plant derived protein isolates)」とは、植物体に存在するタンパク質を当該技術分野で通常用いられる方法で処理して分離されたタンパク質を意味するものであり、植物性タンパク質ともいう。
用語「ポロゲン（porogen）」は、多孔質材料を生成するために使用することができる任意の物質を意味するものであり、細孔形成剤、細孔誘導物質ともいう。前記ポロゲンは食用であり、寒天、塩、塩化カルシウム、炭酸ナトリウム、パラフィン、ポリエチレングリコール、ゼラチンおよびスクロースからなる群から選択される一つ以上であることができる。食用可能でありながら、植物由来タンパク質分離物に細孔を形成することができる物質は、ポロゲンとして制限なく適用することができる。
用語「乳化剤」は、互いに混ざりにくい２つの材料がうまく混合できるよう助ける材料を意味することができる。前記乳化剤は食用可能であり、グリセリン、プロピレングリコール、モノグリセリド（monoglyceride）、ジグリセリド（diglyceride）、レシチン（lecithin）および大豆リン脂質からなる群から選択される一つ以上であることができる。食用可能でありながら、植物由来のタンパク質分離物とポロゲンがうまく混合するよう助けることができる物質は、乳化剤として制限なく適用することができる。
用語「溶剤」は、物質を溶解するための物質を意味することができる。前記溶剤は食用可能であり、グリセリン、プロピレングリコール、モノグリセリド（monoglyceride）、ジグリセリド（diglyceride）、レシチン（lecithin）および大豆リン脂質からなる群から選択される一つ以上であることができる。
前記乳化剤と前記溶剤は同じ材料であることができる。任意の物質が乳化剤および溶剤の役割を同時に遂行することができる。
前記凝固剤は食用可能であり、グルコノデルタラクトン（glucono-δlactone）、塩化カルシウム、硫酸カルシウムおよび塩化マグネシウムからなる群から選択される一つ以上であることができる。
前記多孔質細胞支持体は、以下の（ａ）～（ｃ）から選択される任意の 一つ以上の特性を有するものであることができる。
（ａ）８０ｋＰａ～１５０ｋＰａ の圧縮強度
（ｂ）４０ｇｆ～７０ｇｆの引張強度、１８ｋＰＡ～３２ｋＰＡの降伏強度、および１０％～２０％の降伏伸び
（ｃ）０．４ｋｇｆ～１．０ｋｇｆのかたさ、０．７～０．９の凝集性、０．８～１．２の弾力性、０．４～０．６の粘着性、０．３～０．７の咀嚼性の物性。
（ａ）８０ｋＰａ～１５０ｋＰａ の圧縮強度
（ｂ）４０ｇｆ～７０ｇｆの引張強度、１８ｋＰＡ～３２ｋＰＡの降伏強度、および１０％～２０％の降伏伸び
（ｃ）０．４ｋｇｆ～１．０ｋｇｆのかたさ、０．７～０．９の凝集性、０．８～１．２の弾力性、０．４～０．６の粘着性、０．３～０．７の咀嚼性の物性。
具体的には、前記多孔質細胞支持体は、８０ｋＰａ～１５０ｋＰａ、９０ｋＰａ～１４０ｋＰａ、９５ｋＰａ～１３５ｋＰａ、または１００ｋＰａ～１３０ｋＰａの圧縮強度を有することができる。前記多孔質細胞支持体は、４０ｇｆ～７０ｇｆ、４５ｇｆ～６５ｇｆ、または５０ｇｆ～６５ｇｆの引張強度、１８ｋＰＡ～３２ｋＰＡ、２０ｋＰＡ～３1ｋＰＡ、または２２ｋＰＡ～３０ｋＰＡの降伏強度；及び10％～20％、１２％～１８％、または１３％～１７％の降伏伸びを有することができる。前記多孔質細胞支持体は、０．４ｋｇｆ～１．０ｋｇｆ、０.５ｋｇｆ～０.９ｋｇｆまたは０.６ｋｇｆ～０.７ｋｇｆのかたさ、０.６～１.０、または０.７～０.９の凝集性、０.８～１.２または０.９～１．１の弾力性、０．３～０．７、０．４～０．６または０.５～０.６の粘着性および０.３～０.７、０.４～０.６または０．５～０.６の咀嚼性の物性を有することができる。
一実施形態では、前記多孔質細胞支持体の圧縮試験（Compression test）を行った結果、圧縮強度は平均約１１６ｋＰａに測定することができる。また、前記多孔質細胞支持体の引張試験（Tensile test）を行った結果、引張強度は平均約５６ｇｆ、降伏強度は平均約２６ｋＰA、及び降伏伸びは平均約１５％に測定することができる。また、前記多孔質細胞支持体のＴＰＡ（Texture Profile Analysis）を行った結果、かたさは平均約０．６７ｋｇｆ、接着性は平均約０．００２ｋｇｆ＊ｓｅｃ、凝集性は平均約０．８、弾力性は平均約１．０、粘着性は平均約０．６、咀嚼性は平均約０．５、弾力復元性は平均約０．６、脆性は平均約０．６７ｋｇｆに測定することができる。
前記多孔質細胞支持体は、以下の（ｄ）～（o）から選択される任意の一つ以上の特性を有するものであることができる。
（ｄ）４０％～８０％の開放空隙率
（ｅ）４０％～８０％の総空隙率
（o）８０％～９９．９％の細孔相互接続率。
（ｄ）４０％～８０％の開放空隙率
（ｅ）４０％～８０％の総空隙率
（o）８０％～９９．９％の細孔相互接続率。
具体的には、前記多孔質細胞支持体は、４０％～８０％、５０％～７０％、５５％～６５％、または５５％～６０％の開放空隙率を有することができる。前記多孔質細胞支持体は、４０％～８０％、５０％～７０％、５５％～６５％、または５５％～６０％の総空隙率を有することができる。前記多孔質細胞支持体は、８０％～９９．９％、８５％～９９．９％、９０％～９９．９％、または９５％～９９．９％の細孔相互接続率を有することができる。
一実施形態では、前期多孔質細胞支持体の形態的特性を分析した結果、開放空隙率は約５９％、総空隙率は約５９％、細孔相互接続率は約９９％に測定することができる。
前記多孔質細胞支持体の細孔径は、１０～６００μｍ、２０～５５０μｍ、３０～５００μｍ、４０～４５０μｍ、５０～４００μｍ、６０～３５０μｍ、７０～３００μｍ、75～２５０μｍ、８０～２００μm、８５～１５０μm、７０～１３０μm、８０～１２０μm、９０～１１０μm、５0～６００μm、５０～４００μm、５０～３００μm、５０～２５０μm、５０~２００μm、５０~１５０μｍとすることができる。
前記多孔質細胞支持体の弾性率は、１～１０ｋＰａ、２～８ｋＰａ、３～８ｋＰａ、１～５ｋＰａ、４～１０ｋＰａ、６～１０ｋＰａ、１～３ｋＰａ、または４～６ｋＰaであることができる。
前記多孔質細胞支持体は、固体または半固体で可逆的な相転移が起こることができる。さらに、前記多孔質細胞支持体は不溶性であることができる。
前記植物性タンパク質は、ナッツ、豆、大豆、緑豆、インゲンマメ、エンドウ、キノコ、野菜、穀物、およびそれらの組み合わせからなる群より選択される一つ以上の中から分離されたタンパク質であることができる。
一実施形態では、分離された大豆タンパク質（isolated soy protein；ＩＳＰ）を用いて多孔質細胞支持体を製造することができる。
前記多孔質細胞支持体内に細胞が分注することができる。
前記多孔質細胞支持体の使用は、三次元細胞培養を含むことができる。
前記多孔質細胞支持体内に細胞が分注することができる。
前記多孔質細胞支持体の使用は、三次元細胞培養を含むことができる。
一実施形態では、前記多孔質細胞支持体に様々なタイプの細胞が付着、増殖および分化することができる。
一実施形態では、前記多孔質細胞支持体に脂肪由来幹細胞、筋細胞または脂肪細胞を分注して三次元培養することができる。
前記多孔質細胞支持体は、細胞を安定的かつ持続的に培養することができるだけでなく、細胞ごとに細胞の特性合わせた培養様相を示すことができる効果がある。また、一実施形態に係る多孔質細胞支持体は、細胞培養皿及びプレートで培養する既存の２Ｄ培養方法でも長期間培養ができる効果がある。
前記多孔質細胞支持体内に分注された細胞は、細菌細胞、酵母細胞、哺乳動物細胞、昆虫細胞および植物細胞からなる群を含むことができる。
前記細胞、例えば真核細胞は、酵母、真菌、原生動物（protozoa)、植物、高等植物および昆虫、または両生類の細胞、またはCHO、HeLa、HEK293、およびCOS-1などの哺乳動物の細胞であることができ、例えば、当技術分野で一般的に使用される、培養細胞（in vitro）、移植細胞（graft cell）および一次細胞培養（in vitroおよびエクスビボ（ex vivo））、およびインビボ（in vivo）細胞、およびヒトを含む哺乳動物の細胞（mammalian cell）であることができる。さらに、前記有機体は酵母、真菌、原生動物、植物、高等植物および昆虫、両生類、または哺乳動物であることができる。
前記多孔質細胞支持体内に分注された細胞は、軟骨細胞、線維軟骨細胞、骨細胞、骨芽細胞、破骨細胞、滑膜細胞、骨髄細胞、神経細胞、脂肪細胞、間葉細胞、上皮細胞、肝細胞、筋細胞、基質細胞、血管細胞、幹細胞、胚性幹細胞、間葉系幹細胞、脂肪細胞、脂肪組織に由来する前駆細胞、末梢血液前駆細胞、成体組織から単離された幹細胞、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）、これらに由来する腫瘍細胞、およびそれらの組み合わせから選択されるいずれかを含めることができるが、これらに限定されない。具体的には、前記多孔質細胞支持体内に分注された細胞は、幹細胞、脂肪細胞、脂肪組織に由来する前駆細胞または筋細胞であることができる。
前記多孔質細胞支持体は、分注された細胞の分化または増殖を誘導するための分化誘導因子、成長因子、成長刺激剤、生理活性物質、または細胞結合媒介物質であるペプチドや多糖類などをさらに含むことができる。
一実施形態では、前記成長因子または成長刺激剤は、細胞接着媒体；生物学的に活性なリガンド；インテグリン結合シーケンス；リガンド；様々な成長及び/又は分化製剤（例えば、上皮細胞成長因子、IGF-I、IGF-II、TGF-[ベータ]、成長および分化因子、基質由来因子SDF-1；血管内皮成長因子、線維芽細胞成長因子、血小板由来成長因子、インスリン由来成長因子および変形性成長因子、副甲状腺ホルモン、副甲状腺ホルモン関連ペプチド、bFGF；神経成長因子(NGF)または筋肉形成因子(MMF)；ヘパリン結合成長因子(HBGF)、変形性成長因子アルファまたはベータ、アルファ線維芽細胞性成長因子（FGF）、上皮細胞成長因子（TGF）、血管内皮成長因子（VEGF）、SDF-1; TGF[ベータ]スーパーファミリー因子; BMP-2；BMP-4；BMP-6；BMP-12；ソニックヘッジホッグ； GDF5；GDF6；GDF8；PDGF)；特定の成長因子のアップレギュレーションに影響を与える小分子；テナシン-C;ヒアルロン酸；コンドロイチン硫酸;フィブロネクチン；デコリン；トロンボプラスチン；トロンビン由来ペプチド；TNFアルファ/ベータ；マトリックスメタロプロテアーゼ(MMP)；ヘパリン結合ドメイン；ヘパリン；ヘパラン硫酸；あるいは、それらのＤＮＡ断片、ＤＮＡプラスミド、短い干渉ＲＮＡ（short interfering RNA, siRNA）、トランスフェクタント、またはそれらの任意の混合物を含めることができる。
他の態様は、植物由来タンパク質分離物、ポロゲンおよび乳化剤を溶剤に添加し、攪拌して攪拌混合物を製造するステップ、および前記攪拌混合物に凝固剤を添加して細胞支持体を形成するステップを含む、多孔質細胞支持体を製造する方法を提供する。
前記植物由来タンパク分離物、ポロゲン、乳化剤、溶剤および凝固剤に関する内容は上記の通りである。
前記攪拌するステップは、 混合物を３０ｒｐｍ～１５０ｒｐｍ、４０ｒｐｍ～１２０ｒｐｍ、５０ｒｐｍ～１００ｒｐｍまたは５０ｒｐｍ～７０ｒｐｍ、具体的には６０ｒｐｍの速度で３分～６０分、５分～５０分、５分～４０分 、５分～３０分、５分～２０分、具体的には１０分間撹拌することができる。
上記方法は、前記凝固剤を添加する前に成形および凍結乾燥するステップをさらに含むことができる。前記成形は、目的の形状およびサイズのキャスティングモールドで行うことができる。前記凍結乾燥は、－４０℃～－２４０℃、－５０℃～－２００℃、－６０℃～－１６０℃、－７０℃～－１２０℃、－６０℃～－１００℃又は－７０℃～－９０ ℃で、具体的には－８０℃で、１０分～３時間、３０分～２時間、３０分～１時間３０分、具体的には１時間凍結した後、乾燥させるステップを含むことができる。
前記凍結乾燥するステップにおいて、凍結した植物性タンパク質組成物の全表面に炭酸水素ナトリウムを塗布した後、１時間～１０時間、２時間～８時間、３時間～６時間又は４時間～５時間、具体的には、室温で４時間吸着させ、室温で１時間から１０時間、２時間から８時間、３時間から６時間、または４時間から５時間、具体的には４時間乾燥させるステップを含むことができる。前記炭酸水素ナトリウムは、植物性タンパク質組成物の表面に細孔形成を促進して、組成物の内部まで凝固剤の流れを円滑にする役割を果たすことができる。前記凍結した植物性タンパク質組成物に炭酸水素ナトリウムを塗布せずに凝固剤を添加する場合には、凝固剤が組成物の表面に先に作用したことで内部に不規則に細孔が形成され、細胞の培養に不適切な構造を生成することができる。
さらに、上記方法は、凝固した植物性タンパク質組成物を蒸留水または有機溶媒（例えばエタノール）で洗浄し、高圧滅菌処理してタンパク質以外の不純物を除去するステップをさらに含むことができる。
別の態様は、前記多孔質細胞支持体；および多孔質細胞支持体内に分注された細胞を含む培養肉を提供する。
前記多孔質細胞支持体に関する内容は上記の通りである。
前記多孔質細胞支持体に関する内容は上記の通りである。
用語「培養肉(cultured meat, synthetic meat, cell-cultured meat, clean meat, vat meat, in-vitro meat)」は、生きている動物の細胞を培養し、畜産農家なしで肉を培養する細胞工学技術で生産する肉を意味し、人工肉（artificial meat）とも呼ばれる。培養肉は、まだ商業的には生産しておらず、現在いくつかの研究やプロジェクトで実験的に体外肉技術を開発している。
既存の培養肉を製造するために使用すると知られている Cytodex1（登録商標）マイクロキャリアと、一実施形態で製造した植物性タンパク質を含む多孔質細胞支持体の特性を比較した結果は、以下の表１に記載の通りである。
Cytodex 1（登録商標）に関する情報は、先行文献［Cytotechnology 2018 Apr； 70(2)：503-512］と製造メーカーのホームページ（www.cytivalifesciences.com）から得たもので、上記一実施形態の特性は本発明全体に限定されるものではなく、一実施形態で製造した細胞支持体に限定されるものである。別の態様は、前記多孔質細胞支持体に細胞を分注して三次元培養し、三次元細胞集合体を形成するステップを含む培養肉の製造方法を提供する。
前記細胞は、幹細胞、筋細胞および脂肪細胞からなる群から選択される一つ以上である可能性があるが、これらに限定されない。
一実施形態では、前記多孔質細胞支持体に筋細胞または脂肪細胞を分注し、三次元培養して培養肉を製造することができる。また、前記多孔質細胞支持体は食用可能な材料で構成されているので、支持体から培養された細胞を分離するステップを含まずに培養肉を製造することができる。
一実施形態では、前記多孔質細胞支持体に幹細胞を分注し、筋肉または脂肪組織に分化するように培養して培養肉を製造することができる。さらに、前記多孔質細胞支持体は食用可能な材料で構成されているので、支持体から分化した筋肉または脂肪組織を分離することなく、そのまま摂取することができる。
別の態様は、前記多孔質細胞支持体に細胞を分注して三次元培養し、三次元細胞集合体を形成するステップを含む培養肉を製造する方法を提供する。
一実施形態では、細胞および多孔質細胞支持体をバイオリアクターに入れるOne-stepプロセスによって培養肉を製造することができる。一つの培養器に細胞と多孔質細胞支持体を同時に投入すれば、細胞の付着、増殖及び分化が一度に発生して大量生産システムを構築することができる。
別の態様は、上記方法によって製造された多孔質細胞支持体を含む培養肉を提供する。
別の態様は、前記培養肉を含む食用製品（edible product）を提供する。
前記多孔質細胞支持体および培養肉に関する内容は、上記の通りである。
別の態様は、前記培養肉を含む食用製品（edible product）を提供する。
前記多孔質細胞支持体および培養肉に関する内容は、上記の通りである。
重複する内容は、本明細書の複雑さを考慮して省略し、本明細書で特に定義されていない用語は、本発明が属する技術分野で通常使用される意味を有することができる。
一実施形態による植物性タンパク質を含む細胞支持体、及びそれを用いて製造された培養肉は、植物性タンパク質で構成されているので、培養された筋肉または脂肪組織を支持体から別途分離せずに一緒に摂取することができ、筋細胞及び脂肪細胞の割合を調整し、好ましい食感の肉を製造することができ、細胞支持体において様々なタイプの細胞の付着、増殖及び分化が可能であるため、培養肉の大量生産において有用に活用できる。
以下、本発明の理解を助けるために好ましい実施例を提示する。しかしながら、以下の実施例は、本発明をより容易に理解するために提供されるものであり、以下の実施例によって本発明の内容が限定されるものではない。
実施例１。植物由来タンパク質分離物を含む多孔質細胞支持体の製造
植物由来タンパク質分離物を含む多孔質細胞支持体を以下のように製造した。
粉末状の分離大豆タンパク質（isolated soy protein；ISP）１０gと寒天（agar）2gを、食用グリセリン（glycerin；0409、ES食品原料)１０mlに入れ、１０分間６０ｒｐｍでスチーム攪拌（スチームミキサーD-201、Daeduck Machinery）装置で混合して混合物を製造した。次に、滅菌した三次蒸留水３０mlを混合物に添加し、高速攪拌機（MaXtir（登録商標） 500S、DAIHAN-brand（登録商標））を使用して５０００ｒｐｍで１０分間撹拌した。その後、希望の形状に成形するために前記混合物をキャスティングモールド（１００ｍｍ×１００ｍｍ×２ｍｍ）に移動させた後、―８０℃で１時間凍結して凍結試料を作製した。凍結した試料の全面にベーキングソーダを十分に塗布して室温で４時間吸着させ、６０℃で４時間乾燥させた。乾燥した試料を滅菌した三次蒸留水１Ｌに加えた後、グルコノデルタラクトン（E575、JUNGBUNZLAUER S.A）２ｇを加え、８０℃で２時間凝固させた。その後、凝固させた試料を常温で１００％エタノールと滅菌された３次蒸留水でそれぞれ５回洗浄し、３次蒸留水１Ｌに担持して2回高圧滅菌処理し、タンパク質以外の不純物を除去して植物性タンパク質成分の多孔質細胞支持体を製造した。前記製造した多孔質細胞支持体の写真を図１に示す。
植物由来タンパク質分離物を含む多孔質細胞支持体を以下のように製造した。
粉末状の分離大豆タンパク質（isolated soy protein；ISP）１０gと寒天（agar）2gを、食用グリセリン（glycerin；0409、ES食品原料)１０mlに入れ、１０分間６０ｒｐｍでスチーム攪拌（スチームミキサーD-201、Daeduck Machinery）装置で混合して混合物を製造した。次に、滅菌した三次蒸留水３０mlを混合物に添加し、高速攪拌機（MaXtir（登録商標） 500S、DAIHAN-brand（登録商標））を使用して５０００ｒｐｍで１０分間撹拌した。その後、希望の形状に成形するために前記混合物をキャスティングモールド（１００ｍｍ×１００ｍｍ×２ｍｍ）に移動させた後、―８０℃で１時間凍結して凍結試料を作製した。凍結した試料の全面にベーキングソーダを十分に塗布して室温で４時間吸着させ、６０℃で４時間乾燥させた。乾燥した試料を滅菌した三次蒸留水１Ｌに加えた後、グルコノデルタラクトン（E575、JUNGBUNZLAUER S.A）２ｇを加え、８０℃で２時間凝固させた。その後、凝固させた試料を常温で１００％エタノールと滅菌された３次蒸留水でそれぞれ５回洗浄し、３次蒸留水１Ｌに担持して2回高圧滅菌処理し、タンパク質以外の不純物を除去して植物性タンパク質成分の多孔質細胞支持体を製造した。前記製造した多孔質細胞支持体の写真を図１に示す。
前記多孔質細胞支持体を製造するための全ての材料は、食品として認可された原料を使用しているので、摂取することが可能である。
実施例２。多孔質細胞支持体の特性確認
実施例２.１多孔質細胞支持体の形態的特性分析
実施例１で製造した細胞支持体の形態的特性を、SKYSCAN1272 ex-vivo micro-CT（Bruker microCT、Belgium）を用いて以下の条件で測定した。
- X-ray source：４０kV、２００uA、No-filter、rotation step 0.15°；
- Resolution：1 um pixel resolution；
- 0.1% IKI（iodine-potassium iodide）で一晩染色した。
実施例２.１多孔質細胞支持体の形態的特性分析
実施例１で製造した細胞支持体の形態的特性を、SKYSCAN1272 ex-vivo micro-CT（Bruker microCT、Belgium）を用いて以下の条件で測定した。
- X-ray source：４０kV、２００uA、No-filter、rotation step 0.15°；
- Resolution：1 um pixel resolution；
- 0.1% IKI（iodine-potassium iodide）で一晩染色した。
断面生成はNRecon、断面回転はDataViewer、分析はCTAn、Volume renderingの生成はCTVox、surface renderingはCTAn+CTVol softwareを用いて分析しており、その結果は下記の表2に記載した通りである。
- Structure thickness（構造物の厚さ）：細孔間の平均間隔を意味する。
- Structure separation（構造物分離）：細孔の平均サイズを意味する。
- Open porosity（開放空隙率）: 支持体全体の体積に対して、外部と接続されている細孔が占める割合を意味する。
- Total porosity（全空隙率）: 支持体全体の体積に対して細孔が占める割合を意味する。
- Pore interconnectivity（細孔相互接続率)：全細孔のうち外部と接続された細孔の割合を意味する。
これにより、実施例１で製造した細胞支持体の細孔相互接続率が約９９％であるため、細胞の移動と培養液の流れが円滑になり、様々な細胞の成長及び分化に適したことを確認した。
実施例２．２多孔質細胞支持体の物理的特性分析
実施例１で製造した細胞支持体の物性を分析するために、材料物性測定器であるＴＸＡ（登録商標）物性測定器（Texture Analyzer；株式会社ヨンジンエステック）を用いて、以下のように圧縮強度測定、引張強度測定及びTexture profile analysis（TPA）を行った。
実施例１で製造した細胞支持体の物性を分析するために、材料物性測定器であるＴＸＡ（登録商標）物性測定器（Texture Analyzer；株式会社ヨンジンエステック）を用いて、以下のように圧縮強度測定、引張強度測定及びTexture profile analysis（TPA）を行った。
圧縮強度はCompression Testの方法を用いて測定した。具体的には、試料を圧縮固定装置を備えた物性測定器のプレートに載せ、横、縦それぞれ１０ｍｍの正方形プローブで圧縮した後、Initial strain rateをそれぞれ０.１［１／ｓ］と０．０３３［１／ｓ］に設定し測定した。その結果を下記表３及び図２に示す。
表３および図２に示すように、試料を物性測定器のプレートに載せ、横、縦それぞれ１０ｍｍの正方形プローブに圧縮した後、Initial strain rateをそれぞれ０.１［１／ｓ］と０．０３３［１／ｓ］に設定して測定した、一実施形態による多孔質細胞支持体の圧縮強度は、６８０．８７８ｇｆの最大荷重（load）の場合、平均７．７４６ｍｍ の幅、７．４５５ｍｍの長さ、１．７３４ｍｍの厚さ、０．１１４ｍｍ／ｓの弾性波速度（speed）および１１５．８８２ｋＰａの最大応力（stress）を示すことがわかった。
- 弾性波速度：外部の力によって変形を起こした物体が、力が除去された時、元の形状に戻ろうとする速度を意味する。
- 最大応力(stress): 物体が破壊されず耐えられる最大の圧縮応力を意味し、圧縮強度ともいう。
- 弾性波速度：外部の力によって変形を起こした物体が、力が除去された時、元の形状に戻ろうとする速度を意味する。
- 最大応力(stress): 物体が破壊されず耐えられる最大の圧縮応力を意味し、圧縮強度ともいう。
引張強度は、試料を物性測定器の引張グリップで掴んだ後、Initial strain rateをそれぞれ０．１［１／ｓ］および０．０３３［１／ｓ］に設定し測定した。その結果を下記表４及び図３に示す。
表４および図３に示すように、物性測定器の引張グリップで掴んだ後、Initial strain rateをそれぞれ０．１［１／ｓ］と０．０３３［１／ｓ］に設定して測定された、一実施形態による多孔質細胞支持体の引張強度は、１１８．７３９ｇｆの最大荷重の場合、平均１４．０００ｍｍの幅、２０．０００ｍｍの長さ、１．５００ｍｍの厚さ、１．３２５ｍｍ／ｓの弾性波速度、５６．３４８ｇｆの降伏荷重（Yield Load)、２６．３１４ｋＰAの降伏応力（Yield Stress）および１５．１４８％の降伏伸び（Yield Elongation）を示すことがわかった。
- 降伏荷重(Yield Load): 物体が切れる直前の力を意味し、引張強度ともいう。
- 物体に外部の力を加えて両側に引っ張ると物体の長さは伸びるが、ある程度の力までは外部の力が除去されると元の大きさに戻るが、一定以上の力を加える場合は元の状態に戻らず、長さがさらに伸びるようになるが、元の状態に戻ることができる時の最大の力を降伏応力（Yield Stress）または降伏強度（Yield Strength）という。
- 降伏伸び（Yield Elongation）：ほぼ一定の応力状態で、変形が増加し、次に平滑に応力が増加し始めるまでの物体の長さ変化を、元の物体の長さに対する百分率で表したことを意味する。
- 降伏荷重(Yield Load): 物体が切れる直前の力を意味し、引張強度ともいう。
- 物体に外部の力を加えて両側に引っ張ると物体の長さは伸びるが、ある程度の力までは外部の力が除去されると元の大きさに戻るが、一定以上の力を加える場合は元の状態に戻らず、長さがさらに伸びるようになるが、元の状態に戻ることができる時の最大の力を降伏応力（Yield Stress）または降伏強度（Yield Strength）という。
- 降伏伸び（Yield Elongation）：ほぼ一定の応力状態で、変形が増加し、次に平滑に応力が増加し始めるまでの物体の長さ変化を、元の物体の長さに対する百分率で表したことを意味する。
TPA（Texture Profile Analysis）は、試料を物性測定器のプレートに載せ、直径２５．４ｍｍのcylinder probeを６０ｍｍ／ｍｉｎの速度で２回５０％圧縮して測定した。上記測定を３回繰り返し、その結果を下記表５及び図７に示す。
表５および図４に示すように、試料を物性測定器のプレートに載せ、直径25.4ｍｍのcylinder probeを60ｍｍ／分の速度で２回５０％圧縮して測定した、一実施形態による多孔質細胞支持体の物性は、平均0.6689kgfの硬度、0.0023のkgf＊secの接着性、0.82の凝集性、1.00の弾力性、0.55の粘着性、0.54の咀嚼性、0.55の弾力復元性、0.6689kgfの脆性を示すことをわかった。
- Hardness(かたさ): 希望の変形に達するのに必要な力を意味する。
- Adhesiveness（接着性）：物体がprobeから分離するのに必要な力を意味する。
- Cohesiveness（凝集性）：物体があるままの形態を維持しようとする力を意味し、Adhesiveness（接着性）より大きい場合、Probeに資料が付かない。
- Springiness(弾力性): Elasticityとも呼ばれ、圧縮によって変形された資料が、力が除去された後に元の状態に戻ろうとする性質を意味する。
- Gumminess（粘着性）：半固体状態の資料を、飲み込むことができる状態になるまで分解するのに必要な力を意味する。
- Chewiness（咀嚼性）：固体状態の資料を、飲み込むことができる状態にするために必要なエネルギーを意味する。
- Brittleness（脆性）：圧縮によって壊れたり割れたりする性質を意味し、最初の圧縮で最大の力に達する前に登場する中間ピークで、資料によってはこの性質が現れない場合もある。
- Resilience（弾性復元性）：サンプルが元の高さを回復しようという性質を意味する。
- Hardness(かたさ): 希望の変形に達するのに必要な力を意味する。
- Adhesiveness（接着性）：物体がprobeから分離するのに必要な力を意味する。
- Cohesiveness（凝集性）：物体があるままの形態を維持しようとする力を意味し、Adhesiveness（接着性）より大きい場合、Probeに資料が付かない。
- Springiness(弾力性): Elasticityとも呼ばれ、圧縮によって変形された資料が、力が除去された後に元の状態に戻ろうとする性質を意味する。
- Gumminess（粘着性）：半固体状態の資料を、飲み込むことができる状態になるまで分解するのに必要な力を意味する。
- Chewiness（咀嚼性）：固体状態の資料を、飲み込むことができる状態にするために必要なエネルギーを意味する。
- Brittleness（脆性）：圧縮によって壊れたり割れたりする性質を意味し、最初の圧縮で最大の力に達する前に登場する中間ピークで、資料によってはこの性質が現れない場合もある。
- Resilience（弾性復元性）：サンプルが元の高さを回復しようという性質を意味する。
これにより、実施例１で製造した細胞支持体は、筋細胞の成長及び分化に適した圧縮強度及び引張強度を有し、培養肉の製造に活用されるための食用細胞支持体として、適度の弾性及び復元性を示すため食感が良く、適度の硬度と粘着性を示すため、滑らかな嚥下性を有することを確認した。
実施例２．３既存の細胞支持体との特性比較
既知の細胞支持体（凹型マイクロウェル、多孔質足場、無孔質マイクロビーズ、多孔質マイクロビーズ）と実施例１で製造した多孔質細胞支持体の特性を比較した結果は、下記表６に記載の通りである。既知の細胞支持体の特性については、先行文献［Materials Science＆Engineering C 103（2019）109782］を参照した。既知の細胞支持体の形態を図５～図８に示す。
既知の細胞支持体（凹型マイクロウェル、多孔質足場、無孔質マイクロビーズ、多孔質マイクロビーズ）と実施例１で製造した多孔質細胞支持体の特性を比較した結果は、下記表６に記載の通りである。既知の細胞支持体の特性については、先行文献［Materials Science＆Engineering C 103（2019）109782］を参照した。既知の細胞支持体の形態を図５～図８に示す。
これにより、実施例１で製造した細胞支持体は、既存の細胞培養のための支持体と比較して細胞接着性が高く、培養液透過性に優れ、高い耐久性を有し、培養肉を製造するのに適した材料からなるものを確認した。
実施例３。多孔質細胞支持体を用いた細胞の三次元培養
一実施形態による多孔質細胞支持体を用いて細胞を三次元培養した。
具体的には、培養皿に実施例１で製造した直径１０ｍｍ、厚さ２ｍｍの大きさの多孔質細胞支持体を載せた後、１０％Mesenchymal stem cell growth medium２（Promocell C-28009、C-39809）培養培地を入れ、脂肪由来幹細胞株（ATCC PCS-500-011）５．０×１０5個を分注した後、15日間培養して細胞を増殖および組織化した。
一実施形態による多孔質細胞支持体を用いて細胞を三次元培養した。
具体的には、培養皿に実施例１で製造した直径１０ｍｍ、厚さ２ｍｍの大きさの多孔質細胞支持体を載せた後、１０％Mesenchymal stem cell growth medium２（Promocell C-28009、C-39809）培養培地を入れ、脂肪由来幹細胞株（ATCC PCS-500-011）５．０×１０5個を分注した後、15日間培養して細胞を増殖および組織化した。
図９に示すように、培養期間が経過するにつれて細胞の成長が継続的に進行し、細胞が支持体に付着し成長すると支持体が収縮し、細胞の数が増えて空隙（void volume）が最小化し、組織（tissue）を形成することを確認した。
実施例４。多孔質細胞支持体を用いた培養肉の製造
実施例１で製造した多孔質細胞支持体を用いて培養肉を製造した。具体的には、図１０に示すように、バイオリアクター内に牛の筋細胞、鶏の筋細胞及び豚の筋細胞それぞれを実施例１で製造した細胞支持体と共に投入して一括して細胞を培養した。その結果を図１１に示す。
実施例１で製造した多孔質細胞支持体を用いて培養肉を製造した。具体的には、図１０に示すように、バイオリアクター内に牛の筋細胞、鶏の筋細胞及び豚の筋細胞それぞれを実施例１で製造した細胞支持体と共に投入して一括して細胞を培養した。その結果を図１１に示す。
これにより、一つの培養器に細胞と多孔質細胞支持体を同時に投入することにより、細胞の付着、増殖及び分化が一度に発生するOne-step大量培養システムを構築できることを確認した。
実施例４．１．多孔質細胞支持体を用いた培養牛肉の製造
培養皿に２５ｍｍ×２５ｍｍ×２ｍｍの大きさの実施例１で製造した多孔質細胞支持体、Bovine＃１細胞（（株）ブノン縮産で当日屠殺した３６ヶ月齢の韓牛雌牛（枝肉重量：３３９ｋｇ、２等級）のランプ（rump）の筋肉部位１５０ｇから一次筋細胞（primary skeletal muscle cells）を抽出した）１．７×１０6個および１０％DMEM、2％DMEM（DMEM biowest L0103-500、FBS biowest S1480-500）培養培地を入れ、振とう培養器で２４時間培養した。培養の結果、２～３％の残存細胞を除いては、全ての細胞が多孔質細胞支持体に分注されたことを確認した。
培養皿に２５ｍｍ×２５ｍｍ×２ｍｍの大きさの実施例１で製造した多孔質細胞支持体、Bovine＃１細胞（（株）ブノン縮産で当日屠殺した３６ヶ月齢の韓牛雌牛（枝肉重量：３３９ｋｇ、２等級）のランプ（rump）の筋肉部位１５０ｇから一次筋細胞（primary skeletal muscle cells）を抽出した）１．７×１０6個および１０％DMEM、2％DMEM（DMEM biowest L0103-500、FBS biowest S1480-500）培養培地を入れ、振とう培養器で２４時間培養した。培養の結果、２～３％の残存細胞を除いては、全ての細胞が多孔質細胞支持体に分注されたことを確認した。
また、４週間培養する過程で１３日目及び２０日目にlive & dead assayを行い、その結果を図１２に示した。図１２に示すように、支持体内でdead cellsがほとんど観察されなかったため、細胞接着が良好に行われ、１週間の間にlive cellsが増加したことにより、細胞支持体上で細胞増殖が良好に行われていることが分かった。また、図１３に示すように、培養前後の支持体を肉眼で観察したところ、培養後の支持体は培養前の支持体とは違って薄いピンク色に変化したことが分かり、これは細胞支持体上で筋細胞の増殖が起きたことを意味する。
続いて、２５ｍｍ×２５ｍｍ×２ｍｍの大きさの実施例１で製造した多孔質細胞支持体に１０％ＤＭＥＭ、２％ＤＭＥＭ（DMEM biowest L0103-500、FBS biowest S1480-500) 培養培地を入れ、Bovine＃2細胞（サムホ畜産で当日屠殺した２３ヶ月齢の韓牛雌牛（枝肉重量：２６１ｋｇ、２等級）のランプ（rump）の筋肉部位１５０gから抽出した一次筋細胞（primary skeletal muscle cells））１．０×１０6個を分注した後、７日間培養した。
培養が完了した後、細胞をCalcein-AMとDesmin Ab、および Phalloidinと Desmin Abでそれぞれ染色し、その結果を図１４および１５にそれぞれ示した。Calcein-AMを用いて生細胞の観察および分化した細胞の形態を観察し、筋細胞マーカーであるDesmin Abを用いて分化した筋細胞を観察し、Phalloidinを用いて分化した細胞の形態を観察した。図１４および図１５に示すように、支持体内で筋細胞への分化がうまく行われていることを確認した。
これにより、実施例１で製造した多孔質細胞支持体上で牛の筋細胞を培養して培養牛肉を製造できることを確認した。
実施例４．２． 多孔質細胞支持体を用いた培養鶏肉の製造
２５ｍｍ×２５ｍｍ×２ｍｍの大きさの実施例１で製造した多孔質細胞支持体に、１０％ＤＭＥＭ培養培地を入れ、Chicken Cardiomyocyte＃１細胞（孵化９～１１日目の一般採卵鶏（layer chicken）の有精卵から embryonic bodyを取り出し、心臓から抽出した一次心筋細胞（primary cardiomyocyte））５．０×１０5個を分注した後、7日間培養して細胞を増殖させた。７日後、培養培地を２％ＤＭＥＭ交換し、７日間培養して心筋細胞に分化させた。培養後１４日目に、live & dead assayを行い、結果を図１６に示す。図１６に示すように、全体的に細胞がうまく培養され、培養肉が生成されていることを確認した。
２５ｍｍ×２５ｍｍ×２ｍｍの大きさの実施例１で製造した多孔質細胞支持体に、１０％ＤＭＥＭ培養培地を入れ、Chicken Cardiomyocyte＃１細胞（孵化９～１１日目の一般採卵鶏（layer chicken）の有精卵から embryonic bodyを取り出し、心臓から抽出した一次心筋細胞（primary cardiomyocyte））５．０×１０5個を分注した後、7日間培養して細胞を増殖させた。７日後、培養培地を２％ＤＭＥＭ交換し、７日間培養して心筋細胞に分化させた。培養後１４日目に、live & dead assayを行い、結果を図１６に示す。図１６に示すように、全体的に細胞がうまく培養され、培養肉が生成されていることを確認した。
また、２５ｍｍ×２５ｍｍ×２ｍｍの大きさの実施例１で製造した多孔質細胞支持体に、１０％ＤＭＥＭ培養培地及び２％ＤＭＥＭ培養培地をそれぞれ入れ、Chicken Cardiomyocyte＃１細胞（ダナグリーンで孵化９～１１日目に一般採卵鶏（layer chicken）の有精卵からembryonic bodyを取り出し、心臓から抽出した一次心筋細胞（primary cardiomyocyte）１．０×１０6個をそれぞれ分注した後、14日間培養した。培養後１４日目に、live & dead assayを行い、その結果を図１７および図１８にそれぞれ示した。図１７及び１８に示すように、全体的に細胞がうまく培養され、培養肉が生成されていることを確認した。
これにより、実施例１で製造した多孔質細胞支持体上で鶏の筋細胞を培養して培養鶏肉を製造できることを確認した。
続いて、培養皿に２５ｍｍ×２５ｍｍ×２ｍｍの大きさの実施例１で製造した多孔質細胞支持体に、１０％ＤＭＥＭ、２％ＤＭＥＭ（DMEM biowest L0103-500、FBS biowest S1480-500）培養培地を入れ、Silkie＃1細胞（孵化9～11日目の烏骨鶏（silkie）の有精卵からembryonic bodyを取り出し、太ももの部位から抽出した一次筋細胞（primary skeletal muscle cells））１．０×１０7個を分注した後、5週間培養した。
培養後１３日、１７日、３８日目にlive & dead assayを行い、その結果を図１９に示した。図１９に示すように、細胞支持体上で烏骨鶏筋細胞の増殖及び分化がうまく行われていることを確認した。具体的には、2週目に細胞支持体上にlive cellsが詰まっていて、5週目までも細胞のviabilityが可能であることを確認した。
実施例４．３． 多孔質細胞支持体を用いて製造した培養牛肉と培養鶏肉の比較
２５ｍｍ×２５ｍｍ×２ｍｍの大きさの実施例１で製造した多孔質細胞支持体に、１０％ＤＭＥＭ、２％ＤＭＥＭ（DMEM biowest L0103-500、FBS biowest S1480-500）培養培地を入れ、Bovine＃１細胞１．０×１０6個およびChicken＃１細胞２．０×１０6個をそれぞれ分注した後、4週間培養した。
２５ｍｍ×２５ｍｍ×２ｍｍの大きさの実施例１で製造した多孔質細胞支持体に、１０％ＤＭＥＭ、２％ＤＭＥＭ（DMEM biowest L0103-500、FBS biowest S1480-500）培養培地を入れ、Bovine＃１細胞１．０×１０6個およびChicken＃１細胞２．０×１０6個をそれぞれ分注した後、4週間培養した。
培養の過程で、牛細胞は１４日目に、鶏細胞は８日目にlive & dead assayを行い、その結果を図２０に示した。図２０に示すように、鶏肉細胞は、牛細胞に比べてサイズが小さく、doubling timeが速い方で、同じ期間培養した場合、支持体をはるかに短期間で詰めていくことを確認した。また、両培養肉とも細胞支持体によって細胞特性が阻害されず、培養牛肉と培養鶏肉の筋繊維形態が異なることを確認した。
続いて、培養の過程で３週目および４週目に培養牛肉と培養鶏肉を試食した結果、培養鶏肉は３週間の培養だけでも実際と同じ鶏肉の味と風味を確認することができ、培養牛の場合には４週間の培養が完了した後、実際と同じ牛肉の味と風味を確認することができた。
これにより、実施例１で製造した多孔質細胞支持体を用いると、当該培養肉の特性に合った味と風味が出ることが分かった。
これにより、実施例１で製造した多孔質細胞支持体を用いると、当該培養肉の特性に合った味と風味が出ることが分かった。
Claims (15)
- 植物由来タンパク質分離物(plant derived protein isolates)、ポロゲン(porogen)、乳化剤を含む多孔質細胞支持体であって、前記植物由来タンパク質分離物は、豆、大豆、緑豆、インゲンマメ、エンドウ、及びそれらの組み合わせからなる群より選択される一つ以上から分離されたタンパク質であり、前記多孔質細胞支持体の細孔サイズは５０～４００μｍであり、細孔相互接続率は８０％～９９．９％であることを特徴とする多孔質細胞支持体。
- 凝固剤をさらに含むことを特徴とする、請求項１に記載の多孔質細胞支持体。
- 前記植物由来タンパク質分離物、ポロゲンおよび乳化剤を溶剤に加えて攪拌した後、凝固剤を添加して得られたものを特徴とする請求項１に記載の多孔質細胞支持体。
- （ａ）８０ｋＰａ～１５０ｋＰａの圧縮強度、
（ｂ）４０ｇｆ～７０ｇｆの引張強度、１８ｋＰＡ～３２ｋＰＡの降伏強度、および１０％～２０％の降伏伸び、
および
（ｃ）０．４ｋｇｆ～１．０ｋｇｆのかたさ、０．６～１．０の凝集性、０．８～１．２の弾力性、０．３～０．７の粘着性、０．３～０．７の咀嚼性の物性
から選択される一つ以上の特性を有することを特徴とする、請求項１に記載の多孔質細胞支持体。 - （ｄ）４０％～８０％の開放空隙、
（ｅ）４０％～８０％の総空隙率、
から選択される一つ以上の特性を有することを特徴とする、請求項１に記載の多孔質細胞支持体。 - 前記ポロゲンは、寒天、塩、塩化カルシウム、炭酸ナトリウム、パラフィン、ポリエチレングリコール、ゼラチン、スクロースおよびそれらの組み合わせからなる群から選択される一つ以上であることを特徴とする、請求項１に記載の多孔質細胞支持体。
- 前記乳化剤または溶剤は、グリセリン、プロピレングリコール、モノグリセリド、ジグリセリド、レシチン、大豆リン脂質およびそれらの組み合わせからなる群から選択される一つ以上あることを特徴とする、請求項１又は請求項３に記載の多孔質細胞支持体。
- 前記凝固剤は、グルコノデルタラクトン、塩化カルシウム、硫酸カルシウム、塩化マグネシウムおよびそれらの組み合わせからなる群から選択される一つ以上であることを特徴とする、請求項２に記載の多孔質細胞支持体。
- 前記多孔質細胞支持体内に細胞が分注されることを特徴とする、請求項１に記載の多孔質細胞支持体。
- 培養肉の製造のためのものであることを特徴とする、請求項１に記載の多孔質細胞支持体。
- 植物由来タンパク質分離物、ポロゲンおよび乳化剤を溶剤に添加し、撹拌して撹拌混合物を製造するステップと、
前記撹拌混合物に凝固剤を添加して細胞支持体を形成するステップとを含む、請求項１に記載の多孔質細胞支持体の製造方法。 - 請求項１に記載の多孔質細胞支持体と、前記多孔質細胞支持体内に分注された細胞とを含む、培養肉。
- 請求項１に記載の多孔質細胞支持体に細胞を分注し、三次元培養して、三次元細胞集合体を形成するステップを含む培養肉製造方法。
- 前記細胞は、幹細胞、筋細胞、脂肪細胞およびこれらの組み合わせからなる群から選択される一つであることを特徴とする、請求項１３に記載の培養肉製造方法。
- 請求項１２に記載の培養肉を含む食用製品（edible product）。
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