JP7200104B2 - 免疫系刺激分子を発現する腫瘍溶解性単純ヘルペスウイルスベクター - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
本特許出願は、２０１６年８月１日出願の米国仮特許出願第６２／３６９，６４６号の、米国特許法第１１９条（ｅ）項の下での利益を請求し、この仮特許出願は、すべての目的のためにその全体がこの参照により本明細書の開示に含まれる。
本発明は概して、免疫系を刺激する分子を発現する腫瘍溶解性単純ヘルペスウイルス（ｏＨＳＶ）ベクターに関する。

腫瘍溶解性ウイルス（ＯＶ）は、ウイルス溶解性複製の経過による癌細胞溶解を特徴とする殺滅機序である腫瘍溶解を通して癌細胞を特異的に破壊する治療兵器である。このウイルスによる直接的な細胞殺滅に加えて。種々のＯＶのうち、単純ヘルペスウイルス１型（「ＨＳＶ－１」）系ＯＶが、最も進歩しており、例えば、ヘルペスウイルス系ＯＶ（Ｔ－Ｖｅｃ）が、黒色腫の治療のために米国食品医薬品局によって承認されている。ＨＳＶベクターの代表的な例としては、米国特許第７，２２３，５９３号、第７，５３７，９２４号、第７，０６３，８３５号、第７，０６３，８５１号、第７，１１８，７５５号、第８，２７７，８１８号、および第８，６８０，０６８号に説明されているＨＳＶベクターが挙げられる。

本発明は、現行の商用腫瘍溶解性ウイルスの短所を克服し、追加の予期せぬ利益をさらに提供する。

簡潔に述べると、本開示は、ＩＬ１２、ＩＬ１５および／またはＩＬ受容体１５アルファサブユニットのうちの１つ以上についての発現カセットを含むＨＳＶベクターに関する。一実施形態内で、発現カセットは、ＩＬ１２、ＩＬ１５およびＩＬ受容体１５アルファサブユニットの全部を発現する。好ましい実施形態内で、発現カセットは、マウスまたはヒトＩＬ１２、マウスまたはヒトＩＬ１５、およびマウスまたはヒトＩＬ１５受容体アルファサブユニットを発現する。さらに他の実施形態内で、発現カセットは、マウスまたはヒトＩＬ１２、ｈＩＬ１５、ならびにマウスおよびｈ１５受容体アルファサブユニットを発現する。

一実施形態内で、発現カセットは、ＩＬ１２、ＩＬ１５およびＩＬ受容体１５アルファサブユニットの全部を発現する。一実施形態内で、発現カセットは、ｍＩＬ１２、ｈＩＬ１５、およびｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットを含む。他の実施形態内で、発現カセットは、ｈＩＬ１２、ｈＩＬ１５、およびｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットを含む。ある特定の実施形態において、自己開裂性２Ａペプチドをコードする核酸配列は、ｍＩＬ１２、ｈＩＬ１５、およびｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットについてのコード配列間でインフレームに位置する。他の実施形態において、ＨＳＶベクターは、自己開裂性２Ａペプチドをコードする。他の実施形態において、１つ以上のＩＲＥＳ配列は、マウスまたはヒトＩＬ１２、ｈＩＬ１５、およびｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットについてのコード配列間に位置する。実施形態において、ｈＩＬ１５およびｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットは、ＩＲＥＳ配列を用いて共発現し、ある特定の実施形態において、ｈＩＬ１５およびｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットは、二方向プロモーターによって発現させられる。この二方向プロモーターは、いくつかの実施形態において二方向ＣＭＶであってもよい。さらに他の実施形態において、ｈＩＬ１５およびｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットのそれぞれに、Ｌｙｓ５またはＧｌｕ５をコードする核酸配列が後続する。ある特定の実施形態において、ｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットは、バリアント１、バリアント２、バリアント３およびバリアント４からなる群より選択される。

ベクターは、１つ以上のＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドについての発現カセットをさらに含み得、複数のＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチド間にあるペプチドリンカーまたは１つ以上のＩＲＥＳ配列（またはこれらの両方）をコードする配列をさらに含み得る。いくつかの実施形態において、ＨＳＶベクターは、ＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドの３’末端へ連結したＦｃドメインをコードする配列をさらに含み得る。さらに他の実施形態において、ＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドは、ＵＬ３ウイルス遺伝子とＵＬ４ウイルス遺伝子との間に挿入される。

ある特定の実施形態において、発現カセットは、ＨＳＶゲノムの末端反復領域に挿入される。実施形態において、ＨＳＶベクターは、ＩＣＰ４またはＩＣＰ２７調節領域においてＮＦκＢおよびＯＣＴ４／ＳＯＸ２増強要素をさらに含む。ＨＳＶベクターは、ＩＣＰ３４．５遺伝子の欠失を有し得る。他の実施形態において、ＩＣＰ３４．５遺伝子は、腫瘍細胞において過少発現するｍｉＲＮＡの標的配列を含有する３’ＵＴＲによって調節される。

発現カセットは、少なくとも１つの二方向ＣＭＶプロモーターを含み得る。発現カセットは、少なくとも１つの細胞プロモーターを含み得る。

いくつかの実施形態において、ｍＩＬ１２／ｈＩＬ１５／ｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットについての発現カセットは、元のウイルス配列がカセットによって置き換えられた末端反復領域に挿入される。

ＨＳＶベクターは、ＨＳＶ－１またはＨＳＶ－２のいずれかであり得る。

この発明の概要は、後述の発明を実施するための形態においてさらに詳述される簡素化された形態のある特定の概念を紹介するために提供されている。別段の明らかな記載がない限り、この発明の概要は、請求される対象の鍵となるまたは必須の特長を特定するよう意図するものではなく、請求される対象の範囲を制限するよう意図するものでもない。

１つ以上の実施形態の詳細は、後述の発明を実施するための形態において明らかにされる。１つの例示的な実施形態と関連して例証され説明される特長は、他の実施形態の特長と組み合わされ得る。したがって、本明細書に説明する種々の実施形態のいかなるものも、さらなる実施形態を提供するために組み合わされることができる。実施形態の態様は、本明細書で特定されるような種々の特許、出願および公開物の概念を採用することが必要な場合、なおもさらなる実施形態を提供するよう改変することができる。他の特長、目的および利点は、本発明の明細書、図面、および特許請求の範囲から明らかとなるであろう。
本開示の例示的な特長、本開示の性質および種々の利点は、種々の実施形態の添付の図面および後述の発明を実施するための形態から明らかであろう。非限定的および非網羅的な実施形態が添付の図面に関して説明されており、この中で類似の標識または参照番号は、別段の指定がない限り、種々の見解のいたるところにある類似の部分を指す。図面における要素の大きさおよび相対的な位置は、必ずしも尺度通りに描かれていない。例えば、種々の要素の形状は、図面のレジビリティを改善するよう選択、拡大、および配置される。描かれている要素の詳細な形状は、図面における認識を容易にするために選択されている。１つ以上の実施形態は、添付の図面に関して後述される。

例示的なｏＨＳＶベクターの概略図である。 ウイルスｈＶＧ１６１について改変されたＩＣＰ３４．５領域（配列番号５７２）の概略図を示す。 ウイルスｈＶＧ１６１について改変されたＵＬ５４プロモーター領域（配列番号５７３）の概略図を示す。 ＰＤ－Ｌ１ブロッカーが挿入されたｈＶＧ１６１ウイルスゲノム（配列番号５７４）の概略図を示す。 ｈＶＧ１６１で改変したＴＲ領域（配列番号５７５）の概略図を示す。 細胞のｈＶＧ１６１感染後のＩＬ－１２発現についてのＥＬＩＳＡおよびウェスタンブロットのデータを示す。 細胞のｈＶＧ１６１感染後のＩＬ－１５発現についてのＥＬＩＳＡおよびウェスタンブロットのデータを示す。 細胞のｈＶＧ１６１感染後のＩｇＧ４発現についてのＥＬＩＳＡおよびウェスタンブロットのデータを示す。 （Ａ）二方向ＣＭＶプロモーターがＩＬ－１５ＲαおよびＩＬ－１５のＳｕｓｈｉドメインの発現を駆動する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｃ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５５７）である。 （Ａ）二方向ＣＭＶプロモーターがＩＬ－１５およびＩＬ－１５Ｒαバリアント４の発現を駆動する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｃ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５５８）である。 （Ａ）二方向ＣＭＶプロモーターがＩＬ－１５－Ｋ５およびＩＬ－１５Ｒα Ｓｕｓｈｉドメイン－Ｅ５の発現を駆動する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｃ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５５９）である。 （Ａ）二方向ＣＭＶプロモーターがＩＬ－１５－Ｋ５およびＩＬ－１５Ｒαバリアント４－Ｅ５の発現を駆動する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｄ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５６０）である。 （Ａ）ＥＦ１αプロモーターがＩＬ－１５－ＩＲＥＳ－ＩＬ－１５Ｒα Ｓｕｓｈｉドメインの発現を制御する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｄ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５６１）である。 （Ａ）ＥＦ１αプロモーターがＩＬ－１５－ＩＲＥＳ－ＩＬ－１５Ｒαバリアント４の発現を制御する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｄ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５６２）である。 （Ａ）ＥＦ１αプロモーターがＩＬ－１５Ｋ５－ＩＲＥＳ－ＩＬ－１５Ｒα ＳｕｓｈｉドメインＥ５の発現を制御する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｄ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５６３）である。 （Ａ）ＥＦ１αプロモーターがＩＬ－１５Ｋ５－ＩＲＥＳ－ＩＬ－１５Ｒαバリアント４Ｅ５の発現を制御する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｄ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５６４）である。 （Ａ）ＣＭＶプロモーターがＩＬ－１２－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｒα Ｓｕｓｈｉドメインの発現を制御する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｅ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５６５）である。 （Ａ）ＣＭＶプロモーターがＩＬ－１２－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｒαバリアント１の発現を制御する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｅ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５６６）である。 （Ａ）ＣＭＶプロモーターがＩＬ－１２－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｋ５－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｒα ＳｕｓｈｉドメインＥ５の発現を制御する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｄ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５６７）である。 （Ａ）ＣＭＶプロモーターがＩＬ－１２－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｋ５－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｒαバリアント１－Ｅ５の発現を制御する例示的なコンストラクトの概略図、ならびに（Ｂ～Ｄ）ＤＮＡ配列および概略図（配列番号５６８）である。 ブロッキングペプチドによるＰＤ－１に対するＰＤ－Ｌ１結合の阻害率を示すチャートである。 抗ＣＤ３で刺激したヒト末梢血単核細胞による標的細胞の細胞毒性に対するＰＤ－Ｌ１抑制ペプチドの効果を示す。 ヒト末梢血単核細胞におけるＩＦＮγおよびＴＮＦαの産生に対するＩＬ－１２単独、ＩＬ－１５Ｒα単独、ならびにＩＬ－１２および１Ｌ－１５Ｒαをまとめるという効果を示す。 末梢血単核細胞によるＵ８７およびＭＤＡ－ＭＢ－２３１腫瘍細胞の細胞毒性に対するＩＬ－１２およびＩＬ－１５Ｒαの効果を示す。 ＶＧ１６１－ＰＬＢｈおよびＶＧ１６１－１５ｈによる細胞感染の結果を示す。 種々のコンストラクトについてのインビトロアッセイの結果を示す。図２６Ａ～２６Ｂは、ＩＬ－１２、ＩＬ－１５、およびＰＤ－Ｌ１ブロッカーを保有するＩＬ－ＴＦ－Ｆｃプラスミドを用いた細胞トランスフェクションの結果を示す。図２６Ｃ～２６Ｄは、ｈＶＧ１６１を含む種々の変異ウイルスによる細胞感染の結果を示す。 ヒト腫瘍細胞株およびベロ細胞株に対するｈＶＧ１６１およびＨＳＶ－３４５についての細胞生存率アッセイの結果を示す。 種々のコンストラクトについてのインビトロアッセイの結果を示す。図２８Ａ～２８Ｅは、マウス腫瘍細胞株およびベロ細胞株に対するｍＶＧ１６１およびＨＳＶ－３４５についての細胞生存率アッセイの結果を示し、図２８Ｆ～２８Ｊは、ＣＴ２６マウス腫瘍細胞のｍＶＧ１６１またはＶＧ００１感染後の導入遺伝子発現の特徴づけを示す。 種々の細胞株のｈＶＧ１６１またはＶＧ００１感染後の導入遺伝子発現のインビトロでの特徴づけの結果を示す。 種々のヒト癌細胞をインビトロで殺滅するｈＶＧ１６１の能力を評価するアッセイの結果を示す。 ｍＶＧ１６１およびｈＶＧ１６１コンストラクトについてのインビボアッセイの結果を示す。 ３つの異なるヒト細胞株に対する異なるウイルスについての成長曲線を示す。 マウス腫瘍細胞株およびベロ細胞株に対するｍＶＧ１６１およびＨＳＶ－３４５の成長曲線を示す。 ヒト腫瘍細胞株およびベロ細胞株に対するｈＶＧ１６１およびＨＳＶ－３４５の成長曲線を示す。 ウイルス改変の効果を示す。 インビトロでの効能データを提供する。 インビボでのデータを提供する。 免疫応答におけるＶＧ１６１ｍの効果に関するデータを提供する。

本開示は、以下の本発明の好ましい実施形態の詳細な説明および本明細書に含まれる実施例に対する参照によってより容易に理解され得る。

本開示の概要
本開示は、以下の本発明の好ましい実施形態の詳細な説明および本明細書に含まれる実施例に対する参照によってより容易に理解され得る。簡潔に述べると、本開示は、免疫刺激分子を発現する腫瘍溶解性単純ヘルペスウイルス１型または２型ベクターを提供する。代表的なベクターは、ＩＬ－１２、ＩＬ－１５およびＩＬ－１５Ｒαのうちの１つ以上をコードする発現カセットを含む。ある特定のベクターは、マウスまたはヒトＩＬ－１２、マウスまたはヒトＩＬ－１５、およびマウスまたはヒトＩＬ－１５Ｒαをコードする。ある特定の実施形態内で、ベクターは、マウスまたはヒトＩＬ－１２、ｈＩＬ１５、およびｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットをコードする。他の実施形態内で、ベクターは、ｈＩＬ－１２、ＨＩＬ１５およびＨＩＬ１５受容体アルファサブユニットをコードする。これら３つのタンパク質は、１個、２個、または３個の転写産物上に発現し得る。同じ転写産物上に発現するとき、転写後プロセシングが続いて起こり、個々のタンパク質の発現を結果として生じる。このような場合、コード領域はＩＲＥＳ配列、または自己開裂性２Ａペプチドをコードする配列によって分離されている。コード領域は、二方向プロモーターによって発現し得る。ＨＳＶベクターは場合により、分泌することができる１つ以上のＰＤ－Ｌ１ペプチドを発現する。

Ａ．ｏＨＳＶベクター
腫瘍溶解性ウイルスとは、好ましくは選択的様式で癌細胞を溶解するであろう（腫瘍溶解性）ウイルスである。非分裂細胞よりも分裂細胞において選択的に複製するウイルスはしばしば、腫瘍溶解性である。本明細書における使用に適している腫瘍溶解性ウイルスには、単純ヘルペスウイルス１型および２型が含まれる。

単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）１型および２型は、ヒトに感染するヘルペスウイルス科のメンバーである。ＨＳＶゲノムは、一義的な長い（Ｕ_L）領域および一義的な短い（Ｕ_S）領域と呼ばれる２つの一義的な領域を含有する。これらの領域のそれぞれは、一対の逆になった末端反復配列によって隣接されている。約７５個の既知のオープンリーディングフレームがある。ウイルスゲノムは、例えば、癌療法における使用のための腫瘍溶解性ウイルスを開発するために操作されてきた。ＨＳＶの腫瘍選択的複製は、ＨＳＶ ＩＣＰ３４．５（γ３４．５とも呼ばれる）遺伝子の変異によって与えられ得る。ＨＳＶは、２コピーのＩＣＰ３４．５を含有する。ＩＣＰ３４．５遺伝子の片方または両方のコピーを不活性化させる変異体は、神経毒性を欠失している、すなわち非病原性／非神経毒性であり、腫瘍溶解性であることが既知である。

適切な腫瘍溶解性ＨＳＶは、何らかの実験室株または臨床上の単離物を含む、ＨＳＶ－１またはＨＳＶ－２のいずれかに由来し得る。いくつかの実施形態において、ｏＨＳＶは、実験室株であるＨＳＶ－１株１７、ＨＳＶ－１株Ｆ、またはＨＳＶ－２株ＨＧ５２のうちの１つであり得、またはこの１つに由来し得る。他の実施形態において、ｏＨＳＶは、被実験室株ＪＳ－１であり得、またはこれに由来し得る。他の適切なＨＳＶ－１ウイルスには、この後述のすべてが全体としてこの参照により含まれるＨｒｒＲ３（Ｇｏｌｄｓｔｅｎ ａｎｄ Ｗｅｌｌｅｒ，Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．６２，１９６－２０５，１９８８）、Ｇ２Ｏ７（Ｍｉｎｅｔａ ｅｔ ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ．１（９）：９３８－９４３，１９９５、Ｋｏｏｂｙ ｅｔ ａｌ．Ｔｈｅ ＦＡＳＥＢ Ｊｏｕｒｎａｌ，１３（１１）：１３２５－１３３４，１９９９）、Ｇ４７Ｄｅｌｔａ（Ｔｏｄｏ ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ．２００１；９８（１１）：６３９６－６４０１）、ＨＳＶ １７１６（Ｍａｃｅ ｅｔ ａｌ．Ｈｅａｄ＆Ｎｅｃｋ，２００８；３０（８）：１０４５－１０５１、Ｈａｒｒｏｗ ｅｔ ａｌ．Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ．２００４；１１（２２）：１６４８－１６５８）、ＨＦ１０（Ｎａｋａｏ ｅｔ ａｌ．Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ．２０１１；１８（３）：１６７－１７５）、ＮＶ１０２０（Ｆｏｎｇ ｅｔ ａｌ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙ，２００９；１７（２）：３８９－３９４）、Ｔ－ＶＥＣ（Ａｎｄｔｂａｃｋａ ｅｔ ａｌ．Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ，２０１５：３３（２５）：２７８０－８）、Ｊ１００（Ｇａｓｔｏｎ ｅｔ ａｌ．ＰｌｏＳ ｏｎｅ，２０１３；８（１１）：ｅ８１７６８）、Ｍ００２（Ｐａｒｋｅｒ ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，２０００；９７（５）：２２０８－２２１３）、ＮＶ１０４２（Ｐａｓｓｅｒ ｅｔ ａｌ．Ｃａｎｃｅｒ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ．２０１３；２０（１）：１７－２４）、Ｇ２Ｏ７－ＩＬ２（Ｃａｒｅｗ ｅｔ ａｌ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｔｈｅｒａｐｙ，２００１；４（３）：２５０－２５６）、ｒＱＮｅｓｔｉｎ３４．５（Ｋａｍｂａｒａ ｅｔ ａｌ．Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２００５；６５（７）：２８３２－２８３９）、Ｇ４７Δ－ｍＩＬ－１８（Ｆｕｋｕｈａｒａ ｅｔ ａｌ．Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２００５；６５（２３）：１０６６３－１０６６８）、ならびに「ＨＳＶ Ｖｅｃｔｏｒｓ ｗｉｔｈ Ｅｎｈａｎｃｅｄ Ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｃｅｌｌｓ」という表題のＰＣＴ／ＵＳ２０１７／０３０３０８、および「Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｓ ａｎｄ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｏｆ Ｕｓｉｎｇ Ｓｔａｔ１／３ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ ｗｉｔｈ Ｏｎｃｏｌｙｔｉｃ Ｈｅｒｐｅｓ Ｖｉｒｕｓ」という表題のＰＣＴ／ＵＳ２０１７／０１８５３９というＰＣＴ出願に開示されているベクターが含まれる。

ｏＨＳＶベクターは、少なくとも１つのγ３４．５遺伝子の修飾、変異、または欠失を有し得る。このベクターは、未処置のγ３４．５遺伝子を欠いている。いくつかの実施形態において、いずれの遺伝子も欠失しており、変異しており、または修飾されている。他の実施形態において、片方は欠失しており、もう片方は変異しまたは修飾されている。いずれかの天然のγ３４．５遺伝子は欠失していることができる。一実施形態において、γ３４．５遺伝子とＩＣＰ４遺伝子とを含む末端反復は、欠失している。ヌクレオチドの変更、挿入および欠失のような変異は、遺伝子を発現不可能にしたり、生成物を不活性化したりする。γ３４．５遺伝子は、その３’ＵＴＲにおいてｍｉＲＮＡ標的配列を用いて修飾されている。標的配列は、正常な対応物よりも腫瘍細胞において低レベルで発現するｍｉＲＮＡを結合する。いくつかの実施形態において、修飾されまたは変異したγ３４．５遺伝子（複数可）は、インビトロで構築され、ｏＨＳＶベクターへとウイルス遺伝子（複数可）に対する置き換え物として挿入される。修飾されまたは変異したγ３４．５遺伝子が唯一のγ３４．５遺伝子の置き換え物であるとき、もう片方のγ３４．５は欠失している。γ３４．５遺伝子は、外来性プロモーターを有するなど、さらなる変化を含み得る。

ｏＨＳＶは、ウイルスの病原性またはそのウイルスの複製能に影響し得る変異、例えば、欠失、置換、挿入）を不能にすることを含み得るさらなる変異を有し得る。例えば、変異は、ＩＣＰ６、ＩＣＰＯ、ＩＣＰ４、ＩＣＰ２７、ＩＣＰ４７、ＩＣＰ２４、ＩＣＰ５６のうちのいずれか１つ以上においてなされ得る。好ましくは、これらの遺伝子のうちの１つにおける（場合により、適宜遺伝子のいずれのコピーにもおける）変異は、ＨＳＶの不能（または能力の低下）をもたらして、対応する機能的ポリペプチドを発現させる。いくつかの実施形態において、ウイルス遺伝子のプロモーターは、標的細胞において選択的に活性がある、または誘導因子の送達の際に誘導性がある、または細胞事象もしくは特定の環境において誘導性があるプロモーターと置換され得る。特定の実施形態において、腫瘍特異的プロモーターは、ＨＳＶの複製に必須のウイルス遺伝子の発現を駆動する。ある特定の実施形態において、ＩＣＰ４もしくはＩＣＰ２７またはこの両者の発現は、外来性プロモーター、例えば、腫瘍特異的プロモーターによって制御される。例示的な腫瘍特異的プロモーターとしては、サバイビンまたはテロメラーゼが挙げられ、他の適切な腫瘍特異的プロモーターは、単一の腫瘍タイプに特異的であり得、当該技術分野で既知である。他の要素が存在してもよい。いくつかの場合において、ＮＦ－ｋＢ／ＯＣＴ４／ＳＯＸ２エンハンサーのようなエンハンサーは、例えば、ＩＣＰ４もしくはＩＣＰ２７またはこの両者の調節領域に存在する。同様に、ＦＧＦのような成長因子遺伝子由来の５’ＵＴＲのような５’ＵＴＲは、外来性であり得る。

ｏＨＳＶは、本来非ＨＳＶである遺伝子およびヌクレオチド配列も有し得る。例えば、プロドラッグをコードする配列、サイトカインまたは他の免疫刺激因子、腫瘍特異的プロモーター、誘導性プロモーター、エンハンサー、宿主細胞と相同的な配列はとりわけ、ｏＨＳＶゲノム中にあり得る。例示的な配列は、ＩＬ１２、ＩＬ１５、ＯＸ４０Ｌ、ＰＤ－Ｌ１ブロッカーまたはＰＤ－１ブロッカーをコードする。生成物をコードする配列については、発現に必要なまたは望ましいプロモーター配列および他の調節配列（例えば、エンハンサー、ポリアデニル化シグナル配列）へ作用するように連結される。

ウイルス遺伝子の調節領域は、発現に影響する応答要素を含むよう修飾され得る。例示的な応答要素としては、ＮＦ－κＢ、Ｏｃｔ－３／４－ＳＯＸ２、エンハンサー、サイレンサー、ｃＡＭＰ応答要素、ＣＡＡＴエンハンサー結合配列、および絶縁因子に対する応答要素が挙げられる。他の応答要素も含まれ得る。ウイルスプロモーターは、異なるプロモーターと置き換えられ得る。プロモーターの選択は、ＨＳＶベクターの提唱される使用、患者、病状または容態の治療、および誘導因子の適用しやすさ（誘導性プロモーターについての）のようないくつかの因子によるであろう。癌の治療については、概してプロモーターが置き換えられるとき、細胞特異的または組織特異的または腫瘍特異的プロモーターを用いるであろう。腫瘍特異的、細胞特異的および組織特異的プロモーターは、当該技術分野で既知である。他の遺伝子要素は、同様に修飾され得る。例えば、ウイルス遺伝子の５’ＵＴＲは、外来性ＵＴＲと置き換えられ得る。

Ｂ．免疫刺激分子
ｏＨＳＶベクターは、１つ以上の免疫刺激分子（例えば、ＩＬ－１２、ＩＬ－１５、およびＩＬ－１５Ｒα）をコードする核酸配列を含む。例示的なＩＬ－１２、ＩＬ－１５、およびＩＬ－１５Ｒαのアミノ酸配列は、配列表（配列番号１～６）に提示される。アミノ酸配列をコードするいかなるＤＮＡ配列も適切であるが、概して、コドンは、ｏＨＳＶを受容する予定の対象種において優先的に発現するために選択されるであろう。

１．ＩＬ－１２
インターロイキン１２（ＩＬ－１２）は主として、細菌（例えば、リポ多糖）、病原体または活性化型Ｔ細胞に応答して、樹状細胞、マクロファージ、および単球によって産生される。ＩＬ－１２は、ＩＦＮガンマ産生、細胞増殖を誘導することができ、ナチュラルキラー細胞およびＴ細胞を活性化することができる。Ｔ細胞からＴｈ１細胞への分化にとっても必須である。ＩＬ－１２は、腫瘍の成長を抑制することもできる。マウスＩＬ－１２は、マウスおよびヒトの両細胞に対して等しく活性があり、いずれもｏＨＳＶベクターにおける使用に適している。

生物活性のあるＩＬ－１２は、ジスルフィド架橋によって共有結合した３５ｋＤａ（ｐ３５）および４０ｋＤａ（ｐ４０）サブユニットから構成されたヘテロ二量体分子である。この２つのサブユニットの同時発現は、ヘテロ二量体を生成するのに必要である。ｏＨＳＶベクターにおいて、ＩＬ－１２発現は種々の方法で達成され得る。この２つのサブユニットは、それぞれプロモーターを用いて別個のコンストラクトにおいて発現することができるか、または二方向プロモーターから１つのコンストラクトにおいて発現することができるか、またはコード領域間にあるＩＲＥＳもしくは自己開裂性ペプチドのような要素を有する１つのコンストラクトから発現することができる。あるいは、サブユニットは、一本鎖として発現することができる。例えば、機能的な一本鎖であるＩＬ－１２融合タンパク質は、ｐ４０およびｐ３５についてのコード領域を、通常、Ｓｅｒ₅、（Ｇｌｙ₄Ｓｅｒ）₃またはＧｌｙ₆Ｓｅｒ（例えば、Ｌｉｅｓｃｈｋｅ ｅｔ ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １５：３５，１９９７、Ｌｏｄｅ ｅｔ ａｌ．ＰＮＡＳ ９５：２４７５，１９９８）のような、ＳｅｒもしくはＧｌｙまたはＳｅｒおよびＧｌｙの組み合わせから構成されるリンカーで連結することによって生成することができる（代替的な融合コンストラクトについてはＷＯ２０１５／０９５２４９も参照されたい）。リンカーの配列および長さは概して、ドメインの最大可撓性を可能にするよう選択される（Ｃｈｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ａｄｖ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ Ｒｅｖ．６５：１３５７，２０１３）。コンピュータプログラムを使用して、リンカー配列を選択することができる。１つのこのようなプログラムは、ＬＩＮＫＥＲ（Ｃｒａｓｔｏ ａｎｄ Ｆｅｎｇ，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇ Ｄｅｓｉｇｎ＆Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ １３：３０９）と呼ばれる。例示的な一本鎖ＩＬ－１２は、配列番号１のアミノ酸配列を有する。アミノ酸の置換、挿入および欠失は、ＩＬ－１２が機能を保有している限り、なされ得る。

２．ＩＬ－１５
ＩＬ－１５は、ナチュラルキラー細胞およびＴ細胞の活性化および増殖を調節し、かつ他の生物活性を有してもよいサイトカインである。少なくとも２つのアイソフォームがあり、これらは単一ペプチドの配列が異なっており、同一の成熟タンパク質配列を有する。長めのシグナルペプチドを有するアイソフォーム（時にＬＳＰ－ＩＬ１５と呼ばれる）の配列は、ＧｅｎＢａｎｋ（ＮＣＢＩ）受託番号ＮＰ０００５７６を有しており、短めのシグナルペプチドを有するアイソフォーム（時にＳＳＰ－ＩＬ１５と呼ばれる）は、受託番号ＮＰ７５１９１５を有している。いずれのアイソフォームもｏＨＳＶベクターにおける使用に適している。多型において認められるようなアミノ酸の挿入、欠失および置換は、このタンパク質がＩＬ－１５を結合している限り、あり得る。

いくつかの実施形態において、ＩＬ－１５およびＩＬ－１５Ｒαはそれぞれ、選択的に二量体化することになっている多重コイルであるＣ末端ペプチドを有している。いくつかの適切なペプチドが教示されている（例えば、Ｔｒｉｐｅｔ ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ９：１０２９，１９９６、Ａｒｏｎｓｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉ Ｒｅｐ ５：１４０６３，２０１５を参照されたい）。典型的には、多重コイルのアミノ酸配列は、ｈｐｐｈｐｐｐパターンにおいて疎水性（ｈ）および極性（ｐ）残基からなる７回反復を有する。２つの例示的な多重コイルは、Ｋコイル（ＫＶＳＡＬＫＥ、配列番号７）およびＥコイル（ＥＶＳＡＬＥＫ、配列番号８）である。概して、３～６個の直列コピーが使用される。本明細書のいくつかの実施形態において、それぞれの５個の直列コピーが使用される。Ｋ５（ＫＶＳＡＬＫＥＫＶＳＡＬＫＥＫＶＳＡＬＫＥＫＶＳＡＬＫＥＫＶＳＡＬＫＥ、配列番号９）およびＥ５（ＥＶＳＡＬＥＫＥＶＳＡＬＥＫＥＶＳＡＬＥＫＥＶＳＡＬＥＫＥＶＳＡＬＥＫ、配列番号１０）。ＫコイルおよびＥコイルは、逆に帯電するよう設計されたので、ＩＬ－１５は、１つの多重コイルと融合し、ＩＬ－１５Ｒαは、逆に帯電した多重コイルへ融合する。Ｅ５へ融合した例示的なＳｕｓｈｉドメインは配列番号１２に示されており、Ｅ５へ融合した例示的なＩＬ－１５Ｒαバリアント４は配列番号１３に示されており、Ｅ５へ融合した例示的なＩＬ－１５Ｒαバリアント１は配列番号１４に示されており、Ｋ５へ融合した例示的なＩＬ－１５は配列番号１５に示されている。

３．ＩＬ－１５Ｒαサブユニット
インターロイキン１５受容体アルファサブユニット（ＩＬ－１５Ｒα）は、ＩＬ－１５を結合する複合体の３つのサブユニットのうちの１つである。アルファサブユニットは、高い親和性でＩＬ－１５を結合し、他のサブユニットとは無関係にＩＬ－１５へ結合することができる。少なくとも４つのバリアント（アイソフォーム）があり、本明細書ではバリアント１（ＮＰ ００２１８０．１）（配列番号３）、バリアント２（ＮＰ ７５１９５０．２）（配列番号４）、バリアント３（ＮＰ ００１２３０４６８．１）（配列番号５）、およびバリアント４（ＮＰ＿００１２４３６９４）（配列番号６）と呼ぶ。アルファサブユニットは、ＩＬ－１５結合活性を保有している最短領域であるＳｕｓｈｉドメイン（別名補体制御タンパク質（ＣＣＰ）、短鎖共通反復（ＳＣＲ）またはＳＵＳＨＩ反復）を含有する。典型的なＳｕｓｈｉドメインは、２つのジスルフィド結合を形成する４個のシステインを含有する約６０～７０個のアミノ酸であり、タンパク質間相互作用における共通のモチーフである。ＩＬ－１５ＲαのＳｕｓｈｉドメインは、残基３１～約９５を包含する（バリアント１に対する参照における）（配列番号１１）。他のバリアントにおけるＳｕｓｈｉドメインの位置は既知である。ｓＩＬ－１５Ｒαにおけるシステインのいずれかのアミノ酸置換は、インビボでの急性炎症および異質遺伝子的抗原に対するＴ細胞応答を阻害する能力を消失させる（Ｗｅｉ ｅｔ ａｌ．Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６７：２７７，２００１）。

ｏＨＳＶベクターは、ＩＬ－１５Ｒα、ＩＬ－１５Ｒαのバリアント、またはＳｕｓｈｉドメインをコードする核酸配列を含む。概して、このタンパク質は、リーダーペプチドを用いて発現させられ、いくつかの実施形態において、リーダーペプチドは、ＩＬ－１５Ｒαに由来する。他のリーダーペプチドは、当該技術分野で既知である。アミノ酸置換は、このタンパク質がＩＬ－１５を結合している限り、存在し得る。天然の置換、多型は既知である。

４．ＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチド
プログラム死リガンド１（ＰＤ－Ｌ１）は、おそらくＰＤ－１受容体を結合する作用として、免疫系を抑制する上での役割を担っている。タンパク質間相互作用を遮断することは、癌療法を改善するために示されてきた。

ｏＨＳＶベクターは、ＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチド結合を発現し得る。適切なペプチドには、ＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦ（配列番号１６）、ＥＹＲＭＳＰＳＮＱＴ（配列番号１７）、ＹＹＲＭＳＰＳＮＱＴ（配列番号１８）、ＴＲＹＰＳＰＳＰＫＰＥＧＲＦ（配列番号１９）、およびＷＮＲＬＳＰＳＮＱＴ（配列番号２０）が含まれる。他の適切なペプチドには、表４にあるペプチド（配列番号２１～５００）が含まれる。概して、ブロッキングペプチドは、リーダー配列を用いて発現させられる。リーダー配列は、当該技術分野で十分に既知である。リーダー配列には、免疫グロブリンカッパ鎖リーダー配列（ＭＥＴＤＴＬＬＬＷＶＬＬＬＷＶＰＧＳＴＧ、配列番号５０１）およびＩＬ－２リーダー配列（ＭＹＲＭＱＬＬＳＣＩＡＬＳＬＡＬＶＴＮＳ、配列番号５０２）が含まれる。１個を超えるブロッキングペプチドが存在するとき、典型的には、ペプチドは、可撓性を与えるリンカーペプチドによって分離されるであろう。リンカーは通常、ＧｌｙまたはＳｅｒまたはＧｌｙ／Ｓｅｒが豊富である。適切なリンカーの例は、（配列番号５０３～５１９）に示されている（Ｃｈｉｃｈｉｌｉ ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２：１５３，２０１３も参照されたい）。１コピーまたは２コピーまたは３コピーまたはそれより多数のコピーのペプチドがあり得る。多重コピーは通常、直列であり、コピー間にリンカーを有し得る。ブロッキングペプチドは、ペプチドのＣ末端にＦｃ配列も、またはヒンジ領域の有無の下にある免疫グロブリンＦｃ配列も含み得る。Ｆｃ領域のいかなるものも適切であるが、概して、Ｆｃは、ＩｇＧ下位クラスのうちの１つ、例えば、ヒトＩｇＧ１、ヒトＩｇＧ２、ヒトＩｇＧ３、およびヒトＩｇＧ４またはこれらのマウス対応物に由来するであろう。

Ｃ．要素の組織化
ＩＬ－１２、ＩＬ－１５およびＩＬ－１５Ｒαという分子は、ｏＨＳＶベクターにおける種々の異なる立体配置にあることができる。例えば、分子のそれぞれは、別個のプロモーター／調節領域から個別に発現し得、または１つもしくは２つの別個のプロモーター／調節領域から共発現し得る。

ある特定の実施形態において、この分子のうちの２個または３個は、１つのプロモーターから単一の転写産物において発現し、これらのコード配列は、ＩＲＥＳ（配列内リボソーム進入部位）配列によって分離されている。ＩＲＥＳ領域は、真核リボソーム翻訳開始複合体を誘引し、したがって、ｍＲＮＡの中間において、通常利用される５’末端キャップ構造とは無関係に翻訳を開始することができる。適切なＩＲＥＳ配列は十分に既知であり、多くは、実験的に認証されたＩＲＥＳ配列のＩＲＥＳｉｔｅデータベースにおいて認められ得る（例えば、ｈｔｔｐ：／／ｉｒｅｓｉｔｅ．ｏｒｇ／ＩＲＥＳｉｔｅ＿ｗｅｂ．ｐｈｐ？ｐａｇｅ＝ｂｒｏｗｓｅ＿ｐｌａｓｍｉｄｓ（２０１６年５月２６日アクセス）を参照されたい）。

種々の実施形態において、３個の遺伝子は、何らかの順序で存在し、１つ以上のＩＲＥＳ配列によって分離されている。ＩＲＥＳ配列は、同一であってもなくてもよい。さらなる配列は、遺伝子／ＩＲＥＳ接合部またはＩＲＥＳ／ＩＲＥＳ接合部に存在し得る。

ある特定の実施形態において、分子のうちの２個または３個は、１つのプロモーター由来の単一の転写産物において発現し、このコード配列は、１個以上の自己開裂性２Ａペプチドによって分離されている。これらのペプチドは、短鎖（約１８～２２個のアミノ酸）であり、コード配列間にインフレームで挿入されている。翻訳中、リボソームは、２ＡペプチドのＣ末端におけるグリシル－プロリルペプチド結合の合成をスキップし、２Ａペプチドとそのすぐ下流のタンパク質との間に開裂をもたらす。結果として、リボソームは、等モルレベルの多重遺伝子産物を同じｍＲＮＡから生成する。「開裂」は、Ｃ末端におけるｇｌｙ－ｐｒｏ残基間に生じ、上流のシストロンがそのＣ末端へ付加された追加の残基を有するであろうが、下流のシストロンは、プロリンで始まるであろう。例示的なｐ２Ａペプチド配列は、配列番号５２０～５３５において示されている。

この分子の共発現をもたらす別の手段は、二方向プロモーターを使用することである。二方向プロモーターは、ヒトゲノムの共通の特長である（Ｔｒｉｎｋｌｅｉｎ ｅｔ ａｌ．Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ １４：６２，２００４）。二方向プロモーターは、両方向に転写を開始し、典型的には、両遺伝子を調節する共有された要素を含有している。天然の二方向プロモーターに加えて、二方向になるようにプロモーターが合成されている。１つのこのようなプロモーターは、二方向ＣＭＶである。ｐＢＩ－ＣＭＶ１は、関心対象の２つのタンパク質の恒常的発現を可能にする哺乳類二方向発現ベクターである。タンパク質発現は、２つの恒常的に活性のある最小ヒトサイトメガロウイルスプロモーターであるＰｍｉｎＣＭＶ１および反対向きのＰｍｉｎＣＭＶ２のうちの１つによって駆動される。二方向ＣＭＶプロモーターの例示的なＤＮＡ配列は、配列番号５３６である。

二方向プロモーターは（例えば、二方向ＣＭＶプロモーター）は主として、ｈＩＬ１５およびＩＬ－１５Ｒα（またはＳｕｓｈｉドメイン）の共発現を達成するために使用される。２つの分子がＩＲＥＳまたはｐ２Ａ配列を用いて共発現するとき、概して、ｈＩＬ１５およびＩＬ－１５Ｒα（またはＳｕｓｈｉドメイン）であろう。これらの場合において、ＩＬ－１２およびＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドは、二方向プロモーターを用いて、またはＩＲＥＳもしくはｐ２Ａ配列を有する多重シストロン性転写産物として共発現し得、あるいはこれらのブロッキングペプチド自体のプロモーター／調節領域から個別に発現し得る。

他のプロモーターを使用してもよい。細胞プロモーター、ウイルスプロモーターなどが適切である。プロモーターは、恒常的または誘導性または細胞／組織特異的であり得る。多くのプロモーターが十分に既知である。有用であり得る１つの特定のプロモーターは、恒常的なＥＦ－１αプロモーターである。

配列は、１つ以上の発現カセットにおいて組み立てられる。例は、いくつかの発現カセットの例示版を提供する。発現カセットは、決定的な機能（例えば、複製）を崩壊させない何らかの位置にあるＨＳＶゲノムへと挿入され得る。ある特定の実施形態において、このカセットは、反復を最初に欠失させた後に、内部のまたは末端の反復領域の中に挿入される。挿入に適した他の領域には、例えば、ＵＬ３およびＵＬ４ウイルス遺伝子、ＵＬ５０およびＵＬ５１遺伝子のようなウイルス遺伝子間に、ならびにＵＳ１およびＵＳ２間に含まれる。

ある特定の実施形態において、ＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドを発現するカセットは、ウイルス遺伝子間（例えば、ＵＬ３およびＵＬ４、ＵＬ５０およびＵＬ５１ならびに／またはＵＳ１およびＵＳ２）に挿入される。他の実施形態において、ＩＬ－１２、ＩＬ－１５およびＩＬ－１５Ｒαを発現するカセットは、末端反復領域に代わって挿入され、ＰＤ－Ｌ１ペプチドを発現するカセットは、ＵＬ３遺伝子とＵＬ４遺伝子との間に挿入される。

Ｄ．治療用組成物
例えば、癌のような疾患の作用を予防、治療、または改善させるために使用され得る治療用組成物が提供される。より詳細には、本明細書に説明する少なくとも１つの腫瘍溶解性ウイルスを含む治療組成物が提供される。代表例としては、ＩＬ１２、ＩＬ１５および／またはＩＬ受容体１５アルファサブユニットのうちの１つ以上についての発現カセットを有するｏＨＳＶが挙げられる。一実施形態内で、発現カセットは、ＩＬ１２、ＩＬ１５およびＩＬ受容体１５アルファサブユニットの全部を発現する。好ましい実施形態内で、発現カセットは、マウスまたはヒトＩＬ１２、ｈＩＬ１５、およびｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットを含む。

ある実施形態において、組成物はさらに、医薬として許容され得る担体を含むであろう。「医薬として許容され得る担体」は、腫瘍溶解性ウイルスの生物活性の有効性に干渉せず、投与される対象に対して毒性がない何らかの担体、希釈剤または賦形剤を包含するよう意味する（概して、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：Ｔｈｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｙ，Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ Ｗｉｌｌｉａｍｓ ＆ Ｗｉｌｋｉｎｓ；２１ｓｔ ｅｄ．（Ｍａｙ １，２００５およびＴｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ＰｈａｒｍａｃｏｐＥ１Ａ：Ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｆｏｒｍｕｌａｒｙ（ＵＳＰ４０－ＮＦ３５および付録を参照されたい）。

本明細書に説明する腫瘍溶解性ウイルスの場合、適切な医薬担体の非限定例としては、リン酸緩衝塩類溶液、水、エマルション（油／水エマルションなど）、種々の種類の湿潤剤、滅菌溶液などが挙げられる。さらなる医薬として許容され得る担体には、ゲル、生体吸着性マトリックス材料、腫瘍溶解性ウイルスを含有する植え込み素子、または何らかの他の適切なビヒクル、送達もしくは分散の手段もしくは材料（複数可）が含まれる。このような担体は、従来法によって製剤することができ、有効用量で対象へ投与することができる。さらなる医薬として許容され得る賦形剤には、水、塩類溶液、ポリエチレングリコール、ヒアルロン酸およびエタノールが含まれるが、これらに限定されない。医薬として許容され得る塩は、その点で含まれることもでき、例えば、鉱酸塩（塩化水素塩、臭化水素塩、リン酸塩、硫酸塩など）および有機酸の塩（酢酸塩、プロピオン酸塩、マロン酸塩、安息香酸塩など）である。ｏＨＳＶを標的担体へ送達するために使用され得るこのような医薬として許容され得る（医薬等級の）担体、希釈剤および賦形剤は好ましくは、組成物を受容する個体（対象）において免疫応答を誘導しないであろう（し、好ましくは、過度の毒性なしで投与されるであろう）。

本明細書に提供する組成物は、種々の濃度で提供することができる。例えば、約１０⁶～約１０⁹ｐｆｕの範囲の腫瘍溶解性ウイルスの薬用量を提供することができる。さらなる実施形態内で、剤形は、約１０⁶～約１０⁹ｐｆｕ／ｍｌの範囲であり得、治療の２～３週間ごとに、最大４ｍｌは、大きな病変（例えば、５ｃｍ超）を有する患者へ注射され、小さな病変（例えば、０．５ｃｍ未満）を有する患者においては、より少量（例えば、最大０．１ｍｌ）である。

本発明のある特定の実施形態内で、標準よりも少量の薬用量を利用してもよい。すなわち、ある特定の実施形態内で、約１０⁶ｐｆｕ／ｍｌ未満（最大４ｍｌが患者へ２～３週間ごとに注射される）を患者へ投与することができる。

組成物は、安定した保存性を招来する温度で保存され得、室温（約２０℃）、４℃、－２０℃、－８０℃、および液体Ｎ２中が含まれる。インビボでの使用に企図された組成物は概して、保存料を有していないので、貯蔵は概して、より低温であろう。組成物は乾燥（例えば、凍結乾燥済み）または液状で保存され得る。

Ｅ．投与
本明細書に説明する組成物に加えて、このような組成物を用いて癌を治療しまたは改善させる種々の方法が提供され、この方法は、対象へ本明細書に説明する有効用量または有効量のＨＳＶベクターを投与するステップを含む。

「有効用量」および「有効量」という用語は、標的の癌の治療をもたらすのに十分な腫瘍溶解性ウイルスの量、例えば、標的の腫瘍の大きさもしくは量を減少させるのに有効な量、またはそうでなければ、標的の腫瘍細胞の成長速度を妨げるのに有効な量を指す。より詳細には、このような用語は、所望の結果を得るために必要な薬用量および治療期間で有効である腫瘍溶解性ウイルスの量を指す。例えば、癌を治療する脈絡において、本明細書に説明する組成物の有効量とは、緩解を誘導し、腫瘍量を減少させ、および／または腫瘍伝播もしくは癌の成長を予防する量である。有効量は、対象の病状、齢、性別、および体重、ならびに医薬製剤、投与経路などの因子によって変化し得るが、それにもかかわらず、当業者によって定常的に判断されることができる。

治療用組成物は、癌と診断されたまたは癌に罹患している疑いのある対象へ投与される。対象は、ヒトまたは非ヒト動物であり得る。

組成物は、癌を治療するために使用される。本明細書で使用する「治療する」または「治療すること」または「治療」という用語は、臨床結果を含む有益なまたは所望の結果を得るためのアプローチを意味する。有益なまたは所望の臨床結果には、検出可能であろうと検出不可能であろうと、１つ以上の症状または容態の緩和または改善、疾患の程度の低減、疾患の安定した（すなわち、悪化していない）状態、疾患の伝播の予防、疾患の再発の低下、および寛解（部分であろうと完全であろうと）が含まれることができるが、これらに限定されない。「治療すること」または「治療」という用語は、治療を受けなかった場合に予想される生存と比較して、生存を延長することもまた意味し得る。

癌の代表的な形態には、癌腫、白血病、リンパ腫、骨髄腫および肉腫が含まれる。さらなる例としては、胆管癌、脳（例えば、膠芽腫）、乳房、子宮頸部、大腸、中枢神経系（例えば、聴神経腫瘍、星状細胞腫、頭蓋咽頭腫、上衣腫、膠芽腫、血管芽腫、髄芽腫、髄膜腫、神経芽腫、乏突起膠腫、松果体腫および網膜芽細胞腫）、子宮内膜表層、造血細胞（例えば、白血病およびリンパ腫）、腎臓、喉頭、肺、肝臓、口腔、卵巣、膵臓、前立腺、皮膚（例えば、黒色腫および扁平上皮癌）および甲状腺の癌が挙げられるが、これらに限定されない。癌は、固形腫瘍（例えば、線維肉腫、粘液肉腫、脂肪肉腫、軟骨肉腫および骨肉腫などの肉腫）、びまん性（例えば、白血病）、またはいくつかのこれらの組み合わせ（例えば、固形腫瘍および播種性またはびまん性癌細胞の両方を有する転移性癌）を含むことができる。癌は、従来の治療（例えば、従来の化学療法および／または放射線療法）に対して耐性もあり得る。

良性腫瘍および望ましくない細胞増殖に関する他の容態も治療され得る。

本明細書に説明するｏＨＳＶは、例えば、経口、局所、非経口、全身、静脈内、筋肉内、眼内、髄腔内、腫瘍内、皮下、または経皮である経路によって付与され得る。ある特定の実施形態内で、腫瘍溶解性ウイルスは、カニューレによって、カテーテルによって、または直接注射によって送達され得る。投与部位は、腫瘍内または腫瘍から遠位の部位であり得る。投与経路はしばしば、標的とされる癌の種類によるであろう。

腫瘍溶解性ウイルスの最適なまたは適切な薬用量投与計画は、当該技術分野の技術内で、患者データと、患者観察と、例えば、対象の大きさ、体表面積、齢、性別、および投与される詳細な腫瘍溶解性ウイルス、投与の時刻および経路、治療される癌の種類、患者の全身レベルの健康状態、ならびに患者が服用している他の薬物療法を含む種々の臨床因子とに基づいて、主治医によって容易に判断することができる。ある特定の実施形態によると、本明細書に説明する腫瘍溶解性ウイルスを使用した対象の治療は、例えば、エトポシド、イホスファミド、アドリアマイシン、ビンクリスチン、ドキシサイクリンなどの化学療法薬を用いた化学療法など、さらなる種類の療法と組み合わせられ得る。

ｏＨＳＶは、臨床上の使用のための薬剤および医薬組成物として製剤され得、医薬として許容され得る担体、希釈剤、賦形剤またはアジュバントと組み合わせられ得る。製剤は、投与経路に少なくとも一部よるであろう。適切な製剤は、滅菌した媒体中にウイルスと阻害剤とを含み得る。製剤は、流体状、ゲル状、ペースト状または固形であり得る。製剤は、対象または医学的専門家へ提供される

治療有効量は好ましく投与される。これは、対象に対する利益を示すのに十分な量である。投与される実際の量および投与の時間経過は、癌の性質、対象の容態、送達の部位、および他の因子に少なくとも一部よるであろう。

本発明のさらに他の実施形態内で、腫瘍溶解性ウイルスは、腫瘍内に、または腫瘍の外科的摘出後に投与することができる。

以下の実施例は、説明として提唱されるのであって、制限としてではない。
実施例

コンストラクトはすべて、化学合成を含む標準的な組換え技術を用いて作製される。

例示的なｏＨＳＶベクターの概略図
図１Ａおよび図１Ｂは、代表的なｏＨＳＶベクターの例示的な概略図を提供する。

例示的なコンストラクト
本実施例において、種々のコンストラクトおよびその配列が提示される。

ｈＶＧ１６１は、修飾されたＩＣＰ３４．５領域（図２、配列番号５７２）と、修飾されたＵＬ５４プロモーター調節領域（図３、配列番号５７３）と、ＵＬ３とＵＬ４との間の遺伝子間領域内のＰＤ－Ｌ１ブロッカーの挿入（図４、配列番号５７４）と、ＩＬ－１２、ＩＬ－１５、およびＩＬ－１５受容体アルファサブユニットをコードする発現カセットを保有する修飾された末端反復（ＴＲ）領域（図５、配列番号５７５）とを含む。これら４つのウイルスは、修飾され部分的に欠失したＩＣＰ３４．５領域も有する。

ｍＶＧ１６１は、ｈＶＧ１６１の機能的に同一のマウス版であるが、例外は、ｈＶＧ１６１がヒトＩＬ－１２とヒトＰＤ－Ｌ１ブロッカーとを保有するウイルスゲノム上の同じ位置において、ｍＶＧ１６１がＩＬ－１２のマウス版とマウスＰＤ－Ｌ１ブロッカーとを保有することである。

以後の実施例において使用する略語
ＴＦ－Ｆｃ：Ｆｃへ融合してＶＧ１６１の構築に使用されるＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチド。

ＩＬ－ＴＦ－Ｆｃ：ＩＬ－１２と、ＩＬ－１５と、ＰＤ－Ｌ１ブロッカーとを保有するプラスミド。

ＨＳＶ－３４５：ＩＣＰ３４．５欠失ウイルス。

ＯＳ－ＩＣＰ２７ ２－１１：ＶＧ１６１の構築に使用されなかったＩＣＰ２７（ＯＳ－ＩＣＰ２７）のプロモーター調節領域内に挿入されたＯｃｔ４／Ｓｏｘ２結合部位と生存プロモーター（ＯＳ）とを有するＩＣＰ３４．５欠失ウイルス。

ＯＳ－ＩＣＰ２７ ５－７：ＶＧ１６１の構築に使用されなかったＯＳ－ＩＣＰ２７変異を有するＩＣＰ３４．５欠失ウイルス。

ＮＯ－ＩＣＰ２７ １－４－４（ＮＯ－ＩＣＰ２７－１４５としても既知）：ＩＣＰ２７の転写開始部位の１４５ｂｐ上流の位置にあり、ＶＧ１６１の構築に使用されたＩＣＰ２７のプロモーター調節領域内に挿入されたＮＦ－ｋＢ応答要素とＯｃｔ４／Ｓｏｘ２結合部位（ＮＯ）（ＮＯ－ＩＣＰ２７）とを有するＩＣＰ３４．５欠失ウイルス。

ＮＯ－ＩＣＰ２７ ５－２－２（ＮＯ－ＩＣＰ２７－９９としても既知）：ＩＣＰ２７の転写開始部位の９９ｂｐ上流の位置にあり、ＶＧ１６１の構築に使用されなかったＩＣＰ２７のプロモーター調節領域内に挿入されたＮＦ－ｋＢ応答要素とＯｃｔ４／Ｓｏｘ２結合部位（ＮＯ）（ＮＯ－ＩＣＰ２７）とを有するＩＣＰ３４．５欠失ウイルス。

ＶＧ００１（ＶＧ１６０としても既知）：ＶＧ１６１の構築に使用された骨格ウイルス（ＩＬ－１２／ＩＬ－１５発現カセットの挿入にその後の使用されるウイルスゲノムの欠失した末端反復領域内の空のＭＣＳを隣接している外来性プロモーターとポリ（Ａ）とを保有するＮＯ－ＩＣＰ２７ １－４－４変異体）。

ＶＧ００１－１５ｈ（ＶＧ１６１－１５ｈとしても既知）：ヒトＩＬ－１５を保有するＶＧ００１。

ＶＧ００１－１２１５ｈ（ＶＧ１６１－１２１５ｈとしても既知）：ヒトＩＬ－１２とヒトＩＬ－１５とを保有するＶＧ００１。

ＶＧ００１－ＰＬＢｈ（ＶＧ１６１－ＰＬＢｈとしても既知）：ＵＬ３とＵＬ４との間の遺伝子間領域内に挿入されたヒトＰＤ－Ｌ１ブロッカーを保有するＶＧ００１。

８－８－１５ＲＡ１－ＰＤＬ１ｂ：ヒトＩＬ－１５とヒトＰＤ－Ｌ１ブロッカーとを保有するＶＧ００１。

ＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｍ（ｍＶＧ１６１としても既知）：マウスＩＬ－１２と、ヒトＩＬ－１５と、マウスＰＤ－Ｌ１ブロッカーと、を保有するＶＧ００１。

ＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈ（ｈＶＧ１６１またはＶＧ１６１としても既知）：ヒトＩＬ－１２と、ヒトＩＬ－１５と、ヒトＰＤ－Ｌ１ブロッカーと、を保有するＶＧ００１。

ｈＶＧ１６１による細胞の感染後のＩＬ－１２の発現
本実施例において、ＩＬ－１２発現のウェスタンブロットおよびＥＬＩＳＡのデータを示す。

図６Ａは、ＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈウイルス感染後のウェスタンブロットを示す。Ｈ４６０腫瘍細胞にＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢまたはＶＧ００１ウイルス（ＭＯＩ＝１）を２４時間感染させた。細胞溶解物を調製し、１２％ＳＤＳ－ＰＡＧＥゲル上で泳動し、ＰＶＤＦ膜へと転写した。膜を抗ヒトＩＬ－１２抗体、次いでＨＲＰ結合抗マウスＩｇＧ二次抗体を用いてブロットし、Ｂｉｏ－Ｒａｄ ＩｍａｇｅＬａｂシステムを用いてメイジを検出し、解析した。

図６Ｂ～図６Ｃは、ヒトＩＬ－１２の産生がＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈウイルス感染後に上方調節されることを示す。ＬＳ１７４ＴまたはＨ４６０腫瘍細胞にＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢまたはＶＧ００１ウイルス（ＭＯＩ＝１）を４８時間感染させた。感染した細胞の上清を収集し、抗ヒトＩＬ－１２捕捉抗体でコーティングした９６ウェルＩｍｍｕｎｏ Ｍａｘｉｓｏｒｐ平底プレートへ結合させた。ビオチン化抗ヒトＩＬ－１２抗体、アビジン－セイヨウワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、および３，３’，５，５’－テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）基質を介して結合を検出した。吸光度の測定は、プレートリーダーを介して４５０ｎｍで回収した。培養上清中のヒトＩＬ－１２の濃度をヒトＩＬ－１２の標準曲線に基づいて計算した。

ｈＶＧ１６１による細胞の感染後のＩＬ－１５の発現
本実施例において、ＩＬ－１５発現のウェスタンブロットおよびＥＬＩＳＡのデータを示す。

図７Ａは、ＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈウイルス感染後のウェスタンブロットの結果を示す。Ｈ４６０腫瘍細胞にＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢまたはＶＧ００１ウイルス（ＭＯＩ＝１）を２４時間感染させた。細胞溶解物を調製し、１２％ＳＤＳ－ＰＡＧＥゲル上で泳動し、ＰＶＤＦ膜へ転写した。膜を抗ヒトＩＬ－１５抗体、次いでＨＲＰ結合抗マウスＩｇＧ二次抗体を用いてブロットし、Ｂｉｏ－Ｒａｄ ＩｍａｇｅＬａｂシステムを用いて画像を検出し解析した。

図７Ｂ～図７Ｃは、ヒトＩＬ－１５の産生がＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈウイルス感染後に上方調節されることを示す。ＬＳ１７４ＴまたはＨ４６０腫瘍細胞にＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢまたはＶＧ００１ウイルス（ＭＯＩ＝１）を４８時間感染させた。感染した細胞の上清を収集し、抗ヒトＩＬ－１５捕捉抗体でコーティングした９６ウェルＩｍｍｕｎｏ Ｍａｘｉｓｏｒｐ平底プレートへ結合させた。結合は、ビオチン化抗ヒトＩＬ－１５抗体、アビジン－セイヨウワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、および３，３’，５，５’－テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）基質を介して検出した。吸光度の測定は、プレートリーダーを介して４５０ｎｍで回収した。培養上清中のヒトＩＬ－１５の濃度は、ヒトＩＬ－１５の標準曲線に基づいて計算した。

実施例６
ｈＶＧ１６１による細胞の感染後のＩｇＧ４の発現
本実施例において、ＩｇＧ４発現のウェスタンブロットおよびＥＬＩＳＡのデータを示す。

図８Ａは、ＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈウイルス感染後のウェスタンブロットの結果を示す。Ｈ４６０腫瘍細胞にＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢまたはＶＧ００１ウイルス（ＭＯＩ＝１）を２４時間感染させた。細胞溶解物を調製し、１２％ＳＤＳ－ＰＡＧＥゲル上で泳動し、ＰＶＤＦ膜へ転写した。膜をＨＲＰ結合抗ヒトＩｇＧ抗体でブロットし、Ｂｉｏ－Ｒａｄ ＩｍａｇｅＬａｂシステムを用いて画像を検出し解析した。

図８Ｂ～図８Ｃは、ヒトＰＤ－Ｌ１ブロッカー（ヒトＦｃドメインへ融合）の産生がＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈウイルス感染後に上方調節されることを示す。ＬＳ１７４ＴまたはＨ４６０腫瘍細胞にＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢまたはＶＧ００１ウイルス（ＭＯＩ＝１）を４８時間感染させた。感染した細胞の上清を収集し、抗ヒトＩｇＧ４捕捉抗体でコーティングした９６ウェルＩｍｍｕｎｏ Ｍａｘｉｓｏｒｐ平底プレートへ結合させた。ビオチン化抗ヒトＩｇＧ４抗体、アビジン－セイヨウワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、および３，３’，５，５’－テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）基質を介して結合を検出した。吸光度の測定は、プレートリーダーを介して４５０ｎｍで回収した。培養上清中のヒトＩｇＧ４の濃度は、ヒトＩｇＧ４標準曲線に基づいて計算した。

ＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドを含むコンストラクト
ＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドは、Ｉｇκ鎖リーダー配列（配列番号５０１）を用いて作製した。２つ以上のブロッキングペプチドが同じコンストラクトの中にあるとき、これらをＧｌｙ－Ｓｅｒの豊富な配列（Ｇｌｙ₄Ｓｅｒ）₃（配列番号５０３）と連結させた。以下のコンストラクトを作製する。

ＴＦ単独：ＭＥＴＤＴＬＬＬＷＶＬＬＬＷＶＰＧＳＴＧＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦ（配列番号５３７）、
ＥＴ＋ＴＦ：
ＭＥＴＤＴＬＬＬＷＶＬＬＬＷＶＰＧＳＴＧＥＹＲＭＳＰＳＮＱＴＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦ（配列番号５３８）、
ＹＴ＋ＴＦ：
ＭＥＴＤＴＬＬＬＷＶＬＬＬＷＶＰＧＳＴＧＹＹＲＭＳＰＳＮＱＴＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦ（配列番号５３９）、
マウスＴＦ：ＭＥＴＤＴＬＬＬＷＶＬＬＬＷＶＰＧＳＴＧＴＲＹＰＳＰＳＰＫＰＥＧＲＦ（配列番号５４０）、
マウスＷＴ＋ＴＦ：
ＭＥＴＤＴＬＬＬＷＶＬＬＬＷＶＰＧＳＴＧＷＮＲＬＳＰＳＮＱＴＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＴＲＹＰＳＰＳＰＫＰＥＧＲＦ（配列番号５４１）。

三重ＴＦ＋ＥＴ：
ＭＥＴＤＴＬＬＬＷＶＬＬＬＷＶＰＧＳＴＧＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＥＹＲＭＳＰＳＮＱＴＥＹＲＭＳＰＳＮＱＴＥＹＲＭＳＰＳＮＱＴ（配列番号５４２）
ＭＥＴＤＴＬＬＬＷＶＬＬＬＷＶＰＧＳＴＧＥＹＲＭＳＰＳＮＱＴＥＹＲＭＳＰＳＮＱＴＥＹＲＭＳＰＳＮＱＴＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦ（配列番号５４３）。

他のコンストラクトは、ＩＬ－２シグナル配列（ＭＹＲＭＱＬＬＳＣＩＡＬＳＬＡＬＶＴＮＳ（配列番号５０２）と、ヒトＩｇＧ４ Ｆｃ領域（ヒンジ領域を有する）（配列番号５４４）またはマウスＩｇＧ１ Ｆｃ領域（ヒンジ領域を有する）（配列番号５４５）とを用いて作製する。コンストラクトは以下である。

ＴＦ単独：
ＭＹＲＭＱＬＬＳＣＩＡＬＳＬＡＬＶＴＮＳＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦＩＳＡＭＶＲＳＰＰＣＰＳＣＰＡＰＥＦＬＧＧＰＳＶＦＬＦＰＰＫＰＫＤＴＬＭＩＳＲＴＰＥＶＴＣＶＶＶＤＶＳＱＥＤＰＥＶＱＦＮＷＹＶＤＧＶＥＶＨＮＡＫＴＫＰＲＥＥＱＦＮＳＴＹＲＶＶＳＶＬＴＶＬＨＱＤＷＬＮＧＫＥＹＫＣＫＶＳＮＫＧＬＰＳＳＩＥＫＴＩＳＫＡＫＧＱＰＲＥＰＱＶＹＴＬＰＰＳＱＥＥＭＴＫＮＱＶＳＬＴＣＬＶＫＧＦＹＰＳＤＩＡＶＥＷＥＳＮＧＱＰＥＮＮＹＫＴＴＰＰＶＬＤＳＤＧＳＦＦＬＹＳＲＬＴＶＤＫＳＲＷＱＥＧＮＶＦＳＣＳＶＭＨＥＡＬＨＮＨＹＴＱＫＳＬＳＬＳＰＧＫ（配列番号５４６）
ＥＴ＋ＴＦ：
ＭＹＲＭＱＬＬＳＣＩＡＬＳＬＡＬＶＴＮＳＥＹＲＭＳＰＳＮＱＴＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦＩＳＡＭＶＲＳＰＰＣＰＳＣＰＡＰＥＦＬＧＧＰＳＶＦＬＦＰＰＫＰＫＤＴＬＭＩＳＲＴＰＥＶＴＣＶＶＶＤＶＳＱＥＤＰＥＶＱＦＮＷＹＶＤＧＶＥＶＨＮＡＫＴＫＰＲＥＥＱＦＮＳＴＹＲＶＶＳＶＬＴＶＬＨＱＤＷＬＮＧＫＥＹＫＣＫＶＳＮＫＧＬＰＳＳＩＥＫＴＩＳＫＡＫＧＱＰＲＥＰＱＶＹＴＬＰＰＳＱＥＥＭＴＫＮＱＶＳＬＴＣＬＶＫＧＦＹＰＳＤＩＡＶＥＷＥＳＮＧＱＰＥＮＮＹＫＴＴＰＰＶＬＤＳＤＧＳＦＦＬＹＳＲＬＴＶＤＫＳＲＷＱＥＧＮＶＦＳＣＳＶＭＨＥＡＬＨＮＨＹＴＱＫＳＬＳＬＳＰＧＫ（配列番号５４７）
ＹＴ＋ＴＦ：
ＭＹＲＭＱＬＬＳＣＩＡＬＳＬＡＬＶＴＮＳＹＹＲＭＳＰＳＮＱＴＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＴＡＨＰＳＰＳＰＲＳＡＧＱＦＩＳＡＭＶＲＳＰＰＣＰＳＣＰＡＰＥＦＬＧＧＰＳＶＦＬＦＰＰＫＰＫＤＴＬＭＩＳＲＴＰＥＶＴＣＶＶＶＤＶＳＱＥＤＰＥＶＱＦＮＷＹＶＤＧＶＥＶＨＮＡＫＴＫＰＲＥＥＱＦＮＳＴＹＲＶＶＳＶＬＴＶＬＨＱＤＷＬＮＧＫＥＹＫＣＫＶＳＮＫＧＬＰＳＳＩＥＫＴＩＳＫＡＫＧＱＰＲＥＰＱＶＹＴＬＰＰＳＱＥＥＭＴＫＮＱＶＳＬＴＣＬＶＫＧＦＹＰＳＤＩＡＶＥＷＥＳＮＧＱＰＥＮＮＹＫＴＴＰＰＶＬＤＳＤＧＳＦＦＬＹＳＲＬＴＶＤＫＳＲＷＱＥＧＮＶＦＳＣＳＶＭＨＥＡＬＨＮＨＹＴＱＫＳＬＳＬＳＰＧＫ（配列番号５４８）
マウスＴＦ：
ＭＹＲＭＱＬＬＳＣＩＡＬＳＬＡＬＶＴＮＳＴＲＹＰＳＰＳＰＫＰＥＧＲＦＩＳＡＭＶＲＳＧＣＫＰＣＩＣＴＶＰＥＶＳＳＶＦＩＦＰＰＫＰＫＤＶＬＴＩＴＬＴＰＫＶＴＣＶＶＶＤＩＳＫＤＤＰＥＶＱＦＳＷＦＶＤＤＶＥＶＨＴＡＱＴＱＰＲＥＥＱＦＮＳＴＦＲＳＶＳＥＬＰＩＭＨＱＤＷＬＮＧＫＥＦＫＣＲＶＮＳＡＡＦＰＡＰＩＥＫＴＩＳＫＴＫＧＲＰＫＡＰＱＶＹＴＩＰＰＰＫＥＱＭＡＫＤＫＶＳＬＴＣＭＩＴＤＦＦＰＥＤＩＴＶＥＷＱＷＮＧＱＰＡＥＮＹＫＮＴＱＰＩＭＤＴＤＧＳＹＦＶＹＳＫＬＮＶＱＫＳＮＷＥＡＧＮＴＦＴＣＳＶＬＨＥＧＬＨＮＨＨＴＥＫＳＬＳＨＳＰＧＫ（配列番号５４９）
マウスＷＴ＋ＴＦ：
ＭＹＲＭＱＬＬＳＣＩＡＬＳＬＡＬＶＴＮＳＷＮＲＬＳＰＳＮＱＴＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＴＲＹＰＳＰＳＰＫＰＥＧＲＦＩＳＡＭＶＲＳＧＣＫＰＣＩＣＴＶＰＥＶＳＳＶＦＩＦＰＰＫＰＫＤＶＬＴＩＴＬＴＰＫＶＴＣＶＶＶＤＩＳＫＤＤＰＥＶＱＦＳＷＦＶＤＤＶＥＶＨＴＡＱＴＱＰＲＥＥＱＦＮＳＴＦＲＳＶＳＥＬＰＩＭＨＱＤＷＬＮＧＫＥＦＫＣＲＶＮＳＡＡＦＰＡＰＩＥＫＴＩＳＫＴＫＧＲＰＫＡＰＱＶＹＴＩＰＰＰＫＥＱＭＡＫＤＫＶＳＬＴＣＭＩＴＤＦＦＰＥＤＩＴＶＥＷＱＷＮＧＱＰＡＥＮＹＫＮＴＱＰＩＭＤＴＤＧＳＹＦＶＹＳＫＬＮＶＱＫＳＮＷＥＡＧＮＴＦＴＣＳＶＬＨＥＧＬＨＮＨＨＴＥＫＳＬＳＨＳＰＧＫ（配列番号５５０）。

二方向ＣＭＶプロモーターの制御下にあるＩＬ－１５とＩＬ－１５Ｒαとを含むコンストラクト
本実施例において、種々のコンストラクトを作製して、二方向ＣＭＶプロモーターの制御下にあるＩＬ－１５とＩＬ－１５Ｒαとを共発現させる。

コンストラクト１において、二方向ＣＭＶプロモーターは、ＩＬ－１５ＲαおよびＩＬ－１５のＳｕｓｈｉドメインの発現を駆動する（図９、配列番号５５７）。

コンストラクト２において、二方向ＣＭＶプロモーターは、ＩＬ－１５およびＩＬ－１５Ｒαバリアント４の発現を駆動する（図１０、配列番号５５８）。

コンストラクト３において、二方向ＣＭＶプロモーターは、ＩＬ－１５－Ｋ５およびＩＬ－１５Ｒα Ｓｕｓｈｉドメイン－Ｅ５の発現を駆動する。（図１１、配列番号５５９）。

コンストラクト４において、二方向ＣＭＶプロモーターは、ＩＬ－１５－Ｋ５およびＩＬ－１５Ｒαバリアント４－Ｅ５の発現を駆動する（図１２、配列番号５６０）。

ＥＦ１αプロモーターの制御下にあるＩＬ－１５遺伝子とＩＬ－１５Ｒα遺伝子とを含むコンストラクト
本実施例において、種々のコンストラクトを作製して、ＥＦ１αプロモーターの制御下にある多重シストロン性転写産物においてＩＬ－１５とＩＬ－１５Ｒαとを発現させる（配列番号５５１）。ＩＬ－１５およびＩＬ－１５Ｒαは、例示的なＩＲＥＳ配列によって連結されている（配列番号５５２）。

コンストラクト１において、ＥＦ１αプロモーターは、ＩＬ－１５－ＩＲＥＳ－ＩＬ－１５Ｒα Ｓｕｓｈｉドメインの発現を制御する。（図１３、配列番号５６１。）

コンストラクト２において、ＥＦ１αプロモーターは、ＩＬ－１５－ＩＲＥＳ－ＩＬ－１５Ｒαバリアント４の発現を制御する（図１４、配列番号５６２。）

コンストラクト３において、ＥＦ１αプロモーターは、ＩＬ－１５Ｋ５－ＩＲＥＳ－ＩＬ－１５Ｒα ＳｕｓｈｉドメインＥ５の発現を制御する。（図１５、配列番号５６３。）

コンストラクト４において、ＥＦ１αプロモーターは、ＩＬ－１５Ｋ５－ＩＲＥＳ－ＩＬ－１５Ｒαバリアント４Ｅ５の発現を制御する。（図１６、配列番号５６４。）

ＣＭＶプロモーターの制御下にあるＩＬ－１２遺伝子と、ＩＬ－１５遺伝子と、ＩＬ－１５Ｒα遺伝子と、を含むコンストラクト
本実施例において、種々のコンストラクトを作製して、ＣＭＶプロモーターの制御下にある多重シストロン性転写産物においてＩＬ－１２、ＩＬ－１５およびＩＬ－１５Ｒαを発現させる。ＩＬ－１２、ＩＬ－１５およびＩＬ－１５Ｒαは、例示的なｐ２Ａ配列によって連結されている（配列番号５５４）。

コンストラクト１において、ＣＭＶプロモーター（配列番号５５３）は、ＩＬ－１２－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｒα Ｓｕｓｈｉドメインの発現を制御する。（図１７、配列番号５６５、５６９。）

コンストラクト２において、ＣＭＶプロモーターは、ＩＬ－１２－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｒαバリアント１の発現を制御する（図１８０、配列番号５６６、５７０。）

コンストラクト３において、ＣＭＶプロモーターは、ＩＬ－１２－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｋ５－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｒα ＳｕｓｈｉドメインＥ５の発現を制御する。（図１９、配列番号５６７、５７１。）

コンストラクト４において、ＣＭＶプロモーターは、ＩＬ－１２－ｐ２Ａ－ＩＬ－１５Ｋ５－ＩＲＥＳ－ＩＬ－１５Ｒαバリアント１Ｅ５の発現を制御する。（図２０、配列番号５６８、５７２。）

ＵＬ３とＵＬ４との間に挿入されたＰＤ－Ｌ１ブロッカーを含むコンストラクト
本実施例において、コンストラクトを作製して、塩基８２９と塩基８３０との間のＵＬ３とＵＬ４との間の遺伝子間領域内にＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドを発現させる。配列番号５５６においては、塩基１～６７５：ＵＬ３コード配列、塩基６７６～８２９：ＵＬ３とＵＬ４との間にありＰＤ－Ｌ１ブロッカーカセットの上流にある領域、塩基８３０～８３３：ＵＬ３とＵＬ４との間にあり、ＰＤ－Ｌ１ブロッカーカセットの下流にある領域、塩基８３４～１４３３：ＵＬ４コード配列である。

ＰＤ－１に対するヒトＰＤ－Ｌ１のブロッキングペプチドによる阻害
組換えヒトＰＤ－Ｌ１ Ｆｃタンパク質を９６ウェルの平底プレートの底部へ４℃で一晩コーティングした。一晩のプレートコーティングの後、異なるＰＤ－Ｌ１ブロッカーをプレートの各ウェルへと添加し、室温で２時間インキュベートした後、組換えヒトＰＤ－１ Ｆｃタンパク質を添加した。ビオチン化抗ヒトＩｇＧ抗体およびストレプトアビジン－ＨＲＰをその後核ウェルへと添加し、ＰＤ－Ｌ１に対するヒトＰＤ－１の結合を、ＴＭＢ基質を添加することによって検出した。発色は、マイクロプレートリーダーによって４５０ｎｍの波長で測定した。阻害百分率は、ペプチド合成していない対照と比較することによって計算した。図２１は、２つの異なる濃度（３および１０μＭ）のペプチドＥＴ、ＥＴ＋ＴＦ、ＹＴ、ＹＴ＋ＴＦ、ＴＷ、ＴＷ＋ＴＦ、ＷＴ、ＷＴ＋ＴＦおよびＴＦによる阻害百分率を示す。１０μΜで、阻害は約２２％～約４８％の範囲であった。

ブロッキングペプチドによるＰＤ－Ｌ１結合のブロッキングは腫瘍細胞に対する細胞毒性を高める
ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を抗ＣＤ３抗体プラスヒトＩＬ－２で２４時間刺激した後、異なる合成されたＰＤ－Ｌ１ブロッカーおよびカルセイン－ＡＭ標識標的細胞とともに４時間インキュベートした。細胞培養上清を４時間のインキュベーション後に収集し、放出されたカルセイン－ＡＭ蛍光をマイクロプレートリーダーによって測定した。細胞毒性百分率を次式に基づいて計算した：［（試料の読み取り－最小放出）／（最大放出－最小放出）］×１００。

図２２Ａ～図２２Ｄは、４つの異なる腫瘍細胞、すなわちＨ４６０、Ｕ８７、ＬＳ１４７ＴおよびＭＤＡ－ＭＢ－２３１の細胞についての結果を示す。細胞毒性の上昇は、いくつかの細胞に関してＴＦを除くペプチド全部について統計的に有意であった。

サイトカイン産生に及ぼすＩＬ－１２およびＩＬ－１５の相乗効果
ヒトＰＢＭＣを培地対照、ＩＬ－１２単独、ＩＬ－１５ＲＡ単独、またはＩＬ－１２、ＩＬ－１５、およびＩＬ－１５Ｒα１の組み合わせプラス抗ＩＬ－１２または抗ＩＬ－１５中和抗体とともに４８時間インキュベートした。細胞培養上清を収集して、ヒトＩＦＮγおよびＴＮＦαの産生をＥＬＩＳＡによって測定した。

図２３Ａおよび図２３Ｂは、サイトカイン産生の結果を示す。ＩＬ－１２およびＩＬ－１５Ｒα１の組み合わせは、サイトカインヒトＩＦＮγおよびＴＮＦαの統計的に有意な増加を生じた。産生は、抗ＩＬ－１２抗体を用いて阻害された。

腫瘍細胞に対する細胞毒性に及ぼすＩＬ－１２およびＩＬ－１５の相乗効果
ヒトＰＢＭＣを腫瘍標的細胞および培地対照、ＩＬ－１２単独、ＩＬ－１５ＲＡ単独、またはＩＬ－１２、ＩＬ－１５、およびＩＬ－１５ＲＡ１の組み合わせプラス抗ＩＬ－１２または抗ＩＬ－１５中和抗体とともに２４時間共インキュベートした。細胞培養上清を収集して、ＬＤＨアッセイにより細胞毒性を測定した。細胞毒性百分率は、次式に基づいて計算した：［（試料の読み取り－最小放出）／（最大放出－最小放出）］×１００。

図２４Ａおよび図２４Ｂは、ＩＬ－１２およびＩＬ－１５がまとまって、統計的に有意な様式で細胞毒性を上昇させたことを示す。ＭＤＡ－ＭＢ－２３１細胞株に関して、抗ＩＬ－１２抗体または抗ＩＬ－１５抗体の添加は、この効果を有意に低下させた。

ウイルスＶＧ１６１－ＰＬＢｈおよびＶＧ１６１－１５ｈのインビトロ有効性
本実施例において、３×１０⁴個のＨ４６０またはＬＳ１７４Ｔ腫瘍細胞を９６ウェルプレートの各ウェルへ播種し、３７℃で一晩培養した。翌日、播種した細胞にＶＧ００１骨格、ＶＧ１６１－ＰＬＢｈ、またはＶＧ１６１－１５ｈウイルス（ＭＯＩ＝１）を２４時間感染させ、ヒトＩＬ－１２、ヒトＩＬ－１５、およびヒトＩｇＧ４の産生を評価した（図２５Ａ～図２５Ｃ）。３×１０⁵個のヒトＰＢＭＣをその後培養物へ２４時間添加してＬＤＨアッセイによって細胞毒性を評価し（図２５Ｄ）、または４８時間添加してＥＬＩＳＡによってヒトＩＦＮｇ産生を評価した（図２５Ｅ）。細胞毒性アッセイについて、細胞毒性百分率は、次式に基づいて計算した：［（実際の読み取り－最小放出）／（最大放出－最小放出）］×１００％。培地のみとともにインキュベートした腫瘍細胞から収集した上清を最小放出として使用し、溶解緩衝液とともにインキュベートした上清を最大放出として使用した。

種々のコンストラクトのインビトロ有効性
図２６Ａ～図２６Ｄは、種々のコンストラクトについてのインビトロアッセイの結果を示す。

図２６Ａ～図２６Ｂは、ＩＬ－１２、ＩＬ－１５、およびＰＤ－Ｌ１ブロッカーを保有するＩＬ－ＴＦ－Ｆｃプラスミドを用いた細胞トランスフェクションの結果を示す。図２６Ａ～図２６Ｂにおいて、異なる腫瘍細胞株にＩＬ－ＴＦ－ＦｃプラスミドＤＮＡを２４時間トランスフェクトし、ヒトＰＢＭＣをその後培養物へ添加した。細胞上清をＬＤＨアッセイによる細胞毒性の定量化のために２４時間後に（図２６Ａ）、ＥＬＩＳＡアッセイによるヒトＩＦＮｇ産生の検出のために４８時間後に収集した（図２６Ｂ）。

図２６Ｃ～図２６Ｄは、ｈＶＧ１６１を含む種々の変異ウイルスを用いた細胞感染の結果を示す。ウイルスでコードされたＩＬ１２、ＩＬ１５、およびＰＤ－Ｌ１ブロッカーは、ＩＦＮｇ産生および細胞毒性を相乗的に高める。Ｈ４６０腫瘍細胞を９６ウェルプレートの各ウェルに播種し、３７℃で一晩培養した。翌日、播種した細胞に示されたウイルスをＭＯＩ＝１で２４時間感染させた。ヒトＰＢＭＣをその後培養物へ添加し、２４時間共培養して細胞毒性をＬＤＨによって評価し（図２６Ｃ）または４８時間共培養してＥＬＩＳＡによるヒトＩＦＮｇ産生について評価した（図２６Ｄ）。細胞毒性アッセイについて、細胞毒性の百分率は次式に基づいて計算した：［（実際の読み取り－最小放出）／（最大放出－最小放出）］×１００％。培地のみとともにインキュベートした腫瘍細胞から収集した上清を最小放出として使用し、溶解緩衝液とともにインキュベートした腫瘍細胞から収集した上清を最大放出として使用した。

図２７Ａ～図２７Ｅにおいて、９個の異なるヒト腫瘍細胞株（プラスベロ細胞）のパネルにＶＧ１６１－１２１２ＰＬＢｈ（ＶＧ１６１ｈ）ウイルスおよびＨＳＶ－３４５ウイルスをＭＯＩ０、０．０４、０．２、１、および５で感染させた。細胞生存率は、感染４８時間後のＭＴＴアッセイを用いて定量した。

図２８Ａ～図２８Ｊは、種々のコンストラクトについてのインビトロアッセイの結果を示す。図２８Ａ～図２８Ｅは、マウス腫瘍細胞株およびベロ細胞株に関するｍＶＧ１６１およびＨＳＶ－３４５についての細胞生存率アッセイの結果を示し、図２８Ｆ～図２８Ｊは、ＣＴ２６マウス腫瘍細胞のｍＶＧ１６１またはＶＧ００１の感染後の導入遺伝子発現の特徴づけを示す。

図２８Ａ～図２８Ｅにおいて、６つの異なるマウス腫瘍細胞株（プラスベロ細胞）のパネルにＶＧ１６１ｍウイルスおよびＨＳＶ－３４５ウイルスをＭＯＩ０、０．０４、０．２、１、および５で感染させた。細胞生存率は、感染４８時間後にＭＴＴアッセイを用いて定量した。

図２８Ｆ～図２８Ｊにおいて、３×１０⁴個のＣＴ２６腫瘍細胞を９６ウェルプレートの各ウェルへ播種し、３７℃で一晩培養した。翌日、播種した細胞にＶＧ００１骨格ウイルスまたはＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｍウイルス（ＭＯＩ＝１）を２４時間感染させ、マウスＩＬ－１２、ヒトＩＬ－１５、およびマウスＩｇＧの産生を評価した。Ｂａｌｂ／ｃマウス由来の３×１０⁵個の脾細胞をその後、培養物へと添加し、２４時間共インキュベートしてＬＤＨアッセイによって細胞毒性を評価し、または４８時間共インキュベートしてＥＬＩＳＡによってマウスＩＦＮｇ産生を評価した。細胞毒性アッセイについては、細胞毒性の百分率は、次式に基づいて計算した：［（実際の読み取り－最小放出）／（最大放出－最小放出）］×１００％。培地のみとともにインキュベートした腫瘍細胞から収集した上清を最小放出として使用し、溶解緩衝液とともにインキュベートした腫瘍細胞から収集した上清を最大放出として使用した。

図２９Ａ～図２９Ｅにおいて、３×１０⁴個のＨ４６０、ＬＳ１７４Ｔ、またはＵＭＵＣ３腫瘍細胞を９６ウェルプレートの各ウェルへ播種し、３７℃で一晩培養した。翌日、播種した細胞にＶＧ００１骨格ウイルスおよびＶＧ１６１－１２１５ｈウイルス（ＭＯＩ＝１）を２４時間感染させ、ヒトＩＬ－１２、ヒトＩＬ－１５、およびヒトＩｇＧ４の産生を評価した（１８Ｒ）。３×１０⁵個のヒトＰＢＭＣをその後培養物へ添加し、２４時間共インキュベートしてＬＤＨアッセイによって細胞毒性を評価し（１８Ｓ）、または４８時間共インキュベートしてＥＬＩＳＡによってヒトＩＦＮγ産生を評価した（１８Ｔ）。細胞毒性アッセイについて、細胞毒性の百分率は、次式に基づいて計算した：［（実際の読み取り－最小放出）／（最大放出－最小放出）］×１００％。培地のみとともにインキュベートした腫瘍細胞から収集した上清を最小放出として使用し、溶解緩衝液とともにインキュベートした腫瘍細胞から収集した上清を最大放出として使用した。

図３０Ａ～図３０Ｇにおいて、ＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈ（ｈＶＧ１６１）ウイルスの抗腫瘍効果を、Ｕ８７、ＭＣＦ７、Ｈ４６０、ＬＮＣａＰ、ＬＳ１７４Ｔ、ＭＤＡ、およびＰＣ３を含む種類ヒト癌細胞において、感染７２時間後に０～５の範囲のＭＯＩで評価した。細胞生存百分率は、ＭＴＴアッセイによって定量した。ＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈウイルスは、検査したヒト腫瘍細胞株すべてにおいて頑強な細胞殺滅能を呈する。

ＶＧ１６１ウイルスコンストラクトのインビボでの有効性
図３１Ａ～図３１Ｂにおいて、Ａ２０マウスＢ細胞リンパ腫腫瘍を有するＢＡＬＢ／ｃマウスに合計１×１０＾７ＰＦＵ／個体のＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｍ（ｍＶＧ１６１）ウイルスもしくはＶＧ００１骨格ウイルスのいずれかを、またはＰＢＳ（ビヒクル対照）を腫瘍内に５回注射した。腫瘍の大きさの測定は、注射後の示される時刻に実施した。ＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｍで処置したマウスは、ＰＢＳで処置したマウスと比較して、腫瘍体積の有意な（Ｐ＜０．０５）減少を呈した。

図３１Ｃ～図３１Ｄにおいて、ＣＴ２６マウス結腸癌腫瘍を有するＢＡＬＢ／ｃマウスに、合計５×１０＾６ＰＦＵ／個体のＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｍ（ｍＶＧ１６１）ウイルスもしくはＶＧ００１骨格ウイルスのいずれか、またはＰＢＳ（ビヒクル対照）を腫瘍内に５回注射した。腫瘍の大きさの測定は、注射後の示される時刻に実施した。ＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｍを用いて処置したマウスは、ＰＢＳで処置したマウスと比較して、腫瘍体積の有意な（Ｐ＜０．０５）減少を呈した。

図３１Ｅ～図３１Ｇにおいて、マウスにおける異種移植片ヒト前立腺腫瘍のｏＨＳＶ処置を評価した。１２匹のマウスの右下脇腹にＬＮＣａＰヒト前立腺腫瘍細胞を植え込んだ。植え込み３５日後に、６匹の無作為に選択した群に合計５×１０＾７ＰＦＵ／個体のＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈ（ｈＶＧ１６１）ウイルスを腫瘍内に２回注射したのに対し、残りの６匹は、ビヒクル対照として機能し、等容積のＰＢＳを２回注射した。腫瘍の大きさの測定は、２つの異なる方法を用いて実施した。カリパー測定は、ウイルスまたはＰＢＳの注射の時点の腫瘍体積と比較して、与えられた時点での腫瘍体積の倍数変化として表される（図３１Ｅ）。ＶＧ１６１－１２１５ＰＬＢｈウイルスを用いて処置した腫瘍保持マウスは、本研究の経過中に頑強な腫瘍の退縮を呈し、１５日間の終了時には腫瘍の大きさが５０％超減少したのに対し、ビヒクルで処置したマウスは、同じ時間幅の間に腫瘍体積がおよそ３倍増加したことを示した。動物全体の生体発光撮像システム（ＩＶＩＳ Ｉｍａｇｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍ、Ｘｅｎｏｇｅｎ社、カリフォルニア州マウンテンビュー市）を用いて腫瘍成長も監視した。シグナル強度は、１秒当たりの検出される光子全部の合計として定量した（図３１Ｆ）。ＩＶＩＳシステムを用いた腫瘍成長の定量的撮像は、ＰＢＳ処置した対照と比較してｏＨＳＶ処置した動物における腫瘍の大きさのさらにより劇的な減少を示し、蛍光は、腫瘍植え込み５０日後までに検出不可能なレベルにまで低下した（図３２Ｇ、左側が２匹のビヒクル対照で右側が２匹のｏＨＳＶ処置マウス）。

細胞株におけるｈＶＧ１６１の複製
図３２Ａ～図３２Ｃ、図３３Ａ～図３３Ｄおよび図３４Ａ～図３４Ｅにおける成長曲線および細胞毒性データは、ｈＶＧ１６１ウイルスが、親ＨＳＶ－３４５ウイルスと同様に複製することを示す。これらのデータは、ウイルスがマウス腫瘍細胞株においてヒト細胞株と比較して同様には成長しないことも示したが、ＨＳＶ－１は、マウス細胞においてほとんど成長しないことが既知である。

ウイルス修飾の評価
ヒトＰＢＭＣを培地単独、組換えＩＬ－１２単独、組換えＩＬ－１５単独、またはＩＬ－１２プラス異なる形態のＩＬ－１５／ＩＬ－１５ＲＡ１複合体で、抗ＩＬ－１２（６ｍｇ／ｍｌ）または抗ＩＬ－１５（０．５ｍｇ／ｍｌ）中和抗体の有無の下で４８時間刺激した。培養上清をその後、図３５Ａおよび図３５Ｂに示されるＥＬＩＳＡアッセイを用いたヒトＩＦＮｇおよびヒトＴＮＦαの産生について収集した。

腫瘍細胞に対する細胞毒性を評価するために、カルセイン－ＡＭ標識腫瘍細胞を、刺激したヒトＰＢＭＣとともに２４時間共インキュベートした。放出した蛍光の測定のために、上清を収集した。培地のみとともにインキュベートしたカルセイン標識腫瘍細胞から収集した上清を最小放出として使用し、溶解緩衝液とともにインキュベートしたカルセイン標識腫瘍細胞から収集した上清を最大放出として使用した。細胞毒性の百分率は、式：［（実際の読み取り－最小放出）／（最大放出－最小放出）］×１００％に基づいて計算した。Ｕ８７腫瘍細胞についての細胞毒性結果は、図３５Ｃに示しており、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１腫瘍細胞は、図３５Ｄとして示す。

インビトロ有効性データ
ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を培地単独、組換えＩＬ－１２単独、組換えＩＬ－１５単独、またはＩＬ－１２プラスＩＬ－１５／ＩＬ－１５ＲＡ１複合体を用いて、抗ＩＬ－１２（６ｍｇ／ｍｌ）または抗ＩＬ－１５（０．５ｍｇ／ｍｌ）の有無の下で４８時間刺激した。培養上清をその後、図３６Ａおよび図３６Ｂに示すようなＥＬＩＳＡアッセイを用いたヒトＩＦＮｇおよびヒトＴＮＦａ産生のために収集した。

腫瘍細胞に対する細胞毒性を評価するために、１×１０⁴個のカルセイン－ＡＭ標識腫瘍細胞を１×１０⁵個の刺激したヒトＰＢＭＣとともに２４時間共インキュベートした。上清を放出された蛍光の測定のために収集した。培地のみとともにインキュベートしたカルセイン標識腫瘍細胞から収集した上清を最小放出として使用し、溶解緩衝液とともにインキュベートしたカルセイン標識腫瘍細胞から収集した上清を最大放出として使用した。細胞毒性の百分率は、式：［（実際の読み取り－最小放出）／（最大放出－最小放出）］×１００％に基づいて計算した。Ｕ８７腫瘍細胞についての細胞毒性結果は図３６Ｃとして示し、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１腫瘍細胞についての結果は図３６Ｄとして示す。

ＶＧ１６１ｈに感染した腫瘍細胞は、ヒトＩＬ－１２、ヒトＩＬ－１５／ＩＬ１５Ｒａ、およびヒトＩｇＧ４を産生する。

簡潔には、ＬＮＣａＰ細胞をヌードマウスに植え込み、ビヒクル、ＩＣＰ２７－、またはＶＧ１６１ｈウイルスの注射を受けた。血清および腫瘍の試料を注射１２０時間後に収集し、ヒトＩＬ－１２、ヒトＩＬ－１５／ＩＬ－１５Ｒα、およびヒトＩｇＧ４の産生をＥＬＩＳＡによって評価した。結果は図３７Ａに示す。

Ｆａｄｕ細胞をヌードマウスに植え込み、ビヒクル、ＶＧ１６０、またはＶＧ１６１ｈウイルスの注射を受けた。腫瘍試料を注射２４時間後に収集し、ヒトＩＬ－１２、ヒトＩＬ－１５／ＩＬ－１５Ｒａ、およびヒトＩｇＧ４の産生をＥＬＩＳＡによって評価した。結果は図３７Ｂに示す。

免疫応答におけるＶＧ１６１ｍの効果
ＣＴ２６結腸癌細胞をｂａｌｂ／ｃマウスに植え込み、ＰＢＳ、ＶＧ１６０、またはＶＧ１６１ｍウイルスの注射を受けた。腫瘍試料を注射２４時間後に収集し、ＣＤ８＋Ｔ細胞、ＣＤ４＋Ｔ細胞、またはＮＫ細胞の百分率をフローサイトメトリーによって評価した。結果は、図３８Ａ～図３８Ｃに示す。

以下は、本開示のさらなる例示的な実施形態である。
１）ＩＬ１２、ＩＬ１５および／またはＩＬ受容体１５アルファサブユニットのうちの１つ以上を発現するＨＳＶベクター。一実施形態内で、ＨＳＶベクターは、ＩＬ１２、ＩＬ１５およびＩＬ受容体１５アルファサブユニットを発現する発現カセットを含む。種々の実施形態内で、発現するＩＬ１２、ＩＬ１５およびＩＬ１５受容体アルファサブユニット配列は、哺乳類起源（例えば、マウス起源またはヒト起源）である。好ましい実施形態内で、発現カセットは、マウスまたはヒトＩＬ１２、マウスまたはヒトＩＬ１５、およびマウスまたはヒトＩＬ１５受容体アルファサブユニットを発現する。さらに他の実施形態内で、発現カセットは、マウスまたはヒトＩＬ１２、ｈＩＬ１５ならびにマウスおよびｈ１５受容体アルファサブユニットのいずれかを発現する。

２）自己開裂性２Ａペプチドをコードする核酸配列が、ＩＬ１２、ＩＬ１５、およびＩＬ１５受容体アルファサブユニットについてのコード配列の間でインフレームに位置する、実施形態１のＨＳＶベクター。好ましい実施形態内で、ＩＬ１２はマウスまたはヒト配列であり、ＩＬ１５はヒト配列であり、ＩＬ１５受容体アルファサブユニットはヒト配列である。

３）核酸配列が、ＶＫＱＴＬＮＦＤＬＬＫＬＡＧＤＶＥＳＮＰＧＰ、ＱＣＴＮＹＡＬＬＫＬＡＧＤＶＥＳＮＰＧＰ、ＡＴＮＦ－ＳＬＬＫＱＡＧＤＶＥＥＮＰＧＰ、ＨＹＡＧＹＦＡＤＬＬＩＨＤＩＥＴＮＰＧＰ、ＧＩＦＮ－ＡＨＹＡＧＹＦＡＤＬＬＩＨＤＩＥＴＮＰＧＰ、ＫＡＶＲＧＹＨＡＤＹＹＫＱＲＬＩＨＤＶＥＭＮＰＧＰ、ＧＡＴＮＦ－ＳＬＬＫＬＡＧＤＶＥＬＮＰＧＰ、ＥＧＲＧＳＬＬＴＣＧＤＶＥＥＮＰＧＰ、ＡＡＲＱＭＬＬＬＬＳＧＤＶＥＴＮＰＧＰ、ＦＬＲＫＲＴＱＬＬＭＳＧＤＶＥＳＮＰＧＰ、ＧＳＷＴＤＩＬＬＬＬＳＧＤＶＥＴＮＰＧＰ、ＴＲＡＥＵＥＤＥＬＩＲＡＧＩＥＳＮＰＧＰ、ＡＫＦＱＩＤＫＩＬＩＳＧＤＶＥＬＮＰＧＰ、ＳＫＦＱＩＤＫＩＬＩＳＧＤＩＥＬＮＰＧＰ、ＳＳＩＩＲＴＫＭＬＶＳＧＤＶＥＥＮＰＧＰおよびＣＤＡＱＲＱＫＬＬＬＳＧＤＩＥＱＮＰＧＰからなる群より選択される自己開裂性２Ａペプチドをコードする、実施形態２のＨＳＶベクター

４）１つ以上のＩＲＥＳが、ＩＬ１２、ＩＬ１５、およびＩＬ１５受容体アルファサブユニットについてのコード配列の間に位置する、実施形態１～３のいずれか１つのＨＳＶベクター。好ましい実施形態内で、ＩＬ１２はマウスまたはヒト配列であり、ＩＬ１５はヒト配列であり、ＩＬ１５受容体アルファサブユニットはヒト配列である。

５）ＩＬ１５およびＩＬ１５受容体アルファサブユニットが、ＩＲＥＳ配列を用いて共発現する、実施形態１～４のいずれか１つのＨＳＶベクター。好ましい実施形態内で、ＩＬ１２はマウスまたはヒト配列であり、ＩＬ１５はヒト配列であり、ＩＬ１５受容体アルファサブユニットはヒト配列である。

６）ＩＬ１５およびＩＬ１５受容体アルファサブユニットが二方向プロモーターによって発現する、実施形態１～５のいずれか１つのＨＳＶベクター。好ましい実施形態内で、ＩＬ１２はマウスまたはヒト配列であり、ＩＬ１５はヒト配列であり、ＩＬ１５受容体アルファサブユニットはヒト配列である。

７）二方向プロモーターが二方向ＣＭＶである、実施形態６のＨＳＶベクター。

８）ＩＬ１５およびＩＬ１５受容体アルファサブユニットのそれぞれに、Ｌｙｓ５またはＧｌｕ５をコードする核酸配列が後続する、実施形態１～７のいずれか１つのＨＳＶベクター。好ましい実施形態内で、ＩＬ１２はマウスまたはヒト配列であり、ＩＬ１５はヒト配列であり、ＩＬ１５受容体アルファサブユニットはヒト配列である。

９）ｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットが、バリアント１、バリアント２、バリアント３およびバリアント４からなる群より選択される、実施形態１～８のいずれか１つのＨＳＶベクター。

１０）１つ以上のＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドについての発現カセットをさらに含み、または当該発現カセットが、１つ以上のＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドを発現する、実施形態１～９のいずれか１つのＨＳＶベクター。

１１）複数のＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチド間のペプチドリンカーをコードする配列をさらに含む、実施形態１～１０のいずれか１つのＨＳＶベクター。

１２）複数のＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチド間に１つ以上のＩＲＥＳ配列をさらに含む、実施形態１～１１のいずれか１つのＨＳＶベクター。

１３）ＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドの３’末端へ連結されたＦｃドメインをコードする配列をさらに含む、実施形態１～１２のいずれか１つのＨＳＶベクター。

１４）発現カセットが、ＨＳＶゲノムの内部反復領域または末端反復領域のいずれかに挿入される、実施形態１～１３のいずれか１つのＨＳＶベクター。

１５）ＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドをコードする配列が、例えば、ＵＬ３ウイルス遺伝子とＵＬ４ウイルス遺伝子、ＵＬ５０遺伝子とＵＬ５１遺伝子、および／またはＵＳ１とＵＳ２との間などのウイルス遺伝子間に挿入される、実施形態１０のＨＳＶベクター。

１６）ＩＣＰ４またはＩＣＰ２７調節領域におけるＮＦｋＢおよびＯＣＴ４／ＳＯＸ２増強要素をさらに含む、実施形態１～１５のいずれか１つのＨＳＶベクター。

１７）ＩＣＰ３４．５遺伝子が欠失している、実施形態１～１６のいずれか１つのＨＳＶベクター。

１８）発現カセットが、少なくとも１つの二方向ＣＭＶプロモーターを含む、実施形態１～１７のいずれか１つのＨＳＶベクター。

１９）発現カセットが、少なくとも１つの細胞プロモーターを含む、実施形態１～１８のいずれか１つのＨＳＶベクター。

２０）ＩＬ１２／ＩＬ１５／ＩＬ１５受容体アルファサブユニットについての発現カセットが、元のウイルス配列がカセットによって置き換えられた内部反復領域または末端反復領域のいずれかへ挿入される、実施形態１～１９のいずれか１つのＨＳＶベクター。

２１）ＨＳＶがＨＳＶ－１またはＨＳＶ－２のいずれかである、実施形態１～２０のいずれかのＨＳＶベクター。

２２）ＩＣＰ３４．５遺伝子が、腫瘍細胞において過少発現するｍｉＲＮＡの標的配列を含有する３’ＵＴＲによって調節される、実施形態１～２１のいずれか１つのＨＳＶベクター。

２３）実施形態１～２２のいずれか１つによるＨＳＶベクターと、医薬として許容され得る担体と、を含む、医薬組成物。

２４）実施形態１～２２のいずれか１つによるＨＳＶベクター、または実施形態２３による医薬組成物を患者へ投与することを含む、癌を治療する方法。

２５）当該癌が、癌腫、白血病、リンパ腫、骨髄腫および肉腫からなる群より選択される、実施形態２４による方法。

本明細書で参照または言及される特許、公開物、科学文献、ウェブサイト、ならびに他の文書および材料はすべて、本発明の属する分野の当業者の技術レベルを示しており、それぞれのこのような参照される文書ならびに材料は、その全体がここに参照によって組み込まれたかまたはその全体が本明細書で明らかとなったかのような場合と同じ程度まで、参照により本明細書により組み込まれる。発明者は、いかなるこのような特許、公開物、科学文献、ウェブサイト、電子的に入手可能な情報、ならびに他の参照される材料または文書からのいかなるならびにすべての材料ならびに情報を本明細書へと物理的に組み込む権利を留保する。

本特許の記載された説明部分には、特許請求の範囲が含まれる。さらに、元の特許請求全部ならびに何らかのおよびすべての優先権文書からの特許請求の範囲全部を含む特許請求の範囲はすべて、本明細書の記載された説明部分へと本明細書によりそのすべてが参照により組み込まれ、発明者は、記載された説明または本出願の何らかの他の部分へと、いかなるおよびすべてのこのような特許請求の範囲を物理的に組み込む権利を留保する。したがって、例えば、いかなる状況下でも、本特許は、本特許の記載された説明部分においてこれらの語において請求項の正確な言語運用が明らかにされていないという主張に関して請求項について記載された説明を申し立てによると提供しないものとして解釈され得る。

特許請求の範囲は、法律によって解釈されるであろう。しかしながら、いかなる請求項または部分を解釈する、申し立てられたまたは認識された容易さまたは困難さにもかかわらず、いかなる状況下でも、本特許をもたらす１つのまたは複数の出願の遂行の間に請求項またはその何らかの部分の何らかの調整または修正は、従来技術の一部を形成しない本特許の何らかのおよびすべての等価物に対する何らかの権利を喪失したものとして解釈され得ない。

本明細書に開示する特長の全部は、何らかの組み合わせにおいて組み合わされ得る。したがって、別段の明確な記載がない限り、開示されるそれぞれの特長は、汎用シリーズの等価物または類似の特長の一例に過ぎない。

本発明が本発明を実施するための形態とともに説明されてきたが、上述の説明は、本発明の範囲を説明するよう企図されているのであって、制限するよう企図されてはおらず、このことは、添付の特許請求の範囲によって定義されることは理解されることになっている。したがって、上述から、本発明の具体的な非限定実施形態が本明細書で説明目的のために説明されてきたが、種々の変更が本発明の趣旨および範囲から逸れることなく行われ得ることは認識されるであろう。他の態様、利点、および変更は、後続の特許請求の範囲の範囲内であり、本発明は、添付の特許請求の範囲以外によって制限されない。

本明細書に説明される具体的な方法および組成物は、好ましい非限定実施形態を代表しており、例示的であって、本発明の範囲に関する制限として企図するものではない。他の目的、態様、および実施形態は、本明細書の考慮の下で当業者に生じるであろうし、特許請求の範囲によって定義されるような本発明の趣旨内に包含される。種々の置換および変更が本発明の範囲および趣旨から逸脱することなく、本明細書に開示される本発明に対してなされ得ることは当業者にとって容易に明らかであろう。本明細書に実例として説明されている本発明は、本明細書に具体的に開示されていないものを必須として何らかの１つのもしくは複数の要素、または１つのもしくは複数の制限がない状態で適切に実施され得る。したがって、例えば、本明細書の各場合において、本発明の非限定的実施形態または実施例において、「を含んでいる（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「を含んでいる（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」、「含有している」などの用語は、発展的に広めにかつ制限なしで読まれることになっている。本明細書に実例として説明する方法およびプロセスは適切には、異なる順序のステップで実施され得、これらは本明細書に記載のまたは特許請求の範囲におけるステップの順序に必ずしも拘束されるわけではない。

採用されてきた用語および表現は、説明の用語として使用されており、制限の用語として使用されるものではなく、このような用語および表現の使用において、示され説明された特長またはその部分の何らかの等価物を排除するために、このような用語および表現の使用において意図がないが、請求されるような本発明の範囲内で種々の変更が可能であることは認識される。したがって、本発明は、種々の非限定的な実施形態ならびに／または好ましい非限定実施形態および任意の特長によって具体的に開示されているが、当業者によって頼られ得るいかなるおよびすべての変更および変化も、添付の特許請求の範囲によって定義されるものとして本発明の範囲内であるとみなされることは理解されるであろう。本発明は、本明細書で広範にかつ包括的に説明されてきた。包括的な開示内に収まるさらに狭い種および下位の包括的な群分けのそれぞれも、本発明の一部を形成する。このことには、削除された材料が本明細書で具体的に列挙されていようとなかろうとにかかわらず、部類からいかなる対象も取り除くという仮定または負の制限を伴って本発明の包括的な説明が含まれている。

本明細書で使用する場合、および添付の特許請求の範囲において、「ａ」、「ａｎ」、および「ｔｈｅ」という単数形には、別段の明確な記載がない限り、複数の参照物が含まれており、さもなければ、「Ｘおよび／またはＹ」は、「Ｘ」または「Ｙ」または「Ｘ」および「Ｙ」の両方を意味し、名詞の後に続く「ｓ」という文字は、その名詞の複数形も単数形も指し示す。さらに、本発明の特長または態様がマーカッシュ群の点で説明されている場合、本発明がマーカッシュ群のいかなる個々のメンバーおよび複数のメンバーのいかなる下位群の点においても包含しそれにより説明されることは意図されており、当業者はそのことを認識しているであろうし、発明者は、マーカッシュ群のいかなる個々のメンバーまたは複数のメンバーのいかなる下位群にも具体的に言及するために、出願または特許請求の範囲を改定する権利を留保する。

他の非限定実施形態は、以下の特許請求の範囲内にある。本特許は、本明細書に具体的におよび／または明らかに開示されている具体的な例または非限定的な実施形態もしくは方法に限定されると解釈することはできない。いかなる状況下でも、本特許は、何らかの審査官または何らかの他の公務員あるいは特許商標事務所の被雇用者によってなされるいかなる陳述も、発明者によって応答して記載されたものに明らかに採用された資格または留保なしで具体的でない限り、このような陳述によって制限されるよう解釈されることはできない。

Claims (18)

1. i）ＩＬ１２、
   ii）ＩＬ１５、および、
   iii）ＩＬ１５受容体のアルファサブユニット、
   を発現する発現カセットを含む、腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
2. 自己開裂性２Ａペプチドをコードする核酸配列が、
   i）ＩＬ１２、
   ii）ＩＬ１５、および/または、
   iii）ＩＬ１５受容体のアルファサブユニット、
   についてのコード配列間でインフレームに位置する、請求項１に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
3. 核酸配列が、ＶＫＱＴＬＮＦＤＬＬＫＬＡＧＤＶＥＳＮＰＧＰ、ＱＣＴＮＹＡＬＬＫＬＡＧＤＶＥＳＮＰＧＰ、ＡＴＮＦ－ＳＬＬＫＱＡＧＤＶＥＥＮＰＧＰ、ＨＹＡＧＹＦＡＤＬＬＩＨＤＩＥＴＮＰＧＰ、ＧＩＦＮ－ＡＨＹＡＧＹＦＡＤＬＬＩＨＤＩＥＴＮＰＧＰ、ＫＡＶＲＧＹＨＡＤＹＹＫＱＲＬＩＨＤＶＥＭＮＰＧＰ、ＧＡＴＮＦ－ＳＬＬＫＬＡＧＤＶＥＬＮＰＧＰ、ＥＧＲＧＳＬＬＴＣＧＤＶＥＥＮＰＧＰ、ＡＡＲＱＭＬＬＬＬＳＧＤＶＥＴＮＰＧＰ、ＦＬＲＫＲＴＱＬＬＭＳＧＤＶＥＳＮＰＧＰ、ＧＳＷＴＤＩＬＬＬＬＳＧＤＶＥＴＮＰＧＰ、ＴＲＡＥＵＥＤＥＬＩＲＡＧＩＥＳＮＰＧＰ、ＡＫＦＱＩＤＫＩＬＩＳＧＤＶＥＬＮＰＧＰ、ＳＫＦＱＩＤＫＩＬＩＳＧＤＩＥＬＮＰＧＰ、ＳＳＩＩＲＴＫＭＬＶＳＧＤＶＥＥＮＰＧＰおよびＣＤＡＱＲＱＫＬＬＬＳＧＤＩＥＱＮＰＧＰからなる群より選択される自己開裂性２Ａペプチドをコードする、請求項２に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
4. １つ以上のＩＲＥＳ配列が、
   i）ＩＬ１２、
   ii）ＩＬ１５、および/または
   iii）ＩＬ１５受容体アルファサブユニット
   についてのコード配列間に位置する、請求項１に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
5. i）ＩＬ１２、
   ii）ＩＬ１５および、
   iii）ＩＬ１５受容体アルファサブユニット、
   の１以上が、二方向プロモーターによって発現する、請求項１に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
6. ＩＬ１５受容体アルファサブユニットが、バリアント１、バリアント２、バリアント３およびバリアント４からなる群より選択されるｈＩＬ１５受容体アルファサブユニットである、請求項１に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
7. さらにＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドを発現する、請求項１に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
8. 複数のＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチド間のペプチドリンカーをコードする配列をさらに含む、請求項７に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
9. ＰＤ－Ｌ１ブロッキングペプチドの３’末端へ連結したＦｃドメインをコードする配列をさらに含む、請求項７に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
10. 発現カセットが、ＨＳＶゲノムの内部反復領域または末端反復領域中、US1とUS2遺伝子、UL3とUL4ウイルス遺伝子、または、UL50とUL51遺伝子の間に挿入される、請求項１に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
11. ＩＣＰ４またはＩＣＰ２７調節領域においてＮＦｋＢおよびＯＣＴ４／ＳＯＸ２増強要素をさらに含む、請求項１～１０のいずれか１項に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
12. ＩＣＰ３４．５遺伝子が欠失している、請求項１～１０のいずれか１項に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
13. 発現カセットがCMVプロモーターまたはEL-1αプロモーターを含む、請求項１に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
14. ＨＳＶが、ＨＳＶ－１またはＨＳＶ－２のいずれかである、請求項１～１３のいずれかに記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
15. ＩＣＰ３４．５遺伝子が、腫瘍細胞において過少発現するｍｉＲＮＡの標的配列を含有する３’ＵＴＲによって調節される、請求項１に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクター。
16. 請求項１～１５のいずれか１項に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクターを含む、医薬組成物。
17. 請求項１～１５のいずれか１項に記載の腫瘍溶解性ＨＳＶベクターを含む、癌治療用医薬組成物。
18. 癌が、癌腫、白血病、リンパ腫、骨髄腫および肉腫からなる群より選択される、請求項１７に記載の医薬組成物。

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