JP7059193B2 - ラミニン511産生促進剤、表皮基底膜安定化剤及び/又は表皮幹細胞減少抑制又は増加促進剤のスクリーニング方法 - Google Patents
ラミニン511産生促進剤、表皮基底膜安定化剤及び/又は表皮幹細胞減少抑制又は増加促進剤のスクリーニング方法 Download PDFInfo
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Description
[1] 表皮細胞におけるラミニン511の発現量を指標とする、ラミニン511発現促進剤のスクリーニング方法。
[2] 候補薬剤を含む培養培地中で表皮細胞を培養する工程、
表皮細胞におけるラミニン511の発現量を測定する工程、
対照におけるラミニン511発現量と比較して、ラミニン511の発現が増加した場合に、候補薬剤がラミニン511発現促進効果を有すると判定する工程
を含む、項目1に記載の方法。
[3] 前記ラミニン511の発現量が、ラミニン511のタンパク質量又はラミニンα5のmRNA量、ラミニンβ1のmRNA量、及びラミニンγ1のmRNA量からなる群から選ばれる1以上のmRNA量から決定される、項目1又は2に記載の方法。
[4] ラミニン511の発現量が、ラミニンα5のmRNA量、ラミニンβ1のmRNA量、及びラミニンγ1のmRNA量の合計量から決定される、項目1~3のいずれか一項に記載の方法。
[5] 前記ラミニン511発現促進剤が、表皮基底膜安定化剤である、項目1~4のいずれか一項に記載の方法。
[6] 表皮基底膜安定化剤が、表皮基底幹細胞の減少抑制又は増加剤である、項目1~5のいずれか一項に記載の方法。
[7] 表皮細胞が表皮幹細胞を含む、項目1~6のいずれか一項に記載の方法。
[8] 表皮幹細胞が表皮基底幹細胞を含む、項目1~7のいずれか一項に記載の方法。
[9] 表皮細胞がMCSP発現細胞を含む、項目1~8のいずれか一項に記載の方法。
[10] 表皮細胞が、さらにインテグリンを発現している細胞を含む、項目1~9のいずれか一項に記載の方法。
[11] 表皮細胞が胎児由来である、項目1~10のいずれか一項に記載の方法。
[12] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンを有効成分とする、ラミニン511の発現促進剤。
[13] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンを有効成分とする、ラミニン511の発現促進による表皮基底膜安定化剤。
[14] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンを有効成分とする、ラミニン511の発現促進による表皮基底幹細胞の減少抑制又は増加剤。
[15] 1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンを含む、細胞外マトリックス分解酵素の活性阻害剤。
[16] 細胞外マトリックス分解酵素が、マトリックスメタロプロテイナーゼ又はヘパラナーゼである、項目15に記載の細胞外マトリックス分解酵素の活性阻害剤。
[17] 細胞外マトリックス分解酵素が、マトリックスメタロプロテイナーゼ9である、項目15に記載の細胞外マトリックス分解酵素の活性阻害剤。
[18] 項目15~17のいずれか一項に記載の細胞外マトリックス分解酵素の活性阻害剤を含む、ラミニン511分解抑制剤。
[19] 項目15~17のいずれか一項に記載の細胞外マトリックス分解酵素の活性阻害剤を含む、表皮基底膜安定化剤。
[20] 項目15~17のいずれか一項に記載の細胞外マトリックス分解酵素の活性阻害剤を含む、表皮基底幹細胞減少抑制又は増加促進剤。
[21] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンを投与することを含む、表皮においてラミニン511の発現を亢進方法。
[22] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンを投与し、ラミニン511の発現促進作用によって、表皮基底膜を安定化する方法。
[23] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンを投与し、ラミニン511の発現促進作用によって、表皮基底幹細胞の減少を抑制するか又は増加を促進する方法。
[24] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンを投与し、表皮においてラミニン511の発現を亢進させる、美容方法。
[25] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンを投与し、表皮においてラミニン511の発現を亢進させ、ラミニン511の発現促進作用によって表皮基底膜を安定化する、美容方法。
[26] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンを投与し、表皮においてラミニン511の発現を亢進させ、ラミニン511の発現促進作用によって表皮基底幹細胞の減少を抑制するか又は増加を促進する、美容方法。
[27] ラミニン511の発現促進するための化粧品又は医薬品を製造のための、褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンの使用。
[28] 表皮基底膜を安定化するための化粧品又は医薬品を製造のための、褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンの使用。
[29] 表皮基底幹細胞の減少を抑制するか又は増加を促進するための化粧品又は医薬品を製造のための、褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノンの使用。
[30] ラミニン511の発現促進を介して抗老化治療に用いるための褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノン。
[31] 表皮基底膜安定化を介して抗老化治療に用いるための褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノン。
[32] 表皮基底幹細胞の減少抑制又は増加を介して抗老化治療にもちいるための褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキス又は1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノン。
[33] 細胞外マトリックス分解酵素の活性阻害を介して抗老化治療にもちいるための1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノン。
[34] 細胞外マトリックス分解酵素が、マトリックスメタロプロテイナーゼ又はヘパラナーゼである、項目33に記載の1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノン。
[35] 細胞外マトリックス分解酵素が、マトリックスメタロプロテイナーゼ9である、項目33に記載の1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノン。
[36] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキスを含む、皮膚バリア、ハリ、潤い、及び炎症の改善剤。
[37] 褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキスを含む、炎症抑制剤。
[38]皮膚バリア、ハリ、潤い、及び炎症の改善剤の製造のための、褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキスの使用。
[39]炎症抑制剤の製造のための、褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキスの使用。
[40]褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキスを含む化粧料を皮膚バリア、ハリ、潤い、及び炎症の改善を必要とする対象に適用することを含む、皮膚バリア、ハリ、潤い、及び炎症の改善のための美容方法。
[41]炎症を患う対象に褐藻、紅藻、及び緑藻からなる群から選ばれる少なくとも1の抽出エキスを含む化粧料を適用することを含む、炎症抑制のための美容方法。
候補薬剤を含む培養培地で表皮細胞を培養する工程、
表皮細胞におけるラミニン511の発現を測定する工程、
対照におけるラミニン511発現量と比較して、ラミニン511の発現が増加した場合に、候補薬剤がラミニン511発現促進効果を有すると判定する工程
を含む。さらに、培養表皮細胞に対し、紫外線を照射する工程を含んでもよい。紫外線の照射により、ラミニン511の発現量は減少する。紫外線の照射は、一例として、培養細胞に対し、1mJ/cm2~200mJ/cm2で照射することにより行われうる。紫外線の照射は、マトリクスメタロプロテイナーゼの活性を増強し、ラミニンの分解をもたらしうる。よって紫外線照射下において、候補薬剤が、ラミニン511のタンパク質量の減少を抑制できる場合には、候補薬剤がラミニン511の分解抑制効果および発現促進効果を有することがわかる。候補薬剤によるマトリクスメタノプロテイナーゼの活性に対する阻害効果を調べることで、候補薬剤がラミニン511の発現促進効果を有することを決定することができる。
サンプル
インフォームドコンセントを行った20代から70代の被験者(20代:9名、30代:10名、40代:10名、50代::9名、60代:10名、及び70代:9名)の顔面及び腹部の皮膚サンプルを取得し、AMex法に従って冷アセトンを用いて固定し、そしてパラフィンに包埋した。
ケラチノサイトにおけるMCSP遺伝子の発現量を、Platinum SYBR Green qPCRsuper MIX-UDG (Invitrogen Japan, Tokyo Jaqpan)を用いて定量的PCRを行った。使用したプライマーは下記の通りである:
ヒト表皮ケラチノサイトを、Humedia-KG2培地(Kurabo Col, Ltd, Japan)を用い、iMatrix-511(和光純薬工業株式会社)でコートされたPrimeria フラスコ(Coaster, Tokyo, Japan)中で6日培養した。対照として、未コートのフラスコ中で培養した。サブコンフレントまで増殖した細胞をTypsin(Nakarai co, ltd, Japan)で剥がし、iMatrix-511でコートしたchamber slide(Thermo Fisher Science, Waltham, MA)に播種し、培養した。対照群は、未コートのchamber slideで培養した。
インフォームドコンセントを行った被験者(20代から30代)の腹部の皮膚サンプルを取得した。取得されたサンプルをMMP9阻害剤であるCGS270234(10μM)及びヘパラナーゼ阻害剤であるBIPBIU(10μM)を含む培養培地で4日間培養した。培養培地は、William‘s E培地( Thermo Fisher Science, Waltham, MA)を用いた。CGS270234及びBIPBIUは、それぞれ下記の化学式により表される化合物であり、MMP9阻害剤及びヘパラナーゼ阻害剤として使用できることが知られている(Iriyama S, et al., Exp Dermatol. 2011; 20 (11): 953-5)。
胎児から取得された表皮細胞を、Humedia-KG2培地(Kurabo Col, Ltd, Japan)を用い、iMatrix-511(和光純薬工業株式会社)でコートされたPrimeria フラスコ(Coaster, Tokyo, Japan)中で6日間培養した。細胞がサブコンフルエントになったら、Trypsinで細胞を剥がし、6well plateに播種し、1日後に候補薬剤を溶解した培地に置換し、48時間培養を行った。候補薬剤として、化粧品登録原料178品(内訳:エキス類135品及び単品化合物43品)を用いた。培地を捨て、PBSで洗浄し、mRNAを、RNeasy mini kit (QIAGEN, Tokyo, Japan)を、製品説明書に従って抽出・精製した。ラミニンα5、ラミニンβ1、及びラミニンγ1遺伝子の発現量を、Platinum SYBR Green qPCRsuper MIX-UDG (Invitrogen Japan, Tokyo Jaqpan)を用いて定量的PCRを行った。使用したプライマーは下記の通りである:
胎児から取得された表皮細胞を、Humedia-KG2培地(Kurabo Col, Ltd, Japan)を用い、iMatrix-511(和光純薬工業株式会社)でコートされたPrimeria フラスコ(Coaster, Tokyo, Japan)中で培養した。細胞がサブコンフルエントになったら、Trypsinで細胞を剥がし、6well plateへ播種し、1日後に0.01%アルジェレックスを含む培地に置換し、48時間培養を行った。対照としては、アルジェレックスを含まない培地を用いた。培地を捨て、PBSで洗浄し、mRNAを、RNeasy mini kit (QIAGEN, Tokyo, Japan)を、製品説明書に従って抽出・精製した。ヘパラナーゼ(HPA)遺伝子、PDGF-BB遺伝子、ヒアルロン酸合成酵素2(HAS2)遺伝子、ヒアルロニダーゼ1(HYAL1)、及びインターロイキン8(IL-8)遺伝子の発現量を、Platinum SYBR Green qPCRsuper MIX-UDG (Invitrogen Japan, Tokyo Jaqpan)を用いて定量的PCRを行った。使用したプライマーは下記の通りである:
インフォームドコンセントを行った被験者(20代から30代)の腹部の皮膚サンプルを取得した。取得されたサンプルを0.01%1-(2-ヒドロキシエチル)-2-イミダゾリジノン(HEI、又はS-173)を含む培養培地で5日間培養した。培養培地は、William‘s E培地(Thermo Fisher Science, Waltham, MA )を用いた。対照は、HEIを添加しない培養培地を用いて培養した。培養後の皮膚サンプルを、AMex法に従って冷アセトンを用いて固定し、そしてパラフィンに包埋した。
ヘパラナーゼアッセイを、Behzad F, et al., Analytical Biochemistry, 320, pp.207-213, 2003に記載されるヘパラン硫酸固定化プレートを用いて行った。具体的に、へパラン硫酸(Sieikagaku, Tokyo, Japan)を、Photo-ビオチンと反応させることにより、ビオチン化へパラン硫酸を調製した。ビオチン化ヘパラン硫酸を、炭水化物結合表面プレート(Coastar, Tokyo, Japan)上に固定した。A431細胞ライセート(50μg/ml)と共に、0%HEI、0.0005%HEI、0.005%HEI、及び0.05%HEIをビオチン化ヘパラン硫酸固定化プレート上に添加して、3時間37℃でインキュベートし、PBS-Tで洗浄した。その後、ペルオキシダーゼ―アビジン(Vector Laboratories, Inc. CA, USA)と37℃で1時間インキュベートした。3,3’,5,5’-テトラメチルベンジジン(TMB)溶液(Bio-Rad, Tokyo, Japan)を加え、そしてプレートをさらに室温で30分間インキュベートした。450nmでの吸光度を計測し、ヘパラナーゼの阻害作用を決定した。HEIは、用量依存的にヘパラナーゼの活性を阻害することが示された(図8)。
MMP9アッセイを、Matrix Metalloproteinase-9 (MMP-9) colorimetric drug discovery kit (Enzo life sience Inc.)を用いて行った。具体的に、recombinant human MMP-9 enzymeの溶液に、0.0001%, 0.001%, 0.01% となるようにHEIを加えた。chromogenic MMP-9 substrate混合後、1分おきに412nmの吸光度を測定した。吸光度の傾き(OD/min)から、HEIのMMP-9阻害率(%)を算出した。HEIは、用量依存的にMMP9の活性を阻害することが示された(図9)。
インフォームドコンセントを行った被験者(20代から30代)の腹部の皮膚サンプルを取得した。取得されたサンプルを0.01%HEIを含む培養培地で5日間培養した。培養培地は、William‘s E培地(Thermo Fisher Science, Waltham, MA )を用いた。対照は、HEIを添加しない培養培地を用いて培養した。培養後の皮膚サンプルに付着した余分な水分をキムタオルでふき取り、5分清置させた後に、Vapometerを用いてTEWLを測定し、Corneometerを用いて角層水分量を測定した。結果を図10B及びCに示す。また、培養後の皮膚サンプルを、AMex法に従って冷アセトンを用いて固定し、そしてパラフィンに包埋した。
Bio Predic社から購入した皮膚組織を皮膚組織片とし、CGS27023A(終濃度10-5M)及びBIPBIPU(終濃度10-5M)を添加したWilliam’s E培地中で培養した。対照ではこれらの阻害剤を含めないで培養を行った。培地を毎日交換し、培養5日目に皮膚組織片を回収した。回収した皮膚組織片をZamboni固定液に浸漬し、1%オスミウムで後固定した。皮膚試料はエポキシ樹脂で包埋した。超薄切片を作成し、透過型電子顕微鏡(JEOL JEM1230)にて観察した(図11A)。
Bio Predic社から購入した皮膚をAMeX法に供して、パラフィンブロックを作成した。3μmの厚さで切片を作成し、V型コラーゲンに対する抗体(ORIGENE社,Cat#:AM1015PU-N)及びサイトケラチン14(K-14)に対する抗体(Fitzgerald, Cat#;20R-CP002)を用いて蛍光免疫染色を行った(図12A)。基底膜領域がサイトケラチン14により染色されており、その直下において、V型コラーゲンが存在することが示され、加齢によりその量が減少した。
MatTeK社から購入した皮膚三次元モデル(EFT-400)を、CGS27023A(終濃度10-5M)、BIPBIPU(終濃度10-5M)を添加した専用培地(EFT400-ASY)中で培養した。培養2日目、4日目、7日目の皮膚モデルから表皮を回収し、ナカライ社製RIPA bufferを使って、たんぱく質抽出液を調製した。Abcam社製membrane array kit(ab134002)を用いて、たんぱく質抽出液中の各種サイトカン量をFUJIFILM社製LAS-1000UVminiを用いて検出し、付属のソフトウエアにて数値化しグラフを作成した(データ未掲載)。対照に比較して、量が増大したサイトカインを、V型コラーゲン発現を促進する候補サイトカインとして選別した。かかる候補サイトカインとして、PDGF-BBを含む3種のサイトカインを選別した。
し、TrizolにてmRNAを抽出した。速やかにcDNAを作成し、上述のプライマーを用いて、リアルタイムPCRによりV型コラーゲンの遺伝子COL5A1の遺伝子発現量を評価した(図15)。3種のサイトカインの中で、PDGF-BBのみが、V型コラーゲン産生を有意に増加させた。これにより、PDGF-BBが、表皮側から産生されるサイトカインであって、基底膜直下の線維芽細胞に作用してV型コラーゲン発現を促進する因子であると考えられる。
実施例11と同様にして取得されたパラフィンブロックについて、3μmの厚さで切片を作成し、PDGFR-βに対する抗体(R&D Systems, Cat#;MAB1263)及びサイトケラチン14(K-14)に対する抗体(Fitzgerald, Cat#;20R-CP002)を用いて蛍光免疫染色を行った(図16A)。年齢によらず、基底膜直下に、PDGFR-βを発現する細胞が多く存在することが分かった。これにより、基底膜又は表皮側から分泌されたPDGF-BBが、基底膜直下の線維芽細胞に作用しうることが確かめられた。
Claims (10)
- 表皮細胞におけるラミニン511の発現量を指標とする、表皮基底膜安定化剤のスクリーニング方法。
- 前記表皮基底膜安定化剤が、表皮基底幹細胞の減少を抑制可能な薬剤であるか、又は増殖を促進可能な薬剤である、請求項1に記載の方法。
- 候補薬剤を含む培養培地中で表皮細胞を培養する工程、
表皮細胞におけるラミニン511の発現量を測定する工程、
対照におけるラミニン511発現量と比較して、ラミニン511の発現量が増加した場合に、候補薬剤が表皮基底膜安定化効果を有すると判定する工程
を含む、請求項1又は2に記載の方法。 - 前記ラミニン511の発現量が、ラミニン511のタンパク質量又はラミニンα5のmRNA、ラミニンβ1のmRNA量、及びラミニンγ1のmRNA量からなる群から選ばれる1以上のmRNA量から決定される、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- ラミニン511の発現量が、ラミニンα5のmRNA量、ラミニンβ1のmRNA量、及びラミニンγ1のmRNA量の合計量から決定される、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。
- 表皮細胞が表皮幹細胞を含む、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。
- 表皮幹細胞が表皮基底幹細胞を含む、請求項6に記載の方法。
- 表皮細胞がMCSP発現細胞を含む、請求項1~7のいずれか一項に記載の方法。
- 表皮細胞が、さらにインテグリンを発現している細胞を含む、請求項1~8のいずれか一項に記載の方法。
- 表皮細胞が胎児由来である、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。
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