JP6993083B2

JP6993083B2 - 環境適合性洗浄剤を使用するウイルス不活性化方法

Info

Publication number: JP6993083B2
Application number: JP2016530926A
Authority: JP
Inventors: スーザンフィッシャー，; チーチェン，; レノーアノーリング，
Original assignee: ジェネンテック，インコーポレイテッド
Priority date: 2013-11-15
Filing date: 2014-11-13
Publication date: 2022-02-04
Anticipated expiration: 2034-11-13
Also published as: KR20160085321A; MX2016006167A; HK1225990A1; EP3068417B1; CN115177759A; CA2930687C; KR102238133B1; PL3068417T3; CA2930687A1; CN105722523A; US10611795B2; US20160333046A1; CN105722523B; JP2017501974A; HRP20240222T1; EP3068417A4; EP3068417A1; JP2022036940A; JP2020063253A; WO2015073633A1

Description

（関連出願との相互参照）
この出願は、その内容の全体が出典明示によりここに援用される２０１３年１１月１５日出願の合衆国仮特許出願第６１／９０５０７５号と２０１４年２月７日出願の合衆国仮特許出願第６１／９３７２８４号の優先権を主張する。

（発明の分野）
本発明は洗浄剤を使用するウイルス不活性化方法を提供する。

薬学的活性物質の生物工学的生産には様々な目的のために補助的物質が必要とされる。生産細胞を溶解し、合成産物を精製のため遊離させ、またウイルス又は細菌汚染からの保護として、洗浄剤が合成段階の最後に使用される。所望される生成物の精製後に生成物精製に使用された増殖培地及びバッファーが不活性化され、廃水に流される。そのような放出物は洗浄剤に対する環境リスクアセスメント（ＥＲＡ）によって推定される環境への懸念を生じさせうる。

薬学的活性物質の生物工学的生産におけるウイルス不活性化のための現在のプロトコルは、しばしばトリトンＸ－１００の使用に依存している。トリトンＸ－１００の分解産物は、エストロゲン様作用が証明されたエコトキシン（ecotoxin）であるオクチルフェノールである。オクチルフェノール排出の定められた限界は０．０１から０．１ｐｐｂである。而して、生物工学プロセスにおけるトリトン－Ｘの使用には、廃棄物流からオクチルフェノールを除去するために複雑で費用が嵩む手段の使用が必要とされうる。必要とされているものは．生物製剤の生産に使用するための環境適合性洗浄剤である。

特許出願と刊行物を含むここで引用された全ての文献はその全体が出典明示により援用される。

本発明は、治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法であって、前記供給流に洗浄剤を加える工程を含み、該洗浄剤が環境適合性である方法を提供する。該方法は、トリトンＸ－１００を使用する方法又は洗浄剤なしの方法と比べて、治療用ポリペプチドの生成物品質を維持する。

幾つかの実施態様では、治療用ポリペプチドの生成物品質は、生成物供給流中の全ポリペプチドの僅か５％の生成物変異体の変化しか生じさせない。幾つかの実施態様では、生成物変異体は、生成物供給流中の全ポリペプチドの５％を越えては増加しない。幾つかの実施態様では、生成物変異体は、サイズ変異体、電荷変異体、酸化変異体、脱アミド変異体、糖化変異体又はグリカンプロファイルが変化した変異体である。幾つかの実施態様では、生成物変異体は酸性及び／又は塩基性生成物変異体である。幾つかの実施態様では、前記供給流に洗浄剤を加える工程は、ポリペプチドの断片化を約５％を越えて増加させない。幾つかの実施態様では、前記供給流に洗浄剤を加える工程は、前記供給流中の凝集を約５％を越えて増加させない。幾つかの実施態様では、前記供給流に洗浄剤を加える工程は、製造プロセスにおけるポリペプチドの収率を約５％を越えて低減させない。

本発明は、治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法であって、前記供給流に洗浄剤を加える工程を含み、該洗浄剤が約０．０１％から約１０％の最終濃度になるまで前記供給流に添加される方法を提供する。幾つかの実施態様では、洗浄剤は約０．３％から約１％の最終濃度になるまで前記供給流に添加される。幾つかの実施態様では、前記供給流は少なくとも約１分から少なくとも約４８時間の間、洗浄剤にさらされる。他の実施態様では、前記供給流は少なくとも約１５分から少なくとも約３時間の間、洗浄剤にさらされる。更に他の実施態様では、前記供給流は少なくとも約１時間の間、洗浄剤にさらされる。本発明の幾つかの実施態様では、前記供給流は約４℃から約３０℃の洗浄剤にさらされる。他の実施態様では、前記供給流は約１５℃から約２０℃の洗浄剤にさらされる。

本発明の幾つかの実施態様では、洗浄剤は非イオン性洗浄剤又は双性イオン洗浄剤である。幾つかの実施態様では、洗浄剤は、約１２から約１５の親水性・親油性バランス（ＨＬＢ）を有する。

本発明の幾つかの実施態様では、洗浄剤はオクチルフェノールを含んでいないか又は生成しない。幾つかの実施態様では、洗浄剤は過酸化物を含んでいないか又は生成しない。

本発明の幾つかの実施態様では、洗浄剤を含む前記供給流は低濁度である。幾つかの実施態様では、前記供給流への洗浄剤の添加は前記供給流の濁度を増加させない。

本発明の幾つかの実施態様では、廃棄の際、洗浄剤の使用から生じる受水体中の洗浄剤の予測環境濃度（ＰＥＣ）は、洗浄剤の予測無影響濃度（ＰＮＥＣ）未満である。更なる実施態様では、ＰＥＣはＰＮＥＣより低い。

本発明の幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤はアルキルグルコシドを含む。更なる実施態様では、アルキルグルコシドはデシルグルコシドである。他の実施態様では、環境適合性洗浄剤はアルコールエトキシレートである。更に他の実施態様では、環境適合性洗浄剤はアルキルポリエチレングリコールエーテルである。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は、ＣＡＳ９００５－６４－５、ＣＡＳ９００５－６５－６、ＣＡＳ１２６－４３－８、ＣＡＳ６８５１５－７３－１、ＣＡＳ５８８４６－７７－８、ＣＡＳ５９１２２－５５－３、ＣＡＳ１１０６１５－４７－９、ＣＡＳ２９８３６－２６－８、ＣＡＳ６４３６６－７０－７、ＣＡＳ６８９３７－６６－６、ＣＡＳ６９２２７－２２－１、ＣＡＳ２５３２２－６８－３、ＣＡＳ２７２５２－７５－１、ＣＡＳ４２９２－１０－８、ＣＡＳ１３２７７８－０８－６、ＣＡＳ１１０６１５－４７－９、ＣＡＳ６８５１５－７３－１、又はＣＡＳ６８４３９－４６－３のＣＡＳ登録番号を有している。

幾つかの実施態様では、洗浄剤は一又は複数の界面活性剤を含む。更なる実施態様では、洗浄剤は一又は複数の界面活性剤、保存料、及びキレート剤を含む。

幾つかの態様では、本発明は、治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法であって、前記供給流に環境適合性洗浄剤を加える工程を含み、前記供給流は回収細胞培養流体を含む方法を提供する。幾つかの実施態様では、洗浄剤は、回収細胞培養流体に添加される。他の実施態様では、前記供給流は捕捉プール又は回収生成物プールを含む。更なる実施態様では、捕捉プール又は回収生成物プールは、アフィニティークロマトグラフィープールである。また更なる実施態様では、捕捉プール又は回収生成物プールは、プロテインＡプール、プロテインＧプール又はプロテインＬプールである。他の実施態様では、捕捉プール又は回収生成物プールは、混合モードクロマトグラフィープールである。更なる実施態様では、捕捉プールはＣａｐｔｏＡｄｈｅｒｅプールである。

本発明の幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は消泡剤と組み合わせて使用される。幾つかの実施態様では、消泡剤はシメチコンである。

幾つかの実施態様では、本発明は、治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法であって、前記供給流に環境適合性洗浄剤を加える工程を含み、ウイルスがエンベロープウイルスである方法を提供する。幾つかの実施態様では、ウイルスは、レトロウイルス、ヘルペスウイルス、フラビウイルス、ポックスウイルス、ヘパドナウイルス、肝炎ウイルス、オルトミクソウイルス、パラミクソウイルス、ラブドウイルス、又はトガウイルスである。幾つかの実施態様では、前記供給流中の洗浄剤のウイルス対数減少値（ＬＲＶ）は約１よりも大きい。更なる実施態様では、ウイルスＬＲＶは約４よりも大きい。幾つかの実施態様では、ＬＲＶは感染性試験に基づいて計算される。更なる実施態様では、感染性試験はプラークアッセイ又はＴＣＩＤ^５０アッセイである。

本発明の幾つかの実施態様では、本方法は、洗浄剤の添加後に前記供給流を濾過する工程を更に含む。幾つかの実施態様では、前記供給流は、洗浄剤の添加後、少なくとも約１５分から少なくとも約４８時間、濾過される。更なる実施態様では、前記供給流は、洗浄剤の添加後、少なくとも約１時間から少なくとも約３時間、濾過される。他の実施態様では、前記供給流は、洗浄剤の添加の約１時間後に濾過される。幾つかの実施態様では、フィルターは限外濾過膜又はデプスフィルターである。

本発明の幾つかの実施態様では、前記供給流は、洗浄剤の添加後にクロマトグラフィーに供される。幾つかの実施態様では、クロマトグラフィーは、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、又は混合モードクロマトグラフィーの一又は複数である。幾つかの実施態様では、アフィニティークロマトグラフィーは、プロテインＡクロマトグラフィー、プロテインＧクロマトグラフィー又はプロテインＬクロマトグラフィーである。他の実施態様では、イオン交換クロマトグラフィーはアニオン交換クロマトグラフィー又はカチオン交換クロマトグラフィーである。他の実施態様では、混合モードクロマトグラフィーはＣａｐｔｏＡｄｈｅｒｅクロマトグラフィーである。

幾つかの態様では、本発明は、治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法であって、前記供給流に環境適合性洗浄剤を加える工程を含み、治療用ポリペプチドが、抗体、イムノアドヘシン、酵素、増殖因子、受容体、ホルモン、調節因子、サイトカイン、Ｆｃ融合ポリペプチド、抗原、又は結合剤である方法を提供する。更なる実施態様では、抗体は、モノクローナル抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、二重特異性抗体、又は抗体断片である。幾つかの実施態様では、治療用ポリペプチドは哺乳動物細胞中で産生される。幾つかの実施態様では、哺乳動物細胞株は、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、又はベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ）細胞、マウスハイブリドーマ細胞、又はマウス骨髄腫細胞である。

図１は様々な混合方法を使用する洗浄剤なしのＭＡｂ１ＨＣＣＦコントロールの洗浄剤混合濁度分析を示す；混合なし（菱形）、撹拌子（矩形）及びオーバーヘッド撹拌機（三角）。

図２は１％ポリソルベート２０（左上）、０．３％ＴｎＢＰを含む１％ポリソルベート２０（右上）、１％ポリソルベート８０（左下）及び０．３％ＴｎＢＰを含む１％ポリソルベート８０（右下）で処理されたＭＡｂ１ＨＣＣＦコントロールの洗浄剤混合濁度分析を示す。混合なし（菱形）、撹拌子（矩形）及びオーバーヘッド撹拌機（三角）、重い撹拌子（ＨＣＣＦコントロール－混合なし）。

図３は１％ＳａｆｅＣａｒｅ（左上）、１％ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ９（右上）、０．１Ｍカプリル酸（左下）及び１％デシルポリグルコシド（右下）で処理されたＭＡｂ１ＨＣＣＦコントロールの洗浄剤混合濁度分析を示す。混合なし（菱形）、撹拌子（矩形）及びオーバーヘッド撹拌機（三角）、重い撹拌子（ＨＣＣＦコントロール－混合なし）。

図４は雰囲気温度で一晩洗浄剤と共にインキュベーションしＭＡｂＳｅｌｅｃｔＳｕｒｅプロテインＡで精製した後のＭＡｂ３のペプチドマッピングを示す。

図５は４０℃で５９日までの様々な時点の間、保持された１０％トリトンＣＧ－１１０安定性試料のＮＭＲスペクトルを示す。

図６は４０℃で５９日までの様々な時点の間、保持された１０％ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９原液安定性試料のＮＭＲスペクトルを示す。

（詳細な説明）
本発明は、環境適合性（環境に優しい）洗浄剤を使用する、治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供する。環境適合性洗浄剤の使用は、治療用ポリペプチドの生成物品質に悪影響を及ぼさない。例えば、環境適合性洗浄剤の使用は、生成物変異体、例えば限定されないが、生成物断片及び凝集体を含むサイズ変異体、酸性及び塩基性変異体を含む電荷変異体、脱アミド変異体、及び糖化変異体の増加をもたらさない。幾つかの態様では、環境適合性洗浄剤の使用は、プロセス不純物、例えばＣＨＯＰ、核酸、浸出プロテインＡ、生成物変異体、エンドトキシン、ウイルス汚染、細胞培養培地成分等々の排出能に悪影響を及ぼさない。

Ｉ．一般的技術
ここに記載され又は参照される技術及び手順は、当業者により一般によく理解され、例えばSambrook等, Molecular Cloning: A Laboratory Manual 3版 (2001) Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.；Current Protocols in Molecular Biology (F.M. Ausubel等編, (2003))；シリーズMethods in Enzymology(Academic Press, Inc.): PCR 2: A Practical Approach (M.J. MacPherson, B.D. Hames及びG.R. Taylor編(1995)), Harlow 及び Lane編(1988) Antibodies, A Laboratory Manual, and Animal Cell Culture (R.I. Freshney編 (1987))；Oligonucleotide Synthesis (M.J. Gait編 1984)；Methods in Molecular Biology, Humana Press; Cell Biology: A Laboratory Notebook (J.E. Cellis編, 1998) Academic Press; Animal Cell Culture (R.I. Freshney) 編, 1987)；Introduction to Cell and Tissue Culture (J.P. Mather 及び P.E. Roberts, 1998) Plenum Press；Cell and Tissue Culture: Laboratory Procedures (A. Doyle, J.B. Griffiths及びD.G. Newell編, 1993-8) J. Wiley and Sons; Handbook of Experimental Immunology (D.M. Weir 及び C.C. Blackwell編)；Gene Transfer Vectors for Mammalian Cells (J.M. Miller 及び M.P. Calos編, 1987)；PCR: The Polymerase Chain Reaction, (Mullis等編, 1994)；Current Protocols in Immunology (J.E. Coligan等編, 1991)；Short Protocols in Molecular Biology (Wiley and Sons, 1999)；Immunobiology (C.A. Janeway 及び P. Travers, 1997)；Antibodies (P. Finch, 1997)；Antibodies: A Practical Approach (D. Catty編, IRL Press, 1988-1989)；Monoclonal Antibodies: A Practical Approach (P. Shepherd 及び C. Dean編, Oxford University Press, 2000)；Using Antibodies: A Laboratory Manual (E. Harlow及びD. Lane (Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1999)；The Antibodies (M. Zanetti及びJ. D. Capra編, Harwood Academic Publishers, 1995)；及びCancer: Principles and Practice of Oncology (V.T. DeVita等編, J.B. Lippincott Company, 1993)に記載されている広く利用されている方法のような一般的な方法を使用して一般に用いられる。

ＩＩ．定義
「洗浄剤」なる用語は、長鎖脂肪族塩基又は酸の塩、あるいは糖などの親水性部分を含み得、親水性性質と疎水性性質の双方を有する薬剤を指す。親水性と疎水性の性質を有するので、洗浄剤は特定の効果を及ぼしうる。ここで使用される場合、洗浄剤は、ウイルスエンベロープを破壊してウイルスを不活性化させる能力を有している。幾つかの例では、洗浄剤は、界面活性剤と一又は複数の他の薬剤、例えばキレート剤及び保存料を含有する組成物であってもよい。

「界面活性剤（surfactant）」又は「界面活性薬剤（surface active agent）」は、疎水性基と親水性基の双方を含み、よって有機溶媒と水性溶媒の双方に半可溶性である化合物、有機化合物、典型的には（しかし必ずしもではない）有機化合物である。界面活性剤は非イオン性、カチオン性又はアニオン性でありうる。

ここで使用される場合、「環境適合性」物質は、環境に対して最小の有害な影響を生じさせる物質である。例えば、環境適合性物質は本質的には動物及び／又は植物生命に対して非毒性であろう。

「予測環境濃度」又は「ＰＥＣ」は、環境中の受水体中に排出される廃棄材料中のある物質の予測濃度である。例えば、治療用タンパク質の調製におけるウイルス不活性化に対して使用される洗浄剤の予測環境濃度は、環境中に放出される廃棄物流中の洗浄剤の濃度である。

「予測無影響濃度」又は「ＰＮＥＣ」は、有害な影響を伴わないで、環境、例えば受水淡水及び／又は海水の生物相へ、放出しても安全である廃棄材料中のある物質の予測濃度である。

「ポリペプチド」及び「タンパク質」なる用語は、任意の長さのアミノ酸のポリマーを意味するためにここでは交換可能に使用される。ポリマーは直鎖状又は分岐状であり得、改変されたアミノ酸を含み得、非アミノ酸が介在されうる。該用語はまた天然に修飾されているか、又は介入により、例えばジスルフィド結合形成、グリコシル化、脂質化、アセチル化、リン酸化、又は任意の他の操作又は修飾、例えば標識成分とのコンジュゲーションなどにより修飾されているアミノ酸ポリマーをも包含する。またその定義に含まれるものは、例えば、（例えば非天然アミノ酸等を含む）アミノ酸の一又は複数のアナログ、並びに当該技術分野で知られている他の修飾を含むポリペプチドである。ここで使用される「ポリペプチド」及び「タンパク質」なる用語は、特に抗体を包含する。

「単離されたポリペプチド」とは、それが発現された細胞又は細胞培養物から回収されたポリペプチドを意味する。

ここで使用される「ポリペプチド電荷変異体」は、ポリペプチドの電荷が変化させられるようにその天然の状態から修飾されているポリペプチドを意味する。幾つかの例では、電荷変異体は親ポリペプチドより酸性である；つまり、親ポリペプチドより低いｐＩを有する。他の例では、電荷変異体は親ポリペプチドより塩基性である；つまり、親ポリペプチドより高いｐＩを有する。そのような修飾は操作され得、あるいは酸化、脱アミド、リジン残基のＣ末端プロセシング、Ｎ末端ピログルタミン酸生成、及び糖化のような自然のプロセスの結果でありうる。幾つかの例では、ポリペプチド電荷変異体は、タンパク質に結合したグリカンが、例えばシアル酸又はその誘導体の添加により、糖タンパク質の電荷が親糖タンパク質と比べて変化するように修飾されている糖タンパク質である。ここで使用される「抗体電荷変異体」とは、抗体又はその断片の電荷が変化させられるように抗体又はその断片がその天然状態から修飾されている抗体又はその断片である。

ここで交換可能に使用される「核酸」は、任意の長さのヌクレオチドのポリマーを意味し、ＤＮＡ及びＲＮＡが含まれる。ヌクレオチドは、デオキシリボヌクレオチド、リボヌクレオチド、修飾されたヌクレオチド又は塩基、及び／又はそれらのアナログ、又はＤＮＡもしくはＲＮＡポリメラーゼにより、もしくは合成反応によりポリマー中に取り込み可能な任意の基質でありうる。ポリヌクレオチドは、修飾されたヌクレオチド、例えばメチル化ヌクレオチド及びそれらのアナログを含みうる。存在するならば、ヌクレオチド構造に対する修飾は、ポリマーの構築の前又は後になされうる。

「単離された核酸」は、その通常の状況から分離され又はその外側の天然には生じない、組換え又は天然に生じる配列を意味しこれを包含する。

「精製された」ポリペプチドとは、それがその天然の環境中に存在するよりも、及び／又は研究室の条件下で最初に製造され及び／又は合成され及び／又は増幅されたときよりも純粋な形態で存在するように、ポリペプチドの純度が増加させられていることを意味する。純度は相対的な用語であり、必ずしも絶対的な純度を意味しない。

「生成物供給流」あるいは「供給流」は、対象の治療用ポリペプチドを含み、様々な不純物もまた含みうるプロセス精製法のために提供される物質又は溶液である。非限定的な例は、例えば、一又は複数の精製プロセス工程の後の、対象の治療用ポリペプチドを含んでいる回収細胞培養流体（ＨＣＣＦ）、又は回収されたプールを含みうる。

「抗体（antibody又はantibodies）」なる用語は、最も広義に使用され、特に、例えば単一モノクローナル抗体（アゴニスト、アンタゴニスト、及び中和抗体を含む）、多エピトープ特異性を有する抗体組成物、ポリクローナル抗体、単鎖抗体、多重特異性抗体（例えば二重特異性抗体）、イムノアドヘシン、及びそれらが所望の生物学的又は免疫学的活性を示す限り抗体の断片を特にカバーする。「免疫グロブリン」（Ｉｇ）なる用語はここでの抗体と交換可能に使用される。

「抗体断片」は、完全長抗体の一部、一般には、その抗原結合又は可変領域を含む。抗体断片の例は、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ(ａｂ')２、及びＦｖ断片；単鎖抗体分子；ダイアボディ；線状抗体；及び抗体断片から形成される多重特異性抗体を含む。

ここで使用される「モノクローナル抗体」なる用語は、実質的に均一な抗体の集団から得られる抗体を意味し、すなわち、集団を構成する個々の抗体が、少量存在しうる天然に生じる可能な突然変異を除いて同一である。モノクローナル抗体は高度に特異的であり、一つの抗原部位に対してのものである。更に、異なる決定基（エピトープ）に対する異なる抗体を含むポリクローナル抗体調製物とは異なり、各モノクローナル抗体は抗原の単一の決定基に対してのものである。それらの特異性に加えて、モノクローナル抗体は、それらが他の抗体で汚染されないで合成されうる点で有利である。「モノクローナル」との修飾語句は、抗体を何か特定の方法で生産することを必要としていると解されるべきではない。例えば、本発明において有用なモノクローナル抗体は、最初にKohler等, Nature, 256:495 (1975)に記載されたハイブリドーマ法によって調製され得、あるいは組換えＤＮＡ法を使用して細菌、真核動物又は植物細胞において作製されうる（例えば米国特許第４８１６５６７号を参照）。「モノクローナル抗体」はまた例えばClackson等, Nature, 352:624-628 (1991)及びMarks等, J. Mol. Biol., 222:581-597 (1991)に記載された技術を使用してファージ抗体ライブラリーから単離することもできる。

ここでのモノクローナル抗体は、重鎖及び／又は軽鎖の一部が、特定の種由来の抗体、あるいは特定の抗体クラス又はサブクラスに属する抗体の対応する配列と同一であるか又は相同性があり、鎖の残りの部分が他の種由来の抗体、あるいは他の抗体クラス又はサブクラスに属する抗体の対応する配列と同一であるか又は相同である「キメラ」抗体、並びにそれが所望の生物的活性を有する限りこのような抗体の断片を特に含む（米国特許第４８１６５６７号;及びMorrison等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 81:6851-6855(1984)）。ここで対象のキメラ抗体には、非ヒト霊長類（例えば旧世界ザル、類人猿等）から由来する可変ドメイン抗原結合配列及びヒト定常領域配列を含む「プリマタイズ（primatized）」抗体を含む。

「ヒト化」抗体は、非ヒト抗体に由来する最小配列を含むキメラ抗体である非ヒト（例えば齧歯類）抗体の型である。大部分では、ヒト化抗体は、レシピエントの高頻度可変領域由来の残基が、マウス、ラット、ウサギ又は非ヒト霊長類のような所望の特異性、親和性、及び能力を有する非ヒト種（ドナー抗体）の高頻度可変領域由来の残基によって置換されたヒト免疫グロブリン（レシピエント抗体）である。ある場合には、ヒト免疫グロブリンのフレームワーク領域（ＦＲ）残基が、対応する非ヒト残基によって置換される。更に、ヒト化抗体は、レシピエント抗体にもドナー抗体にも見出されない残基を含みうる。これらの改変は、抗体の性能を更に洗練させるためになされる。一般に、ヒト化抗体は、全てあるいは実質的に全ての高頻度可変ループが非ヒト免疫グロブリンのものに対応し、全てあるいは実質的に全てのＦＲがヒト免疫グロブリン配列のものである、少なくとも一つ、典型的には二つの可変ドメインの実質的に全てを含むであろう。ヒト化抗体は、場合によっては、免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）、典型的にはヒト免疫グロブリンの定常領域の少なくとも一部を含むであろう。更なる詳細については、Jones等, Nature 321:522-525 (1986)；Riechmann等, Nature 332:323-329 (1988)；及びPresta, Curr. Op. Struct. Biol. 2:593-596 (1992)を参照のこと。

「不純物」は所望されるポリペプチド産物とは異なる物質を意味する。不純物には、限定されないが、宿主細胞物質、例えばＣＨＯＰ；浸出プロテインＡ；核酸；所望されるポリペプチドの変異体、サイズ変異体、断片、凝集体又は誘導体；他のポリペプチド；エンドトキシン；ウイルス汚染物；細胞培地成分等々が含まれる。

「限外濾過」は、静水圧が液体を半透膜に押し付ける膜濾過の一形態である。懸濁固形物と高分子量の溶質が保持される一方、水と低分子量溶質が膜を通過する。幾つかの例では、限外濾過膜は１から１００ｎｍの範囲の細孔径を有している。「限外濾過膜」及び「限外濾過フィルター」なる用語は交換可能に使用されうる。

「ウイルス保持フィルター」、「ウイルスフィルター」、「ウイルス膜」、又は「ウイルス保持膜」は、ウイルス粒子を含んでいる水溶液からのウイルスのサイズベースの除去に対して使用される限外濾過フィルター／膜の一タイプである。特に、ウイルス保持膜は、所望のポリペプチド産物の通過をなお可能にしながら、ウイルスを保持するのに十分な細孔径を有している。

ここで使用される場合、「ファウリング（fouling）」なる用語は、プロセス装置の表面上での望まれない物質の蓄積と形成を意味する。ファウリングは、化学、溶解、腐食及び生物学的過程がまた生じる、複合の非定常の運動量、物質及び熱移動問題として特徴付けることができる。ファウリングは、沈殿、つまりリン酸カルシウム沈殿による場合がある。

ここで使用される場合、「外来性作用因子」はウイルス及び（滅菌グレードフィルターを通過可能な細菌を含む）細菌を包含する。「感染病原体」は外来性作用因子の一タイプである。

ここに記載される発明の態様及び実施態様は、態様及び実施態様を「含む」、「からなる」、「から本質的になる」を含む。

ここで使用される場合、明らかな別の記載がない限り、「ａ」、「ａｎ」等の使用は一又は複数を意味する。

ここでの値又はパラメータについての「約」という記載は、その値又はパラメータ自体に関する実施態様を含む（また記述する）。例えば、「約Ｘ」との記載は「Ｘ」の記載を含む。数値範囲は、その範囲を定める数を包含する。

ＩＩＩ．本発明の方法
本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供する。環境適合性洗浄剤の使用は、供給流中のウイルス汚染を効果的に不活性化しながら、治療用ポリペプチドの生成物品質に悪影響を及ぼさない。例えば、環境適合性洗浄剤の使用は、生成物変異体、例えば限定されないが、生成物断片及び凝集体を含むサイズ変異体、酸性及び塩基性変異体を含む電荷変異体、脱アミド変異体、及び糖化変異体の増加をもたらさない。

典型的には、治療用ポリペプチドの製造プロセスは、宿主細胞中でのポリペプチドの発現を含む。幾つかの例では、宿主細胞は溶解されてポリペプチドを放出する。他の例では、ポリペプチドは培地中に分泌される。所望のポリペプチドを含む回収細胞培養流体が清澄化され、一又は複数のクロマトグラフィーに供せられて、所望のポリペプチドが不純物から精製されうる。クロマトグラフィーは、所望される産物がクロマトグラフィーを通って流れ、不純物がクロマトグラフィーによって保持されるフロースルークロマトグラフィー、及び／又は所望の産物がクロマトグラフィーによって保持され、不純物がクロマトグラフィーを通って流れる結合溶出クロマトグラフィーを含みうる。プロセスのある点において、供給流が濾過されてウイルスが除去されうる。供給流は、所望のポリペプチドに濃縮し、所望のポリペプチドを薬学的製剤に製剤化するために限外濾過及び／又はダイアフィルトレーション工程を受けうる。本発明の環境適合性洗浄剤を使用するウイルス不活性化方法は、製造プロセス中の任意の工程で実施されうる。本発明の幾つかの実施態様では、ウイルスは、ＨＣＣＦに環境適合性洗浄剤を加えることによって不活性化される。本発明の他の方法では、ウイルスは、捕捉プール又は回収生成物プールに環境適合性洗浄剤を加えることによって不活性化される。捕捉プール及び／又は回収生成物プールは、クロマトグラフィー、遠心分離、濾過等々のような、生成物の精製の分離工程における所望の生成物を含む供給流の分配である。本発明の他の方法では、ウイルスは、供給流をウイルス濾過工程に供する前に生成物供給流に環境適合性洗浄剤を供することによって不活性化される。本発明の他の方法では、ウイルスは、供給流をウイルス濾過工程に供した後に生成物供給流に環境適合性洗浄剤を供することによって不活性化される。

本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、ウイルス汚染が効果的に不活性化されながら、治療用ポリペプチドの生成物品質がプロセス中において維持される。本発明の幾つかの実施態様では、供給流中のウイルスを不活性化させるための環境適合性洗浄剤を用いた治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける供給流の処理が、製造プロセスにおける生成物供給流中の全タンパク質の内の生成物変異体の量を、例えば洗浄剤なしの又はトリトンＸ－１００を用いた製造プロセスと比べて、増加させない。幾つかの実施態様では、生成物変異体は、サイズ変異体、電荷変異体、酸化変異体、脱アミド変異体、糖化変異体又はグリカンプロファイルが変化した変異体の何れか一又は複数である。本発明の幾つかの実施態様では、生成物変異体はサイズ変異体である。サイズ変異体は、例えば生成物の分解の結果として、生成物が所望される生成物よりも小さい変異体を含む。他の例では、サイズ変異体は、例えば所望される生成物の凝集の結果として、所望される生成物よりも大きい。幾つかの実施態様では、生成物凝集は、供給流中での二以上の生成物ポリペプチドの凝集である。幾つかの実施態様では、生成物凝集は、供給流中での他のポリペプチドとの生成物ポリペプチドの凝集である。当業者はサイズ変異体の生成を直ぐに測定することができる。例えば、供給流中での生成物ポリペプチドのサイズ変異体の存在は、サイズ排除クロマトグラフィー、ゲル電気泳動法、又はポリペプチドのサイズが直ぐに決定される他の方法によって、決定されうる。本発明の幾つかの実施態様では、供給流中のウイルスを不活性化させるための環境適合性洗浄剤を用いた治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける供給流の処理は、例えば洗浄剤なしの又はトリトンＸ－１００を用いた製造プロセスと比べて、生成物供給流中の全タンパク質の内の生成物サイズ変異体の約５％を越える変化を生じる。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は、環境適合性洗浄剤を用いない、例えば洗浄剤なし又はトリトンＸ－１００の、製造プロセスと比較して、生成物供給流中の全タンパク質の内の生成物サイズ変異体のおよそ１０％、９％、８％、７％、６％、５％、４％、３％、２％、１％、０．１％の何れか未満の増加を生じる。

本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、ウイルス汚染が効果的に不活性化されながら、治療用ポリペプチドの生成物品質がプロセス中において維持される。本発明の幾つかの実施態様では、供給流中のウイルスを不活性化させるための環境適合性洗浄剤を用いた治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける供給流の処理が、製造プロセスにおける生成物変異体の量を、例えば洗浄剤なしの又はトリトンＸ－１００を用いた製造プロセスと比べて、増加させない。幾つかの実施態様では、変異体は荷電変異体である。ポリペプチドの荷電変異体は、ポリペプチドの酸性変異体と親ポリペプチドの塩基性変異体を含みうる。酸性変異体、すなわち親ポリペプチドのｐＩよりも少ないｐＩを持つ変異体の例には、限定されないが、一又は複数のグルタミン及び／又はアスパラギン残基が脱アミドされているポリペプチドが含まれる。塩基性ポリペプチド変異体、すなわち親ポリペプチドのｐＩよりも大きいｐＩを持つ変異体の例には、限定されないが、アスパラギン酸残基がスクシンイミド部分への修飾を受けている変異体が含まれる。電荷変異体についてポリペプチドを分析する方法は当該分野で知られており、例えばｐＨ媒介イオン交換クロマトグラフィー又は電荷不均一性のための等電点電気泳動（例えばｉｃＩＥＦ）による。幾つかの例では、生成物治療用ポリペプチドは、治療用ポリペプチドの電荷変異体の分析前で洗浄剤の添加後に一又は複数のクロマトグラフィーに供される。例えば、抗体は、洗浄剤処理の後で電荷変異体分析（例えばｐＨ媒介イオン交換クロマトグラフィー)の前にプロテインAクロマトグラフィーのようなアフィニティクロマトグラフィーに供せられうる。本発明の幾つかの実施態様では、供給流中のウイルスを不活性化させるための環境適合性洗浄剤を用いた治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける供給流の処理が、例えば洗浄剤なしの又はトリトンＸ－１００を用いた製造プロセスと比べて、生成物供給流中の全タンパク質の内の生成物変異体の約５％を越える変化を生じる。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は、環境適合性洗浄剤を用いない、例えば洗浄剤なし又はトリトンＸ－１００の、製造プロセスと比較して、生成物供給流中の全タンパク質の内の生成物変異体のおよそ１０％、９％、８％、７％、６％、５％、４％、３％、２％、１％、０．１％の何れか未満の増加を生じる。

本発明の幾つかの実施態様では、変異体は脱アミド変異体である。上で検討されたように、脱アミド変異体は、一又は複数のグルタミン及び／又はアスパラギン残基が脱アミドされているポリペプチドを含む。幾つかの実施態様では、生成物ポリペプチドの脱アミドはポリペプチドの電荷の変化を生じさせる。脱アミド変異体についてポリペプチドを分析する方法は当該分野で知られており、例えばｐＨ媒介イオン交換クロマトグラフィー又は等電点電気泳動による。幾つかの例では、生成物治療用ポリペプチドは、治療用ポリペプチドの脱アミド変異体の分析前で洗浄剤の添加後に一又は複数のクロマトグラフィーに供される。例えば、抗体は、洗浄剤処理の後で脱アミド変異体分析（例えばｐＨ媒介イオン交換クロマトグラフィー又は等電点電気泳動）の前にプロテインＡクロマトグラフィーのようなアフィニティクロマトグラフィーに供せられうる。本発明の幾つかの実施態様では、供給流中のウイルスを不活性化させるための環境適合性洗浄剤を用いた治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける供給流の処理が、例えば洗浄剤なしの又はトリトンＸ－１００を用いた製造プロセスと比べて、生成物供給流中の全タンパク質の内の生成物脱アミド変異体の約５％を越える変化を生じる。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は、環境適合性洗浄剤を用いない、例えば洗浄剤なし又はトリトンＸ－１００の、製造プロセスと比較して、生成物供給流中の全タンパク質の内の生成物脱アミド変異体のおよそ１０％、９％、８％、７％、６％、５％、４％、３％、２％、１％、０．１％の何れか未満の増加を生じる。

本発明の幾つかの実施態様では、変異体は酸化変異体である。酸化変異体は、一又は複数の酸素反応性アミノ酸残基、例えばメチオニン、システイン及びチロシンが酸化されているポリペプチドを含む。幾つかの実施態様では、生成物ポリペプチドの酸化はポリペプチドの電荷の変化を生じさせる。酸化された変異体についてポリペプチドを分析する方法は当該分野で知られている。例えば、与えられたポリペプチドの酸化のレベルはＬＣ－質量分析によって決定されうる。幾つかの例では、生成物治療用ポリペプチドは、治療用ポリペプチドの酸化変異体の分析前で洗浄剤の添加後に一又は複数のクロマトグラフィーに供される。例えば、抗体は、洗浄剤処理の後で酸化変異体分析の前にプロテインＡクロマトグラフィーのようなアフィニティクロマトグラフィーに供せられうる。本発明の幾つかの実施態様では、供給流中のウイルスを不活性化させるための環境適合性洗浄剤を用いた治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける供給流の処理は、例えば洗浄剤なしの又はトリトンＸ－１００を用いた製造プロセスと比べて、生成物供給流中の全タンパク質の内の生成物酸化変異体の約５％を越える変化を生じる。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は、環境適合性洗浄剤を用いない、例えば洗浄剤なし又はトリトンＸ－１００の、製造プロセスと比較して、生成物供給流中の全タンパク質の内の生成物酸化変異体のおよそ１０％、９％、８％、７％、６％、５％、４％、３％、２％、１％、０．１％の何れか未満の増加を生じる。

本発明の幾つかの実施態様では、供給流中のウイルスを不活性化させるための環境適合性洗浄剤を用いた治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける供給流の処理が、例えば洗浄剤なしの又はトリトンＸ－１００を用いた製造プロセスと比べて、治療用ポリペプチド生成物の糖化を変化させない。糖化は、様々なタイプの共有結合付加体の形成、例えばグルコースリッチ培養培地での製造中あるいは還元糖が製剤中に存在しているならば貯蔵中においてグルコース又はラクトースがリジン残基の第一級アミンと反応しうる糖化により、酸性変異体を生成させる機構である（Lyubarskay Y等, (2006) Anal Biochem.348:24-39; Huang L等, (2005) Anal Chem. 77:1432-1439）。糖化物質の特徴付けは、ペプチドマッピング解析、液体クロマトグラフィー質量分析（ＬＣ－ＭＳ）及びタンデム質量分析（ＭＳ／ＭＳ）シーケンシング技術によって実施されうる。幾つかの例では、生成物治療用ポリペプチドは、糖化物質の特徴付け前で洗浄剤の添加後に一又は複数のクロマトグラフィーに供される。例えば、糖化抗体は、洗浄剤処理の後で糖化分析（例えばＬＣ－ＭＳ又はＭＳ／ＭＳ）の前にプロテインＡクロマトグラフィーのようなアフィニティクロマトグラフィーに供せられうる。幾つかの実施態様では、治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスの不活性化のための環境適合性洗浄剤の使用は、治療用ポリペプチドの糖化を変化させない。幾つかの実施態様では、親ポリペプチドの糖化は、トリトンＸ－１００を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスと比較して、又は洗浄剤を使用しない治療用ポリペプチドの製造プロセスと比較して、約５％を越えて変わらない。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は、環境適合性洗浄剤を用いない、例えば洗浄剤なし又はトリトンＸ－１００の、製造プロセスと比較して、生成物糖化のおよそ１０％、９％、８％、７％、６％、５％、４％、３％、２％、１％、０．１％の何れか未満の変化を生じる。

本発明の幾つかの実施態様では、供給流中のウイルスを不活性化させるための環境適合性洗浄剤を用いた治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける供給流の処理が、例えば洗浄剤なしの又はトリトンＸ－１００を用いた製造プロセスと比べて、治療用ポリペプチド生成物の糖化パターンに変化を生じさせない。本発明の幾つかの実施態様では、生成物変異体は糖化変異体である。糖化は、一又は複数の単糖単位がポリペプチドに結合している頻繁に観察される翻訳後修飾である。グリカンの３つの主要なタイプはＮ結合、Ｏ結合及びグリコシルホスファチジルイノシトールである。グリコシル化治療用ポリペプチドの例は、単一の保存されたＮ結合グリコシル化部位がＦｃ鎖のＡｓｎ－２９７に見出されるモノクローナル抗体を含む。この部位におけるグリカン構造は補体活性化及び受容体親和性においてある役割を担っている。本発明の幾つかの実施態様では、治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスの不活性化のための環境適合性洗浄剤の使用は治療用ポリペプチドの糖化パターンを変えない。例えば、抗体のようなポリペプチドのグリコシル化パターンを決定する方法は当該分野で知られている；例えばワールドワイドウェブchem.agilent.com/Library/applications/5990-9774EN.pdf.を参照のこと。幾つかの例では、生成物治療用ポリペプチドは、治療用ポリペプチドの糖化パターンの特徴付け前で洗浄剤の添加後に一又は複数のクロマトグラフィーに供される。例えば、糖化抗体は、洗浄剤処理の後で糖化分析（例えばＬＣ－ＭＳ又はＭＳ／ＭＳ）の前にプロテインＡクロマトグラフィーのようなアフィニティクロマトグラフィーに供せられうる。幾つかの実施態様では、治療用ポリペプチド（例えば抗体）の糖化は、トリトンＸ－１００を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスと比較して、又は洗浄剤を使用しない治療用ポリペプチドの製造プロセスと比較して、約５％を越えて変わらない。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は、環境適合性洗浄剤を用いない、例えば洗浄剤なし又はトリトンＸ－１００の、製造プロセスと比較して、生成物糖化パターンのおよそ１０％、９％、８％、７％、６％、５％、４％、３％、２％、１％、０．１％の何れか未満の変化を生じる。

本発明の幾つかの実施態様では、供給流中のウイルスを不活性化させるための環境適合性洗浄剤を用いた治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける供給流の処理が、製造プロセス中の生成物収率を低減させない。例えば、環境適合性洗浄剤を用いた供給流の処理が、ウイルス不活性化のためにトリトンＸ－１００を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセス又は洗浄剤を使用しない治療用ポリペプチドの製造プロセスと比較して、製造プロセス中における治療用ポリペプチドの生成物収率を低減させない。幾つかの実施態様では、治療用ポリペプチド（例えば抗体）の生成物収率は、トリトンＸ－１００を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスと比較して、又は洗浄剤を使用しない治療用ポリペプチドの製造プロセスと比較して、約５％を越えて低減されない。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は、環境適合性洗浄剤を用いない、例えば洗浄剤なし又はトリトンＸ－１００の、製造プロセスと比較して、生成物収率のおよそ１０％、９％、８％、７％、６％、５％、４％、３％、２％、１％、０．１％の何れか未満の低減を生じる。

本発明の幾つかの実施態様では、供給流中のウイルスを不活性化させるための環境適合性洗浄剤を用いた治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける供給流の処理が、製造プロセス中のプロセス不純物の排出能（クリアランス）を変化させない。例えば、環境適合性洗浄剤を用いた供給流の処理が、ウイルス不活性化のためにトリトンＸ－１００を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセス又は洗浄剤を使用しない治療用ポリペプチドの製造プロセスと比較して、製造プロセス中における不純物の排出能を変化させない。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤の使用は、クロマトグラフィー工程、濾過工程、濃縮工程等々のような製造プロセス中の特定の工程におけるプロセス不純物の排出能を変化させない。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤の使用は治療用ポリペプチドの製造プロセスにおけるプロセス不純物全体の排出能を変化させない。プロセス不純物には、ＣＨＯＰ、核酸、浸出プロテインＡ、所望されるポリペプチド以外のポリペプチド、エンドトキシン、ウイルス汚染物、細胞培地成分、及び所望のポリペプチドの変異体、断片、凝集体又は誘導体が含まれる。

幾つかの実施態様では、本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、洗浄剤は供給流に約０．０１％から約１０％の最終濃度まで添加される。幾つかの実施態様では、洗浄剤は供給流に約０．３％から約１％の最終濃度まで添加される。幾つかの実施態様では、洗浄剤は供給流に約０．３％の最終濃度まで添加される。幾つかの実施態様では、洗浄剤は供給流に約０．１％、０．２％、０．３％、０．４％、０．５％、０．６％、０．７％、０．８％、０．９％、１％、２％、０３％、４％、５％、６％、７％、８％、９％、又は１０％より多い最終濃度まで添加される。幾つかの実施態様では、治療用ポリペプチドの生成物品質が維持される。幾つかの実施態様では、ウイルス汚染物が環境適合性洗浄剤によって効果的に不活性化される。

幾つかの実施態様では、本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、供給流は約１分から約４８時間の間、洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、供給流は約１５分から約３時間の間、洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、洗浄剤は約０．３％から約１％の最終濃度まで供給流に添加される。幾つかの実施態様では、供給流は約１時間の間、洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、供給流は、約１分、５分、１５分、３０分、４５分、１時間、２時間、３時間、４時間、５時間、６時間、９時間、１２時間、１６時間、２０時間、２４時間、３０時間、３６時間、４２時間、又は４８時間の何れかを越える間、洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、供給流は、約１分と５分、５分と１５分、１５分と３０分、３０分と４５分、４５分と１時間、１時間と２時間、２時間と３時間、３時間と４時間、４時間と５時間、５時間と６時間、６時間と９時間、９時間と１２時間、１２時間と１６時間、１６時間と２０時間、２０時間と２４時間、２４時間と３０時間、３０時間と３６時間、３６時間と４２時間、又は４２時間と４８時間の何れかの間、洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、治療用ポリペプチドの生成物品質が維持される。幾つかの実施態様では、ウイルス汚染物が環境適合性洗浄剤によって効果的に不活性化される。

幾つかの実施態様では、本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、供給流は約４℃から約３０℃で洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、供給流は約１０℃から約２５℃で洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、供給流は、約１５℃から約２０℃で洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、供給流は、約２０℃で洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、供給流はおよそ雰囲気温度で洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、供給流は、約４℃、５℃、１０℃、１５℃、２０℃、２５℃、又は３０℃で洗浄剤にさらされる。幾つかの実施態様では、治療用ポリペプチドの生成物品質が維持される。幾つかの実施態様では、ウイルス汚染物が環境適合性洗浄剤によって効果的に不活性化される。

幾つかの実施態様では、本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、環境適合性洗浄剤を含む供給流は低濁度のものである。幾つかの実施態様では、本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、洗浄剤の添加は、例えば洗浄剤なしの製造プロセス又はトリトンＸ－１００がウイルスを不活性化させるために使用される製造プロセスと比較して、供給流の濁度に影響を及ぼさない。供給流の濁度を決定する方法は、当該分野において知られており、例えば、１－ｃｍ路長キュベットを備えたＨＰ分光計を使用する。濁度は３４０－３６０ｎｍの平均吸光度として計算される。幾つかの実施態様では、供給流の濁度は、トリトンＸ－１００を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスと比較して、又は洗浄剤を使用しない治療用ポリペプチドの製造プロセスと比較して約５％を越えて増加されない。幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は、環境適合性洗浄剤なし、例えば洗浄剤なし又はトリトンＸ－１００の製造プロセスと比較して供給流の濁度の約１０％、９％、８％、７％、６％、５％、４％、３％、２％、１％、０．１％未満の増加を生じる。

幾つかの実施態様では、本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、供給流は回収細胞培養流体である。幾つかの実施態様では、供給流は捕捉プール又は回収生成物プールを含む。幾つかの実施態様では、アフィニティクロマトグラフィープールである。幾つかの実施態様では、捕捉プール又は回収生成物プールはプロテインＡプール、プロテインＧプール又はプロテインＬプールである。幾つかの実施態様では、捕捉プール又は回収生成物プールは混合モードクロマトグラフィープールである。幾つかの実施態様では、捕捉プールはＣａｐｔｏＡｄｈｅｒｅプールである。

幾つかの実施態様では、本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、供給流が環境適合性洗浄剤の添加後に濾過される。幾つかの実施態様では、供給流は洗浄剤の添加の少なくとも約１５分から少なくとも約４８時間後に濾過される。幾つかの実施態様では、供給流は洗浄剤の添加の少なくとも約１時間から少なくとも約３時間後に濾過される。幾つかの実施態様では、供給流は洗浄剤の添加の約１時間後に濾過される。幾つかの実施態様では、供給流は洗浄剤の添加の約１５分、３０分、４５分、１時間、２時間、３時間、４時間、５時間、６時間、１２時間、１８時間、２０時間、２４時間、３０時間、３６時間、４２時間，又は４８時間の何れか後に濾過される。幾つかの実施態様では、フィルターは、限外濾過膜又はデプスフィルターである。

幾つかの実施態様では、本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、供給流は、洗浄剤の添加後にクロマトグラフィーに供される。幾つかの実施態様では、クロマトグラフィーは、アフィニティクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー（例えば、カチオン交換及び／又はアニオン交換）、疎水性相互作用クロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、又は混合モードクロマトグラフィーの一又は複数である。アフィニティクロマトグラフィー材料の例は、限定されないが、プロテインＡ又はプロテインＧで誘導体化されたクロマトグラフィー材料を含む。アフィニティクロマトグラフィー材料の例は、限定されないが、Ｐｒｏｓｅｐ－ＶＡ、Ｐｒｏｓｅｐ－ＶＡウルトラ・プラス、プロテインＡセファロースファストフロー、ＴｙｏｐｅａｒｌプロテインＡ、ＭＡｂＳｅｌｅｃｔ、ＭＡｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅ及びＭＡｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅＬＸを含む。上記の幾つかの実施態様では、アフィニティクロマトグラフィー材料はアフィニティクロマトグラフィーカラムである。上記の幾つかの実施態様では、アフィニティクロマトグラフィー材料はアフィニティクロマトグラフィー膜である。アニオン交換クロマトグラフィー材料の例は、限定されないが、ＰｏｒｏｓＨＱ５０、ＰｏｒｏｓＰＩ５０、ＰｏｒｏｓＤ、ＭｕｓｔａｎｇＱ、ＱセファロースＦＦ、及びＤＥＡＥセファロースを含む。カチオン交換材料の例は、限定されないが、ＭｕｓｔａｎｇＳ、ＳａｒｔｏｂｉｎｄＳ、ＳＯ３モノリス、ＳセラミックハイパーＤ、ＰｏｒｏｓＸＳ、ＰｏｒｏｓＨＳ５０、ＰｏｒｏｓＨＳ２０、ＳＰＳＦＦ、ＳＰ－セファロースＸＬ（ＳＰＸＬ）、ＣＭセファロースファストフロー、ＣａｐｔｏＳ、ＦｒａｃｔｏｇｅｌＳｅＨｉＣａｐ、ＦｒａｃｔｏｇｅｌＳＯ３、又はＦｒａｃｔｏｇｅｌＣＯＯを含む。ＨＩＣクロマトグラフィー材料の例は、限定されないが、Ｔｏｙｏｐｅａｒｌヘキシル６５０、Ｔｏｙｏｐｅａｒブチル６５０、Ｔｏｙｏｐｅａｒｌフェニル６５０、Ｔｏｙｏｐｅａｒｌエーテル６５０、Ｓｏｕｒｃｅ、Ｒｅｓｏｕｒｃｅ、セファロースＨｉ－Ｔｒａｐ、オクチルセファロース、フェニルセファロースを含む。ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー材料の例は、限定されないが、ＨＡＵｌｔｒｏｇｅｌ、及びＣＨＴヒドロキシアパタイトを含む。混合モードクロマトグラフィー材料の例は、限定されないが、ＣａｐｔｏＡｄｈｅｒｅ、ＱＭＡ、ＭＥＰＨｙｐｅｒｃｅｌ、ＨＥＡＨｙｐｅｒｃｅｌ、ＰＰＡＨｙｐｅｒｃｅｌ、ＣａｐｔｏＭＭＣを含む。

環境適合性洗浄剤
本発明は、環境適合性（環境に優しい）洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供する。環境適合性洗浄剤の使用は、治療用ポリペプチドの生成物品質に悪影響を与えない。幾つかの実施態様では、洗浄剤は非イオン性洗浄剤又は双性イオン洗浄剤である。

幾つかの実施態様では、洗浄剤は、約１２から約１５の親水性・親油性バランス（ＨＬＢ）を有する。幾つかの実施態様では、ＨＬＢは、約１２から約１４、約１２から約１３、約１３から約１４、約１４から約１５、約１２、約１３、約１４、又は約１５の何れか一つである。

幾つかの実施態様では、本発明は、消泡剤と組み合わせて環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供する。消泡剤は当該分野で知られている。幾つかの実施態様では、消泡剤はシメチコンである。

本発明の幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤はアルキルグルコシドである。更なる実施態様では、アルキルグルコシドはデシルグルコシドである。他の実施態様では、環境適合性洗浄剤はアルコールエトキシレートである。更に他の実施態様では、環境適合性洗浄剤はアルキルポリエチレングリコールエーテルである。

幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、環境適合性洗浄剤は、ツイーン２０（ＣＡＳ９００５－６４－５のＣＡＳ登録番号）、ツイーン８０（ＣＡＳ登録番号９００５－６５－６）、ＴＢＰ（ＣＡＳ登録番号１２６－４３－８）、デシルポリグルコシド（ＣＡＳ登録番号６８５１５－７３－１）、デシルβ－Ｄグルコピラノシド（ＣＡＳ登録番号５８８４６－７７－８）、ｎ－デシルβ－Ｄグルコピラノシド（ＣＡＳ登録番号５９１２２－５５－３）、ラウリルグルコシド（ＣＡＳ登録番号１１０６１５－４７－９）、ｎ－オクチルβ－Ｄグルコピラノシド（ＣＡＳ登録番号２９８３６－２６－８）、ＥｃｏＳｕｒｆＥＨ－６（ＣＡＳ登録番号６４３６６－７０－７）、ＥｃｏＳｕｒｆＥＨ－９（ＣＡＳ登録番号６４３６６－７０－７）、ＥｃｏＳｕｒｆＳＡ－７又はＥｃｏＳｕｒｆＳＡ－９（ＣＡＳ登録番号６８９３７－６６－６，ＣＡＳ登録番号６９２２７－２２－１，ＣＡＳ登録番号２５３２２－６８－３）、Ｎａｔｓｕｒｆ２６５（ＣＡＳ登録番号２７２５２－７５－１）、Ｌｕｂｒｉｚｏｌ（ＣＡＳ登録番号４２９２－１０－８）、ＡＰＧ３２５Ｎ（ＣＡＳ登録番号１３２７７８－０８－６）、ＭａｃｋｏｌＤＧ（ＣＡＳ登録番号１１０６１５－４７－９）、トリトンＣＧ１１０（ＣＡＳ登録番号６８５１５－７３－１）、又はＴｏｍｏｄｏｌ９００（ＣＡＳ登録番号６８４３９－４６－３）である。

洗浄剤が本発明の製造プロセスの条件下で環境適合性であるかどうかを決定する方法は当該分野で知られている。例えば、経済協力開発機構は化学品安全性の試験のためのガイドラインを提供している。これらのガイドラインは、例えばワールドワイドウェブoecd.org/chemicalsafety/testing/oecdguidelinesforthetestingofchemicals.htmに見出すことができる。これらガイドラインの例を以下に概説する。

オオミジンコ（ダフニア・マグナ）繁殖試験－ＯＥＣＤ２１１
該試験の第一目的は、オオミジンコの繁殖量に対する化学品の影響を評価することである。この目的のため、試験開始時に２４時間未満の齢の雌ミジンコ（親動物）が、ある範囲の濃度で水に加えられた試験物質に曝される。試験期間は２１日である。試験の終わりに、生産された生存子孫の総数が評価される。親動物の繁殖量は、他の形（例えば、第一日目の子孫から１日１動物当たりに生産される生存子孫の数）で表すことができるが、これらは、試験の終わりに生産された生存子孫の総数に加えて報告されるべきである。他のＯＥＣＤ無脊椎動物繁殖試験ガイドラインと比較して半止水式試験の特定の設計のため、各個々の親動物によって生産された生存子孫の数を数えることも可能である。これは、他のＯＥＣＤ無脊椎動物繁殖試験とは異なり、親動物が試験期間中に偶然に及び／又は不注意に死亡したならば、その子孫の生産をデータ評価から除外することができるようにする。よって、親の死亡率が暴露された複製において生じるならば、死亡率が濃度－応答パターンに従うかどうか、例えば正の傾きを持つ応答対試験物質濃度の有意な回帰があるかどうかが考慮されるべきである（コクラン・アーミテッジ傾向検定のような統計検定をこのために使用することができる）。死亡率が濃度－応答パターンに従わないならば、親の死亡率を持つ複製は試験結果の解析から除外されるべきである。死亡率が濃度－応答パターンに従うならば、親の死亡率が試験物質の作用として割り当てられるべきであり、複製は解析から除外されるべきではない。親動物が試験中に死んだならば、つまり取り扱いミス又は事故で偶然に、あるいは試験物質の作用に関係しない原因不明の出来事のため不注意に死に又は雄になったならば、複製は解析から除外される。繁殖量に対する試験物質の毒性作用は、それぞれ繁殖量にｘ％の減少を生じさせるであろう濃度を推定する非線形回帰によってデータを適切なモデルにフィットさせることによってＥＣｘとして、又は代わりにＮＯＥＣ／ＬＯＥＣ値（OECD 2006, Environmental Health and Safety Publications, Series on Testing and Assessment Number 54. OECD, Paris）として表される。試験濃度は好ましくは使用された作用濃度の最低値をブラケット化すべきであり（例えばＥＣ_１０）、これはこの値が外挿ではなく内挿によって計算されていることを意味する。

淡水藻類及び藍藻類生長阻害試験－ＯＥＣＤ２０１
この試験の目的は、淡水微細藻類及び／又は藍藻類の生長に対する物質の影響を決定することである。対数増殖期試験生物が通常は７２時間の期間にわたって試験物質にさらされる。比較的短い試験期間にもかかわらず、数世代にわたる影響を評価することができる。

システム応答は様々な濃度の試験物質に暴露された一連の藻類培養物（試験単位）における生長の減少である。応答は、同型の暴露されていないコントロール培養物の平均生長と比較された暴露濃度の関数として評価される。毒性作用に対するシステム応答の完全な発現（最適感度）のために、比生長速度の減少を測定するのに十分な期間、栄養十分の条件と連続光の下で非制限的な対数増殖が培養物に許容される。

生長と生長阻害が時間の関数として藻類生物量の測定結果から定量される。藻類生物量は体積当たりの乾燥重量、例えばｍｇ藻類／リットル試験液として定義される。しかしながら、乾燥重量は測定が難しく、よってサロゲートパラメーターが使用される。これらのサロゲートのうち、細胞数がほとんどの場合使用される。他のサロゲートパラメーターは、細胞溶液、蛍光、光学密度等々を含む。測定されたサロゲートパラメーターと生物量の間の換算係数は知られているはずである。

試験エンドポイントは、暴露期間中の生物量の対数増加（平均比生長速度）として表される生長の阻害である。一連の試験液において記録された平均比生長速度から、生長速度の特定のｘ％阻害（例えば５０％）をもたらす濃度が決定され、Ｅ_ｒＣ_ｘ（例えば、Ｅ_ｒＣ_５０）と表される。

このガイドラインにおいて使用された更なる応答変数は収量であり、これは、幾つかの国で特定の規制上の要件を満たすために必要とされる場合がある。それは、暴露期間の終わりの生物量マイナス暴露期間の開始時の生物量として定義される。一連の試験液において記録された収量から、収量の特定のｘ％阻害（例えば、５０％）をもたらす濃度が計算され、ＥｙＣｘ（例えば、ＥｙＣ５０）と表される。

また、最小観察作用濃度（ＬＯＥＣ）と無観察作用濃度（ＮＯＥＣ）が統計的に決定されうる。

ミジンコ急性遊泳阻害試験－ＯＥＣＤ２０２
試験開始時に２４時間未満の齢の幼ミジンコを、４８時間の期間、ある範囲の濃度の試験物質に暴露する。遊泳阻害（固定化）を２４時間目と４８時間目に記録し、コントロール値と比較する。４８時間目のＥＣ_５０を計算するために結果を分析する。２４時間目におけるＥＣ_５０の決定は任意である。

魚類急性毒性試験－ＯＥＣＤ２０３
魚類を好ましくは９６時間の間、試験物質に暴露する。死亡数を２４、４８、７２及び９６時間で記録する。

活性汚泥呼吸阻害試験（炭素及びアンモニウム酸化）－ＯＥＣＤ２０９
合成汚水が給餌された活性汚泥の試料の呼吸数を、３時間の接触時間後に、酸素電極を含む封入セルで測定する。現実的な暴露シナリオを考慮して、より長い接触時間が適している場合もある。試験物質が、例えば加水分解を介して非生物的に、急速に分解するか、あるいは揮発性であり、濃度を十分に維持できない場合、更に短い暴露時間、例えば３０分を使用することができる。活性汚泥の各バッチの感受性は暴露の日に適切な参照物質を用いてチェックされるべきである。該試験は、典型的には、試験物質のＥＣ_ｘ（例えばＥＣ_５０）及び／又は無影響濃度（ＮＯＥＣ）を決定するために使用される。

有機炭素を酸化する微生物による酸素摂取の阻害は、第一期硝化菌によるアンモニウムの亜硝酸への酸化の特異的阻害剤であるＮ－アリルチオ尿素の非存在下及び存在下での酸素の摂取速度を測定することによって、アンモニウムを酸化する微生物によるものとは別個に表されうる。この場合、酸素摂取の速度の阻害パーセントは、試験物質の存在下での酸素摂取の速度を、特異的阻害剤Ｎ－アリルチオ尿素の存在下と非存在下の両方で、試験物質を含まない対応のコントロールの平均酸素摂取速度と比較することによって計算される。

非生物的プロセスから生じる任意の酸素摂取は、活性汚泥を除き、試験物質、合成汚水培地及び水の混合物中の割合を決定することによって、検出されうる。

易生分解性－ＯＥＣＤ３０１
無機培地中の試験物質の溶液又は懸濁液を暗所又は散光中、好気的条件下で接種し、インキュベートする。接種による試験溶液中のＤＯＣの量は、被験物質による有機炭素の量と比較して可能な限り低く保たれるべきである。化学物質の存在下での細胞の内在性活性は内在性コントロールのそれと正確には一致しないが、接種を伴うが試験物質を伴わない並行したブランクを実行することにより、接種の内因性活性が考慮に入れられる。参照化合物は、手順の操作を確認するために並行して実施される。

一般は、分解後にＤＯＣ、ＣＯ_２生産及び酸素摂取量のようなパラメーターの決定が続き、生分解の始まりと終わりの特定を可能にするのに十分に頻繁な間隔で、測定がなされる。自動呼吸計を用いると、測定が連続的である。ＤＯＣがしばしば別のパラメータに加えて測定されるが、これは、通常、試験の開始時と終了時にのみなされる。特定の化学分析をまた使用して、試験物質の一次分解を評価し、生成された任意の中間物質の濃度を決定することもできる。

通常、試験は２８日間続く。しかしながら、試験は、２８日より前に、すなわち、生分解曲線が少なくとも３回の測定に対してプラトーに達すると直ぐに、終了される場合もある。生分解が開始されたが、２８日目までにはプラトーに到達していないことを曲線が示している場合、試験はまた２８日を超えて延長される場合があるが、そのような場合、化学物質は易生分解性として分類されないであろう。

幾つかの実施態様では、本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、洗浄剤は過酸化物を含まないか又は生成しない。洗浄剤の過酸化物量を決定する方法は当該分野で知られている。例えば、ＥＭＤミリポア比色過酸化物試験を使用して、ある洗浄剤の過酸化物レベルを決定することができる。本発明の幾つかの実施態様では、そのある洗浄剤は、洗浄剤中の過酸化物のレベルが約０．５ｐｐｍ、０．４ｐｐｍ、０．３ｐｐｍ、０．２ｐｐｍ、又は０．１ｐｐｍの何れかより少ないならば、過酸化物を含んでいない。

幾つかの実施態様では、本発明は、環境適合性洗浄剤を使用する治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法を提供し、洗浄剤はオクチルフェノールを含まないか又は生成しない。オクチルフェノールはトリトンＸ－１００の分解産物でありうる。本発明の幾つかの実施態様では、廃水系に排出されるべき供給流は、０．１μｇ／Ｌ、０．０９μｇ／Ｌ、０．０８μｇ／Ｌ、０．０７μｇ／Ｌ、０．０６μｇ／Ｌ、０．０５μｇ／Ｌ、０．０４μｇ／Ｌ、０．０３μｇ／Ｌ、０．０２μｇ／Ｌ、及び０．０１μｇ／Ｌの何れかより少ない濃度でオクチルフェノールを含む。当業者であれば、廃水系に対する洗浄剤の環境影響が、廃水が淡水中に排出されるか海水中に排出されるかで異なりうることを認識しているであろう。例えば、幾つかの実施態様では、廃水系に排出される供給流は、淡水への排出では約０．１μｇ／Ｌ未満で海水への排出では約０．０１μｇ／Ｌ未満の濃度でオクチルフェノールを含有する。

本発明の幾つかの実施態様では、治療用ポリペプチドの製造プロセスに続く廃棄物流中の洗浄剤の予測環境濃度（ＰＥＣ）は、環境の受水体中に排出される廃棄材料中の洗浄剤の予測濃度である。本発明の幾つかの実施態様では、予測無影響濃度（ＰＮＥＣ）は、有害な影響を伴わないで、環境、例えば受水淡水及び／又は海水の生物相へ、放出しても安全である廃棄材料中の洗浄剤の予測濃度である。本発明の幾つかの実施態様では、ＰＥＣはＰＮＥＣよりも小さい。本発明の幾つかの実施態様では、ＰＥＣは、ＰＮＥＣより約０．５倍、１倍、２倍、３倍、４倍、５倍、６倍、７倍、８倍、９倍、１０倍、２０倍、３０倍、４０倍、５０倍、又は１００倍の何れか一つ分、大きい。

本発明の幾つかの実施態様では、環境適合性洗浄剤は界面活性剤と一又は複数の更なる成分を含有する。幾つかの実施態様では、洗浄剤は界面活性剤と一又は複数のキレート剤及び／又は保存料（防腐剤）を含有する。幾つかの実施態様では、キレート剤はエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）である。

ウイルスの不活性化
本発明は、供給流に環境適合性洗浄剤を加えることを含む生成物供給流中のウイルスの不活性化方法を提供する。該ウイルスはここに詳細に記載される任意のウイルス（例えば、エンベロープウイルス）であり得、供給流はここに詳細に記載される任意の供給流、例えば回収細胞培養流体（ＨＣＣＦ）、捕捉プール、又は回収生成物プールでありうる。供給流中の不活性化されるウイルスは、生成物（例えば、ポリペプチド、細胞、組織）の製造に工業的に関連する任意のウイルスでありうる。工業的に関連するウイルスは、当業者に知られている。工業的に関連するウイルスの非限定的な例には、レトロウイルス、ヘルペスウイルス、フラビウイルス、ポックスウイルス、ヘパドナウイルス、肝炎ウイルス、オルソミクソウイルス、パラミクソウイルス、ラブドウイルス、又はトガウイルスが含まれる。
本発明の任意の変形例では、ウイルスは、アデノウイルス、アフリカ豚熱病ラインウイルス、アレナウイルス、アルテリウイルス、アストロウイルス、バキュロウイルス、バドナウイルス、バルナウイルス（barnavirus）、ビルナウイルス、ブロモウイルス、ブンヤウイルス、カリシウイルス、カピロウイルス、カルラウイルス、カリモウィルス、サーコウイルス、クロステロウイルス、コモウイルス、コロナウイルス、コトリコウイルス（cotricovirus）、シストウイルス、デルタウイルス、ダイアンソウイルス、エナモウイルス（enamovirus）、フィロウイルス、フラビウイルス、フロウイルス、フセロウイルス、ジェミニウイルス、ヘパドナウイルス、ヘルペスウイルス、ホルデイウイルス（hordeivirus）、ヒポウイルス（hypovirus）、イデアオウイルス（ideaovirus）、イノウイルス、イリドウイルス、レビウイルス、リポスリックスウイルス（lipothrixvirus）、ルテオウイルス、マクロモウイルス、マラフィボウイルス（marafivovirus）、ミクロウイルス、マイオウイルス、ネクロウイルス（necrovirus）、ノダウイルス、オルソミクソウイルス、パポバウイルス、パラミクソウイルス、パーティティウイルス（partitivirus）、パルボウイルス、フィコドナウイルス、ピコルナウイルス、プラマウイルス（plamavirus）、ポドウイルス、ポリドナウイルス、ポテックスウイルス、ポティウイルス、ポックスウイルス、レオウイルス、レトロウイルス、ラブドウイルス、リジディオウイルス、セクェウイルス（sequevirus）、シホウイルス（siphovirus）、ソベモウイルス、テクティウイルス、テヌイウイルス、テトラウイルス、トバマウイルス（tobamavirus）、トブラウイルス、トガウイルス、トンブスウイルス、トティウイルス、トリコウイルス、ティモウイルス、及びウンブラウイルスからなる群から選択される。変形態様では、本発明は、供給流に環境適合性洗浄剤を加えることを含む供給流中のサブウイルス体（subviral agent）を不活性化する方法を提供する。幾つかの態様では、サブウイルス体は、ウイロイド又はサテライトである。他の変形態様では、本発明は、供給流に環境適合性洗浄剤を加えることを含む供給流中のウイルス様物質を不活性化する方法を提供する

供給流中のウイルスの不活性化は当該分野で知られている方法を使用して測定することができる。本発明の幾つかの実施態様では、ウイルス不活性化は対数減少値（ＬＲＶ）で表される。ＬＲＶは、
ＬＲＶ＝ｌｏｇ_１０×（洗浄剤での処理後の供給流中の総ウイルス／洗浄剤での処理前の供給流中の総ウイルス）
として計算された。

本発明の幾つかの実施態様では、供給流中の環境適合性洗浄剤のＬＲＶは約１より大きい。本発明の幾つかの実施態様では、供給流中の環境適合性洗浄剤のＬＲＶは約４より大きい。本発明の幾つかの実施態様では、供給流中の環境適合性洗浄剤のＬＲＶは約１、２、３、４、５、６の何れか一よりも大きい。本発明の幾つかの実施態様では、供給流中の環境適合性洗浄剤のＬＲＶは、１と２、１と３、１と４、１と５、１と６、２と３、２と４、２と５、３と４、３と５、３と６、４と５、４と６、あるいは５と６の何れか一の間である。

ウイルス活性を測定する方法は当該分野において知られている。例には、限定されないが、ＴＣＩＤ５０アッセイ（つまり、播種された細胞培養物の５０％に病理学的変化を生じる組織培養感染量中央値の決定）及びプラークアッセイが含まれる。他の既知の方法には、例えば、細胞増殖形質転換を生じさせる能力を持つ非プラーク形成ウイルスの生物活性の力価を決定するために使用することができる形質転換アッセイ；又は単層の感染細胞内のウイルス抗原を検出するために抗体染色法の使用に依存する蛍光フォーカスアッセイ；あるいは（プラークアッセイの代替として）単層細胞を感染させないウイルスを含む多くのウイルスの力価を決定するために使用することができるエンドポイント希釈アッセイ；あるいは逆転写酵素又はウイルスプロテアーゼのようなウイルスコード化酵素が測定されるウイルス酵素アッセイが含まれうる。

発明のポリペプチド
ここで詳細に説明された製造プロセス及び方法によって製造され、ここで提供される組成物中に存在するポリペプチドは、該ポリペプチドを生産するために使用される宿主細胞に対して同属であり得、又は好ましくは、チャイニーズハムスター卵巣細胞によって産生されるヒトタンパク質、又は哺乳動物細胞によって産生される酵母ポリペプチドのような、利用されている宿主細胞に対して外因性であり得、これはそれらが異種性、つまり外来性であることを意味する。幾つかの実施態様では、哺乳動物細胞株は、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、又はベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ）細胞、マウスハイブリドーマ細胞、又はマウス骨髄腫細胞である。一変形態様では、ポリペプチドは、宿主細胞によって培地中に直接分泌される哺乳動物ポリペプチド（例えば抗体）である。他の変形態様では、ポリペプチドは、そのポリペプチドをコードする単離核酸を含む細胞の溶解によって培地中に放出される。

宿主細胞中で発現できる任意のポリペプチドを本開示に従って産生させることができ、提供される組成物中に存在させうる。ポリペプチドは、宿主細胞に内在性である遺伝子から、又は遺伝子工学によって宿主細胞中に導入されている遺伝子から発現されうる。ポリペプチドは、天然に生じるものであり得、又は別には人の手によって操作され又は選択された配列を有している場合がある。操作されたポリペプチドは、天然に個々に生じる他のポリペプチドセグメントから構築され得、又は天然には生じない一又は複数のセグメントを含みうる。

本発明に従って望ましく発現されうるポリペプチドは、しばしば、興味深い生物学的又は化学的活性に基づいて選択されるであろう。例えば、本発明は、任意の薬学的又は商業的に関連ある酵素、受容体、抗体、ホルモン、調節因子、抗原、結合剤、サイトカイン、Ｆｃ融合ポリペプチド、抗原、イムノアドヘシン等々を発現させるために用いることができる。

様々なポリペプチドが、ここで提供された方法に従って産生され得、ここで提供された組成物中に存在しうる。細菌性ポリペプチドの例は、例えばアルカリホスファターゼ及びβ-ラクタマーゼを含む。哺乳動物ポリペプチドの例は、分子、例えばレニン、ヒト成長ホルモン及びウシ成長ホルモンを含む成長ホルモン；成長ホルモン放出因子；副甲状腺ホルモン；甲状腺刺激ホルモン；リポタンパク質；α－１－アンチトリプシン；インスリンＡ鎖；インスリンＢ鎖；プロインスリン；卵胞刺激ホルモン；カルシトニン；黄体形成ホルモン；グルカゴン；第ＶＩＩＩＣ因子、第ＩＸ因子、組織因子、フォン・ヴィルブランド因子等の凝固因子；プロテインＣ等の抗凝固因子；心房性ナトリウム利尿因子；肺サーファクタント；ウロキナーゼ又はヒト尿もしくは組織型プラスミノーゲン活性化因子（ｔ－ＰＡ）等のプラスミノーゲン活性化因子；ボンベシン；トロンビン；ヘモポイエチン増殖因子；腫瘍壊死因子－α及びβ；エンケファリナーゼ；ＲＡＮＴＥＳ（regulated on activation normally T-cell expressed and secreted）；ヒトマクロファージ炎症性タンパク質（ＭＩＰ－１－α）；ヒト血清アルブミン等の血清アルブミン；ミュラー管抑制因子；レラキシンＡ鎖；レラキシンＢ鎖；プロレラキシン；マウスゴナドトロピン関連ペプチド；β－ラクタマーゼ等の微生物タンパク質；デオキシリボヌクレアーゼ；インヒビン；アクチビン；血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）；ホルモン又は増殖因子の受容体；インテグリン；プロテインＡ又はＤ；リウマチ因子；骨由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、ニューロトロフィン－３、－４、－５、又は－６（ＮＴ－３、ＮＴ－４、ＮＴ－５、又はＮＴ－６）等の神経栄養因子、又はＮＧＦ－β等の神経増殖因子；血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）；ａＦＧＦ及びｂＦＧＦ等の線維芽細胞増殖因子；表皮増殖因子（ＥＧＦ）；ＴＧＦ－β１、ＴＧＦ－β２、ＴＧＦ－β３、ＴＧＦ－β４又はＴＧＦ－β５を含む、ＴＧＦ－α及びＴＧＦ－β等のトランスフォーミング増殖因子（ＴＧＦ）；インスリン様増殖因子－Ｉ及びＩＩ（ＩＧＦ－Ｉ及びＩＧＦ－ＩＩ）；デス（１－３）－ＩＧＦ－Ｉ（脳ＩＧＦ－Ｉ）、インスリン様増殖因子結合タンパク質；ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、及びＣＤ１９等のＣＤタンパク質；エリスロポイエチン；骨誘導因子；イムノトキシン；骨形成タンパク質（ＢＭＰ）；インターフェロン－α、－β、－γ等のインターフェロン；コロニー刺激因子（ＣＳＦ）、例えばＭ－ＣＳＦ、ＧＭ－ＣＳＦ、及びＧ－ＣＳＦ；インターロイキン(ＩＬ)、例えばＩＬ－１からＩＬ－１０；スーパーオキシドジスムターゼ；Ｔ細胞受容体；表面膜タンパク質；崩解促進因子；例えばＡＩＤＳエンベロープの一部等のウイルス抗原；輸送タンパク質；ホーミング受容体；アドレシン；調節タンパク質；抗体；及び上に列挙したポリペプチドの何れかの断片を含む。

原料は、一実施態様では抗体である、少なくとも一つのタンパク質を含むであろう。基本的な４鎖抗体ユニットは、２つの同一の軽（Ｌ）鎖と２つの同一の重（Ｈ）鎖から構成されるヘテロ四量体の糖タンパク質である（ＩｇＭ抗体は、基本的なヘテロ四量体ユニットとそれに付随するＪ鎖と称される付加的なポリペプチドの５つからなり、よって１０の抗原結合部位を含む一方、分泌されたＩｇＡ抗体は、重合して、Ｊ鎖と共に基本的４鎖ユニットの２－５を含む多価集合体を形成することができる）。ＩｇＧの場合、４鎖ユニットは一般に約１５００００ダルトンである。それぞれのＬ鎖は一つの共有ジスルフィド結合によってＨ鎖に結合するが、２つのＨ鎖はＨ鎖アイソタイプに応じて一又は複数のジスルフィド結合により互いに結合する。それぞれのＨ及びＬ鎖はまた規則的な間隔を持った鎖内ジスルフィド結合を持つ。それぞれのＨ鎖は、α及びγ鎖の各々に対しては３つの定常ドメイン（ＣＨ）が、μ及びεアイソタイプに対しては４つのＣＨドメインが続く可変ドメイン（ＶＨ）をＮ末端に有する。それぞれのＬ鎖は、その他端に定常ドメインが続く可変ドメイン（ＶＬ）をＮ末端に有する。ＶＬはＶＨと整列し、ＣＬは重鎖の第一定常ドメイン（ＣＨ１）と整列している。特定のアミノ酸残基が、軽鎖及び重鎖可変ドメイン間の界面を形成すると考えられている。ＶＨとＶＬは共同して対になって、単一の抗原結合部位を形成する。異なるクラスの抗体の構造及び特性に対しては、例えばBasic and Clinical Immunology, ８版, Daniel P. Stites, Abba I. Terr及びTristram G. Parslow(編), Appleton ＆ Lange, Norwalk, CT, 1994, ７１頁及び６章を参照のこと。

任意の脊椎動物種由来のＬ鎖には、その定常ドメインのアミノ酸配列に基づいて、カッパ及びラムダと呼ばれる２つの明確に区別される型の一つを割り当てることができる。その重鎖の定常ドメイン（ＣＨ）のアミノ酸配列に応じて、免疫グロブリンには異なったクラス又はアイソタイプを割り当てることができる。ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ及びＩｇＭという免疫グロブリンの５つの主要なクラスがあり、それぞれα、δ、ε、γ及びμと呼ばれる重鎖を有する。γ及びαクラスは、ＣＨ配列及び機能における比較的小さな差異に基づいてサブクラスに更に分割され、例えば、ヒトは次のサブクラス：ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ１及びＩｇＡ２を発現する。

抗体のパパイン消化は、「Ｆａｂ」断片と呼ばれる２つの同一の抗体結合断片と、直ぐに結晶化する能力を反映して命名された残留「Ｆｃ」断片を産生する。Ｆａｂ断片は、Ｌ鎖全体と、Ｈ鎖の可変領域ドメイン（ＶＨ）、及び一つの重鎖の第一定常ドメイン（ＣＨ１）からなる。各Ｆａｂ断片は抗原結合性に関して一価である、すなわち単一の抗原－結合部位を有する。抗体のペプシン処理により、単一の大きなＦ（ａｂ’）２断片が生じ、これは異なった抗原結合活性を有する２つのジスルフィド結合Ｆａｂ断片にほぼ対応し、抗原を尚も架橋させることができる。Ｆａｂ’断片は、抗体ヒンジ領域からの一又は複数のシステインを含むＣＨ１ドメインのカルボキシ末端に数個の更なる残基を有する点でＦａｂ断片と相違する。Ｆａｂ’－ＳＨは、ここでは定常ドメインのシステイン残基が遊離のチオール基を持つＦａｂ’を意味する。Ｆ（ａｂ’）２抗体断片は、それらの間にヒンジシステインを有するＦａｂ’断片の対として生成された。抗体断片の他の化学的カップリングもまた知られている。

Ｆｃ断片はジスルフィドにより一緒に保持されている双方のＨ鎖のカルボキシ末端部分を含む。抗体のエフェクター機能は、Ｆｃ領域中の配列により決定され、その領域は、所定のタイプの細胞に見出されるＦｃレセプター（ＦｃＲ）によって認識される部分でもある。

「Ｆｖ」は、完全な抗原認識及び抗原結合部位を含む最小の抗体断片である。この断片は、密接に非共有結合した一の重鎖と一の軽鎖の可変領域の二量体からなる。これら２つのドメインの折り畳みから、抗原結合のためのアミノ酸残基に寄与し、抗体に対する抗原結合特異性を付与する６つの高頻度可変ループ（Ｈ及びＬ鎖から、それぞれ３つのループ）が生じる。しかしながら、単一の可変ドメイン（又は抗原に特異的な３つのＣＤＲのみを含んでなるＦｖの半分）でさえ、結合部位全体よりは低い親和性であるが、抗原を認識し結合する能力を持つ。

「ｓＦｖ」又は「ｓｃＦｖ」とも略称される「単鎖Ｆｖ」は、単一のポリペプチド鎖内に結合したＶＨ及びＶＬ抗体ドメインを含む抗体断片である。好ましくは、ｓＦｖポリペプチドはＶＨ及びＶＬドメイン間にポリペプチドリンカーを更に含み、それはｓＦＶが抗原結合に望ましい構造を形成することを可能にする。ｓＦｖの概説については、Pluckthun in The Pharmacology of Monoclonal Antibodies, vol. 113, Rosenburg及びMoore編, Springer-Verlag, New York, pp. 269-315 (1994)；Antibody Engineering, 2版(C. Borrebaeck編, Oxford University Press, 1995を参照のこと。

「ダイアボディ」なる用語は、Ｖドメインの鎖内対形成ではなく鎖間対形成が達成され、その結果二価の断片、すなわち２つの抗原結合部位を有する断片が生じるように、ＶＨとＶＬドメインとの間に短いリンカー（約５～１０残基）を持つｓＦｖ断片（前の段落を参照）を構築することにより調製された小さい抗体断片を意味する。二重特異性ダイアボディは２つの「交差」ｓＦｖ断片のヘテロ二量体であり、２つの抗体のＶＨ及びＶＬドメインが異なるポリペプチド鎖に存在する。ダイアボディは、例えば、欧州特許出願公開第４０４０９７号；国際公開９３／１１１６１号；Hollinger等, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90:6444-6448 (1993)により十分に記載されている。

非ヒト（例えば齧歯類）抗体の「ヒト化」型は、非ヒト抗体に由来する最小配列を含むキメラ抗体である。多くの場合、ヒト化抗体は、レシピエントの高頻度可変領域の残基が、マウス、ラット、ウサギ又は所望の特異性、親和性、及び能力を有する非ヒト霊長類のような非ヒト種（ドナー抗体）からの高頻度可変領域の残基によって置換されているヒト免疫グロブリン（レシピエント抗体）である。幾つかの例では、ヒト免疫グロブリンのフレームワーク領域（ＦＲ）残基が、対応する非ヒト残基によって置換される。更に、ヒト化抗体は、レシピエント抗体にも、もしくはドナー抗体にも見出されない残基を含んでいてもよい。これらの修飾は抗体の特性を更に洗練するためになされる。一般に、ヒト化抗体は、全てあるいは実質的に全ての高頻度可変ループが非ヒト免疫グロブリンのものに対応し、全てあるいは実質的に全てのＦＲが、ヒト免疫グロブリン配列のものである少なくとも一又は典型的には２つの可変ドメインの実質的に全てを含むであろう。また、ヒト化抗体は、場合によっては免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）の少なくとも一部、典型的にはヒト免疫グロブリンのものの少なくとも一部も含む。更なる詳細については、Jones等, Nature 321:522-525(1986)；Riechmann等, Nature 332:323-329(1988)；及びPresta, Curr. Op. Struct. Biol. 2:593-596(1992).Abs等を参照のこと。

ポリペプチドの産生方法
細胞
提供された本方法及び組成物は、動物、酵母又は昆虫細胞を含む、ここに記載の培地中でのポリペプチド（例えば抗体）の増殖及び／又は生産に好適な任意の細胞を用いうる。一態様では、本方法及び組成物の細胞は、細胞培養とポリペプチドの発現に適した任意の哺乳動物細胞又は細胞型である。ここで提供された方法（例えば細胞培養培地中のウイルスを不活性化させる方法）及び組成物は、よって、動物細胞を含む任意の適切な細胞タイプを用いることができる。一態様では、本方法及び組成物は哺乳動物細胞を用いる。本方法及び組成物はまたハイブリドーマ細胞を用いうる。一変形態様では、哺乳動物細胞は、抗体、抗体断片（リガンド結合断片を含む）、及びキメラ抗体のような所望のポリペプチドをコードする外因性単離核酸で形質転換されている非ハイブリドーマ哺乳動物細胞である。一変形態様では、本方法及び組成物は、ヒト網膜芽細胞（PER.C6 (CruCell, Leiden, The Netherlands)）；ＳＶ４０によって形質転換されたサル腎臓ＣＶ１株（ＣＯＳ－７，ＡＴＣＣＣＲＬ１６５１）；ヒト胚腎臓株（２９３又は懸濁培養での増殖のためにサブクローン化された２９３細胞、Graham等, J. Gen Virol., 36:59 (1977)）；ベビーハムスター腎細胞（ＢＨＫ，ＡＴＣＣＣＣＬ１０）；チャイニーズハムスター卵巣細胞／－ＤＨＦＲ（ＣＨＯ, Urlaub及びChasin, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 77:4216 (1980)）；マウスのセルトリ細胞（ＴＭ４, Mather, Biol. Reprod., 23:243-251 (1980)）；サルの腎細胞（ＣＶ１ＡＴＣＣＣＣＬ７０）；アフリカミドリザル腎細胞（ＶＥＲＯ－７６，ＡＴＣＣＣＲＬ－１５８７）；ヒト子宮頸癌細胞（ＨＥＬＡ，ＡＴＣＣＣＣＬ２）；イヌ腎細胞（ＭＤＣＫ，ＡＴＣＣＣＣＬ３４）；バッファローラット肝細胞（ＢＲＬ３Ａ，ＡＴＣＣＣＲＬ１４４２）；ヒト肺細胞（Ｗ１３８，ＡＴＣＣＣＣＬ７５）；ヒト肝細胞（ＨｅｐＧ２，ＨＢ８０６５）；マウス乳腺腫瘍（ＭＭＴ０６０５６２，ＡＴＣＣＣＣＬ５１）；ＴＲＩ細胞（Mather等, Annals N.Y. Acad. Sci., 383:44-68 (1982)）；ＭＲＣ５細胞；ＦＳ４細胞；及びヒト肝癌株（ＨｅｐＧ２）からなる群から選択される哺乳動物細胞を用いる。特定の変形態様では、本方法及び組成物はＣＨＯ細胞を用いる。特定の変形態様では、ＣＨＯ細胞株の培養とＣＨＯ細胞株からのポリペプチド（例えば抗体）の発現が用いられる。ポリペプチド（例えば抗体）は、そのポリペプチドが単離され及び／又は精製されうるここに開示の培地中に分泌され得、あるいはそのポリペプチドは、そのポリペプチドをコードする単離核酸を含む細胞の溶解によりここに開示された培地中に放出されうる。

組換え脊髄動物細胞培養における興味あるポリペプチドの合成に適合させるのに適した方法、ベクター、及び宿主細胞は、例えばGething等, Nature, 293:620-625 (1981); Mantei等, Nature, 281:40-46 (1979); Levinson等；ＥＰ１１７０６０；及びＥＰ１１７０５８に記載されている。ポリペプチドの哺乳動物細胞培養発現のための特に有用なプラスミドはｐＲＫ５（ＥＰ公開公報番号３０７２４７）又はｐＳＶＩ６Ｂ（１９９１年６月１３日公開のＰＣＴ公開番号ＷＯ９１／０８２９１）である。

宿主細胞は、発現又はクローニングベクターで形質転換され、プロモーターの誘導、形質転換体の選択、又は所望の配列をコードする遺伝子の増幅に適するように修飾された栄養培地で培養される。哺乳動物細胞の場合、Graham及びvan der Erb, Virology, 52:456-457 (1978)のリン酸カルシウム沈殿法か、又はHawley-Nelson, Focus 15:73 (1193)のリポフェクタミンTM（Gibco BRL）法が好ましい。哺乳動物細胞宿主系形質転換の一般的な態様は、Ａｘｅｌの１９８３年８月１６日発行の米国特許第４３９９２１６号に記載されている。哺乳動物細胞を形質転換するための様々な技術については、Keown等, Methods in Enzymology (1989), Keown等, Methods in Enzymology, 185:527-537 (1990)、及びMansour等, Nature, 336:348-352 (1988)を参照のこと。

本方法及び組成物は、細胞培養中でモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマの使用も包含する。モノクローナル抗体は、免疫化された動物から免疫細胞（典型的には脾臓細胞又はリンパ節組織からのリンパ球）を回収し、常套的な形、例えば骨髄腫細胞との融合又はエプスタイン－バー（ＥＢ）ウィルス形質転換により、細胞を不死化し、所望の抗体を発現するクローンをスクリーニングすることにより、調製される。Kohler及びMilstein, Eur. J. Immunol., 6:511 (1976)によって元々は記載され、Hammerling等, In:Monoclonal Antibodies and T-Cell Hybridomas, Elsevier, N.Y., pp. 563-681 (1981)によっても記載されているハイブリドーマ技術が、多くの特異的抗原に対して高レベルのモノクローナル抗体を分泌するハイブリッド細胞株を産生させるために広く適用されている。

ポリペプチド
組成物（例えば細胞）及びここで詳細に説明された方法によって生産され、ここで提供された組成物中に存在するポリペプチドは、宿主細胞に対して同属であり得、又は好ましくは、チャイニーズハムスター卵巣細胞によって産生されるヒトタンパク質、又は哺乳動物細胞によって産生される酵母ポリペプチドのような、利用されている宿主細胞に対して外因性であり得、これはそれらが異種性、つまり外来性であることを意味する。一変形態様では、ポリペプチドは、宿主細胞によって培地中に直接分泌される哺乳動物ポリペプチド（例えば抗体）である。他の変形態様では、ポリペプチドは、そのポリペプチドをコードする単離核酸を含む細胞の溶解によって培地中に放出される。

一変形態様では、ポリペプチドは、鎖長がより高レベルの三次及び／又は四次構造をつくるのに十分であるアミノ酸の配列である。一態様では、ポリペプチドは少なくとも約５－２０ｋＤ、あるいは少なくとも約１５－２０ｋＤ、好ましくは少なくとも約２０ｋＤの分子量を有するであろう。

本発明に従って望ましく発現されうるポリペプチドは、しばしば、興味深い生物学的又は化学的活性に基づいて選択されるであろう。本発明のポリペプチドの例は上述した。

例えば、本発明は、任意の薬学的又は商業的に関連ある酵素、受容体、抗体、ホルモン、調節因子、抗原、結合剤等々を発現させるために用いることができる。

細胞増殖及びポリペプチド産生
一般に、細胞は、細胞増殖、維持及び／又はポリペプチド産生の何れかを促進する一又は複数の条件下でここに記載の細胞培養培地の何れかと組み合わされる（接触させられる）。細胞を増殖させポリペプチドを産生させる方法は、細胞と細胞培養培地を収容する培養容器（バイオリアクター）を用いる。培養容器は、ガラス、プラスチック又は金属を含む、細胞培養に適した任意の材料から構成されうる。典型的には、培養容器は、少なくとも１リットルであり、１０、１００、２５０、５００、１０００、２５００、５０００、８０００、１００００リットル以上でありうる。培養プロセス中において調節されうる培養条件には、限定されないが、ｐＨと温度が含まれる。

細胞培養は一般に細胞培養物の生存、増殖及び生存率（維持）に貢献する条件下で初期増殖期において維持される。精確な条件は、細胞型、細胞が由来している生物、及び発現されるポリペプチドの性質と特性に依存して変わるであろう。

初期増殖期における細胞培養の温度は、細胞培養物が生存して残る温度範囲に主に基づいて選択されるであろう。例えば、初期増殖期の間、ＣＨＯ細胞は３７℃で良好に増殖する。一般に、殆どの哺乳動物細胞は約２５℃から４２℃の範囲内で良好に増殖する。好ましくは、哺乳動物細胞は、約３５℃から４０℃の範囲内で良好に増殖する。当業者であれば、細胞の必要性及び生産の要求に依存して、細胞を増殖させる適切な温度又は温度群を選択することができるであろう。

本発明の一実施態様では、初期増殖期の温度は、単一の一定温度に維持される。他の実施態様では、初期増殖期の温度は、ある範囲の温度内に維持される。例えば、温度は初期増殖期中に一定に増加し又は減少しうる。あるいは、温度は、初期増殖期中の様々な時に離散量で増加し又は減少しうる。当業者であれば、単一又は複数の温度が使用されるべきか、温度が一定に又は離散量で調整されるべきかどうかを決定することができるであろう。

細胞は、初期増殖期中、より長い間又はより短い間、増殖させられうる。一変形態様では、細胞は、細胞が乱されない増殖が許容されれば最終的に達する最大生細胞密度の与えられたパーセントである精細胞密度を達成するのに十分な時間の間、増殖させられる。例えば、細胞は、１、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５又は９９パーセントの最大生細胞密度の所望の生細胞密度を達成するのに十分な期間の間、増殖されうる。

他の実施態様では、細胞は、定まった期間の間、増殖が許容される。例えば、細胞培養の開始濃度、細胞が増殖させられる温度、及び細胞の固有の増殖速度に応じて、細胞は０、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０又はそれ以上の日数の間、増殖されうる。ある場合には、細胞は１ヶ月又はそれ以上、増殖が許容されうる。

細胞培養液は、細胞に対する酸素添加及び栄養分の分散を増加させるために初期培養期中に撹拌され又は振盪されうる。本発明によれば、当業者は、限定されないがｐＨ、温度、酸素添加等々を含む初期増殖期中のある内部条件を制御し又は調節することが有益でありうることを理解するであろう。例えば、ｐＨは適切な量の酸又は塩基を供給することによって制御することができ、酸素添加は当該分野でよく知られている散布装置を用いて制御することができる。

最初の培養工程は、シードトレインをつくり出すための、バッチ細胞培養条件が組換え細胞の増殖を高めるために改変されている増殖期である。増殖期は一般に、細胞が一般に迅速に分裂し、例えば増える指数増殖の期間を意味する。この期の間、細胞は、所定の期間、通常は１から４日、例えば１、２、３、又は４日、細胞増殖が最適である条件下で培養される。宿主細胞に対する増殖サイクルの決定は、当業者に知られている方法によって特定の宿主細胞に対して決定されうる。

増殖期では、基本培地と細胞はバッチで培養容器に供給されうる。一態様の培地は、約５％未満又は１％未満又は０．１％未満の血清及び他の動物由来タンパク質を含む。しかしながら、所望されるならば、血清及び動物由来タンパク質を使用することができる。特定の変形態様では、基本培地はウイルスを不活性化させるＨＴＳＴ処理中においてｐＨ約５．０からｐＨ約６．９のｐＨを有する。一態様では、基本培地のｐＨは、細胞培養のポリペプチド生産期の前にウイルスを不活性化させるＨＴＳＴ処理中においてｐＨ約５．０からｐＨ約６．９の間に下げられる。更なる態様では、ついで、培地のｐＨは、細胞培養のポリペプチド生産期のためにｐＨ約６．９からｐＨ約７．２の間にされる。更なる態様では、ついで、培地のｐＨは、細胞培養のポリペプチド生産期のためにＨＴＳＴ処理後にｐＨ約６．９からｐＨ約７．２の間にされる。他の特定の変形態様では、基本培地は、ウイルスを不活性化させるＨＴＳＴ処理中においてホスフェートとカルシウムの全量を約１０ｍＭ未満に制限することを含む。一態様では、培地中のホスフェートとカルシウムの全量は、細胞培養のポリペプチド生産期の前にウイルスを不活性化させるＨＴＳＴ処理中において約１０ｍＭ未満に制限される。更なる態様では、培地中のホスフェートとカルシウムの全量は、ついで、細胞培養のポリペプチド生産期中にポリペプチド生産に十分なレベルまで上げられる。他の変形態様では、基本培地は、ウイルスを不活性化させるＨＴＳＴ処理中においてｐＨ約５．０からｐＨ約６．９のｐＨと約１０ｍＭ未満のホスフェートとカルシウムの全量を有している。一態様では、基本培地のｐＨは、細胞培養のポリペプチド生産期の前にウイルスを不活性化させるＨＴＳＴ処理中においてｐＨ約５．０からｐＨ約６．９の間に下げられ、約１０ｍＭ未満のホスフェートとカルシウムの全量を含む。更なる態様では、培地のｐＨは、ついで、細胞培養のポリペプチド生産期中に、ｐＨ約６．９からｐＨ約７．２の間にされ、培地中のホスフェートとカルシウムの全量はポリペプチド生産に十分なレベルまで上げられる。前記態様の何れかにおいて、基本培地は合成培地（化学的に明らかな培地）である。前記態様の何れかにおいて、基本培地は化学的に明らかではない培地である。欧州特許ＥＰ３０７２４７又は米国特許第６１８０４０１号において特定された範囲の一又は二倍のアミノ酸、ビタミン、微量元素及び他の培地成分を使用することができ、これら文献はその全体が出典明示によりここに援用される。

あるいは、市販培地、例えばハムＦ１０（Sigma）、基礎培地（[MEM], Sigma）、ＲＰＭＩ－１６４０（Sigma）、及びダルベッコ変法イーグル培地（[DMEM], Sigma）が動物細胞の培養に適しており、これにここに詳細に記載される合成培地成分を（例えば、提供されたキットを使用して）補充してもよい。また、その全ての開示の全体が出典明示によりここに援用されるHam及びWallace, Meth. Enz., 58:44 (1979)、Barnes及びSato, Anal. Biochem., 102:255 (1980)、米国特許第４７６７７０４号；第４６５７８６６号；第４９２７７６２号；又は第４５６０６５５号；国際公開第９０／０３４３０号；国際公開第８７／００１９５号；米国特許再発行第３０９８５号；又は米国特許第５１２２４６９号に記載された培地の何れかを宿主細胞の培地として使用することができ、そのそれぞれにここに詳細に記載された合成培地を（例えば、提供されたキットを使用して）補充してもよい。

ここで提供される任意の培地にはまた必要に応じてホルモン及び／又は他の増殖因子（例えばインスリン、トランスフェリン、又は上皮増殖因子）、イオン（例えば、ナトリウム、塩化物、カルシウム、マグネシウム、及びホスフェート）、バッファー（例えばＨＥＰＥＳ）、ヌクレオシド（例えばアデノシン及びチミジン）、微量元素（マイクロモル範囲の最終濃度で通常は存在する無機化合物として定義）、微量金属（例えば鉄及び銅）、及びグルコース又は等価なエネルギー源が補充されうる。任意の他の必要な栄養補助剤を、当業者に知られているであろう適切な濃度でまた含めてもよい。

その増殖の特定の時点で、細胞は生産期の培養開始時に培地に接種するための接種材料を形成しうる。あるいは、生産期は増殖期と連続的でありうる。細胞増殖期には一般にポリペプチド生産期が続く。

ポリペプチド生産期中、細胞培養物は、（増殖期と比較して）細胞培養物の生存と生存率を促し、所望されるポリペプチドの発現に適した第二セットの培養条件下に維持されうる。例えば、続く生産期中に、ＣＨＯ細胞は２５℃から３５℃の範囲内で組換えポリペプチド及びタンパク質をよく発現する。複数の離散温度シフトを用いて、細胞密度又は生存率を増加させ、あるいは組換えポリペプチド又はタンパク質の発現を増加させることができる。ここで使用される場合、「ポリペプチド生産期」又は「タンパク質発現期」なる用語は、細胞培養がバイオ医薬品（例えばポリペプチド）をつくり出す細胞培養期を意味しうる。

細胞は、所望細胞密度又は生産力価に達するまで、続く生産期に維持されうる。一実施態様では、細胞は、組換えポリペプチドに対する力価が最大に達するまで、続く生産期に維持される。他の実施態様では、培養物はこの時点の前に収集されうる。例えば、細胞は、最大生細胞密度の１、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５又は９９パーセントの生細胞密度を達成するのに十分な時間の期間、維持されうる。場合によっては、生細胞密度が最大に達することを可能にし、ついで培養物を収集する前に生細胞密度があるレベルまで減少するのを許容することが望ましい場合がある。

ある場合には、続くポリペプチド生産期中の細胞培養物に、枯渇し又は細胞によって代謝された栄養分又は他の培地成分を補充するのが有益であり又は必要である場合がある。例えば、細胞培養のモニタリング中に枯渇したことが観察された栄養分又は他の培地成分を細胞培養物に補填するのが有利であるかもしれない。ある態様では、一又は複数の枯渇成分は、続く生産期前にカルシウム、ホスフェート、鉄、及び銅を含む。幾つかの態様では、補充培地成分はカルシウム、ホスフェート、鉄、及び銅を含む。あるいは又は加えて、続くポリペプチド生産期前に細胞培養物に補填することが有益であり又は必要である場合がある。幾つかの態様では、続く生産期の前に、細胞培養物にカルシウム、ホスフェート、鉄、及び銅を含む一又は複数の培地成分が補填される。非限定的な例として、細胞培養物にホルモン及び／又は他の増殖因子、特定のイオン（例えば、ナトリウム、塩化物、カルシウム、マグネシウム、及びホスフェート）、バッファー、ビタミン、ヌクレオシド又はヌクレオチド、微量元素（非常に低い最終濃度で通常は存在する無機化合物）、微量金属（例えば鉄及び銅）、アミノ酸、脂質、又はグルコース又は他のエネルギー源を補填することが有益であり又は必要である場合がある。ここで使用される場合、「供給培地」又は「生産培地」なる用語は、細胞培養のポリペプチド生産期中に使用される細胞培養培地を意味する。

ＩＶ．例示的実施態様
１．治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のウイルスを不活性化する方法において、前記供給流に洗浄剤を加える工程を含み、該洗浄剤が環境適合性である、方法。

２．トリトンＸ－１００を使用する方法又は洗浄剤なしの方法と比べて、前記治療用ポリペプチドの生成物品質を維持する、実施態様１に記載の方法。

３．前記治療用ポリペプチドの生成物品質が、生成物供給流中の全ポリペプチドの僅か５％の生成物変異体の変化しか生じさせない、実施態様２に記載の方法。

４．生成物変異体が、生成物供給流中の全ポリペプチドの５％を越えては増加しない、実施態様３に記載の方法。

５．生成物変異体が、サイズ変異体、電荷変異体、酸化変異体、脱アミド変異体、糖化変異体又はグリカンプロファイルが変化した変異体である、実施態様３又は４に記載の方法。

６．生成物変異体が酸性及び／又は塩基性生成物変異体である、実施態様３から５の何れか一項に記載の方法。

７．前記供給流に洗浄剤を加える工程が、ポリペプチドの断片化を約５％を越えて増加させない、実施態様１から６の何れか一項に記載の方法。これは、サイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）によって測定することができる。

８．前記供給流に洗浄剤を加える工程が、前記供給流中の凝集を約５％を越えて増加させない、実施態様１から７の何れか一項に記載の方法。これはＳＥＣによって測定することができる。

９．前記供給流に洗浄剤を加える工程が、製造プロセスにおけるポリペプチドの収率を約５％を越えて低減させない、実施態様１から８の何れか一項に記載の方法。これはＳＥＣによって測定することができる。

１０．洗浄剤が約０．０１％から約１０％の最終濃度になるまで前記供給流に添加される、実施態様１から９の何れか一項に記載の方法。

１１．洗浄剤が約０．３％から約１％の最終濃度になるまで前記供給流に添加される、実施態様１から１０の何れか一項に記載の方法。

１２．前記供給流が少なくとも約１分から少なくとも約４８時間の間、洗浄剤にさらされる、実施態様１から１１の何れか一項に記載の方法。

１３．前記供給流が少なくとも約１５分から少なくとも約３時間の間、洗浄剤にさらされる、実施態様１から１２の何れか一項に記載の方法。

１４．前記供給流が少なくとも約１時間の間、洗浄剤にさらされる、実施態様１から１３の何れか一項に記載の方法。

１５．前記供給流が約４℃から約３０℃の洗浄剤にさらされる、実施態様１から１４の何れか一項に記載の方法。

１６．前記供給流が約１５℃から約２０℃の洗浄剤にさらされる、実施態様１から１５の何れか一項に記載の方法。

１７．洗浄剤が非イオン性洗浄剤又は双性イオン洗浄剤である、実施態様１から１６の何れか一項に記載の方法。

１８．洗浄剤が、約１２から約１５の親水性・親油性バランス（ＨＬＢ）を有する、実施態様１から１７の何れか一項に記載の方法。

１９．洗浄剤がオクチルフェノールを含んでいないか又は生成しない、実施態様１から１８の何れか一項に記載の方法。

２０．洗浄剤が過酸化物を含んでいないか又は生成しない、実施態様１から１９の何れか一項に記載の方法。

２１．洗浄剤を含む前記供給流が低濁度である、実施態様１から２０の何れか一項に記載の方法。これは、３４０－３６０ｎｍの平均吸光度によって測定することができる。

２２．前記供給流への洗浄剤の添加が前記供給流の濁度を増加させない、実施態様１から２１の何れか一項に記載の方法。これは、３４０－３６０ｎｍの平均吸光度によって測定することができる。

２３．廃棄の際、洗浄剤の使用から生じる受水体中の洗浄剤の予測環境濃度（ＰＥＣ）が、洗浄剤の予測無影響濃度（ＰＮＥＣ）未満である、実施態様１から２２の何れか一項に記載の方法。

２４．ＰＥＣがＰＮＥＣより低い、実施態様２３に記載の方法。

２５．環境適合性洗浄剤がアルキルグルコシドを含む、実施態様１から２４の何れか一項に記載の方法。

２６．アルキルグルコシドがデシルグルコシドである、実施態様２５に記載の方法。

２７．環境適合性洗浄剤がアルコールエトキシレートである、実施態様１から２４の何れか一項に記載の方法。

２８．環境適合性洗浄剤がアルキルポリエチレングリコールエーテルである、実施態様１から２４の何れか一項に記載の方法。

２９．環境適合性洗浄剤が、ＣＡＳ９００５－６４－５、ＣＡＳ９００５－６５－６、ＣＡＳ１２６－４３－８、６８５１５－７３－１、ＣＡＳ５８８４６－７７－８、ＣＡＳ５９１２２－５５－３、ＣＡＳ１１０６１５－４７－９、ＣＡＳ２９８３６－２６－８、ＣＡＳ６４３６６－７０－７、ＣＡＳ６８９３７－６６－６、ＣＡＳ６９２２７－２２－１、ＣＡＳ２５３２２－６８－３、ＣＡＳ２７２５２－７５－１、ＣＡＳ４２９２－１０－８、ＣＡＳ１３２７７８－０８－６、ＣＡＳ１１０６１５－４７－９、ＣＡＳ６８５１５－７３－１、又はＣＡＳ６８４３９－４６－３のＣＡＳ登録番号を有している、実施態様１から２４の何れか一項に記載の方法。

３０．洗浄剤が一又は複数の界面活性剤を含む、実施態様１から２９の何れか一項に記載の方法。

３１．洗浄剤が一又は複数の界面活性剤、保存料、及びキレート剤を含む、実施態様１から３０の何れか一項に記載の方法。

３２．前記供給流が回収細胞培養流体を含む、実施態様１から３１の何れか一項に記載の方法。

３３．洗浄剤が、回収細胞培養流体に添加される、実施態様３２に記載の方法。

３４．前記供給流が捕捉プール又は回収生成物プールを含む、実施態様１から３３の何れか一項に記載の方法。

３５．捕捉プール又は回収生成物プールが、アフィニティークロマトグラフィープールである、実施態様３４に記載の方法。

３６．捕捉プール又は回収生成物プールが、プロテインＡプール、プロテインＧプール又はプロテインＬプールである、実施態様３４又は３５に記載の方法。

３７．捕捉プール又は回収生成物プールが、混合モードクロマトグラフィープールである、実施態様３４に記載の方法。

３８．捕捉プールがＣａｐｔｏＡｄｈｅｒｅプールである、実施態様３４又は３７に記載の方法。

３９．洗浄剤が消泡剤と組み合わせて使用される、実施態様１から３８の何れか一項に記載の方法。

４０．消泡剤がシメチコンである、実施態様３９に記載の方法。

４１．ウイルスがエンベロープウイルスである、実施態様１から４０の何れか一項に記載の方法。

４２．ウイルスが、レトロウイルス、ヘルペスウイルス、フラビウイルス、ポックスウイルス、ヘパドナウイルス、肝炎ウイルス、オルトミクソウイルス、パラミクソウイルス、ラブドウイルス、又はトガウイルスである、実施態様１から４１の何れか一項に記載の方法。

４３．前記供給流中の洗浄剤のウイルス対数減少値（ＬＲＶ）が約１よりも大きい、実施態様１から４２の何れか一項に記載の方法。

４４．ウイルスＬＲＶが約４よりも大きい、実施態様１から４３の何れか一項に記載の方法。

４５．ＬＲＶが感染性試験に基づいて計算される、実施態様４３又は４４に記載の方法。

４６．感染性試験がプラークアッセイ又はＴＣＩＤ_５０アッセイである、実施態様４５に記載の方法。

４７．洗浄剤の添加後に前記供給流を濾過する工程を更に含む、実施態様１から４６の何れか一項に記載の方法。

４８．前記供給流が、洗浄剤の添加後、少なくとも約１５分から少なくとも約４８時間、濾過される、実施態様４７に記載の方法。

４９．前記供給流が、洗浄剤の添加後、少なくとも約１時間から少なくとも約３時間、濾過される、実施態様４７又は４８に記載の方法。

５０．前記供給流が、洗浄剤の添加の約１時間後に濾過される、実施態様４７から４９の何れか一項に記載の方法。

５１．フィルターが限外濾過膜又はデプスフィルターである、実施態様４７から５０の何れか一項に記載の方法。

５２．前記供給流が、洗浄剤の添加後にクロマトグラフィーに供される、実施態様１から５１の何れか一項に記載の方法。

５３．クロマトグラフィーが、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、又は混合モードクロマトグラフィーの一又は複数である、実施態様５２に記載の方法。

５４．アフィニティークロマトグラフィーがプロテインＡクロマトグラフィー、プロテインＧクロマトグラフィー又はプロテインＬクロマトグラフィーである、実施態様５３に記載の方法。

５５．イオン交換クロマトグラフィーがアニオン交換クロマトグラフィー又はカチオン交換クロマトグラフィーである、実施態様５３に記載の方法。

５６．混合モードクロマトグラフィーがＣａｐｔｏＡｄｈｅｒｅクロマトグラフィーである、実施態様５３に記載の方法。

５７．治療用ポリペプチドが、抗体、イムノアドヘシン、酵素、増殖因子、受容体、ホルモン、調節因子、サイトカイン、Ｆｃ融合ポリペプチド、抗原、又は結合剤である、実施態様１から５６の何れか一項に記載の方法。

５７．抗体が、モノクローナル抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、二重特異性抗体、又は抗体断片である、実施態様５６に記載の方法。

５８．治療用ポリペプチドが哺乳動物細胞中で産生される、実施態様１から５７の何れか一項に記載の方法。

５９．哺乳動物細胞株が、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、又はベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ）細胞、マウスハイブリドーマ細胞、又はマウス骨髄腫細胞である、実施態様５８に記載の方法。

この明細書に開示された各特徴は、同一、均等、又は類似の目的を果たす代替の特徴に置き換えることができる。よって、別のことが明示的に述べられていない限り、開示された各特徴は均等又は類似の特徴の上位概念の一例に過ぎない。

ここに開示された全ての文献は、あらゆる目的のためにその全体が出典明示によりここに援用される。

次の実施例は、本発明を例証するために提供されるもので、本発明を限定するためではない。

実施例１：洗浄剤の評価
治療用ポリペプチドを精製し、エンベロープウイルスのような不定の作用物質を不活性化するプロセスにおいてトリトンＸ－１００を置換するために多くの洗浄剤をスクリーニングした。代替洗浄剤のための基準は、限定されないが、洗浄剤の非イオン性又は双性イオン性、廃棄可能性、強いウイルス不活性化、コスト、安全性／ＯＳＨＡ、溶解性、粘性、約１２－１５の親水性／親油性バランス、材料入手可能性と供給源、プロセスと生成物品質に対する影響、及び≧２４ヶ月の原料の安定性の何れか一つを含んでいた。洗浄剤の例が表１に示される。

洗浄剤を評価するために、数回のスクリーニングを使用した。

１回目：雰囲気温度で３時間、１％（ｖ／ｖ）までの最終濃度まで候補洗浄剤をモノクローナル抗体（ＭＡｂｓ）の水溶液に加えた。３種のポリペプチド溶液をこれらの研究で使用した。ＭＡｂ１ＨＣＣＦはＭＡｂ１の製造において得られた回収細胞培養流体であり；Ｍａｂ３ＨＣＣＦはＭＡｂ３の製造において得られた回収細胞培養流体であり；ＭＡｂ３ＭＳＳはＭＡｂ３の調製のプロテインＡクロマトグラフィー後の調整されたプール画分であった。洗浄剤を、混合、濁度、生成物収率、及び生成物品質に対するその影響について評価した。

混合研究：試験した洗浄剤は、１％ポリソルベート２０±ＴｎＢＰ、１％ポリソルベート８０±ＴｎＢＰ、１％ＳａｆｅＣａｒｅ１０００、１％ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９、１％ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－６、１％ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－３、１％ＥｃｏｓｕｒｆＳＡ９、１％ＥｃｏｓｕｒｆＳＡ７、０．１Ｍカプリレート、０．５％又は１％ポリグルコシド、及び１％トリトンＸ－１００であった。結果は、洗浄剤を添加しなかったコントロールと比較した。

濁度試料を、０時間、１時間、２時間、３時間、濾過後、濾過１時間後、及び一晩保持後の設定時点で採取した。最終の混合時間の後に０．２μｍフィルターを通して溶液を濾過した。

試料を、ＰｈｙＴｉｐプロテインＡでの精製と続くサイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）、電荷不均一性に対する画像化キャピラリー等電点電気泳動（ｉｃＩＥＦ）、及びグリカン含量に対するキャピラリー電気泳動によって分析した。サイズ排除クロマトグラフィーは低分子量種（例えば、分解産物）と高分子量種（例えば、凝集物）の存在を明らかにする。ｉＣＩＥＦは電荷変異体（例えば、酸性電荷変異体と塩基性電荷変異体）を明らかにする。キャピラリー電気泳動はグリカン構造を明らかにする。チャイニーズハムスター卵巣細胞タンパク質（ＣＨＯＰ）レベルを、社内の多品種ＥＬＩＳＡを使用して試験した。Ｍａｂ１又はＭａｂ３濃度を、プロテインＡＨＰＬＣアッセイを使用し、調整プロテインＡプールに対して２８０ｎｍでの吸光度を使用してＨＣＣＦにおいて測定した。

図１は、様々な混合法を使用する洗浄剤を伴わないＭＡｂ１ＨＣＣＦコントロールの洗浄剤混合濁度分析を示す。未処理の混合ＨＣＣＦの濁度は、混合、濾過、及び一晩のインキュベーション中において変化しないままであった低レベルの濁度を有していた。１％ポリソルベート２０（左上）、０．３％ＴｎＢＰを伴う１％ポリソルベート２０（右上）、１％ポリソルベート８０（左下）及び０．３％ＴｎＢＰを伴う１％ポリソルベート８０（右下）で処理されたＭＡｂ１ＨＣＣＦの洗浄剤混合濁度分析が図２に示される。ポリソルベート２０±ＴＮＢＰ又はポリソルベート８０±ＴＮＢＰで処理されたＨＣＣＦに対しては、濁度が増加し、濾過後に改質した。１％ＳａｆｅＣａｒｅ（左上）、１％ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９（右上）、０．１Ｍカプリレート（左下）及び１％ポリグルコシド（右下）で処理されたＭＡｂ１ＨＣＣＦの洗浄剤混合濁度分析は図３に示される。ＳａｆｅＣａｒｅ又はカプリレートの添加と混合で濁度が増加したが、濁度は濾過及び一晩のインキュベーション後に改質しなかった。ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９又はポリグルコシド試験条件では、濁度の増加は観察されなかった。

ＭＡｂ１ＨＣＣＦの生成物品質に対する洗浄剤混合の結果を表２に示す。高分子量種の増加はＴｎＢＰを伴うポリソルベート２０及びポリソルベート８０で見られた。収率喪失及びＣＨＯＰ還元はカプリレートで見られた。グリカン又はＣＨＯＰへの変化は他の洗浄剤では見られなかった（データは示さず）。

ＭＡｂ３ＨＣＣＦ及びＭＡｂ３ＭＳＳプールの濁度に対する３時間の洗浄剤暴露の結果を表３に示す。有意な濁度は、ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－３及びカプリレート条件に対して観察され、ＴｎＢＰを伴うポリソルベート２０又は８０及びＳａｆｅＣａｒｅでは少ない濁度であった。

表４は、ＭＡｂ３ＨＣＣＦ及び調整プロテインＡプールを使用する洗浄剤スクリーニングに対するＣＨＯＰ及びＤＮＡ結果を示す。カプリレートに対するＨＣＣＦ及びＰｒｏＡプールにおいて沈殿し、４０％の生成物収率損失が生じたＣＨＯＰ及びＤＮＡを除いて影響は観察されなかった。他の試験した洗浄剤では収率損失は確認されなかった（データは示さず）．

表５はＭＡｂ３：ＨＣＣＦ又は調整ＰｒｏＡプールでの洗浄剤スクリーニングにおけるＳＥＣの結果を示す。洗浄剤での処理は雰囲気温度で３時間であった。カプリル酸処理ＨＣＣＦが０．８％へのＨＭＷＳの減少を生じたことを除いて、ＨＭＷ又はＬＭＷ種における有意な変化は観察されなかった。

表６はＭＡｂ３ＨＣＣＦ又は調整ＰｒｏＡプールでの洗浄剤スクリーニングにおけるｉＣＩＥＦの結果を示す。洗浄剤での処理は雰囲気温度で３時間であった。ＥｃｏｓｕｒｆＳＡ－９処理ＰｒｏＡプールに対する酸性ピークの減少、主ピークの増加を除いて、電荷変異体における差は認められなかった。これは試料の取り扱いに起因しているかもしれず、この洗浄剤条件を、ＭＡｂ３を用いた次の実験で再試験したが、電荷プロファイルには変化が認められなかった。

沈殿と収率損失のため、カプリレート及びＥｃｏＳｕｒｆＥＨ－３を更なるスクリーニングから除外した。

２回目：雰囲気温度で一晩、１％（ｖ／ｖ）の最終濃度まで候補洗浄剤をモノクローナル抗体（ＭＡｂｓ）の水溶液に加えた。クロマトグラフィー性能、工程収率、及びＭＡｂ３に対する生成物品質の影響へのその効果について洗浄剤を評価した。生成物品質を、サイズ変異体（ＨＭＷ及びＬＭＷ）を測定するためにＳＥＣＨＰＬＣを、電荷変異体を測定するためにＩＥＣ（カルボキシペプチダーゼ処理を伴う）を使用して、試験した。糖化は、Zhang等（Analytical Chem. 2008, 80: 2379-2390）に記載されているようにボロネートアフィニティクロマトグラフィーを使用して測定した。トリプシンペプチドマッピングをまた用いて、酸化又は脱アミドのようなタンパク質に対する他の変化を解明した。工程不純物の排出能は多品種ＣＨＯＰＥＬＩＳＡ、浸出プロテインＡ（ＬｐＡ）ＥＬＩＳＡ、及びＤＮＡ定量のためのＴａｑＭａｎＰＣＲアッセイを使用して測定した。

表７は、洗浄剤で一晩処理した後、ＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅプロテインＡクロマトグラフィーを使用する精製が続く、ＭＡｂ３ＨＣＣＦを使用する洗浄剤評価を示す。ＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅでの非定型的クロマトグラム及び低工程収率が、ＥｃｏｓｕｒｆＳＡ７処理試料で観察された。ＣＨＯＰ又はＤＮＡ排出能への有意な影響は観察されなかった。洗浄剤処理ＨＣＣＦ中のＤＮＡのレベルは不定であり、これはＤＮＡアッセイにおける試料中の洗浄剤の幾分かの干渉を示しているかも知れない。これは、最終の洗浄剤候補を用いて更に調査されるであろう。浸出プロテインＡのレベルは試験された洗浄剤条件のそれぞれについて同等であった。試験された洗浄剤の何れに対しても糖化プロファイルへの変化は確認されなかった。

図４は、雰囲気温度での一晩の洗浄剤とのインキュベーションとＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅでの精製に続くＭＡｂ３中和プロテインＡプールのペプチドマッピングを示す。生成物品質の差は、トリプシンペプチドマッピングによって評価して、何れの洗浄剤に対しても見られなかった。

表８は、候補洗浄剤への一晩の暴露後のＭＡｂ３ＨＣＣＦのＳＥＣ及びＩＥＣ分析の結果を示す。ＩＥＣ試料は分析前にカルボキシペプチダーゼＢ（ＣｐＢ）で処理した。試験された洗浄剤の何れに対しても生成物品質への影響は見られなかった。

非定型的クロマトグラムと低収率のため、ＥｃｏｓｕｒｆＳＡ－７を更なるスクリーニングから除外した。ポリグルコシドはアルキルグルコシドの混合物であり、更なる研究では個々のアルキルグルコシドに置き換えた。

３回目：雰囲気温度で一晩、１％（ｖ／ｖ）の最終濃度まで候補洗浄剤をモノクローナル抗体（ＭＡｂｓ）の水溶液に加えた。ポリペプチド溶液をこれらの研究において使用した。ＭＡｂ１ＨＣＣＦ、ＭＡｂ１ＭＳＳ、Ｍａｂ３、及びＭＡｂ２ＨＣＣＦ。洗浄剤は、濁度、生成物品質の影響及びプロテインＡクロマトグラフィー後の洗浄剤排出能に対するその効果について評価した。

ＭＡｂ１、ＭＡｂ２、及びＭＡｂ３ＨＣＣＦを雰囲気温度で一晩、１％（ｖ／ｖ）洗浄剤と共にインキュベートした。ついで、ＭＡｂ１を、ＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅクロマトグラフィーを使用して精製した。洗浄剤排出能試験のために、プールした画分をＳＥＣ、ｉＣＩＥＦ、及びＮＭＲによって分析した。濁度、ＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲＥでの収率、及び調整プロテインＡプールの生成物品質に対する結果を表９に示す。１％ポリソルベート＋０．３％ＴｎＢＰで処理されたＨＣＣＦは高濁度とＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅプロテインＡクロマトグラフィーでの低収率を有していた。この条件はまた多量のＨＭＷ生成を生じた。ＬｕｔｅｎｓｏｌＸＰ９０処理試料は、コントロールと比較して、およそ４％高いレベルの酸性変異体を有していた。

プロテインＡクロマトグラフィー中の洗浄剤排出能を、中和プロテインＡプールのＮＭＲによって評価し、表１０に示す。全ての洗浄剤がプロテインＡクロマトグラフィー中、透明ないしは非常に低レベルであった。

同様の分析を、ＭＡｂ３ＨＣＣＦ（表１１）とＭＡｂ２ＨＣＣＦ（表１２）を使用し、ＰｈｙＴｉｐプロテインＡ精製と続くＳＥＣ－ＨＰＬＣ、ｉＣＩＥＦ及びグリカン用のＣＥで実施した。

コントロールに対して、試験した洗浄剤の何れに対しても、ＭＡｂ３では、濁度又は生成物品質の有意な変化は見られなかった。グリカン分布の変化は観察されなかった（データは示さず）。

コントロールに対して、試験した洗浄剤の何れに対しても、ＭＡｂ２では、濁度又は生成物品質の有意な変化は見られなかった。僅かに高い割合の酸性種がＬｕｔｅｎｓｏｌＸＰ９０及びＴｅｒｇｉｔｏｌＬ６４で見られた。グリカン分布の変化は観察されなかった（データは示さず）。

この回の試験から、濁度とＭＡｂ１に対する生成物品質の影響のため、ポリソルベート８０＋ＴｎＢＰを除外した。

２０℃でのＭＡｂ１ＨＣＣＦ中のウイルス不活性化（ｘＭｕＬＶ）について、洗浄剤をまた評価した。洗浄剤を０．３％の最終濃度まで、ＭＡｂ１ＨＣＣＦに加えた。洗浄剤含有材料に５％ｖ／ｖでＸＭｕＬＶを混ぜた。試料を２０℃で３０分から６時間、インキュベートし、モデルレトロウイルスである異種指向性マウス白血病ウイルス（ＸＭｕＬＶ）の存在についてアッセイした。ＸＭｕＬＶの存在は、ＰＧ－４指示細胞を利用するＴＣＩＤ５０アッセイによって決定した。ウイルス不活性化の結果はＬＲＶ（対数減少値）で表し、表１３に示す。

ｘＭｕＬＶ不活性化はポリソルベート８０、ポリソルベート２０又はＴｎＢＰ単独ではあまり効果的ではなかった。沈殿がカプリレート試料では確認された。

溶媒あるなしのポリソルベート８０を、室温でｒＰｒｏｔｅｉｎ１ＣａｐｔｏＡｄｈｅｒｅプールを使用する更に下流のプールでウイルス不活性化（ＸＭｕＬＶ）について評価した。ＸＭｕＬＶ不活性化の結果を表１４に示す。効果的なＸＭｕＬＶ不活性化はポリソルベート８０単独で１時間で得られた。完全なウイルス不活性化は溶媒を伴うポリソルベート８０で５分以内に観察された。

候補洗浄剤によるＭＡｂ２ＨＣＣＦ中のＸＭｕＬＶ不活性化を表１５に示す。完全で効果的なウイルス不活性化が、０．５％及び１％濃度の全ての試験洗浄剤に対して２０℃で１時間で達成された。

０．３％及び０．５％の濃度と１２℃のより低い温度での候補洗浄剤によるＭＡｂ２ＨＣＣＦ及びｒＰｒｏｔｅｉｎ１ＨＣＣＦ中でのＸＭｕＬＶ不活性化を表１６に示す。効果的ではなかったＴｅｒｇｉｔｏｌＬ６４を除いて、０．３％及び０．５％濃度で全ての試験洗浄剤に対して１２℃、１時間で効果的なウイルス不活性化が達成された。よって、ＴｅｒｇｉｔｏｌＬ６４は更なる考慮から除外した。

様々な濃度のトリトンＣＧ－１１０を用いたｒＰｒｏｔｅｉｎ２ＨＣＣＦ中のＸＭｕＬＶ不活性化を表１７に示す。濃度依存性ウイルス不活性化が観察された。０．０５％のトリトンＣＧ－１１０濃度では、不活性化は効果的ではなく、１未満のＬＲＶが得られた。

実施例２発泡緩和のためのシメチコンの使用：ウイルス活性化の影響
トリトンＣＧ１１０に対する発泡問題を緩和するためのシメチコンの使用を、ウイルス不活性化に対する影響について評価した。

洗浄剤（０．３％）を、消泡剤のシメチコンと共に又はシメチコンなしで０．１％の最終濃度までｒＰｒｏｔｅｉｎ３ＨＣＣＦに加えた。試料をウイルス不活性化（ｘＭｕＬＶ）について評価した。結果を表１８に示す。トリトンＣＧ１１０によるｘＭｕＬＶの不活性化に対して０．１％シメチコンによる影響はなかった。

他のエンベロープウイルスを不活性化させる洗浄剤の能力をまた評価した。洗浄剤を０．３％の最終濃度までｒＰｒｏｔｅｉｎ１ＨＣＣＦに加えた。洗浄剤含有材料に５％ｖ／ｖで各ウイルスを別個に混ぜた。試料を１２℃で１及び／又は３時間、インキュベートし、ＸＭｕＬＶ、仮性狂犬病ウイルス（ＰＲＶ）又はウシウイルス性下痢症ウイルス（ＢＶＤＶ）の存在についてアッセイした。ウイルスの存在を、細胞ベースの感染性試験を使用して決定した。ＸＭｕＬＶは、ＰＧ－４指示細胞を利用するＴＣＩＤ_５０アッセイによって決定した。ＰＲＶとＢＶＤＶの存在は、それぞれＣＶ－１及びＢＴ指示細胞を利用するプラークアッセイによって決定した。結果を表１９に示す。ＡＰＧ３２５ＮとトリトンＣＧ１１０は３種全てのウイルスに対して効果的な不活性化をもたらした。

エンベロープウイルスを不活性化させるトリトンＣＧ１１０及びＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９の能力をトリトンＸ－１００の能力と比較した。トリトンＣＧ１１０、トリトンＸ－１００又はＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９を、０．３％の最終濃度でｒＰｒｏｔｅｉｎ２ＨＣＣＦに加えた。洗浄剤含有材料に５％ｖ／ｖでＰＲＶとＢＶＤＶを別個に混ぜた。試料を２０℃で３０分及び１時間、インキュベートし、プラークアッセイを使用して仮性狂犬病ウイルス（ＰＲＶ）又はウシウイルス性下痢症ウイルス（ＢＶＤＶ）の存在についてアッセイした。ウイルスの対数減少値を決定した。結果を表２０に示す。

ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９とトリトンＣＧ１１０は、トリトンＸ－１００に匹敵する効果的な不活性化をもたらした。

実施例３更なる分子を用いたスクリーニング
シメチコンあるなしでの洗浄剤を、生成物品質について更にスクリーニングした。次の条件を試験した。
１．コントロールＨＣＣＦ（洗浄剤なし）
２．ＨＣＣＦ＋０．１％シメチコン
３．ＨＣＣＦ＋ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ９
４．ＨＣＣＦ＋０．７％トリトンＣＧ１１０
５．ＨＣＣＦ＋０．７％トリトンＣＧ１１０＋０．１％シメチコン。

試料を雰囲気温度で１５時間インキュベートし、ついで２－８℃で保存した。試料を、ＰｈｙｔｉｐプロテインＡ精製に続いてＳＥＣ、ｉＣＩＥＦ、及びグリカン分析によって、生成物品質から分析した。ＨＣＣＦは、ＨＣＣＦＭＡｂ４、ＭＡｂ５、ＭＡｂ６、ＭＡｂ７、ＭＡｂ３、ＭＡｂ８、及びＭＡｂ９を含んでいた。結果を表２１－２６に示す。

Ｍａｂ４ＨＣＣＦの洗浄剤±シメチコン処理の結果を表２１に示す。試験した条件のそれぞれについて、生成物品質への影響は確認されなかった。グリカンへの変化は観察されなかった（データは示さず）。

Ｍａｂ５ＨＣＣＦの洗浄剤±シメチコン処理の結果を表２２に示す。試験した条件のそれぞれについて、生成物品質への影響は確認されなかった。グリカンへの変化は観察されなかった（データは示さず）。

Ｍａｂ６ＨＣＣＦの洗浄剤±シメチコン処理の結果を表２３に示す。試験した条件のそれぞれについて、生成物品質への影響は確認されなかった。グリカンへの変化は観察されなかった（データは示さず）。

Ｍａｂ７ＨＣＣＦの洗浄剤±シメチコン処理の結果を表２４に示す。試験した条件のそれぞれについて、生成物品質への有意な影響は確認されなかった。僅かに高い％酸性及び低い％塩基性変異体がトリトンＣＧ－１１０処理試料において観察された。グリカンへの変化は観察されなかった（データは示さず）。

Ｍａｂ８ＨＣＣＦの洗浄剤シメチコン処理の結果を表２５に示す。試験した条件のそれぞれについて、生成物品質への影響は確認されなかった。グリカンへの変化は観察されなかった（データは示さず）。

Ｍａｂ９ＨＣＣＦの洗浄剤シメチコン処理の結果を表２６に示す。試験した条件のそれぞれについて、生成物品質への影響は確認されなかった。グリカンへの変化は観察されなかった（データは示さず）。

実施例４散布研究
検討中の４種の洗浄剤を、発泡と発泡緩和に対するシメチコンの効果について評価した。

評価した洗浄剤は、ＡＰＧ３２５、トリトンＣＧ１１０、ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ９及びＬｕｔｅｎｓｏｌＸＰ９０を含んでいた。２リットル発酵槽において洗浄剤（０．５％）をＨＣＣＦに加えた。溶液を５０ＲＰＭの速度で混合した。発酵槽に１０立方センチメートル毎分（ＳＳＣＭ）の速度で屋内の空気を散布し又は散布しなかった。消泡剤１％シメチコンを２ｍＬ／Ｌ培養物で加えた。

ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ９はより少ない発泡を示し、アルキルグルコシド洗浄剤よりも小さい泡を有していた。消泡剤の添加は全ての泡を除去し、更なる泡は７２時間を越えて再生成しなかった。

トリトンＣＧ１１０は大きな空気の気泡を示した。消泡剤の添加は泡を減少させたがそれを完全には除去しなかった。更なる泡は７２時間を越えて生成しなかった。

ＡＰＧ３２５Ｎは、容器から出て発泡した大きな空気の気泡の迅速な生成を示した。消泡剤の添加は泡に最小の効果しかなく、消泡剤の添加後に更なる泡が生じた。これに対して、散布されなかったＨＣＣＦへのＡＰＧ３２５Ｎの添加はほとんど又は全く泡を生じなかった。

実施例５二種の洗浄剤の安定性
ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ９の不安定性をＮＭＲ解析によって確認した。ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ９の１０％原液を室温と４０℃で保持し、０、７、１５、及び３６日目にＮＭＲによって分析した。結果を表１７に示す。分解と芳香族の生成が検出された。分解と芳香族の生成が検出された。

ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９の不安定性をＮＭＲ解析によって確認した。ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９とトリトンＣＧ－１１０の１０％原液を室温と４０℃で保持し、０、７、１５、及び３０、及び５９日目にＮＭＲによって分析した。ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９分解産物の定量の結果を表２７に示す。ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９に対して分解と芳香族の生成が検出された。図５及び６は、それぞれトリトンＣＧ－１１０とＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９の安定性試料に対するＮＭＲスペクトルを示す。トリトンＣＧ－１１０は安定で、５９日までほとんど変化がなかった。これに対して、ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９溶液の貯蔵中における分解産物の生成は可視化できる。

また、ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ９とトリトンＣＧ１１０を、８週間の過程にわたって洗浄剤の１０％（ｖ／ｖ）水性原液中の過酸化物の生成について分析した。ＥＭＤＭｉｌｌｉｐｏｒｅ比色過酸化物試験１．１０００１．０００１試験を使用した。ｐｐｍでの結果を表２８に示す。原料と原液を雰囲気温度で保存し、フォイルで覆って光から保護した。ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ９原料は開放されており、およそ８ヶ月早く再シールされた。ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ９原料及び１０％原液において過酸化物が検出された。８週間にわたってトリトンＣＧ１１０の原液には検出可能な過酸化物（＜０．５ｐｐｍ）は検出されなかった。

実施例６洗浄剤のＥＨＳ評価
２１の異なった候補材料を環境保健安全についてレビューした。各材料を、その基本的な物理的及び毒性学的特性を決定するために研究した。このＥＨＳ情報は製造メーカー及び政府の文献から取得され、表２９に編集された。

候補材料の５種を更なる生態毒性研究のために選択した：
ＥｃｏｓｕｒｆＥＨ－９
トリトンＣＧ－１１０
Ｔｏｍａｄｏｌ
ＡＰＧ３２５
ＬｕｔｅｎｓｏｌＸＰ－９０

生態毒性研究の目的は、候補材料が水生生物に対して有意な危険をもたらさないであろう最も高い濃度を各候補材料に対して樹立することである。この濃度は予測無影響濃度（ＰＮＥＣ）と称され、候補材料に対する特定のＰＮＥＣを導くために使用される方法は欧州連合のＴｅｃｈｎｉｃａｌＧｕｉｄａｎｃｅＤｏｃｕｍｅｎｔｆｏｒＲｉｓｋＡｓｓｅｓｓｍｅｎｔ，２００３（ＴＧＤ）に詳細に記載されている。

ＰＮＥＣを導くために、５種の候補材料の各々を、活性汚泥呼吸阻害（ＯＥＣＤ２０９）、藻類生長阻害（ＯＥＣＤ２０１）、ミジンコ急性遊泳阻害（ＯＥＣＤ２０２）、ミジンコ慢性繁殖（ＯＥＣＤ２１１）及び魚類急性毒性アッセイ（ＯＥＣＤ２０３）を決定するための経済協力開発機構（ＯＥＣＤ）試験法を使用して評価した。

これらの研究は、プロセス廃水を受水する廃水処理プラントに対するＰＮＥＣ、つまりＰＮＥＣ_ＳＴＰと受水体に対するＰＮＥＣ、つまりＰＮＥＣ_ＲＷの双方を得た。

製造場所での候補材料の使用は、下水処理場に対する予測環境濃度（ＰＥＣ_ＳＴＰ）と称される廃水処理プラントと、受水に対する予測環境濃度（ＰＥＣ_ＲＷ）と称される受水体の双方における候補材料の濃度を生じる。廃水処理プラントは廃水から候補材料の一部、つまりＯＥＣＤの易生分解性試験（ＯＥＣＤ３０１Ｆ）を使用する試験によって候補材料のそれぞれについて計算された量をまた除去する。

５種の候補材料に対するＰＮＥＣとのＰＥＣのこの比較は有用な環境適合性プロファイルを提供する。候補材料は、そのＰＥＣがそのＰＮＥＣより低ければ、環境適合性であると考えられた。

Claims

治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のエンベロープウイルスを不活性化する方法であって、前記供給流を洗浄剤にさらす工程を含み、該洗浄剤が環境適合性であり、前記供給流が回収細胞培養流体、捕捉プール又は回収生成物プールを含み、該環境適合性洗浄剤が、デシルポリグルコシド（ＣＡＳ６８５１５－７３－１）、２－エチルヘキサノールＥＯ－ＰＯ非イオン性界面活性剤（ＣＡＳ６４３６６－７０－７）、又はデシル／ウンデシルグルコシド（ＣＡＳ１３２７７８－０８－６）である、方法。
トリトンＸ－１００を使用する方法又は洗浄剤なしの方法と比べて、前記治療用ポリペプチドの生成物品質を維持する、請求項１に記載の方法。
前記治療用ポリペプチドの生成物品質が、前記生成物供給流中の全ポリペプチドの５％以下の生成物変異体の変化しか生じさせない、請求項２に記載の方法。
前記生成物変異体が、前記生成物供給流中の全ポリペプチドの５％を越えては増加しない、請求項３に記載の方法。
前記生成物変異体が、サイズ変異体、電荷変異体、酸化変異体、脱アミド変異体、糖化変異体又はグリカンプロファイルが変化した変異体である、請求項３又は４に記載の方法。
前記生成物変異体が酸性及び／又は塩基性生成物変異体である、請求項３から５の何れか一項に記載の方法。
前記供給流を前記洗浄剤にさらす工程が、ポリペプチドの断片化を約５％を越えて増加させない、請求項１から６の何れか一項に記載の方法。
前記供給流を前記洗浄剤にさらす工程が、前記供給流中の凝集を約５％を越えて増加させない、請求項１から７の何れか一項に記載の方法。
前記供給流を前記洗浄剤にさらす工程が、製造プロセスにおけるポリペプチドの収率を約５％を越えて低減させない、請求項１から８の何れか一項に記載の方法。
前記洗浄剤が約０．０１％から約１０％の最終濃度になるまで前記供給流に添加される、請求項１から９の何れか一項に記載の方法。
前記洗浄剤が約０．３％から約１％の最終濃度になるまで前記供給流に添加される、請求項１から１０の何れか一項に記載の方法。
前記供給流が少なくとも約１分から少なくとも約４８時間の間、前記洗浄剤にさらされる、請求項１から１１の何れか一項に記載の方法。
前記供給流が少なくとも約１５分から少なくとも約３時間の間、前記洗浄剤にさらされる、請求項１から１２の何れか一項に記載の方法。
前記供給流が少なくとも約１時間の間、前記洗浄剤にさらされる、請求項１から１３の何れか一項に記載の方法。
前記供給流が約４℃から約３０℃の前記洗浄剤にさらされる、請求項１から１４の何れか一項に記載の方法。
前記供給流が約１５℃から約２０℃の前記洗浄剤にさらされる、請求項１から１５の何れか一項に記載の方法。
前記洗浄剤が非イオン性洗浄剤又は双性イオン洗浄剤である、請求項１から１６の何れか一項に記載の方法。
前記洗浄剤が、約１２から約１５の親水性・親油性バランス（ＨＬＢ）を有する、請求項１から１７の何れか一項に記載の方法。
前記洗浄剤がオクチルフェノールを含んでいないか又は生成しない、請求項１から１８の何れか一項に記載の方法。
洗浄剤が過酸化物を含んでいないか又は生成しない、請求項１から１９の何れか一項に記載の方法。
前記洗浄剤を含む前記供給流が低濁度である、請求項１から２０の何れか一項に記載の方法。
前記供給流への前記洗浄剤の添加が前記供給流の濁度を増加させない、請求項１から２１の何れか一項に記載の方法。
廃棄の際、前記洗浄剤の使用から生じる受水体中の前記洗浄剤の予測環境濃度（ＰＥＣ）が、前記洗浄剤の予測無影響濃度（ＰＮＥＣ）未満である、請求項１から２２の何れか一項に記載の方法。
前記ＰＥＣが前記ＰＮＥＣより低い、請求項２３に記載の方法。
前記洗浄剤が一又は複数の界面活性剤を含む、請求項１から２４の何れか一項に記載の方法。
前記洗浄剤が一又は複数の界面活性剤、保存料、及びキレート剤を含む、請求項１から２５の何れか一項に記載の方法。
前記洗浄剤が、回収細胞培養流体に添加される、請求項２６に記載の方法。
前記捕捉プール又は前記回収生成物プールが、アフィニティークロマトグラフィープールである、請求項１から２７の何れか一項に記載の方法。
前記捕捉プール又は前記回収生成物プールが、プロテインＡプール、プロテインＧプール又はプロテインＬプールである、請求項２８に記載の方法。
前記捕捉プール又は前記回収生成物プールが、混合モードクロマトグラフィープールである、請求項２９に記載の方法。
前記捕捉プールがＣａｐｔｏＡｄｈｅｒｅプールである、請求項３０に記載の方法。
前記洗浄剤が消泡剤と組み合わせて使用される、請求項１から３１の何れか一項に記載の方法。
前記消泡剤がシメチコンである、請求項３２に記載の方法。
前記ウイルスが、レトロウイルス、ヘルペスウイルス、フラビウイルス、ポックスウイルス、ヘパドナウイルス、肝炎ウイルス、オルトミクソウイルス、パラミクソウイルス、ラブドウイルス、又はトガウイルスである、請求項１から３３の何れか一項に記載の方法。
前記供給流中の前記洗浄剤のウイルス対数減少値（ＬＲＶ）が約１よりも大きい、請求項１から３４の何れか一項に記載の方法。
前記ＬＲＶが約４よりも大きい、請求項１から３５の何れか一項に記載の方法。
前記ＬＲＶが感染性試験に基づいて計算される、請求項３５又は３６に記載の方法。
前記感染性試験がプラークアッセイ又はＴＣＩＤ５０アッセイである、請求項３７に記載の方法。
前記洗浄剤の添加後に前記供給流を濾過する工程を更に含む、請求項１から３８の何れか一項に記載の方法。
前記供給流が、前記洗浄剤の添加の少なくとも約１５分から少なくとも約４８時間後に濾過される、請求項３９に記載の方法。
前記供給流が、前記洗浄剤の添加の少なくとも約１時間から少なくとも約３時間後に濾過される、請求項３９又は４０に記載の方法。
前記供給流が、前記洗浄剤の添加の約１時間後に濾過される、請求項３９から４１の何れか一項に記載の方法。
前記濾過する工程において使用するフィルターが限外濾過膜又はデプスフィルターである、請求項３９から４２の何れか一項に記載の方法。
前記供給流が、前記洗浄剤の添加後にクロマトグラフィーに供される、請求項１から４３の何れか一項に記載の方法。
前記クロマトグラフィーが、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、又は混合モードクロマトグラフィーの一又は複数である、請求項４４に記載の方法。
前記アフィニティークロマトグラフィーがプロテインＡクロマトグラフィー、プロテインＧクロマトグラフィー又はプロテインＬクロマトグラフィーである、請求項４５に記載の方法。
前記イオン交換クロマトグラフィーがアニオン交換クロマトグラフィー又はカチオン交換クロマトグラフィーである、請求項４５に記載の方法。
前記混合モードクロマトグラフィーがＣａｐｔｏＡｄｈｅｒｅクロマトグラフィーである、請求項４５に記載の方法。
前記治療用ポリペプチドが、抗体、イムノアドヘシン、酵素、増殖因子、受容体、ホルモン、調節因子、サイトカイン、Ｆｃ融合ポリペプチド、抗原、又は結合剤である、請求項１から４８の何れか一項に記載の方法。
前記抗体が、モノクローナル抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、二重特異性抗体、又は抗体断片である、請求項４９に記載の方法。
前記治療用ポリペプチドが哺乳動物細胞中で産生される、請求項１から５０の何れか一項に記載の方法。
前記哺乳動物細胞株が、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、又はベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ）細胞、マウスハイブリドーマ細胞、又はマウス骨髄腫細胞である、請求項５１に記載の方法。
治療用ポリペプチドの製造プロセスにおける生成物供給流中のエンベロープウイルスを不活性化するためのキットであって、洗浄剤を含み、前記供給流が回収細胞培養流体、捕捉プール又は回収生成物プールを含み、該洗浄剤が環境適合性であり、デシルポリグルコシド（ＣＡＳ６８５１５－７３－１）、２－エチルヘキサノールＥＯ－ＰＯ非イオン性界面活性剤（ＣＡＳ６４３６６－７０－７）、又はデシル／ウンデシルグルコシド（ＣＡＳ１３２７７８－０８－６）であり、該生成物供給流が該環境適合性洗浄剤にさらされる、キット。