JP6805139B2 - ワクチンベクターとしての3分節型アレナウイルス - Google Patents
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Description
本出願は、ゲノム中のオープンリーディングフレーム(「ORF」)の再構成を有するアレナウイルスに関する。特に、ウイルスのORFを、該ORFの野生型の位置とは別の位置に保持するよう操作されている、改変アレナウイルスゲノムセグメントが本明細書に記載される。1つのLセグメント及び2つのSセグメント、又は2つのLセグメント及び1つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子もまた、本明細書に記載される。本明細書に記載されるアレナウイルスは、ワクチン及び/又は疾患の治療にかつ/又は免疫療法における使用に適する可能性がある。
(2.1 リンパ球性脈絡髄膜炎ウイルス研究及びヒト疾患)
アレナウイルス科の一員であるリンパ球性脈絡髄膜炎ウイルス(LCMV)は、ウイルス感染症の研究におけるプロトタイプのマウスモデルウイルスである。1930年代にそれが単離されて以来(Rivers及びMcNair Scottの文献、1935、Science、81(2105): 439-440)、このウイルスを用いる研究は、ウイルスの免疫学及び病原性における多くの鍵となる概念を明らかにしてきた(Zinkernagelの文献、2002, Curr Top Microbiol Immunol, 263:1-5; Oldstoneの文献、2002, Curr Top Microbiol Immunol, 263:83-117に概説されている)。LCMVは、特に、持続感染との関連でのウイルスの分子生物学及び免疫応答を調査するために広く用いられてきた。LCMVの自然宿主は、マウスである。しかしながら、いくつかの報告により、LCMVが、顧みられないヒト病原体でもある可能性があることが明らかにされた(Bartonの文献、1996, Clin. Infect. Dis, 22(1):197; Wrightらの文献、1997, Pediatrics 100(1): E9)。さらに、多くの他のアレナウイルス科に属するものが、世界中のげっ歯類の集団で見出されている。アフリカでみられる旧世界アレナウイルスであるラッサウイルス(LASV)に加え、フニン(JUNV)、グアナリト、又はマチュポのようないくつかの新世界アレナウイルスが、南アメリカの多様なげっ歯類の集団において蔓延している(Johnsonらの文献、1966、Am J Trop Med Hyg、15(1): 103-106;Teshらの文献、1993、Am J Trop Med Hyg 49(2):227-235;Millsらの文献、1994、Trop Med Hyg 51(5): 554-562)。これらのウイルスの多くは、ヒトに伝染すると、高い死亡率を伴うウイルス性の出血熱を引き起こす可能性がある(Geisbert及びJahrlingの文献、2004、Nat Med 10(12 Suppl): S110-121)。
アレナウイルスは、エンベロープウイルスである。そのゲノムは、マイナスセンスの一本鎖RNAの2つのセグメント (L:7.2kb、S:3.4kb)からなる。各セグメントは、反対の配向性で、2つのウイルス遺伝子をコードする。短い方のセグメント(Sセグメント)は、ウイルスの糖タンパク質(GP)前駆体(GP-C;75kDa)及びヌクレオプロテイン(NP;63kDa)をコードする(Salvatoらの文献、1988、Virology 164(2): 517-522)。長い方のセグメント(Lセグメント)は、RNA依存性RNAポリメラーゼ(RdRp;Lタンパク質;約200kDa)及びマトリックスタンパク質Z(タンパク質Z)、RINGフィンガータンパク質(11kDa)を発現する(図1A)(Salvatoらの文献、1988、Virology 164(2): 517-522)。GP前駆体GP-Cは、翻訳後にGP-1及びGP-2へと切断されるが、これらは非共有結合的に会合し続ける(Buchmeier及びOldstoneの文献、1979、Virology 99(1): 111-120)。GP-1及びGP-2の三量体は、ビリオンの表面にスパイクとして組み立てられ、細胞表面受容体との相互作用による宿主細胞内への侵入を媒介するのに必須なものである。ウイルスの宿主細胞内への結合及び侵入は、LCMV GPの、LCMVの唯一の細胞受容体としての、細胞受容体α-ジストログリカンとの相互作用により媒介されると、長く主張されていた(Caoらの文献、1998、Science、282(5396):2079-2081)。極最近に、3つのさらなるヒト分子(TAMファミリーのAxl及びTyro3、並びに樹状細胞特異的細胞内接着分子3結合ノンインテグリン)が、LCMV及びLCMVの近縁種であるLASVのさらなる受容体として仮定され、これらはα-ジストログリカンとは独立して、LCMVの細胞内への侵入を可能とする(Shimojima及びKawaokaの文献、2012、J Vet Med、74(10):1363-1366;Shimojimaらの文献、2012、J Virol 86(4):2067-2078)。NPは、ウイルスRNAに結合してヌクレオカプシドを形成し、これは、ウイルスのLタンパク質のテンプレートとして働く。ウイルスのLタンパク質と会合したヌクレオカプシドは、いわゆるリボヌクレオタンパク質複合体を形成し、これは、複製及び転写の双方で活性であり、ウイルスの感染力の最小単位となる。NP及びLタンパク質が、ウイルスRNAの転写及び複製に必要な最低限のトランス作用因子であることが示されている(Leeらの文献、2000、J Virol 74(8): 3470-3477)。各セグメント上の2つの遺伝子は、ノンコーディング遺伝子間領域(IGR)により分離されており、5’及び3’非翻訳領域(UTR)の側方に位置している。IGRは、安定なヘアピン構造を形成しており、ウイルスのmRNA転写の構造依存的な終結に関与していることが示されている(Pinschewerらの文献、2005、J Virol 79(7): 4519-4526)。UTRの末端ヌクレオチドは、高度な相補性を示し、二次構造の形成をもたらす。これらのパンハンドル構造は、転写及び複製のためのウイルスプロモーターとして働くことが知られており、部位特異的な突然変異誘発によるこれらの分析により、僅かな配列変化でさえも許容されない配列及び構造依存性が明らかにされている(Perez及びde la Torreの文献、2003, Virol 77(2): 1184-1194)。
LCMVのようなマイナス鎖ウイルスの単離及び精製されたRNAは、直接的にmRNAとして働くことはできない。すなわち、細胞に導入された場合に、翻訳されることができない。その結果、ウイルスRNAによる細胞のトランスフェクションは、感染性のウイルス粒子の産生には繋がらない。培養された許容細胞中のcDNAからマイナス鎖のRNAウイルスの感染性のウイルス粒子を産生させるためには、ウイルスRNAセグメント(複数可)は、転写及び複製に必要とされる最低限の因子がトランス補足(trans-complemented)されなければならない。数年前に公表されたミニゲノムシステムの助けを借りて、ウイルス粒子の転写、複製、及び形成に関与するウイルスのシス作用エレメント及びトランス作用因子が、ついに分析可能となった(Leeらの文献、2000、J Virol 74(8): 3470-3477;Leeらの文献、2002、J Virol 76(12): 6393-6397;Perez及びde la Torreの文献、2003, J Virol 77(2): 1184-1194;Pinschewerらの文献、2003、J Virol 77(6): 3882-3887;Pinschewerらの文献、2005、J Virol 79(7): 4519-4526)。また、LASV及びタカリベウイルスのような別のアレナウイルスに対しても、逆遺伝学的システムが確立された(Lopezらの文献、2001、J Virol 75(24): 12241-12251;Hassらの文献、2004、J Virol 78(24): 13793-13803)。2つの刊行物は、それぞれ、pol-I/-II又はT7/pol-II駆動型プラスミドを用いた完全にcDNA由来の感染性LCMVの回収を示した(「ウイルスの救出」と呼ばれている)(Flatzらの文献、2006、Proc Natl Acad Sci U S A 103(12): 4663-4668;Sanchez及びde la Torreの文献、2006、Virology 350(2): 370-380)。
外来性の目的遺伝子を発現する組換えマイナス鎖RNAウイルスの生成が、長期間推し進められてきた。異なる戦略が、別のウイルスに対し公表されている(Garcia-Sastreらの文献、1994、J Virol 68(10): 6254-6261;Percyらの文献、1994、J Virol 68(7): 4486-4492;Flick 及びHobomの文献、1999、Virology 262(1): 93-103;Machadoらの文献、2003、Virology 313(1): 235-249)。これまでに、追加の外来遺伝子を、2分節型LCMV粒子のゲノム内に導入することが可能であることが示されている(Emonetらの文献、2009、PNAS、106(9):3473-3478)。2つの外来性の目的遺伝子が、LCMVの2分節型ゲノム内に挿入されて、2つのSセグメント及び1つのLセグメントを有する3分節型LCMV粒子(r3LCMV)がもたらされた。Emonetらの文献(2009)により公表されたこの3分節型ウイルスにおいては、NP及びGPの双方が、Sセグメントにおけるそれぞれの天然位置に保たれており、従って、隣接するUTRにおけるそれらの天然のプロモーターの下で発現される(図1B)。しかしながら、本出願は、Emonetらの文献により開示された3分節型LCMV粒子は、主に2分節型粒子を集めたものであり(すなわち、該アレナウイルスは、2つのSセグメントではなく1つのSセグメントを包んでいるだけであり)、結果として、減弱された増殖及び2つのSセグメントを組み換える強い選択圧をもたらすことを明らかとする。本出願においてさらに示されるように、このような組換えは、再現性よく見られ、結果として野生型ウイルスへの表現型の復帰及び導入遺伝子の喪失をもたらす。
近年、感染性のアレナウイルス粒子を、感染細胞においてその遺伝子材料を増幅し発現する能力を有するが、正常で遺伝的に操作されていない細胞では子孫をさらに生じさせることはできないゲノムを含有するよう操作し得ることが示されている(すなわち、感染性の複製欠損性アレナウイルス粒子)(国際公報第WO2009/083210 A1号及び国際公報第WO2014/140301 A1号)。
本出願は、ゲノム中のORFの再構成を有するアレナウイルスに関する。特に、本出願は、アレナウイルスORFを、野生型の位置とは別の位置に保持するよう操作されているアレナウイルスゲノムセグメントに関する。本出願はまた、複製可能な2分節型アレナウイルス粒子には組み換わらない、1つのLセグメント及び2つのSセグメント、又は2つのLセグメント及び1つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子を提供する。本出願は、該3分節型アレナウイルス粒子を遺伝的安定性を向上し、かつ持続する導入遺伝子発現を確実とするよう操作することができることを実証する。
(3.1 非天然のオープンリーディングフレーム)
従って、一態様において、アレナウイルスゲノムセグメントが、本明細書において提供される。ある実施態様において、前記ゲノムセグメントは、ウイルスのORFを、該ORFの野生型の位置とは別の位置に保持するよう操作されている。いくつかの実施態様において、前記アレナウイルスゲノムセグメントは:
(i)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(ii)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(iii)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(iv)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント;
(v)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント;
(vi)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント;
(vii)GPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(viii)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(ix)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(x)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント;
(xi)NPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント;及び
(xii)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント、
からなる群から選択される。
(i)前記アレナウイルスゲノムセグメントのcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;
(ii)前記第二のアレナウイルスゲノムセグメントのcDNAを含むプラスミドを、宿主細胞にトランスフェクトすること;
(iii)該宿主細胞を、ウイルス形成に適した条件下で維持すること;及び
(iv)該アレナウイルス粒子を回収すること、
を含む。
(i)RNAポリメラーゼIプロモーター;
(ii)RNAポリメラーゼIIプロモーター;及び
(iii)T7プロモーター
からなる群から選択されるプロモーターの制御下にある。
一態様において、1つのLセグメント及び2つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子が、本明細書において提供される。いくつかの実施態様において、該3分節型アレナウイルス粒子の増殖は、I型インターフェロン受容体、II型インターフェロン受容体、及び組換え活性化遺伝子1(RAG1)を欠き、104PFUの該3分節型アレナウイルス粒子に感染しているマウスにおける70日間の持続感染後に、複製可能な2分節型ウイルス粒子をもたらさない。ある実施態様において、2つのアレナウイルスORFを、2つの別のセグメント上にではなく単一のセグメント上に一体化する、前記2つのSセグメントのセグメント間組換えは、ウイルスのプロモーター活性を抑制する。
(i)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(ii)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(iii)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(iv)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント;
(v)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント;及び
(vi)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント、
からなる群から選択される。
(i)GPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(ii)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(iii)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(iv)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント;
(v)NPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント;及び
(vi)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント、
からなる群から選択される。
(i)1つのLセグメント及び2つのSセグメントの1つ以上のcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;
(ii)該宿主細胞を、ウイルス形成に適した条件下で維持すること;及び
(iii)該アレナウイルス粒子を回収すること
を含む。
(i)2つのLセグメント及び1つのSセグメントの1つ以上のcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;
(ii)該宿主細胞を、ウイルス形成に適した条件下で維持すること;及び
(iii)該アレナウイルス粒子を回収すること
を含む。
(i)RNAポリメラーゼIプロモーター;
(ii)RNAポリメラーゼIIプロモーター;及び
(iii)T7プロモーター
からなる群から選択されるプロモーターの制御下にある。
(i)RNAポリメラーゼIプロモーター;
(ii)RNAポリメラーゼIIプロモーター;及び
(iii)T7プロモーター
からなる群から選択されるプロモーターの制御下にある。
(4.1 非天然位置にオープンリーディングフレームを有するアレナウイルス)
本明細書においては、ORFの再構成を有するアレナウイルスが提供される。ある実施態様において、このようなアレナウイルスは、複製可能かつ感染性である。このようなアレナウイルスのゲノム配列が、本明細書において提供される。一態様において、アレナウイルスORFを、該ORFのそれぞれの遺伝子がLCMV-MP(配列番号:4及び5を参照されたい)などの野生から単離されたウイルスにおいてみられる(本明細書では「野生型の位置」と称する)位置とは別の位置 (すなわち、非天然位置)に保持するよう操作されているアレナウイルスゲノムセグメントが、本明細書において提供される。一実施態様において、前記アレナウイルス粒子は、LCMVである。
(i)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;
(ii)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;
(iii)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;
(iv)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;
(v)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;
(vi)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;
(vii)GPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるアレナウイルスLセグメント;
(viii)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるアレナウイルスLセグメント;
(ix)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるアレナウイルスLセグメント;
(x)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるアレナウイルスLセグメント;
(xi)NPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるアレナウイルスLセグメント;及び
(xii)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるアレナウイルスLセグメントとすることができる。
(表1)
アレナウイルス粒子
*位置1は、アレナウイルスSセグメント5’UTRの制御下にある;位置2は、アレナウイルスSセグメント3’UTRの制御下にある;位置3は、アレナウイルスLセグメント5’UTRの制御下にある;位置4は、アレナウイルスLセグメント3’UTRの制御下にある。
ある実施態様において、アレナウイルス粒子であって、(i)ORFが、該ORFの野生型の位置とは別の位置にあり;かつ(ii)GP、NP、Zタンパク質、及びLタンパク質をコードするORFが、除去又は機能的に不活性化されており、結果として生じるウイルスが、感染性の子孫ウイルス粒子をさらに生じさせることができなくなっている、前記アレナウイルス粒子が、本明細書において提供される。1つ以上のORFが欠失しているか又は機能的に不活性化されている遺伝子改変ゲノムを含むアレナウイルス粒子は、補完細胞(complementing cells)(すなわち、該欠失しているか又は機能的に不活性化されているアレナウイルスORFを発現する細胞)において生成させ得る。結果として生じるアレナウイルス粒子の遺伝子材料は、宿主細胞の感染時に、該宿主細胞内に移行させることができ、ここで、該遺伝子材料は、発現及び増幅され得る。加えて、本明細書に記載される前記遺伝子改変アレナウイルス粒子のゲノムは、アレナウイルス粒子以外の生物由来の異種ORFをコードし得る。
本明細書においては、ORFの再構成を有する3分節型アレナウイルス粒子が提供される。一態様において、1つのLセグメント及び2つのSセグメント、又は2つのLセグメント及び1つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子が、本明細書において提供される。ある実施態様において、前記3分節型アレナウイルス粒子は、複製可能な2分節型アレナウイルス粒子へとは組み換わらない。より詳細には、ある実施態様において、前記ゲノムセグメントのうちの2つ(例えば、それぞれ、前記2つのSセグメント又は前記2つのLセグメント)は、該2つの親セグメントを置き換え得る単一のウイルスのセグメントを生じるように組み換わることはできない。具体的な実施態様において、前記3分節型アレナウイルス粒子は、ORFを、該ORFの野生型の位置とは別の位置に含む。さらに別の具体的な実施態様において、前記3分節型アレナウイルス粒子は、4つのアレナウイルスORFの全てを含む。従って、ある実施態様において、前記3分節型アレナウイルス粒子は、複製可能かつ感染性である。他の実施態様において、前記3分節型アレナウイルス粒子は、4つのアレナウイルスORFのうちの1つを欠く。従って、ある実施態様において、前記3分節型アレナウイルス粒子は、感染性ではあるが、非補完細胞において感染性の子孫をさらに生じさせることはできない。
本明細書に記載のcDNAは、DNA発現ベクターの一部であるか、DNA発現ベクターに組み込まれることができ、宿主細胞に導入され得る。従って、いくつかの実施態様において、ベクターに組み込まれた本明細書に記載のcDNAを含む宿主細胞が、本明細書において提供される。他の実施態様において、本明細書に記載される前記3分節型アレナウイルスゲノムセグメント(すなわち、Lセグメント及び/又はSセグメント(単数)又はセグメント(複数))は、宿主細胞に導入されている。
一態様において、1つのLセグメント及び2つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子が、本明細書において提供される。ある実施態様において、前記1つのLセグメント及び2つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子の増殖は、複製可能な2分節型ウイルス粒子をもたらさない。具体的な実施態様において、前記1つのLセグメント及び2つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子の増殖は、I型インターフェロン受容体、II型インターフェロン受容体、及び組換え活性化遺伝子(RAG1)を欠き、104PFUの該3分節型アレナウイルス粒子に感染しているマウスにおいて、少なくとも10日間、少なくとも20日間、少なくとも30日間、少なくとも40日間、少なくとも50日間、少なくとも60日間、少なくとも70日間、少なくとも80日間、少なくとも90日間、又は少なくとも100日間の持続感染後に、複製可能な2分節型ウイルス粒子をもたらさない(セクション4.8.13を参照されたい)。他の実施態様において、前記1つのLセグメント及び2つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子の増殖は、少なくとも10回の継代、少なくとも20回の継代、少なくとも30回の継代、少なくとも40回の継代、又は少なくとも50回の継代後に、複製可能な2分節型ウイルス粒子をもたらさない。
(i)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;
(ii)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;
(iii)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;
(iv)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;
(v)LをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント;及び
(vi)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるアレナウイルスSセグメント
とすることができる。
(表2A)
1つのLセグメント及び2つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子
位置1は、アレナウイルスSセグメント5’UTRの制御下にある;位置2は、アレナウイルスSセグメント3’UTRの制御下にある;位置3は、アレナウイルスSセグメント5’UTRの制御下にある;位置4は、アレナウイルスSセグメント3’UTRの制御下にある;位置5は、アレナウイルスLセグメント5’UTRの制御下にある;位置6は、アレナウイルスLセグメント3’UTRの制御下にある。
*ORFは、異種ORFが挿入されていることを表す。
(表2B)
1つのLセグメント及び2つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子
位置1は、アレナウイルスSセグメント5’UTRの制御下にある;位置2は、アレナウイルスSセグメント3’UTRの制御下にある;位置3は、アレナウイルスSセグメント5’UTRの制御下にある;位置4は、アレナウイルスSセグメント3’UTRの制御下にある;位置5は、アレナウイルスLセグメント5’UTRの制御下にある;位置6は、アレナウイルスLセグメント3’UTRの制御下にある。
*ORFは、異種ORFが挿入されていることを表す。
一態様において、2つのLセグメント及び1つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子が、本明細書において提供される。ある実施態様において、前記2つのLセグメント及び1つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子の増殖は、複製可能な2分節型ウイルス粒子をもたらさない。具体的な実施態様において、前記2つのLセグメント及び1つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子の増殖は、I型インターフェロン受容体、II型インターフェロン受容体、及び組換え活性化遺伝子(RAG1)を欠き、かつ104PFUの該3分節型アレナウイルス粒子に感染しているマウスにおいて、少なくとも10日間、少なくとも20日間、少なくとも30日間、少なくとも40日間、又は少なくとも50日間、少なくとも60日間、少なくとも70日間、少なくとも80日間、少なくとも90日間、少なくとも100日間の持続性の後に、複製可能な2分節型ウイルス粒子をもたらさない(セクション4.8.13を参照されたい)。他の実施態様において、前記2つのLセグメント及び1つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子の増殖は、少なくとも10回の継代、20回の継代、30回の継代、40回の継代、又は50回の継代後に、複製可能な2分節型ウイルス粒子をもたらさない。
(i)GPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(ii)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(iii)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(iv)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント;
(v)NPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント;及び
(vi)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント
とすることができる。
(表3)
2つのLセグメント及び1つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子
*位置1は、アレナウイルスLセグメント5’UTRの制御下にある;位置2は、アレナウイルスLセグメント3’UTRの制御下にある;位置3は、アレナウイルスLセグメント5’UTRの制御下にある;位置4は、アレナウイルスLセグメント3’UTRの制御下にある;位置5は、アレナウイルスSセグメント5’UTRの制御下にある;位置6は、アレナウイルスSセグメント3’UTRの制御下にある。
*ORFは、異種ORFが挿入されていることを表す。
(表3B)
2つのLセグメント及び1つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子
*位置1は、アレナウイルスLセグメント5’UTRの制御下にある;位置2は、アレナウイルスLセグメント3’UTRの制御下にある;位置3は、アレナウイルスLセグメント5’UTRの制御下にある;位置4は、アレナウイルスLセグメント3’UTRの制御下にある;位置5は、アレナウイルスSセグメント5’UTRの制御下にある;位置6は、アレナウイルスSセグメント3’UTRの制御下にある。
*ORFは、異種ORFが挿入されていることを表す。
ある実施態様において、3分節型アレナウイルス粒子であって、(i)ORFが、該ORFの野生型の位置とは別の位置にあり;かつ(ii)GP、NP、Zタンパク質、又はLタンパク質をコードするORFが、除去又は機能的に不活性化されており、結果として生じるウイルスが、感染性の子孫ウイルス粒子をさらに生じさせることができなくなっている(すなわち、複製欠損性である)、前記3分節型アレナウイルス粒子が、本明細書において提供される。ある実施態様において、第三のアレナウイルスセグメントは、Sセグメントとすることができる。他の実施態様において、第三のアレナウイルスセグメントは、Lセグメントとすることができる。より具体的な実施態様において、第三のアレナウイルスセグメントは、ORFを、該ORFの野生型の位置とは別の位置に保持するよう操作することができるか、又は第三のアレナウイルスセグメントは、野生型のアレナウイルスゲノムセグメントとすることができる。さらにより具体的な実施態様において、第三のアレナウイルスセグメントは、GP、NP、Zタンパク質、又はLタンパク質をコードするアレナウイルスORFを欠く。
ある実施態様において、前記アレナウイルスゲノムセグメント、及びそれぞれのアレナウイルス粒子又は3分節型アレナウイルス粒子は、異種ORFを含み得る。他の実施態様において、前記アレナウイルスゲノムセグメント及びそれぞれのアレナウイルス粒子又は3分節型アレナウイルス粒子は、目的遺伝子を含み得る。より具体的な実施態様において、前記異種ORF又は前記目的遺伝子は、抗原をコードする。より具体的な実施態様において、前記異種ORF、又は前記目的遺伝子は、レポータータンパク質又は蛍光タンパク質をコードする。
を含む腫瘍関連疾患由来の抗原を含む。
一般に、アレナウイルス粒子は、LCMVに対して説明されているような標準的な逆遺伝学的な技術により組換えで生成させることができる(引用により本明細書に組み込まれているFlatzらの文献、2006、Proc Natl Acad Sci USA 103:4663-4668;Sanchezらの文献、2006、Virology 350:370;Ortiz-Rianoらの文献、2013、J Gen Virol. 94:1175-88を参照されたい)。本明細書において提供されるアレナウイルス粒子を産生させるために、これらの技術を以下に示されるように適用し得る。ウイルスのゲノムは、セクション4.1及びセクション4.2にそれぞれ記載されるように改変し得る。
ウイルスのORFを、該ORFの野生型の位置とは別の位置に保持するよう操作されているゲノムセグメントを含むアレナウイルス粒子の産生は、当業者に公知の任意の逆遺伝学的な技術により組換えで生成させ得る。
ある実施態様において、前記アレナウイルス粒子を産生させる方法は、(i)前記第一のアレナウイルスゲノムセグメントのcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;(ii)前記第二のアレナウイルスゲノムセグメントのcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;(iii)アレナウイルスの最低限のトランス作用因子NP及びLを発現するプラスミドを、宿主細胞にトランスフェクトすること;(iv)該宿主細胞を、ウイルス形成に適した条件下で維持すること;及び(v)該アレナウイルス粒子を回収すること、を含む。より具体的なある実施態様において、前記cDNAは、プラスミドに含まれている。
感染性複製欠損性アレナウイルス粒子は、上記したように救出し得る。しかしながら、ひとたびcDNAから産生されれば、本明細書において提供される感染性の複製欠損性アレナウイルスは、補完細胞において増殖可能である。補完細胞は、そのゲノムの改変により該複製欠損性アレナウイルスから除去されている機能性を提供する細胞である(例えば、GPタンパク質をコードするORFが、欠失しているか又は機能的に不活性化されている場合、補完細胞は、まさにそのGPタンパク質を提供する)。
3分節型アレナウイルス粒子を、例えば、引用により本明細書に組み込まれているEmonetらの文献、2008、PNAS、106(9):3473-3478;Popkinらの文献、2011、J. Virol.、85 (15):7928-7932により記載されるような当技術分野において公知の逆遺伝学的な技術により組換えで生成させ得る。本明細書において提供される3分節型アレナウイルス粒子の産生は、セクション4.2に記載されるように改変し得る。
ある実施態様において、前記3分節型アレナウイルス粒子を含むベクターを産生させる方法は、(i)1つのLセグメント及び2つのSセグメント、又は2つのLセグメント及び1つのSセグメントのcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;(ii)アレナウイルスの最低限のトランス作用因子NP及びLを発現するプラスミドを、宿主細胞にトランスフェクトすること;(iii)該宿主細胞を、ウイルス形成に適した条件下で維持すること;及び(iv)該アレナウイルス粒子を回収することを含む。
感染性複製欠損性3分節型アレナウイルス粒子は、上記したように救出し得る。しかしながら、ひとたびcDNAから産生されれば、本明細書において提供される感染性の複製欠損性アレナウイルスは、補完細胞において増殖可能である。補完細胞は、そのゲノムの改変により該複製欠損性アレナウイルスから除去されている機能性を提供する細胞である(例えば、GPタンパク質をコードするORFが欠失しているか又は機能的に不活性化されている場合には、補完細胞は、まさにそのGPタンパク質を提供する)。
ある実施態様において、セクション4.1及びセクション4.2にそれぞれ記載されるようなアレナウイルスゲノムセグメント又は3分節型アレナウイルス粒子を含むか、又はこれからなるcDNAが、本明細書において提供される。
一実施態様において、セクション4.1に記載されるようなアレナウイルスゲノムセグメントをコードする核酸が、本明細書において提供される。より具体的な実施態様において、表1に記載されるDNAヌクレオチド配列又はDNAヌクレオチド配列のセットが、本明細書において提供される。このような核酸を含む宿主細胞もまた、セクション4.1で提供される。
一実施態様において、セクション4.2に記載されるような3分節型アレナウイルス粒子をコードする核酸が、本明細書において提供される。より具体的な実施態様において、例えば、表2又は表3に記載したようなDNAヌクレオチド配列又はDNAヌクレオチド配列のセットが、本明細書において提供される。このような核酸を含む宿主細胞もまた、セクション4.2に提供される。
ワクチンは、ポリオウイルス及び麻疹に対するものなど、感染性疾患の予防及び/又は治療に成功している。しかしながら、慢性感染症及びがんの双方を含む確立された慢性疾患の状況における治療的免疫化は、それほど成功していない。アレナウイルス粒子及び/又は3分節型アレナウイルス粒子を産生させる能力は、これまでに存在しなかった新規のワクチン戦略を意味する。
本出願は更に、本明細書に記載されるアレナウイルス粒子又は3分節型アレナウイルス粒子を含むワクチン、免疫原性組成物(例えば、ワクチン製剤)、及び医薬組成物に関する。そのようなワクチン、免疫原性組成物、及び医薬組成物は、当該技術分野において標準的な手順に従い製剤化し得る。
(4.8.1 アレナウイルス検出アッセイ)
当業者であれば、当技術分野において公知の技術を用いて、本明細書に記載されるようなアレナウイルスゲノムセグメント又は3分節型アレナウイルス粒子を検出し得るであろう。例えば、RT-PCRをアレナウイルスに特異的なプライマーと共に使用して、ORFを、該ORFの野生型の位置とは別の位置に保持するよう操作されているアレナウイルスゲノムセグメント、又は3分節型アレナウイルス粒子を検出及び定量し得る。ウエスタンブロット、ELISA、ラジオイムノアッセイ、免疫沈降(immuneprecipitation)、免疫細胞化学(immunecytochemistry)、又はFACSと組み合わせた免疫細胞化学(immunocytochemistry)を使用して、アレナウイルスゲノムセグメント又は3分節型アレナウイルス粒子の遺伝子産物を定量し得る。
当業者に公知の任意のアッセイを、アレナウイルスベクター調製物の感染力を測定するために使用し得る。例えば、ウイルス/ベクター力価の決定は、「フォーカス形成単位アッセイ」(FFUアッセイ)により行い得る。手短にいうと、補完細胞、例えば、MC57細胞をプレーティングし、それに異なる希釈度のウイルス/ベクターサンプルを接種する。インキュベーション期間の後に、細胞に単層を形成させ、ウイルスを細胞に付着させるために、該単層を、メチルセルロースで覆う。プレートを更にインキュベートすると、元の感染細胞は、ウイルスの子孫を放出する。メチルセルロースオーバレイのために、新しいウイルスの伝播は、隣接している細胞に制限されている。その結果、各感染性の粒子は、フォーカスと呼ばれる感染細胞の環状領域を生じさせる。このようなフォーカスは、LCMV-NP又はアレナウイルス粒子又は3分節型アレナウイルス粒子により発現される別のタンパク質に対する抗体、及びHRPベースの呈色反応を用いて可視化することができ、それにより、計数可能とすることができる。ウイルス/ベクターの力価は、ミリリットルあたりのフォーカス形成単位(FFU/mL)で計算し得る。
本明細書に記載されるアレナウイルス粒子の増殖は、当技術分野において公知の、又は本明細書に記載されている任意の方法(例えば、細胞培養)により評価し得る。ウイルスの増殖は、細胞(例えば、Vero細胞又はBHK-21細胞)培養液中に、本明細書に記載されるアレナウイルス粒子の段階希釈物を接種することにより決定してもよい。特定の期間ウイルスをインキュベーションした後、該ウイルスは、標準的な方法を用いて単離される。
動物(例えば、マウス、モルモット)のワクチン接種時の液性免疫応答の決定は、抗原特異的血清ELISA(酵素結合免疫吸着アッセイ)により行い得る。手短にいうと、プレートを抗原(例えば、組換えタンパク質)で覆い、抗体の非特異的な結合を避けるためにブロッキングを行い、血清の段階希釈物とインキュベートする。インキュベーション後、結合した血清-抗体を、例えば、酵素結合抗種(例えば、マウス、モルモット)特異的抗体(enzyme-coupled anti-species-specific antibody)(総IgG又はIgGサブクラスを検出)、及びそれに続く呈色反応を用いて検出することができる。抗体価は、例えば、エンドポイント幾何平均力価として決定し得る。
血清中の中和抗体の決定は、ATCC由来のARPE-19細胞及びGFPタグを付けたウイルスを用いる以下の細胞アッセイで行われる。それに加え、外来性の補体源としての追加のモルモット血清を用いる。このアッセイは、中和に用いる1日又は2日前に、384ウェルプレートに6.5×103細胞/ウェル(50μl/ウェル)で播種することから開始する。中和は、96ウェルの無菌の組織培養プレート中、細胞無しで、37℃で1時間行われる。中和インキュベーション工程後、混合物を細胞に加え、プレートリーダーでのGFP検出のためにさらに4日間インキュベートする。各プレート上で、陽性中和性ヒト血清(positive neutralizing human sera)をアッセイの陽性対照として用いて、全ての結果の信頼性をチェックする。力価(EC50)を、4パラメーターロジスティック曲線あてはめを用いて決定する。追加の試験として、ウェルを、蛍光顕微鏡でチェックする。
手短にいうと、LCMVのプラーク減少(中和)アッセイは、緑色蛍光タンパク質でタグ付けされた複製可能LCMV又は複製欠損LCMVを用いて行うことができ、5%ウサギ血清を外来性の補体源として用いてもよく、プラークは、蛍光顕微鏡法により数え上げることができる。中和価は、コントロール(免疫前)血清サンプル中のものと比較して、プラークの50%、75%、90%、又は95%の減少をもたらす血清の最高希釈度として定義してもよい。
組織培養フラスコ中又は懸濁液中で増殖させた感染細胞を、感染後の示された時点で、RIPAバッファー(Thermo Scientific)を用いて溶解させるか、又は細胞溶解無しで直接用いる。サンプルを、還元剤及びNuPage LDS サンプルバッファー (NOVEX)と共に99℃に10分間加熱し、室温まで冷却してから、電気泳動用の4〜12%のSDS-ゲルに載せた。タンパク質を、Invitrogens iBlotゲルトランスファーデバイスを用いて膜上にブロットして、ポンソー染色により可視化する。最後に、調製物を目的タンパク質に対する一次抗体及びアルカリホスファターゼ複合二次抗体、並びにそれに続く1ステップNBT/BCIP溶液(INVITROGEN)での染色を用いて探索する。
当業者に公知の任意のアッセイを使用して、抗原特異的CD8+T細胞応答を試験し得る。例えば、MHC-ペプチド四量体染色アッセイを使用し得る(例えば、Altman J.D.らの文献、Science. 1996;274:94-96;及びMurali-Krishna K.らの文献、Immunity. 1998;8:177-187を参照されたい)。簡単に言えば、このアッセイは、以下の工程を含み、四量体アッセイを用いて、抗原特異的T-細胞の存在を検出する。T細胞が、それが特異的なペプチドを検出するためには、T細胞は、該ペプチド、及びT-細胞(典型的には、蛍光標識されているもの)の規定された抗原特異性及びMHCハプロタイプに対してカスタムメイドされたMHC分子の四量体の双方を認識しなければならない。その後、この四量体は前記蛍光標識を介してフローサイトメトリーにより検出される。
当業者に公知の任意のアッセイを使用して、抗原特異的CD4+T細胞応答を試験し得る。例えば、ELISPOTアッセイを使用し得る(例えば、Czerkinsky C.C.らの文献、J Immunol Methods. 1983;65:109-121;及び Hutchings P.R.らの文献、J Immunol Methods. 1989;120:1-8を参照されたい)。簡単に説明すると、このアッセイは、以下の工程を含む:イムノスポットプレートを抗サイトカイン抗体で覆う。細胞をイムノスポットプレート内でインキュベートする。細胞がサイトカインを分泌し、その後洗い落とされる。その後、プレートを、第二のビオチン化(biotyinlated)抗サイトカイン抗体で覆い、アビジン-HRP系で可視化させる。
当業者に公知の任意のアッセイを使用して、CD8+及びCD4+ T細胞応答の機能性を試験し得る。例えば、フローサイトメトリーと組み合わせた細胞内サイトカインアッセイを使用し得る(例えば、Suni M.A.らの文献、J Immunol Methods. 1998;212:89-98;Nomura L.E.らの文献、Cytometry. 2000;40:60-68;及び Ghanekar S.A.らの文献、Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 2001;8:628-63を参照されたい)。簡単に説明すると、本アッセイは、以下の工程を含む:特異的ペプチド又はタンパク質を介する細胞の活性化、タンパク質輸送の阻害(例えば、ブレフェルジンA)を加えて、細胞内のサイトカインを保持する。規定の期間、典型的には5時間のインキュベーション後、洗浄工程が続き、他の細胞マーカー(cellular marker)に対する抗体を、細胞に追加し得る。その後、細胞は固定され、透過処理される。フルロコーム(flurochrome)複合抗サイトカイン抗体を加え、細胞をフローサイトメトリーにより分析することができる。
感染性かつ複製可能なウイルス粒子の濃度を決定する当業者に公知の任意のアッセイも、サンプル中の複製欠損性ウイルス粒子の測定に使用し得る。例えば、非補完細胞を用いるFFUアッセイを、この目的のために使用し得る。
当業者に公知の任意のアッセイを、ウイルス抗原の発現を測定するために使用し得る。例えば、FFUアッセイを行うことができる。検出のためには、それぞれのウイルス抗原に対するモノ又はポリクローナル抗体調製物(複数可)を使用する(導入遺伝子特異的FFU)。
本明細書に記載されるアレナウイルス粒子の組換え及び感染力を調査するために、インビボ動物モデルを使用し得る。ある実施態様において、3分節型アレナウイルス粒子の組換え及び感染力を調査するために使用し得る動物モデルとしては、マウス、モルモット、ウサギ、及びサルが挙げられる。好ましい実施態様において、アレナウイルスの組換え及び感染力を調査するために使用し得る動物モデルとしては、マウスが挙げられる。より具体的な実施態様において、アレナウイルス粒子の組換え及び感染力調査するために使用し得るマウスは、I型インターフェロン受容体、II型インターフェロン受容体、及び組換え活性化遺伝子1(RAG1)の三重欠損型である。
これらの実施例は、LCMVウイルスベースのベクター技術を使用して、(1)ウイルスのORFを、該ORFの野生型の位置とは別の位置に有するアレナウイルスゲノムセグメント、及び(2)複製可能な2分節型ウイルス粒子をもたらさない3分節型アレナウイルス粒子の開発に成功し得ることを実証する。
(5.1.1 細胞)
BHK-21細胞を、10%の熱失活させたウシ胎仔血清(FCS; Biochrom)、10mMのHEPES(Gibco)、1mMのピルビン酸ナトリウム(Gibco)、及び1×トリプトースホスフェートブロスを補完した高グルコースダルベッコイーグル培地(DMEM;Sigma)中で培養した。MC57細胞を、5%の熱失活させたFCS、2mMのL-グルタミン(Gibco)、及びペニシリン-ストレプトマイシン(100’000U/mlのペニシリン及び50mg/lのストレプトマイシン;Gibco)を補足した最小必須培地(MEM;Sigma)中で維持した。双方の細胞株を、37℃で、加湿された5%CO2インキュベーター中で培養した。
pol-I L、pC-NP、及びpC-Lプラスミドはすでに説明されている。レポーター遺伝子としてのGFP又はRFP、及びNP又はGPのいずれかをコードするpol-I Sプラスミドの生成のために、本発明者らは、pol-I Bbs/Bsmクローニングプラスミドを基礎として用いた(pol-I 5’-BsmBI_IGR_BbsI_3’)。このプラスミドは、2つのBsmBI制限部位がそれに続くウイルスのSセグメントの5’非翻訳領域(5’UTR)、BbsI制限部位の側方に位置する遺伝子間領域(IGR)、NPレスト、及びCATオープンリーディングフレーム(ORF)、並びにSセグメントの3’UTRをコードする。GPをその天然の5’に、かつGFPをアンチセンスの向きで3’位置にコードするpol-I Sプラスミド(pol-I 5’-GP_IGR_GfP-3’)を、GPをBsmBI部位特異的な制限及びライゲーションによりpol-I Bbs/Bsmプラスミドへ挿入することによりクローニングした。第二の工程では、GFPをBbsI消化及びライゲーションにより挿入した。人工の3’配向性でGPをコードするpol-I Sプラスミド(pol-I 5’-GFP_IGR_GP-3’)を得るために、GPを3’位置でBbsI 消化によりpol-I Bbs/Bsmプラスミド中に挿入し、GFPを5’位置でのBsmBI制限/ライゲーションで挿入した。GFP又はRFP、及びNPをコードするpol-I S(pol-I 5’-GFP_IGR_NP-3’又はpol-I 5’RFP_IGR_NP-3’)は、NPをBbsI消化及びライゲーションによりpol-I Bbs/Bsmクローニングプラスミドに挿入し、かつGFP又はRFPをBsmBIクローニングによりpol-I Bbs/Bsmクローニングプラスミドに挿入することによりクローニングした。LCMV株クローン13(Cl13)のLCMV株WE及びNPのGPを有するpol-Iプラスミドは、それぞれの遺伝子を、Bbs及びBsm部位特異的な制限/ライゲーションで、pol-I Bbs/Bsmクローニングプラスミドのそれぞれの部位に挿入することによりクローニングした。
BHK-21細胞を、4×105細胞/ウェルの密度で6ウェルプレートに播種し、24時間後に、製造業者の説明書に従いリポフェクタミン(3μl/μgのDNA;Invitrogen)、又はjetPRIME(2μl/μgのDNA;Polyplus)のいずれかを用いて様々な量のDNAでトランスフェクトした。全体がプラスミドDNA由来の組換え2分節型ウイルスの救出のために、2つの最低限のウイルスのトランス作用因子NP及びLを、pol-II駆動型プラスミド(0.8μgのpC-NP、1μgのpC-L)から送達し、1.4μgのpol-I L及び0.8μgのpol-I Sで共トランスフェクトした。1つのL及び2つのSセグメントからなる3分節型r3LCMVの救出の場合には、両pol-I 駆動型Sセグメント0.8μgを、トランスフェクション混合物中に含めた。トランスフェクションの72時間後、上清を回収して、該ウイルスのさらなる増幅のために、BHK-21細胞で継代培養した。上清中のウイルス力価は、フォーカス形成アッセイにより決定した。
元々は野生型LCMV Armstrong由来の野生型Cl13 LCMVがこれまでに記載されている。野生型ウイルス及び組換えウイルスのストックは、BHK-21細胞を、0.01の感染多重度(moi)で感染させることにより製造し、上清を感染後48時間で回収した。ウイルスの増殖曲線は、インビトロで6ウェル形式で行った。BHK-21細胞を、6×105細胞/ウェルの密度で播種し、24時間後に細胞を、ロッカープレート上、37°C及び5% CO2で、500μlのウイルス接種材料と一緒に0.01のmoiで90 分間インキュベートすることで感染させた。新鮮な培地を加え、37°C/5% CO2で、72〜96時間細胞をインキュベートした。上清を所与の時点(通常、18、24、48、72時間)で採取し、ウイルス力価をフォーカス形成アッセイで分析した。
次に、LCMVの力価を、フォーカス形成アッセイにより決定した。LCMVは、その宿主細胞を溶解せず、従って、プラークを形成しない非細胞溶解性ウイルスである。しかしながら、本研究における単位は、正しい用語であるフォーカス形成単位(FFU)ではなく、よりよく使用される用語であるプラーク形成単位(PFU)で表わすこととする。別途記載しない限り、MC57細胞をフォーカス形成アッセイに用いた。細胞を、24ウェルプレート中の1ウェルあたり1.6×105細胞の密度で播種し、MEM/2% FCS中に調製されたウイルスの10倍段階希釈物200μlと混合した。37℃で2〜4時間のインキュベーション後、1ウェルあたり200μlの粘稠な培地(2×補完DMEM中2%メチルセルロース)を添加し、ウイルス粒子が隣接している細胞のみに広がることを確実なものとした。37℃で48時間後、上清をはじきとばし、200μlのPBS中の4%パラホルムアルデヒド(PFA)を加えることにより、室温で30分間細胞を固定した(以下の工程は全て、室温で行う)。細胞を、1ウェルあたり200μlのBSS/1% Triton X-100(Merck Millipore)で、20分間透過処理し、それに続きPBS/5% FCSで60分間ブロッキングした。抗NP染色のために、ラット抗LCMV-NPモノクローナル抗体を、PBS/2.5%FCS中1:30の希釈度で一次染色抗体として60分間用いた。抗GFP染色のために、精製ラット抗GFP抗体(Biolegend 338002)を、PBS/2.5% FCS中1:2000の希釈度で用いた。プレートを水道水で3回洗浄し、二次HRP-ヤギ抗ラット-IgGを、PBS/2.5% FCS中1:100 PBS/2.5%の希釈度で加え、1時間インキュベートした。再度、プレートを水道水で3回洗浄した。呈色反応(PBS/0.015% H2O2中0.5g/lのDAB(Sigma D-5637)、0.5g/lの硫酸ニッケルアンモニウム)を加え、該反応を10分後に水道水で停止させた。染色されたフォーカスを人力で計数し、最終力価を希釈度に基づいて計算した。
AGRAGマウス(IFNα/βR-/-、IFNγR-/-、RAG-/-)はすでに説明されており、特定病原体除去(SPF)条件下で飼育され収容されている。AGRAGマウスは、スイスのチューリッヒ大学のInstitut fur Labortierkundeで飼育された。動物実験は全て、スイス国の動物保護法及びジュネーブ及びバーゼルそれぞれの責任ある州当局の許可に従い、ジュネーブ大学及びバーゼル大学で行った。マウスの感染は、マウス1頭あたり1×104PFUの用量で、静脈内で行った。
QIAampウイルスRNAミニキット(QIAGEN)を製造業者の説明書に従い用いて、細胞培養上清からか、又は感染マウスの血清から、ウイルスRNAを抽出した。逆転写反応は、ThermoScript RT-PCRシステム(Invitrogen)及びLCMV NP(配列番号:15) に対して特異的なプライマーを、製造業者のプロトコールに従い用いて行った。PCRによる増幅を、RT工程からのcDNAを2μl及びNP及びGP特異的プライマー(配列番号:16)を用いて行った。PCR反応は、Phusion高フィデリティDNAポリメラーゼ(NEB)を用いて行った。増幅産物を2%アガロースゲル上で分析し、それから切り出し、QIAquickゲル抽出キット(QIAGEN)を用いて精製し、NP及びGP特異的プライマーを用いるDNA Sanger配列決定(Microsynth)に送った。
血液をCD11c(N418)、CD11b(M1/70)、CD19(6D5)、NK1.1(PK136)、CD90.2(30-H12)、及びGR-1(RB6-8C5)に対する抗体で染色した。特異的抗体で染色された表面分子の発現、並びにGFP及びRFPの発現をFlowJoソフトウェア(Tree Star、Ashland、OR)を用いて、BD LSR Fortessaフローサイトメーターで分析した。
統計学的有意性は、Graphpad Prismソフトウェア(第6.0d版)を用いた、両側独立t検定又は一元配置分散分析、及びそれに続く多重比較のためのダネット又はボンフェローニの事後検定(post-test)により決定した。p>0.5のP値は、有意ではない(ns)とみなす一方で、p<0.5のP値は、有意である(*)とみなし、ここで、p<0.01(**)及びp<0.001(***)の段階は、高度に有意である。
(5.2.1 組換え3分節型ウイルスは増殖して野生型LCMVよりも低い力価に達する)
野生型LCMVのゲノムは、負極性の2本の一本鎖RNAセグメント(Lセグメント1つ、Sセグメント1つ)からなる(図1A)。近年、追加の外来遺伝子を、LCMV粒子にみられる通常は2分節型であるゲノムに導入することが可能であることが示されている。NP及びGP遺伝子は、2つのSセグメント類似物上に分離し、目的遺伝子が、結果として生じるLCMVの各Sセグメント内に挿入され、3つのRNAセグメント(2つのS及び1つのL)を有する複製可能なウイルス粒子をもたらす。つい最近に公表された戦略は、NP及びGPの双方を、Sセグメントにおけるそれらの天然位置に保っており、従って、GFP又は他の導入遺伝子を、それぞれの空いた部位に配置している(r3LCMV-GFPnat)(図1B)。このことは、Sセグメントの遺伝的な再入れ替えにより、結果として生じるゲノムの生存能が無くなるという考えられるリスクを最小化することを目指す直観的なアプローチであった。しかしながら、本研究では、GPを3’UTRに並置して、それを通常はNPを駆動するプロモーターエレメントから発現することも可能であろうと仮定した(r3LCMV-GFPart;図1C)。それぞれの発現プラスミドは、組換えcDNAクローニングにより作製し、3つ全てのウイルス構築体を、完全にプラスミドDNAから救出した。比較増殖曲線は、3つのウイルスで行った(図1D)。3つのウイルスは全て、感染後48時間で最高力価を示し、3分節型ウイルスのピーク力価は、野生型ウイルスよりも10〜100倍低かった。野生型LCMVは、3.4×106PFU/mlに達し、r3LCMV-GFPnatは、2.7×104PFU/mlでピークとなり、r3LCMV-GFPartは、2.2×105PFU/mlでピークとなった。その同様に減少したピーク力価とは関係なく、r3LCMV-GFPnatは、初期の時点で、r3LCMV-GFPartよりも幾分高い無細胞感染力(cell-free infectivity)を示した。
これらの観察は、第二のSセグメントの追加が、ウイルスの増殖を損ない遅延させることを示唆した。このウイルスの適応度の減少が、3つのRNAセグメント全てのウイルス粒子への非効率的なパッケージングを原因とするものである可能性があり、過剰の2分節型粒子が形成され、これが新たな細胞に感染したときに、増殖性の複製に失敗したという仮定を立てた。これらの実験のために、2つの異なるレポーター遺伝子、すなわち、1つのSセグメント上にGPと一緒のGFP、及び第二のSセグメント上のRFPの隣にNPを有するr3LCMVを用いた。これは、それぞれのSセグメント上のGFP及びGPの配置のみが異なるr3LCMV-GFP/RFPnat及びr3LCMV-GFP/RFPartと名付けられた2つのウイルスをもたらした。BHK-21細胞を、r3LCMV-GFP-RFPnat又は2分節型r2LCMVに感染させ、フォーカス形成アッセイを、正常BHK-21細胞で、又は、並行して、GP(BHK-GP)又はNP(BHK-NP)のいずれかを発現する安定にトランスフェクトされたBHK-21細胞を、それぞれの遺伝子を欠くトランス補完(trans-complement)ウイルスゲノムに対する細胞基質として用いて行った。野生型及びGP補完細胞を、ヌクレオプロテイン発現ウイルスのフォーカスについて染色する一方で、NP補完細胞は、GP陽性フォーカスについて染色した。これにより、野生型のBHK-21細胞上のイムノフォーカス形成は、3分節型ビリオンのみを検出した。理論によって制限されないが、BHK-GP細胞は、3分節型ビリオンに加え、NP発現Sセグメントと組み合わせた(しかし、GP発現Sを欠く)Lセグメントを含有する2分節型のものを複製するはずである。逆に、BHK-NP細胞は、3分節型LCMV及びそれに加えて、L及びGP発現Sセグメントからなる(しかしNP発現Sセグメントを欠く)NP欠損ビリオンを複製するはずである。r3LCMV-GFP/RFPnat及びr3LCMV-GFP/RFPartの双方の感染力価は、感染力を野生型BHK-21細胞で試験した場合よりも、BHK-GP又はBHK-NP細胞で評価した場合のほうが一貫して高かった。逆に、r2LCMVの力価は、その感染力の評価に使用した細胞基質に関係なく同様であった。LCMVに対する各細胞株の寛容性における存在し得る固有の相違を補正するために、BHK-21細胞での各ウイルス力価を表示のために1つに対し規格化し、かつBHK-GP及びBHK-NP力価を、その倍数として表した。従って、存在し得るウイルスの寛容性のクローン固有の違いに関連する細胞クローンに関係する力価の相違を反映する(図2A)。r3LCMV-GFP/RFPnat及びr3LCMV-GFP/RFPartについて、補完細胞のうちのいずれか1つにおいて、約5〜10倍の力価の違いが観察され、これは、r2LCMVについてのものよりも有意に高かった。このことは、2つの3分節型ウイルスにより形成されていたウイルス粒子の大多数が、それぞれNP発現Sセグメント(NPのみの粒子)又はGP発現Sセグメント(GPのみの粒子)いずれかのみをコードする2つのSセグメントのうちの1つのみを含有していたことを示唆する。この5倍以上の力価の違いは、NPのみの粒子とGPのみの粒子の双方がそれぞれ、3分節型粒子を約5倍、数で上回り、3分節型粒子がビリオンの僅か10パーセント未満のみを占めていたことを示唆し、これは非補完細胞上で増殖された場合の遅延した増殖及びウイルスのピーク力価の減少と矛盾しない(図1D)。これらの知見は、フローサイトメトリーによりさらに検証された。非補完BHK-21細胞又はBHK-NP細胞を、r3LCMV-GFP/RFPart又はゲーティングコントロールとしてのr2LCMVに感染させ、GFP及びRFPの蛍光強度をフローサイトメーターで評価した(図2B)。野生型のBHK-21細胞では最低限のトランス作用因子が提供されないため、NP発現Sセグメントと共にLセグメントを少なくとも含有するビリオンのみが、細胞侵入後に感染サイクルを開始させることができ、蛍光シグナル(RFP)をもたらす。従って、BHK-21細胞を感染させると、NPのみの粒子を反映するRFP+GFP-細胞の集団が観察された。RFP+GFP+二重陽性の細胞は、真正の3分節型粒子の証拠であった。このゲーティングにより、RFP-GFP+細胞もまた観察され、その上RFP-GFP-細胞よりも高いRFP MFIを有していた。このことは、RFP-GFP+細胞が、3分節型粒子による感染症の初期段階を表していたことを示唆する。この解釈は、この集団とRFP+GFP+二重陽性のものとの連続性によっても支持される。しかしながら、3分節型r3LCMV-GFP/RFPartをBHK-NP細胞で増殖させ、それによってこの最低限のトランス作用因子の代わりに用いた場合、本発明者らは、非補完BHK-21細胞の感染と比較して、10倍超多い数のRFP-GFP+細胞を観察した。逆に、RFP+GFP-(NPのみの粒子の証拠)及びGFP+RFP+二重陽性の細胞(3分節型粒子)は、同程度の存在量で検出された(図2C)。これらの結果から、単一の細胞レベルで、フォーカス形成アッセイにより得られた知見が確認され、従って、3分節型ウイルス調製物が、大多数の2分節型複製欠損性粒子を含有することの確証となった。これらの知見は、r3LCMV-GFP/RFPnat及びr3LCMV-GFP/RFPartの減弱された増殖に対するもっともらしい説明を提供し、見たところ非常に非効率的な、3分節型ウイルスのランダムなパッケージングに対する洞察を提供した。
3分節型ウイルスは、図1にみられるような損なわれた増殖キネティクスを示すため、NP及びGPのその遺伝情報を1つのSセグメント上のみに組み換えるというウイルスに対する高い選択圧が存在するはずであると仮定した。アレナウイルスのセグメント間の組換えが、北アメリカのクレードの系統発生学的な進化に繋がったと仮定されており、従って、3分節型ウイルスが機能的な2分節型ゲノムを再建可能となり得る機構であったようである。理論により限定されないが、2つの3分節型ウイルスのゲノム構成を見て、r3LCMV-GFPnatに対する選択圧は、IGRのエリアでの組換え事象に有利に働いたかもしれず、それによりGP及びNPを共に同じセグメント上とする一方で、GFPを除去すると仮定した。r3LCMV-GFPartの集団において、選択圧は等しく高いはずであるが、GPのリシャッフリング及び3’UTRの隣というその位置が、このウイルスが、その2つのSセグメントを1つの機能的セグメントへと結合させることを、不可能ではないにしても非常に困難なものとするはずである(以下の図7を参照されたい)。RNA組換えの特定の注意を考慮に入れ、かつそれを起こり得るcDNA汚染からしっかりと区別するために、本発明者らは、GFPと共に、末端の255ヌクレオチドがコドン最適化されている組換えGP ORFを保持するSセグメントをクローニングした。結果として得られたGPは、異なるヌクレオチド配列を有していたが、野生型のWE株GPと同一の翻訳産物を有していた(WE/WET-GP、図3A)。しかしながら、この組換えWE/WET GP ORFは、感染性の2分節型ウイルスとしては存在せず、本研究室もNPと関連するcDNA構築体を所持していなかった。従って、WE/WETをNPと同じセグメント上に含有する存在し得る2分節型ウイルスはいかなるものであっても、セグメント間組換えの明確な証拠と見なし、このようなウイルスは、それぞれのアッセイにおいて汚染する可能性のあるcDNA又はRNAから区別された。キメラGPが、ウイルスの適応度に対する作用を有していたかを試験するために、WE/WET融合GPを保持する組換え3分節型ウイルス(r3LCMV-WEWET/GFPnat)の細胞培養増殖曲線を、野生型のWE GPを保持する3分節型ウイルス(r3LCMV-WE/GFPnat)と比較して行った(図3B)。2つのウイルスの増殖キネティクス及びピーク力価は、同程度であった(r3LCMV-WE/GFPnat:1.7x106PFU/ml、r3LCMV-WEWET/GFPnat:2.3x106PFU/ml)。従って、キメラのWEWET糖タンパク質は、ウイルスの増殖に検出できるほどの影響を与えなかった。
組換えr3LCMV-GFPnatの救出の際の目的は、3分節型ウイルスがインビボで組み換えられたかどうかを調査することであった。この目的のために、AGRAGマウスを、r3LCMV-GFPnat、r3LCMV-GFPart、又は対照としての2分節型r2LCMVに感染させた。AGRAGマウスは、標的とする欠失を、インターフェロン-α/β受容体、インターフェロン-γ受容体、及びRAG1をコードする遺伝子に保持しており、これは、免疫不全の表現型及び3分節型LCMVに感染後の慢性ウイルス血症の樹立に繋がる。血液サンプルを経時的に採取し、ウイルス力価をフォーカス形成アッセイにより評価した(図4A)。2分節型LCMVのキャリアは、感染後5日以内で5×105PFU/ml血液の範囲の高力価のウイルス血症を示し、それに続き、感染後少なくとも50日目まで104〜105PFU/mlの範囲の安定なウイルス血症を示した。3分節型LCMVに感染したマウスは、細胞培養物における減弱された増殖と一致して、20日目まで、約5×103PFU/ml血液のウイルス負荷を示した(図1Dと比較)。30日目以降は、r3LCMV-GFPnatのキャリアは、ウイルス負荷の上昇を示し、これは、r3LCMV-GFPartに感染した動物には観察されず、50日目にはウイルス血症の10倍を超える違いをもたらした。支配的なウイルス集団がまだGFPレポーター遺伝子を保持しており、従って、感染細胞においてGFP発現をもたらすかどうかを決定するために、感染後127日目に採取した3LCMV-GFPnat及びr3LCMV-GFPartキャリアの血液サンプルを用いたウイルスのフォーカス形成アッセイを行い、ヌクレオプロテイン又はレポーター遺伝子GFPについて染色した(図4B)。r3LCMV-GFPartキャリアから単離された血液の染色は、抗NP及び抗GFP抗体検出で等しい量のフォーカスをもたらした一方で(双方の評価は、独立して、103PFU/mlの範囲のウイルス力価を含んだ)、GFPを発現するフォーカスよりも少なくとも100倍大きい数の総(NP+)r3LCMV-GFPnatフォーカスが明らかであった。少なくとも104PFU/mlのウイルスの力価が、抗NP検出に基づいて測定された一方で、3頭のマウスのうちの2頭は、検出可能なGFP陽性の感染を全く示さず、1頭のマウスは、本発明者らのアッセイの検出の下限に対応する、100PFU/mlの範囲のGFP陽性フォーカスの残りの画分を有していた。感染細胞のGFP発現もまた、蛍光顕微鏡法により評価した(データは示さず)。r3LCMV-GFPnatキャリア由来の血液をアッセイした場合、GFP蛍光フォーカスは、実質的に検出不能であった。一方、r3LCMV-GFPartキャリア血液由来のGFP陽性フォーカスのマニュアル計数は、抗NPフォーカス形成アッセイで得られた力価の結果と釣り合うものであった。レポーター遺伝子発現をさらに、感染後120日目に感染マウスのPBMCのフローサイトメトリー分析で確認した。本発明者らは、r3LCMV-GFPart感染動物において、10%超のCD11b+GR1-単球/マクロファージがGFP陽性である一方で、r3LCMV-GFPnat由来の血液は、非蛍光r2LCMVに感染した動物と同程度である僅かにバックグラウンドレベルのGFPの証拠を示した(図4C〜E)。この知見はさらに、それらの天然位置にGPを有する3分節型ウイルスが、経時的にレポーター遺伝子発現を失う一方で、人工の3’UTR並置におけるGPの転位は導入遺伝子の喪失を予防するという仮説を支持した。
図4は、r3LCMV-GFPnatに感染したマウスにおいて上昇したウイルス血症及びレポーター遺伝子発現の喪失を示した。従って、組換え事象が、この実験的な結果を説明し得ると仮定した。セグメント間組換えは、GP及びNPを、同じSセグメント上に組み合わせて、ウイルス複製サイクルにおいて第二のSセグメントを不必要にするはずである。レポーター遺伝子発現の喪失と組み合わせて、このような事象は、さらに、野生型ウイルスのレベルのウイルス血症を説明できたであろう。この可能性を試験するために、感染マウスの血清由来のウイルスRNAを単離して、NP及びGP配列にそれぞれ結合する1組のプライマーを用いて、1つのRNAセグメント上にアンビセンス配向性でNP ORF及びGP ORFの双方を保持している組み換えられたと推定されるRNA分子のみを、RT-PCRにより選択的に増幅させた。結果として得られたPCR断片を、ゲル電気泳動により分析した(図5A)。全てのr3LCMV-GFPnatキャリアの血清は、RT依存性のPCR産物を生じさせた一方で、r3LCMV-GFPartキャリア及び未処理の対照は、特定のバンドを示さなかった。対照PCR反応を、PCR産物の発生源としてのcDNA汚染を排除するために、模擬的にRT処理したRNAサンプルに対して行った。3頭のr3LCMV-GFPnatキャリアそれぞれの配列決定結果を、図5Cに模式的に示した。この3頭のマウスは、類似のパターンを有するものの、別個の配列のウイルスRNAセグメントを含有していた:GP及びNPのC-末端部分は、1つのRNAセグメント上にアンビセンス配向性で見出された。これらの間で、双方の遺伝子間領域、すなわち、NP発現セグメントのもの及び元のGP発現セグメントのものは、少なくとも部分的に保持されており、3分節型ウイルスの親のSセグメントにおけるGFPレポーター遺伝子のいずれか一方又は双方由来の断片により分離されていた。GFP断片の方向及び長さは、個々のマウスから回収された3つのRNA種間で変化し、このことは、独立した組換え事象を示していた。この考えをさらに支持して、正確に同じ組み換えRNA配列が、3週間を超えるサンプリング間隔で同じマウスから採取された2つの連続したサンプルから回収された。得られた組換えSセグメント配列に基づいて、本発明者らは、図7に模式的に概略が示され図面の説明文に記載されているような、r3LCMV-GFPnatが、その2つのSセグメントを組み変えて、導入遺伝子の喪失及び野生型ウイルスへの表現型の復帰をもたらす分子機構を提案した。また、図7の模式図は、何故、提案されたSセグメント組換えの機構により、r3LCMV-GFPartがそのNP ORF及びGP ORFを組み換えて、1つの機能的Sセグメントに一緒にすることができないのかを説明する。
上記の配列決定データは、IGRの(少なくとも部分的な)重複が、その間で特に注目すべきでありかつ特徴的であった組換えSセグメントにおけるウイルスの遺伝学的なエレメントの矛盾のないパターンを明らかとした。しかしながら、1つのSセグメント上に遺伝子間領域の反復を有するアレナウイルスは、公知ではなかった。しかしながら、デュアルステムループが、旧世界アレナウイルスであるモペイア(Mopeia)に天然に発見されている。従って、本発明者らは、r3LCMV-GFPnatキャリア#3の再編成されたSセグメントを、2つのIGR及びGFPのレムナントとともに、pol-I駆動型Sセグメント発現プラスミド中にクローニングし、それぞれのウイルスを救出した。BHK-21細胞でのこのウイルス(r2LCMV_2IGRs)の増殖キネティクスを、3分節型r3LCMV-GFPnat及び2分節型r2LCMVと比較した(図6)。r2LCMV_2IGRの感染無細胞力価は、初期の時点ですでに、r3LCMV-GFPnatのそれを超えており、r2LCMVと同一のピーク力価に達した(それぞれ1.7×107PFU/ml対1.6×107PFU/ml)。重要なことに、r2LCMV_2IGRは、その親の3分節型r3LCMV-GFPnatよりもかなり高いピーク力価まで増殖し、本プロセスの間のIGRの重複にもかかわらずセグメント間組換えの選択有利性を証明した。
ワクチン接種目的でのr3LCMVartベクター送達技術の有用性を試験するために、本発明者らは、r3LCMV-GFPart(図1C)に類似であるが、そのウイルスにおけるそれぞれのGFP遺伝子の代わりに、2つの卵白アルブミン(OVA)遺伝子を有するゲノム構成を有するr3LCMV-OVAartワクチンベクターを作製した。本発明者らは、筋肉内(i.m.)の104PFUのr3LCMV-OVAartで、C57BL/6マウスを免疫化し、8日後、本発明者らは、脾臓でのT細胞応答を分析した。広く用いられているベクタープラットフォームとの比較のために、本発明者らは、C57BL/6マウスの第二の群を、108粒子の、同じくOVAを発現する複製欠損性E1欠損アデノウイルス5-ベースのベクター(rAd5-OVA)で免疫化した。免疫優性のOVA誘導
r3LCMVベクターが、機能的CD8+T細胞メモリーを誘導するかどうかという問題に対処するために、本発明者らは、C57BL/6マウスを、10e5PFUのr3LCMV-OVAartでi.v.免疫化し、25日目に、脾臓でのOVA特異的(
r3LCMVartベクターを活用して、腫瘍発現自己抗原に対するCD8+T細胞応答を誘導し得るかどうか調査するために、本発明者らは、BALB/cマウスを、ラット
I型インターフェロンは、複数の免疫賦活性及び抗腫瘍性作用を有する可能性がある。従って、I型インターフェロンの誘導は、ウイルスにより媒介されるワクチンの好ましい特徴を意味する可能性がある。本発明者らは、ELISA測定を行い、r3LCMV-OVAart、rAd-OVA、又はOVAを発現する組換えワクシニアウイルス(rVacc)で前もって24、48、又は72時間免疫化したマウスの血清中のインターフェロン-アルファ濃度を決定した(図11)。r3LCMVartは、検出可能かつ持続性の(少なくとも48時間)全身的インターフェロン-アルファ反応を誘導したが、rAdもrVaccも誘導しなかった。このことは、r3LCMVartベクターの、強力な自然免疫応答を誘導する能力の証拠となる。
図1Bに概略が示されているゲノムを保持しているr3LCMV-GFPnat及びr3LCMV-GFPartベクターとの類似で、本発明者らは、それぞれの2つのSセグメントのうちの1つずつにGFP遺伝子を保持する3分節型フニンワクチン株Candid#1-ベースのベクターからなるr3JUNV-GFPnat及びr3JUNV-GFPartを設計した(r3JUNV-GFPnat及びr3JUNV-GFPart)。本発明者らが0.01の感染多重度で感染させた293T細胞でのそれらの増殖性を本発明者らは試験し、上清を経時的に採取した(図12)。本発明者らは、r3JUNV-GFPartが、その親の2分節型フニンワクチン株Candid#1よりもゆっくりと増殖したことを見出した(図12)。しかしながら、それは、r3JUNV-GFPnatよりも速く増殖した(図12)。この3分節型フニンウイルスベースのベクターの異なる増殖挙動は、r3LCMV-GFPnat及びr3LCMV-GFPartベクターの増殖速度と類似していた(図1D)。
r3JUNV-GFPnat及びr3JUNV-GFPartの遺伝的安定性を調査するために、本発明者らは、AGRAGマウス(IFNα/βR-/-、IFNγR-/-、RAG-/-)を、7×10e4PFUのこれらのGFP発現ベクターのうちのいずれかに感染させた。比較の目的のために、第三の群を野生型2分節型Candid#1ウイルスに感染させた。後者のウイルスは、感染後20日目までに全ての感染マウスの血液中に容易に検出された(図13A)。一方で、3分節型ウイルスは、少なくとも40日間検出不能なままであった。この知見は、ゲノム再構成の結果として弱毒化されているインビボでの増殖を証明し、r3LCMV-GFPベクターを用いた図4Aの本研究者らの知見をフニンベースのベクターまで拡張した。40日後、r3JUNV-GFPnat及びr3JUNV-GFPartも各群の数頭の動物で検出可能となった(図13A)。しかしながら、重要なことに、r3JUNV-GFPnat感染マウスの一部が野生型Candid#1感染マウスの範囲のウイルス負荷に達した一方で、ウイルス血症のr3JUNV-GFPart感染マウスは、Candid#1感染対照よりも低いウイルス負荷を保持した。
次に、本発明者らは、r3LCMVart及びr3JUNVartベースのベクターを、腫瘍自己抗原特異的CD8+T細胞応答を誘導するための相同かつ異種のプライムブースト組合せに使用し得るかどうかを調査した。本発明者らは、P815マウスマスト細胞腫由来の自己抗原P1A(配列番号:24)(r3LCMV-P1Aart(配列番号:18、19、20)及びr3JUNV-P1Aart(配列番号:21、22、23))を発現するr3LCMVart及びr3JUNVartベースのベクターを構築した。これらのワクチン構築体を用いて、図14に概略が示されている相同かつ異種のプライムブースト組合せでBALB/cマウスをi.v.で免疫化した。r3LCMV-P1Aart及びr3JUNV-P1Aartの双方は、相同プライムブーストワクチン接種において投与された場合に、
本明細書において開示されるウイルス、核酸、方法、宿主細胞、及び組成物は、本明細書に記載される具体的な実施態様による範囲に限定されるべきではない。実際に、記載されたものに加えて、ウイルス、核酸、方法、宿主細胞、及び組成物の種々の変更形態が、前述の説明及び添付の図面より当業者には明らかとなろう。そのような変更形態は、添付の特許請求の範囲の範囲内であることが意図される。
(7. 配列表)
(構成1)
ウイルスのオープンリーディングフレーム(「ORF」)を、該ORFの野生型の位置とは別の位置に保持するよう操作されたアレナウイルスゲノムセグメントであって:
(i)ヌクレオプロテイン(「NP」)をコードするORFが、アレナウイルス5’非翻訳領域(「UTR」)の制御下にあるSセグメント;
(ii)マトリックスタンパク質Z(「Zタンパク質」)をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(iii)RNA依存性RNAポリメラーゼL(「Lタンパク質」)をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(iv)ウイルスの糖タンパク質(「GP」)をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント;
(v)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント;
(vi)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント;
(vii)GPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(viii)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(ix)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(x)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント;
(xi)NPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント;及び
(xii)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメントからなる群から選択される、前記アレナウイルスゲノムセグメント。
(構成2)
前記アレナウイルス3’UTRが、アレナウイルスSセグメント又はアレナウイルスLセグメントの3’UTRであり、かつ前記アレナウイルス5’UTRが、アレナウイルスSセグメント又はアレナウイルスLセグメントの5’UTRである、構成1記載のアレナウイルスゲノムセグメント。
(構成3)
構成1記載のアレナウイルスゲノムセグメントのcDNA。
(構成4)
構成3記載のcDNAを含むDNA発現ベクター。
(構成5)
構成1記載のアレナウイルスゲノムセグメント、構成3記載のcDNA、又は構成4記載のベクターを含む宿主細胞。
(構成6)
Sセグメント及びLセグメントを含むように、構成1記載のアレナウイルスゲノムセグメント、及び第二のアレナウイルスゲノムセグメントを含む、アレナウイルス粒子。
(構成7)
感染性かつ複製可能である、構成6記載のアレナウイルス粒子。
(構成8)
弱毒化されている、構成6記載のアレナウイルス粒子。
(構成9)
感染性ではあるが、非補完細胞において感染性の子孫をさらに生じさせることはできない、構成6記載のアレナウイルス粒子。
(構成10)
GP、NP、Zタンパク質、及びLタンパク質をコードする4つのORFのうちの少なくとも1つが、除去されているか、又は機能的に不活性化されている、構成9記載のアレナウイルス粒子。
(構成11)
GP、NP、Zタンパク質、及びLタンパク質をコードする4つのORFのうちの少なくとも1つが除去されて、アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFと置き換えられている、構成9記載のアレナウイルス粒子。
(構成12)
GP、NP、Zタンパク質、及びLタンパク質をコードする4つのORFのうちの1つのみが除去されて、アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFと置き換えられている、構成9記載のアレナウイルス粒子。
(構成13)
GPをコードするORFが除去されて、アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFと置き換えられている、構成9記載のアレナウイルス粒子。
(構成14)
NPをコードするORFが除去されて、アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFと置き換えられている、構成9記載のアレナウイルス粒子。
(構成15)
Zタンパク質をコードするORFが除去されて、アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFと置き換えられている、構成9記載のアレナウイルス粒子。
(構成16)
Lタンパク質をコードするORFが除去されて、アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFと置き換えられている、構成9記載のアレナウイルス粒子。
(構成17)
前記異種ORFが、レポータータンパク質をコードする、構成11〜16のいずれか1記載のアレナウイルス粒子。
(構成18)
前記異種ORFが、感染性の生物、腫瘍、又はアレルゲン由来の抗原をコードする、構成11〜17のいずれか1記載のアレナウイルス粒子。
(構成19)
抗原をコードする前記異種ORFが、ヒト免疫不全ウイルス抗原、C型肝炎ウイルス抗原、水痘帯状疱疹ウイルス抗原、サイトメガロウイルス抗原、結核菌抗原、及び腫瘍関連抗原から選択される、構成18記載のアレナウイルス粒子。
(構成20)
前記アレナウイルス粒子の増殖又は感染力が、前記アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFにより影響されない、構成11〜18のいずれか1記載のアレナウイルス粒子。
(構成21)
構成3記載のcDNAを転写することを含む、構成1記載のアレナウイルスゲノムセグメントを生成させる方法。
(構成22)
構成6記載のアレナウイルス粒子を産生させる方法であって、
(i)構成3記載のcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;
(ii)前記第二のアレナウイルスゲノムセグメントのcDNAを含むプラスミドを、該宿主細胞にトランスフェクトすること;
(iii)該宿主細胞を、ウイルス形成に適した条件下で維持すること;及び
(iv)該アレナウイルス粒子を回収すること、
を含む、前記方法。
(構成23)
前記Lセグメント及び前記Sセグメントの転写が、双方向性プロモーターを用いて行われる、構成22記載の方法。
(構成24)
アレナウイルスポリメラーゼをコードする1以上の核酸を、宿主細胞にトランスフェクトすることをさらに含む、構成22記載の方法。
(構成25)
前記アレナウイルスポリメラーゼが、Lタンパク質である、構成22記載の方法。
(構成26)
NPタンパク質をコードする1以上の核酸を、前記宿主細胞にトランスフェクトすることをさらに含む、構成22又は24記載の方法。
(構成27)
前記Lセグメント及び前記Sセグメントの転写が、それぞれ:
(i)RNAポリメラーゼIプロモーター;
(ii)RNAポリメラーゼIIプロモーター;及び
(iii)T7プロモーター
からなる群から選択されるプロモーターの制御下にある、構成22記載の方法。
(構成28)
構成10又は11〜16記載のアレナウイルス粒子、及び医薬として許容し得る担体を含むワクチン。
(構成29)
構成10又は11〜16記載のアレナウイルス粒子、及び医薬として許容し得る担体を含む医薬組成物。
(構成30)
リンパ球性脈絡髄膜炎ウイルス(「LCMV」)由来である、構成1記載のアレナウイルスゲノムセグメント、又は構成6記載のアレナウイルス粒子。
(構成31)
前記LCMVが、MPステイン、Armstrong株、又はArmstrongクローン13株である、構成30記載のアレナウイルスゲノムセグメント又はアレナウイルス粒子。
(構成32)
フニンウイルスワクチンCandid #1、又はフニンウイルスワクチンXJクローン3株由来である、構成1記載のアレナウイルスゲノムセグメント、又は構成6記載のアレナウイルス粒子。
(構成33)
1つのLセグメント及び2つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子であって、該3分節型アレナウイルス粒子の増殖が、I型インターフェロン受容体、II型インターフェロン受容体、及び組換え活性化遺伝子1(RAG1)を欠き、かつ10 4 PFUの該3分節型アレナウイルス粒子に感染しているマウスにおける70日間の持続感染後に、複製可能な2分節型ウイルス粒子をもたらさない、前記3分節型アレナウイルス粒子。
(構成34)
2つのアレナウイルスORFを、2つの別のセグメント上にではなく単一のセグメント上に一体化する、前記2つのSセグメントのセグメント間組換えが、ウイルスのプロモーター活性を抑制する、構成33記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成35)
2つのLセグメント及び1つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子であって、該3分節型アレナウイルス粒子の増殖が、I型インターフェロン受容体、II型インターフェロン受容体、及び組換え活性化遺伝子1(RAG1)を欠き、かつ10 4 PFUの該3分節型アレナウイルス粒子に感染しているマウスにおける70日間の持続感染後に、複製可能な2分節型ウイルス粒子をもたらさない、前記3分節型アレナウイルス粒子。
(構成36)
2つのアレナウイルスORFを、2つの別のセグメント上にではなく単一のセグメント上に一体化する、前記2つのLセグメントのセグメント間組換えが、ウイルスのプロモーター活性を抑制する、構成35記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成37)
前記2つのSセグメントのうちの1つが:
(i)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(ii)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(iii)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるSセグメント;
(iv)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント;
(v)LをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント;及び
(vi)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるSセグメント、
からなる群から選択される、構成33記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成38)
前記2つのLセグメントのうちの1つが:
(i)GPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(ii)NPをコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(iii)Lタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス5’UTRの制御下にあるLセグメント;
(iv)GPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント;
(v)NPをコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント;及び
(vi)Zタンパク質をコードするORFが、アレナウイルス3’UTRの制御下にあるLセグメント、
からなる群から選択される、構成35記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成39)
前記アレナウイルス3’UTRが、アレナウイルスSセグメント又はアレナウイルスLセグメントの3’UTRであり、かつ前記アレナウイルス5’UTRが、アレナウイルスSセグメント又はアレナウイルスLセグメントの5’UTRである、構成37又は38記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成40)
前記2つのSセグメントが、(i)アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFを1つ又は2つ;又は(ii)複製されたアレナウイルスORFを1つ又は2つ;又は (iii)アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFを1つ及び複製されたアレナウイルスORFを1つ含む、構成33記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成41)
前記2つのLセグメントが、(i)アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFを1つ又は2つ;又は(ii)複製されたアレナウイルスORFを2つ;又は(iii)アレナウイルス以外の生物由来の異種ORFを1つ及び複製されたアレナウイルスORFを1つを含む、構成35記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成42)
前記異種ORFが、感染性の生物、腫瘍、又はアレルゲン由来の抗原をコードする、構成40又は41記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成43)
抗原をコードする前記異種ORFが、ヒト免疫不全ウイルス抗原、C型肝炎ウイルス抗原、水痘帯状疱疹ウイルス抗原、サイトメガロウイルス抗原、結核菌抗原、及び腫瘍関連抗原から選択される、構成42記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成44)
少なくとも1つの異種ORFが、蛍光タンパク質をコードする、構成40又は41記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成45)
前記蛍光タンパク質が、緑色蛍光タンパク質又は赤色蛍光タンパク質である、構成44記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成46)
4つのアレナウイルスORFの全てを含み、かつ、感染性かつ複製可能である、構成33〜43のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成47)
4つのアレナウイルスORFのうちの1つ以上を欠き、感染性ではあるが、非補完細胞において感染性の子孫をさらに生じさせることはできない、構成33〜45のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成48)
4つのアレナウイルスORFのうちの1つを欠き、感染性ではあるが、非補完細胞において感染性の子孫をさらに生じさせることはできない、構成33〜45のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成49)
前記アレナウイルスが、GP ORFを欠く、構成46又は47記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成50)
1つのLセグメント及び2つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子であって、第一のSセグメントが、アレナウイルス3’UTRの制御下にある位置にGPをコードするORFを保持し、かつアレナウイルス5’UTRの制御下にある位置に第一の目的遺伝子をコードするORFを保持するよう操作されており、かつ第二のSセグメントが、アレナウイルス3’UTRの制御下にある位置にNPをコードするORFを保持し、かつアレナウイルス5’UTRの制御下にある位置に第二の目的遺伝子をコードするORFを保持するよう操作されている、前記3分節型アレナウイルス粒子。
(構成51)
1つのLセグメント及び2つのSセグメントを含む3分節型アレナウイルス粒子であって、第一のSセグメントが、アレナウイルス5’UTRの制御下にある位置にGPをコードするORFを保持し、かつアレナウイルス3’UTRの制御下にある位置に第一の目的遺伝子をコードするORFを保持するよう操作されており、第二のSセグメントが、アレナウイルス5’UTRの制御下にある位置にNPをコードするORFを保持し、かつアレナウイルス3’UTRの制御下にある位置に第二の目的遺伝子をコードするORFを保持するよう操作されている、前記3分節型アレナウイルス粒子。
(構成52)
前記目的遺伝子が、感染性の生物、腫瘍、又はアレルゲン由来の抗原をコードする、構成50又は51記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成53)
前記目的遺伝子が、ヒト免疫不全ウイルス抗原、C型肝炎ウイルス抗原、水痘帯状疱疹ウイルス抗原、サイトメガロウイルス抗原、結核菌抗原、及び腫瘍関連抗原から選択される抗原をコードする、構成52記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成54)
少なくとも1つの目的遺伝子が、蛍光タンパク質をコードする、構成50又は51記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成55)
前記蛍光タンパク質が、緑色蛍光タンパク質又は赤色蛍光タンパク質である、構成54記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成56)
構成33、35、37、38、50、又は51のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子ゲノムのcDNA。
(構成57)
構成56記載のcDNAを含む、DNA発現ベクター。
(構成58)
構成33又は35記載の3分節型アレナウイルス粒子、構成56記載のcDNA、又は構成57記載のベクターを含む、宿主細胞。
(構成59)
弱毒化されている、構成33〜51のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成60)
構成33記載の3分節型アレナウイルス粒子を産生させる方法であって:
(i)前記Lセグメント及び2つのSセグメントの1つ以上のcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;
(ii)該宿主細胞を、ウイルス形成に適した条件下で維持すること;及び
(iii)該アレナウイルス粒子を回収すること、
を含む、前記方法。
(構成61)
構成35記載の3分節型アレナウイルス粒子を産生させる方法であって:
(i)2つのLセグメント及び1つのSセグメントの1つ以上のcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;
(ii)該宿主細胞を、ウイルス形成に適した条件下で維持すること;及び
(iii)該アレナウイルス粒子を回収すること、
を含む、前記方法。
(構成62)
1つのLセグメント及び2つのSセグメントの転写が、双方向性プロモーターを用いて行われる、構成60記載の方法。
(構成63)
2つのLセグメント及び1つのSセグメントの転写が、双方向性プロモーターを用いて行われる、構成61記載の方法。
(構成64)
アレナウイルスポリメラーゼをコードする1以上の核酸を、前記宿主細胞にトランスフェクトすることをさらに含む、構成60又は61記載の方法。
(構成65)
前記アレナウイルスポリメラーゼが、Lタンパク質である、構成62記載の方法。
(構成66)
NPタンパク質をコードする1以上の核酸を、宿主細胞にトランスフェクトすることをさらに含む、構成60、61、62、又は63記載の方法。
(構成67)
前記Lセグメント、及び前記2つのSセグメントの転写が、それぞれ:
(i)RNAポリメラーゼIプロモーター;
(ii)RNAポリメラーゼIIプロモーター;及び
(iii)T7プロモーター、
からなる群から選択されるプロモーターの制御下にある、構成60記載の方法。
(構成68)
2つのLセグメント、及び前記Sセグメントの転写が、それぞれ:
(i)RNAポリメラーゼIプロモーター;
(ii)RNAポリメラーゼIIプロモーター;及び
(iii)T7プロモーター、
からなる群から選択されるプロモーターの制御下にある、構成61記載の方法。
(構成69)
2分節型アレナウイルス粒子と同じトロピズムを有する、構成33〜51のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成70)
複製欠損性のものである、構成33〜51のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成71)
構成33〜51、69、又は70のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子、及び医薬として許容し得る担体、を含むワクチン。
(構成72)
構成33〜51、69、又は70のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子、及び医薬として許容し得る担体、を含む医薬組成物。
(構成73)
LCMV由来である、構成33〜51、69、又は70のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成74)
前記LCMVが、MPステイン、Armstrong株、又はArmstrongクローン13株である、構成73記載の3分節型アレナウイルス粒子。
(構成75)
フニンウイルスワクチンCandid #1、又はフニンウイルスワクチンXJクローン3株由来である、構成33〜51、69、又は70のいずれか1記載の3分節型アレナウイルス粒子。
Claims (25)
(i)NPをコードするORFがアレナウイルス5’UTRの制御下にある、Sセグメント;
(ii)Zタンパク質をコードするORFがアレナウイルス5’UTRの制御下にある、Sセグメント;
(iii)Lタンパク質をコードするORFがアレナウイルス5’UTRの制御下にある、Sセグメント;
(iv)GPをコードするORFがアレナウイルス3’UTRの制御下にある、Sセグメント;
(v)LをコードするORFがアレナウイルス3’UTRの制御下にある、Sセグメント;及び
(vi)Zタンパク質をコードするORFがアレナウイルス3’UTRの制御下にある、Sセグメント、
からなる群から選択される、前記3分節型アレナウイルス粒子。
(i)GPをコードするORFがアレナウイルス5’UTRの制御下にある、Lセグメント;
(ii)NPをコードするORFがアレナウイルス5’UTRの制御下にある、Lセグメント;
(iii)Lタンパク質をコードするORFがアレナウイルス5’UTRの制御下にある、Lセグメント;
(iv)GPをコードするORFがアレナウイルス3’UTRの制御下にある、Lセグメント;
(v)NPをコードするORFがアレナウイルス3’UTRの制御下にある、Lセグメント;及び
(vi)Zタンパク質をコードするORFがアレナウイルス3’UTRの制御下にある、Lセグメント、
からなる群から選択される、前記3分節型アレナウイルス粒子。
(i)前記Lセグメント及び2つのSセグメントの1つ以上のcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;
(ii)該宿主細胞を、ウイルス形成に適した条件下で維持すること;及び
(iii)該アレナウイルス粒子を回収すること、
を含む、前記方法。
(i)2つのLセグメント及び1つのSセグメントの1つ以上のcDNAを、宿主細胞にトランスフェクトすること;
(ii)該宿主細胞を、ウイルス形成に適した条件下で維持すること;及び
(iii)該アレナウイルス粒子を回収すること、
を含む、前記方法。
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