JP7131801B2 - 肌状態の変動抑制剤及びそのスクリーニング方法 - Google Patents
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Description
一方、ある日にはごわついていた肌の触感が翌日にはすべすべだと感じる、週の途中でニキビが現れてまた消える、メイクのりの良い日と悪い日があるなど、程度の差こそあれ日常生活において肌状態の良い日と悪い日が存在することを多くの人が感じている。短期的な肌状態の変化に関しては、多くの人が日常的に好不調を気にしているにも関わらず、美容方法や生活習慣の改善方法についての情報が提供されるのみで、有効な解決手段が存在していなかった。
これらの肌状態の日間での変動は、一般に、仕事の忙しさや子育てなど私生活の負荷が比較的長期的に続いている状態で、さらにストレスを感じた後に実感することが多い。
また、コルチゾールは、細胞胞内で11βヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼタイプ2(11β-HSD2)により不活性型のコルチゾンに変換されることで、その影響が一過性のものとなるが、11βヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼタイプ1(11β-HSD1)により、再活性化されコルチゾールとなることで、局所での濃度が高まることが知られている(非特許文献8)。
また、長期的に負荷が続いている人においては、全身性の炎症性サイトカインであるTNFαやIL1-βが増加することが知られている(非特許文献4、非特許文献5)。これらの炎症性サイトカインは、表皮角化細胞の11β-HSD1の遺伝子(HSD11B1)の発現を増加させることが知られている(非特許文献6、非特許文献7)。さらには、11β-HSD1活性が抑制されると、表皮が角化ではなく増殖方向に変化したり(非特許文献9)、脂腺細胞の脂質合成が抑えられたりする(非特許文献10)ことも報告されている。
[1]TNFα又はIL1-βの存在下での表皮角化細胞における11βヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼタイプ1(11β-HSD1)の活性を指標とする、肌状態変動抑制剤のスクリーニング方法。
[2]前記11β-HSD1の活性が、11β-HSD1をコードする遺伝子(HSD11B1)の発現量であり、
TNFα又はIL1-βの存在下で被験物質を表皮角化細胞に添加する工程、及び
被験物質を添加した表皮角化細胞におけるHSD11B1の発現量が、TNFα又はIL1-βの存在下で被験物質を添加しなかった表皮角化細胞におけるHSD11B1の発現量と比較して小さくなる被験物質を選択する工程、
を含む、[1]に記載のスクリーニング方法。
[3]HSD11B1の発現量が20%以上小さくなる被験物質を選択する、[2]に記載のスクリーニング方法。
[4]さらに、TNFα又はIL1-βの存在下での表皮角化細胞における11βヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼタイプ2(11β-HSD2)の活性を指標とする、[1]~[3]のいずれかに記載のスクリーニング方法。
[5]前記11β-HSD1の活性が、11β-HSD1をコードする遺伝子(HSD11B1)の発現量であり、
前記11β-HSD2の活性が、11β-HSD2をコードする遺伝子(HSD11B2)の発現量であり、
TNFα又はIL1-βの存在下で被験物質を表皮角化細胞に添加する工程、及び
被験物質を添加した表皮角化細胞におけるHSD11B1の発現量が、TNFα又はIL1-βの存在下で被験物質を添加しなかった表皮角化細胞におけるHSD11B1の発現量と比較して小さくなり、かつ
被験物質を添加した表皮角化細胞におけるHSD11B2の発現量が、TNFα又はIL1-βの存在下で被験物質を添加しなかった表皮角化細胞におけるHSD11B2の発現量と比較して変化しない被験物質、を選択する工程、
含む、[4]に記載のスクリーニング方法。
[6]HSD11B1の発現量が20%以上小さくなり、かつ
HSD11B2の発現量が20%以上小さくならない被験物質を選択する、[5]に記載のスクリーニング方法。
[7][1]~[6]のいずれかに記載のスクリーニング方法を行う工程、及び
前記工程により選択された物質を含有させる工程、
を含む、組成物の設計方法。
[8]前記組成物が、肌状態変動抑制用の皮膚外用剤である、[7]に記載の設計方法。
[9]アサイヤシ果実抽出物、加水分解エラスチン、加水分解ゴマタンパク、シュードアルテロモナス発酵物抽出物、タモギタケ抽出物、チョウセンゴミシ果実抽出物からなる群より選択される1種または2種以上を含有する、肌状態変動抑制用組成物。
[10]シュードアルテロモナス発酵物抽出物を含有する、[9]に記載の組成物。
[11]さらにセンブリ抽出物を含有する、 [10]に記載の組成物。
[12]皮膚外用剤である[9]~[11]のいずれかに記載の組成物。
[13]化粧料または医薬部外品である、[12]に記載の組成物。
本発明のスクリーニング方法は、さらに、TNFα又はIL1-βの存在下での表皮角化細胞における11βヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼタイプ2(11β-HSD2)の活性をも指標とすることが好ましい。11β-HSD2は、細胞内でコルチゾールをコルチゾンに変換することで不活性化する酵素である。
。なお、11β-HSD2は、該サイトカイン存在下では特に変動しないことが、本発明者らにより分かっている。
本発明の方法により選択される物質は、ストレス状態で一時的に増加したコルチゾールが、表皮角化細胞で役割を終えてコルチゾンに変換された後に、11β-HSD1により再活性化して持続的にコルチゾールが維持されるのを抑制する作用を有するものである。コルチゾール量を抑えることにより、ストレスの肌状態への影響を一過性にとどめることができる。また、本発明の方法により選択される物質は、好ましくは11β-HSD2の活性には影響を与えない、具体的にはコルチゾールの不活性化を抑制しない作用を有するものである。
あるいは、これらの酵素の反応活性の測定値であってもよく、例えば11β-HSD1活性についてはコルチゾンをコルチゾールに変換する活性を、11β-HSD2活性についてはコルチゾールをコルチゾンに変換する活性を、それぞれ任意の方法で測定した値であってもよい。
本発明においては、HSD11B1遺伝子の発現抑制と肌状態変動抑制とが相関する。そのため、被験物質を細胞に添加することで、HSD11B1遺伝子の発現抑制が生じた被験物質は、肌状態変動抑制作用を有する成分として選択できる。
また、HSD11B2遺伝子の発現抑制と肌状態変動亢進とが相関する。そのため、被験物質を細胞に添加することで、HSD11B2遺伝子の発現抑制が生じた被験物質は、肌状態変動抑制作用を有する成分として選択することを控えた方がよい。
また、本発明のスクリーニング方法において、選択される被験物質は、被験物質を添加した表皮角化細胞におけるHSD11B2の発現量が、TNFα又はIL1-βの存在下
で被験物質を添加しなかった表皮角化細胞におけるHSD11B2の発現量と比較して変化しないものが好ましく、より好ましくは被験物質添加後12または24時間経過後に20%以上小さくならない、より好ましくは15%以上小さくならない、さらに好ましくは10%以上小さくならないものである。また、HSD11B2の発現量は、被験物質非添加の場合より大きくなってもよいが(発現亢進)、好ましくは20%以上大きくならない、より好ましくは15%以上大きくならない、さらに好ましくは10%以上大きくならないものである。この範囲の発現変化であれば、コルチゾールの不活性化に与える影響が緩和なものとなるので、HSD11B1遺伝子の発現抑制効果を打ち消すことがないと考えられる。
また、例えば、前記遺伝子によりコードされるタンパク質の細胞内存在量を、常法により定量的に測定して、前記遺伝子の発現量としてもよい。
動植物由来の抽出物は、動物又は植物由来の抽出物自体のみならず、抽出物の画分、精製した画分、抽出物乃至は画分、精製物の溶媒除去物の総称を意味するものとし、植物由来の抽出物は、自生若しくは生育された植物、漢方生薬原料等として販売されるものを用いた抽出物、市販されている抽出物等が挙げられる。
抽出操作は、植物部位の全草を用いるほか、植物体、地上部、根茎部、木幹部、葉部、茎部、花穂、花蕾等の部位を使用することできるが、予めこれらを粉砕あるいは細切して抽出効率を向上させることが好ましい。抽出溶媒としては、水、エタノール、イソプロピルアルコール、ブタノールなどのアルコール類、1,3-ブタンジオール、ポリプロピレングリコールなどの多価アルコール類、アセトン、メチルエチルケトンなどのケトン類、ジエチルエーテル、テトラヒドロフランなどのエーテル類等の極性溶媒から選択される1種乃至は2種以上が好適なものとして例示することができる。具体的な抽出方法としては、例えば、植物体等の抽出に用いる部位乃至はその乾燥物1質量に対して、溶媒を1~30質量部加え、室温であれば数日間、沸点付近の温度であれば数時間浸漬し、室温まで冷却し後、所望により不溶物及び/又は溶媒除去し、カラムクロマトグラフィー等で分画精製する方法が挙げられる。
また、「肌状態の変動」とは、特に限定されないが、肌状態が日間で好調になったり不調になったりする変化をいう。
また、「肌状態の変動の抑制」とは、特に限定されないが、肌状態が日間で好調になったり不調になったりする変化の幅を小さくすることをいう。
したがって、本発明のスクリーニング方法により選択された肌状態変動抑制剤は、肌状態変動抑制用の組成物の有効成分として好適に配合することができる。
また、組成物の剤型は特に限定されない。例えば、化粧料として設計される場合の剤型は、通常知られているローション剤型、乳液剤型、エッセンス剤型、クリーム剤型、粉体含有剤型等が挙げられる。
また、該組成物に含有させる肌状態変動抑制剤の種類は、1種類のみでなく2種類以上であってもよい。
例えば、化粧料組成物として設計する場合は、通常化粧料に使用される成分を広く配合することが可能であり、また、その剤型や用途についても、何ら限定されない。以下、主に化粧料に適用される場合に化粧料中に含有させることができる成分について説明する。
美白成分としては、一般的に化粧料に用いられているものであれば特に限定はない。例えば、4-n-ブチルレゾルシノール、アスコルビン酸グルコシド、3-О-エチルアスコルビン酸、トラネキサム酸、アルブチン、エラグ酸、コウジ酸、リノール酸、ニコチン酸アミド、5,5'-ジプロピルビフェニル-2,2'-ジオール、5'-アデニル酸二ナトリウム、トラネキサム酸セチル、4-メトキシサリチル酸カリウム塩、ハイドロキノン、パントテン酸等が挙げられる。
化粧料における美白成分の含有量は、通常0.01~30質量%であり、0.1~10質量%が好ましく、0.3~5質量%がより好ましい。
化粧料におけるシワ改善成分の含有量は、通常0.01~30質量%であり、0.1~10質量%が好ましく、1~5質量%がより好ましい。
、アボカドエキス、アマチャエキス、アーモンドエキス、アルニカエキス、アロエエキス、アロニアエキス、アンズエキス、イチョウエキス、インドキノエキス、ウイキョウエキス、ウドエキス、エイジツエキス、エゾウコギエキス、エンメイソウエキス、オウゴンエキス、オウバクエキス、オウレンエキス、オタネニンジンエキス、オトギリソウエキス、オドリコソウエキス、オレンジエキス、カキョクエキス、カッコンエキス、カモミラエキス、カロットエキス、カワラヨモギエキス、キウイエキス、キューカンバーエキス、グアバエキス、クジンエキス、クチナシエキス、クマザサエキス、クララエキス、クルミエキス、グレープフルーツエキス、黒米エキス、クロレラエキス、クワエキス、ケイケットウエキス、ゲットウヨウエキス、ゲンチアナエキス、ゲンノショウコエキス、紅茶エキス、ゴボウエキス、コメエキス、コメ発酵エキス、コメヌカ発酵エキス、コメ胚芽油、コケモモエキス、サルビアエキス、サボンソウエキス、ササエキス、サンザシエキス、サンシャエキス、サンショウエキス、シイタケエキス、ジオウエキス、シコンエキス、シソエキス、シナノキエキス、シモツケソウエキス、シャクヤクエキス、ショウキョウエキス、ショウブ根エキス、シラカバエキス、スギナエキス、ステビアエキス、ステビア発酵物、セイヨウキズタエキス、セイヨウサンザシエキス、セイヨウニワトコエキス、セイヨウノコギリソウエキス、セイヨウハッカエキス、セージエキス、ゼニアオイエキス、センキュウエキス、センブリエキス、ソウハクヒエキス、ダイオウエキス、ダイズエキス、タイソウエキス、タイムエキス、タンポポエキス、茶エキス、チョウジエキス、チンピエキス、甜茶エキス、トウガラシエキス、トウキエキス、トウキンセンカエキス、トウニンエキス、トウヒエキス、ドクダミエキス、トマトエキス、納豆エキス、ニンジンエキス、ニンニクエキス、ノバラエキス、ハイビスカスエキス、バクモンドウエキス、ハスエキス、パセリエキス、バーチエキス、ハマメリスエキス、ヒキオコシエキス、ヒノキエキス、ビワエキス、フキタンポポエキス、フキノトウエキス、ブクリョウエキス、ブッチャーブルームエキス、ブドウエキス、ブドウ種子エキス、ヘチマエキス、ベニバナエキス、ペパーミントエキス、ボダイジュエキス、ボタンエキス、ホップエキス、マツエキス、マヨナラエキス、マロニエエキス、ミズバショウエキス、ムクロジエキス、メリッサエキス、モズクエキス、モモエキス、ヤグルマギクエキス、ユーカリエキス、ユキノシタエキス、ユズエキス、ユリエキス、ヨクイニンエキス、ヨモギエキス、ラベンダーエキス、緑茶エキス、リンゴエキス、ルイボス茶エキス、レイシエキス、レタスエキス、レモンエキス、レンギョウエキス、レンゲソウエキス、ローズエキス、ローズマリーエキス、ローマカミツレエキス、ローヤルゼリーエキス、ワレモコウエキス等のエキスが好ましいものとして挙げられる。
化粧料中における動植物由来抽出物の含有量は、通常0.01~30質量%であり、0.1~10質量%が好ましく、1~5質量%がより好ましい。
食品中における動植物由来抽出物の含有量は、通常0.01~80質量%であり、0.1~50質量%が好ましく、1~30質量%がより好ましい。
化粧料中における抗炎症成分の含有量は、通常0.01~30質量%であり、0.1~10質量%が好ましく、1~5質量%がより好ましい。
極性油としては、合成エステル油として、ミリスチン酸イソプロピル、オクタン酸セチル、ミリスチン酸オクチルドデシル、パルミチン酸イソプロピル、ステアリン酸ブチル、ラウリン酸ヘキシル、ミリスチン酸ミリスチル、オレイン酸デシル、ジメチルオクタン酸ヘキシルデシル、乳酸セチル、乳酸ミリスチル、酢酸ラノリン、イソノナン酸2-エチルヘキシル、ステアリン酸イソセチル、イソステアリン酸イソセチル、12-ヒドロキシス
テアリン酸コレステリル、ジ-2-エチルヘキサン酸エチレングリコール、ジペンタエリスリトール脂肪酸エステル、モノイソステアリン酸N-アルキルグリコール、ジカプリン酸ネオペンチルグリコール、リンゴ酸ジイソステアリル、ジ-2-ヘプチルウンデカン酸グリセリル、トリ-2-エチルヘキサン酸トリメチロールプロパン、トリイソステアリン酸トリメチロールプロパン、テトラ-2-エチルヘキサン酸ペンタンエリスリトール、トリ-2-エチルヘキサン酸グリセリル、トリイソステアリン酸トリメチロールプロパンを挙げることができる。
ソルビタン脂肪酸エステル類(ソルビタンモノステアレート、セスキオレイン酸ソルビタン等) 、グリセリン脂肪酸エステル類(モノステアリン酸グリセリル等)、プロピレングリコール脂肪酸エステル類(モノステアリン酸プロピレングリコール等)、硬化ヒマシ油誘導体、グリセリンアルキルエーテル、POEソルビタン脂肪酸エステル類(POEソルビタンモノオレエート、モノステアリン酸ポリオキシエチレンソルビタン等)、POEソルビット脂肪酸エステル類(POE-ソルビットモノラウレート等)、POEグリセリン脂肪酸エステル類(POE-グリセリンモノイソステアレート等)、POE脂肪酸エステル類(ポリエチレングリコールモノオレート、POEジステアレート等)、POEアルキルエーテル類(POE2-オクチルドデシルエーテル等)、POEアルキルフェニルエーテル類(POEノニルフェニルエーテル等)、プルロニック型類、POE・POPアルキルエーテル類(POE・POP2-デシルテトラデシルエーテル等)、テトロニック類、POEヒマシ油・硬化ヒマシ油誘導体(POEヒマシ油、POE硬化ヒマシ油等)、ショ糖脂肪酸エステル、アルキルグルコシド等の非イオン界面活性剤類、等が挙げられる。
リコール、エリスリトール、ソルビトール、キシリトール、マルチトール、プロピレングリコール、ジプロピレングリコール、ジグリセリン、イソプレングリコール、1,2-ペンタンジオール、2,4-ヘキシレングリコール、1,2-ヘキサンジオール、1,2-オクタンジオール等が挙げられる。
培養ヒト成人表皮角化細胞(NHEK、クラボウ)を増殖培地とともに24穴マルチウェルプレートに播種した後、培地を被験物質または溶媒対照を含む培地に交換し、24時間培養した。その後、表1に示す各被験物質(各0.25容量%)と10ng/mLのTNFα(R&D SYSTEMS社)を含む培地に交換し24時間培養した後に培地を除き、QIAshredder、RNeasy Mini Kit、QIACube(いずれもQIAGEN)を用いてRNAを精製し、Superscript VILO cDNA Synthesis Kit(Thermo Fisher Scientific)にてcDNA化した。cDNAから、QuantiTect Primer Assay(QIAGEN)を用いてリアルタイムPCRを行い、HSD11B1及びHSD11B2の各mRNA量を測定した(n=3)。内在性コントロールとして、HSD11B1にはRPL27を、HSD11B2にはGAPDHのmRNA量を測定し、内在性コントロールのmRNA量に対する比率を解析し、被験物質の値と被験物質を含まずに溶媒の
みを培地に添加した溶媒対照との間で、HSD11B1及びHSD11B2の遺伝子発現量を比較した。なお、プライマーは表2に記載のもの(QIAGEN社)を用いた。
溶媒対照の平均値と比較して20%以上のHSD11B1遺伝子発現の減少を示す場合に、該被験試料はHSD11B1遺伝子発現抑制作用を有すると判定することとした。また、溶媒対照の平均値と比較して20%以上のHSD11B2遺伝子発現の減少を示す場合に、該被験試料はHSD11B2遺伝子発現抑制作用を有すると判定することとした。
被験物質を添加したNHEKにおけるHSD11B2遺伝子の発現量の解析結果を図2に示す。溶媒対照での発現量を100としたときの相対値で示し、低値であるほど、HSD11B2遺伝子の発現が抑制されたことを表す。HSD11B1の遺伝子発現抑制作用が認められたシュードアルテロモナス発酵物抽出物、加水分解エラスチン、加水分解ゴマタンパク、アサイヤシ果実抽出物、タモギタケ抽出物、及びチョウセンゴミシ果実抽出物には、いずれもNHEKにおけるHSD11B2遺伝子の発現に対する抑制作用は認められなかった。
以下の手順で、HSD11B1遺伝子発現の抑制効果を有し、かつHSD11B2遺伝子の発現を抑制しない物質が、表皮角化細胞におけるコルチゾールの再活性化を抑制し得ることを確認した。
NHEKを増殖培地とともに96穴マルチウェルプレートに播種した後、シュードアルテロモナス発酵物抽出物(0.25容量%)又は溶媒対照を含む培地に交換し24時間培養した。その後、各被験物質とTNFαと1μMのコルチゾール(Sigma-Aldrich社)を含む培地に交換し、24時間培養した。その後、再度コルチゾールを含まない各被験物質とTNFαのみを加えた培地に交換し、さらに培養した。24時間後の培養系に含まれるコルチゾール量をDetectX CORTISOL Enzyme Immunoassay Kit (ARBOR assays社)にて測定した。該コルチゾール量を、細胞に使用されて不活性化されたコルチゾール変換体であるコルチゾンが、活性型コルチゾールに再生された量であるとして評価した。
シュードアルテロモナス発酵物抽出物を添加したNHEKでは、溶媒対照よりもコルチゾール量が有意に低く、コルチゾンのコルチゾールへの再活性化が抑制されたことが確認された。
以下の手順で、センブリ抽出物が、シュードアルテロモナス発酵物抽出物の表皮角化細胞におけるコルチゾールの再活性化抑制効果をより高めることを確認した。
被験物質として、シュードアルテロモナス発酵物抽出物(0.25容量%)、シュードアルテロモナス発酵物抽出物とセンブリ抽出物(香栄興業株式会社)の混合物(各0.25容量%)、センブリ抽出物(0.25容量%)を用い、実施例2と同様の方法で活性型コルチゾールの再生量を評価した。
結果を図3に示す。低値を示すほど、コルチゾールが再活性化されていないことを表す。シュードアルテロモナス発酵物抽出物単独では、溶媒対照よりも細胞培養中のコルチゾール量が有意に低いことから、HSD11B1によるコルチゾンのコルチゾールへの再活性化が抑制されたことが分かる。また、センブリ抽出物単独では、コルチゾール量に影響を及ぼさなかった。一方、シュードアルテロモナス発酵物抽出物とセンブリ抽出物との混合物を添加した場合は、シュードアルテロモナス発酵物抽出物単独よりもコルチゾール再活性化が抑制されることが認められた。これにより、シュードアルテロモナス発酵物抽出物の表皮角化細胞におけるコルチゾールの再活性化抑制作用が、センブリ抽出物により増強されたことが推測された。
表3に示す処方で、水中油型の乳液を調製した。すなわち、成分A及び成分Bを80℃
でそれぞれ加温して混合し、撹拌下でAにBを徐々に加え、撹拌冷却して乳液を得た。
実施例4で調製した試験製剤及び比較製剤を、被験者(各群5名、計10名)に5日間顔面に朝晩2回使用してもらい、肌状態4項目、すなわち経皮水分蒸散量(TEWL)、角層水分量、皮膚表面の粗さ、及び隆起部の体積を毎日同時刻に測定した。TEWLはVapometer SWL5001JT(キーストンサイエンティフィック)を用いて、
角層の水分量はCorneometer CM825(Courage+Khazaka)を用いて、皮膚表面の粗さと隆起部の体積はANTERA 3D(Miravex)を用いて、それぞれ測定した。上記肌状態4項目の各日間変動率は、下記式に従い、すなわち各測定日の測定値と1日目の測定値との差の絶対値の、1日目の測定値に対する割合として算出した。
肌状態の変動率(%)={(各日の測定値-1日目の測定値)/1日目の測定値}×100
各項目の測定値の各群の平均値及び誤差を、図4~図7に示す。各図において低値を示すほど1日目からの変化が少ないことを表す。比較製剤と比較してシュードアルテロモナス発酵物抽出物及びセンブリ抽出物抽出物を含む試験製剤では、全ての測定項目で概ね変動率が小さく、特に、5日目には全項目で変動率が小さかった。このことから、試験製剤は肌状態の日間変動の抑制に有効であり、連続で使用することにより、より効果を発揮することがわかる。
Claims (8)
- TNFα又はIL1-βの存在下での表皮角化細胞における11βヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼタイプ1(11β-HSD1)の活性を指標とする、肌状態変動抑制剤のスクリーニング方法。
- 前記11β-HSD1の活性が、11β-HSD1をコードする遺伝子(HSD11B1)の発現量であり、
TNFα又はIL1-βの存在下で被験物質を表皮角化細胞に添加する工程、及び
被験物質を添加した表皮角化細胞におけるHSD11B1の発現量が、TNFα又はIL1-βの存在下で被験物質を添加しなかった表皮角化細胞におけるHSD11B1の発現量と比較して小さくなる被験物質を選択する工程、
を含む、請求項1に記載のスクリーニング方法。 - HSD11B1の発現量が20%以上小さくなる被験物質を選択する、請求項2に記載のスクリーニング方法。
- さらに、TNFα又はIL1-βの存在下での表皮角化細胞における11βヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼタイプ2(11β-HSD2)の活性を指標とする、請求項1~3のいずれか一項に記載のスクリーニング方法。
- 前記11β-HSD1の活性が、11β-HSD1をコードする遺伝子(HSD11B1)の発現量であり、
前記11β-HSD2の活性が、11β-HSD2をコードする遺伝子(HSD11B2)の発現量であり、
TNFα又はIL1-βの存在下で被験物質を表皮角化細胞に添加する工程、及び
被験物質を添加した表皮角化細胞におけるHSD11B1の発現量が、TNFα又はIL1-βの存在下で被験物質を添加しなかった表皮角化細胞におけるHSD11B1の発現量と比較して小さくなり、かつ
被験物質を添加した表皮角化細胞におけるHSD11B2の発現量が、TNFα又はIL1-βの存在下で被験物質を添加しなかった表皮角化細胞におけるHSD11B2の発現量と比較して小さくならない被験物質、を選択する工程、
含む、請求項4に記載のスクリーニング方法。 - HSD11B1の発現量が20%以上小さくなり、かつ
HSD11B2の発現量が20%以上小さくならない被験物質を選択する、請求項5に記載のスクリーニング方法。 - 請求項1~6のいずれか一項に記載のスクリーニング方法を行う工程、及び
前記工程により選択された物質を含有させる工程、
を含む、組成物の設計方法。 - 前記組成物が、肌状態変動抑制用の皮膚外用剤である、請求項7に記載の設計方法。
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