JP6767029B2

JP6767029B2 - 疾患に対する免疫反応を誘導するための併用療法

Info

Publication number: JP6767029B2
Application number: JP2019038757A
Authority: JP
Inventors: チェン‐シンチャン，; デイヴィッド，エム．ゴールデンバーグ，; エドマンド，エー．ロッシ，; ダイアンロッシ，
Original assignee: アイビーシーファーマスーティカルズ，インコーポレイテッド
Priority date: 2013-04-03
Filing date: 2019-03-04
Publication date: 2020-10-14
Anticipated expiration: 2033-12-14
Also published as: JP2019108373A; JP2016520548A; WO2014163684A1; CN105073128A; CN107252485A; CA2899577C; EP2981281B1; JP2018135371A; CA2899577A1; JP6361039B2; EP2981281A1; EP2981281A4

Description

関連出願の相互参照

本出願は、２０１３年４月３日に出願された米国仮特許出願第６１／８０７，９９８号の３５Ｕ．Ｓ．Ｃ．１１９（ｅ）に基づく利益を主張する、２０１３年８月１４日に出願された米国特許出願第１３／９６６，４５０号の一部継続出願であり、それぞれの優先出願は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
［配列表］
本出願は、ＥＦＳ−ＷｅｂによりＡＳＣＩＩ形式で提出された配列表を含有し、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。２０１３年１２月１０日に作成された前記ＡＳＣＩＩコピーは、ＩＢＣ１３８ＷＯ２＿ＳＬ．ｔｘｔという名前であり、４９，０８４バイトのサイズである。

本発明は、がん又は感染性疾患等の疾患に対する免疫反応を誘導するための２種以上の薬剤の組み合わせに関する。例示的な薬剤は、（ｉ）白血球再指向二重特異性抗体、（ｉｉ）抗体−薬物複合体、（ｉｉｉ）インターフェロン−α、インターフェロン−β又はインターフェロン−λ等のインターフェロン（最も好ましくはインターフェロン−α）、並びに／又は（ｉｖ）チェックポイント阻害剤抗体を含んでもよい。２種以上のそのような薬剤の任意の組み合わせが、主題の方法及び組成物において使用され得る。組み合わせは、同時又は逐次的に投与され得る。そのような組み合わせは、任意の２種の薬剤、任意の３種の薬剤、又は４種全ての薬剤を含んでもよい。

ある特定の実施形態において、本発明は、白血球再指向複合物の組成物及び使用方法に関する。有用な白血球は、Ｔ細胞、ＮＫ細胞、単球、及び好中球を含み得る。好ましくは、複合物は、Ｔ細胞、ＮＫ細胞、単球、又は好中球上に発現する抗原に対する１つの結合部位と、疾患細胞又は病原体上に発現する抗原に対する別の結合部位とを有する二重特異性抗体を含む。より好ましい実施形態において、複合物は、ＤＯＣＫ−ＡＮＤ−ＬＯＣＫ（商標）複合物として作製され、成分は、ヒトタンパク質キナーゼＡ（ＰＫＡ）調節サブユニットからの二量体化及びドッキングドメイン（ＤＤＤ）部分と、ＡＫＡＰ（Ａ−キナーゼアンカータンパク質）からのアンカードメイン（ＡＤ）部分との間の結合相互作用を使用して、互いに結合する。しかしながら、二重特異性抗体複合物を作製する他の方法が知られており、使用され得る。主題の複合物は、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ６、ＣＤ８、ＣＤ２５、ＣＤ２８、ＣＤ３０、ＣＤ４０、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ４４、ＣＤ４５、ＣＤ６９又はＣＤ９０（最も好ましくはＣＤ３）等のＴ細胞上に発現する抗原に結合する１種以上の抗体又は抗原結合抗体断片と、ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ２２、ＣＤ３３、ＣＤ６６ｅ（ＣＥＡＣＡＭ５）、ＣＥＡＣＡＭ６、ＥｐＣＡＭ、ＨＥＲ２／ｎｅｕ、ＥＧＦ受容体、Ｔｒｏｐ−２、ＭＵＣ５ａｃ、又は別の腫瘍関連抗原（ＴＡＡ）、又は異なる疾患細胞若しくは病原微生物上に発現する抗原等の標的細胞上の抗原に結合する１種以上の抗体又は抗体断片とを含み得る。有用な特異的標的抗原は、以下でより詳細に議論される。二重特異性抗体は、エフェクターＴ細胞、単球、ＮＫ細胞、又は好中球を、疾患細胞、組織又は病原体を標的化するように再指向させ、標的に対する免疫反応を誘導する。

他の実施形態は、インターフェロン−α、インターフェロン−β又はインターフェロン−λ等のインターフェロン（最も好ましくはインターフェロン−α）の使用に関する。インターフェロンは、ＮＫ細胞及びマクロファージを活性化することにより免疫系機能を高めることができるサイトカイン型免疫賦活剤である。インターフェロンはまた、抗病原性薬剤としての直接的効果を有し、１つには標的抗原又は他のエフェクタータンパク質の発現を誘導することにより作用する。

チェックポイント阻害剤抗体は、主にがん治療において使用されている。免疫チェックポイントは、自己寛容の維持、及び末梢組織損傷を最小限化するための免疫系反応の度合いの調整を担う、免疫系における阻害経路を指す。しかしながら、腫瘍細胞もまた免疫系チェックポイントを活性化して、腫瘍組織に対する免疫反応の有効性を低下させ得る。細胞毒性Ｔリンパ球抗原４（ＣＴＬＡ４、ＣＤ１５２としても知られる）、プログラム細胞死タンパク質１（ＰＤ１、ＣＤ２７９としても知られる）及びプログラム細胞死１リガンド１（ＰＤ−Ｌ１、ＣＤ２７４としても知られる）に対する例示的チェックポイント阻害剤抗体は、以下に記載されるが、疾患細胞、組織又は病原体に対する免疫反応の有効性を高めるために、１種以上の他の薬剤と組み合わせて使用されてもよい。

疾患治療における免疫系誘導の効用は、例えば、免疫賦活剤の投与前に全身腫瘍組織量を低減する、又は死滅した腫瘍細胞から免疫原性抗原を放出する他の薬剤との組み合わせにより高めることができる。抗体−薬物複合体（ＡＤＣ）は、多くの種類のがんにおいて全身腫瘍組織量を効果的に低減することができる。３に後述されるように、当該技術分野において、ＩＭＭＵ−１３０（ラベツズマブ−ＳＮ−３８）、ＩＭＭＵ−１３２（ｈＲＳ７−ＳＮ−３８）及びミラツズマブ−ドキソルビシン又はｐｒｏ−２−ピロリノドキソルビシン（Ｐｒｏ２ＰＤｏｘ）の抗体複合体等の数々の例示的ＡＤＣが知られている。そのような知られたＡＤＣはいずれも、本明細書に記載のように、１種、２種又は３種の免疫賦活剤と組み合わせて使用され得る。

有用な異なる組合せは、白血球再指向二重特異性抗体（ｂｓＡｂ）及びインターフェロン（例えば、インターフェロン−α）；白血球再指向ｂｓＡｂ及びチェックポイント阻害剤抗体；白血球再指向ｂｓＡｂ及びＩＦＮ及びチェックポイント阻害剤抗体；ＡＤＣ及びチェックポイント阻害剤抗体；ＡＤＣ及びＩＦＮ及びチェックポイント阻害剤抗体；ＡＤＣ及び白血球再指向ｂｓＡｂ及びチェックポイント阻害剤抗体；又はＡＤＣ及び白血球再指向ｂｓＡｂ及びＩＦＮ及びチェックポイント阻害剤抗体を含み得る。上述のように、本明細書において開示される異なる種類の薬剤の任意の組み合わせが、疾患治療に使用され得る。

腫瘍細胞の標的化された死滅に向けてエフェクターＴ細胞を再指向させるための二重特異性抗体（ｂｓＡｂ）の使用は、臨床前及び臨床の両方において顕著な有望性を示している（例えば、Ｔｏｐｐｅｔａｌ．，２０１２，Ｂｌｏｏｄ１２０：５１８５−８７；Ｂａｒｇｏｕｅｔａｌ．，２００８，Ｓｃｉｅｎｃｅ３２１：９７４−７７を参照されたい）。現在まで開発されている二重特異性抗体は、Ｔ細胞動員及び活性化のためのＣＤ３に特異的な第１の結合部位と、ＣＤ１９等の標的疾患関連抗原に対する第２の結合部位とを含有する（Ｂａｓｓａｎ，２０１２，Ｂｌｏｏｄ１２０：５０９４−９５）。二重特異性抗体は、ＣＤ３^＋Ｔ細胞を標的疾患細胞と直接接触させ、細胞媒介細胞毒性を誘導する（Ｂａｓｓａｎ，２０１２）。抗ＣＤ３×抗ＣＤ１９二重特異性抗体は、ＭＲＤ^＋ＡＬＬに罹患した成人患者の約７０％において、非常に低濃度で完全で耐久性のある分子的寛解を生成することが報告されている（Ｔｏｐｐｅｔａｌ．，２０１２，Ｂｌｏｏｄ１２０：５１８５−８７）。神経膠腫及びＴ細胞上のＣＤ３エピトープを認識する二重特異性抗体は、ヒト患者での脳腫瘍の治療における使用に成功している（Ｎｉｔｔａ，ｅｔａｌ．Ｌａｎｃｅｔ１９９０；３５５：３６８−３７１）。

白血球再指向ｂｓＡｂは、Ｔ細胞に限定されない。ＮＫ細胞抗原ＣＤ１６及び腫瘍関連抗原（例えば、ＣＤ１９、ＣＤ２２、ＣＤ３３）に対するｓｃＦｖｓを備える二重特異性キラーエンゲージャー（ＢｉＫＥ）もまた、強力な抗がん活性を有することが示されている（例えば、Ｍｉｌｌｅｒ，ＨｅｍａｔｏｌｏｇｙＳｏｃＨｅｍａｔｏｌＥｄｕｃＰｏｇｒａｍ２０１３：２４７−５３）。他の代替例は、抗ＣＤ１６×抗ＣＤ１９×抗ＣＤ２２等の三重特異性キラーエンゲージャー（ＴｒｉＫＥｓ）を含む（Ｍｉｌｌｅｒ，２０１３；Ｇｌｅａｓｏｎｅｔａｌ．，２０１２，ＭｏｌＣａｎｃｅｒＴｈｅｒ１１：２６７４−８４）。抗ＣＤ１６×抗ＣＤ３３ＢｉＫＥは、ＡＭＬ及び骨髄異形成症候群の治療に使用された（Ｍｉｌｌｅｒ，２０１３；Ｗｉｅｒｎｉｋｅｔａｌ．，２０１３，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１９：３８４４−５５）。不応性ＡＭＬにおいて、ＣＤ１６×ＣＤ３３ＢｉＫＥは、ＮＫ細胞による強力な腫瘍細胞死滅及びサイトカイン産生をもたらした。ＡＤＡＭ１７の阻害は、ＣＤ１６×ＣＤ３３ＢｉＫＥ反応を高めた（Ｍｉｌｌｅｒ，２０１３）。例えばＣＤ１６／ＣＤ１９／ＨＬＡ−ＤＲに対する他の三重特異性三価コンストラクトが報告されている（Ｓｃｈｕｂｅｒｔｅｔａｌ．，２０１２，ｍＡｂｓ４：４５−５６）。

二重特異性抗体を生成する数々の方法が知られている（例えば、米国特許第７，４０５，３２０号を参照されたい）。二重特異性抗体は、それぞれ異なる抗原部位を認識するモノクローナル抗体を生成する２つの異なるハイブリドーマの融合が関与する、クアドローマ法により生成することができる（ＭｉｌｓｔｅｉｎａｎｄＣｕｅｌｌｏ，Ｎａｔｕｒｅ１９８３；３０５：５３７−５４０）。融合したハイブリドーマは、２つの異なる重鎖及び２つの異なる軽鎖を合成することができ、これは、無作為に関連して、１０個の異なる抗体構造の不均一集団を生成し、全抗体分子の１／８を占めるそのうちの１つだけが二重特異性となり、したがって他の形態からさらに精製されなければならない。融合したハイブリドーマは、多くの場合、細胞遺伝学的に親ハイブリドーマよりも不安定であり、産生細胞株の生成をより問題のあるものとする。

二重特異性抗体を生成するための別の方法は、得られるハイブリッド複合体が２つの異なる標的に結合するように、ヘテロ二機能性架橋剤を使用して２つの異なるモノクローナル抗体を化学的に連結させる（Ｓｔａｅｒｚ，ｅｔａｌ．Ｎａｔｕｒｅ１９８５；３１４：６２８−６３１；Ｐｅｒｅｚ，ｅｔａｌ．Ｎａｔｕｒｅ１９８５；３１６：３５４−３５６）。このアプローチにより生成された二重特異性抗体は、本質的に２つのＩｇＧ分子のヘテロ複合体であり、これは、組織内に徐々に拡散し、循環から急速に除去される。二重特異性抗体はまた、２つの親モノクローナル抗体のそれぞれの各半分子への還元により生成され得、これは、次いで混合され、ハイブリッド構造を得るために再び酸化される（ＳｔａｅｒｚａｎｄＢｅｖａｎ．ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ１９８６；８３：１４５３−１４５７）。代替のアプローチは、適切なリンカーを使用して２つ又は３つの別個に精製されたＦａｂ’断片を化学的に架橋することを含む。全てのこれらの化学的方法は、高い製造コスト、煩雑な生成プロセス、広範囲に及ぶ精製ステップ、低い収率（＜２０％）、及び不均一な生成物に起因して、商業的開発には望ましくない。

組換えＤＮＡ技術により生成される抗体の個別のＶ_Ｈ及びＶ_Ｌドメインは、互いに対合して、結合能力を有する二量体（組換えＦｖ断片）を形成し得る（米国特許第４，６４２，３３４号）。しかしながら、そのような非共有結合分子は、生理学的条件下において、任意の実用的な用途を有するには十分安定ではない。同種Ｖ_Ｈ及びＶ_Ｌドメインは、適切な組成及び長さ（通常、１２を超えるアミノ酸残基からなる）のペプチドリンカーにより連結されて、結合活性を有する単鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）を形成することができる。リンカーの長さを変化させることにより多価性及び多特異性を有するｓｃＦｖ系薬剤を製造する方法が、米国特許第５，８４４，０９４号、米国特許第５，８３７，２４２号及びＷＯ９８／４４００１において開示されている。多価性及び多特異性を有するｓｃＦｖ系薬剤の生成にしばしば関連している一般的な問題は、低い発現レベル、不均一な生成物、凝集をもたらす溶液中の不安定性、血清中の不安定性、及び低い親和性である。

ＣＤ３及びＣＤ１９を標的化するいくつかの二重特異性抗体が臨床開発中である。ＢＩＴＥ（登録商標）（二重特異性Ｔ細胞エンゲージャー）として知られるｓｃＦｖ系二重特異性抗体コンストラクトは、柔軟性リンカーを介して一列に連結した同種ＶＨ及びＶＬによりそれぞれ寄与される、２つの抗原結合特異性を含有する単鎖ポリペプチドを使用する（例えば、Ｎａｇｏｒｓｅｎｅｔａｌ．，２００９，Ｌｅｕｋｅｍｉａ＆Ｌｙｍｐｈｏｍａ５０：８８６−９１；Ａｍａｎｎｅｔａｌ．，２００９，ＪＩｍｍｕｎｏｔｈｅｒ３２：４５３−６４；ＢａｅｕｅｒｌｅａｎｄＲｅｉｎｈａｒｄｔ，２００９，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ６９：４９４１−４４を参照されたい）。ＤＡＲＴ（登録商標）（二重親和性再標的化（Ｄｕａｌ−ＡｆｆｉｎｉｔｙＲｅ−Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ））と呼ばれる別の二重特異性抗体は、ジスルフィド安定化ジアボディ設計を使用する（例えば、Ｍｏｏｒｅｅｔａｌ．，２０１１，Ｂｌｏｏｄ１１７：４５４２−５１；Ｖｅｒｉｅｔａｌ．，２０１０，ＡｒｔｈｒｉｔｉｓＲｈｅｕｍ６２：１９３３−４３を参照されたい）。ＢＩＴＥ（登録商標）及びＤＡＲＴ（登録商標）は共に、それらの微小なサイズ（約５５ｋＤａ）に起因して急速な血中クリアランスを示し、これにより、二重特異性抗体の治療レベルを維持するために、頻繁な投与が必要となる。

インターフェロンは、抗腫瘍及び抗菌宿主防御において重要な役割を果たすものであり、がん及び感染性疾患に対する治療薬剤として広範囲に研究されている（Ｂｉｌｌｉａｕｅｔａｌ．，２００６，ＣｙｔｏｋｉｎｅＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒＲｅｖ１７：３８１−４０９；Ｐｅｓｔｋａｅｔａｌ．，２００４，ＩｍｍｕｎｏｌＲｅｖ２０２：８−３２）。Ｉ型及びＩＩ型インターフェロン（ＩＦＮ−α／β及びγ）に関する相当な研究にもかかわらず、患者における短い循環半減期、全身毒性、及び最適に満たない反応により、臨床の現場におけるそれらの使用は限られている（Ｐｅｓｔｋａｅｔａｌ．，２００４，ＩｍｍｕｎｏｌＲｅｖ２０２：８−３２；Ｍｉｌｌｅｒｅｔａｌ．，２００９，ＡｎｎＮＹＡｃａｄＳｃｉ１１８２：６９−７９）。２００３年初期のＩＦＮ−λファミリーの発見は、これらの満たされていない臨床的適応のための代替のＩＦＮ薬剤を開発する刺激的な新たな機会をもたらした（Ｋｏｔｅｎｋｏｅｔａｌ．，２００３，ＮａｔＩｍｍｕｎｏｌ４：６９−７７；Ｓｈｅｐｐａｒｄｅｔａｌ．，２００３，ＮａｔＩｍｍｕｎｏｌ４：６３−８）。

ＩＦＮの治療有効性は、現在まで、ヘアリー細胞白血病、慢性骨髄性白血病、悪性黒色腫、濾胞性リンパ腫、尖圭コンジローム、ＡＩＤｓ関連カポジ肉腫、及び慢性Ｂ型及びＣ型肝炎の治療のためのＩＦＮ−α２、多発性硬化症の処置のためのＩＦＮ−β、並びに慢性肉芽腫症及び悪性大理石骨病の治療のためのＩＦＮ−γの承認により検証されている。自己分泌及び傍分泌サイトカインのこの群に関する膨大な文献にもかかわらず、臨床的に導入されているより効果的及び新規な形態を含めて、健康及び疾患におけるそれらの機能はまだ解明中である（Ｐｅｓｔｋａ，２００７，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ２８２：２００４７−５１；Ｖｉｌｃｅｋ，２００６，Ｉｍｍｕｎｉｔｙ２５：３４３−４８）。様々なインターフェロンと抗体系治療薬との組み合わせの効果もまた、未だに調査中である。

抗体−薬物複合体（ＡＤＣ）は、がん細胞等の標的細胞への細胞毒性薬剤の標的化送達を可能とする、強力なクラスの治療コンストラクトである。標的化機能のために、これらの化合物は、同じ全身送達薬剤と比較してはるかに高い治療指数を示す。ＡＤＣは、無傷抗体又は抗体断片、例えばｓｃＦｖとして開発された。抗体又は抗体断片は、生理学的条件下で安定であるが標的細胞内に入ると切断され得るリンカーを介して、薬物の１つ以上のコピーに連結する。治療用途に承認されたＡＤＣは、ＡＭＬに対するゲムツズマブオゾガマイシン（後に市場から回収された）、ＡＬＣＬ及びホジキンリンパ腫に対するブレンツキシマブベドチン、並びにＨＥＲ２陽性転移乳がんに対するトラスツズマブエムタンシンを含む（Ｖｅｒｍａｅｔａｌ．，２０１２，ＮＥｎｇｌＪＭｅｄ３６７：１７８３−９１；Ｂｒｏｓｓｅｔａｌ．，２００１，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ７：１４９０−９６；Ｆｒａｎｃｉｓｃｏｅｔａｌ．，２００３，Ｂｌｏｏｄ１０２：１４５８−６５）。イノツズマブオゾガマイシン（Ｐｆｉｚｅｒ）、グレムバツモマブベドチン（ＣｅｌｌｄｅｘＴｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ）、ＳＡＲ３４１９（Ｓａｎｏｆｉ−Ａｖｅｎｔｉｓ）、ＳＡＲ５６６５８（Ｓａｎｏｆｉ−Ａｖｅｎｔｉｓ）、ＡＭＧ−１７２（Ａｍｇｅｎ）、ＡＭＧ−５９５（Ａｍｇｅｎ）、ＢＡＹ−９４−９３４３（Ｂａｙｅｒ）、ＢＩＩＢ０１５（ＢｉｏｇｅｎＩｄｅｃ）、ＢＴ０６２（Ｂｉｏｔｅｓｔ）、ＳＧＮ−７５（ＳｅａｔｔｌｅＧｅｎｅｔｉｃｓ）、ＳＧＮ−ＣＤ１９Ａ（ＳｅａｔｔｌｅＧｅｎｅｔｉｃｓ）、ボルセツズマブマホドチン（ＳｅａｔｔｌｅＧｅｎｅｔｉｃｓ）、ＡＢＴ−４１４（ＡｂｂＶｉｅ）、ＡＳＧ−５ＭＥ（Ａｇｅｎｓｙｓ）、ＡＳＧ−２２ＭＥ（Ａｇｅｎｓｙｓ）、ＡＳＧ−１６Ｍ８Ｆ（Ａｇｅｎｓｙｓ）、ＩＭＧＮ−５２９（ＩｍｍｕｎｏＧｅｎ）、ＩＭＧＮ−８５３（ＩｍｍｕｎｏＧｅｎ）、ＭＤＸ−１２０３（Ｍｅｄａｒｅｘ）、ＭＬＮ−０２６４（Ｍｉｌｌｅｎｉｕｍ）、ＲＧ−７４５０（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７４５８（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７５９３（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７５９６（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７５９８（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７５９９（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７６００（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７６３６（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、抗ＰＳＭＡＡＤＣ（Ｐｒｏｇｅｎｉｃｓ）、ロルボツズマブメルタンシン（ＩｍｍｕｎｏＧｅｎ）、ミラツズマブ−ドキソルビシン（Ｉｍｍｕｎｏｍｅｄｉｃｓ）、ＩＭＭＵ−１３０（Ｉｍｍｕｎｏｍｅｄｉｃｓ）、ＩＭＭＵ−１３２（Ｉｍｍｕｎｏｍｅｄｉｃｓ）及びｐｒｏ−２−ピロリノドキソルビシンの抗体複合体等の、他の多くの候補ＡＤＣが現在臨床試験中である。（例えば、Ｌｉｅｔａｌ．，２０１３，ＤｒｕｇＤｉｓｃＴｈｅｒ７：１７８−８４；Ｆｉｒｅｒ＆Ｇｅｌｌｅｒｍａｎ，ＪＨｅｍａｔｏｌＯｎｃｏｌ５：７０；Ｂｅｃｋｅｔａｌ．，２０１０，ＤｉｓｃｏｖＭｅｄ１０：３２９−３９；Ｍｕｌｌａｒｄ，２０１３，ＮａｔｕｒｅＲｅｖＤｒｕｇＤｉｓｃｏｖｅｒｙ１２：３２９、米国仮特許出願第６１／７６１，８４５号を参照されたい。）低減された全身毒性で強力な抗がん剤として作用するＡＤＣの可能性のために、それらは、全身腫瘍組織量を低減するために単独で、又は補助療法として使用され得る。

免疫治療の別の有望なアプローチは、免疫チェックポイントタンパク質に対するアンタゴニスト抗体の使用に関する（例えば、Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−６４）。免疫チェックポイントは、自己寛容を維持する、並びに抗原刺激に対する免疫反応の期間及び程度を調整するように作用する、免疫系機能の外因性阻害経路として機能する（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２）。しかしながら、腫瘍組織、及びおそらくはある特定の病原体が、チェックポイント系を共選択（ｃｏ−ｏｐｔ）して、宿主免疫反応の有効性を低減し、腫瘍成長及び／又は慢性感染症をもたらすと思われる（例えば、Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−６４；Ｎｉｒｓｃｈｌ＆Ｄｒａｋｅ，２０１３，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１９：４９１７−２４を参照されたい）。チェックポイント分子は、ＣＴＬＡ４（細胞毒性Ｔリンパ球抗原−４）、ＰＤ１（プログラム細胞死タンパク質１）、ＰＤ−Ｌ１（プログラム細胞死リガンド１）、ＬＡＧ−３（リンパ球活性化遺伝子−３）、ＴＩＭ−３（Ｔ細胞免疫グロブリン及びムチンタンパク質−３）並びに他のいくつかを含む（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−６４；Ｎｉｒｓｃｈｌ＆Ｄｒａｋｅ，２０１３，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１９：４９１７−２４）。チェックポイントタンパク質のいくつか（ＣＴＬＡ４、ＰＤ１、ＰＤ−Ｌ１）に対する抗体が臨床試験中であり、標準治療に対し耐性を有していた腫瘍に対する予想外の効力を示した。

より長いＴ_１／２、より良好な薬物動態特性、増加したｉｎｖｉｖｏ安定性、及び／又は改善されたｉｎｖｉｖｏ効力を有する改善された二重特異性抗体複合物を生成するための方法及び組成物が必要とされている。さらに、がん又は感染性疾患等の様々な疾患に対する免疫反応を誘導することを目的とした治療の効力を改善するための併用療法が必要とされている。

本発明は、白血球再指向複合物、インターフェロン、チェックポイント阻害剤抗体、及び抗体−薬物複合体（ＡＤＣ）からなる群から選択される２種以上の薬剤との併用療法に関する。最初の３種類の薬剤は、腫瘍関連抗原（ＴＡＡ）又は病原体（微生物）発現抗原等の疾患関連抗原に対する免疫反応を誘導する、又は高めるために使用され得る。ＡＤＣは、全身腫瘍組織量を低減し、治療の全体的な効力を高めるために、免疫賦活剤のいずれか又は全てと組み合わせて使用されてもよい。

白血球再指向複合物を使用する実施形態において、複合物は、好ましくは、白血球発現抗原に対する１つの結合部位と、腫瘍細胞又は病原体（すなわち微生物）上の標的抗原に結合する第２の結合部位を有する、二重特異性抗体（ｂｓＡｂ）である。例示的なＴ細胞抗原は、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ６、ＣＤ８、ＣＤ２５、ＣＤ２８、ＣＤ３０、ＣＤ４０、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ４４、ＣＤ４５、ＣＤ６９及びＣＤ９０からなる群から選択される。ＮＫ細胞上に発現する例示的な抗原は、ＣＤ８、ＣＤ１６、ＣＤ５６、ＣＤ５７、ＡＤＡＭ１７、ＫＩＲ及びＣＤ１３７からなる群から選択される。例示的な単球抗原は、ＣＤ７４、ＨＬＡ−ＤＲアルファ鎖、ＣＤ１４、ＣＤ１６、ＣＤ６４及びＣＤ８９からなる群から選択される。例示的な好中球抗原は、ＣＥＡＣＡＭ６、ＣＥＡＣＡＭ８、ＣＤ１６ｂ、ＣＤ３２ａ、ＣＤ８９、ＣＤ１７７、ＣＤ１１ａ、ＣＤ１１ｂ及びＳＬＣ４４Ａ２からなる群から選択される。好ましくは、Ｔ細胞抗原はＣＤ３であり、又は、ＮＫ細胞抗原はＣＤ１６である。第２の抗体の標的抗原は、アルファ−フェトプロテイン（ＡＦＰ）、α４インテグリン、Ｂ７、炭酸脱水酵素ＩＸ、補体因子Ｃ１ｑ、Ｃ１ｒ、Ｃ１ｓ、Ｃ２ａ、Ｃ２ｂ、Ｃ３、Ｃ３ａ、Ｃ３ｂ、Ｃ４、Ｃ４ａ、Ｃ４ｂ、Ｃ５ａ、Ｃ５ａＲ、Ｃ５ｂ、Ｃ５、Ｃ６、Ｃ７、Ｃ８、Ｃ９ｎ、ＣＣＣＬ１９、ＣＣＣＬ２１、ＣＤ１、ＣＤ１ａ、ＣＤ２、ＣＤ３Ｒ、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ８、ＣＤ１１Ａ、ＣＤ１４、ＣＤ１５、ＣＤ１６、ＣＤ１８、ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ２１、ＣＤ２２、ＣＤ２３、ＣＤ２５、ＣＤ２９、ＣＤ３０、ＣＤ３２ｂ、ＣＤ３３、ＣＤ３７、ＣＤ３８、ＣＤ４０、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ４４、ＣＤ４５、ＣＤ４６、ＣＤ５２、ＣＤ５４、ＣＤ５５、ＣＤ５９、ＣＤ６４、ＣＤ６６ａ−ｅ、ＣＤ６７、ＣＤ７０、ＣＤ７４、ＣＤ７９ａ、ＣＤ７９ｂ、ＣＤ８０、ＣＤ８３、ＣＤ８６、ＣＤ９５、ＣＤ１２６、ＣＤ１３３、ＣＤ１３８、ＣＤ１４７、ＣＤ１５４、ＣＥＡＣＡＭ−５、ＣＥＡＣＡＭ−６、ＣＳＡｐ、フィブロネクチンのＥＤ−Ｂ、ＥＧＦＲ、ＥＧＰ−１（ＴＲＯＰ−２）、ＥＧＰ−２、ＥｒｂＢ２、Ｈ因子、ＦＨＬ−１、フィブリン、Ｆｌｔ−３、葉酸受容体、糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ、ｇｐ４１、ｇｐ１２０、ＧＲＯ−β、ＨＬＡ−ＤＲ、ＨＭ１．２４、ＨＭ１．２４、ＨＭＧＢ−１、低酸素誘導因子（ＨＩＦ）、Ｉａ、ＩＣＡＭ−１、ＩＦＮ−α、ＩＦＮ−β、ＩＦＮ−γ、ＩＦＮ−λ、ＩｇＥ、ＩＧＦ−１Ｒ、ＩＬ−１、ＩＬ−１Ｒａ、ＩＬ−２、ＩＬ−４Ｒ、ＩＬ−６、ＩＬ−６Ｒ、ＩＬ−８、ＩＬ−１３Ｒ、ＩＬ−１５Ｒ、ＩＬ−１５、ＩＬ−１７、ＩＬ−１７Ｒ、ＩＬ−１８、ＩＬ−１８Ｒ、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１２、ＩＬ−１５、ＩＬ−１７、ＩＬ−１８、ＩＬ−２５、インスリン様成長因子−１（ＩＬＧＦ−１）、ＩＰ−１０、ＫＩＲ、Ｌｅ（ｙ）、リポ多糖体（ＬＰＳ）、ＭＡＧＥ、ＭＣＰ−１、ｍＣＲＰ、ＭＩＦ、ＭＩＰ−１Ａ、ＭＩＰ−１Ｂ、ＭＵＣ１、ＭＵＣ２、ＭＵＣ３、ＭＵＣ４、ＭＵＣ５ａｃ、ＮＣＡ−９０、ＮＣＡ−９５、ＮＦ−κＢ、ＰｌＧＦ、ＰＳＭＡ、ＲＡＮＴＥＳ、Ｔ１０１、ＴＡＣ、ＴＡＧ−７２、テネイシン、Ｔｈｏｍｓｏｎ−Ｆｒｉｅｄｅｎｒｅｉｃｈ抗原、トロンビン、組織因子、Ｔｎ抗原ＴＮＦ−α、ＴＲＡＩＬ受容体（Ｒ１及びＲ２）、腫瘍壊死抗原、ＶＥＧＦ、ＶＥＧＦＲ並びにがん遺伝子産物からなる群から選択され得る。

以下の実施例において開示される白血球再指向ｂｓＡｂの例示的な設計は、抗ＣＤ３ｓｃＦｖを抗ＣＤ１９Ｆ（ａｂ）_２と組み合わせ、（１９）−３ｓと指定されるコンストラクトを形成したが、これはＢ細胞を特異的に標的化した。抗ＣＤ３を他の腫瘍関連抗原に対する抗体断片と組み合わせた他のｂｓＡｂは、以下でより詳細に議論されるが、様々な固形腫瘍の標的化白血球免疫治療において有用である。この設計の利点は、腫瘍細胞に対する二価結合、急速な腎クリアランスを不可能とするより大きなサイズ（約１３０ｋＤａ）、及び強力な白血球媒介細胞毒性を含む。ｂｓＡｂは、白血球と同種標的細胞との間の免疫学的シナプスの形成を媒介し、標的細胞の存在下で白血球活性化及び増殖を誘導し、ｉｎｖｉｔｒｏにおいて強力な白血球媒介標的細胞死滅を再指向し、ｉｎｖｉｖｏにおいてヒト腫瘍の成長を阻害する。

好ましい実施形態は、より長いＴ_１／２、より良好な薬物動態特性及び増加したｉｎｖｉｖｏ安定性を有する、三価ＤＮＬ（商標）複合物として生成された白血球再指向二重特異性抗体に関する。ＡＫＡＰからのＡＤ部分に結合したヒトＰＫＡ調節サブユニットＲＩα，ＲＩβ，ＲＩＩα又はＲＩＩβからのＤＤＤ部分の二量体を含むＤＮＬ（商標）複合物の生成及び使用のための方法は、周知である（例えば、米国特許第７，５５０，１４３号；米国特許第７，５２１，０５６号；米国特許第７，５３４，８６６号；米国特許第７，５２７，７８７号；米国特許第７，６６６，４００号；米国特許第７，９０６，１１８号；米国特許第７，９０１，６８０号；米国特許第８，００３，１１１号及び米国特許第８，０３４，３５２号を参照されたく、それぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる）。抗体又は抗体断片等の異なるエフェクター部分をＤＤＤ及びＡＤ部分に結合させることにより、事実上エフェクターの任意の組み合わせを含むＤＮＬ（商標）複合物が構築及び使用され得る。

有用な抗体は、様々なアイソタイプのもの、好ましくは、ヒトＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３又はＩｇＧ４、より好ましくはヒトＩｇＧ１ヒンジ及び定常領域配列を含むものであってもよい。抗体又はその断片は、ｖａｎｄｅｒＮｅｕｔＫｏｌｆｓｃｈｏｔｅｎら（Ｓｃｉｅｎｃｅ２００７；３１７：１５５４−１５５７）により説明されたように、キメラヒト−マウス、ヒト化（ヒトフレームワーク及びマウス超可変（ＣＤＲ）領域）、又は完全ヒト並びにそれが変化したもの、例えば半−ＩｇＧ４抗体（「ユニボディ」と呼ばれる）であってもよい。より好ましくは、抗体又はその断片は、ヒト対象に投与された場合に低減された免疫原性をもたらし得る、特定のアロタイプに属するヒト定常領域配列を含むように設計又は選択されてもよい。投与に好ましいアロタイプは、Ｇ１ｍ３、Ｇ１ｍ３，１、Ｇ１ｍ３，２又はＧ１ｍ３，１，２等の非Ｇ１ｍ１アロタイプ（ｎＧ１ｍ１）を含む。より好ましくは、アロタイプは、ｎＧ１ｍ１、Ｇ１ｍ３、ｎＧ１ｍ１，２及びＫｍ３アロタイプからなる群から選択される。

他の好ましい実施形態は、１種以上のチェックポイント阻害剤抗体と組み合わせた白血球再指向複合物の組成物及び／又は使用に関する。そのような抗体は、チェックポイント阻害剤機能に関して拮抗する。ラムブロリズマブ（ＭＫ−３４７５、Ｍｅｒｃｋ）、ニボルマブ（ＢＭＳ−９３６５５８、Ｂｒｉｓｔｏｌ−ＭｙｅｒｓＳｑｕｉｂｂ）、ピジリズマブ（ＣＴ−０１１、ＣｕｒｅＴｅｃｈＬｔｄ．）、ＡＭＰ−２２４（Ｍｅｒｃｋ）、ＭＤＸ−１１０５（Ｍｅｄａｒｅｘ）、ＭＥＤＩ４７３６（ＭｅｄＩｍｍｕｎｅ）、ＭＰＤＬ３２８０Ａ（Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＢＭＳ−９３６５５９（Ｂｒｉｓｔｏｌ−ＭｙｅｒｓＳｑｕｉｂｂ）、イピリムマブ（Ｂｒｉｓｔｏｌ−ＭｙｅｒｓＳｑｕｉｂｂ）及びトレメリムマブ（Ｐｆｉｚｅｒ）等の多くのそのような抗体が、当該技術分野において知られている。リルルマブ（ＩｎｎａｔｅＰｈａｒｍａ）及びＩＰＨ２１０１（ＩｎｎａｔｅＰｈａｒｍａ）等の抗ＫＩＲ抗体は、ＮＫ細胞において同様の機能を行うことができる。いかなる既知のチェックポイント阻害剤抗体も、他の薬剤の１種以上と組み合わせて使用され得る。

組み合わせて使用され得る別の薬剤は、インターフェロンである。有用なインターフェロンは、当該技術分野において知られており、インターフェロン−α、インターフェロン−β、インターフェロン−λ１、インターフェロン−λ２又はインターフェロン−λ３を含み得る。好ましくは、インターフェロンは、インターフェロン−αである。主題のインターフェロンは、遊離インターフェロン、ＰＥＧ化インターフェロン、インターフェロン融合タンパク質又は抗体に複合化したインターフェロンとして投与され得る。

代替の実施形態において、上述の免疫賦活剤の１種以上が、抗体−薬物複合体（ＡＤＣ）と組み合わせて使用されてもよい。ＡＤＣは、著しい全身毒性を示さずに全身腫瘍組織量を低減するのに特に効果的であり、白血球再標的化ｂｓＡｂ、インターフェロン及び／又はチェックポイント阻害剤抗体により誘導される免疫反応の有効性を改善するように作用し得る。例示的な有用なＡＤＣは、ＡＭＬに対するゲムツズマブオゾガマイシン（後に市場から回収された）、ＡＬＣＬ及びホジキンリンパ腫に対するブレンツキシマブベドチン、並びにＨＥＲ２陽性転移乳がんに対するトラスツズマブエムタンシンを含む（Ｖｅｒｍａｅｔａｌ．，２０１２，ＮＥｎｇｌＪＭｅｄ３６７：１７８３−９１；Ｂｒｏｓｓｅｔａｌ．，２００１，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ７：１４９０−９６；Ｆｒａｎｃｉｓｃｏｅｔａｌ．，２００３，Ｂｌｏｏｄ１０２：１４５８−６５）治療用途に承認されたＡＤＣを含み得る。イノツズマブオゾガマイシン（Ｐｆｉｚｅｒ）、グレムバツモマブベドチン（ＣｅｌｌｄｅｘＴｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ）、ＳＡＲ３４１９（Ｓａｎｏｆｉ−Ａｖｅｎｔｉｓ）、ＳＡＲ５６６５８（Ｓａｎｏｆｉ−Ａｖｅｎｔｉｓ）、ＡＭＧ−１７２（Ａｍｇｅｎ）、ＡＭＧ−５９５（Ａｍｇｅｎ）、ＢＡＹ−９４−９３４３（Ｂａｙｅｒ）、ＢＩＩＢ０１５（ＢｉｏｇｅｎＩｄｅｃ）、ＢＴ０６２（Ｂｉｏｔｅｓｔ）、ＳＧＮ−７５（ＳｅａｔｔｌｅＧｅｎｅｔｉｃｓ）、ＳＧＮ−ＣＤ１９Ａ（ＳｅａｔｔｌｅＧｅｎｅｔｉｃｓ）、ボルセツズマブマホドチン（ＳｅａｔｔｌｅＧｅｎｅｔｉｃｓ）、ＡＢＴ−４１４（ＡｂｂＶｉｅ）、ＡＳＧ−５ＭＥ（Ａｇｅｎｓｙｓ）、ＡＳＧ−２２ＭＥ（Ａｇｅｎｓｙｓ）、ＡＳＧ−１６Ｍ８Ｆ（Ａｇｅｎｓｙｓ）、ＩＭＧＮ−５２９（ＩｍｍｕｎｏＧｅｎ）、ＩＭＧＮ−８５３（ＩｍｍｕｎｏＧｅｎ）、ＭＤＸ−１２０３（Ｍｅｄａｒｅｘ）、ＭＬＮ−０２６４（Ｍｉｌｌｅｎｉｕｍ）、ＲＧ−７４５０（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７４５８（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７５９３（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７５９６（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７５９８（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７５９９（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７６００（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、ＲＧ−７６３６（Ｒｏｃｈｅ／Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）、抗ＰＳＭＡＡＤＣ（Ｐｒｏｇｅｎｉｃｓ）、ロルボツズマブメルタンシン（ＩｍｍｕｎｏＧｅｎ）、ミラツズマブ−ドキソルビシン（Ｉｍｍｕｎｏｍｅｄｉｃｓ）、ＩＭＭＵ−１３０（Ｉｍｍｕｎｏｍｅｄｉｃｓ）及びＩＭＭＵ−１３２（Ｉｍｍｕｎｏｍｅｄｉｃｓ）等の、他の多くの候補ＡＤＣが現在臨床試験中である。（例えば、Ｌｉｅｔａｌ．，２０１３，ＤｒｕｇＤｉｓｃＴｈｅｒ７：１７８−８４；Ｆｉｒｅｒ＆Ｇｅｌｌｅｒｍａｎ，ＪＨｅｍａｔｏｌＯｎｃｏｌ５：７０；Ｂｅｃｋｅｔａｌ．，２０１０，ＤｉｓｃｏｖＭｅｄ１０：３２９−３９；Ｍｕｌｌａｒｄ，２０１３，ＮａｔｕｒｅＲｅｖＤｒｕｇＤｉｓｃｏｖｅｒｙ１２：３２９を参照されたい。）好ましくは、ＡＤＣが免疫賦活剤と組み合わせて使用される場合、ＡＤＣは、免疫賦活剤の前に投与される。

ある特定の実施形態において、主題の併用療法は、がんの治療に有用となり得る。任意の種類の腫瘍及び任意の種類の腫瘍抗原も標的化され得ると予測される。標的化され得るがんの例示的な種類は、急性リンパ芽球性白血病、急性骨髄性白血病、胆嚢がん、乳がん、子宮頸がん、慢性リンパ球性白血病、慢性骨髄性白血病、結腸直腸がん、子宮内膜がん、食道、胃、頭頸部がん、ホジキンリンパ腫、肺がん、甲状腺髄様がん、非ホジキンリンパ腫、多発性骨髄腫、腎臓がん、卵巣がん、膵臓がん、神経膠腫、黒色腫、肝臓がん、前立腺がん、及び膀胱がんを含む。しかしながら、当業者には、事実上任意の種類のがんに対して腫瘍関連抗原が知られていることが理解される。

白血球再指向ｂｓＡｂ及び／又はＡＤＣにより標的化され得る腫瘍関連抗原は、アルファ−フェトプロテイン（ＡＦＰ）、α−アクチニン−４、Ａ３、Ａ３３抗体に特異的な抗原、ＡＲＴ−４、Ｂ７、Ｂａ７３３、ＢＡＧＥ、ＢｒＥ３−抗原、ＣＡ１２５、ＣＡＭＥＬ、ＣＡＰ−１、炭酸脱水酵素ＩＸ、ＣＡＳＰ−８／ｍ、ＣＣＣＬ１９、ＣＣＣＬ２１、ＣＤ１、ＣＤ１ａ、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ８、ＣＤ１１Ａ、ＣＤ１４、ＣＤ１５、ＣＤ１６、ＣＤ１８、ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ２１、ＣＤ２２、ＣＤ２３、ＣＤ２５、ＣＤ２９、ＣＤ３０、ＣＤ３２ｂ、ＣＤ３３、ＣＤ３７、ＣＤ３８、ＣＤ４０、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ４４、ＣＤ４５、ＣＤ４６、ＣＤ５２、ＣＤ５４、ＣＤ５５、ＣＤ５９、ＣＤ６４、ＣＤ６６ａ−ｅ、ＣＤ６７、ＣＤ７０、ＣＤ７０Ｌ、ＣＤ７４、ＣＤ７９ａ、ＣＤ７９ｂ、ＣＤ８０、ＣＤ８３、ＣＤ９５、ＣＤ１２６、ＣＤ１３２、ＣＤ１３３、ＣＤ１３８、ＣＤ１４７、ＣＤ１５４、ＣＤＣ２７、ＣＤＫ−４／ｍ、ＣＤＫＮ２Ａ、ＣＴＬＡ４、ＣＸＣＲ４、ＣＸＣＲ７、ＣＸＣＬ１２、ＨＩＦ−１α、結腸特異的抗原−ｐ（ＣＳＡｐ）、ＣＥＡ（ＣＥＡＣＡＭ５）、ＣＥＡＣＡＭ６、ｃ−Ｍｅｔ、ＤＡＭ、ＥＧＦＲ、ＥＧＦＲｖＩＩＩ、ＥＧＰ−１（ＴＲＯＰ−２）、ＥＧＰ−２、ＥＬＦ２−Ｍ、Ｅｐ−ＣＡＭ、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、Ｆｌｔ−１、Ｆｌｔ−３、葉酸受容体、Ｇ２５０抗原、ＧＡＧＥ、ｇｐ１００、ＧＲＯ−β、ＨＬＡ−ＤＲ、ＨＭ１．２４、ヒト絨毛性ゴナドトロピン（ＨＣＧ）及びそのサブユニット、ＨＥＲ２／ｎｅｕ、ＨＭＧＢ−１、低酸素誘導因子（ＨＩＦ−１）、ＨＳＰ７０−２Ｍ、ＨＳＴ−２、Ｉａ、ＩＧＦ−１Ｒ、ＩＦＮ−γ、ＩＦＮ−α、ＩＦＮ−β、ＩＦＮ−λ、ＩＬ−４Ｒ、ＩＬ−６Ｒ、ＩＬ−１３Ｒ、ＩＬ−１５Ｒ、ＩＬ−１７Ｒ、ＩＬ−１８Ｒ、ＩＬ−２、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１２、ＩＬ−１５、ＩＬ−１７、ＩＬ−１８、ＩＬ−２３、ＩＬ−２５、インスリン様成長因子−１（ＩＧＦ−１）、ＫＣ４−抗原、ＫＳ−１−抗原、ＫＳ１−４、Ｌｅ−Ｙ、ＬＤＲ／ＦＵＴ、マクロファージ遊走阻止因子（ＭＩＦ）、ＭＡＧＥ、ＭＡＧＥ−３、ＭＡＲＴ−１、ＭＡＲＴ−２、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ＴＲＡＧ−３、ｍＣＲＰ、ＭＣＰ−１、ＭＩＰ−１Ａ、ＭＩＰ−１Ｂ、ＭＩＦ、ＭＵＣ１、ＭＵＣ２、ＭＵＣ３、ＭＵＣ４、ＭＵＣ５ａｃ、ＭＵＣ１３、ＭＵＣ１６、ＭＵＭ−１／２、ＭＵＭ−３、ＮＣＡ６６、ＮＣＡ９５、ＮＣＡ９０、ＰＡＭ４抗原、膵臓がんムチン、ＰＤ１受容体、胎盤成長因子、ｐ５３、ＰＬＡＧＬ２、前立腺酸性フォスファターゼ、ＰＳＡ、ＰＲＡＭＥ、ＰＳＭＡ、ＰｌＧＦ、ＩＬＧＦ、ＩＬＧＦ−１Ｒ、ＩＬ−６、ＩＬ−２５、ＲＳ５、ＲＡＮＴＥＳ、Ｔ１０１、ＳＡＧＥ、Ｓ１００、スルビビン、スルビビン−２Ｂ、ＴＡＣ、ＴＡＧ−７２、テネイシン、ＴＲＡＩＬ受容体、ＴＮＦ−α、Ｔｎ抗原、Ｔｈｏｍｓｏｎ−Ｆｒｉｅｄｅｎｒｅｉｃｈ抗原、腫瘍壊死抗原、ＶＥＧＦＲ、ＥＤ−Ｂフィブロネクチン、ＷＴ−１、１７−１Ａ−抗原、補体因子Ｃ３、Ｃ３ａ、Ｃ３ｂ、Ｃ５ａ、Ｃ５、血管形成マーカー、ｂｃｌ−２、ｂｃｌ−６、Ｋｒａｓ、がん遺伝子マーカー並びにがん遺伝子産物を含むが、これらに限定されない（例えば、Ｓｅｎｓｉｅｔａｌ．，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ２００６，１２：５０２３−３２；Ｐａｒｍｉａｎｉｅｔａｌ．，ＪＩｍｍｕｎｏｌ２００７，１７８：１９７５−７９；Ｎｏｖｅｌｌｉｎｏｅｔａｌ．ＣａｎｃｅｒＩｍｍｕｎｏｌＩｍｍｕｎｏｔｈｅｒ２００５，５４：１８７−２０７を参照されたい）。

がん治療に使用され得る例示的な抗体は、ｈＡ１９（抗ＣＤ１９、米国特許第７，１０９，３０４号）、ｈＲ１（抗ＩＧＦ−１Ｒ、米国特許出願第１２／７２２，６４５号、３／１２／１０出願）、ｈＰＡＭ４（抗ＭＵＣ５ａｃ、米国特許第７，２８２，５６７号）、ｈＡ２０（抗ＣＤ２０、米国特許第７，２５１，１６４号）、ｈＩＭＭＵ３１（抗ＡＦＰ、米国特許第７，３００，６５５号）、ｈＬＬ１（抗ＣＤ７４、米国特許第７，３１２，３１８号）、ｈＬＬ２（抗ＣＤ２２、米国特許第７，０７４，４０３号）、ｈＭｕ−９（抗ＣＳＡｐ、米国特許第７，３８７，７７３号）、ｈＬ２４３（抗ＨＬＡ−ＤＲ、米国特許第７，６１２，１８０号）、ｈＭＮ−１４（抗ＣＥＡＣＡＭ５、米国特許第６，６７６，９２４号）、ｈＭＮ−１５（抗ＣＥＡＣＡＭ６、米国特許第７，５４１，４４０号）、ｈＲＳ７（抗ＥＧＰ−１、米国特許第７，２３８，７８５号）、ｈＭＮ−３（抗ＣＥＡＣＡＭ６、米国特許第７，５４１，４４０号）、Ａｂ１２４及びＡｂ１２５（抗ＣＸＣＲ４、米国特許第７，１３８，４９６号）を含むがこれらに限定されず、それぞれの引用された特許又は特許出願の実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる。

免疫刺激抗体との併用療法は、例えば腫瘍細胞に対する効力を高めることが報告されている。Ｍｏｒａｌｅｓ−Ｋａｓｔｒｅｓａｎａら（２０１３，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１９：６１５１−６２）は、抗ＰＤ−Ｌ１（１０Ｂ５）抗体と抗ＣＤ１３７（１Ｄ８）及び抗ＯＸ４０（ＯＸ８６）抗体との組み合わせが、肝細胞癌のトランスジェニックマウスモデルにおいて効力の向上を提供することを示した。抗ＣＴＬＡ４及び抗ＰＤ１抗体の組み合わせもまた、極めて有効であることが報告されている（Ｗｏｌｃｈｏｋｅｔａｌ．，２０１３，ＮＥｎｇｌＪＭｅｄ３６９：１２２−３３）。リツキシマブとリルルマブ（ＩｎｎａｔｅＰｈａｒｍａ）又はＩＰＨ２１０１（ＩｎｎａｔｅＰｈａｒｍａ）等の抗ＫＩＲ抗体との組み合わせもまた、造血器腫瘍に対してより有効であった（Ｋｏｈｒｔｅｔａｌ．，２０１２）。当業者には、主題の併用療法が、免疫刺激、抗腫瘍又は抗感染薬剤である複数の抗体との組み合わせを含んでもよいことが理解される。

様々な疾患状態の治療に使用され得る代替の抗体は、アブシキシマブ（抗糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ）、アレムツズマブ（抗ＣＤ５２）、ベバシズマブ（抗ＶＥＧＦ）、セツキシマブ（抗ＥＧＦＲ）、ゲムツズマブ（抗ＣＤ３３）、イブリツモマブ（抗ＣＤ２０）、パニツムマブ（抗ＥＧＦＲ）、リツキシマブ（抗ＣＤ２０）、トシツモマブ（抗ＣＤ２０）、トラスツズマブ（抗ＥｒｂＢ２）、ラムブロリズマブ（抗ＰＤ１受容体）、ニボルマブ（抗ＰＤ１受容体）、イピリムマブ（抗ＣＴＬＡ４）、アバゴボマブ（抗ＣＡ−１２５）、アデカツムマブ（抗ＥｐＣＡＭ）、アトリズマブ（抗ＩＬ−６受容体）、ベンラリズマブ（抗ＣＤ１２５）、オビヌツズマブ（ＧＡ１０１、抗ＣＤ２０）、ＣＣ４９（抗ＴＡＧ−７２）、ＡＢ−ＰＧ１−ＸＧ１−０２６（抗ＰＳＭＡ、米国特許出願第１１／９８３，３７２号、ＡＴＣＣＰＴＡ−４４０５及びＰＴＡ−４４０６として寄託）、Ｄ２／Ｂ（抗ＰＳＭＡ、ＷＯ２００９／１３０５７５）、トシリズマブ（抗ＩＬ−６受容体）、バシリキシマブ（抗ＣＤ２５）、ダクリズマブ（抗ＣＤ２５）、エファリズマブ（抗ＣＤ１１ａ）、ＧＡ１０１（抗ＣＤ２０；ＧｌｙｃａｒｔＲｏｃｈｅ）、アタリズマブ（抗α４インテグリン）、オマリズマブ（抗ＩｇＥ）；抗ＴＮＦ−α抗体、例えばＣＤＰ５７１（Ｏｆｅｉｅｔａｌ．、２０１１、Ｄｉａｂｅｔｅｓ４５：８８１−８５）、ＭＴＮＦＡＩ、Ｍ２ＴＮＦＡＩ、Ｍ３ＴＮＦＡＩ、Ｍ３ＴＮＦＡＢＩ、Ｍ３０２Ｂ、Ｍ３０３（ＴｈｅｒｍｏＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ）、インフリキシマブ（Ｃｅｎｔｏｃｏｒ、Ｍａｌｖｅｒｎ、ＰＡ）、セルトリズマブペゴル（ＵＣＢ、Ｂｒｕｓｓｅｌｓ、Ｂｅｌｇｉｕｍ）、抗ＣＤ４０Ｌ（ＵＣＢ、Ｂｒｕｓｓｅｌｓ、Ｂｅｌｇｉｕｍ）、アダリムマブ（Ａｂｂｏｔｔ、ＡｂｂｏｔｔＰａｒｋ、ＩＬ）、ＢＥＮＬＹＳＴＡ（登録商標）（ＨｕｍａｎＧｅｎｏｍｅＳｃｉｅｎｃｅｓ）；抗ＣＤ３８抗体、例えばＭＯＲ０３０８７（ＭｏｒｐｈｏＳｙｓＡＧ）、ＭＯＲ２０２（Ｃｅｌｇｅｎｅ）、ＨｕＭａｘ−ＣＤ３８（Ｇｅｎｍａｂ）又はダラツムマブ（Ｊｏｈｎｓｏｎ＆Ｊｏｈｎｓｏｎ）；抗ＨＩＶ抗体、例えばＰ４／Ｄ１０（米国特許第８，３３３，９７１号）、Ａｂ７５、Ａｂ７６、Ａｂ７７（Ｐａｕｌｉｋｅｔａｌ．，１９９９，ＢｉｏｃｈｅｍＰｈａｒｍａｃｏｌ５８：１７８１−９０）、さらに、Ｐｏｌｙｍｕｎ（Ｖｉｅｎｎａ，Ａｕｓｔｒｉａ）により説明及び販売されている、また米国特許第５，８３１，０３４号、米国特許第５，９１１，９８９号、並びにＶｃｅｌａｒｅｔａｌ．，ＡＩＤＳ２００７；２１（１６）：２１６１−２１７０及びＪｏｏｓｅｔａｌ．，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．ＡｇｅｎｔｓＣｈｅｍｏｔｈｅｒ．２００６；５０（５）：１７７３−９にも記載されている抗ＨＩＶ抗体を含むが、これらに限定されない。

他の実施形態において、主題の併用療法は、細菌、ウイルス又は真菌等の病原生物に感染した対象を治療するために有用となり得る。治療され得る例示的な真菌は、小胞子菌（Ｍｉｃｒｏｓｐｏｒｕｍ）、白癬菌（Ｔｒｉｃｈｏｐｈｙｔｏｎ）、表皮菌（Ｅｐｉｄｅｒｍｏｐｈｙｔｏｎ）、スポロトリクス・シェンキィ（Ｓｐｏｒｏｔｈｒｉｘｓｃｈｅｎｃｋｉｉ）、クリプトコックス・ネオフォルマンス（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓｎｅｏｆｏｒｍａｎｓ）、コクシジオイデス・イミチス（Ｃｏｃｃｉｄｉｏｉｄｅｓｉｍｍｉｔｉｓ）、ヒストプラズマ・カプスラタム（Ｈｉｓｔｏｐｌａｓｍａｃａｐｓｕｌａｔｕｍ）、ブラストミセス・デルマティティディス（Ｂｌａｓｔｏｍｙｃｅｓｄｅｒｍａｔｉｔｉｄｉｓ）又はカンジダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａａｌｂｉｃａｎ）を含む。例示的なウイルスは、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、ヘルペスウイルス、サイトメガロウイルス、狂犬病ウイルス、インフルエンザウイルス、ヒト乳頭腫ウイルス、Ｂ型肝炎ウイルス、Ｃ型肝炎ウイルス、センダイウイルス、ネコ白血病ウイルス、レオウイルス、ポリオウイルス、ヒト血清パルボ様ウイルス、シミアンウイルス４０、呼吸器合胞体ウイルス、マウス乳がんウイルス、Ｖａｒｉｃｅｌｌａ−Ｚｏｓｔｅｒウイルス、デングウイルス、風疹ウイルス、麻疹ウイルス、アデノウイルス、ヒトＴ細胞白血病ウイルス、Ｅｐｓｔｅｉｎ−Ｂａｒｒウイルス、マウス白血病ウイルス、ムンプスウイルス、水疱性口内炎ウイルス、シンドビスウイルス、リンパ球性脈絡髄膜炎ウイルス又はブルータングウイルスを含む。例示的な細菌は、炭疽菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓａｎｔｈｒａｃｉｓ）、ストレプトコッカス・アガラクチア（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓａｇａｌａｃｔｉａｅ）、レジオネラ・ニューモフィリア（Ｌｅｇｉｏｎｅｌｌａｐｎｅｕｍｏｐｈｉｌｉａ）、ストレプトコッカス・ピオゲネス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｐｙｏｇｅｎｅｓ）、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉ）、ナイセリア・ゴノレー（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ）、ナイセリア・メニンギティディス（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）、肺炎球菌種（Ｐｎｅｕｍｏｃｏｃｃｕｓｓｐｐ．）、ヘモフィリスインフルエンザＢ（ＨｅｍｏｐｈｉｌｉｓｉｎｆｌｕｅｎｚａｅＢ）、梅毒トレポネーマ（Ｔｒｅｐｏｎｅｍａｐａｌｌｉｄｕｍ）、ライム病スピロヘータ、緑膿菌（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）、らい菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｌｅｐｒａｅ）、ウシ流産菌（Ｂｒｕｃｅｌｌａａｂｏｒｔｕｓ）、結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）又はマイコプラズマ（Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａ）を含む。感染性物質に対するＡＤＣの例示的な使用は、Ｊｏｈａｎｎｓｏｎｅｔａｌ．（２００６，ＡＩＤＳ２０：１９１１−１５）及びＣｈａｎｇｅｔａｌ．，２０１２，ＰＬｏｓＯｎｅ７：ｅ４１２３５において開示されている。

病原体に対する既知の抗体は、Ｐ４Ｄ１０（抗ＨＩＶ）、ＣＲ６２６１（抗インフルエンザ）、エクスビビルマブ（抗Ｂ型肝炎）、フェルビズマブ（抗呼吸器合胞体ウイルス）、フォラビルマブ（抗狂犬病ウイルス）、モタビズマブ（抗呼吸器合胞体ウイルス）、パリビズマブ（抗呼吸器合胞体ウイルス）、パノバクマブ（抗シュードモナス菌）、ラフィビルマブ（抗狂犬病ウイルス）、レガビルマブ（抗サイトメガロウイルス）、セビルマブ（抗サイトメガロウイルス）、チビルマブ（抗Ｂ型肝炎）、及びウルトキサズマブ（抗大腸菌）を含むが、これらに限定されない。

主題の薬剤は、免疫反応を高めるために、１種以上の他の免疫賦活剤と組み合わせて投与されてもよい。免疫賦活剤は、サイトカイン、ケモカイン、幹細胞成長因子、リンホトキシン、造血因子、コロニー刺激因子（ＣＳＦ）、エリスロポエチン、トロンボポエチン、腫瘍壊死因子−α（ＴＮＦ）、ＴＮＦ−β、顆粒球−コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球マクロファージ−コロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、インターフェロン−α、インターフェロン−β、インターフェロン−γ、インターフェロン−λ、「Ｓ１因子」と指定される幹細胞成長因子、ヒト成長ホルモン、Ｎ−メチオニルヒト成長ホルモン、ウシ成長ホルモン、副甲状腺ホルモン、チロキシン、インスリン、プロインスリン、リラキシン、プロリラキシン、卵胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）、甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）、黄体形成ホルモン（ＬＨ）、肝臓成長因子、プロスタグランジン、線維芽細胞成長因子、プロラクチン、胎盤性ラクトゲン、ＯＢタンパク質、ミュラー管抑制物質、マウスゴナドトロピン関連ペプチド、インヒビン、アクチビン、血管内皮成長因子、インテグリン、ＮＧＦ−β、血小板成長因子、ＴＧＦ−α、ＴＧＦ−β、インスリン様成長因子−Ｉ、インスリン様成長因子−ＩＩ、マクロファージ−ＣＳＦ（Ｍ−ＣＳＦ）、ＩＬ−１、ＩＬ−１α、ＩＬ−２、ＩＬ−３、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−８、ＩＬ−９、ＩＬ−１０、ＩＬ−１１、ＩＬ−１２、ＩＬ−１３、ＩＬ−１４、ＩＬ−１５、ＩＬ−１６、ＩＬ−１７、ＩＬ−１８、ＩＬ−２１、ＩＬ−２５、ＬＩＦ、ＦＬＴ−３、アンギオスタチン、トロンボスポンジン、エンドスタチン、又はリンホトキシンを含み得るが、これらに限定されない。ある特定の実施形態において、白血球再指向二重特異性抗体又は抗体断片は、サイトカイン等の免疫賦活剤に結合し得る。サイトカイン複合物は、例えば、米国特許第７，９０６，１１８号及び米国特許第８，０３４，３５２２号において開示されており、それぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる。

好ましい実施形態において、白血球再指向ｂｓＡｂのＴ細胞結合成分は、ＣＤ３抗原に結合するが、エフェクターＴ細胞上に発現する他の抗原が知られており、白血球再指向複合物により標的化され得る。例示的なＴ細胞抗原は、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ６、ＣＤ８、ＣＤ２５、ＣＤ２８、ＣＤ３０、ＣＤ４０、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ４４、ＣＤ４５、ＣＤ６９及びＣＤ９０を含むが、これらに限定されない。他の例示的な抗原は、ＮＫ細胞に対するＣＤ８、ＣＤ１６、ＣＤ５６、ＣＤ５７、ＡＤＡＭ１７、及びＣＤ１３７；単球に対するＣＤ７４、ＨＬＡ−ＤＲアルファ鎖、ＣＤ１４、ＣＤ１６、ＣＤ６４及びＣＤ８９；並びに好中球に対するＣＥＡＣＡＭ６、ＣＥＡＣＡＭ８、ＣＤ１６ｂ、ＣＤ３２ａ、ＣＤ８９、ＣＤ１７７、ＣＤ１１ａ、ＣＤ１１ｂ及びＳＬＣ４４Ａ２から選択され得る。

以下の図面は、本明細書の一部を成し、本発明のある特定の実施形態をさらに示すために含まれる。実施形態は、本明細書に示される具体的実施形態の詳細な説明と組み合わせてこれらの図面の１つ以上を参照することにより、より良く理解され得る。

抗ＣＤ１９Ｆ（ａｂ）_２×抗ＣＤ３ｓｃＦｖを含むＤＯＣＫ−ＡＮＤ−ＬＯＣＫ（商標）複合物の形成を示す概略図である。図２Ａ：（１９）−３ｓにより媒介される、ＤａｕｄｉＢｕｒｋｉｔｔリンパ腫とＴ細胞との間の免疫シナプス形成を示す図である。新しく単離されたＴ細胞を、２．５：１のＥ：Ｔ比でＤａｕｄｉ細胞と組み合わせた。細胞を０、１又は５μｇ／ｍＬの（１９）−３ｓで室温で３０分間処理してから、フローサイトメトリーにより分析した。抗ＣＤ２０−ＦＩＴＣ及び抗ＣＤ７−ＡＰＣを使用して、それぞれＤａｕｄｉ及びＴ細胞を特定した。同時結合は、ＣＤ２０^＋／ＣＤ７^＋イベントの％として示された。（１９）−３ｓでの処理後、フローイベントの４５．５％がＣＤ２０／ＣＤ７二重陽性であり、シナプス形成したＤａｕｄｉ及びＴ細胞を示していた。図２Ｂ：条件は図２（Ａ）の場合と同様であったが、但し（１９）−３ｓ抗体は存在しなかった。図２（Ａ）と比較して、フローイベントのわずか２％が、抗体なしでＣＤ２０／ＣＤ７二重陽性であった。図２Ｃ：（１９）−３ｓを添加することにより、Ｄａｕｄｉの９０％超がＴ細胞と結合した。図３Ａ：Ｊｕｒｋａｔ（Ｔ細胞）及びＤａｕｄｉ（Ｂ細胞）を１：１の比で組み合わせ、０．１μｇ／ｍＬの（１９）−３ｓで３０分間処理し、抗ＣＤ２０−ＦＩＴＣで染色してから、蛍光顕微鏡により分析した。図３Ｂ：Ｊｕｒｋａｔ（Ｔ細胞）及びＤａｕｄｉ（Ｂ細胞）を１：１の比で組み合わせ、０．１μｇ／ｍＬの（１９）−３ｓで３０分間処理し、抗ＣＤ２０−ＦＩＴＣ及び抗ＣＤ３−ＰＥで染色してから、蛍光顕微鏡により分析した。図３Ｃ：図３Ａ及び３Ｂの合成画像は、緑色に染色されたＤａｕｄｉ細胞と赤色に染色されたＪｕｒｋａｔ細胞との間のシナプス形成を明らかに示している。図３Ｄ：（１９）−３ｓが存在しない場合、シナプス形成は明らかではなかった。（１９）−３ｓの増加する濃度の関数としての、Ｄａｕｄｉ及びＪｕｒｋａｔ細胞の（１９）−３ｓ媒介細胞間結合の用量反応分析を示す図である。図５Ａ：ＢＩＴＥ（登録商標）及びＤＡＲＴ（商標）により媒介された細胞間結合の比較を示す図である。ＢＩＴＥ（登録商標）及びＤＡＲＴ（商標）のデータは、Ｍｏｏｒｅら（２０１１，Ｂｌｏｏｄ１１７：４５４２−４５５１）から採用した。図５Ｂ：（１９）−３ｓにより媒介された細胞間結合の比較を示す図である。図６Ａ：（１９）−３ｓ対照ｂｓＡｂにより媒介された、Ｔ細胞とＣａｐａｎ−１膵臓がん細胞との間のシナプス形成を示す図である。ＣＦＳＥ標識化Ｃａｐａｎ−１細胞は、ｂｓＡｂの存在下でＰＫＨ２６標識化Ｊｕｒｋａｔと共インキュベートされた。図６Ｂ：（Ｍ１）−３ｓＭＵＣ５ＡＣｂｓＡｂにより媒介された、Ｔ細胞とＣａｐａｎ−１膵臓がん細胞との間のシナプス形成を示す図である。ＣＦＳＥ標識化Ｃａｐａｎ−１細胞は、ｂｓＡｂの存在下でＰＫＨ２６標識化Ｊｕｒｋａｔと共インキュベートされた。図６Ｃ：（Ｅ１）−３ｓＴＲＯＰ−２標的化ｂｓＡｂにより媒介された、Ｔ細胞とＣａｐａｎ−１膵臓がん細胞との間のシナプス形成を示す図である。ＣＦＳＥ標識化Ｃａｐａｎ−１細胞は、ｂｓＡｂの存在下でＰＫＨ２６標識化Ｊｕｒｋａｔと共インキュベートされた。図７Ａ：（１９）−３ｓによるＴ細胞活性化を示す図である。ＣＤ６９発現の上方制御は、Ｔ細胞活性化における早期のイベントである。ＰＢＭＣと組み合わされたＤａｕｄｉ細胞を、示された抗体で一晩処理し、抗ＣＤ３−ＰＥ及び抗ＣＤ６９−ＡＰＣで染色してから、フローサイトメトリーにより分析した。ＣＤ６９発現は、前方対側方散乱及び抗ＣＤ３染色により、Ｔ細胞のゲーティング後に評価した。Ｄａｕｄｉ細胞と、同数のＰＢＭＣとの組み合わせは、１．６％のＣＤ６９＋Ｔ細胞をもたらした。３ｎｇ／ｍＬの（１９）−３ｓの添加は、２７％のＣＤ６９＋Ｔ細胞を誘導した。非標的化Ｆ（ａｂ）_２と融合したＯｋｔ３−ｓｃＦｖ−ＡＤ２モジュールを含む対照コンストラクト［（Ｍ１）−３ｓ］も、ｈＡ１９−Ｆａｂ−ＤＤＤ２モジュールも、Ｔ細胞活性化を誘導しなかった。図７Ｂ：（１９）−３ｓによるＴ細胞活性化を示す図である。精製されたＴ細胞と組み合わされたＤａｕｄｉ細胞を、示された抗体で一晩処理し、抗ＣＤ３−ＰＥ及び抗ＣＤ６９−ＡＰＣで染色してから、フローサイトメトリーにより分析した。ＣＤ６９発現は、前方対側方散乱及び抗ＣＤ３染色により、Ｔ細胞のゲーティング後に評価した。（Ｍ１）−３ｓ又はｈＡ１９−Ｆａｂ−ＤＤＤ２によるＤａｕｄｉ及び精製されたＴ細胞の処理は、未処理細胞混合物と比較して、ＣＤ６９＋Ｔ細胞の数を増加させなかった（＜４％）。代替的に、（１９）−３ｓは、確実なＴ細胞活性化を誘導し、８０％のＣＤ６９＋細胞を生成した。図７Ｃ：（１９）−３ｓによるＴ細胞活性化を示す図である。精製されたＴ細胞のみを、示された抗体で一晩処理し、抗ＣＤ３−ＰＥ及び抗ＣＤ６９−ＡＰＣで染色してから、フローサイトメトリーにより分析した。ＣＤ６９発現は、前方対側方散乱及び抗ＣＤ３染色により、Ｔ細胞のゲーティング後に評価した。Ｄａｕｄｉ（標的）細胞を添加しないと、（１９）−３ｓはＣＤ６９発現及びＴ細胞活性化を誘導しなかった。これらの結果は、Ｔ細胞活性化には、Ｔ細胞と標的細胞との間の（１９）−３ｓ媒介シナプス形成が必要であると共に十分であることを示している。図８Ａ：（１９）−３ｓによるＴ細胞増殖の誘導を示す図である。ＰＢＭＣを、３ｎＭ又は３０ｐＭの（１９）−３ｓと共にインキュベートし、ＩＬ−２／ＰＨＡ陽性対照及び（１４）−３ｓ（非標的結合対照）と比較した。図８Ｂ：（１９）−３ｓによるＴ細胞増殖の誘導を示す図である。Ｂ細胞がないＰＢＭＣにおいてはＴ細胞増殖が観察されず、Ｔ細胞活性化及び増殖には標的細胞（Ｂ細胞）が必要であることを示していた。図９Ａ：（１９）−３ｓＴ細胞再指向ｂｓＡｂのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性を示す図である。Ｎａｌｍ−６、Ｒａｊｉ、Ｒａｍｏｓ及びＮａｍａｌｗａがん細胞に対する細胞毒性の用量−反応曲線を、（１９）−３ｓＤＮＬ（商標）ｂｓＡｂ複合物に対して決定した。図９Ｂ：（１９）−３ｓＴ細胞再指向ｂｓＡｂのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性を示す図である。Ｎａｌｍ−６、Ｒａｊｉ、Ｒａｍｏｓ及びＮａｍａｌｗａがん細胞に対する細胞毒性の用量−反応曲線を、（１４）−３ｓ（非標的化）ＤＮＬ（商標）ｂｓＡｂ複合物に対して決定した。図９Ｃ：２つの異なるドナー及びＮａｌｍ−６がん細胞から得られたＰＢＭＣ又はＴ細胞を使用して、一貫した結果が観察された。図１０Ａ：（２０）−３ｓ、（２２）−３ｓ及び（Ｃ２）−３ｓＴ細胞再指向ｂｓＡｂｓのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性を示す図である。（２０）−３ｓ、（２２）−３ｓ及び（Ｃ２）−３ｓＴ細胞再指向ｂｓＡｂｓにより誘導されたＮａｍａｌｗａ細胞に対する細胞毒性の用量−反応曲線が決定された。図１０Ｂ：（２０）−３ｓ、（２２）−３ｓ及び（Ｃ２）−３ｓＴ細胞再指向ｂｓＡｂのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性を示す図である。（２０）−３ｓ、（２２）−３ｓ及び（Ｃ２）−３ｓＴ細胞再指向ｂｓＡｂにより誘導されたＪｅｋｏ細胞に対する細胞毒性の用量−反応曲線が決定された。図１０Ｃ：（２０）−３ｓ、（２２）−３ｓ及び（Ｃ２）−３ｓＴ細胞再指向ｂｓＡｂのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性を示す図である。（２０）−３ｓ、（２２）−３ｓ及び（Ｃ２）−３ｓＴ細胞再指向ｂｓＡｂにより誘導されたＤａｕｄｉ細胞に対する細胞毒性の用量−反応曲線が決定された。図１１Ａ：固形腫瘍細胞株におけるＴ細胞再指向ｂｓＡｂのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性を示す図である。非標的化（１９）−３ｓｂｓＡｂと比較した、（１４）−３ｓｂｓＡｂのＬＳ１７４Ｔ結腸腺癌細胞株に対する細胞毒性の用量−反応曲線が決定された。図１１Ｂ：固形腫瘍細胞株におけるＴ細胞再指向ｂｓＡｂのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性を示す図である。非標的化（１９）−３ｓｂｓＡｂと比較した、（Ｅ１）−３ｓｂｓＡｂのＣａｐａｎ−１膵臓腺癌細胞株に対する細胞毒性の用量−反応曲線が決定された。図１１Ｃ：固形腫瘍細胞株におけるＴ細胞再指向ｂｓＡｂのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性を示す図である。非標的化（１９）−３ｓｂｓＡｂと比較した、（Ｅ１）−３ｓ及び（１５）−３ｓｂｓＡｂのＮＣＩ−Ｎ８７胃癌細胞株に対する細胞毒性の用量−反応曲線が決定された。がん細胞株におけるＴ細胞再指向ｂｓＡｂのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性の概要を示す図である。図１３Ａ：（１９）−３ｓｂｓＡｂを使用したＲａｊｉリンパ腫異種移植片のｉｎｖｉｖｏ再標的化を示す図である。ＲａｊｉＢｕｒｋｉｔｔリンパ腫（１×１０^６細胞）異種移植片を有するＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスを、ヒトＰＢＭＣ（５×１０^６細胞）で再構成し、（１９）−３ｓで１週間だけ処理し、矢印により示されるように投与した。対照は、未処理細胞によるものである。図１３Ｂ：（１９）−３ｓｂｓＡｂを使用したＲａｊｉリンパ腫異種移植片のｉｎｖｉｖｏ再標的化を示す図である。ＲａｊｉＢｕｒｋｉｔｔリンパ腫（１×１０^６細胞）異種移植片を有するＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスを、ヒトＰＢＭＣ（５×１０^６細胞）で再構成し、（１９）−３ｓで１週間だけ処理し、矢印により示されるように投与した。細胞は、１３０μｇの単回投薬で処理した。図１３Ｃ：（１９）−３ｓｂｓＡｂを使用したＲａｊｉリンパ腫異種移植片のｉｎｖｉｖｏ再標的化を示す図である。ＲａｊｉＢｕｒｋｉｔｔリンパ腫（１×１０^６細胞）異種移植片を有するＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスを、ヒトＰＢＭＣ（５×１０^６細胞）で再構成し、（１９）−３ｓで１週間だけ処理し、矢印により示されるように投与した。細胞は、投薬当たり４３μｇで３回処理した。図１３Ｄ：（１９）−３ｓｂｓＡｂを使用したＲａｊｉリンパ腫異種移植片のｉｎｖｉｖｏ再標的化を示す図である。ＲａｊｉＢｕｒｋｉｔｔリンパ腫（１×１０^６細胞）異種移植片を有するＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスを、ヒトＰＢＭＣ（５×１０^６細胞）で再構成し、（１９）−３ｓで１週間だけ処理し、矢印により示されるように投与した。細胞は、投薬当たり２６μｇで５回処理した。図１４Ａ：（１９）−３ｓｂｓＡｂを使用したＲａｊｉリンパ腫異種移植片のｉｎｖｉｖｏ再標的化に対する反復投薬の効果を示す図である。ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウス異種移植片は、図１３に対する説明文に示されるように調製した。（１９）−３ｓは、矢印により示されるように投与した。図１４Ａは、未処理対照を示す。図１４Ｂ：（１９）−３ｓｂｓＡｂを使用したＲａｊｉリンパ腫異種移植片のｉｎｖｉｖｏ再標的化に対する反復投薬の効果を示す図である。（１９）−３ｓは、矢印により示されるように投与した。細胞は、静脈内投与による投薬当たり１３０μｇの（１９）−３ｓで２回処理した。図１４Ｃ：（１９）−３ｓｂｓＡｂを使用したＲａｊｉリンパ腫異種移植片のｉｎｖｉｖｏ再標的化に対する反復投薬の効果を示す図である。（１９）−３ｓは、矢印により示されるように投与した。細胞は、皮下投与による投薬当たり１３０μｇの（１９）−３ｓで２回処理した。図１４Ｄ：（１９）−３ｓｂｓＡｂを使用したＲａｊｉリンパ腫異種移植片のｉｎｖｉｖｏ再標的化に対する反復投薬の効果を示す図である。（１９）−３ｓは、矢印により示されるように投与した。細胞は、静脈内投与による投薬当たり６５μｇの（１９）−３ｓで４回処理した。図１４Ｅ：（１９）−３ｓｂｓＡｂを使用したＲａｊｉリンパ腫異種移植片のｉｎｖｉｖｏ再標的化に対する反復投薬の効果を示す図である。（１９）−３ｓは、矢印により示されるように投与した。細胞は、静脈内投与による投薬当たり４３μｇの（１９）−３ｓで６回処理した。図１４Ｆ：（１９）−３ｓｂｓＡｂを使用したＲａｊｉリンパ腫異種移植片のｉｎｖｉｖｏ再標的化に対する反復投薬の効果を示す図である。（１９）−３ｓは、矢印により示されるように投与した。細胞は、静脈内投与による投薬当たり４３μｇの対照（Ｍ１）−３ｓで６回処理した。図１５Ａ：固形腫瘍異種移植片におけるＴ細胞再標的化ｂｓＡｂのｉｎｖｉｖｏ効力を示すグラフである。ＬＳ１７４Ｔ結腸腺癌を有するＮＯＤ／ＳＣＩＤマウス異種移植片を調製した。マウスには、ｂｓＡｂを含まないＴ細胞のみを投与した。図１５Ｂ：固形腫瘍異種移植片におけるＴ細胞再標的化ｂｓＡｂのｉｎｖｉｖｏ効力を示すグラフである。ＬＳ１７４Ｔ結腸腺癌を有するＮＯＤ／ＳＣＩＤマウス異種移植片を調製した。マウスは、示されるような（Ｅ１）−３ｓｂｓＡｂで処理した。図１５Ｃ：固形腫瘍異種移植片におけるＴ細胞再標的化ｂｓＡｂのｉｎｖｉｖｏ効力を示すグラフである。Ｃａｐａｎ−１膵臓癌を有するＮＯＤ／ＳＣＩＤマウス異種移植片を調製した。マウスには、ｂｓＡｂを含まないＰＢＭＣのみを投与した。図１５Ｄ：固形腫瘍異種移植片におけるＴ細胞再標的化ｂｓＡｂのｉｎｖｉｖｏ効力を示すグラフである。Ｃａｐａｎ−１膵臓癌を有するＮＯＤ／ＳＣＩＤマウス異種移植片を調製した。マウスは、示されるような（１４）−３ｓｂｓＡｂで処理した。図１６Ａ：インターフェロン−αの存在下又は非存在下での（Ｅ１）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物による腫瘍成長のｉｎｖｉｖｏ阻害を示す図である。ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスにおけるＣａｐａｎ−１膵臓癌異種移植片を、インターフェロン−αの添加あり、又はなしで抗ＴＲＯＰ−２×抗ＣＤ３ｂｓＡｂにより処理した。インターフェロン−αは、ＴＲＯＰ−２標的化ＤＮＬ（商標）複合物の形態で添加された。図１６Ｂ：インターフェロン−αの存在下又は非存在下での（Ｅ１）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物による腫瘍成長のｉｎｖｉｖｏ阻害を示す図である。ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスにおけるＣａｐａｎ−１膵臓癌異種移植片を、インターフェロン−αの添加あり、又はなしで抗ＴＲＯＰ−２×抗ＣＤ３ｂｓＡｂにより処理した。インターフェロン−αは、市販のＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）（ペグインターフェロンアルファ−２ａ）として添加された。インターフェロン−αあり、又はなしで（Ｅ１）−３ｓで処理されたＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスの生存曲線を示す図である。対照は、未処理、又はインターフェロン−αのみで処理された。ＴＦ１２対照と比較した、インターフェロン−αの存在下又は非存在下での（Ｅ１）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物による腫瘍成長のｉｎｖｉｖｏ阻害を示す図である。ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスにおけるＣａｐａｎ−１膵臓癌異種移植片を、ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）として添加されるインターフェロン−αの添加あり、又はなしで抗ＴＲＯＰ−２×抗ＣＤ３ｂｓＡｂで処理し、未処理対照、ＴＦ１２対照又はＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）のみと比較した。インターフェロン−α（ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標））あり、又はなしで（Ｅ１）−３ｓで処理されたＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスの生存曲線を示す図である。対照は、未処理、又はＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）のみ又はＴＦ１２のみで処理された。ＴＦ１２対照と比較した、インターフェロン−αの存在下又は非存在下での（Ｅ１）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物による腫瘍成長のｉｎｖｉｖｏ阻害を示す図である。ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスにおけるＮＣＩ−Ｎ８７ヒト胃がん異種移植片を、ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）として添加されるインターフェロン−αの添加あり、又はなしで抗ＴＲＯＰ−２×抗ＣＤ３ｂｓＡｂで処理し、未処理対照、ＴＦ１２対照又はＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）のみと比較した。インターフェロン−α（ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標））あり、又はなしで（Ｅ１）−３ｓで処理された、ＮＣＩ−Ｎ８７胃がん異種移植片を有するＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスの生存曲線を示す図である。対照は、未処理、又はＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）のみ若しくはＴＦ１２のみで処理された。

定義
別段に指定されない限り、「ａ」又は「ａｎ」は、「１つ以上」を意味する。

本明細書で使用される場合、「及び」及び「又は」という用語は、接続語又は離接語のいずれかを意味するように使用され得る。つまり、両方の用語は、別段に指定されない限り、「及び／又は」と同等として理解されるべきである。

「治療薬剤」は、疾患の治療において有用である原子、分子、又は化合物である。治療薬剤の例は、抗体、抗体断片、ペプチド、薬物、毒素、酵素、ヌクレアーゼ、ホルモン、免疫賦活剤、アンチセンスオリゴヌクレオチド、小分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、キレート剤、ホウ素化合物、光活性薬剤、染料、及び放射性同位体を含む。

「抗体」は、本明細書で使用される場合、全長（すなわち、自然発生的である、又は正常な免疫グロブリン遺伝子断片組換えプロセスにより形成される）免疫グロブリン分子（例えば、ＩｇＧ抗体）、又は免疫グロブリン分子の免疫学的に活性な（すなわち、特異的結合）部分、例えば抗体断片を指す。「抗体」は、モノクローナル、ポリクローナル、二重特異性、多重特異性、マウス、キメラ、ヒト化及びヒト抗体を含む。

「裸の抗体」は、治療又は診断薬剤に結合していない抗体又はその抗原結合断片である。無傷の裸の抗体のＦｃ部分は、補体結合及びＡＤＣＣ等のエフェクター機能を提供し得る（例えば、Ｍａｒｋｒｉｄｅｓ，ＰｈａｒｍａｃｏｌＲｅｖ５０：５９−８７，１９９８を参照されたい）。裸の抗体が細胞死を誘導する他の機構は、アポトーシスを含み得る。（ＶａｓｗａｎｉａｎｄＨａｍｉｌｔｏｎ，ＡｎｎＡｌｌｅｒｇｙＡｓｔｈｍａＩｍｍｕｎｏｌ８１：１０５−１１９，１９９８。）

「抗体断片」は、例えばＦ（ａｂ’）_２、Ｆ（ａｂ）_２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｖ、ｓｃＦｖ、ｄＡｂ等の無傷抗体の一部である。構造に関わらず、抗体断片は、全長抗体により認識される同じ抗原と結合する。例えば、抗体断片は、可変領域からなる単離された断片、例えば重鎖及び軽鎖の可変領域からなる「Ｆｖ」断片、又は軽鎖及び重鎖可変領域がペプチドリンカーにより接続された組換え単鎖ポリペプチド分子（「ｓｃＦｖタンパク質」）を含む。しばしば「ｓｃＦｖ」と省略される「単鎖抗体」は、相互作用して抗原結合部位を形成するＶ_Ｈ及びＶ_Ｌドメインの両方を含むポリペプチド鎖からなる。Ｖ_Ｈ及びＶ_Ｌドメインは、通常、１〜２５アミノ酸残基のペプチドにより連結される。抗体断片はまた、ジアボディ、トリアボディ及び単一ドメイン抗体（ｄＡｂ）を含む。

「キメラ抗体」は、１つの種、好ましくはげっ歯類抗体から得られる抗体の相補性決定領域（ＣＤＲ）を含む可変ドメインを含有する組換えタンパク質であり、一方抗体分子の定常ドメインは、ヒト抗体の定常ドメインから得られる。獣医学的用途において、キメラ抗体の定常ドメインは、ネコ又はイヌ等の他の種の定常ドメインから得られてもよい。

「ヒト化抗体」は、１つの種からの抗体、例えばげっ歯類抗体からのＣＤＲが、げっ歯類抗体の可変重鎖及び軽鎖から、ヒトフレームワーク領域（ＦＲ）配列を含むヒト重鎖及び軽鎖可変ドメインに移された組換えタンパク質である。抗体分子の定常領域は、ヒト抗体の定常領域から得られる。結合活性を維持するために、親（例えばマウス）抗体からの限定された数のＦＲアミノ酸残基が、対応するヒトＦＲ残基に置換され得る。

「ヒト抗体」は、抗原負荷に応答して特定のヒト抗体を生成するように遺伝子操作されたトランスジェニックマウスから得られる抗体である。この技術において、ヒト重鎖及び軽鎖遺伝子座の要素は、内在性重鎖及び軽鎖遺伝子座の標的化された断絶を含有する胚幹細胞株から得られたマウスの株に導入される。トランスジェニックマウスは、ヒト抗原に特異的なヒト抗体を合成することができ、マウスを使用して、ヒト抗体分泌ハイブリドーマを生成することができる。トランスジェニックマウスからヒト抗体を得るための方法は、Ｇｒｅｅｎｅｔａｌ．，ＮａｔｕｒｅＧｅｎｅｔ．７：１３（１９９４）、Ｌｏｎｂｅｒｇｅｔａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ３６８：８５６（１９９４）、及びＴａｙｌｏｒｅｔａｌ．，Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎ．６：５７９（１９９４）により説明されている。ヒト抗体はまた、遺伝子又は染色体トランスフェクション法、及びファージディスプレイ技術により構築することができ、これらは全て、当該技術分野において知られている。（例えば、非免疫化ドナーからの免疫グロブリン可変ドメイン遺伝子レパートリーからの、ｉｎｖｉｔｒｏでのヒト抗体及びその断片の生成に関して、ＭｃＣａｆｆｅｒｔｙｅｔａｌ．，１９９０，Ｎａｔｕｒｅ３４８：５５２−５５３を参照されたい）。この技術において、抗体可変ドメイン遺伝子は、繊維状バクテリオファージの主要又は微量外被タンパク質遺伝子にインフレームでクローニングされ、ファージ粒子の表面上に機能性抗体断片として表示される。繊維状粒子はファージゲノムの一本鎖ＤＮＡコピーを含有するため、抗体の機能的特性に基づく選択はまた、それらの特性を示す抗体をコードする遺伝子の選択をもたらす。このようにして、ファージは、Ｂ細胞の特性のいくつかを模倣する。ファージディスプレイは、様々な形式で行うことができるが、それらの検討については、例えば、ＪｏｈｎｓｏｎａｎｄＣｈｉｓｗｅｌｌ，ＣｕｒｒｅｎｔＯｐｉｎｉｏｎｉｎＳｔｒｕｃｔｕｒａｌＢｉｏｌｏｇｙ３：５５６４−５７１（１９９３）を参照されたい。ヒト抗体はまた、ｉｎｖｉｔｒｏ活性化Ｂ細胞により生成されてもよい。（米国特許第５，５６７，６１０号及び米国特許第５，２２９，２７５号を参照されたい。）

本明細書で使用される場合、「抗体融合タンパク質」という用語は、抗体又は抗体断片が別のタンパク質又はペプチド、例えば同じ又は異なる抗体若しくは抗体断片又はＤＤＤ若しくはＡＤペプチドに連結した、組換えにより生成された抗原結合分子である。融合タンパク質は、単一の抗体成分、多価若しくは多重特異性の異なる抗体成分の組み合わせ、又は同じ抗体成分の複数のコピーを含んでもよい。融合タンパク質は、抗体又は抗体断片及び治療薬剤を追加的に含んでもよい。そのような融合タンパク質に好適な治療薬剤の例は、免疫賦活剤及び毒素を含む。１つの好ましい毒素は、リボヌクレアーゼ（ＲＮａｓｅ）、好ましくは組換えＲＮａｓｅを含む。好ましい免疫賦活剤は、インターフェロン−α、インターフェロン−β又はインターフェロン−λ等のインターフェロンであってもよい。

「多重特異性抗体」は、異なる構造の少なくとも２つの標的、例えば２つの異なる抗原、同じ抗原上の２つの異なるエピトープ、又はハプテン及び／若しくは抗原若しくはエピトープに同時に結合することができる抗体である。「多価抗体」は、同じ又は異なる構造の少なくとも２つの標的に同時に結合することができる抗体である。価数は、単一の抗原又はエピトープに対して抗体がいくつの結合手又は部位を有するか、すなわち一価、二価、三価又は多価を示す。抗体の多価性は、抗原への結合において複数の相互作用を利用することができることを意味し、したがって抗原への結合の親和性を増加させる。特異性は、抗体がいくつの抗原又はエピトープに結合することができるか、すなわち単一特異性、二重特異性、三重特異性、多重特異性を示す。これらの定義を使用して、天然抗体、例えばＩｇＧは、２つの結合手を有するため二価であるが、１つのエピトープに結合するため単一特異性である。多重特異性多価抗体は、異なる特異性の２つ以上の結合部位を有するコンストラクトである。

「二重特異性抗体」は、異なる構造の２つの標的に同時に結合することができる抗体である。二重特異性抗体（ｂｓＡｂ）及び二重特異性抗体断片（ｂｓＦａｂ）は、例えば、Ｔ細胞、ＮＫ細胞、単球又は好中球に特異的に結合する少なくとも１つの手と、疾患細胞、組織、器官又は病原体により生成された、又はそれと関連した抗原、例えば腫瘍関連抗原に特異的に結合する少なくとも１つの他の手とを有し得る。分子工学を使用して、様々な二重特異性抗体を生成することができる。

本明細書に記載の抗体調製物又は組成物は、投与される量が生理学的に重要である場合、「治療上効果的な量」で投与されると言われる。薬剤は、その存在が受容対象の生理学に検出可能な変化をもたらす場合、生理学的に重要である。具体的実施形態において、抗体調製物は、その存在が抗腫瘍反応を惹起する、又は感染性疾患状態の兆候及び症状を軽減する場合、生理学的に重要である。生理学的に重要な効果はまた、標的細胞の成長阻害又は死滅をもたらす、受容対象における体液性及び／又は細胞性免疫反応の誘起であってもよい。

白血球再指向二重特異性抗体複合物
様々な実施形態が、疾患関連抗原に対する抗体又はその断片に結合した抗白血球抗体又はその断片を含むｂｓＡｂに関する。例示的なＴ細胞抗原は、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ６、ＣＤ８、ＣＤ２５、ＣＤ２８、ＣＤ３０、ＣＤ４０、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ４４、ＣＤ４５、ＣＤ６９及びＣＤ９０を含む。他の例示的な抗原は、ＮＫ細胞に対するＣＤ８、ＣＤ１６、ＣＤ５６、ＣＤ５７、ＡＤＡＭ１７、及びＣＤ１３７；単球に対するＣＤ７４、ＨＬＡ−ＤＲアルファ鎖、ＣＤ１４、ＣＤ１６、ＣＤ６４及びＣＤ８９；並びに好中球に対するＣＥＡＣＡＭ６、ＣＥＡＣＡＭ８、ＣＤ１６ｂ、ＣＤ３２ａ、ＣＤ８９、ＣＤ１７７、ＣＤ１１ａ、ＣＤ１１ｂ及びＳＬＣ４４Ａ２から選択され得る。好ましい実施形態において、抗Ｔ細胞抗体はＣＤ３に結合し、又は抗ＮＫ抗体はＣＤ１６に結合する。後述のように、腫瘍関連抗原（ＴＡＡ）又は病原体発現抗原等の疾患関連抗原の多くの例が知られている。例示的な好ましいＴＡＡは、ＣＤ１９である。

ＢＩＴＥ（登録商標）（二重特異性Ｔ細胞エンゲージャー）（例えば、Ｎａｇｏｒｓｅｎｅｔａｌ．，２００９，Ｌｅｕｋｅｍｉａ＆Ｌｙｍｐｈｏｍａ５０：８８６−９１；Ａｍａｎｎｅｔａｌ．，２００９，ＪＩｍｍｕｎｏｔｈｅｒ３２：４５３−６４；ＢａｅｕｅｒｌｅａｎｄＲｅｉｎｈａｒｄｔ，２００９，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ６９：４９４１−４４）及びＤＡＲＴ（登録商標）（例えば、Ｍｏｏｒｅｅｔａｌ．，２０１１，Ｂｌｏｏｄ１１７：４５４２−５１；Ｖｅｒｉｅｔａｌ．，２０１０，ＡｒｔｈｒｉｔｉｓＲｈｅｕｍ６２：１９３３−４３を参照されたい）等、様々な二重特異性抗ＣＤ３×抗ＣＤ１９抗体が当該技術分野において知られており、現在臨床開発中である。ブリナツモマブは、５アミノ酸リンカーにより接続され、自身にアニールして抗原結合部位を形成する単一ポリペプチド鎖として発現する、抗ＣＤ３及び抗ＣＤ１９抗体断片のＶ_Ｈ及びＶ_Ｌドメインを含むＢＩＴＥ（登録商標）抗体である。ブリナツモマブは、Ｔ細胞特異的ＣＤ３及びＢ細胞特異的ＣＤ１９抗原を密接させ、がん細胞に対するＴ細胞特異性を必要としない、並んで位置するＢ細胞に対するＴ細胞毒性反応を開始させることにより作用すると考えられている（例えば、Ｐｏｒｔｅｌｌｅｔａｌ．，２０１３，ＣｌｉｎＰｈａｒｍａｃｏｌ５（Ｓｕｐｐｌ１）：５−１１）。その短い半減期に起因して、ブリナツモマブは、効果的となるには継続的な静脈内注入を必要とする（Ｐｏｒｔｅｌｌｅｔａｌ．，２０１３）。持続性又は再発性の微小残存病変を有するＢ細胞ＡＬＬ患者の第ＩＩ相試験では、約８０％の完全寛解率が報告された（Ｐｏｒｔｅｌｌｅｔａｌ．，２０１３）。

非ホジキンリンパ腫患者におけるがん細胞を排除するために、０．００５ｍｇ／ｍ^２／日という低いブリナツモマブ用量が効果的であると報告された（Ｂａｒｇｏｕｅｔａｌ．，２００８，Ｓｃｉｅｎｃｅ３２１：９７４−７７）。０．０１５ｍｇの用量レベルで開始して、部分又は完全寛解が観察され、また、０．０６ｍｇの用量で試験された６名全ての患者が腫瘍退縮を経験した（Ｂａｒｇｏｕｅｔａｌ．，２００８）。Ｉｎｖｉｔｒｏでは、ブリナツモマブは、１０ｐｇ／ｍＬの濃度で、ＭＥＣ−１細胞の５０％細胞溶解を誘導した（Ｔｏｐｐｅｔａｌ．，２０１２，Ｂｌｏｏｄ１２０：５１８５−８７；Ｂａｓｓａｎｅｔａｌ．，２０１２，Ｂｌｏｏｄ１２０：５０９４−９５）。

ブリナツモマブの抗ＣＤ１９部分は、ＨＤ３７ハイブリドーマから得られており（例えば、米国特許第７，５７５，９２３号を参照されたく、この実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる）、公的に入手可能である（例えば、ＳａｎｔａＣｒｕｚＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙカタログ番号ｓｃ−１８８９４）。ブリナツモマブの抗ＣＤ３部分は、ＴＲ６６ハイブリドーマから得られており（米国特許第７，５７５，９２３号；Ｔｒａｕｎｅｃｋｅｒｅｔａｌ．，１９９１，ＥＭＢＯＪ．１０：３６５５−５９）、同じく公的に入手可能である（例えば、ＥｎｚｏＬｉｆｅＳｃｉｅｎｃｅｓ、カタログ番号ＡＬＸ−８０４−８２２−Ｃ１００）。

請求される方法及び組成物において使用され得るＣＤ３に対する様々な抗体が公知であり、並びに／又は、例えばＬＳＢｉｏ（カタログ番号ＬＳ−Ｂ６６９８、ＬＳ−Ｂ８６６９；ＬＳ−Ｂ８７６５、ＬＳ−Ｃ９６３１１、ＬＳ−Ｃ５８６７７等）；ＡＢＣＡＭ（登録商標）（カタログ番号ａｂ５６９０、ａｂ１６６６９、ａｂ６９９、ａｂ８２８、ａｂ８６７１等）；ＳａｎｔａＣｒｕｚＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（カタログ番号ｓｃ−２００４７、ｓｃ−２００８０、ｓｃ−１９５９０、ｓｃ−５９００８、ｓｃ−１０１４４２等）；及び多くの他の供給業者から市販されている。

好ましい実施形態において、ＤＮＬ（商標）複合物の一部として使用される抗ＣＤ３部分のアミノ酸配列は、以下で配列番号９６から配列番号１０１に開示されている。しかしながら、当業者には、請求される方法及び組成物において任意の知られた抗ＣＤ３抗体を使用することができることが理解される。好ましくは、有用な抗体部分は、ヒト化又はヒトである。

請求される方法及び組成物において使用され得るＣＤ１９に対する様々な抗体が公知であり、並びに／又は、例えばＳａｎｔａＣｒｕｚＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（カタログ番号ｓｃ−３９０２４４、ｓｃ−３７３８９７、ｓｃ−１８８９４、ｓｃ−１８８９６等）；ＡＢＣＡＭ（登録商標）（カタログ番号ａｂ２５２３２、ａｂ１３４１１４、ａｂ１４０９８１、ａｂ１２５５等）；ＡＢＢＩＯＴＥＣ（商標）（カタログ番号２５２２６２、２５２２４８、２５０５８５、２５１０６３等）及び多くの他の販売会社から市販されている。

好ましい実施形態において、抗ＣＤ１９抗体部分は、軽鎖ＣＤＲ配列ＣＤＲ１ＫＡＳＱＳＶＤＹＤＧＤＳＹＬＮ（配列番号９０）；ＣＤＲ２ＤＡＳＮＬＶＳ（配列番号９１）；及びＣＤＲ３ＱＱＳＴＥＤＰＷＴ（配列番号９２）、並びに重鎖ＣＤＲ配列ＣＤＲ１ＳＹＷＭＮ（配列番号９３）；ＣＤＲ２ＱＩＷＰＧＤＧＤＴＮＹＮＧＫＦＫＧ（配列番号９４）及びＣＤＲ３ＲＥＴＴＴＶＧＲＹＹＹＡＭＤＹ（配列番号９５）を含む、ヒト化Ａ１９抗体である。

他の抗ＣＤ３×抗ＣＤ１９二重特異性抗体、例えばＨＤ３７の抗ＣＤ１９Ｆｖ配列及びＴＲ６６の抗ＣＤ３Ｆｖ配列も組み込むＤＡＲＴ（登録商標）が知られている（Ｍｏｏｒｅｅｔａｌ．，２０１１，Ｂｌｏｏｄ１１７：４５４２−５１；Ｖｅｒｉｅｔａｌ．，２０１０，ＡｒｔｈｒｉｔｉｓＲｈｅｕｍ６２：１９３３−４３）。Ｍｏｏｒｅら（２０１１）は、ＤＡＲＴ（登録商標）二重特異性抗体が、Ｂ細胞溶解の誘導において、同一の抗ＣＤ１９及び抗ＣＤ３可変領域配列を保持する単鎖二重特異性抗体（ＢＩＴＥ（登録商標））よりも強力であり、ＥＣ_５０値がｐｇ／ｍＬ範囲であることを報告した（Ｍｏｏｒｅｅｔａｌ．，２０１１）。ＤＡＲＴ（登録商標）及びＢＩＴＥ（登録商標）以外の他の抗ＣＤ３×抗ＣＤ１９二重特異性抗体が報告されている（例えば、Ｗｅｉｅｔａｌ．，２０１２，ＣｅｌｌＯｎｃｏｌ３５：４２３−３４；Ｐｏｒｔｎｅｒｅｔａｌ．，２０１２，ＣａｎｃｅｒＩｍｍｕｎｏｌＩｍｍｕｎｏｔｈｅｒ６１：１８６９−７５；Ｚｈｏｕｅｔａｌ．，２０１２，ＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌＬｅｔｔ．３４：１１８３−９１を参照されたい）。ある特定の実施形態において、任意の既知の抗ＣＤ３×抗ＣＤ１９二重特異性抗体を使用して、疾患関連細胞又は病原体に対する免疫反応を誘導することができる。

カツマキソマブは、欧州において転移がんに関連した悪性腹水の治療に承認されている抗ＣＤ３×抗ＥｐＣＡＭ二重特異性抗体である（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，２００９，ＭＡｂｓ１：５３９−４７）。マウスモデル系において、カツマキソマブは、１０ｐＭの濃度範囲で腫瘍細胞を死滅させることができ、黒色腫腫瘍の全滅をもたらすことが報告された（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，２００９）。また、悪性腹水を有する卵巣がん患者に対する人間での臨床試験では、統計的に有意な効用が示された（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，２００９）。しかしながら、ラット／マウスハイブリッドｂｓＡｂの高い免疫原性が、抗体の静脈内投与を制限し得る（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，２００９）。抗腫瘍ｂｓＡｂの使用は、抗ＣＤ３×抗ＣＤ１９に限定されず、抗ＨＥＲ２×抗ＣＤ６４（ＭＤＸ−２１０、ＭＤＸ−Ｈ２１０）、抗ＥＧＦＲ×抗ＣＤ６４（ＭＤＸ−４４７）、抗ＣＤ３０×抗ＣＤ１６（ＨＲＳ−３／Ａ９）、抗ＨＥＲ２×抗ＣＤ３（Ｈｅｒ２Ｂｉ）、抗ＣＤ２０×抗ＣＤ３（ＣＤ２０Ｂｉ、Ｂｉ２０）、抗ＥｐＣＡＭ×抗ＣＤ３（カツマキソマブ、ＭＴ１１０）、抗ＨＥＲ２×抗ＣＤ３（エルツマキソマブ）、及び抗ＮＧ２×抗ＣＤ２８（ｒＭ２８）も含んでいる（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，２００９）。

最も好ましい実施形態において、抗ＣＤ３×抗ＣＤ１９二重特異性抗体又は他の白血球再指向ｂｓＡｂは、以下の実施例１において開示されるように、ＤＮＬ（商標）コンストラクトとして作製される。当業者には、主題の白血球再指向二重特異性抗体が、抗ＣＤ３×抗ＣＤ１９コンストラクトに限定されず、抗ＣＤ３抗体部分に結合した任意の知られた疾患関連抗原に対する抗体を含み得ることが理解される。代替として、ＣＤ３以外の他のＴ細胞抗原、又はＮＫ細胞、単球若しくは好中球上に発現する他の抗原に対する抗体もまた使用され得る。例示的なＴ細胞抗原は、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ６、ＣＤ８、ＣＤ２５、ＣＤ２８、ＣＤ３０、ＣＤ４０、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ４４、ＣＤ４５、ＣＤ６９及びＣＤ９０を含むが、これらに限定されない。他の例示的な抗原は、ＮＫ細胞に対するＣＤ８、ＣＤ１６、ＣＤ５６、ＣＤ５７、ＡＤＡＭ１７、ＫＩＲ及びＣＤ１３７；単球に対するＣＤ７４、ＨＬＡ−ＤＲアルファ鎖、ＣＤ１４、ＣＤ１６、ＣＤ６４及びＣＤ８９；並びに好中球に対するＣＥＡＣＡＭ６、ＣＥＡＣＡＭ８、ＣＤ１６ｂ、ＣＤ３２ａ、ＣＤ８９、ＣＤ１７７、ＣＤ１１ａ、ＣＤ１１ｂ及びＳＬＣ４４Ａ２から選択され得る。白血球抗原のそれぞれに対する抗体は公知であり、及び／又は市販されている（例えば、ＡＢＣＡＭ（登録商標）カタログ番号ａｂ１３１２７６、ａｂ１３９２６６、ａｂ８３６０、ａｂ５１３１２、ａｂ８４６、ａｂ１３３６１６、ａｂ７５８７７、ａｂ１３３２５５、ａｂ１０９２１７、ａｂ９３２７８、ａｂ１７１４７、ａｂ１１５８５１、ａｂ１２８９５５、ａｂ１３４６３、ａｂ８５９８６；ＳａｎｔａＣｒｕｚＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙカタログ番号ｓｃ−４６６８３、ｓｃ−５９０４７；ＥｎｚｏＬｉｆｅＳｃｉｅｎｃｅｓ、Ｉｎｃ．カタログ番号ＡＬＸ−８０５−０３７−Ｃ１００；ＳｉｎｏＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＩｎｃ．カタログ番号１２２１１−ＲＰ０２、１１１５０−Ｒ０７４；Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅカタログ番号０４−１１０２、０４−１１０２、ＭＡＢ１４０６を参照されたい）。これらの、及び数々の他の抗白血球抗体は、公的に利用可能であり、主題の白血球再指向ｂｓＡｂにおいて使用され得ただろう。後述のように、広範な疾患関連抗原に対する数々の抗体が公知であり、及び／又は市販されており、主題の白血球再指向二重特異性抗体において使用され得ただろう。有用となり得る他の例示的な白血球再指向ｂｓＡｂは、ＦＢＴＡ０５（抗ＣＤ２０×抗ＣＤ３）及びＴＲＢＳ０７（抗ＧＤ２×抗ＣＤ３）を含む。

インターフェロン療法
様々な実施形態において、白血球再指向ｂｓＡｂ、抗体−薬物複合体及び／又はチェックポイント阻害剤抗体は、インターフェロン−α、インターフェロン−β又はインターフェロン−λ等の１種以上のインターフェロンと組み合わせて使用され得る。ヒトインターフェロンは、当該技術分野において周知であり、ヒトインターフェロンのアミノ酸配列は、公開データベース（例えば、ＧｅｎＢａｎｋＡｃｃｅｓｓｉｏｎＮｏｓ．ＡＡＡ５２７１６．１；ＡＡＡ５２７２４；ＡＡＣ４１７０２．１；ＥＡＷ５６８７１．１；ＥＡＷ５６８７０．１；ＥＡＷ５６８６９．１）から容易に入手することができる。ヒトインターフェロンはまた、様々な販売会社（例えば、ＣｅｌｌＳｉｇｎａｌｉｎｇＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．、Ｄａｎｖｅｒｓ、ＭＡ；Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ、ＳｏｕｔｈＳａｎＦｒａｎｃｉｓｃｏ、ＣＡ；ＥＭＤＭｉｌｌｉｐｏｒｅ、Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ、ＭＡ）から商業的に入手することができる。

インターフェロン−α（ＩＦＮα）は、がんの動物モデル（Ｆｅｒｒａｎｔｉｎｉｅｔａｌ．，１９９４，ＪＩｍｍｕｎｏｌ１５３：４６０４−１５）及びヒトがん患者（Ｇｕｔｔｅｒｍａｎｅｔａｌ．，１９８０，ＡｎｎＩｎｔｅｒｎＭｅｄ９３：３９９−４０６）において抗腫瘍活性を有することが報告されている。ＩＦＮαは、がん遺伝子の下方制御、腫瘍抑制因子の上方制御、腫瘍表面ＭＨＣクラスＩタンパク質の発現の増加による免疫認識の向上、アポトーシスの増強、及び化学療法薬に対する感作を含む、様々な直接的抗腫瘍効果を発揮することができる（Ｇｕｔｔｅｒｍａｎｅｔａｌ．，１９９４，ＰＮＡＳＵＳＡ９１：１１９８−２０５；Ｍａｔａｒｒｅｓｅｅｔａｌ．，２００２，ＡｍＪＰａｔｈｏｌ１６０：１５０７−２０；Ｍｅｃｃｈｉａｅｔａｌ．，２０００，ＧｅｎｅＴｈｅｒ７：１６７−７９；Ｓａｂａａｗｙｅｔａｌ．，１９９９，ＩｎｔＪＯｎｃｏｌ１４：１１４３−５１；Ｔａｋａｏｋａｅｔａｌ，２００３，Ｎａｔｕｒｅ４２４：５１６−２３）。いくつかの腫瘍に対しては、ＩＦＮαは、ＳＴＡＴ１の活性化による直接的及び強力な抗増殖効果を有し得る（Ｇｒｉｍｌｅｙｅｔａｌ．，１９９８Ｂｌｏｏｄ９１：３０１７−２７）。インターフェロン−α２ｂは、ｈＬ２４３抗ＨＬＡ−ＤＲ抗体等の抗腫瘍抗体に複合化されており、ｉｎｖｉｔｒｏ及びｉｎｖｉｖｏでリンパ腫及び黒色腫細胞を枯渇させる（Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２０１１，Ｂｌｏｏｄ１１８：１８７７−８４）。

間接的には、ＩＦＮαは血管形成を阻害し得（ＳｉｄｋｙａｎｄＢｏｒｄｅｎ，１９８７，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ４７：５１５５−６１）、宿主免疫細胞を刺激し得るが、これは、全体的な抗腫瘍反応に不可欠となり得るがほとんど正当に評価されていない（Ｂｅｌａｒｄｅｌｌｉｅｔａｌ．，１９９６，ＩｍｍｕｎｏｌＴｏｄａｙ１７：３６９−７２）。ＩＦＮαは、骨髄細胞（Ｒａｅｆｓｋｙｅｔａｌ，１９８５，ＪＩｍｍｕｎｏｌ１３５：２５０７−１２；Ｌｕｆｔｅｔａｌ，１９９８，ＪＩｍｍｕｎｏｌ１６１：１９４７−５３）、Ｔ細胞（Ｃａｒｒｅｒｏｅｔａｌ，２００６，ＪＥｘｐＭｅｄ２０３：９３３−４０；Ｐｉｌｌｉｎｇｅｔａｌ．，１９９９，ＥｕｒＪＩｍｍｕｎｏｌ２９：１０４１−５０）、及びＢ細胞（Ｌｅｅｔａｌ，２００１，Ｉｍｍｕｎｉｔｙ１４：４６１−７０）に対する効果を通して、免疫反応に対し多面的な影響を有する。自然免疫系の重要な調整因子として、ＩＦＮαは、樹状細胞の急速な分化及び活性化を誘導し（Ｂｅｌａｒｄｅｌｌｉｅｔａｌ，２００４，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ６４：６８２７−３０；Ｐａｑｕｅｔｔｅｅｔａｌ．，１９９８，ＪＬｅｕｋｏｃＢｉｏｌ６４：３５８−６７；Ｓａｎｔｉｎｉｅｔａｌ．，２０００，ＪＥｘｐＭｅｄ１９１：１７７７−８８）、ＮＫ細胞の細胞毒性、遊走、サイトカイン産生及び抗体依存性細胞毒性（ＡＤＣＣ）を高める（Ｂｉｒｏｎｅｔａｌ．，１９９９，ＡｎｎＲｅｖＩｍｍｕｎｏｌ１７：１８９−２２０；Ｂｒｕｎｄａｅｔａｌ．１９８４，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ４４：５９７−６０１）。

インターフェロン−βは、様々な固形腫瘍の治療に有効であることが報告されている。ＨＣＶ関連肝臓がんを有する患者における原発腫瘍の完全切除又はアブレーション後、６００万単位のＩＦＮ−βで週２回３６ヶ月間治療された患者は、肝細胞癌の再発の低下を示した（Ｉｋｅｄａｅｔａｌ．，２０００，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ３２：２２８−３２）。インターフェロン−βによる遺伝子治療は、神経膠腫、黒色腫及び腎細胞癌のアポトーシスを誘導した（Ｙｏｓｈｉｄａｅｔａｌ．，２００４，ＣａｎｃｅｒＳｃｉ９５：８５８−６５）。内因性のＩＦＮ−βは、ｉｎｖｉｖｏで血管形成を阻害することにより、腫瘍成長を阻害することが観察されている（Ｊａｂｌｏｎｓｋａｅｔａｌ．，２０１０，ＪＣｌｉｎＩｎｖｅｓｔ．１２０：１１５１−６４）。

ＩＩＩ型インターフェロンと指定されるＩＦＮ−λは、ＩＦＮ−λ１、２、３からなるサイトカイン（それぞれインターロイキン−２９、２８Ａ、及び２８Ｂとも呼ばれる）の新しく説明された群であり、それらは染色体１９上に位置する３つの異なる遺伝子により遺伝的にコードされている（Ｋｏｔｅｎｋｏｅｔａｌ．，２００３，ＮａｔＩｍｍｕｎｏｌ４：６９−７７；Ｓｈｅｐｐａｒｄｅｔａｌ．，２００３，ＮａｔＩｍｍｕｎｏｌ４：６３−８）。タンパク質レベルでは、ＩＦＮ−λ２及びＩＦＮ−λ３は極めて相同性であり、９６％のアミノ酸同一性を有し、一方ＩＦＮ−λ１は、ＩＦＮ−λ２及びＩＦＮ−λ３と約８１％の相同性を共有している（Ｓｈｅｐｐａｒｄｅｔａｌ．，２００３，ＮａｔＩｍｍｕｎｏｌ４：６３−８）。ＩＦＮ−λは、ＪＡＫ１及びＴＹＫ２キナーゼの活性化、ＳＴＡＴタンパク質のリン酸化、並びにＩＦＮ刺激遺伝子因子３（ＩＳＧＦ３）の転写複合物の活性化を含む、Ｉ型ＩＦＮにより誘導されるものと同様のＪＡＫ／ＳＴＡＴ経路を介してシグナル伝達を活性化する（Ｗｉｔｔｅｅｔａｌ．，２０１０，ＣｙｔｏｋｉｎｅＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒＲｅｖ２１：２３７−５１；Ｚｈｏｕｅｔａｌ．，２００７，ＪＶｉｒｏｌ８１：７７４９−５８）。

ＩＩＩ型ＩＦＮ系とＩ型ＩＦＮ系との間の大きな違いは、それぞれの受容体複合物の分布である。ＩＦＮ−α／βは、２つの広範囲に発現したＩ型インターフェロン受容体を介してシグナル伝達し、ＩＦＮ−α／β投与に関連した結果的な全身毒性が、その治療薬剤としての使用を制限している（Ｐｅｓｔｋａｅｔａｌ．，２００７，ＪＢｉｏｌＣｈｅｍ２８２：２００４７−５１）。対照的に、ＩＦＮ−λは、固有のＩＦＮ−λ受容体１（ＩＦＮ−λＲ１）及びＩＬ−１０受容体２（ＩＬ−１０Ｒ２）からなるヘテロ二量体受容体複合物を介してシグナル伝達する。以前に報告されたように（Ｗｉｔｔｅｅｔａｌ．，２００９，ＧｅｎｅｓＩｍｍｕｎ１０：７０２−１４）、ＩＦＮ−λＲ１は、非常に制限された発現パターンを有し、上皮細胞、メラニン細胞、及び肝細胞において最も高いレベルであり、原発中枢神経系（ＣＮＳ）細胞において最も低いレベルである。血液免疫系細胞は、ＩＦＮ−λ作用を阻害する、高レベルの短いＩＦＮ−λ受容体スプライス変異（ｓＩＦＮ−λＲ１）を発現する。神経細胞及び免疫細胞の制限された反応性は、ＩＦＮ−α療法に関連することの多い重度の毒性が、ＩＦＮ−λにより存在しない、又は大幅に低減され得ることを示唆している（Ｗｉｔｔｅｅｔａｌ．，２００９，ＧｅｎｅｓＩｍｍｕｎ１０：７０２−１４；Ｗｉｔｔｅｅｔａｌ．，２０１０，ＣｙｔｏｋｉｎｅＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒＲｅｖ２１：２３７−５１）。最近の出版物によれば、ＩＦＮ−α及びＩＦＮ−λは肝細胞においてＩＳＧ（インターフェロン刺激遺伝子）の共通の組の発現を誘導するが、ＩＦＮ−αとは異なり、ＩＦＮ−λの投与は、精製されたリンパ球又は単球において、ＳＴＡＴ活性化又はＩＳＧ発現を誘導しないことが報告されている（Ｄｉｃｋｅｎｓｈｅｅｔｓｅｔａｌ．，２０１３，ＪＬｅｕｋｏｃＢｉｏｌ．９３、１２／２０／１２にオンラインで公開）。ＩＦＮ−λは、ＩＦＮ−α療法に関連することの多い白血球減少症を誘導する可能性が低いため、慢性ＨＣＶ感染の治療においてＩＦＮ−αよりも優れている可能性があることが示唆された（Ｄｉｃｋｅｎｓｈｅｅｔｓｅｔａｌ．，２０１３）。

ＩＦＮ−λは、ＩＬ−１０関連サイトカインに類似した構造的特徴を示すが、機能的にはＩ型ＩＦＮ様抗ウイルス及び抗増殖活性を有する（Ｗｉｔｔｅｅｔａｌ．，２００９，ＧｅｎｅｓＩｍｍｕｎ１０：７０２−１４；Ａｎｋｅｔａｌ．，２００６，ＪＶｉｒｏｌ８０：４５０１−９；Ｒｏｂｅｋｅｔａｌ．，２００５，ＪＶｉｒｏｌ７９：３８５１−４）。ＩＦＮ−λ１及びＩＦＮ−λ２は、ＤＮＡウイルス（Ｂ型肝炎ウイルス（Ｒｏｂｅｋｅｔａｌ．，２００５，ＪＶｉｒｏｌ７９：３８５１−４、Ｄｏｙｌｅｅｔａｌ．，２００６，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ４４：８９６−９０６）及び単純ヘルペスウイルス２型（Ａｎｋｅｔａｌ．，２００８，ＪＩｍｍｕｎｏｌ１８０：２４７４−８５））、ｓｓ（＋）ＲＮＡウイルス（ＥＭＣＶ；Ｓｈｅｐｐａｒｄｅｔａｌ．，２００３，ＮａｔＩｍｍｕｎｏｌ４：６３−８）及びＣ型肝炎ウイルス（Ｒｏｂｅｋｅｔａｌ．，２００５，ＪＶｉｒｏｌ７９：３８５１−４、Ｄｏｙｌｅｅｔａｌ．，２００６，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ４４：８９６−９０６；Ｍａｒｃｅｌｌｏｅｔａｌ．，２００６，Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ１３１：１８８７−９８；Ｐａｇｌｉａｃｃｅｔｔｉｅｔａｌ．，２００８，ＪＢｉｏｌＣｈｅｍ２８３：３００７９−８９）、ｓｓ（−）ＲＮＡウイルス（水疱性口内炎ウイルス；Ｐａｇｌｉａｃｃｅｔｔｉｅｔａｌ．，２００８，ＪＢｉｏｌＣｈｅｍ２８３：３００７９−８９）及びインフルエンザＡウイルス（Ｊｅｗｅｌｌｅｔａｌ．，２０１０，ＪＶｉｒｏｌ８４：１１５１５−２２）及び二本鎖ＲＮＡウイルス、例えばロタウイルス（Ｐｏｔｔｅｔａｌ．，２０１１，ＰＮＡＳＵＳＡ１０８：７９４４０４９）を含む、様々なウイルスのウイルス複製又は細胞変性効果を低減することが実証されている。ＩＦＮ−λ３は、遺伝子研究から、ＨＣＶ感染における重要なサイトカインとして同定されており（Ｇｅｅｔａｌ．，２００９，Ｎａｔｕｒｅ４６１：３９９−４０１）、またＥＭＣＶに対する強力な活性を示している（Ｄｅｌｌｇｒｅｎｅｔａｌ．，２００９，ＧｅｎｅｓＩｍｍｕｎ１０：１２５−３１）。ライノウイルス誘導ＩＦＮ−λ産生の欠如が、ライノウイルス誘導喘息増悪の重症度と極めて相関することが報告され（Ｃｏｎｔｏｌｉｅｔａｌ．，２００６，ＮａｔｕｒｅＭｅｄ１２：１０２３−２６）、ＩＦＮ−λ療法は、アレルギー性喘息の治療の新たなアプローチとして示唆されている（ＥｄｗａｒｄｓａｎｄＪｏｈｎｓｔｏｎ，２０１１，ＥＭＢＯＭｏｌＭｅｄ３：３０６−８；Ｋｏｌｔｓｉｄａｅｔａｌ．，２０１１，ＥＭＢＯＭｏｌＭｅｄ３：３４８−６１）。

ＩＦＮ−λの抗増殖活性が、神経内分泌癌ＢＯＮ１（Ｚｉｔｚｍａｎｎｅｔａｌ．，２００６，ＢｉｏｃｈｅｍＢｉｏｐｈｙｓＲｅｓＣｏｍｍｕｎ３４４：１３３４−４１）、膠芽腫ＬＮ３１９（Ｍｅａｇｅｒｅｔａｌ．，２００５，Ｃｙｔｏｋｉｎｅ３１：１０９−１８）、不死化ケラチノサイトＨａＣａＴ（Ｍａｈｅｒｅｔａｌ．，２００８，ＣａｎｃｅｒＢｉｏｌＴｈｅｒ７：１１０９−１５）、黒色腫Ｆ０１（Ｇｕｅｎｔｅｒｂｅｒｇｅｔａｌ．，２０１０，ＭｏｌＣａｎｃｅｒＴｈｅｒ９：５１０−２０）、及び食道癌ＴＥ−１１（Ｌｉｅｔａｌ．，２０１０，ＥｕｒＪＣａｎｃｅｒ４６：１８０−９０）を含むいくつかのヒトがん細胞株において確立されている。動物モデルにおいて、ＩＦＮ−λは、自然及び適応免疫反応を通して腫瘍のアポトーシスと破壊の両方を誘導し、ＩＦＮ−λの局所送達がヒト悪性腫瘍の治療において有用な付加的戦略となり得ることが示唆されている（Ｎｕｍａｓａｋｉｅｔａｌ．，２００７，ＪＩｍｍｕｎｏｌ１７８：５０８６−９８）。Ｆａｂ連結インターフェロン−λは、標的細胞において強力な抗腫瘍及び抗ウイルス活性を有することが実証されている（Ｌｉｕｅｔａｌ．，２０１３，ＰＬｏＳＯｎｅ８：ｅ６３９４０）。

臨床設定において、ＰＥＧ化ＩＦＮ−λ１（ＰＥＧ−ＩＦＮ−λ１）は、慢性Ｃ型肝炎ウイルス感染患者に対して暫定的に使用されている。第Ｉｂ相試験（ｎ＝５６）において、ＩＦＮ−α療法後に再発した遺伝子型１型ＨＣＶ患者にＰＥＧ−ＩＦＮ−λ１を投与すると、抗ウイルス活性が、全ての用量レベル（０．５〜３．０μｇ／ｋｇ）で観察され、ウイルス量が２．３ｌｏｇから４．０ｌｏｇに低下した（Ｍｕｉｒｅｔａｌ．，２０１０，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ５２：８２２−３２）。第ＩＩｂ相試験（ｎ＝５２６）では、ＨＣＶ遺伝子型１及び４型の患者が、ＰＥＧ−ＩＦＮ−αと比較して、ＰＥＧ−ＩＦＮ−λ１による治療に対する大幅に高い反応率を有することが示された。同時に、Ｉ型インターフェロン治療に一般的に関連する有害事象の割合が、ＰＥＧ−ＩＦＮ−αよりもＰＥＧ−ＩＦＮ−λ１において低かった。好中球減少症及び血小板減少症は稀にしか観察されず、インフルエンザ様症状、貧血、及び骨格筋症状の割合が、ＰＥＧ−ＩＦＮ−α処理で観察された割合の約１／３に減少した。しかしながら、重篤な有害事象、うつ病及び他の一般的な有害事象の割合（≧１０％）は、ＰＥＧ−ＩＦＮ−λ１とＰＥＧ−ＩＦＮ−αとの間で同様であった。ＰＥＧ−ＩＦＮ−αと比較して、より高い割合の肝毒性が、最高用量のＰＥＧ−ＩＦＮ−λ１で観察された（”ＩｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎａｌＣｏｍｐｏｕｎｄＰＥＧ−ＩｎｔｅｒｆｅｒｏｎＬａｍｂｄａＡｃｈｉｅｖｅｄＨｉｇｈｅｒＲｅｓｐｏｎｓｅＲａｔｅｓｗｉｔｈＦｅｗｅｒＦｌｕ−ｌｉｋｅａｎｄＭｕｓｃｕｌｏｓｋｅｌｅｔａｌＳｙｍｐｔｏｍｓａｎｄＣｙｔｏｐｅｎｉａｓＴｈａｎＰＥＧ−ＩｎｔｅｒｆｅｒｏｎＡｌｆａｉｎＰｈａｓｅＩＩｂＳｔｕｄｙｏｆ５２６Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ−ＮａｉｖｅＨｅｐａｔｉｔｉｓＣＰａｔｉｅｎｔｓ，”Ａｐｒｉｌ２，２０１１，ＰｒｅｓｓＲｅｌｅａｓｅｆｒｏｍＢｒｉｓｔｏｌ−ＭｙｅｒｓＳｑｕｉｂｂ）。

様々な実施形態において、白血球再指向二重特異性抗体、ＡＤＣ及び／又はチェックポイント阻害剤ｍＡｂは、インターフェロン−α、インターフェロン−β、インターフェロン−λ１、インターフェロン−λ２、又はインターフェロン−λ３等の１種以上のインターフェロンと組み合わせて使用され得る。他の薬剤と使用される場合、インターフェロンは、他の薬剤の前に、それと同時に、又はその後に投与され得る。同時に投与される場合、インターフェロンは、他の薬剤に複合化していてもよく、又はそれとは別個であってもよい。

チェックポイント阻害剤抗体
がん治療のためのチェックポイント阻害剤抗体に関する研究は、以前はがん治療に抵抗性であると考えられていたがんにおいて、前例のない反応率をもたらした（例えば、Ｏｔｔ＆Ｂｈａｒｄｗａｊ，２０１３，ＦｒｏｎｔｉｅｒｓｉｎＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ４：３４６；Ｍｅｎｚｉｅｓ＆Ｌｏｎｇ，２０１３，ＴｈｅｒＡｄｖＭｅｄＯｎｃｏｌ５：２７８−８５；Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−６４；Ｍａｖｉｌｉｏ＆Ｌｕｇｌｉを参照されたい）。ＣＴＬＡ４、ＰＤ１及びＰＤ−Ｌ１等の免疫系チェックポイントに対するアンタゴニストチェックポイント遮断抗体による治療は、がん及び他の疾患に対する、最も有望な新しい免疫治療手段の１つである。抗がん剤の大部分と対照的に、チェックポイント阻害剤は、腫瘍細胞を直接的には標的化しないが、むしろ免疫系の内因性抗がん活性を高めるために、リンパ球受容体又はそのリガンドを標的化する。（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４。）そのような抗体は、主に疾患細胞、組織又は病原体に対する免疫反応を制御することにより作用するため、それらは、他の治療法、例えば主題の白血球再指向二重特異性抗体、ＡＤＣ及び／又はインターフェロンと組み合わせて使用されて、そのような薬剤の抗腫瘍効果を高めることができる。チェックポイント活性化はまた、慢性感染症とも関連し得るため（Ｎｉｒｓｃｈｌ＆Ｄｒａｋｅ，２０１３，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１９：４９１７−２４）、そのような併用療法はまた、感染性疾患の治療に有用となり得る。

現在、腫瘍は、特に腫瘍抗原に特異的なＴ細胞において、ある特定の免疫チェックポイント経路を共選択（ｃｏ−ｏｐｔ）することにより免疫学的監視を回避することができることが明らかである（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。多くのそのような免疫チェックポイントは、リガンド−受容体相互作用により開始されるため、それらは、リガンド及び／又はそれらの受容体に対する抗体により容易にブロックされ得る（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。ＣＴＬＡ４、ＰＤ１及びＰＤ−Ｌ１に対するチェックポイント阻害剤抗体が最も臨床的に進んでいるが、ＬＡＧ３、Ｂ７−Ｈ３、Ｂ７−Ｈ４及びＴＩＭ３等の他の潜在的なチェックポイント抗原が知られており、治療抗体の標的として使用され得る（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。

プログラム細胞死タンパク質１（ＰＤ１、ＣＤ２７９としても知られる）は、Ｂ細胞及びＮＫ細胞上に発現する、免疫グロブリンスーパーファミリーの細胞表面膜タンパク質をコードする（Ｓｈｉｎｏｈａｒａｅｔａｌ．，１９９５，Ｇｅｎｏｍｉｃｓ２３：７０４−６；Ｂｌａｎｋｅｔａｌ．，２００７，ＣａｎｃｅｒＩｍｍｕｎｏｌＩｍｍｕｎｏｔｈｅｒ５６：７３９−４５；Ｆｉｎｇｅｒｅｔａｌ．，１９９７，Ｇｅｎｅ１９７：１７７−８７；Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。ＰＤ１の主要な役割は、感染に応答した炎症中の周辺組織におけるＴ細胞の活性を制限すること、及び自己免疫を制限することである（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。ＰＤ１発現は、活性化されたＴ細胞において誘導され、その内因性リガンドの１つに対するＰＤ１の結合は、刺激性キナーゼを阻害することによりＴ細胞活性化を阻害するように作用する（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。ＰＤ１はまた、ＴＣＲ「停止シグナル」を阻害するように作用する（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。ＰＤ１は、Ｔ_ｒｅｇ細胞上に高度に発現し、リガンドの存在下でその増殖を増強し得る（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。

抗ＰＤ１抗体は、黒色腫、非小細胞肺がん、膀胱がん、前立腺癌、結腸直腸がん、頭頸部がん、トリプルネガティブ乳がん、白血病、リンパ腫及び腎細胞がんの治療に使用されている（Ｔｏｐａｌｉａｎｅｔａｌ．，２０１２，ＮＥｎｇｌＪＭｅｄ３６６：２４４３−５４；Ｌｉｐｓｏｎｅｔａｌ．，２０１３，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１９：４６２−８；Ｂｅｒｇｅｒｅｔａｌ．，２００８，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１４：３０４４−５１；Ｇｉｌｄｅｎｅｒ−Ｌｅａｐｍａｎｅｔａｌ．，２０１３，ＯｒａｌＯｎｃｏｌ４９：１０８９−９６；Ｍｅｎｚｉｅｓ＆Ｌｏｎｇ，２０１３，ＴｈｅｒＡｄｖＭｅｄＯｎｃｏｌ５：２７８−８５）。ＰＤ１／ＰＤ−Ｌ１及びＣＴＬＡ４は、異なる経路により作用するため、それぞれに対するチェックポイント阻害剤抗体との併用療法が、免疫反応の向上を提供し得ることが可能である。

例示的な抗ＰＤ１抗体は、ラムブロリズマブ（ＭＫ−３４７５、ＭＥＲＣＫ）、ニボルマブ（ＢＭＳ−９３６５５８、ＢＲＩＳＴＯＬ−ＭＹＥＲＳＳＱＵＩＢＢ）、ＡＭＰ−２２４（ＭＥＲＣＫ）、及びピジリズマブ（ＣＴ−０１１、ＣＵＲＥＴＥＣＨＬＴＤ．）を含む。抗ＰＤ１抗体は、例えば、ＡＢＣＡＭ（登録商標）（ＡＢ１３７１３２）、ＢＩＯＬＥＧＥＮＤ（登録商標）（ＥＨ１２．２Ｈ７、ＲＭＰ１−１４）及びＡＦＦＹＭＥＴＲＩＸＥＢＩＯＳＣＩＥＮＣＥ（Ｊ１０５、Ｊ１１６、ＭＩＨ４）から市販されている。

プログラム細胞死１リガンド１（ＰＤ−Ｌ１、ＣＤ２７４及びＢ７−Ｈ１としても知られる）は、活性化されたＴ細胞、Ｂ細胞、骨髄細胞及びマクロファージ上に見られるＰＤ１のリガンドである。ＰＤ１には２つの内因性リガンド、ＰＤ−Ｌ１及びＰＤ−Ｌ２が存在するが、抗腫瘍療法は、抗ＰＤ−Ｌ１抗体に重点を置いている。ＰＤ１及びＰＤ−Ｌ１の複合物は、ＣＤ８＋Ｔ細胞の増殖を阻害し、免疫反応を低減させる（Ｔｏｐａｌｉａｎｅｔａｌ．，２０１２，ＮＥｎｇｌＪＭｅｄ３６６：２４４３−５４；Ｂｒａｈｍｅｒｅｔａｌ．，２０１２，ＮＥｎｇＪＭｅｄ３６６：２４５５−６５）。抗ＰＤ−Ｌ１抗体は、非小細胞肺がん、黒色腫、結腸直腸がん、腎細胞がん、膵臓がん、胃がん、卵巣がん、乳がん、及び血液悪性腫瘍の治療に使用されている（Ｂｒａｈｍｅｒｅｔａｌ．，ＮＥｎｇＪＭｅｄ３６６：２４５５−６５；Ｏｔｔｅｔａｌ．，２０１３，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１９：５３００−９；Ｒａｄｖａｎｙｉｅｔａｌ．，２０１３，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１９：５５４１；Ｍｅｎｚｉｅｓ＆Ｌｏｎｇ，２０１３，ＴｈｅｒＡｄｖＭｅｄＯｎｃｏｌ５：２７８−８５；Ｂｅｒｇｅｒｅｔａｌ．，２００８，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１４：１３０４４−５１）。

例示的な抗ＰＤ−Ｌ１抗体は、ＭＤＸ−１１０５（ＭＥＤＡＲＥＸ）、ＭＥＤＩ４７３６（ＭＥＤＩＭＭＵＮＥ）ＭＰＤＬ３２８０Ａ（ＧＥＮＥＮＴＥＣＨ）及びＢＭＳ−９３６５５９（ＢＲＩＳＴＯＬ−ＭＹＥＲＳＳＱＵＩＢＢ）を含む。抗ＰＤ−Ｌ１抗体はまた、例えばＡＦＦＹＭＥＴＲＩＸＥＢＩＯＳＣＩＥＮＣＥ（ＭＩＨ１）から市販されている。

細胞毒性Ｔリンパ球抗原４（ＣＴＬＡ４、ＣＤ１５２としても知られる）もまた、Ｔ細胞上にのみ発現する免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバーである。ＣＴＬＡ４は、Ｔ細胞活性化を阻害するように作用し、ヘルパーＴ細胞活性を阻害し、調節性Ｔ細胞免疫抑制活性を高めることが報告されている（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。ＣＴＬ４−Ａの正確な作用機序は未だ調査中であるが、ＣＤ８０及びＣＤ８６への結合においてＣＤ２８を打ち負かすことにより、並びにＴ細胞に阻害剤シグナルを活発に送達することによりＴ細胞活性化を阻害することが示唆されている（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。抗ＣＴＬ４Ａ抗体は、黒色腫、前立腺癌、小細胞肺がん、非小細胞肺がんの治療のための臨床試験において使用されている（Ｒｏｂｅｒｔ＆Ｇｈｉｒｉｎｇｈｅｌｌｉ，２００９，Ｏｎｃｏｌｏｇｉｓｔ１４：８４８−６１；Ｏｔｔｅｔａｌ．，２０１３，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１９：５３００；Ｗｅｂｅｒ，２００７，Ｏｎｃｏｌｏｇｉｓｔ１２：８６４−７２；Ｗａｄａｅｔａｌ．，２０１３，ＪＴｒａｎｓｌＭｅｄ１１：８９）。抗ＣＴＬ４Ａの顕著な特徴は、抗腫瘍効果の反応速度論であり、生理学的反応に必要な最初の処理後６ヶ月までの遅延期間を有する（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。いくつかの場合において、腫瘍は、治療開始後、減少が見られる前に実際にはサイズが増加し得る（Ｐａｒｄｏｌｌ，２０１２，ＮａｔｕｒｅＲｅｖｉｅｗｓＣａｎｃｅｒ１２：２５２−２６４）。

例示的な抗ＣＴＬＡ４抗体は、イピリムマブ（Ｂｒｉｓｔｏｌ−ＭｙｅｒｓＳｑｕｉｂｂ）及びトレメリムマブ（ＰＦＩＺＥＲ）を含む。抗ＰＤ１抗体は、例えば、ＡＢＣＡＭ（登録商標）（ＡＢ１３４０９０）、ＳＩＮＯＢＩＯＬＯＧＩＣＡＬＩＮＣ．（１１１５９−Ｈ０３Ｈ、１１１５９−Ｈ０８Ｈ）、及びＴＨＥＲＭＯＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣＰＩＥＲＣＥ（ＰＡ５−２９５７２、ＰＡ５−２３９６７、ＰＡ５−２６４６５、ＭＡ１−１２２０５、ＭＡ１−３５９１４）から市販されている。イピリムマブは、最近、ＦＤＡにより転移黒色腫の治療に対する認可を受けた（Ｗａｄａｅｔａｌ．，２０１３，ＪＴｒａｎｓｌＭｅｄ１１：８９）。

当業者には、それを必要とする患者に、単独で、又は１種以上の他の薬剤と組み合わせて投与するチェックポイント阻害剤抗体の最適な用量を決定する方法が、当該技術分野において周知である標準的な用量−反応及び毒性試験により決定され得ることが理解される。例示的実施形態において、チェックポイント阻害剤抗体は、好ましくは、約３週間毎又は約６週間毎の投与により、約０．３〜１０ｍｇ／ｋｇで、又は最大耐量で投与され得る。代替として、チェックポイント阻害剤抗体は、約３ｍｇ／ｋｇの第１の用量、約５ｍｇ／ｋｇの第２の用量、及び約９ｍｇ／ｋｇの第３の用量での投与を含む増量投薬計画により投与され得る。代替として、増量投薬計画は、チェックポイント阻害剤抗体の約５ｍｇ／ｋｇの第１の用量及び約９ｍｇ／ｋｇの第２の用量での投与を含む。別の段階的増量投薬計画は、チェックポイント阻害剤抗体の約３ｍｇ／ｋｇの第１の用量、約３ｍｇ／ｋｇの第２の用量、約５ｍｇ／ｋｇの第３の用量、約５ｍｇ／ｋｇの第４の用量、及び約９ｍｇ／ｋｇの第５の用量での投与を含んでもよい。別の態様において、段階的増量投薬計画は、５ｍｇ／ｋｇの第１の用量、５ｍｇ／ｋｇの第２の用量、及び９ｍｇ／ｋｇの第３の用量での投与を含んでもよい。チェックポイント阻害剤ｍＡｂの例示的な報告されている用量は、４回の投薬にわたる３週間毎に投与される３ｍｇ／ｋｇのイピリムマブ；８サイクルにわたる３週間毎の１０ｍｇ／ｋｇのイピリムマブ；４サイクルにわたる３週間毎の、次いで合計３年にわたる１２週間毎の１０ｍｇ／ｋｇ；２週間又は３週間毎の１０ｍｇ／ｋｇのＭＫ−３４７５；３週間毎の２ｍｇ／ｋｇのＭＫ−３４７５；３ヶ月毎の１５ｍｇ／ｋｇのトレメリムマブ；９６週間までの２週間毎の０．１、０．３、１、３又は１０ｍｇ／ｋｇのニボルマブ；９６週間までの２週間毎の０．３、１、３、又は１０ｍｇ／ｋｇのＢＭＳ−９３６５５９を含む（Ｋｙｉ＆Ｐｏｓｔｏｗ，Ｏｃｔｏｂｅｒ２３，２０１３，ＦＥＢＳＬｅｔｔ［Ｅｐｕｂａｈｅａｄｏｆｐｒｉｎｔ］；Ｃａｌｌａｈａｎ＆Ｗｏｌｃｈｏｋ，２０１３，ＪＬｅｕｋｏｃＢｉｏｌ９４：４１−５３）。

腫瘍及び／又は病原体に対する免疫反応を刺激するこれらの、及び他の既知の薬剤は、改善されたがん治療のために、白血球再指向二重特異性抗体のみと組み合わせて、又はさらにインターフェロン−α等のインターフェロン、及び／若しくは抗体−薬物複合体と組み合わせて使用され得る。組み合わせて使用され得る他の既知の共刺激経路調整因子は、アガトリモド、ベラタセプト、ブリナツモマブ、ＣＤ４０リガンド、抗Ｂ７−１抗体、抗Ｂ７−２抗体、抗Ｂ７−Ｈ４抗体、ＡＧ４２６３、エリトラン、抗ＯＸ４０抗体、ＩＳＦ−１５４、及びＳＧＮ−７０；Ｂ７−１、Ｂ７−２、ＩＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２、ＩＣＡＭ−３、ＣＤ４８、ＬＦＡ−３、ＣＤ３０リガンド、ＣＤ４０リガンド、熱安定性抗原、Ｂ７ｈ、ＯＸ４０リガンド、ＬＩＧＨＴ、ＣＤ７０及びＣＤ２４を含むが、これらに限定されない。

ある特定の実施形態において、抗ＫＩＲ抗体はまた、白血球再指向ｂｓＡｂ、インターフェロン、ＡＤＣ及び／又はチェックポイント阻害剤抗体と組み合わせて使用され得る。ＮＫ細胞は、自然の細胞毒性により、及び抗体により活性された場合のＡＤＣＣにより、抗腫瘍及び抗感染薬剤活性を媒介する（Ｋｏｈｒｔｅｔａｌ．，２０１３，Ｂｌｏｏｄ，［Ｅｐｕｂａｈｅａｄｏｆｐｒｉｎｔ１２／１０／１３］）。細胞毒性反応の程度は、ＮＫ細胞により受容される阻害及び活性化シグナルのバランスにより決定される（Ｋｏｈｒｔｅｔａｌ．，２０１３）。キラー細胞免疫グロブリン様受容体（ＫＩＲ）は、ＮＫ細胞反応を減少させる阻害シグナルを媒介する。リルルマブ（ＩｎｎａｔｅＰｈａｒｍａ）及びＩＰＨ２１０１（ＩｎｎａｔｅＰｈａｒｍａ）等の抗ＫＩＲ抗体は、多発性骨髄腫における抗腫瘍活性を示している（Ｂｅｎｓｏｎｅｔａｌ．，２０１２，Ｂｌｏｏｄ１２０：４３２４−３３）。Ｉｎｖｉｔｒｏにおいて、抗ＫＩＲ抗体は、ＮＫ細胞と標的細胞との寛容原性相互作用を防止し、腫瘍細胞に対するＮＫ細胞の細胞毒性反応を強化する（Ｋｏｈｒｔｅｔａｌ．，２０１３）。Ｉｎｖｉｖｏにおいて、リツキシマブ（抗ＣＤ２０）と組み合わせると、抗ＫＩＲ抗体は、０．５ｍｇ／ｋｇの用量で、リンパ腫腫瘍に対するＮＫ細胞媒介性のリツキシマブ依存性細胞毒性の向上を誘導した（Ｋｏｈｒｔｅｔａｌ．，２０１３）。抗ＫＩＲｍＡｂは、腫瘍細胞又は病原生物に対する細胞毒性を増強するために、ＡＤＣ、白血球再指向ｂｓＡｂ、インターフェロン及び／又はチェックポイント阻害剤抗体と組み合わされてもよい。

一般的な抗体技術
事実上任意の標的抗原に対するモノクローナル抗体を調製するための技術は周知である。例えば、ＫｏｈｌｅｒａｎｄＭｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ２５６：４９５（１９７５）、及びＣｏｌｉｇａｎｅｔａｌ．（ｅｄｓ．），ＣＵＲＲＥＮＴＰＲＯＴＯＣＯＬＳＩＮＩＭＭＵＮＯＬＯＧＹ，ＶＯＬ．１，ｐａｇｅｓ２．５．１−２．６．７（ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ１９９１）を参照されたい。簡潔に説明すると、モノクローナル抗体は、抗原を含む組成物をマウスに注射し、脾臓を取り出してＢリンパ球を得、Ｂリンパ球を骨髄腫細胞と融合させてハイブリドーマを生成し、ハイブリドーマをクローニングし、抗原に対する抗体を生成する陽性クローンを選択し、抗原に対する抗体を生成するクローンを培養し、ハイブリドーマ培養物から抗体を単離することにより得ることができる。

ＭＡｂは、十分に確立された様々な技術により、ハイブリドーマ培養物から単離及び精製され得る。そのような単離技術は、タンパク質−Ａセファロースによる親和性クロマトグラフィー、サイズ排除クロマトグラフィー、及びイオン交換クロマトグラフィーを含む。例えば、Ｃｏｌｉｇａｎの２．７．１〜２．７．１２ページ及び２．９．１〜２．９．３ページを参照されたい。また、Ｂａｉｎｅｓｅｔａｌ．，“ＰｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆＩｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎＧ（ＩｇＧ），”ｉｎＭＥＴＨＯＤＳＩＮＭＯＬＥＣＵＬＡＲＢＩＯＬＯＧＹ，ＶＯＬ．１０，ｐａｇｅｓ７９−１０４（ＴｈｅＨｕｍａｎａＰｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．１９９２）を参照されたい。

免疫原に対する抗体の最初の惹起後、抗体を配列決定し、続いて組み換え技術により調製することができる。マウス抗体及び抗体断片のヒト化及びキメラ化は、当業者に周知である。ヒト化、キメラ又はヒト抗体から得られる抗体成分の使用は、マウス定常領域の免疫原性と関連した潜在的問題を排除する。

キメラ抗体
キメラ抗体は、ヒト抗体の可変領域が、例えばマウス抗体の相補性決定領域（ＣＤＲ）を含むマウス抗体の可変領域により置き換えられている組換えタンパク質である。キメラ抗体は、対象に投与されると、減少した免疫原性及び増加した安定性を示す。マウス免疫グロブリン可変ドメインをクローニングするための一般的技術は、例えば、Ｏｒｌａｎｄｉｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’ｌＡｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８６：３８３３（１９８９）において開示されている。キメラ抗体を構築するための技術は、当業者に周知である。一例として、Ｌｅｕｎｇｅｔａｌ．，Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ１３：４６９（１９９４）は、抗ＣＤ２２モノクローナル抗体であるマウスＬＬ２のＶκ及びＶ_ＨドメインをコードするＤＮＡ配列を、それぞれのヒトκ及びＩｇＧ_１定常領域ドメインに組み合わせることにより、ＬＬ２キメラを生成した。

ヒト化抗体
ヒト化ＭＡｂを生成するための技術は、当該技術分野において周知である（例えば、Ｊｏｎｅｓｅｔａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ３２１：５２２（１９８６）、Ｒｉｅｃｈｍａｎｎｅｔａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ３３２：３２３（１９８８）、Ｖｅｒｈｏｅｙｅｎｅｔａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ２３９：１５３４（１９８８）、Ｃａｒｔｅｒｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’ｌＡｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８９：４２８５（１９９２）、Ｓａｎｄｈｕ，Ｃｒｉｔ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．１２：４３７（１９９２）、及びＳｉｎｇｅｒｅｔａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎ．１５０：２８４４（１９９３）を参照されたい）。キメラ又はマウスモノクローナル抗体は、マウス免疫グロブリンからの可変重鎖又は軽鎖から、対応するヒト抗体の可変ドメインにマウスＣＤＲを移入することによりヒト化され得る。キメラモノクローナル抗体内のマウスフレームワーク領域（ＦＲ）もまた、ヒトＦＲ配列で置き換えられる。ヒトＦＲへのマウスＣＤＲの移入だけでは、多くの場合抗体親和性の低減又はさらに損失がもたらされるため、マウス抗体の元の親和性を修復するために、追加的な改質が必要となり得る。これは、そのエピトープへの良好な結合親和性を有する抗体を得るための、ＦＲ領域における１つ以上のヒト残基のそれらのマウス相当物での置き換えにより達成され得る。例えば、Ｔｅｍｐｅｓｔｅｔａｌ．，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ９：２６６（１９９１）及びＶｅｒｈｏｅｙｅｎｅｔａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ２３９：１５３４（１９８８）を参照されたい。一般的に、そのマウス相当物と異なり、また１つ以上のＣＤＲアミノ酸残基に近接して、又は接触して位置するそれらのヒトＦＲアミノ酸残基が、置換の候補となる。

ヒト抗体
組み合わせアプローチ又はヒト免疫グロブリン遺伝子座により形質転換されたトランスジェニック動物を使用して完全ヒト抗体を生成するための方法は、当該技術分野において知られている（例えば、Ｍａｎｃｉｎｉｅｔａｌ．，２００４，ＮｅｗＭｉｃｒｏｂｉｏｌ．２７：３１５−２８；ＣｏｎｒａｄａｎｄＳｃｈｅｌｌｅｒ，２００５，Ｃｏｍｂ．Ｃｈｅｍ．ＨｉｇｈＴｈｒｏｕｇｈｐｕｔＳｃｒｅｅｎ．８：１１７−２６；ＢｒｅｋｋｅａｎｄＬｏｓｅｔ，２００３，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｐｈａｍａｃｏｌ．３：５４４−５０）。完全ヒト抗体はまた、遺伝子又は染色体トランスフェクション法、及びファージディスプレイ技術により構築することができ、これらは全て当該技術分野において知られている。例えば、ＭｃＣａｆｆｅｒｔｙｅｔａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ３４８：５５２−５５３（１９９０）を参照されたい。そのような完全ヒト抗体は、キメラ又はヒト化抗体よりもさらに少ない副作用を示し、またｉｎｖｉｖｏで本質的に内因性のヒト抗体として機能することが予測される。ある特定の実施形態において、請求される方法及び手順は、そのような技術により生成されたヒト抗体を利用することができる。

一代替例において、ファージディスプレイ技術を使用してヒト抗体が生成され得る（例えば、Ｄａｎｔａｓ−Ｂａｒｂｏｓａｅｔａｌ．，２００５，Ｇｅｎｅｔ．Ｍｏｌ．Ｒｅｓ．４：１２６−４０）。ヒト抗体は、正常なヒトから、又はがん等の特定の疾患状態を示すヒトから生成され得る（Ｄａｎｔａｓ−Ｂａｒｂｏｓａｅｔａｌ．，２００５）。疾患を有する個人からヒト抗体を構築することの利点は、循環抗体レパートリーが、疾患関連抗原に対する抗体に向けてバイアスされ得ることである。

この方法の１つの限定されない例において、Ｄａｎｔａｓ−Ｂａｒｂｏｓａら（２００５）は、骨肉腫患者からヒトＦａｂ抗体断片のファージディスプレイライブラリを構築した。一般に、全ＲＮＡが循環血液リンパ球から得られた（同上）。組換えＦａｂは、μ、γ及びκ鎖抗体レパートリーからクローニングされ、ファージディスプレイに挿入された（同上）。ＲＮＡは、ｃＤＮＡに変換され、重鎖及び軽鎖免疫グロブリン配列に対する特定のプライマーを使用してＦａｂｃＤＮＡライブラリを作製するために使用された（Ｍａｒｋｓｅｔａｌ．，１９９１，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２２２：５８１−９７）。ライブラリ構築は、Ａｎｄｒｉｓ−Ｗｉｄｈｏｐｆｅｔａｌ．（２０００，Ｉｎ：ＰＨＡＧＥＤＩＳＰＬＡＹＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹＭＡＮＵＡＬ，Ｂａｒｂａｓｅｔａｌ．（ｅｄｓ），１^ｓｔｅｄｉｔｉｏｎ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒ，ＮＹｐｐ．９．１ｔｏ９．２２）に従って行われた。最終Ｆａｂ断片は、制限エンドヌクレアーゼで消化され、バクテリオファージゲノムに挿入されて、ファージディスプレイライブラリが作製された。そのようなライブラリは、当該技術分野において知られているように、標準的ファージディスプレイ法によりスクリーニングされ得る（例えば、ＰａｓｑｕａｌｉｎｉａｎｄＲｕｏｓｌａｈｔｉ，１９９６，Ｎａｔｕｒｅ３８０：３６４−３６６；Ｐａｓｑｕａｌｉｎｉ，１９９９，ＴｈｅＱｕａｒｔ．Ｊ．Ｎｕｃｌ．Ｍｅｄ．４３：１５９−１６２を参照されたい）。

ファージディスプレイは、様々な形式で行うことができるが、それらの検討については、例えば、ＪｏｈｎｓｏｎａｎｄＣｈｉｓｗｅｌｌ，ＣｕｒｒｅｎｔＯｐｉｎｉｏｎｉｎＳｔｒｕｃｔｕｒａｌＢｉｏｌｏｇｙ３：５５６４−５７１（１９９３）を参照されたい。ヒト抗体はまた、ｉｎｖｉｔｒｏ活性化Ｂ細胞により生成されてもよい。参照によりその全体が本明細書に組み込まれる、米国特許第５，５６７，６１０号及び米国特許第５，２２９，２７５号を参照されたい。当業者には、これらの技術が例示的であり、ヒト抗体又は抗体断片を作製及びスクリーニングするための任意の既知の方法が使用され得ることが理解される。

別の代替例において、標準的免疫化プロトコルを使用して、本質的に任意の免疫原性標的に対する抗体を生成するために、ヒト抗体を生成するように遺伝子操作されたトランスジェニック動物を使用することができる。トランスジェニックマウスからヒト抗体を得るための方法は、Ｇｒｅｅｎｅｔａｌ．，ＮａｔｕｒｅＧｅｎｅｔ．７：１３（１９９４）、Ｌｏｎｂｅｒｇｅｔａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ３６８：８５６（１９９４）、及びＴａｙｌｏｒｅｔａｌ．，Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎ．６：５７９（１９９４）により開示されている。そのような系の限定されない例は、Ａｂｇｅｎｉｘ（Ｆｒｅｍｏｎｔ、ＣＡ）からのＸＥＮＯＭＯＵＳＥ（登録商標）（例えば、Ｇｒｅｅｎｅｔａｌ．，１９９９，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ２３１：１１−２３）である。ＸＥＮＯＭＯＵＳＥ（登録商標）及び同様の動物において、マウス抗体遺伝子は不活性化され、機能性ヒト抗体遺伝子により置き換えられており、一方マウス免疫系の残りは無傷のままである。

ＸＥＮＯＭＯＵＳＥ（登録商標）は、アクセサリー遺伝子及び調節配列に沿って、可変領域配列の大部分を含むヒトＩｇＨ及びＩｇκ遺伝子座の一部を含有する生殖細胞系列構成ＹＡＣ（酵母人工染色体）で形質転換された。ヒト可変領域レパートリーを使用して、既知の技術によりハイブリドーマに処理されていてもよい抗体生成Ｂ細胞を生成することができる。標的抗原により免疫化されたＸＥＮＯＭＯＵＳＥ（登録商標）は、正常な免疫反応によりヒト抗体を生成し、これは、上述の標準的技術により採取及び／又は生成され得る。ＸＥＮＯＭＯＵＳＥ（登録商標）の様々な株が利用可能であり、そのそれぞれは、異なるクラスの抗体を生成することができる。トランスジェニック動物により生成されたヒト抗体は、正常ヒト抗体の薬物動態特性を保持する一方で、治療可能性を有することが示されている（Ｇｒｅｅｎｅｔａｌ．，１９９９）。当業者には、請求される組成物及び方法がＸＥＮＯＭＯＵＳＥ（登録商標）系の使用に限定されず、ヒト抗体を生成するように遺伝子操作された任意のトランスジェニック動物を使用してもよいことが理解される。

抗体のクローニング及び生成
キメラ又はヒト化抗体の生成等の様々な技術は、抗体のクローニング及び構築の手順を含み得る。対象となる抗体の抗原結合Ｖκ（可変軽鎖）及びＶ_Ｈ（可変重鎖）配列は、ＲＴ−ＰＣＲ、５’−ＲＡＣＥ、及びｃＤＮＡライブラリスクリーニング等の様々な分子クローニング手順により得ることができる。マウス抗体を発現する細胞からの抗体のＶ遺伝子は、ＰＣＲ増幅によりクローニング及び配列決定され得る。それらの信頼性を確実とするために、クローニングされたＶ_Ｌ及びＶ_Ｈ遺伝子は、Ｏｒｌａｎｄｉら（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８６：３８３３（１９８９））により説明されているように、キメラＡｂとして細胞培養物中で発現され得る。Ｖ遺伝子配列に基づいて、ヒト化抗体は、次いでＬｅｕｎｇら（Ｍｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，３２：１４１３（１９９５））により説明されるように設計及び構築され得る。

ｃＤＮＡは、一般的な分子クローニング技術により、任意の既知のハイブリドーマ株又はマウス抗体を生成するトランスフェクトされた細胞株から調製され得る（Ｓａｍｂｒｏｏｋｅｔａｌ．，ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ，Ａｌａｂｏｒａｔｏｒｙｍａｎｕａｌ，２^ｎｄＥｄ（１９８９））。抗体のＶκ配列は、プライマーＶＫ１ＢＡＣＫ及びＶＫ１ＦＯＲ（Ｏｒｌａｎｄｉｅｔａｌ．，１９８９）、又はＬｅｕｎｇら（ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１５：２８６（１９９３））により説明される拡張プライマーセットを使用して増幅され得る。Ｖ_Ｈ配列は、プライマー対ＶＨ１ＢＡＣＫ／ＶＨ１ＦＯＲ（Ｏｒｌａｎｄｉｅｔａｌ．，１９８９）又はＬｅｕｎｇら（Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ，１３：４６９（１９９４））により説明されるマウスＩｇＧの定常領域にアニールするプライマーを使用して増幅され得る。ヒト化Ｖ遺伝子は、Ｌｅｕｎｇら（Ｍｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，３２：１４１３（１９９５））により説明されるような長鎖オリゴヌクレオチド鋳型合成及びＰＣＲ増幅の組み合わせにより構築され得る。

ＶκのＰＣＲ産物は、Ｉｇプロモーター、シグナルペプチド配列及び好都合な制限部位を含有するｐＢＲ３２７系段階化ベクターＶＫｐＢＲ等の段階化ベクターにサブクローニングされ得る。Ｖ_ＨのＰＣＲ産物は、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ系ＶＨｐＢＳ等の同様の段階化ベクターにサブクローニングされ得る。プロモーター及びシグナルペプチド配列と共にＶκ及びＶ_Ｈ配列を含有する発現カセットは、ＶＫｐＢＲ及びＶＨｐＢＳから切り出され、それぞれｐＫｈ及びｐＧ１ｇ等の適切な発現ベクターにライゲーションされ得る（Ｌｅｕｎｇｅｔａｌ．，Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ，１３：４６９（１９９４））。発現ベクターは、適切な細胞に共トランスフェクトされ得、上澄み液が、キメラ、ヒト化又はヒト抗体の生成について監視され得る。代替として、Ｖκ及びＶ_Ｈ発現カセットが切り出され、Ｇｉｌｌｉｅｓｅｔａｌ．（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ１２５：１９１（１９８９）、またＬｏｓｍａｎｅｔａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ，８０：２６６０（１９９７）にも示されている）により説明されるように、ｐｄＨＬ２等の単一発現ベクターにサブクローニングされ得る。

代替の実施形態において、発現ベクターは、無血清培地中でトランスフェクション、成長及び発現に対し事前に適応された宿主細胞にトランスフェクトされ得る。使用され得る例示的細胞株は、Ｓｐ／ＥＥＥ、Ｓｐ／ＥＳＦ及びＳｐ／ＥＳＦ−Ｘ細胞株を含む（例えば、米国特許第７，５３１，３２７号；米国特許第７，５３７，９３０号及び米国特許第７，６０８，４２５号を参照されたく；それらのそれぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる）。これらの例示的細胞株は、Ｓｐ２／０骨髄腫細胞株に基づき、突然変異Ｂｃｌ−ＥＥＥ遺伝でトランスフェクトされ、トランスフェクトされた遺伝子配列を増幅するためにメトトレキセートに曝露され、タンパク質発現のために無血清細胞株に対して事前に適応される。

抗体断片
特定のエピトープを認識する抗体断片は、既知の技術により生成され得る。抗体断片は、例えばＦ（ａｂ’）_２、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ）_２、Ｆａｂ、Ｆｖ、ｓｃＦｖ等の抗体の抗原結合部分である。Ｆ（ａｂ’）_２断片は、抗体分子のペプシン消化により生成され得、Ｆａｂ’断片は、Ｆ（ａｂ’）_２断片のジスルフィド架橋を還元することにより生成され得る。代替として、Ｆａｂ’発現ライブラリを構築して（Ｈｕｓｅｅｔａｌ．，１９８９，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４６：１２７４−１２８１）、所望の特異性を有するモノクローナルＦａｂ’断片の迅速及び容易な同定を可能とすることができる。Ｆ（ａｂ）_２断片は、抗体のパパイン消化により生成され得る。

単鎖Ｆｖ分子（ｓｃＦｖ）は、ＶＬドメイン及びＶＨドメインを含む。ＶＬ及びＶＨドメインは、結合して標的結合部位を形成する。これらの２つのドメインは、ペプチドリンカー（Ｌ）によりさらに共有結合する。ｓｃＦｖ分子を作製するため、及び好適なペプチドリンカーを消化させるための方法は、米国特許第４，７０４，６９２号；米国特許第４，９４６，７７８号；ＲａａｇａｎｄＷｈｉｔｌｏｗ，ＦＡＳＥＢ９：７３−８０（１９９５）及びＢｉｒｄａｎｄＷａｌｋｅｒ，ＴＩＢＴＥＣＨ，９：１３２−１３７（１９９１）に記載されている。

単一ドメイン抗体（ＤＡＢ又はＶＨＨ）を生成するための技術もまた、例えば参照により本明細書に組み込まれるＣｏｓｓｉｎｓら（２００６，ＰｒｏｔＥｘｐｒｅｓｓＰｕｒｉｆ５１：２５３−２５９）において開示されるように、当該技術分野において知られている。単一ドメイン抗体は、標準的な免疫化技術により、例えばラクダ、アルパカ又はラマから得ることができる。（例えば、Ｍｕｙｌｄｅｒｍａｎｓｅｔａｌ．，ＴＩＢＳ２６：２３０−２３５，２００１；Ｙａｕｅｔａｌ．，ＪＩｍｍｕｎｏｌＭｅｔｈｏｄｓ２８１：１６１−７５，２００３；Ｍａａｓｓｅｔａｌ．，ＪＩｍｍｕｎｏｌＭｅｔｈｏｄｓ３２４：１３−２５，２００７を参照されたい。）ＶＨＨは、強力な抗原結合能力を有することができ、従来のＶＨ−ＶＬ対にアクセス不可能な新規エピトープと相互作用し得る。（Ｍｕｙｌｄｅｒｍａｎｓｅｔａｌ．，２００１。）アルパカ血清ＩｇＧは、約５０％のラクダ科重鎖のみのＩｇＧ抗体（ＨＣＡｂ）を含有する（Ｍａａｓｓｅｔａｌ．，２００７）。アルパカは、ＴＮＦ−α等の既知の抗原で免疫化され得、標的抗原に結合して中性化するＶＨＨが単離され得る（Ｍａａｓｓｅｔａｌ．，２００７）。事実上全てのアルパカＶＨＨコード配列を増幅するＰＣＲプライマーが同定されており、当該技術分野において周知の標準的バイオパニング技術による抗体断片単離に使用され得る、アルパカＶＨＨファージディスプレイライブラリを構築するために使用され得る（Ｍａａｓｓｅｔａｌ．，２００７）。ある特定の実施形態において、抗膵臓がんＶＨＨ抗体断片が、請求される組成物及び方法において使用され得る。

抗体断片は、全長抗体のタンパク質分解的加水分解により、又は大腸菌若しくは断片のＤＮＡコードの別の宿主における発現により調製され得る。抗体断片は、従来の方法による全長抗体のペプシン又はパパイン消化により得ることができる。これらの方法は、例えば、Ｇｏｌｄｅｎｂｅｒｇ、米国特許第４，０３６，９４５号及び米国特許第４，３３１，６４７号、並びにそれらに含まれる参考文献により説明されている。また、Ｎｉｓｏｎｏｆｆｅｔａｌ．，ＡｒｃｈＢｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．８９：２３０（１９６０）；Ｐｏｒｔｅｒ，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．７３：１１９（１９５９）、Ｅｄｅｌｍａｎｅｔａｌ．，ｉｎＭＥＴＨＯＤＳＩＮＥＮＺＹＭＯＬＯＧＹＶＯＬ．１，ｐａｇｅ４２２（ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ１９６７）、並びにＣｏｌｉｇａｎの２．８．１〜２．８．１０ページ及び２．１０．〜２．１０．４ページを参照されたい。

抗体アロタイプ
治療抗体の免疫原性は、注入反応のリスクの増加、及び治療反応の期間の減少に関連する（Ｂａｅｒｔｅｔａｌ．，２００３，ＮＥｎｇｌＪＭｅｄ３４８：６０２−０８）。治療抗体が宿主における免疫反応を誘導する程度は、１つには、抗体のアロタイプにより決定され得る（Ｓｔｉｃｋｌｅｒｅｔａｌ．，２０１１，ＧｅｎｅｓａｎｄＩｍｍｕｎｉｔｙ１２：２１３−２１）。抗体アロタイプは、抗体の定常領域配列における特定の位置でのアミノ酸配列変異に関連する。重鎖γ型定常領域を含有するＩｇＧ抗体のアロタイプは、Ｇｍアロタイプと指定される（１９７６，ＪＩｍｍｕｎｏｌ１１７：１０５６−５９）。

一般的なＩｇＧ１ヒト抗体において、最も支配的なアロタイプはＧ１ｍ１である（Ｓｔｉｃｋｌｅｒｅｔａｌ．，２０１１，ＧｅｎｅｓａｎｄＩｍｍｕｎｉｔｙ１２：２１３−２１）。しかしながら、白人においてはＧ１ｍ３アロタイプもまた頻繁に存在する（Ｓｔｉｃｋｌｅｒｅｔａｌ．，２０１１）。Ｇ１ｍ１抗体は、Ｇ１ｍ３患者等の非Ｇ１ｍ１（ｎＧ１ｍ１）受容者に投与された場合、免疫反応を誘導する傾向があるアロタイプ配列を含有することが報告されている（Ｓｔｉｃｋｌｅｒｅｔａｌ．，２０１１）。非Ｇ１ｍ１アロタイプ抗体は、Ｇ１ｍ１患者に投与された場合、それほど免疫原性ではない（Ｓｔｉｃｋｌｅｒｅｔａｌ．，２０１１）．

ヒトＧ１ｍ１アロタイプは、重鎖ＩｇＧ１のＣＨ３配列におけるＫａｂａｔ位置３５６にアミノ酸であるアスパラギン酸を、またＫａｂａｔ位置３５８にロイシンを含む。ｎＧ１ｍ１アロタイプは、Ｋａｂａｔ位置３５６にグルタミン酸を、またＫａｂａｔ位置３５８にメチオニンを含む。Ｇ１ｍｌ及びｎＧ１ｍｌアロタイプは共に、Ｋａｂａｔ位置３５７にグルタミン酸残基を含み、アロタイプは時折、ＤＥＬ及びＥＥＭアロタイプと呼ばれる。Ｇ１ｍ１及びｎＧ１ｍ１アロタイプ抗体の重鎖定常領域配列の限定されない例を、例示的抗体リツキシマブ（配列番号８５）及びベルツズマブ（配列番号８６）に対して示す。

Ｊｅｆｆｅｒｉｓ及びＬｅｆｒａｎｃ（２００９，ｍＡｂｓ１：１−７）は、ＩｇＧアロタイプの配列変異特性及びその免疫原性に対する効果を検討した。彼らは、Ｇ１ｍ３アロタイプが、Ｇ１ｍ１７アロタイプのＫａｂａｔ２１４におけるリシン残基と比較して、Ｋａｂａｔ位置２１４におけるアルギニン残基により特徴付けられることを報告した。ｎＧ１ｍ１，２アロタイプは、Ｋａｂａｔ位置３５６におけるグルタミン酸、Ｋａｂａｔ位置３５８におけるメチオニン、及びＫａｂａｔ位置４３１におけるアラニンにより特徴付けられた。Ｇ１ｍ１，２アロタイプは、Ｋａｂａｔ位置３５６におけるアスパラギン酸、Ｋａｂａｔ位置３５８におけるロイシン、及びＫａｂａｔ位置４３１におけるグリシンにより特徴付けられた。重鎖定常領域配列変異に加えて、Ｊｅｆｆｅｒｉｓ及びＬｅｆｒａｎｃ（２００９）は、カッパ軽鎖定常領域におけるアロタイプ変異を報告したが、Ｋｍ１アロタイプはＫａｂａｔ位置１５３におけるバリン、及びＫａｂａｔ位置１９１におけるロイシンにより特徴付けられ、Ｋｍ１，２アロタイプは、Ｋａｂａｔ位置１５３におけるアラニン、及びＫａｂａｔ位置１９１におけるロイシンにより特徴付けられ、Ｋｍ３アロタイプは、Ｋａｂａｔ位置１５３におけるアラニン、及びＫａｂａｔ位置１９１におけるバリンにより特徴付けられた。

治療抗体に関して、ベルツズマブ及びリツキシマブは、それぞれ、広範な血液悪性腫瘍及び／又は自己免疫疾患の治療に有用なＣＤ２０に対するヒト化及びキメラＩｇＧ１抗体である。表１は、リツキシマブ対ベルツズマブのアロタイプ配列を比較している。表１に示されるように、リツキシマブ（Ｇ１ｍ１７，１）は、ＤＥＬアロタイプＩｇＧ１であり、ベルツズマブのアルギニンに対して、リツキシマブのリシンのＫａｂａｔ位置２１４（重鎖ＣＨ１）における追加的な配列変異を有する。ベルツズマブは、リツキシマブよりも対象において免疫原性が低いことが報告されており（例えば、Ｍｏｒｃｈｈａｕｓｅｒｅｔａｌ．，２００９，ＪＣｌｉｎＯｎｃｏｌ２７：３３４６−５３；Ｇｏｌｄｅｎｂｅｒｇｅｔａｌ．，２００９，Ｂｌｏｏｄ１１３：１０６２−７０；Ｒｏｂａｋ＆Ｒｏｂａｋ，２０１１，ＢｉｏＤｒｕｇｓ２５：１３−２５を参照されたい）、これはヒト化抗体とキメラ抗体との間の差に起因した効果である。しかしながら、ＥＥＭアロタイプとＤＥＬアロタイプとの間のアロタイプの差もまた、ベルツズマブのより低い免疫原性を説明し得る。

ｎＧ１ｍ１遺伝子型の個人における治療抗体の免疫原性を低減するためには、Ｋａｂａｔ２１４におけるアルギニンにより特徴付けられるＧ１ｍ３アロタイプ、並びに、Ｋａｂａｔ位置３５６におけるグルタミン酸、Ｋａｂａｔ位置３５８におけるメチオニン及びＫａｂａｔ位置４３１におけるアラニンにより特徴付けられるｎＧ１ｍ１，２ヌルアロタイプに対応するように抗体のアロタイプを選択することが望ましい。驚くべきことに、長期間にわたるＧ１ｍ３抗体の反復皮下投与は、大きな免疫反応をもたらさないことが判明した。代替の実施形態において、ヒトＩｇＧ４重鎖は、Ｇ１ｍ３アロタイプと共通して、Ｋａｂａｔ２１４におけるアルギニン、Ｋａｂａｔ３５６におけるグルタミン酸、Ｋａｂａｔ３５９におけるメチオニン及びＫａｂａｔ４３１におけるアラニンを有する。免疫原性は、それらの位置における残基に少なくとも部分的に関連すると思われるため、ヒトＩｇＧ４重鎖定常領域配列の治療抗体への使用もまた、好ましい実施形態である。Ｇ１ｍ３ＩｇＧ１抗体とＩｇＧ４抗体との組み合わせもまた、治療的投与に有用となり得る。

知られている抗体
標的抗原及び例示的抗体
好ましい実施形態において、抗体は、標的細胞に対して高レベルで発現する抗原を認識及び／又はそれに結合し、正常組織に対して、主に、又は排他的に疾患細胞上に発現する抗体が使用される。例えばがんの治療に有用な例示的抗体は、ＬＬ１（抗ＣＤ７４）、ＬＬ２又はＲＦＢ４（抗ＣＤ２２）、ベルツズマブ（ｈＡ２０、抗ＣＤ２０）、リツクスマブ（ｒｉｔｕｘｕｍａｂ）（抗ＣＤ２０）、オビヌツズマブ（ＧＡ１０１、抗ＣＤ２０）、ラムブロリズマブ（抗ＰＤ１）、ニボルマブ（抗ＰＤ１），ＭＫ−３４７５（抗ＰＤ１）、ＡＭＰ−２２４（抗ＰＤ１）、ピジリズマブ（抗ＰＤ１）、ＭＤＸ−１１０５（抗ＰＤ−Ｌ１）、ＭＥＤＩ４７３６（抗ＰＤ−Ｌ１）、ＭＰＤＬ３２８０Ａ（抗ＰＤ−Ｌ１）、ＢＭＳ−９３６５５９（抗ＰＤ−Ｌ１）、イピリムマブ（抗ＣＴＬＡ４）、トレビリズマブ（抗ＣＴＬ４Ａ）、ＲＳ７（抗上皮糖タンパク質−１（ＥＧＰ−１、ＴＲＯＰ−２としても知られる））、ＰＡＭ４又はＫＣ４（どちらも抗ムチン）、ＭＮ−１４（抗癌胎児性抗原（ＣＥＡ、ＣＤ６６ｅ又はＣＥＡＣＡＭ５としても知られる）、ＭＮ−１５又はＭＮ−３（抗ＣＥＡＣＡＭ６）、Ｍｕ−９（抗結腸特異的抗原−ｐ）、Ｉｍｍｕ３１（抗アルファ−フェトプロテイン）、Ｒ１（抗ＩＧＦ−１Ｒ）、Ａ１９（抗ＣＤ１９）、ＴＡＧ−７２（例えば、ＣＣ４９）、Ｔｎ、Ｊ５９１又はＨｕＪ５９１（抗ＰＳＭＡ（前立腺特異的膜抗原））、ＡＢ−ＰＧ１−ＸＧ１−０２６（抗ＰＳＭＡ二量体）、Ｄ２／Ｂ（抗ＰＳＭＡ）、Ｇ２５０（抗炭酸脱水酵素ＩＸＭＡｂ）、Ｌ２４３（抗ＨＬＡ−ＤＲ）アレムツズマブ（抗ＣＤ５２）、ベバシズマブ（抗ＶＥＧＦ）、セツキシマブ（抗ＥＧＦＲ）、ゲムツズマブ（抗ＣＤ３３）、イブリツモマブチウキセタン（抗ＣＤ２０）；パニツムマブ（抗ＥＧＦＲ）；トシツモマブ（抗ＣＤ２０）；ＰＡＭ４（クリバツズマブとしても知られる、抗ムチン）、ＢＷＡ−３（抗ヒストンＨ２Ａ／Ｈ４）、ＬＧ２−１（抗ヒストンＨ３）、ＭＲＡ１２（抗ヒストンＨ１）、ＰＲ１−１（抗ヒストンＨ２Ｂ）、ＬＧ１１−２（抗ヒストンＨ２Ｂ）、ＬＧ２−２（抗ヒストンＨ２Ｂ）、及びトラツズマブ（抗ＥｒｂＢ２）を含むが、これらに限定されない。そのような抗体は、当該技術分野において知られている（例えば、米国特許第５，６８６，０７２号；米国特許第５，８７４，５４０号；米国特許第６，１０７，０９０号；米国特許第６，１８３，７４４号；米国特許第６，３０６，３９３号；米国特許第６，６５３，１０４号；米国特許第６，７３０．３００号；米国特許第６，８９９，８６４号；米国特許第６，９２６，８９３号；米国特許第６，９６２，７０２号；米国特許第７，０７４，４０３号；米国特許第７，２３０，０８４号；米国特許第７，２３８，７８５号；米国特許第７，２３８，７８６号；米国特許第７，２５６，００４号；米国特許第７，２８２，５６７号；米国特許第７，３００，６５５号；米国特許第７，３１２，３１８号；米国特許第７，５８５，４９１号；米国特許第７，６１２，１８０号；米国特許第７，６４２，２３９号；及び米国特許出願公開第２００５０２７１６７１号；米国特許出願公開第２００６０１９３８６５号；米国特許出願公開第２００６０２１０４７５号；米国特許出願公開第２００７００８７００１；それぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる）。有用な特定の既知の抗体は、ｈＰＡＭ４（米国特許第７，２８２，５６７号）、ｈＡ２０（米国特許第７，２５１，１６４号）、ｈＡ１９（米国特許第７，１０９，３０４号）、ｈＩＭＭＵ−３１（米国特許第７，３００，６５５号）、ｈＬＬ１（米国特許第７，３１２，３１８号）、ｈＬＬ２（米国特許第７，０７４，４０３号）、ｈＭｕ−９（米国特許第７，３８７，７７３号）、ｈＬ２４３（米国特許第７，６１２，１８０号）、ｈＭＮ−１４（米国特許第６，６７６，９２４号）、ｈＭＮ−１５（米国特許第７，５４１，４４０号）、ｈＲ１（米国特許出願第１２／７７２，６４５号）、ｈＲＳ７（米国特許第７，２３８，７８５号）、ｈＭＮ−３（米国特許第７，５４１，４４０号）、ＡＢ−ＰＧ１−ＸＧ１−０２６（米国特許出願第１１／９８３，３７２号、ＡＴＣＣＰＴＡ−４４０５及びＰＴＡ−４４０６として寄託）並びにＤ２／Ｂ（ＷＯ２００９／１３０５７５）を含み、それぞれの列挙された特許又は特許出願の文章は、図面及び実施例の項に関して、参照により本明細書に組み込まれる。

説明された複合体を使用して標的化され得る他の有用な抗原は、炭酸脱水酵素ＩＸ、Ｂ７、ＣＣＣＬ１９、ＣＣＣＬ２１、ＣＳＡｐ、ＨＥＲ−２／ｎｅｕ、ＢｒＥ３、ＣＤ１、ＣＤ１ａ、ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ８、ＣＤ１１Ａ、ＣＤ１４、ＣＤ１５、ＣＤ１６、ＣＤ１８、ＣＤ１９、ＣＤ２０（ｅ．ｇ．、Ｃ２Ｂ８、ｈＡ２０、１Ｆ５ＭＡｂｓ）、ＣＤ２１、ＣＤ２２、ＣＤ２３、ＣＤ２５、ＣＤ２９、ＣＤ３０、ＣＤ３２ｂ、ＣＤ３３、ＣＤ３７、ＣＤ３８、ＣＤ４０、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ４４、ＣＤ４５、ＣＤ４６、ＣＤ５２、ＣＤ５４、ＣＤ５５、ＣＤ５９、ＣＤ６４、ＣＤ６７、ＣＤ７０、ＣＤ７４、ＣＤ７９ａ、ＣＤ８０、ＣＤ８３、ＣＤ９５、ＣＤ１２６、ＣＤ１３３、ＣＤ１３８、ＣＤ１４７、ＣＤ１５４、ＣＥＡＣＡＭ５、ＣＥＡＣＡＭ６、ＣＴＬＡ４、アルファ−フェトプロテイン（ＡＦＰ）、ＶＥＧＦ（例えば、ＡＶＡＳＴＩＮ（登録商標）、フィブロネクチンスプライス変異）、ＥＤ−Ｂフィブロネクチン（例えば、Ｌ１９）、ＥＧＰ−１（ＴＲＯＰ−２）、ＥＧＰ−２（例えば、１７−１Ａ）、ＥＧＦ受容体（ＥｒｂＢ１）（例えば、ＥＲＢＩＴＵＸ（登録商標））、ＥｒｂＢ２、ＥｒｂＢ３、Ｈ因子、ＦＨＬ−１、Ｆｌｔ−３、葉酸受容体、Ｇａ７３３、ＧＲＯ−β、ＨＭＧＢ−１、低酸素誘導因子（ＨＩＦ）、ＨＭ１．２４、ＨＥＲ−２／ｎｅｕ、インスリン様成長因子（ＩＬＧＦ）、ＩＦＮ−γ、ＩＦＮ−α、ＩＦＮ−β、ＩＦＮ−λ、ＩＬ−２Ｒ、ＩＬ−４Ｒ、ＩＬ−６Ｒ、ＩＬ−１３Ｒ、ＩＬ−１５Ｒ、ＩＬ−１７Ｒ、ＩＬ−１８Ｒ、ＩＬ−２、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１２、ＩＬ−１５、ＩＬ−１７、ＩＬ−１８、ＩＬ−２５、ＩＰ−１０、ＩＧＦ−１Ｒ、Ｉａ、ＨＭ１．２４、ガングリオシド、ＨＣＧ、Ｌ２４３が結合するＨＬＡ−ＤＲ抗原、ＣＤ６６抗原、すなわちＣＤ６６ａ−ｄ又はそれらの組み合わせ、ＭＡＧＥ、ｍＣＲＰ、ＭＣＰ−１、ＭＩＰ−１Ａ、ＭＩＰ−１Ｂ、マクロファージ遊走阻止因子（ＭＩＦ）、ＭＵＣ１、ＭＵＣ２、ＭＵＣ３、ＭＵＣ４、ＭＵＣ５ａｃ、胎盤成長因子（ＰｌＧＦ）、ＰＳＡ（前立腺特異的抗原）、ＰＳＭＡ、ＰＡＭ４抗原、ＰＤ１受容体、ＮＣＡ−９５、ＮＣＡ−９０、Ａ３、Ａ３３、Ｅｐ−ＣＡＭ、ＫＳ−１、Ｌｅ（ｙ）、メソテリン、Ｓ１００、テネイシン、ＴＡＣ、Ｔｎ抗原、Ｔｈｏｍａｓ−Ｆｒｉｅｄｅｎｒｅｉｃｈ抗原、腫瘍壊死抗原、腫瘍血管形成抗原、ＴＮＦ−α、ＴＲＡＩＬ受容体（Ｒ１及びＲ２）、ＴＲＯＰ−２、ＶＥＧＦＲ、ＲＡＮＴＥＳ、Ｔ１０１、及びがん幹細胞抗原、補体因子Ｃ３、Ｃ３ａ、Ｃ３ｂ、Ｃ５ａ、Ｃ５、並びにがん遺伝子産物を含む。

フローサイトメトリーにより示されるような、また免疫治療に好適な抗体を選択するための指針となり得る、造血悪性細胞に対する好適な抗原（クラスター指定、又はＣＤ）標的の総合的分析は、ＣｒａｉｇａｎｄＦｏｏｎ，ＢｌｏｏｄｐｒｅｐｕｂｌｉｓｈｅｄｏｎｌｉｎｅＪａｎｕａｒｙ１５，２００８；ＤＯＬ１０．１１８２／ｂｌｏｏｄ−２００７−１１−１２０５３５である。

ＣＤ６６抗原は、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）遺伝子ファミリーメンバー、ＢＣＧ、ＣＧＭ６、ＮＣＡ、ＣＧＭ１及びＣＥＡによりそれぞれコードされた、同様の構造を有する５つの異なる糖タンパク質ＣＤ６６ａ〜ｅからなる。これらのＣＤ６６抗原（例えば、ＣＥＡＣＡＭ６）は、顆粒球、消化管の正常上皮細胞及び様々な組織の腫瘍細胞において主に発現する。また、がんの好適な標的として含まれるのは、がん精巣抗原、例えばＮＹ−ＥＳＯ−１（Ｔｈｅｕｒｉｌｌａｔｅｔａｌ．，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ２００７；１２０（１１）：２４１１−７）だけでなく、骨髄性白血病（Ｋｏｚｌｏｖｅｔａｌ．，ＣａｎｃｅｒＧｅｎｅｔ．Ｃｙｔｏｇｅｎｅｔ．２００５；１６３（１）：６２−７）及びＢ細胞疾患におけるＣＤ７９ａ、並びに非ホジキンリンパ腫（Ｐｏｉｓｏｎｅｔａｌ．，Ｂｌｏｏｄ１１０（２）：６１６−６２３）のＣＤ７９ｂである。いくつかの上述の抗原が、２００２年１１月１５日に出願された米国仮特許出願第６０／４２６，３７９、名称「ＵｓｅｏｆＭｕｌｔｉ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ，Ｎｏｎ−ｃｏｖａｌｅｎｔＣｏｍｐｌｅｘｅｓｆｏｒＴａｒｇｅｔｅｄＤｅｌｉｖｅｒｙｏｆＴｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ」において開示されている。より治療抵抗性の前駆体悪性細胞集団とみなされるがん幹細胞（ＨｉｌｌａｎｄＰｅｒｒｉｓ，Ｊ．Ｎａｔｌ．ＣａｎｃｅｒＩｎｓｔ．２００７；９９：１４３５−４０）は、ある特定のがんの種類において標的化され得る抗原、例えば前立腺癌（Ｍａｉｔｌａｎｄｅｔａｌ．，ＥｒｎｓｔＳｃｈｅｒｉｎｇＦｏｕｎｄ．Ｓｙｍｐｏｓ．Ｐｒｏｃ．２００６；５：１５５−７９）、非小細胞肺がん（Ｄｏｎｎｅｎｂｅｒｇｅｔａｌ．，Ｊ．ＣｏｎｔｒｏｌＲｅｌｅａｓｅ２００７；１２２（３）：３８５−９１）、及び膠芽腫（Ｂｅｉｅｒｅｔａｌ．，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．２００７；６７（９）：４０１０−５）におけるＣＤ１３３、並びに結腸直腸がん（Ｄａｌｅｒｂａｅｒａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ２００７；１０４（２４）１０１５８−６３）、膵臓がん（Ｌｉｅｔａｌ．，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．２００７；６７（３）：１０３０−７）、及び頭頸部扁平上皮癌（Ｐｒｉｎｃｅｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ２００７；１０４（３）９７３−８）におけるＣＤ４４を有する。

抗がん抗体は、いくつかの場合において、ヒストンに結合することが示されている。Ｋａｔｏら（１９９１，ＨｕｍＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓＨｙｂｒｉｄｏｍａｓ２：９４−１０１）は、肺がん特異的ヒトモノクローナル抗体ＨＢ４Ｃ５がヒストンＨ２Ｂに結合することを報告した。Ｇａｒｚｅｌｌｉら（１９９４，ＩｍｍｕｎｏｌＬｅｔｔ３９：２７７−８２）は、Ｅｐｓｔｅｉｎ−Ｂａｒｒウイルス形質転換ヒトＢリンパ細胞が、ヒストンに対する自然抗体を産生することを観察した。ある特定の実施形態において、ヒストンに対する抗体は、主題の組み合わせにおいて有用となり得る。既知の抗ヒストン抗体は、ＢＷＡ−３（抗ヒストンＨ２Ａ／Ｈ４）、ＬＧ２−１（抗ヒストンＨ３）、ＭＲＡ１２（抗ヒストンＨ１）、ＰＲ１−１（抗ヒストンＨ２Ｂ）、ＬＧ１１−２（抗ヒストンＨ２Ｂ）、及びＬＧ２−２（抗ヒストンＨ２Ｂ）を含むが、これらに限定されない（例えば、Ｍｏｎｅｓｔｉｅｒｅｔａｌ．，１９９１，ＥｕｒＪＩｍｍｕｎｏｌ２１：１７２５−３１；Ｍｏｎｅｓｔｉｅｒｅｔａｌ．，１９９３，ＭｏｌｅｃＩｍｍｕｎｏｌ３０：１０６９−７５を参照されたい）。

多発性骨髄腫治療に関して、例えば、ＣＤ３８及びＣＤ１３８（Ｓｔｅｖｅｎｓｏｎ，ＭｏｌＭｅｄ２００６；１２（１１−１２）：３４５−３４６；Ｔａｓｓｏｎｅｅｔａｌ．，Ｂｌｏｏｄ２００４；１０４（１２）：３６８８−９６）、ＣＤ７４（Ｓｔｅｉｎｅｔａｌ．，同書）、ＣＳ１（Ｔａｉｅｔａｌ．，Ｂｌｏｏｄ２００８；１１２（４）：１３２９−３７）、及びＣＤ４０（Ｔａｉｅｔａｌ．，２００５；ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．６５（１３）：５８９８−５９０６）に対する好適な標的化抗体が説明されている。

マクロファージ遊走阻止因子（ＭＩＦ）は、自然及び適応免疫及びアポトーシスの重要な制御因子である。ＣＤ７４は、ＭＩＦの内因性受容体であることが報告されている（Ｌｅｎｇｅｔａｌ．，２００３，ＪＥｘｐＭｅｄ１９７：１４６７−７６）。ＭＩＦ媒介細胞内経路に対するアンタゴニスト抗ＣＤ７４抗体の治療効果は、広範な疾患状態、例えば膀胱、前立腺、乳房、肺、結腸のがん、及び慢性リンパ性白血病の治療に有用となり得る（例えば、Ｍｅｙｅｒ−Ｓｉｅｇｌｅｒｅｔａｌ．，２００４，ＢＭＣＣａｎｃｅｒ１２：３４；Ｓｈａｃｈａｒ＆Ｈａｒａｎ，２０１１，ＬｅｕｋＬｙｍｐｈｏｍａ５２：１４４６−５４）。ミラツズマブ（ｈＬＬ１）は、ＭＩＦ媒介疾患の治療のための治療用途の例示的な抗ＣＤ７４抗体である。

最も好ましい抗体／抗原対の例は、抗ＣＤ７４ＭＡｂ（不変鎖、クラスＩＩ特異的シャペロン、Ｉｉ）であるＬＬ１である（例えば、米国特許第６，６５３，１０４号；米国特許第７，３１２，３１８号を参照されたく；それぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる）。ＣＤ７４抗原は、Ｂ細胞リンパ腫（多発性骨髄腫を含む）及び白血病、ある特定のＴ細胞リンパ腫、黒色腫、結腸、肺、及び腎臓がん、膠芽腫、並びにある特定の他のがんに対して高度に発現する（Ｏｎｇｅｔａｌ．，Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ９８：２９６−３０２（１９９９））。がんにおけるＣＤ７４抗体の使用の検討は、参照により本明細書に組み込まれる、Ｓｔｅｉｎｅｔａｌ．，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ．２００７Ｓｅｐ１５；１３（１８Ｐｔ２）：５５５６ｓ−５５６３ｓに含まれている。抗ＣＤ７４抗体により好ましく治療される疾患は、非ホジキンリンパ腫、ホジキン病、黒色腫、肺、腎臓、結腸がん、多形性膠芽腫、組織球腫、骨髄性白血病、及び多発性骨髄腫を含むが、これらに限定されない。

別の好ましい実施形態において、病原体に対する抗体が既知であるため、病原体に対して治療の組み合わせを使用することができる。例えば、例として細菌、リケッチア、マイコプラズマ、原虫、真菌及びウイルス等の病原体、並びにそのような微生物に関連した抗原及び生成物により引き起こされる、ウイルス、細菌、真菌及び寄生虫感染を含む感染病巣により生成された、又はそれに関連したマーカーに特異的に結合する抗体及び抗体断片が、とりわけ、それぞれの実施例の項が参照により本明細書に組み込まれる、Ｈａｎｓｅｎｅｔａｌ．、米国特許第３，９２７，１９３号及びＧｏｌｄｅｎｂｅｒｇ、米国特許第４，３３１，６４７号、米国特許第４，３４８，３７６号、米国特許第４，３６１，５４４号、米国特許第４，４６８，４５７号、米国特許第４，４４４，７４４号、米国特許第４，８１８，７０９号及び米国特許第４，６２４，８４６号において、並びにＲｅｉｃｈｅｒｔ及びＤｅｗｉｔｚ（ＮａｔＲｅｖＤｒｕｇＤｉｓｃｏｖｅｒｙ２００６；５：１９１−１９５）において開示されている。感染性生物に対する抗体（抗毒素及び抗ウイルス抗体）並びに他の標的を列挙した検討は、参照により本明細書に組み込まれるＣａｓａｄｅｖａｌｌ，ＣｌｉｎＩｍｍｕｎｏｌ１９９９；９３（１）：５−１５に含まれている。黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓａｕｒｅａｕｓ）（カタログ番号０１１−９０−０５）、ストレプトコッカス・アガラクチア（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓａｇａｌａｃｔｉａｅ）（カタログ番号０１１−９０−０８）、ストレプトコッカス・ピオゲネス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｐｙｏｇｅｎｅｓ）（カタログ番号０１−９０−０７）、ヘリコバクター・ピロリ（Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒｐｙｌｏｒｉ）（カタログ番号０１−９３−９４）、ライム病ボレリア（Ｂｏｒｒｅｌｉａｂｕｒｇｄｏｒｆｅｒｉ）（カタログ番号０５−９７−９１）、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉ）（カタログ番号０１−９５−９１；０１−９５−９６）、レジオネラ種（Ｌｅｇｉｏｎｅｌｌａｓｐｐ．）（カタログ番号０１−９０−０３）、リステリア種（Ｌｉｓｔｅｒｉａｓｐｐ．）（カタログ番号０１−９０−９０）、コレラ菌（Ｖｉｂｒｉｏｃｈｏｌｅｒａ）（カタログ番号０１−９０−５０）、シゲラ種（Ｓｈｉｇｅｌｌａｓｐｐ．）（カタログ番号１６−９０−０１）、及びカンピロバクター種（Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒｓｐｐ．）（カタログ番号０１−９２−９３）を含む、広範なヒト病原体に対する抗体（例えばＫＰＬ，Ｉｎｃ．、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）が市販されている。

好ましい実施形態において、病原体は、その実施例の項が参照により本明細書に組み込まれる米国特許第６，４４０，４１６号において開示されるように、ＨＩＶウイルス、結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）、ストレプトコッカス・アガラクチア（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓａｇａｌａｃｔｉａｅ）、メチシリン耐性黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓａｕｒｅｕｓ）、レジオネラ・ニューモフィリア（Ｌｅｇｉｏｎｅｌｌａｐｎｅｕｍｏｐｈｉｌｉａ）、ストレプトコッカス・ピオゲネス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｐｙｏｇｅｎｅｓ）、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉ）、ナイセリア・ゴノレー（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ）、ナイセリア・メニンギティディス（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）、肺炎球菌（Ｐｎｅｕｍｏｃｏｃｃｕｓ）、クリプトコックス・ネオフォルマンス（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓｎｅｏｆｏｒｍａｎｓ）、ヒストプラスマ・カプスラーツム（Ｈｉｓｔｏｐｌａｓｍａｃａｐｓｕｌａｔｕｍ）、ヘモフィリスインフルエンザＢ（ＨｅｍｏｐｈｉｌｉｓｉｎｆｌｕｅｎｚａｅＢ）、梅毒トレポネーマ（Ｔｒｅｐｏｎｅｍａｐａｌｌｉｄｕｍ）、ライム病スピロヘータ、緑膿菌（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）、らい菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍｌｅｐｒａｅ）、ウシ流産菌（Ｂｒｕｃｅｌｌａａｂｏｒｔｕｓ）、狂犬病ウイルス、インフルエンザウイルス、サイトメガロウイルス、単純ヘルペスウイルスＩ、単純ヘルペスウイルスＩＩ、ヒト血清パルボ様ウイルス、呼吸器合胞体ウイルス、水痘帯状疱疹ウイルス、Ｂ型肝炎ウイルス、Ｃ型肝炎ウイルス麻疹ウイルス、アデノウイルス、ヒトＴ細胞白血病ウイルス、Ｅｐｓｔｅｉｎ−Ｂａｒｒウイルス、マウス白血病ウイルス、ムンプスウイルス、水疱性口内炎ウイルス、シンドビスウイルス、リンパ球性脈絡髄膜炎ウイルス、疣ウイルス、ブルータングウイルス、センダイウイルス、ネコ白血病ウイルス、レオウイルス、ポリオウイルス、シミアンウイルス４０、マウス乳がんウイルス、デングウイルス、風疹ウイルス、西ナイルウイルス、熱帯熱マラリア原虫（Ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍｆａｌｃｉｐａｒｕｍ）、三日熱マラリア原虫（Ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍｖｉｖａｘ）、トキソプラズマ原虫（Ｔｏｘｏｐｌａｓｍａｇｏｎｄｉｉ）、ランゲルトリパノソーマ（Ｔｒｙｐａｎｏｓｏｍａｒａｎｇｅｌｉ）、クルーズトリパノソーマ（Ｔｒｙｐａｎｏｓｏｍａｃｒｕｚｉ）、ローデシアトリパノソーマ（Ｔｒｙｐａｎｏｓｏｍａｒｈｏｄｅｓｉｅｎｓｅｉ）、ブルーストリパノソーマ（Ｔｒｙｐａｎｏｓｏｍａｂｒｕｃｅｉ）、マンソン住血吸虫（Ｓｃｈｉｓｔｏｓｏｍａｍａｎｓｏｎｉ）、日本住血吸虫（Ｓｃｈｉｓｔｏｓｏｍａｊａｐｏｎｉｃｕｍ）、ウシバベシア（Ｂａｂｅｓｉａｂｏｖｉｓ）、鶏盲腸コクシジウム（Ｅｌｍｅｒｉａｔｅｎｅｌｌａ）、回旋糸状虫（Ｏｎｃｈｏｃｅｒｃａｖｏｌｖｕｌｕｓ）、熱帯リーシュマニア（Ｌｅｉｓｈｍａｎｉａｔｒｏｐｉｃａ）、旋毛虫（Ｔｒｉｃｈｉｎｅｌｌａｓｐｉｒａｌｉｓ）、タイレリア・パルバ（Ｔｈｅｉｌｅｒｉａｐａｒｖａ）、胞状条虫（Ｔａｅｎｉａｈｙｄａｔｉｇｅｎａ）、ヒツジ条虫（Ｔａｅｎｉａｏｖｉｓ）、無鉤条虫（Ｔａｅｎｉａｓａｇｉｎａｔａ）、単包条虫（Ｅｃｈｉｎｏｃｏｃｃｕｓｇｒａｎｕｌｏｓｕｓ）、メソセストイドコルチ（Ｍｅｓｏｃｅｓｔｏｉｄｅｓｃｏｒｔｉ）、マイコプラズマ・アルスリチジス（Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａａｒｔｈｒｉｔｉｄｉｓ）、マイコプラズマ・ヒオルヒニス（Ｍ．ｈｙｏｒｈｉｎｉｓ）、マイコプラズマ・オラレ（Ｍ．ｏｒａｌｅ）、マイコプラズマ・アルギニニ（Ｍ．ａｒｇｉｎｉｎｉ）、アコレプラズマ・ライドラウィー（Ａｃｈｏｌｅｐｌａｓｍａｌａｉｄｌａｗｉｉ）、マイコプラズマ・サリバリウム（Ｍ．ｓａｌｉｖａｒｉｕｍ）並びに肺炎マイコプラズマ（Ｍ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）からなる群から選択される。

様々な実施形態において、請求される方法及び組成物は、当該技術分野において知られている様々な抗体のいずれかを使用し得る。有用な抗体は、いくつかの知られた供給元から商業的に得ることができる。例えば、様々な抗体分泌ハイブリドーマ株が、ＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ、Ｍａｎａｓｓａｓ、ＶＡ）から入手可能である。腫瘍関連抗原を含むがこれに限定されない様々な疾患標的に対する多数の抗体が、ＡＴＣＣに寄託されており、及び／又は可変領域配列を公開しており、請求される方法及び組成物における使用に利用可能である。例えば、米国特許第７，３１２，３１８号；米国特許第７，２８２，５６７号；米国特許第７，１５１，１６４号；米国特許第７，０７４，４０３号；米国特許第７，０６０，８０２号；米国特許第７，０５６，５０９号；米国特許第７，０４９，０６０号；米国特許第７，０４５，１３２号；米国特許第７，０４１，８０３号；米国特許第７，０４１，８０２号；米国特許第７，０４１，２９３号；米国特許第７，０３８，０１８号；米国特許第７，０３７，４９８号；米国特許第７，０１２，１３３号；米国特許第７，００１，５９８号；米国特許第６，９９８，４６８号；米国特許第６，９９４，９７６号；米国特許第６，９９４，８５２号；米国特許第６，９８９，２４１号；米国特許第６，９７４，８６３号；米国特許第６，９６５，０１８号；米国特許第６，９６４，８５４号；米国特許第６，９６２，９８１号；米国特許第６，９６２，８１３号；米国特許第６，９５６，１０７号；米国特許第６，９５１，９２４号；米国特許第６，９４９，２４４号；米国特許第６，９４６，１２９号；米国特許第６，９４３，０２０号；米国特許第６，９３９，５４７号；米国特許第６，９２１，６４５号；米国特許第６，９２１，６４５号；米国特許第６，９２１，５３３号；米国特許第６，９１９，４３３号；米国特許第６，９１９，０７８号；米国特許第６，９１６，４７５号；米国特許第６，９０５，６８１号；米国特許第６，８９９，８７９号；米国特許第６，８９３，６２５号；米国特許第６，８８７，４６８号；米国特許第６，８８７，４６６号；米国特許第６，８８４，５９４号；米国特許第６，８８１，４０５号；米国特許第６，８７８，８１２号；米国特許第６，８７５，５８０号；米国特許第６，８７２，５６８号；米国特許第６，８６７，００６号；米国特許第６，８６４，０６２号；米国特許第６，８６１，５１１号；米国特許第６，８６１，２２７号；米国特許第６，８６１，２２６号；米国特許第６，８３８，２８２号；米国特許第６，８３５，５４９号；米国特許第６，８３５，３７０号；米国特許第６，８２４，７８０号；米国特許第６，８２４，７７８号；米国特許第６，８１２，２０６号；米国特許第６，７９３，９２４号；米国特許第６，７８３，７５８号；米国特許第６，７７０，４５０号；米国特許第６，７６７，７１１号；米国特許第６，７６４，６８８号；米国特許第６，７６４，６８１号；米国特許第６，７６４，６７９号；米国特許第６，７４３，８９８号；米国特許第６，７３３，９８１号；米国特許第６，７３０，３０７号；米国特許第６，７２０，１５５号；米国特許第６，７１６，９６６号；米国特許第６，７０９，６５３号；米国特許第６，６９３，１７６号；米国特許第６，６９２，９０８号；米国特許第６，６８９，６０７号；米国特許第６，６８９，３６２号；米国特許第６，６８９，３５５号；米国特許第６，６８２，７３７号；米国特許第６，６８２，７３６号；米国特許第６，６８２，７３４号；米国特許第６，６７３，３４４号；米国特許第６，６５３，１０４号；米国特許第６，６５２，８５２号；米国特許第６，６３５，４８２号；米国特許第６，６３０，１４４号；米国特許第６，６１０，８３３号；米国特許第６，６１０，２９４号；米国特許第６，６０５，４４１号；米国特許第６，６０５，２７９号；米国特許第６，５９６，８５２号；米国特許第６，５９２，８６８号；米国特許第６，５７６，７４５号；米国特許第６，５７２；８５６号；米国特許第６，５６６，０７６号；米国特許第６，５６２，６１８号；米国特許第６，５４５，１３０号；米国特許第６，５４４，７４９号；米国特許第６，５３４，０５８号；米国特許第６，５２８，６２５号；米国特許第６，５２８，２６９号；米国特許第６，５２１，２２７号；米国特許第６，５１８，４０４号；米国特許第６，５１１，６６５号；米国特許第６，４９１，９１５号；米国特許第６，４８８，９３０号；米国特許第６，４８２，５９８号；米国特許第６，４８２，４０８号；米国特許第６，４７９，２４７号；米国特許第６，４６８，５３１号；米国特許第６，４６８，５２９号；米国特許第６，４６５，１７３号；米国特許第６，４６１，８２３号；米国特許第６，４５８，３５６号；米国特許第６，４５５，０４４号；米国特許第６，４５５，０４０号；米国特許第６，４５１，３１０号；米国特許第６，４４４，２０６号；米国特許第６，４４１，１４３号；米国特許第６，４３２，４０４号；米国特許第６，４３２，４０２号；米国特許第６，４１９，９２８号；米国特許第６，４１３，７２６号；米国特許第６，４０６，６９４号；米国特許第６，４０３，７７０号；米国特許第６，４０３，０９１号；米国特許第６，３９５，２７６号；米国特許第６，３９５，２７４号；米国特許第６，３８７，３５０号；米国特許第６，３８３，７５９号；米国特許第６，３８３，４８４号；米国特許第６，３７６，６５４号；米国特許第６，３７２，２１５号；米国特許第６，３５９，１２６号；米国特許第６，３５５，４８１号；米国特許第６，３５５，４４４号；米国特許第６，３５５，２４５号；米国特許第６，３５５，２４４号；米国特許第６，３４６，２４６号；米国特許第６，３４４，１９８号；米国特許第６，３４０，５７１号；米国特許第６，３４０，４５９号；米国特許第６，３３１，１７５号；米国特許第６，３０６，３９３号；米国特許第６，２５４，８６８号；米国特許第６，１８７，２８７号；米国特許第６，１８３，７４４号；米国特許第６，１２９，９１４号；米国特許第６，１２０，７６７号；米国特許第６，０９６，２８９号；米国特許第６，０７７，４９９号；米国特許第５，９２２，３０２号；米国特許第５，８７４，５４０号；米国特許第５，８１４，４４０号；米国特許第５，７９８，２２９号；米国特許第５，７８９，５５４号；米国特許第５，７７６，４５６号；米国特許第５，７３６，１１９号；米国特許第５，７１６，５９５号；米国特許第５，６７７，１３６号；米国特許第５，５８７，４５９号；米国特許第５，４４３，９５３、米国特許第５，５２５，３３８を参照されたく、これらのそれぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる。これらは単なる例であり、広範な他の抗体及びそれらのハイブリドーマが当該技術分野において知られている。当業者には、ＡＴＣＣ、ＮＣＢＩ及び／又はＵＳＰＴＯデータベースにおける選択された対象疾患関連標的に対する抗体の単純な検索により、ほぼあらゆる疾患関連抗原に対する抗体配列又は抗体分泌ハイブリドーマを得ることができることが理解される。クローニングされた抗体の抗原結合ドメインは、当該技術分野において周知の標準的技術を使用して、増幅され、切断され、発現ベクター内にライゲーションされ、適応宿主細胞内にトランスフェクトされ、タンパク質生成に使用され得る（例えば、米国特許第７，５３１，３２７号；米国特許第７，５３７，９３０号；米国特許第７，６０８，４２５号及び米国特許第７，７８５，８８０号を参照されたく、これらのそれぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる）。

他の実施例において、抗体複合物は、ＭＨＣクラスＩ、ＭＨＣクラスＩＩ又はアクセサリー分子、例えばＣＤ４０、ＣＤ５４、ＣＤ８０又はＣＤ８６に結合する。また、抗体複合物は、白血球活性化サイトカイン、又はサイトカインメディエーター、例えばＮＦ−κＢに結合し得る。

ある特定の実施形態において、２つの異なる標的のうちの１つは、がん細胞受容体又はがん関連抗原、特にＢ細胞系統抗原（ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ２１、ＣＤ２２、ＣＤ２３等）、ＶＥＧＦ、ＶＥＧＦＲ、ＥＧＦＲ、癌胎児性抗原（ＣＥＡ）、胎盤成長因子（ＰｌＧＦ）、テネイシン、ＨＥＲ−２／ｎｅｕ、ＥＧＰ−１、ＥＧＰ−２、ＣＤ２５、ＣＤ３０、ＣＤ３３、ＣＤ３８、ＣＤ４０、ＣＤ４５、ＣＤ５２、ＣＤ７４、ＣＤ８０、ＣＤ１３８、ＮＣＡ６６、ＣＥＡＣＡＭ１、ＣＥＡＣＡＭ６（癌胎児性抗原関連細胞接着分子６）、ＭＵＣ１、ＭＵＣ２、ＭＵＣ３、ＭＵＣ４、ＭＵＣ１６、ＩＬ−６、α−フェトプロテイン（ＡＦＰ）、Ａ３、ＣＡ１２５、結腸特異的抗原−ｐ（ＣＳＡｐ）、葉酸受容体、ＨＬＡ−ＤＲ、ヒト絨毛性ゴナドトロピン（ＨＣＧ）、Ｉａ、ＥＬ−２、インスリン様成長因子（ＩＧＦ）及びＩＧＦ受容体、ＫＳ−１、Ｌｅ（ｙ）、ＭＡＧＥ、壊死抗原、ＰＡＭ−４、前立腺酸性フォスファターゼ（ＰＡＰ）、Ｐｒ１、前立腺特異的抗原（ＰＳＡ）、前立腺特異的膜抗原（ＰＳＭＡ）、Ｓ１００、Ｔ１０１、ＴＡＣ、ＴＡＧ７２、ＴＲＡＩＬ受容体、並びに炭酸脱水酵素ＩＸからなる群から選択されるものであってもよい。

使用され得る他の抗体は、細菌、ウイルス、マイコプラズマ又は他の病原体等の感染性疾患物質に対する抗体を含む。そのような感染性物質に対する多くの抗体が当該技術分野において知られており、任意のそのような既知の抗体が、請求される方法及び組成物において使用され得る。例えば、ヒト免疫不全ウイルスＩ（ＨＩＶ−１）のｇｐ１２０糖タンパク質抗原に対する抗体が知られており、そのような抗体のいくつかは、ヒトにおける免疫防御的役割を有し得る。例えば、Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．８６：８０５５−８０５８，１９９０を参照されたい。既知の抗ＨＩＶ抗体は、Ｊｏｈａｎｓｓｏｎら（ＡＩＤＳ，２００６Ｏｃｔ３；２０（１５）：１９１１−５）により説明されるような抗エンベロープ抗体、並びにＰｏｌｙｍｕｎ（Ｖｉｅｎｎａ、Ａｕｓｔｒｉａ）により説明及び販売され、また全て参照により本明細書に組み込まれる米国特許第５，８３１，０３４号、米国特許第５，９１１，９８９号及びＶｃｅｌａｒｅｔａｌ．，ＡＩＤＳ２００７；２１（１６）：２１６１−２１７０及びＪｏｏｓｅｔａｌ．，Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．ＡｇｅｎｔｓＣｈｅｍｏｔｈｅｒ．２００６；５０（５）：１７７３−９にも記載されている抗ＨＩＶ抗体を含む。

マラリア原虫に対する抗体は、スポロゾイト、メロゾイト、シゾント及び生殖母細胞段階に対して指向性であってもよい。スポロゾイトに対するモノクローナル抗体が生成されており（スポロゾイト周囲抗原）、ｉｎｖｉｔｒｏで、及びげっ歯類においてスポロゾイトを中和することが示されている（Ｎ．Ｙｏｓｈｉｄａｅｔａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ２０７：７１−７３，１９８０）。いくつかのグループは、トキソプラズマ症に関与する寄生原虫であるトキソプラズマ原虫（Ｔ．ｇｏｎｄｉｉ）に対する抗体を開発した（Ｋａｓｐｅｒｅｔａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１２９：１６９４−１６９９，１９８２；同上，３０：２４０７−２４１２，１９８３）。幼住血吸虫表面抗原に対する抗体が開発されており、ｉｎｖｉｖｏ又はｉｎｖｉｔｒｏで幼住血吸虫に対し作用することが判明している（Ｓｉｍｐｓｏｎｅｔａｌ．，Ｐａｒａｓｉｔｏｌｏｇｙ，８３：１６３−１７７，１９８１；Ｓｍｉｔｈｅｔａｌ．，Ｐａｒａｓｉｔｏｌｏｇｙ，８４：８３−９１，１９８２：Ｇｒｙｚｃｈｅｔａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１２９：２７３９−２７４３，１９８２；Ｚｏｄｄａｅｔａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１２９：２３２６−２３２８，１９８２；Ｄｉｓｓｏｕｓｅｔａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１２９：２２３２−２２３４，１９８２）。

クルーズトリパノソーマ（Ｔｒｙｐａｎｏｓｏｍａｃｒｕｚｉ）は、シャーガス病の原因物質であり、吸血性昆虫サシガメにより伝染する。Ｉｎｖｉｔｒｏで寄生虫の１つの形態から別の形態への（上鞭毛型から錐鞭毛期への）分化を特異的に阻害する抗体が生成されており、これは細胞表面糖タンパク質と反応するが、この抗原は、哺乳動物（血流）形態の寄生虫には存在しない（Ｓｈｅｒｅｔａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３００：６３９−６４０，１９８２）。

抗菌核病菌抗体（米国特許第７，９１０，７０２号）；抗グルクロノキシロマンナン抗体（ＺｈｏｎｇａｎｄＰｒｉｏｆｓｋｉ，１９９８，ＣｌｉｎＤｉａｇＬａｂＩｍｍｕｎｏｌ５：５８−６４）；抗カンジダ抗体（ＭａｔｔｈｅｗｓａｎｄＢｕｒｎｉｅ，２００１，ＣｕｒｒＯｐｉｎＩｎｖｅｓｔｉｇＤｒｕｇｓ２：４７２−７６）；及び抗スフィンゴ糖脂質抗体（Ｔｏｌｅｄｏｅｔａｌ．，２０１０，ＢＭＣＭｉｃｒｏｂｉｏｌ１０：４７）等の抗真菌抗体が、当該技術分野において知られている。

ヒトにおける感染症の大多数に関与する微生物（細菌、ウイルス、原虫、真菌、他の寄生虫）のほとんどに対して好適な抗体が開発されており、多くが以前にｉｎｖｉｔｒｏ診断目的で使用されている。従来の方法により生成され得るこれらの抗体、及びより新しい抗体は、本発明における使用に好適である。

免疫抱合体
ある特定の実施形態において、抗体又はその断片は、１種以上の治療又は診断薬剤に複合化されてもよい。治療薬剤は、同じである必要はなく、異なっていてもよく、例えば薬物及び放射性同位体であってもよい。例えば、^１３１Ｉは、抗体又は融合タンパク質のチロシンに組み込まれてもよく、また薬物がリシン残基のイプシロンアミノ基に結合してもよい。治療及び診断薬剤はまた、例えば、還元されたＳＨ基及び／又は炭水化物側鎖に結合してもよい。治療又は診断薬剤の抗体又は融合タンパク質との共有結合的又は非共有結合的複合体を作製するための多くの方法が、当該技術分野において知られており、任意のそのような知られた方法が使用され得る。

治療又は診断薬剤は、ジスルフィド結合形成により、還元された抗体成分のヒンジ領域に結合し得る。代替として、そのような薬剤は、Ｎ−スクシニル３−（２−ピリジルジチオ）プロパノエート（ＳＰＤＰ）等のヘテロ二機能性架橋剤を使用して結合し得る。Ｙｕｅｔａｌ．，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ５６：２４４（１９９４）。そのような複合化のための一般的技術は、当該技術分野において周知である。例えば、Ｗｏｎｇ，ＣＨＥＭＩＳＴＲＹＯＦＰＲＯＴＥＩＮＣＯＮＪＵＧＡＴＩＯＮＡＮＤＣＲＯＳＳ−ＬＩＮＫＩＮＧ（ＣＲＣＰｒｅｓｓ１９９１）；Ｕｐｅｓｌａｃｉｓｅｔａｌ．，“ＭｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓｂｙＣｈｅｍｉｃａｌＭｅｔｈｏｄｓ，”ｉｎＭＯＮＯＣＬＯＮＡＬＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ：ＰＲＩＮＣＩＰＬＥＳＡＮＤＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ，Ｂｉｒｃｈｅｔａｌ．（ｅｄｓ．），ｐａｇｅｓ１８７−２３０（Ｗｉｌｅｙ−Ｌｉｓｓ，Ｉｎｃ．１９９５）；Ｐｒｉｃｅ，“ＰｒｏｄｕｃｔｉｏｎａｎｄＣｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎｏｆＳｙｎｔｈｅｔｉｃＰｅｐｔｉｄｅ−ＤｅｒｉｖｅｄＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，”ｉｎＭＯＮＯＣＬＯＮＡＬＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ：ＰＲＯＤＵＣＴＩＯＮ，ＥＮＧＩＮＥＥＲＩＮＧＡＮＤＣＬＩＮＩＣＡＬＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮ，Ｒｉｔｔｅｒｅｔａｌ．（ｅｄｓ．），ｐａｇｅｓ６０−８４（ＣａｍｂｒｉｄｇｅＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙＰｒｅｓｓ１９９５）を参照されたい。代替として、治療又は診断薬剤は、抗体のＦｃ領域における炭水化物部分を介して複合化し得る。炭水化物基は、チオール基に結合した同じ薬剤の投入量を増加させるために使用されてもよく、又は、炭水化物部分は、異なる治療又は診断薬剤を結合させるために使用されてもよい。

抗体炭水化物部分を介してペプチドを抗体成分に複合化するための方法は、当業者に周知である。例えば、参照によりそれらの全体が本明細書に組み込まれる、Ｓｈｉｈｅｔａｌ．，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ４１：８３２（１９８８）；Ｓｈｉｈｅｔａｌ．，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ４６：１１０１（１９９０）；及びＳｈｉｈらの米国特許第５，０５７，３１３号を参照されたい。一般的方法は、酸化された炭水化物部分を有する抗体成分を、少なくとも１つの遊離アミン基を有する担体ポリマーと反応させることを含む。この反応は、最初のＳｃｈｉｆｆ塩基（イミン）結合をもたらし、これは、最終複合体を形成する２級アミンへの還元により安定化され得る。

免疫抱合体の抗体成分として使用される抗体が抗体断片である場合、Ｆｃ領域は存在しなくてもよい。しかしながら、炭水化物部分を、全長抗体又は抗体断片の軽鎖可変領域に導入することが可能である。例えば、参照によりそれらの全体が本明細書に組み込まれる、Ｌｅｕｎｇｅｔａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５４：５９１９（１９９５）；Ｈａｎｓｅｎｅｔａｌ．、米国特許第５，４４３，９５３号（１９９５）、Ｌｅｕｎｇｅｔａｌ．、米国特許第６，２５４，８６８号を参照されたい。治療又は診断薬剤を結合させるために、操作された炭水化物部分が使用される。

いくつかの実施形態において、キレート剤が、抗体、抗体断片又は融合タンパク質に結合してもよく、治療又は診断薬剤、例えば放射性核種をキレート化するために使用されてもよい。例示的なキレート剤は、ＤＴＰＡ（例えばＭｘ−ＤＴＰＡ）、ＤＯＴＡ、ＴＥＴＡ、ＮＥＴＡ又はＮＯＴＡを含むが、これらに限定されない。金属又は他のリガンドをタンパク質に結合させるための複合化の方法及びキレート剤の使用は、当該技術分野において周知である（例えば、米国特許第７，５６３，４３３号を参照されたく、その実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる）。

ある特定の実施形態において、イオンを結合させるための複数のキレート基が結合し得る長いテールを有する試薬との反応により、放射性金属又は常磁性イオンがタンパク質又はペプチドに結合してもよい。そのようなテールは、ポリマー、例えばポリリシン、ポリサッカリド、又はキレート基が結合し得るペンダント基を有する他の誘導体化若しくは誘導可能な鎖、例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）、ポルフィリン、ポリアミン、クラウンエーテル、ビス−チオセミカルバゾン、ポリオキシム、及びこの目的に有用であることが知られている同様の基であってもよい。

キレートは、例えば、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる米国特許第４，８２４，６５９号において開示されるように、抗体又はペプチドに直接連結してもよい。特に有用な金属−キレートの組み合わせは、放射性画像化法のための６０〜４，０００ｋｅＶの一般的なエネルギー範囲内の診断用同位体、例えば^１２５Ｉ、^１３１Ｉ、^１２３Ｉ、^１２４Ｉ、^６２Ｃｕ、^６４Ｃｕ、^１８Ｆ、^１１１Ｉｎ、^６７Ｇａ、^６８Ｇａ、^９９ｍＴｃ、^９４ｍＴｃ、^１１Ｃ、^１３Ｎ、^１５Ｏ、^７６Ｂｒと共に使用される、２−ベンジル−ＤＴＰＡ並びにそのモノメチル及びシクロヘキシル類似体を含む。マンガン、鉄及びガドリニウム等の非放射性金属と錯化した場合、同じキレートがＭＲＩに有用である。ＮＯＴＡ、ＤＯＴＡ、及びＴＥＴＡ等の大環状キレートは、様々な金属及び放射性金属と共に、最も具体的にはそれぞれガリウム、イットリウム及び銅の放射性核種と共に使用される。そのような金属−キレート錯体は、対象となる金属に対し環サイズを調整することにより非常に安定とすることができる。ＲＡＩＴのための^２２３Ｒａ等の核種を安定に結合させるのに興味深い大環状ポリエーテル等の他の環型キレートが包含される。

より最近では、例えばＦ−１８と金属又は他の原子、例えばアルミニウムとの反応による、ＰＥＴスキャニング技術において有用な^１８Ｆ−標識化の方法が開示されている。^１８Ｆ−Ａｌ複合体は、抗体に直接結合する、又は事前標的化方法において標的化可能なコンストラクトを標識化するために使用されるＤＯＴＡ、ＮＯＴＡ又はＮＥＴＡ等のキレート基と錯化され得る。そのようなＦ−１８標識化技術は、米国特許第７，５６３，４３３号において開示されており、その実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる。

別の例示的な免疫抱合体は、Ｊｏｈａｎｎｓｏｎｅｔａｌ．（２００６，ＡＩＤＳ２０：１９１１−１５）において開示されたが、ドキソルビシン複合化Ｐ４／Ｄ１０（抗ｇｐ１２０）抗体は、ＨＩＶに感染した細胞の治療に極めて有効であることが判明した。

カンプトテシン複合体
ある特定の好ましい実施形態において、免疫抱合体は、ＳＮ−３８等のカンプトテシン薬を含んでもよい。カンプトテシン（ＣＰＴ）及びその誘導体は、強力な抗腫瘍薬剤のクラスである。イリノテカン（ＣＰＴ−１１とも呼ばれる）及びトポテカンは、承認されたがん治療薬であるＣＰＴ類似体である（ＩｙｅｒａｎｄＲａｔａｉｎ，ＣａｎｃｅｒＣｈｅｍｏｔｈｅｒ．Ｐｈａｍａｃｏｌ．４２：Ｓ３１−Ｓ４３（１９９８））。ＣＰＴは、トポイソメラーゼＩ−ＤＮＡ複合物を安定化することによりトポイソメラーゼＩ酵素を阻害することによって作用する（Ｌｉｕ，ｅｔａｌ．ｉｎＴｈｅＣａｍｐｔｏｔｈｅｃｉｎｓ：ＵｎｆｏｌｄｉｎｇＴｈｅｉｒＡｎｔｉｃａｎｃｅｒＰｏｔｅｎｔｉａｌ，ＬｉｅｈｒＪ．Ｇ．，Ｇｉｏｖａｎｅｌｌａ，Ｂ．Ｃ．ａｎｄＶｅｒｓｃｈｒａｅｇｅｎ（ｅｄｓ），ＮＹＡｃａｄＳｃｉ．，ＮＹ９２２：１−１０（２０００））。

免疫抱合体の好ましい至適投与量は、好ましくは週１回、週２回又は１週間おきに投与される、３ｍｇ／ｋｇから２０ｍｇ／ｋｇの間の用量を含み得る。最適な投薬スケジュールは、２週連続の治療に続く１週間、２週間、３週間若しくは４週間の休息、又は１週間交代の治療及び休息、又は１週間の治療に続く２週間、３週間若しくは４週間の休息、又は３週間の治療に続く１週間、２週間、３週間若しくは４週間の休息、又は４週間の治療に続く１週間、２週間、３週間若しくは４週間の休息、又は５週間の治療に続く１週間、２週間、３週間、４週間若しくは５週間の休息、又は２週間に１回、３週間に１回若しくは１ヶ月に１回の投与の治療サイクルを含み得る。治療は、任意の数のサイクル、好ましくは少なくとも２、少なくとも４、少なくとも６、少なくとも８、少なくとも１０、少なくとも１２、少なくとも１４、又は少なくとも１６サイクルだけ延長されてもよい。用量は、２４ｍｇ／ｋｇまでであってもよい。有用な例示的用量は、１ｍｇ／ｋｇ、２ｍｇ／ｋｇ、３ｍｇ／ｋｇ、４ｍｇ／ｋｇ、５ｍｇ／ｋｇ、６ｍｇ／ｋｇ、７ｍｇ／ｋｇ、８ｍｇ／ｋｇ、９ｍｇ／ｋｇ、１０ｍｇ／ｋｇ、１１ｍｇ／ｋｇ、１２ｍｇ／ｋｇ、１３ｍｇ／ｋｇ、１４ｍｇ／ｋｇ、１５ｍｇ／ｋｇ、１６ｍｇ／ｋｇ、１７ｍｇ／ｋｇ、１８ｍｇ／ｋｇ、１９ｍｇ／ｋｇ、２０ｍｇ／ｋｇ、２２ｍｇ／ｋｇ及び２４ｍｇ／ｋｇを含み得る。好ましい用量は、４、６、８、９、１０、１２、１４、１６又は１８ｍｇ／ｋｇである。当業者には、年齢、全体的な健康、特定の器官機能又は重量、及び特定の器官系（例えば骨髄）に対する以前の治療の効果等の様々な因子が、免疫抱合体の最適な用量の選択において考慮され得ること、並びに、用量及び／又は投与頻度が、治療の間に増加又は減少され得ることが理解される。投薬は、必要に応じて反復され、わずか４〜８回の投薬後に腫瘍収縮の痕跡が観察されてもよい。本明細書において開示される最適化された用量及び投与スケジュールは、ヒト対象における予想外の著しい効力及び低減された毒性を示し、これは動物モデル試験から予測され得なかった。驚くべきことに、著しい効力によって、ＳＮ−３８がｉｎｖｉｖｏで得られる親化合物ＣＰＴ−１１を含む１種以上の標準的抗がん治療に対して抵抗性であることが以前に判明した腫瘍の治療が可能となる。

例示的な好ましい実施形態は、薬物誘導体及び一般式１の抗体の複合体に関し、
ＭＡｂ−［Ｌ２］−［Ｌ１］−［ＡＡ］_ｍ−［Ａ’］−薬物（１）
式中、ＭＡｂは、疾患標的化抗体であり；Ｌ２は、抗体結合部分とアセチレン（又はアジド）基の１つ以上とを含む架橋剤の成分であり；Ｌ１は、Ｌ２におけるアセチレン（又はアジド）部分に相補的なアジド（又はアセチレン）を一端に有し、カルボン酸又はヒドロキシル基等の反応基を他端に有する明確なＰＥＧを含み；ＡＡは、Ｌ−アミノ酸であり；ｍは、０、１、２、３、又は４の値を有する整数であり；Ａ’は、エタノールアミン、４−ヒドロキシベンジルアルコール、４−アミノベンジルアルコール、又は置換若しくは非置換エチレンジアミンの群から選択される追加的なスペーサである。「ＡＡ」のＬアミノ酸は、アラニン、アルギニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン、グルタミン酸、グリシン、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リシン、メチオニン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、トレオニン、トリプトファン、チロシン、及びバリンから選択される。Ａ’基がヒドロキシルを含有する場合、カーボネート又はカルバメートの形態でそれぞれ薬物のヒドロキシル基又はアミノ基に連結される。

式１の好ましい実施形態において、Ａ’は、Ｌ−アミノ酸から得られる置換エタノールアミンであり、アミノ酸のカルボン酸基は、ヒドロキシメチル部分により置き換えられている。Ａ’は、以下のＬ−アミノ酸：アラニン、アルギニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン、グルタミン酸、グリシン、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リシン、メチオニン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、トレオニン、トリプトファン、チロシン、及びバリンのいずれか１つから得ることができる。

式１の好ましい実施形態の複合体の例において、ｍは０であり、Ａ’はＬ−バリノールであり、薬物はＳＮ−３８により例示される。得られる構造は、式２に示される。

式１の好ましい実施形態の複合体の別の例において、ｍは１であり、誘導体化Ｌ−リシンにより表され、Ａ’はＬ−バリノールであり、薬物はＳＮ−３８により例示される。構造は、式３に示される。

この実施形態において、まず、リシン等のアミノ酸のカルボン酸とバリノールのアミノ基との間に、リシンアミノ基の直交保護基を使用してアミド結合が形成される。リシンの側鎖上の保護基は無傷に保ちながらリシンのＮ末端上の保護基が除去され、Ｎ末端は、他端にアジド（又はアセチレン）を有する明確なＰＥＧ上のカルボキシル基にカップリングされる。次いで、バリノールのヒドロキシル基は、１０−ヒドロキシ保護ＳＮ−３８の２０−クロロホルメート誘導体に結合し、この中間体は、抗体結合部分、及びクリック付加環化化学に関与する相補的アセチレン（又はアジド）基を保持するＬ２成分にカップリングされる。最後に、リシン側鎖及びＳＮ−３８の両方における保護基の除去により、式２に示されるこの例の生成物が得られる。

別の好ましい実施形態において、一般式２のＡ’は、Ａ−ＯＨであり、Ａ−ＯＨは、４−アミノベンジルアルコール又はベンジル位置においてＣ_１〜Ｃ_１０アルキル基で置換された置換４−アミノベンジルアルコール等の折り畳み可能な部分であり、後者は、そのアミノ基を介して、Ｌ−アミノ酸又は４つまでのＬ−アミノ酸部分を含むポリペプチドに結合し；Ｎ末端は、抗体結合基で終端する架橋剤に結合する。

好ましい実施形態の例を以下に示すが、一般式（１）のＡ’のＡ−ＯＨ実施形態は、置換４−アミノベンジルアルコールから得られ、「ＡＡ」は、一般式（１）においてｍ＝１である単一のＬ−アミノ酸を含み、薬物は、ＳＮ−３８で例示される。構造は以下に示される（式２、ＭＡｂ−ＣＬＸ−ＳＮ−３８と呼ばれる）。ＡＡの単一のアミノ酸は、以下のＬ−アミノ酸：アラニン、アルギニン、アスパラギン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン、グルタミン酸、グリシン、ヒスチジン、イソロイシン、ロイシン、リシン、メチオニン、フェニルアラニン、プロリン、セリン、トレオニン、トリプトファン、チロシン、及びバリンのいずれか１つから選択される。４−アミノベンジルアルコール部分（Ａ’のＡ−ＯＨ実施形態）上の置換基Ｒは、水素、又はＣ１〜Ｃ１０アルキル基から選択されるアルキル基である。

単一のアミノ酸ＡＡがＬ−リシンであり、Ｒ＝Ｈであり、薬物がＳＮ−３８で例示される（式５；ＭＡｂ−ＣＬ２Ａ−ＳＮ−３８と呼ばれる）式４のＭＡｂ−ＣＬＸ−ＳＮ−３８の一実施形態。ＣＬ２Ａ−ＳＮ−３８を調製する方法、並びにその抗体複合体を作製及び使用するための方法は、当該技術分野において知られている（例えば、米国特許第７，９９９，０８３号及び米国特許第８，０８０，２５０号を参照されたく、それぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる）。

Ｐｒｏ−２−ピロリノドキソルビシン複合体
化合物２−ピロリノドキソルビシンは、１９９６年、Ｓｃｈａｌｌｙのグループにより初めて説明され、彼らは後に、それを臨床前調査のためのいくつかの受容体標的化ペプチドの複合化に使用した（Ｎａｇｙｅｔａｌ．，１９９６，ＰｒｏｃＮａｔｌＡａｄＳｃｉＵＳＡ９３：７２６９−７３；Ｎａｇｙｅｔａｌ．，１９９６，ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ９６：２４６４−２９）。これは、ダウノサミン窒素が５員エナミンに組み込まれたドキソルビシンの誘導体であり、そのため極めて強力なアルキル化剤であり、ドキソルビシンの５００〜１０００倍の細胞毒性を有する。その薬物の極めて高い毒性により、安全性のためにアイソレーターにおいて特別な取り扱いが必要である。この薬物のプロドラッグ形態は、Ｎ−（４，４−ジアセトキシブチル）ドキソルビシンであり、これはｉｎｖｉｖｏで２−ピロリノドキソルビシンに変換される。Ｐｒｏ−２−ピロリノドキソルビシン（Ｐｒｏ−２−Ｐ−Ｄｏｘ）は、本明細書において開示されるように調製され、ＡＤＣ治療における使用のために抗体又は抗体断片に複合化され得る。

以下のスキームは、Ｄｏｘ、２−ＰＤｏｘ、Ｐｒｏ−２−Ｐ−Ｄｏｘ（Ｐ２ＰＤｏｘ）、及び活性化Ｐｒｏ−２−Ｐ−Ｄｏｘの構造を示す。ＩｇＧへのカップリングのために、Ｐｒｏ−２−Ｐ−Ｄｏｘは、ＳＭＣＣ−ヒドラジドで活性化されてもよく、これは、酸に不安定なヒドラゾン及びマレイミド基を導入する手順であり、後者は、穏やかに還元された抗体のチオールへの複合化のためのものである。

現在臨床的に試験されているＡＤＣのほとんどは、チューブリン作用性の極めて毒性のメイタンシノイド及びオーリスタチンを組み込んでいるが、これは細胞周期段階特異的である。ちなみに、トラツズマブ−ＤＭ１を除き、これらのＡＤＣは、固形がんにおいて臨床的に比較的狭い治療指数を示すようである。２−ＰＤｏｘ等のＤＮＡアルキル化剤は、細胞周期段階非特異的であり、改善された治療指数を提供するはずである。膵臓がん及び胃がんの２つの進行性異種移植片モデルにおける予備的試験（図示せず）では、ｈＲＳ７−６複合体が低い安全な用量（例えば、２．２５ｍｇ／ｋｇのタンパク質用量、又は０．０６４ｍｇ／ｋｇの薬物用量）で非常に活性であり、完全退縮をもたらすことが示された。

シアノ水素化ホウ素ナトリウムを用いた４，４−ジアセトキシブチルアルデヒドによるドキソルビシンの還元的アルキル化により、Ｐ２ＰＤｏｘが得られる（以下のスキーム）。市販の４−ベンジルオキシブチルアルデヒドのジアセトキシル化に続く水素化分解及び酸化により、アルデヒドがもたらされ、これが還元的にドキソルビシンにカップリングされてＰ２ＰＤｏｘが得られた。後者は、ＳＭＣＣ−ヒドラジドで活性化された。

複合体調製物を穏やかに混合してＰＢＳ中のＩｇＧとＴＣＥＰとの鎖間ジスルフィドを還元し、続いて１０倍過剰の活性化Ｐ２ＰＤｏｘにカップリングさせた。複合体は、２５ｍＭヒスチジン、ｐＨ７中で平衡化されたＳＥＰＨＡＤＥＸ（登録商標）上の遠心分離されたＳＥＣ上で精製され、続いて疎水性カラム上を通過させた。生成物をトレハロース及びＴｗｅｅｎ８０と配合し、凍結乾燥させた。６〜７薬物／ＩｇＧの典型的な置換を有する複合化生成物は、サイズ排除ＨＰＬＣにより単一ピークとして溶出し、逆相ＨＰＬＣにより、典型的に１％未満の非複合化遊離薬剤を含有していた。

当業者には、腫瘍及び／又は感染性疾患のＡＤＣ治療における使用のために、Ｐ２ＰＤｏｘが、本明細書において議論された免疫賦活剤と組み合わせて、任意の既知の抗体又はその断片に複合化されてもよいことが理解される。

二重特異性抗体
様々な実施形態において、主題の併用療法は、白血球再指向ｂｓＡｂ等の１種以上の二重特異性抗体（ｂｓＡｂ）を使用し得る。以下の項は、ｂｓＡｂがＤＯＣＫ−ＡＮＤ−ＬＯＣＫ（商標）（ＤＮＬ（商標））コンストラクトとして作製される好ましい実施形態を議論しているが、他の多くの種類のｂｓＡｂが当該技術分野において知られており、請求される併用療法の範囲内で使用され得る。本明細書で使用される場合、二重特異性抗体は、２つの異なる抗原、又は同じ抗原上の２つの異なるエピトープに対する結合部位を含有する抗体である。単一の抗原上の単一のエピトープにのみ結合し得る抗体は、抗体分子上の抗原結合部位の数に関わらず、単一特異性である。

背景技術の項で議論されたように、二重特異性抗体構築の初期の試みは、化学的架橋又はハイブリッドハイブリドーマ若しくはクアドローマを使用して、２つの異なる抗体の２つの半分を互いに接合した（例えば、Ｓｔａｅｒｚｅｔａｌ．，１９８５，Ｎａｔｕｒｅ３１４：６２８−３１；ＭｉｌｓｔｅｉｎａｎｄＣｕｅｌｌｏ，Ｎａｔｕｒｅ１９８３；３０５：５３７−５４０；Ｋａｒｐｏｖｓｋｙｅｔａｌ．，１９８４，ＪＥｘｐＭｅｄ１６０：１６８６−７０１）。この技術は、ｂｓＡｂの作製に役立つが、抗原結合部位の異なる組み合わせを含有する混合集団の生成、タンパク質発現における困難、対象となるｂｓＡｂを精製する必要性、低い収率、精製にかかる経費等の様々な生成上の問題が、そのような複合物の使用を困難とした。

より最近のアプローチは、不要な副生成物を除去するための大規模な精製を必要とせずに単一ｂｓＡｂの均一生成物を生成することができる、遺伝子操作されたコンストラクトを使用している。そのようなコンストラクトは、タンデムｓｃＦｖ、ジアボディ、タンデムジアボディ、二重可変ドメイン抗体、及びＣｈ１／Ｃｋドメイン又はＤＮＬ（商標）等のモチーフを用いたヘテロ二量体化を含んでいた（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，２００９，ＣｕｒｒＯｐｉｎＤｒｕｇＤｉｓｃｏｖＤｅｖｅｌ１２：２７６−８３；Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，ｍＡｂｓ１：５３９−４７）。

トリオマブは、ラット／ラット又はマウス／マウスクアドローマにおいて典型的に見られるランダム対合と比較して、組換え抗体を優先的に生成するためにマウスＩｇＧ２ａ及びラットＩｇＧ２ｂ抗体の組み合わせを使用するクアドローマアプローチのバリエーションである（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，ｍＡｂｓ１：５３９−４７）。この技術により形成された抗ＣＤ３×抗ＥｐＣＡＭｂｓＡｂ（カツマキソマブ）は、マクロファージ及びＮＫ細胞を効率的に動員し、Ｔ細胞を活性化することができた（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，ｍＡｂｓ１：５３９−４７）。上で議論したように、カツマキソマブは、欧州において、ＥｐＣＡＭ陽性癌を有する患者における悪性腹水の治療に認可されている（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，ｍＡｂｓ１：５３９−４７）。驚くべきことに、組換えｂｓＡｂは、おそらくは腹水に対する腹腔内投与経路に少なくとも一部起因して、ヒトにおいて中程度の抗マウス及び抗ラット反応のみを誘導することが報告された（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，ｍＡｂｓ１：５３９−４７）。エルツマキソマブは、別のトリオマブ標的化ＨＥＲ２であり、これは転移乳がんに有用となり得る。Ｂｉ２０は、ＣＤ２０を標的化する別のトリオマブである。ｉｎｖｉｔｒｏにおいて、Ｂｉ２０は、ＣＬＬ患者からのＢ細胞の効率的な溶解を示した（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，ｍＡｂｓ１：５３９−４７）。

ＢＩＴＥ（登録商標）は、短ペプチドリンカーにより連結されたタンデムｓｃＦｖｓを指す（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，ｍＡｂｓ１：５３９−４７）。ブリナツモマブは、非常に低い濃度での非ホジキンリンパ腫及びＡＬＬ等の血液がんにおける効力が報告されている抗ＣＤ１９×抗ＣＤ３ＢＩＴＥ（登録商標）である（Ｎａｇｏｒｓｅｎｅｔａｌ．，２００９，Ｌｅｕｋｅｍｉａ＆Ｌｙｍｐｈｏｍａ５０：８８６−９１；Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，ｍＡｂｓ１：５３９−４７；Ｔｏｐｐｅｔａｌ．，２０１２，Ｂｌｏｏｄ１２０：５１８５−８７；Ｂａｒｇｏｕｅｔａｌ．，２００８，Ｓｃｉｅｎｃｅ３２１：９７４−７７）。ＥｐＣＡＭに対する特異性を有する別のＢＩＴＥ（登録商標）は、胃腸、卵巣、結腸直腸及び肺がんにおいて使用されている（Ａｍａｎｎｅｔａｌ．，２００９，ＪＩｍｍｕｎｏｔｈｅｒ３２：４５２−６４；Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，ｍＡｂｓ１：５３９−４７）。ＣＥＡＣＡＭ５に標的化された別のＢＩＴＥ（登録商標）（ＭＥＤＩ−５６５）は、黒色腫、結腸直腸、肺、膵臓、胃、卵巣、子宮、及び乳がんにおける使用が提案されている（Ｓａｎｄｅｒｓｅｔａｌ．，１９９４，ＪＰａｔｈｏｌ１７２：３４３−８）。ＢＩＴＥ（登録商標）は、ピコモル又はさらにはフェムトモル濃度で抗腫瘍活性を示すことが報告されている（Ｃｈａｍｅｓ＆Ｂａｔｙ，ｍＡｂｓ１：５３９−４７）。

２つの異なる既存の抗体から得られる２つの重鎖及び２つの軽鎖のアセンブリを含む、ｂｓＡｂ形成の別の方法は、ヘテロ二量体形成を促進し、ホモ二量体形成を防止するノブから穴への（ｋｎｏｂｓ−ｉｎｔｏ−ｈｏｌｅｓ）アプローチに基づいている（Ｓｃｈａｅｆｅｒｅｔａｌ．，２０１１，ＰｒｏｃＮａｔｌ．ＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ１０８：１１１８７−９２）。「ＣｒｏｓｓＭａｂ」技術は、さらに、二重特異性抗体の一方の半分のＦａｂ内の重鎖及び軽鎖ドメインを交換し、軽鎖−重鎖誤対合が生じ得ないように２つの腕を異なるものとすることを含む（Ｓｃｈａｅｆｅｒｅｔａｌ．，２０１１）。ノブから穴への（ｋｎｏｂｓ−ｉｎｔｏ−ｈｏｌｅｓ）アプローチは、他の重鎖のＣＨ３ドメイン内の適切に設計された空洞に適合する嵩のある側鎖を有するアミノ酸を、１つの重鎖のＣＨ３ドメインに導入する。アプローチの組み合わせは、重鎖対重鎖及び重鎖対軽鎖相互作用の両方のミスマッチを防止し、主に単一の生成物をもたらす。アンジオポイエチン−２（Ａｎｇ−２）及びＶＥＧＦ−Ａに対して生成された最初のＣｒｏｓｓＭａｂは、親ｍＡｂに匹敵する結合特性を示し、強力な抗血管形成及び抗腫瘍活性有していた（Ｓｃｈａｅｆｅｒｅｔａｌ．，２０１１，ＰｒｏｃＮａｔｌ．ＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ１０８：１１１８７−９２；Ｋｉｅｎａｓｔｅｔａｌ．，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ，Ｏｃｔ．２５，２０１３，Ｅｐｕｂａｈｅａｄｏｆｐｒｉｎｔ）。

上で議論されたようなＤＡＲＴ（商標）技術に加えて、ｂｓＡｂ生成の他のアプローチは、四価ＩｇＧ−ｓｃＦｖ融合（Ｄｏｎｇｅｔａｌ．，２０１１，ＭＡｂｓ３：２７３−８８）；二重作用性Ｆａｂ（ＤＡＦ）抗体（Ｂｏｓｔｒｏｍｅｔａｌ．，２００９，Ｓｃｉｅｎｃｅ３２３：１６１０−１４）；Ｉｇｇ様二重可変ドメイン抗体（ＤＶＤ−Ｉｇ）（Ｗｕｅｔａｌ．，２００７，ＮａｔＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ２５：１２９０−９７）；及びＩｇＧ４分子間の動的交換の使用（ｖａｎｄｅｒＮｅｕｔＫｏｌｆｓｃｈｏｔｅｎｅｔａｌ．，２００７，Ｓｃｉｅｎｃｅ３１７：１５５４−５７）を含んでいた。以下で議論されるＤＮＬ技術は、白血球再指向ｂｓＡｂの形成に好ましいが、当業者には、請求される方法及び組成物において他の種類のｂｓＡｂが使用されてもよいことが理解される。

ＤＯＣＫ−ＡＮＤ−ＬＯＣＫ（商標）（ＤＮＬ（商標））
好ましい実施形態において、単独の、又はサイトカイン等の１種以上のエフェクターに錯化された二重特異性抗体は、ＤＯＣＫ−ＡＮＤ−ＬＯＣＫ（商標）（ＤＮＬ（商標））複合物として形成される（例えば、米国特許第７，５２１，０５６号；米国特許第７，５２７，７８７号；米国特許第７，５３４，８６６号；米国特許第７，５５０，１４３号；米国特許第７，６６６，４００号；米国特許第７，９０１，６８０号；米国特許第７，９０６，１１８号；米国特許第７，９８１，３９８号；米国特許第８，００３，１１１を参照されたく、これらのそれぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる）。一般に、この技術は、ｃＡＭＰ−依存性タンパク質キナーゼ（ＰＫＡ）の調節（Ｒ）サブユニットの二量体化及びドッキングドメイン（ＤＤＤ）配列と、様々なＡＫＡＰタンパク質のいずれかから得られるアンカードメイン（ＡＤ）配列との間に生じる特異的及び高親和性結合相互作用を利用する（Ｂａｉｌｌｉｅｅｔａｌ．，ＦＥＢＳＬｅｔｔｅｒｓ．２００５；５７９：３２６４。ＷｏｎｇａｎｄＳｃｏｔｔ，Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｍｏｌ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．２００４；５：９５９）。ＤＤＤ及びＡＤペプチドは、任意のタンパク質、ペプチド又は他の分子に結合し得る。ＤＤＤ配列は、自然に二量体化してＡＤ配列に結合するため、この技術は、ＤＤＤ又はＡＤ配列に結合し得る任意の選択された分子間の複合物の形成を可能とする。

標準的ＤＮＬ複合物は、１つのＡＤ連結分子に結合した２つのＤＤＤ連結分子との三量体を含むが、複合物構造の変動によって二量体、三量体、四量体、五量体、六量体及び他の多量体の形成が可能となる。いくつかの実施形態において、ＤＮＬ（商標）複合物は、同じ抗原決定因子又は２つ以上の異なる抗原に結合する、２つ以上の抗体、抗体断片又は融合タンパク質を含んでもよい。ＤＮＬ（商標）複合物はまた、１種以上の他のエフェクター、例えばタンパク質、ペプチド、免疫賦活剤、サイトカイン、インターロイキン、インターフェロン、結合タンパク質、ペプチドリガンド、担体タンパク質、毒素、リボヌクレアーゼ、例えばオンコナーゼ、阻害オリゴヌクレオチド、例えばｓｉＲＮＡ、抗原若しくは異種抗原、ポリマー、例えばＰＥＧ、酵素、治療薬剤、ホルモン、細胞毒性薬剤、抗血管形成薬剤、プロアポトーシス薬剤又は任意の他の分子若しくは凝集体を含んでもよい。

Ｒサブユニットに対する第２のメッセンジャーｃＡＭＰの結合により誘導される、最も研究されたシグナル伝達経路の１つにおいて中心的役割を担うＰＫＡは、１９６８年に初めてウサギ骨格筋から単離された（Ｗａｌｓｈｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１９６８；２４３：３７６３）。ホロ酵素の構造は、Ｒサブユニットにより不活性形態で保持される２つの触媒サブユニットからなる（Ｔａｙｌｏｒ，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１９８９；２６４：８４４３）。ＰＫＡのアイソザイムは、２種類のＲサブユニット（ＲＩ及びＲＩＩ）を有することが判明しており、それぞれの種類がα及びβアイソフォームを有する（Ｓｃｏｔｔ，Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｔｈｅｒ．１９９１；５０：１２３）。したがって、ＰＫＡ調節サブユニットの４つのアイソフォームは、ＲＩα、ＲＩβ、ＲＩＩα及びＲＩＩβであり、それらのそれぞれが、ＤＤＤ部分アミノ酸配列を含む。Ｒサブユニットは、安定な二量体としてのみ単離されており、二量体化ドメインは、ＲＩＩαの最初の４４アミノ末端残基からなることが示されている（Ｎｅｗｌｏｎｅｔａｌ．，Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．１９９９；６：２２２）。以下で議論されるように、他の調節サブユニットのアミノ酸配列の同様の部分が、二量体化及びドッキングに関与し、それぞれ調節サブユニットのＮ末端の近くに位置する。Ｒサブユニットに対するｃＡＭＰの結合は、広範なセリン／トレオニンキナーゼ活性のための活性触媒サブユニットの放出をもたらし、これは、ＡＫＡＰとのドッキングを介したＰＫＡの区画化により、選択された基質に配向する（Ｓｃｏｔｔｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１９９０；２６５；２１５６１）。

最初のＡＫＡＰである微小管結合タンパク質−２は、１９８４年に特性決定されているため（Ｌｏｈｍａｎｎｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．ＳｃｉＵＳＡ１９８４；８１：６７２３）、原形質膜、アクチン細胞骨格、核、ミトコンドリア、及び小胞体を含む細胞内の部位に局在化する５０を超えるＡＫＡＰが、酵母からヒトまでの範囲の種において多様な構造と共に同定されている（ＷｏｎｇａｎｄＳｃｏｔｔ，Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｍｏｌ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．２００４；５：９５９）。ＰＫＡのＡＫＡＰのＡＤは、１４〜１８残基の両親媒性螺旋である（Ｃａｒｒｅｔａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１９９１；２６６：１４１８８）。ＡＤのアミノ酸配列は、個々のＡＫＡＰ間で様々であり、ＲＩＩ二量体に対して報告されている結合親和性は、２〜９０ｎＭの範囲である（Ａｌｔｏｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ２００３；１００：４４４５）。ＡＫＡＰは、二量体Ｒサブユニットにのみ結合する。ヒトＲＩＩαにおいて、ＡＤは、２３アミノ末端残基（ＣｏｌｌｅｄｇｅａｎｄＳｃｏｔｔ，ＴｒｅｎｄｓＣｅｌｌＢｉｏｌ．１９９９；６：２１６）により形成される疎水性表面に結合する。したがって、ヒトＲＩＩαの二量体化ドメイン及びＡＫＡＰ結合ドメインは共に、同じＮ末端４４アミノ酸配列内に位置し（Ｎｅｗｌｏｎｅｔａｌ．，Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．１９９９；６：２２２；Ｎｅｗｌｏｎｅｔａｌ．，ＥＭＢＯＪ．２００１；２０：１６５１）、これは本明細書においてＤＤＤと呼ばれる。

我々は、ヒトＰＫＡ調節サブユニットのＤＤＤ及びＡＫＡＰのＡＤを、以後Ａ及びＢと称する任意の２つの実体を、非共有結合複合物にドッキングするためのリンカーモジュールの優れた対として利用するためのプラットフォーム技術を開発したが、これは、ジスルフィド結合の形成を促進するために戦略的位置でＤＤＤ及びＡＤの両方にシステイン残基を導入することにより、ＤＮＬ（商標）複合物にさらにロックされ得る。このアプローチの一般的方法論は、以下の通りである。実体Ａは、ＤＤＤ配列をＡの前駆体に連結させ、以後ａと称する第１の成分をもたらすことにより構築される。ＤＤＤ配列は二量体の自然形成をもたらすため、Ａはこのようにａ_２で構成される。実体Ｂは、ＡＤ配列をＢの前駆体に連結させ、以後ｂと称する第２の成分をもたらすことにより構築される。ａ_２に含有されるＤＤＤの二量体モチーフは、ｂに含有されるＡＤ配列への結合のためのドッキング部位を形成し、したがってａ_２及びｂの容易な結合を促進して、ａ_２ｂで構成される二元的三量体複合物を形成する。この結合イベントは、ジスルフィド架橋により２つのエンティティを共有結合的に固定するその後の反応により安定化され、これは、最初の結合相互作用がＤＤＤ及びＡＤの両方に配置された反応性チオール基を接近させ（Ｃｈｍｕｒａｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ２００１；９８：８４８０）、部位特異的にライゲーションするはずであるため、効果的な局所濃度の原理に基づいて非常に効率的に生じる。リンカー、調節モジュール及び前駆体の様々な組み合わせを使用して、異なる化学量論の広範なＤＮＬコンストラクトが生成及び使用され得る（例えば、米国特許第７，５５０，１４３号；米国特許第７，５２１，０５６号；米国特許第７，５３４，８６６号；米国特許第７，５２７，７８７号、及び米国特許第７，６６６，４００号を参照されたい）。

２つの前駆体の官能基から離してＤＤＤ及びＡＤを結合させることにより、そのような部位特異的ライゲーションはまた、２つの前駆体の元の活性を保存すると予測される。このアプローチは、本質的にモジュール式であり、潜在的に、ペプチド、タンパク質、抗体、抗体断片、及び広範な活性を有する他のエフェクター部分を含む広範な物質を、部位特異的及び共有結合的に連結するように適用され得る。以下の実施例に記載されるＡＤ及びＤＤＤ複合化エフェクターを構築する融合タンパク質法を使用して、事実上任意のタンパク質又はペプチドをＤＮＬ（商標）コンストラクトに組み込むことができる。しかしながら、この技術は限定的ではなく、他の複合化の方法が使用されてもよい。

対象となる融合タンパク質をコードする合成二本鎖核酸を生成するための、核酸合成、ハイブリダイゼーション及び／又は増幅を含む、融合タンパク質を作製するための様々な方法が知られている。そのような二本鎖核酸は、標準的分子生物学的技術により、融合タンパク質生成のための発現ベクターに挿入され得る（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋｅｔａｌ．，ＭＯＬＥＣＵＬＡＲＣＬＯＮＩＮＧ，ＡＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹＭＡＮＵＡＬ，２^ｎｄＥｄ，１９８９を参照されたい）。そのような好ましい実施形態において、ＡＤ及び／又はＤＤＤ部分は、エフェクタータンパク質又はペプチドのＮ末端又はＣ末端に結合し得る。しかしながら、当業者には、エフェクター部分に対するＡＤ又はＤＤＤ部分の結合部位が、その生理学的活性に関与するエフェクター部分及びエフェクター部分の一部の化学的性質に依存して変動し得ることが理解される。様々なエフェクター部分の部位特異的結合は、二価架橋試薬の使用及び／又は他の化学的複合化技術等の当該技術分野において知られている技術を使用して行うことができる。

Ｄｏｃｋ−ａｎｄ−Ｌｏｃｋ（商標）（ＤＮＬ（商標））技術は、種々の形式で様々な複合物を生成するために使用されている（Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２０１２，ＢｉｏｃｏｎｊｕｇＣｈｅｍ２３：３０９−２３）。ベルツズマブ（抗ＣＤ２０）及びエプラツズマブ（抗ＣＤ２２）に基づく二重特異性六価抗体（ｂｓＨｅｘＡｂ）は、二量体化及びドッキングドメイン（ＤＤＤ）に融合された安定化された（Ｆａｂ）_２を、各重鎖のＣ末端に結合したアンカードメイン（ＡＤ）を含有するＩｇＧ（Ｃ_Ｈ３−ＡＤ２−ＩｇＧ）と組み合わせることにより構築された（Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２００９，Ｂｌｏｏｄ１１３，６１６１−７１）。それらの親ｍＡｂの混合物と比較して、以後「Ｆｃ−ｂｓＨｅｘＡｂ」と称するこれらのＦｃ系ｂｓＨｅｘＡｂは、独特のシグナル伝達イベントを誘導し（Ｇｕｐｔａｅｔａｌ．，２０１０，Ｂｌｏｏｄ１１６：３２５８−６７）、ｉｎｖｉｔｒｏで強力な細胞毒性を示した。しかしながら、Ｆｃ−ｂｓＨｅｘＡｂは、親ｍＡｂの約２倍速くマウスの循環から除去された（Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２００９，Ｂｌｏｏｄ１１３，６１６１−７１）。Ｆｃ−ｂｓＨｅｘＡｂはｅｘｖｉｖｏで極めて安定であるが、ｉｎｖｉｖｏでは、例えば細胞内プロセシングによりある程度の解離が生じ得る。さらに、Ｆｃ−ｂｓＨｅｘＡｂは、ＣＤＣ活性を有さない。

Ｆｃ系免疫サイトカインはまた、Ｃ_Ｈ３−ＡＤ２−ＩｇＧＦｃのＣ末端に融合したインターフェロン−アルファ２ｂ（ＩＦＮα２ｂ）の２つ又は４つの分子を含むＤＮＬ（商標）複合物としてアセンブルされている（Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２００９，Ｂｌｏｏｄ１１４：３８６４−７１；Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２０１０，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ７０：７６００−０９；Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２０１１，Ｂｌｏｏｄ１１８：１８７７−８４）。Ｆｃ−ＩｇＧ−ＩＦＮαは、組換えＩＦＮαの比活性度に近い高い比活性度を維持し、ｉｎｖｉｔｒｏ及びｉｎｖｉｖｏで非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）異種移植片に対して著しく強力であった。マウスにおけるＦｃ−ＩｇＧ−ＩＦＮαのＴ_１／２は、ＰＥＧ化ＩＦＮαよりも長かったが、親ｍＡｂの半分の長さであった。Ｆｃ−ｂｓＨｅｘＡｂと同様に、Ｆｃ−ＩｇＧ−ＩＦＮαは、ｉｎｖｉｖｏで経時的に解離し、ＣＤＣの消失を示したが、ＡＤＣＣは向上した。

ＡＤ及びＤＤＤ部分における構造−機能関係
異なる種類のＤＮＬ（商標）コンストラクトにおいて、異なるＡＤ又はＤＤＤ配列が使用されてもよい。例示的なＤＤＤ及びＡＤ配列を以下に示す。
ＤＤＤ１
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１）
ＤＤＤ２
ＣＧＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２）
ＡＤ１
ＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３）
ＡＤ２
ＣＧＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡＧＣ（配列番号４）

当業者には、ＤＤＤ１及びＤＤＤ２が、タンパク質キナーゼＡのヒトＲＩＩαアイソフォームのＤＤＤ配列に基づいていることが理解される。しかしながら、代替の実施形態において、ＤＤＤ及びＡＤ部分は、以下のＤＤＤ３、ＤＤＤ３Ｃ及びＡＤ３に例示されるように、タンパク質キナーゼＡのヒトＲＩα形態のＤＤＤ配列及び対応するＡＫＡＰ配列に基づいてもよい。
ＤＤＤ３
ＳＬＲＥＣＥＬＹＶＱＫＨＮＩＱＡＬＬＫＤＳＩＶＱＬＣＴＡＲＰＥＲＰＭＡＦＬＲＥＹＦＥＲＬＥＫＥＥＡＫ（配列番号５）
ＤＤＤ３Ｃ
ＭＳＣＧＧＳＬＲＥＣＥＬＹＶＱＫＨＮＩＱＡＬＬＫＤＳＩＶＱＬＣＴＡＲＰＥＲＰＭＡＦＬＲＥＹＦＥＲＬＥＫＥＥＡＫ（配列番号６）
ＡＤ３
ＣＧＦＥＥＬＡＷＫＩＡＫＭＩＷＳＤＶＦＱＱＧＣ（配列番号７）

他の代替の実施形態において、ＡＤ及び／又はＤＤＤ部分の他の配列変異が、ＤＮＬ（商標）複合物の構築に使用されてもよい。例えば、ＰＫＡＲＩα、ＲＩＩα、ＲＩβ及びＲＩＩβのＤＤＤ部分に対応して、ヒトＰＫＡＤＤＤ配列の４つの変異のみが存在する。ＲＩＩα ＤＤＤ配列は、上で開示されたＤＤＤ１及びＤＤＤ２の基礎である。４つのヒトＰＫＡＤＤＤ配列を以下に示す。ＤＤＤ配列は、ＲＩＩαの残基１〜４４、ＲＩＩβの１〜４４、ＲＩαの１２〜６１、及びＲＩβの１３〜６６を表す。（ＤＤＤ１の配列は、ヒトＰＫＡＲＩＩα ＤＤＤ部分から若干変更されていることに留意されたい。）
ＰＫＡＲＩα
ＳＬＲＥＣＥＬＹＶＱＫＨＮＩＱＡＬＬＫＤＶＳＩＶＱＬＣＴＡＲＰＥＲＰＭＡＦＬＲＥＹＦＥＫＬＥＫＥＥＡＫ（配列番号８）
ＰＫＡＲＩβ
ＳＬＫＧＣＥＬＹＶＱＬＨＧＩＱＱＶＬＫＤＣＩＶＨＬＣＩＳＫＰＥＲＰＭＫＦＬＲＥＨＦＥＫＬＥＫＥＥＮＲＱＩＬＡ（配列番号９）
ＰＫＡＲＩＩα
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＧＱＱＰＰＤＬＶＤＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＲＱ（配列番号１０）
ＰＫＡＲＩＩβ
ＳＩＥＩＰＡＧＬＴＥＬＬＱＧＦＴＶＥＶＬＲＨＱＰＡＤＬＬＥＦＡＬＱＨＦＴＲＬＱＱＥＮＥＲ（配列番号１１）

ＡＤ及びＤＤＤドメインの構造−機能関係が調査の対象であった。（例えば、Ｂｕｒｎｓ−Ｈａｍｕｒｏｅｔａｌ．，２００５，ＰｒｏｔｅｉｎＳｃｉ１４：２９８２−９２；Ｃａｒｒｅｔａｌ．，２００１，ＪＢｉｏｌＣｈｅｍ２７６：１７３３２−３８；Ａｌｔｏｅｔａｌ．，２００３，ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ１００：４４４５−５０；Ｈｕｎｄｓｒｕｃｋｅｒｅｔａｌ．，２００６，ＢｉｏｃｈｅｍＪ３９６：２９７−３０６；Ｓｔｏｋｋａｅｔａｌ．，２００６，ＢｉｏｃｈｅｍＪ４００：４９３−９９；Ｇｏｌｄｅｔａｌ．，２００６，ＭｏｌＣｅｌｌ２４：３８３−９５；Ｋｉｎｄｅｒｍａｎｅｔａｌ．，２００６，ＭｏｌＣｅｌｌ２４：３９７−４０８を参照されたく、これらのそれぞれの文章全体は、参照により本明細書に組み込まれる。）

例えば、Ｋｉｎｄｅｒｍａｎら（２００６，ＭｏｌＣｅｌｌ２４：３９７−４０８）は、ＡＤ−ＤＤＤ結合相互作用の結晶構造を検査し、ヒトＤＤＤ配列が、以下の配列番号：１に下線で示される、二量体形成又はＡＫＡＰ結合において重要ないくつかの変換されたアミノ酸残基を含有すると結論した。（参照により本明細書に組み込まれる、Ｋｉｎｄｅｒｍａｎｅｔａｌ．，２００６の図１を参照されたい。）当業者には、ＤＤＤ配列の配列変異の設計において、下線で示された残基のいずれかの変化を避けるのが望ましいが、二量体化及びＡＫＡＰ結合に対しより重大ではない残基に同類アミノ酸置換が行われてもよいことが理解される。
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１）

以下でより詳細に議論されるように、同類アミノ酸置換は、２０の一般的なＬ−アミノ酸のそれぞれに対して特徴付けられている。したがって、Ｋｉｎｄｅｒｍａｎ（２００６）のデータ及び同類アミノ酸置換に基づいて、配列番号１に基づく潜在的な代替ＤＤＤ配列が、表２に示される。表２を考案する上で、極めて同類のアミノ酸置換のみが考慮された。例えば、荷電残基は、同じ電荷の残基にのみ置換され、小さい側鎖を有する残基は、同様のサイズの残基と置換され、ヒドロキシル側鎖は、他のヒドロキシルのみと置換された。アミノ酸二次構造に対するプロリンの独特の効果のため、プロリンと置換される他の残基はなかった。限定された数のそのような潜在的な代替ＤＤＤ部分配列が、以下の配列番号１２から配列番号３１に示される。当業者には、ＤＤＤ部分の属内の代替の種が、標準的な技術により、例えば、市販のペプチドシンセサイザー又は周知の部位特異的突然変異生成技術を使用して構築され得ることが理解される。また、ＡＤ部分結合に対するアミノ酸置換の効果は、例えばＡｌｔｏら（２００３，ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ１００：４４４５−５０）において開示されるような標準的な結合アッセイにより容易に決定され得る。

ＴＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１２）
ＳＫＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１３）
ＳＲＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１４）
ＳＨＩＮＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１５）
ＳＨＩＱＩＰＰＡＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１６）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＳＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１７）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＤＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１８）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＮＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１９）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＡＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２０）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＳＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２１）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＤＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２２）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＫＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２３）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＮＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２４）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＮＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２５）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＥＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２６）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＤＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２７）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＬＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２８）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＩＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号２９）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＶＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号３０）
ＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＤＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号３１）

Ａｌｔｏら（２００３，ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ１００：４４４５−５０）は、様々なＡＫＡＰタンパク質のＡＤ配列の生物情報学的分析を行い、０．４ｎＭのＤＤＤに対する結合定数を有する、ＡＫＡＰ−ＩＳ（配列番号３）と呼ばれるＲＩＩ選択的ＡＤ配列を設計した。ＡＫＡＰ−ＩＳ配列は、ＰＫＡに結合するＡＫＡＰ結合のペプチドアンタゴニストとして設計された。置換がＤＤＤへの結合を減少させる傾向があるＡＫＡＰ−ＩＳ配列における残基は、以下の配列番号：３において下線で示されている。当業者には、ＡＤ配列の配列変異の設計において、下線で示された残基のいずれかの変化を避けるのが望ましいが、ＤＤＤ結合に対しより重大ではない残基に同類アミノ酸置換が行われてもよいことが理解される。表３は、上記表２におけるＤＤＤ１（配列番号１）に対して示されるものと同様の、ＡＫＡＰ−ＩＳ（ＡＤ１、配列番号３）の配列における潜在的な同類アミノ酸置換を示す。

限定された数のそのような潜在的な代替ＡＤ部分配列が、以下の配列番号３２から配列番号４９に示される。可能なＡＤ部分配列の属内の他の種が、Ａｌｔｏら（２００３）のデータに基づいて、当業者により作製、試験及び使用され得る。Ａｌｔｏ（２００３）の図２は、実際の結合実験に基づく、ＤＤＤ部分に対する結合活性を維持しながら行うことができるいくつかのアミノ酸置換を示していることに留意されたい。
ＡＫＡＰ−ＩＳ
ＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３）

ＮＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３２）
ＱＬＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３３）
ＱＶＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３４）
ＱＩＤＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３５）
ＱＩＥＦＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３６）
ＱＩＥＴＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３７）
ＱＩＥＳＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３８）
ＱＩＥＹＩＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３９）
ＱＩＥＹＶＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号４０）
ＱＩＥＹＬＡＲＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号４１）
ＱＩＥＹＬＡＫＮＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号４２）
ＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＥＮＡＩＱＱＡ（配列番号４３）
ＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＱＡＩＱＱＡ（配列番号４４）
ＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＮＱＡ（配列番号４５）
ＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＮＡ（配列番号４６）
ＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＬ（配列番号４７）
ＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＩ（配列番号４８）
ＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＶ（配列番号４９）

Ｇｏｌｄら（２００６，ＭｏｌＣｅｌｌ２４：３８３−９５）は、結晶学及びペプチドスクリーニングを使用して、ＲＩアイソフォームと比較して５桁高いＰＫＡのＥＩＩアイソフォームに対する選択性を示すＳｕｐｅｒＡＫＡＰ−ＩＳ配列（配列番号５０）を開発した。下線で示された残基は、ＡＫＡＰ−ＩＳ配列に対するアミノ酸置換の位置を示し、これはＲＩＩαのＤＤＤ部分に対する結合を増加させた。この配列において、Ｎ末端Ｑ残基は、残基番号４として付番され、Ｃ末端Ａ残基は、残基番号２０である。置換がＲＩＩαに対する親和性に影響するようになされ得る残基は、残基８、１１、１５、１６、１８、１９及び２０であった（Ｇｏｌｄｅｔａｌ．，２００６）。ある特定の代替の実施形態において、ＤＮＬ（商標）コンストラクトを調製するために、ＳｕｐｅｒＡＫＡＰ−ＩＳ配列がＡＫＡＰ−ＩＳＡＤ部分配列に置換され得ることが企図される。ＡＫＡＰ−ＩＳＡＤ配列に置換され得る他の代替配列は、配列番号５１〜５３に示される。ＡＫＡＰ−ＩＳ配列に対する置換は、下線で示されている。配列番号４に示されるＡＤ２配列と同様に、ＡＤ部分はまた、追加のＮ末端残基システイン及びグリシン、並びにＣ末端残基グリシン及びシステインを含んでもよいことが予測される。
ＳｕｐｅｒＡＫＡＰ−ＩＳ
ＱＩＥＹＶＡＫＱＩＶＤＹＡＩＨＱＡ（配列番号５０）
代替ＡＫＡＰ配列
ＱＩＥＹＫＡＫＱＩＶＤＨＡＩＨＱＡ（配列番号５１）
ＱＩＥＹＨＡＫＱＩＶＤＨＡＩＨＱＡ（配列番号５２）
ＱＩＥＹＶＡＫＱＩＶＤＨＡＩＨＱＡ（配列番号５３）

Ｇｏｌｄらの図２は、以下に示される様々なＡＫＡＰタンパク質からの追加のＤＤＤ結合配列を開示した。
ＲＩＩ特異性ＡＫＡＰ
ＡＫＡＰ−ＫＬ
ＰＬＥＹＱＡＧＬＬＶＱＮＡＩＱＱＡＩ（配列番号５４）
ＡＫＡＰ７９
ＬＬＩＥＴＡＳＳＬＶＫＮＡＩＱＬＳＩ（配列番号５５）
ＡＫＡＰ−Ｌｂｃ
ＬＩＥＥＡＡＳＲＩＶＤＡＶＩＥＱＶＫ（配列番号５６）
ＲＩ特異性ＡＫＡＰ
ＡＫＡＰｃｅ
ＡＬＹＱＦＡＤＲＦＳＥＬＶＩＳＥＡＬ（配列番号５７）
ＲＩＡＤ
ＬＥＱＶＡＮＱＬＡＤＱＩＩＫＥＡＴ（配列番号５８）
ＰＶ３８
ＦＥＥＬＡＷＫＩＡＫＭＩＷＳＤＶＦ（配列番号５９）
二重特異性ＡＫＡＰ
ＡＫＡＰ７
ＥＬＶＲＬＳＫＲＬＶＥＮＡＶＬＫＡＶ（配列番号６０）
ＭＡＰ２Ｄ
ＴＡＥＥＶＳＡＲＩＶＱＶＶＴＡＥＡＶ（配列番号６１）
ＤＡＫＡＰ１
ＱＩＫＱＡＡＦＱＬＩＳＱＶＩＬＥＡＴ（配列番号６２）
ＤＡＫＡＰ２
ＬＡＷＫＩＡＫＭＩＶＳＤＶＭＱＱ（配列番号６３）

Ｓｔｏｋｋａら（２００６，ＢｉｏｃｈｅｍＪ４００：４９３−９９）もまた、配列番号６４〜６６に示される、ＰＫＡに結合するＡＫＡＰのペプチド競合物を開発した。ペプチドアンタゴニストは、Ｈｔ３１（配列番号６４）、ＲＩＡＤ（配列番号６５）及びＰＶ−３８（配列番号６６）として指定された。Ｈｔ−３１ペプチドは、ＰＫＡのＲＩＩアイソフォームに対するより高い親和性を示し、一方ＲＩＡＤ及びＰＶ−３８は、ＲＩに対するより高い親和性を示した。
Ｈｔ３１
ＤＬＩＥＥＡＡＳＲＩＶＤＡＶＩＥＱＶＫＡＡＧＡＹ（配列番号６４）
ＲＩＡＤ
ＬＥＱＹＡＮＱＬＡＤＱＩＩＫＥＡＴＥ（配列番号６５）
ＰＶ−３８
ＦＥＥＬＡＷＫＩＡＫＭＩＷＳＤＶＦＱＱＣ（配列番号６６）

Ｈｕｎｄｓｒｕｃｋｅｒら（２００６，ＢｉｏｃｈｅｍＪ３９６：２９７−３０６）は、ＰＫＡのＲＩＩ形態のＤＤＤに対し０．４ｎＭという低い結合定数を有する、ＰＫＡに結合するＡＫＡＰのさらに他のペプチド競合物を開発した。様々なＡＫＡＰアンタゴニストペプチドの配列は、Ｈｕｎｄｓｒｕｃｋｅｒらの表１に記載されており、以下の表４に複写される。ＡＫＡＰＩＳは、合成ＲＩＩサブユニット結合ペプチドを表す。他の全てのペプチドは、示されたＡＫＡＰのＲＩＩ結合ドメインから得られる。

異なるＡＫＡＰタンパク質のＡＤドメイン間で極めて同類である残基は、ＡＫＡＰＩＳ配列（配列番号３）に関して下線で示すことにより以下に示される。残基は、Ａｌｔｏら（２００３）により観察されたのと同じであり、Ｃ末端アラニン残基が付加されている。（参照により本明細書に組み込まれる、Ｈｕｎｄｓｒｕｃｋｅｒら（２００６）の図４を参照されたい。）ＲＩＩＤＤＤ配列に対し特に高い親和性を有するペプチドアンタゴニストの配列は、ＡＫＡＰ−ＩＳ、ＡＫＡＰ７δ−ｗｔ−ｐｅｐ、ＡＫＡＰ７δ−Ｌ３０４Ｔ−ｐｅｐ及びＡＫＡＰ７δ−Ｌ３０８Ｄ−ｐｅｐの配列であった。
ＡＫＡＰ−ＩＳ
ＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号３）

Ｃａｒｒら（２００１，ＪＢｉｏｌＣｈｅｍ２７６：１７３３２−３８）は、ヒト及び非ヒトタンパク質からの異なるＡＫＡＰ結合ＤＤＤ配列の間の配列相同性の程度を検査し、異なるＤＤＤ部分の間で最も高度に同類であると思われるＤＤＤ配列における残基を同定した。これらは、配列番号１のヒトＰＫＡＲＩＩα ＤＤＤ配列に関して下線で示すことにより以下に示される。特に同類である残基は、さらにイタリック体で示されている。残基は、Ｋｉｎｄｅｒｍａｎら（２００６）によりＡＫＡＰタンパク質への結合に重要であることが示唆されている残基と重複するが、同一ではない。当業者には、ＤＤＤの配列変異の設計において、最も同類の残基（イタリック体）を変更することを避けることが最も好ましく、また同類の残基（下線）を変更することを避けることも好ましく、一方で、下線でもイタリック体でも示されていない残基に対して同類アミノ酸置換が考慮され得ることが理解される。

Ｃａｒｒら（２００１）のデータに基づくＤＤＤ１（配列番号１）配列の同類アミノ酸置換の変更されたセットを、表５に示す。この置換配列の低減されたセットにおいてさえ、当業者により必要以上の実験を行うことなく生成、試験及び使用され得る、６５，０００を超える可能な代替ＤＤＤ部分配列がある。当業者は、表２及び表３に関して上で開示されたような代替ＤＤＤアミノ酸配列を容易に得ることができる。

当業者には、この分野において標準的な技術及び習慣的に過ぎない実験を使用して、ＡＤ又はＤＤＤ部分の属内の代替の種を生成するために、ＤＤＤ又はＡＤアミノ酸配列におけるこれらの、及び他のアミノ酸置換を使用することができることが理解される。

アミノ酸置換
代替の実施形態において、開示される方法及び組成物は、１つ以上の置換アミノ酸残基を有するタンパク質又はペプチドの生成及び使用を含んでもよい。例えば、ＤＮＬ（商標）コンストラクトを作製するために使用されるＤＤＤ及び／又はＡＤ配列は、上で議論されたように変更されてもよい。

当業者には、一般に、アミノ酸置換が、典型的には、アミノ酸を比較的同様の特性を有する別のアミノ酸により置き換えること（すなわち、同類アミノ酸置換）を含むことが認識される。様々なアミノ酸の特性、並びにタンパク質構造及び機能に対するアミノ酸置換の効果は、当該技術分野における広範な研究及び知識の対象となっている。

例えば、アミノ酸のハイドロパシー指標が考慮され得る（Ｋｙｔｅ＆Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅ，１９８２，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，１５７：１０５−１３２）。アミノ酸の相対的ハイドロパシー特性は、得られるタンパク質の二次構造に寄与し、一方これは、タンパク質と他の分子との相互作用を決定付ける。疎水性及び電荷特性に基づいて、各アミノ酸にハイドロパシー指標が割り当てられており（Ｋｙｔｅ＆Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅ，１９８２）、これらは、イソロイシン（＋４．５）；バリン（＋４．２）；ロイシン（＋３．８）；フェニルアラニン（＋２．８）；システイン／シスチン（＋２．５）；メチオニン（＋１．９）；アラニン（＋１．８）；グリシン（−０．４）；トレオニン（−０．７）；セリン（−０．８）；トリプトファン（−０．９）；チロシン（−１．３）；プロリン（−１．６）；ヒスチジン（−３．２）；グルタミン酸塩（−３．５）；グルタミン（−３．５）；アスパラギン酸塩（−３．５）；アスパラギン（−３．５）；リシン（−３．９）；及びアルギニン（−４．５）である。同類置換を行う上で、ハイドロパシー指標が±２以内であるアミノ酸の使用が好ましく、±１以内がより好ましく、±０．５以内がさらにより好ましい。

アミノ酸置換はまた、アミノ酸残基の親水性を考慮してもよい（例えば、米国特許第４，５５４，１０１号）。以下のように親水性値がアミノ酸残基に割り当てられている：アルギニン（＋３．０）；リシン（＋３．０）；アスパラギン酸塩（＋３．０）；グルタミン酸塩（＋３．０）；セリン（＋０．３）；アスパラギン（＋０．２）；グルタミン（＋０．２）；グリシン（０）；トレオニン（−０．４）；プロリン（−０．５．＋−．１）；アラニン（−０．５）；ヒスチジン（−０．５）；システイン（−１．０）；メチオニン（−１．３）；バリン（−１．５）；ロイシン（−１．８）；イソロイシン（−１．８）；チロシン（−２．３）；フェニルアラニン（−２．５）；トリプトファン（−３．４）。アミノ酸と、同様の親水性を有する他のアミノ酸との置き換えが好ましい。

他の考慮点は、アミノ酸側鎖のサイズを含む。例えば、一般に、グリシン又はセリン等のコンパクトな側鎖を有するアミノ酸を、トリプトファン又はチロシン等の嵩のある側鎖を有するアミノ酸と置き換えることは好ましくない。タンパク質二次構造に対する様々なアミノ酸残基の効果もまた考慮点である。実証的研究を通して、タンパク質ドメインがアルファ螺旋、ベータシート又は逆回転二次構造をとる傾向に対する異なるアミノ酸残基の効果が決定されており、当該技術分野において知られている（例えば、Ｃｈｏｕ＆Ｆａｓｍａｎ，１９７４，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１３：２２２−２４５；１９７８，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，４７：２５１−２７６；１９７９，Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｊ．，２６：３６７−３８４を参照されたい）。

そのような考慮点及び広範な実証的研究に基づいて、同類アミノ酸置換の表が構築されており、当該技術分野において知られている。例えば、アルギニン及びリシン；グルタミン酸及びアスパラギン酸；セリン及びトレオニン；グルタミン及びアスパラギン；並びにバリン、ロイシン及びイソロイシンである。代替として、Ａｌａ（Ａ）ｌｅｕ、ｉｌｅ、ｖａｌ；Ａｒｇ（Ｒ）ｇｌｎ、ａｓｎ、ｌｙｓ；Ａｓｎ（Ｎ）ｈｉｓ、ａｓｐ、ｌｙｓ、ａｒｇ、ｇｌｎ；Ａｓｐ（Ｄ）ａｓｎ、ｇｌｕ；Ｃｙｓ（Ｃ）ａｌａ、ｓｅｒ；Ｇｌｎ（Ｑ）ｇｌｕ、ａｓｎ；Ｇｌｕ（Ｅ）ｇｌｎ、ａｓｐ；Ｇｌｙ（Ｇ）ａｌａ；Ｈｉｓ（Ｈ）ａｓｎ、ｇｌｎ、ｌｙｓ、ａｒｇ；Ｉｌｅ（Ｉ）ｖａｌ、ｍｅｔ、ａｌａ、ｐｈｅ、ｌｅｕ；Ｌｅｕ（Ｌ）ｖａｌ、ｍｅｔ、ａｌａ、ｐｈｅ、ｉｌｅ；Ｌｙｓ（Ｋ）ｇｌｎ、ａｓｎ、ａｒｇ；Ｍｅｔ（Ｍ）ｐｈｅ、ｉｌｅ、ｌｅｕ；Ｐｈｅ（Ｆ）ｌｅｕ、ｖａｌ、ｉｌｅ、ａｌａ、ｔｙｒ；Ｐｒｏ（Ｐ）ａｌａ；Ｓｅｒ（Ｓ）、ｔｈｒ；Ｔｈｒ（Ｔ）ｓｅｒ；Ｔｒｐ（Ｗ）ｐｈｅ、ｔｙｒ；Ｔｙｒ（Ｙ）ｔｒｐ、ｐｈｅ、ｔｈｒ、ｓｅｒ；Ｖａｌ（Ｖ）ｉｌｅ、ｌｅｕ、ｍｅｔ、ｐｈｅ、ａｌａである。

アミノ酸置換の他の考慮点は、残基がタンパク質の内部に位置するか、又は溶媒曝露されているか否かを含む。内部残基の場合、同類置換は、Ａｓｐ及びＡｓｎ；Ｓｅｒ及びＴｈｒ；Ｓｅｒ及びＡｌａ；Ｔｈｒ及びＡｌａ；Ａｌａ及びＧｌｙ；Ｉｌｅ及びＶａｌ；Ｖａｌ及びＬｅｕ；Ｌｅｕ及びＩｌｅ；Ｌｅｕ及びＭｅｔ；Ｐｈｅ及びＴｙｒ；Ｔｙｒ及びＴｒｐを含む。（例えば、ｒｏｃｋｅｆｅｌｌｅｒ．ｅｄｕのＰＲＯＷＬウェブサイトを参照されたい。）溶媒曝露された残基の場合、同類置換は、Ａｓｐ及びＡｓｎ；Ａｓｐ及びＧｌｕ；Ｇｌｕ及びＧｌｎ；Ｇｌｕ及びＡｌａ；Ｇｌｙ及びＡｓｎ；Ａｌａ及びＰｒｏ；Ａｌａ及びＧｌｙ；Ａｌａ及びＳｅｒ；Ａｌａ及びＬｙｓ；Ｓｅｒ及びＴｈｒ；Ｌｙｓ及びＡｒｇ；Ｖａｌ及びＬｅｕ；Ｌｅｕ及びＩｌｅ；Ｉｌｅ及びＶａｌ；Ｐｈｅ及びＴｙｒ．を含む。（同上。）アミノ酸置換の選択を補助するために、ＰＡＭ２５０スコア化マトリックス、Ｄａｙｈｏｆｆマトリックス、Ｇｒａｎｔｈａｍマトリックス、ＭｃＬａｃｈｌａｎマトリックス、Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅマトリックス、Ｈｅｎｉｋｏｆｆマトリックス、Ｍｉｙａｔａマトリックス、Ｆｉｔｃｈマトリックス、Ｊｏｎｅｓマトリックス、Ｒａｏマトリックス、Ｌｅｖｉｎマトリックス及びＲｉｓｌｅｒマトリックス等の様々なマトリックスが構築されている（同上）。アミノ酸置換の決定において、分子間又は分子内結合の存在、例えば正電荷残基（例えば、Ｈｉｓ、Ａｒｇ、Ｌｙｓ）と負電荷残基（例えば、Ａｓｐ、Ｇｌｕ）との間のイオン結合（塩架橋）の形成、又は隣接システイン残基間のジスルフィド結合もまた考慮することができる。

任意のアミノ酸を、コードされたタンパク質配列における任意の他のアミノ酸と置換する方法、例えば部位特異的突然変異生成の技術による、又はアミノ酸置換をコードするオリゴヌクレオチドの合成及びアセンブリ、並びに発現ベクターコンストラクトへのスプライシングによる方法が周知であり、当業者にとっては習慣的な実験の問題である。

治療薬剤
代替の実施形態において、主題のｂｓＡｂ、ＡＤＣ及び／若しくは抗体に複合化した、又は、ｂｓＡｂ、ＡＤＣ及び／若しくは抗体の前、それらと同時、若しくはそれらの後に別個に投与される、細胞毒性薬剤、抗血管形成薬剤、プロアポトーシス薬剤、抗生物質、ホルモン、ホルモンアンタゴニスト、ケモカイン、薬物、プロドラッグ、毒素、酵素又は他の薬剤等の治療薬剤が使用されてもよい。有用な薬物は、抗有糸分裂、抗キナーゼ、アルキル化、抗代謝、抗生物質、アルカロイド、抗血管形成、プロアポトーシス薬剤及びそれらの組み合わせからなる群から選択される薬学的特性を有し得る。

有用な例示的薬物は、５−フルオロウラシル、アファチニブ、アプリジン、アザリビン、アナストロゾール、アントラサイクリン、アキシチニブ、ＡＶＬ−１０１、ＡＶＬ−２９１、ベンダムスチン、ブレオマイシン、ボルテゾミ、ボスチニブ、ブリオスタチン−１、ブスルファ、カリケアミシン、カンプトテシン、カルボプラチン、１０−ヒドロキシカンプトテシン、カルムスチン、セレブレックス、クロランブシル、シスプラチン（ＣＤＤＰ）、Ｃｏｘ−２阻害剤、イリノテカン（ＣＰＴ−１１）、ＳＮ−３８、カルボプラチン、クラドリビン、カンプトテカン、クリゾチニブ、シクロホスファミド、シタラビン、ダカルバジン、ダサチニブ、ジナシクリブ、ドセタキセル、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、２−ピロリノドキソルビシン（２Ｐ−ＤＯＸ）、シアノ−モルホリノドキソルビシン、ドキソルビシングルクロニド、エピルビシングルクロニド、エルロチニブ、エストラムスチン、エピドフィロトキシン、エルロチニブ、エンチノスタット、エストロゲン受容体結合剤、エトポシド（ＶＰ１６）、エトポシドグルクロニド、リン酸エトポシド、エキセメスタン、フィンゴリモド、フロクスウリジン（ＦＵｄＲ）、３’，５’−Ｏ−ジオレイル−ＦｕｄＲ（ＦＵｄＲ−ｄＯ）、フルダラビン、フルタミド、ファルネシル−タンパク質トランスフェラーゼ阻害剤、フラボピリドール、ホスタマチニブ、ガネテスピブ、ＧＤＣ−０８３４、ＧＳ−１１０１、ゲフェチニブ、ゲムシタビン、ヒドロキシ尿素、イブルチニブ、イダルビシン、イデラリシブ、イホスファミド、イマチニブ、Ｌ−アスパラギナーゼ、ラパチニブ、レノリダミド、ロイコボリン、ＬＦＭ−Ａ１３、ロムスチン、メクロレタミン、メルファラン、メルカプトプリン、６−メルカプトプリン、メトトレキセート、ミトキサントロン、ミトラマイシン、マイトマイシン、ミトタン、ナベルビン、ネラチニブ、ニロチニブ、ニトロソ尿素、オラパリブ、プリコマイシン、プロカルバジン、パクリタキセル、ＰＣＩ−３２７６５、ペントスタチン、ＰＳＩ−３４１、ラロキシフェン、セムスチン、ソレフェニブ、ストレプトゾシン、ＳＵ１１２４８、スニチニブ、タモキシフェン、テマゾロミド（ＤＴＩＣの水性形態）、トランス白金、サリドマイド、チオグアニン、チオテパ、テニポシド、トポテカン、ウラシルマスタード、バタラニブ、ビノレルビン、ビンブラスチン、ビンクリスチン、ビンカアルカノイド及びＺＤ１８３９を含み得るが、これらに限定されない。

有用な毒素は、リシン、アブリン、アルファ毒素、サポリン、リボヌクレアーゼ（ＲＮａｓｅ）、例えばオンコナーゼ、ＤＮａｓｅＩ、ブドウ球菌エンテロトキシン−Ａ、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、ゲロニン、ジフテリア毒素、シュードモナス外毒素、及びシュードモナス内毒素を含み得る。

有用なケモカインは、ＲＡＮＴＥＳ、ＭＣＡＦ、ＭＩＰ１−アルファ、ＭＩＰ１−ベータ及びＩＰ−１０を含み得る。

ある特定の実施形態において、抗血管形成薬剤、例えばアンギオスタチン、バキュロスタチン、カンスタチン、マスピン、抗ＶＥＧＦ抗体、抗ＰｌＧＦペプチド及び抗体、抗血管成長因子抗体、抗Ｆｌｋ−１抗体、抗Ｆｌｔ−１抗体及びペプチド、抗Ｋｒａｓ抗体、抗ｃＭＥＴ抗体、抗ＭＩＦ（マクロファージ遊走阻止因子）抗体、ラミニンペプチド、フィブロネクチンペプチド、プラスミノーゲン活性化因子阻害剤、組織金属プロテイナーゼ阻害剤、インターフェロン、インターロイキン−１２、ＩＰ−１０、Ｇｒｏ−β、トロンボスポンジン、２−メトキシオエストラジオール、プロリフェリン関連タンパク質、カルボキシアミドトリアゾール、ＣＭ１０１、マリマスタット、ペントサンポリ硫酸、アンジオポイエチン−２、インターフェロン−アルファ、ハービマイシンＡ、ＰＮＵ１４５１５６Ｅ、１６Ｋプロラクチン断片、リノミド（ロキニメックス）、サリドマイド、ペントキシフィリン、ゲニステイン、ＴＮＰ−４７０、エンドスタチン、パクリタキセル、アキュチン、アンギオスタチン、シドフォビル、ビンクリスチン、ブレオマイシン、ＡＧＭ−１４７０、血小板因子４又はミノサイクリンが有用となり得る。

有用な免疫賦活剤は、サイトカイン、幹細胞成長因子、リンホトキシン、造血因子、コロニー刺激因子（ＣＳＦ）、インターフェロン（ＩＦＮ）、エリスロポエチン、トロンボポエチン及びそれらの組み合わせから選択され得る。特に有用なのは、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）等のリンホトキシン、インターロイキン（ＩＬ）等の造血因子、顆粒球−コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）又は顆粒球マクロファージ−コロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）等のコロニー刺激因子、インターフェロン−α、−β又は−λ等のインターフェロン、及び「Ｓ１因子」と指定されるもの等の幹細胞成長因子である。サイトカインに含まれるのは、成長ホルモン、例えばヒト成長ホルモン、Ｎ−メチオニルヒト成長ホルモン及びウシ成長ホルモン；副甲状腺ホルモン；チロキシン；インスリン；プロインスリン；リラキシン；プロリラキシン；糖タンパク質ホルモン、例えば卵胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）、甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）及び黄体形成ホルモン（ＬＨ）；肝臓成長因子；プロスタグランジン、線維芽細胞成長因子；プロラクチン；胎盤性ラクトゲン、ＯＢタンパク質；腫瘍壊死因子−α及び−β；ミュラー管抑制物質；マウスゴナドトロピン関連ペプチド；インヒビン；アクチビン；血管内皮成長因子；インテグリン；トロンボポエチン（ＴＰＯ）；神経成長因子、例えばＮＧＦ−β；血小板成長因子；形質転換成長因子（ＴＧＦ）、例えばＴＧＦ−α及びＴＧＦ−β；インスリン様成長因子−Ｉ及び−ＩＩ；エリスロポエチン（ＥＰＯ）；骨誘導因子；インターフェロン、例えばインターフェロン−α、−β、及び−γ；コロニー刺激因子（ＣＳＦ）、例えばマクロファージ−ＣＳＦ（Ｍ−ＣＳＦ）；インターロイキン（ＩＬ）、例えばＩＬ−１、ＩＬ−１α、ＩＬ−２、ＩＬ−３、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−８、ＩＬ−９、ＩＬ−１０、ＩＬ−１１、ＩＬ−１２；ＩＬ−１３、ＩＬ−１４、ＩＬ−１５、ＩＬ−１６、ＩＬ−１７、ＩＬ−１８、ＩＬ−２１、ＩＬ−２５、ＬＩＦ、ｋｉｔ−リガンド又はＦＬＴ−３、アンギオスタチン、トロンボスポンジン、エンドスタチン、腫瘍壊死因子及びＬＴである。

有用な放射性核種は、^１１１Ｉｎ、^１７７Ｌｕ、^２１２Ｂｉ、^２１３Ｂｉ、^２１１Ａｔ、^６２Ｃｕ、^６７Ｃｕ、^９０Ｙ、^１２５Ｉ、^１３１Ｉ、^３２Ｐ、^３３Ｐ、^４７Ｓｃ、^１１１Ａｇ、^６７Ｇａ、^１４２Ｐｒ、^１５３Ｓｍ、^１６１Ｔｂ、^１６６Ｄｙ、^１６６Ｈｏ、^１８６Ｒｅ、^１８８Ｒｅ、^１８９Ｒｅ、^２１２Ｐｂ、^２２３Ｒａ、^２２５Ａｃ、^５９Ｆｅ、^７５Ｓｅ、^７７Ａｓ、^８９Ｓｒ、^９９Ｍｏ、^１０５Ｒｈ、^１０９Ｐｄ、^１４３Ｐｒ、^１４９Ｐｍ、^１６９Ｅｒ、^１９４Ｉｒ、^１９８Ａｕ、^１９９Ａｕ、^２１１Ｐｂ、及び^２２７Ｔｈを含むが、これらに限定されない。治療用放射性核種は、好ましくは、２０〜６，０００ｋｅＶの範囲内、好ましくはオージェ放射体の場合６０〜２００ｋｅＶ、ベータ放射体の場合１００〜２，５００ｋｅＶ、アルファ放射体の場合４，０００〜６，０００ｋｅＶの範囲内の崩壊エネルギーを有する。有用なベータ粒子放出核種の最大崩壊エネルギーは、好ましくは２０〜５，０００ｋｅＶ、より好ましくは１００〜４，０００ｋｅＶ、最も好ましくは５００〜２，５００ｋｅＶである。また、オージェ放出粒子と共に実質的に崩壊する放射性核種が好ましい。例えば、Ｃｏ−５８、Ｇａ−６７、Ｂｒ−８０ｍ、Ｔｃ−９９ｍ、Ｒｈ−１０３ｍ、Ｐｔ−１０９、Ｉｎ−１１１、Ｓｂ−１１９、１−１２５、Ｈｏ−１６１、Ｏｓ−１８９ｍ及びＩｒ−１９２である。有用なベータ粒子放出核種の崩壊エネルギーは、好ましくは１，０００ｋｅＶ未満、より好ましくは１００ｋｅＶ未満、最も好ましくは７０ｋｅＶ未満である。また、アルファ粒子の生成と共に実質的に崩壊する放射性核種が好ましい。そのような放射性核種は、Ｄｙ−１５２、Ａｔ−２１１、Ｂｉ−２１２、Ｒａ−２２３、Ｒｎ−２１９、Ｐｏ−２１５、Ｂｉ−２１１、Ａｃ−２２５、Ｆｒ−２２１、Ａｔ−２１７、Ｂｉ−２１３、Ｔｈ−２２７及びＦｍ−２５５を含むが、これらに限定されない。有用なアルファ粒子放出核種の崩壊エネルギーは、好ましくは２，０００〜１０，０００ｋｅＶ、より好ましくは３，０００〜８，０００ｋｅＶ、最も好ましくは４，０００〜７，０００ｋｅＶである。追加的な有用な潜在的放射性核種は、^１１Ｃ、^１３Ｎ、^１５Ｏ、^７５Ｂｒ、^１９８Ａｕ、^２２４Ａｃ、^１２６Ｉ、^１３３Ｉ、^７７Ｂｒ、^１１３ｍＩｎ、^９５Ｒｕ、^９７Ｒｕ、^１０３Ｒｕ、^１０５Ｒｕ、^１０７Ｈｇ、^２０３Ｈｇ、^１２１ｍＴｅ、^１２２ｍＴｅ、^１２５ｍＴｅ、^１６５Ｔｍ、^１６７Ｔｍ、^１６８Ｔｍ、^１９７Ｐｔ、^１０９Ｐｄ、^１０５Ｒｈ、^１４２Ｐｒ、^１４３Ｐｒ、^１６１Ｔｂ、^１６６Ｈｏ、^１９９Ａｕ、^５７Ｃｏ、^５８Ｃｏ、^５１Ｃｒ、^５９Ｆｅ、^７５Ｓｅ、^２０１Ｔｌ、^２２５Ａｃ、^７６Ｂｒ、^１６９Ｙｂ等を含む。いくつかの有用な診断用核種は、^１８Ｆ、^５２Ｆｅ、^６２Ｃｕ、^６４Ｃｕ、^６７Ｃｕ、^６７Ｇａ、^６８Ｇａ、^８６Ｙ、^８９Ｚｒ、^９４Ｔｃ、^９４ｍＴｃ、^９９ｍＴｃ、又は^１１１Ｉｎを含み得る。

治療薬剤は、光活性薬剤又は染料であってもよい。蛍光組成物、例えば蛍光色素、及び他の色原体又は染料、例えば可視光に感受性のポルフィリンが、好適な光を病変に導くことにより病変を検出及び治療するために使用されている。治療において、これは光線照射、光線療法、又は光線力学的療法と呼ばれている。Ｊｏｒｉｅｔａｌ．（ｅｄｓ．），ＰＨＯＴＯＤＹＮＡＭＩＣＴＨＥＲＡＰＹＯＦＴＵＭＯＲＳＡＮＤＯＴＨＥＲＤＩＳＥＡＳＥＳ（ＬｉｂｒｅｒｉａＰｒｏｇｅｔｔｏ１９８５）；ｖａｎｄｅｎＢｅｒｇｈ，Ｃｈｅｍ．Ｂｒｉｔａｉｎ（１９８６），２２：４３０を参照されたい。さらに、光線療法を達成するために、モノクローナル抗体が光活性化染料とカップリングされている。Ｍｅｗｅｔａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９８３），１３０：１４７３；同上．，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．（１９８５），４５：４３８０；Ｏｓｅｒｏｆｆｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９８６），８３：８７４４；同上，Ｐｈｏｔｏｃｈｅｍ．Ｐｈｏｔｏｂｉｏｌ．（１９８７），４６：８３；Ｈａｓａｎｅｔａｌ．，Ｐｒｏｇ．Ｃｌｉｎ．Ｂｉｏｌ．Ｒｅｓ．（１９８９），２８８：４７１；Ｔａｔｓｕｔａｅｔａｌ．，ＬａｓｅｒｓＳｕｒｇ．Ｍｅｄ．（１９８９），９：４２２；Ｐｅｌｅｇｒｉｎｅｔａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ（１９９１），６７：２５２９を参照されたい。

他の有用な治療薬剤は、オリゴヌクレオチド、特に好ましくはがん遺伝子及びがん遺伝子産物、例えばｂｃｌ−２又はｐ５３に対して指向されるアンチセンスオリゴヌクレオチドを含んでもよい。治療オリゴヌクレオチドの好ましい形態は、ｓｉＲＮＡである。当業者は、ｓｉＲＮＡ又は干渉ＲＮＡ種が、標的化組織への送達のために抗体又はその断片に結合してもよいことを理解するであろう。広範な標的に対する多くのｓｉＲＮＡ種が当該技術分野において知られており、任意のそのような知られたｓｉＲＮＡが、請求される方法及び組成物において使用され得る。

有用となり得る知られたｓｉＲＮＡ種は、ＩＫＫ−ガンマ（米国特許第７，０２２，８２８号）；ＶＥＧＦ、Ｆｌｔ−１及びＦｌｋ−１／ＫＤＲ（米国特許第７，１４８，３４２号）；Ｂｃｌ２及びＥＧＦＲ（米国特許第７，５４１，４５３号）；ＣＤＣ２０（米国特許第７，５５０，５７２号）；トランスデューシン（ベータ）様３（米国特許第７，５７６，１９６号）；ＫＲＡＳ（米国特許第７，５７６，１９７号）；炭酸脱水酵素ＩＩ（米国特許第７，５７９，４５７号）；補体成分３（米国特許第７，５８２，７４６号）；インターロイキン−１受容体関連キナーゼ４（ＩＲＡＫ４）（米国特許第７，５９２，４４３）；スルビビン（米国特許第７，６０８，７０７０号）；スーパーオキシドジスムターゼ１（米国特許第７，６３２，９３８号）；ＭＥＴがん原遺伝子（米国特許第７，６３２，９３９号）；アミロイドベータ前駆体タンパク質（ＡＰＰ）（米国特許第７，６３５，７７１号）；ＩＧＦ−１Ｒ（米国特許第７，６３８，６２１号）；ＩＣＡＭ１（米国特許第７，６４２，３４９号）；補体因子Ｂ（米国特許第７，６９６，３４４号）；ｐ５３（７，７８１，５７５号）、及びアポリポタンパク質Ｂ（７，７９５，４２１号）に特異的なものを含み、それぞれの参照された特許の実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる。

追加的なｓｉＲＮＡ種は、既知の商業的供給元、例えば、多くの他の供給元の中でも、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ（ＳｔＬｏｕｉｓ、ＭＯ）、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）、ＳａｎｔａＣｒｕｚＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（ＳａｎｔａＣｒｕｚ、ＣＡ）、Ａｍｂｉｏｎ（Ａｕｓｔｉｎ、ＴＸ）、Ｄｈａｒｍａｃｏｎ（ＴｈｅｒｍｏＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｌａｆａｙｅｔｔｅ、ＣＯ）、Ｐｒｏｍｅｇａ（Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）、ＭｉｒｕｓＢｉｏ（Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）及びＱｉａｇｅｎ（Ｖａｌｅｎｃｉａ、ＣＡ）から入手可能である。ｓｉＲＮＡ種の他の公的に利用可能な源は、ＳｔｏｃｋｈｏｌｍＢｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓＣｅｎｔｒｅのｓｉＲＮＡｄｂデータベース、ＭＩＴ／ＩＣＢＰｓｉＲＮＡＤａｔａｂａｓｅ、ＢｒｏａｄＩｎｓｔｉｔｕｔｅのＲＮＡｉＣｏｎｓｏｒｔｉｕｍｓｈＲＮＡＬｉｂｒａｒｙ、及びＮＣＢＩのＰｒｏｂｅデータベースを含む。例えば、ＮＣＢＩＰｒｏｂｅデータベースには３０，８５２のｓｉＲＮＡ種がある。当業者には、対象となる任意の遺伝子に対して、ｓｉＲＮＡ種がすでに設計されている、又は公的に利用可能なソフトウェアツールを使用して容易に設計され得ることが理解される。任意のそのようなｓｉＲＮＡ種は、対象のＤＮＬ（商標）複合物を使用して送達され得る。

治療処置の方法
様々な実施形態は、ヒト、家畜又はコンパニオンペット、例えばイヌ及びネコを含む哺乳動物等の対象におけるがんを治療する方法であって、治療上効果的な量の細胞毒性及び／又は免疫賦活剤の組み合わせを対象に投与することを含む方法に関する。

細胞毒性ｂｓＡｂ、ＡＤＣ及び／又はチェックポイント阻害剤抗体の投与は、標的細胞の表面上の別の抗原に結合する、又はそれと反応性である、治療上効果的な量の別の抗体を同時又は逐次的に投与することにより補完されてもよい。好ましい追加のＭＡｂは、ＣＤ４、ＣＤ５、ＣＤ８、ＣＤ１４、ＣＤ１５、ＣＤ１６、ＣＤ１９、ＩＧＦ−１Ｒ、ＣＤ２０、ＣＤ２１、ＣＤ２２、ＣＤ２３、ＣＤ２５、ＣＤ３０、ＣＤ３２ｂ、ＣＤ３３、ＣＤ３７、ＣＤ３８、ＣＤ４０、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ４５、ＣＤ４６、ＣＤ５２、ＣＤ５４、ＣＤ７０、ＣＤ７４、ＣＤ７９ａ、ＣＤ７９ｂ、ＣＤ８０、ＣＤ９５、ＣＤ１２６、ＣＤ１３３、ＣＤ１３８、ＣＤ１５４、ＣＥＡＣＡＭ５、ＣＥＡＣＡＭ６、Ｂ７、ＡＦＰ、ＰＳＭＡ、ＥＧＰ−１、ＥＧＰ−２、炭酸脱水酵素ＩＸ、ＰＡＭ４抗原、ＭＵＣ１、ＭＵＣ２、ＭＵＣ３、ＭＵＣ４、ＭＵＣ５、Ｉａ、ＭＩＦ、ＨＭ１．２４、ＨＬＡ−ＤＲ、テネイシン、Ｆｌｔ−３、ＶＥＧＦＲ、ＰｌＧＦ、ＩＬＧＦ、ＩＬ−６、ＩＬ−２５、テネイシン、ＴＲＡＩＬ−Ｒ１、ＴＲＡＩＬ−Ｒ２、補体因子Ｃ５、がん遺伝子産物、又はそれらの組み合わせと反応性のＭＡｂからなる群から選択される、少なくとも１つのヒト化、キメラ又はヒトＭＡｂを含む。抗ＣＤ１９、抗ＣＤ２０、及び抗ＣＤ２２抗体等の有用な様々な抗体が、当該技術分野において知られている。例えば、Ｇｈｅｔｉｅｅｔａｌ．，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．４８：２６１０（１９８８）；Ｈｅｋｍａｎｅｔａｌ．，ＣａｎｃｅｒＩｍｍｕｎｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．３２：３６４（１９９１）；Ｌｏｎｇｏ，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｏｎｃｏｌ．８：３５３（１９９６）、米国特許第５，７９８，５５４号；米国特許第６，１８７，２８７号；米国特許第６，３０６，３９３号；米国特許第６，６７６，９２４号；米国特許第７，１０９，３０４号；米国特許第７，１５１，１６４号；米国特許第７，２３０，０８４号；米国特許第７，２３０，０８５号；米国特許第７，２３８，７８５号；米国特許第７，２３８，７８６号；米国特許第７，２８２，５６７号；米国特許第７，３００，６５５号；米国特許第７，３１２，３１８号；米国特許第７，５０１，４９８号；米国特許第７，６１２，１８０号；米国特許第７，６７０，８０４号；並びに米国特許出願公開第２００８０１３１３６３号；米国特許出願公開第２００７０１７２９２０号；米国特許出願公開第２００６０１９３８６５号；及び米国特許出願公開第２００８０１３８３３３を参照されたく、それぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる。

併用療法は、少なくとも１種の治療薬剤の同時又は逐次的な投与でさらに補完されてもよい。例えば、「ＣＶＢ」（１．５ｇ／ｍ^２のシクロホスファミド、２００〜４００ｍｇ／ｍ^２のエトポシド、及び１５０〜２００ｍｇ／ｍ^２のカルムスチン）は、非ホジキンリンパ腫を治療するために使用される投薬計画である。Ｐａｔｔｉｅｔａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｈａｅｍａｔｏｌ．５１：１８（１９９３）。他の好適な併用化学療法計画は、当業者に周知である。例えば、Ｆｒｅｅｄｍａｎｅｔａｌ．，”Ｎｏｎ−Ｈｏｄｇｋｉｎ’ｓＬｙｍｐｈｏｍａｓ，”ｉｎＣＡＮＣＥＲＭＥＤＩＣＩＮＥ，ＶＯＬＵＭＥ２，３ｒｄＥｄｉｔｉｏｎ，Ｈｏｌｌａｎｄｅｔａｌ．（ｅｄｓ．），ｐａｇｅｓ２０２８−２０６８（Ｌｅａ＆Ｆｅｂｉｇｅｒ１９９３）を参照されたい。例示として、中悪性度の非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）の治療のための第一世代の化学療法計画は、Ｃ−ＭＯＰＰ（シクロホスファミド、ビンクリスチン、プロカルバジン及びプレドニゾン）並びにＣＨＯＰ（シクロホスファミド、ドキソルビシン、ビンクリスチン、及びプレドニゾン）を含む。有用な第二世代の化学療法計画は、ｍ−ＢＡＣＯＤ（メトトレキセート、ブレオマイシン、ドキソルビシン、シクロホスファミド、ビンクリスチン、デキサメタゾン及びロイコボリンであり、一方好適な第三世代の投薬計画は、ＭＡＣＯＰ−Ｂ（メトトレキセート、ドキソルビシン、シクロホスファミド、ビンクリスチン、プレドニゾン、ブレオマイシン及びロイコボリン）である。追加の有用な薬物は、酪酸フェニル、ベンダムスチン、及びブリオスタチン−１を含む。

治療薬剤の組み合わせは、薬学的に有用な組成物を調製するための既知の方法に従って製剤化され得、ｂｓＡｂ、ＡＤＣ、インターフェロン及び／又はチェックポイント阻害剤抗体が、薬学的に好適な賦形剤との混合物として組み合わされる。無菌リン酸緩衝生理食塩水が、薬学的に好適な賦形剤の一例である。他の好適な賦形剤が、当業者に周知である。例えば、Ａｎｓｅｌｅｔａｌ．，ＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬＤＯＳＡＧＥＦＯＲＭＳＡＮＤＤＲＵＧＤＥＬＩＶＥＲＹＳＹＳＴＥＭＳ，５ｔｈＥｄｉｔｉｏｎ（Ｌｅａ＆Ｆｅｂｉｇｅｒ１９９０）、及びＧｅｎｎａｒｏ（ｅｄ．），ＲＥＭＩＮＧＴＯＮ’ＳＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬＳＣＩＥＮＣＥＳ，１８ｔｈＥｄｉｔｉｏｎ（ＭａｃｋＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇＣｏｍｐａｎｙ１９９０）、並びにそれらの改訂版を参照されたい。

主題のｂｓＡｂ、ＡＤＣ、インターフェロン及び／又は抗体は、例えば、ボーラス注射又は持続注入による静脈内投与用に製剤化されてもよい。好ましくは、ｂｓＡｂ、ＡＤＣ及び／又は抗体は、約４時間未満の期間にわたり、より好ましくは約３時間未満の期間にわたり注入される。例えば、第１のボーラスは、３０分以内、好ましくはさらに１５分以内に注入され、残りは次の２〜３時間にわたり注入され得る。注射用製剤は、保存剤が添加された単位投薬形態として、例えば、アンプル又は複数投薬容器内に存在してもよい。組成物は、懸濁液、溶液又は油性若しくは水性ビヒクル中のエマルション等の形態をとってもよく、また懸濁剤、安定剤及び／又は分散剤等の調合剤を含有してもよい。代替として、活性成分は、使用前に好適なビヒクル、例えば無菌発熱性物質除去蒸留水により再構成するための粉末形態であってもよい。

追加的な薬学的方法を使用して、治療の組み合わせの作用期間が制御され得る。制御放出調製物は、投与される薬剤を錯化又は吸着するためのポリマーの使用により調製され得る。例えば、生体適合性ポリマーは、ポリ（エチレン−ｃｏ−酢酸ビニル）のマトリックス、並びにステアリン酸二量体及びセバシン酸のポリ無水物コポリマーのマトリックスを含む。Ｓｈｅｒｗｏｏｄｅｔａｌ．，Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ１０：１４４６（１９９２）。そのようなマトリックスからの放出速度は、治療薬剤の分子量、マトリックス中の薬剤の量、及び分散した粒子のサイズに依存する。Ｓａｌｔｚｍａｎｅｔａｌ．，Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｊ．５５：１６３（１９８９）；Ｓｈｅｒｗｏｏｄｅｔａｌ．，上記参照。他の固体投薬形態は、Ａｎｓｅｌｅｔａｌ．，ＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬＤＯＳＡＧＥＦＯＲＭＳＡＮＤＤＲＵＧＤＥＬＩＶＥＲＹＳＹＳＴＥＭＳ，５ｔｈＥｄｉｔｉｏｎ（Ｌｅａ＆Ｆｅｂｉｇｅｒ１９９０）、及びＧｅｎｎａｒｏ（ｅｄ．），ＲＥＭＩＮＧＴＯＮ’ＳＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬＳＣＩＥＮＣＥＳ，１８ｔｈＥｄｉｔｉｏｎ（ＭａｃｋＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇＣｏｍｐａｎｙ１９９０）、並びにそれらの改訂版に記載されている。

ｂｓＡｂ、インターフェロン及び／又はチェックポイント阻害剤抗体は、皮下で、又はさらに他の非経口経路により、例えば静脈内、筋肉内、腹腔内若しくは経脈管的に、哺乳動物に投与され得る。ＡＤＣは、静脈内、腹腔内又は経脈管的に投与され得る。さらに、投与は、持続注入により、又は単回若しくは複数回ボーラスによるものであってもよい。好ましくは、ｂｓＡｂ、ＡＤＣ、インターフェロン及び／又はチェックポイント阻害剤抗体は、約４時間未満の期間にわたり、より好ましくは約３時間未満の期間にわたり注入される。

より一般的には、ヒトに投与されるｂｓＡｂ、ＡＤＣ、インターフェロン及び／又はチェックポイント阻害剤抗体の用量は、患者の年齢、体重、身長、性別、全体的な医学的状態、及び既往歴に依存して変動する。単回静脈内注入として約１ｍｇ／ｋｇから２５ｍｇ／ｋｇの範囲内のｂｓＡｂ、ＡＤＣ及び／又は抗体の用量を受容者に提供することが望ましくなり得るが、状況により決定されるように、より低い、又はより高い用量が投与されてもよい。例えば、７０ｋｇの患者に対する１〜２０ｍｇ／ｋｇの用量は、７０〜１，４００ｍｇであり、又は、１．７ｍの患者に対して４１〜８２４ｍｇ／ｍ^２である。投薬は、必要に応じて反復されてもよく、例えば、４〜１０週間の間週１回、８週間の間週１回、又は４週間の間週１回であってもよい。また、維持療法において必要に応じて、より少ない頻度で、例えば数ヶ月の間１週間おきに、又は何ヶ月もの間月１回若しくは３ヶ月に１回で与えられてもよい。

代替として、ｂｓＡｂ、ＡＤＣ、及び／又はチェックポイント阻害剤抗体は、２週間又は３週間おきに１回の投薬として投与され、合計で少なくとも３回の投薬分繰り返されてもよい。または、組み合わせは、４〜６週間の間週２回投与されてもよい。用量が約２００〜３００ｍｇ／ｍ^２（１．７ｍの患者に対して投薬当たり３４０ｍｇ、又は７０ｋｇの患者に対して４．９ｍｇ／ｋｇ）に低下された場合、４〜１０週間の間週１回、さらには週２回投与されてもよい。代替として、投薬スケジュールは、減少されてもよく、すなわち、２〜３ヶ月の間２週間又は３週間毎であってもよい。しかしながら、より高い用量、例えば週１回又は２〜３週間毎に１回２０ｍｇ／ｋｇであっても、繰り返し投薬サイクルでゆっくりとした静脈内注入により投与され得ることが断定されている。投薬スケジュールは、随意に、他の間隔で繰り返されてもよく、投薬は、用量及びスケジュールを適切に調節して様々な非経口経路で行われてもよい。

当業者には、上で議論された投薬スケジュールはＡＤＣ、ｂｓＡｂ及び／又はｍＡｂに関連しているが、全身毒性を回避するために、インターフェロン薬剤は実質的により低い用量で投与されるべきであることが理解される。ヒトに対するインターフェロン（例えばペグインターフェロン）の用量は、より典型的にはマイクログラム範囲内であり、例えば、インターフェロンの種類に依存して、皮下投与で１８０μｇを週１回、又は皮下投与で１日おきに１００〜１８０μｇ、若しくは１３５μｇ、若しくは１３５μｇ／１．７３ｍ^２、若しくは９０μｇ／１．７３ｍ^２、若しくは２５０μｇが有用となり得る。

ｂｓＡｂ、インターフェロン、ＡＤＣ及び／又はチェックポイント阻害剤抗体は、定期的なボーラス注射として投与されてもよいが、代替の実施形態において、ｂｓＡｂ、ＡＤＣ、インターフェロン及び／又はチェックポイント阻害剤抗体は、持続注入により投与されてもよい。Ｃｍａｘを増加させ、血液中の治療薬剤のＰＫを延長するために、持続注入は、例えば留置カテーテルにより投与されてもよい。そのようなデバイスは、ＨＩＣＫＭＡＮ（登録商標）、ＢＲＯＶＩＡＣ（登録商標）又はＰＯＲＴ−Ａ−ＣＡＴＨ（登録商標）カテーテル等、当該技術分野において知られており（例えば、Ｓｋｏｌｎｉｋｅｔａｌ．，ＴｈｅｒＤｒｕｇＭｏｎｉｔ３２：７４１−４８，２０１０を参照されたい）、任意のそのような知られた留置カテーテルが使用され得る。また、様々な持続注入ポンプも当該技術分野において知られており、任意のそのような知られたポンプが使用され得る。持続注入のための用量範囲は、１日当たり０．１〜３．０ｍｇ／ｋｇの間であってもよい。より好ましくは、ｂｓＡｂ、ＡＤＣ、インターフェロン及び／又はチェックポイント阻害剤抗体は、２〜５時間、より好ましくは２〜３時間の比較的短い期間にわたり、静脈内注入により投与され得る。

好ましい実施形態において、薬剤の組み合わせは、がんの治療に有用である。がんの例は、癌腫、リンパ腫、膠芽腫、黒色腫、肉腫、及び白血病、骨髄腫、又はリンパ性悪性疾患を含むが、これらに限定されない。そのようながんのより具体的な例は、以下に示されるが、扁平上皮がん（例えば、上皮性扁平上皮がん（ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｓｑｕａｍｏｕｓｃｅｌｌｃａｎｃｅｒ））、ユーイング肉腫、ウィルムス腫瘍、星状細胞腫、小細胞肺がん、非小細胞肺がん、肺の腺癌及び肺の扁平上皮癌を含む肺がん、腹膜のがん、肝細胞がん、消化管がんを含む胃がん、膵臓がん、多形性膠芽腫、子宮頸がん、卵巣がん、肝臓がん、膀胱がん、肝がん、肝細胞癌、神経内分泌腫瘍、甲状腺髄様がん、分化甲状腺癌、乳がん、卵巣がん、結腸がん、直腸がん、子宮内膜がん又は子宮癌、唾液腺癌、腎臓がん又は腎がん、前立腺癌、外陰がん、肛門癌、陰茎癌、並びに頭頸部がんを含む。「がん」という用語は、原発性悪性細胞又は腫瘍（例えば、その細胞が対象の身体における元の悪性腫瘍若しくは腫瘍の部位以外の部位に移動していないもの）、及び続発性悪性細胞又は腫瘍（例えば、転移、元の腫瘍の部位とは異なる二次的部位への悪性細胞又は腫瘍細胞の移動から生じるもの）を含む。本発明の治療方法につながるがんは、ＩＧＦ−１Ｒを発現、過剰発現、又は異常発現する細胞を含む。

がん又は悪性腫瘍の他の例は、急性小児リンパ性白血病、急性リンパ性白血病、急性リンパ球性白血病、急性骨髄性白血病、副腎皮質癌；副腎、成人（原発性）肝細胞がん、成人（原発性）肝臓がん、成人急性リンパ球性白血病、成人急性骨髄性白血病、成人ホジキンリンパ腫、成人リンパ急性白血病、成人非ホジキンリンパ腫、成人原発性肝臓がん、成人軟部肉腫、ＡＩＤＳ関連リンパ腫、ＡＩＤＳ関連悪性腫瘍、肛門がん、星状細胞腫、胆管がん、膀胱がん、骨がん、脳幹グリオーマ、脳腫瘍、乳がん、腎盂及び尿管のがん、中枢神経系（原発性）リンパ腫、中枢神経系リンパ腫、小脳星状細胞腫、大脳星状細胞腫、子宮頸がん、小児（原発性）肝細胞がん、小児（原発性）肝臓がん、小児急性リンパ性白血病、小児急性骨髄性白血病、小児脳幹グリオーマ、小児小脳星状細胞腫、小児大脳星状細胞腫、小児頭蓋外胚細胞腫瘍、小児ホジキン病、小児ホジキンリンパ腫、小児視経路及び視床下部膠腫、小児リンパ性白血病、小児髄芽細胞腫、小児非ホジキンリンパ腫、小児テント上原始神経外胚葉性腫瘍、小児原発性肝臓がん、小児横紋筋肉腫、小児軟部肉腫、小児視経路及び視床下部膠腫、慢性リンパ球性白血病、慢性骨髄性白血病、直腸がん、皮膚Ｔ細胞性リンパ腫、内分泌膵島細胞癌、子宮内膜がん、上衣腫、上皮がん、食道がん、ユーイング肉腫及び関連腫瘍、外分泌膵臓がん、頭蓋外胚細胞腫瘍、性腺外胚細胞腫瘍、肝外胆管がん、眼がん、女性乳がん、ゴーシェ病、胆嚢がん、胃がん、消化管カルチノイド腫瘍、消化管腫瘍、胚細胞腫瘍、妊娠性絨毛腫瘍、ヘアリー細胞白血病、頭頸部がん、肝細胞がん、ホジキンリンパ腫、高ガンマグロブリン血、下咽頭がん、腸がん、眼内黒色腫、島細胞癌、島細胞膵臓がん、カポジ肉腫、腎臓がん、喉頭がん、口唇及び口腔がん、肝臓がん、肺がん、リンパ増殖性疾患、マクログロブリン血症、男性乳がん、悪性中皮腫、悪性胸腺腫、髄芽細胞腫、黒色腫、中皮腫、転移性の原発不明頸部扁平上皮がん、転移性原発性頸部扁平上皮がん、転移性頸部扁平上皮がん、多発性骨髄腫、多発性骨髄腫／形質細胞腫、骨髄異形成症候群、骨髄性白血病、骨髄性白血病（ＭｙｅｌｏｉｄＬｅｕｋｅｍｉａ）、骨髄増殖性障害、副鼻腔及び鼻腔がん、鼻咽腔がん、神経芽細胞腫、非ホジキンリンパ腫、非黒色腫皮膚がん、非小細胞肺がん、原発不明の転移性頸部扁平上皮がん、口腔咽頭がん、骨肉腫／悪性線維性肉腫、骨肉腫／悪性線維性組織球腫、骨肉腫／骨の悪性線維性組織球腫、上皮性卵巣がん、卵巣胚細胞腫瘍、卵巣低悪性度腫瘍、膵臓がん、異常タンパク血症、真性赤血球増加症、副甲状腺癌、陰茎がん、褐色細胞腫、下垂体部腫瘍、原発性中枢神経系リンパ腫、原発性肝臓がん、前立腺癌、直腸がん、腎細胞がん、腎盂及び尿管がん、網膜芽細胞腫、横紋筋肉腫、唾液腺癌、サルコイドーシス肉腫、セザリー症候群、皮膚がん、小細胞肺がん、小腸がん、軟部肉腫、頸部扁平上皮がん、胃がん、テント上原始神経外胚葉腫瘍及び松果体腫瘍、Ｔ細胞リンパ腫、精巣がん、胸腺腫、甲状腺癌、腎盂及び尿管の移行細胞がん、移行性腎盂及び尿管がん、絨毛性腫瘍、尿管及び腎盂細胞がん、尿道がん、子宮がん、子宮肉腫、膣がん、視覚伝導路及び視床下部グリオーマ、外陰がん、ワルデンシュトレームマクログロブリン血症、ウィルムス腫瘍、並びに、上に列挙された器官系に位置する新生組織形成以外の任意の他の過剰増殖性疾患を含むが、これらに限定されない。

本明細書において説明及び請求される方法及び組成物は、悪性又は前がん状態を治療するために、及び、上述のような障害を含むがそれらに限定されない新生物又は悪性状態への進行を予防するために使用され得る。そのような使用は、特に、過形成、化生、又は最も具体的には異形成からなる非腫瘍性細胞成長が生じている、新生組織形成又はがんへの進行に先立って知られている、又は疑われる状態に適応される（そのような異常成長状態の検討に関しては、ＲｏｂｂｉｎｓａｎｄＡｎｇｅｌｌ，ＢＡＳＩＣＰＡＴＨＯＬＯＧＹ，２ｄＥｄ．，Ｗ．Ｂ．ＳａｕｎｄｅｒｓＣｏ．，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ｐｐ．６８−７９（１９７６）を参照されたい）。

異形成は、多くの場合がんの前兆であり、主に上皮に見られる。これは、非腫瘍性細胞成長の最も無秩序な形態であり、個々の細胞均一性及び細胞の構造的配向の損失が関与する。異形成は、慢性的な刺激又は炎症が存在する場合に特徴的に生じる。治療され得る異形成障害は、無汗性外胚葉性異形成、前後異形成、窒息性胸郭異形成、心房指異形成、気管支肺異形成、脳異形成、子宮頸部異形成、軟骨外胚葉異形成、鎖骨頭蓋骨異形成、先天性外胚葉異形成、頭蓋骨幹異形成、頭蓋手根足根骨異形成、頭蓋骨幹端異形成、象牙質異形成、骨幹異形成、外胚葉異形成、エナメル質異形成、脳眼異形成、骨端半肢性異形成（ｄｙｓｐｌａｓｉａｅｐｉｐｈｙｓｉａｌｉｓｈｅｍｉｍｅｌｉａ）、多発性骨端異形成（ｄｙｓｐｌａｓｉａｅｐｉｐｈｙｓｉａｌｉｓｍｕｌｔｉｐｌｅｘ）、点状骨端異形成（ｄｙｓｐｌａｓｉａｅｐｉｐｈｙｓｉａｌｉｓｐｕｎｃｔａｔａ）、上皮異形成、顔面指趾生殖器異形成（ｆａｃｉｏｄｉｇｉｔｏｇｅｎｉｔａｌｄｙｓｐｌａｓｉａ）、家族性線維性顎異形成（ｆａｍｉｌｉａｌｆｉｂｒｏｕｓｄｙｓｐｌａｓｉａｏｆｊａｗｓ）、家族性白色襞性異形成（ｆａｍｉｌｉａｌｗｈｉｔｅｆｏｌｄｅｄｄｙｓｐｌａｓｉａ）、線維筋性異形成、線維性骨異形成、開花性骨性異形成（ｆｌｏｒｉｄｏｓｓｅｏｕｓｄｙｓｐｌａｓｉａ）、遺伝性腎網膜異形成（ｈｅｒｅｄｉｔａｒｙｒｅｎａｌ−ｒｅｔｉｎａｌｄｙｓｐｌａｓｉａ）、発汗性外胚葉異形成、発汗低下性外胚葉異形成、リンパ性減少性胸腺異形成（ｌｙｍｐｈｏｐｅｎｉｃｔｈｙｍｉｃｄｙｓｐｌａｓｉａ）、乳腺異形成、下顎顔面異形成、骨幹端異形成、モンディーニ異形成（Ｍｏｎｄｉｎｉｄｙｓｐｌａｓｉａ）、単骨性線維性骨異形成、粘膜上皮異形成（ｍｕｃｏｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｄｙｓｐｌａｓｉａ）、多発性骨端異形成、眼耳脊椎異形成（ｏｃｕｌｏａｕｒｉｃｕｌｏｖｅｒｔｅｂｒａｌｄｙｓｐｌａｓｉａ）、眼歯指異形成、眼脊椎異形成（ｏｃｕｌｏｖｅｒｔｅｂｒａｌｄｙｓｐｌａｓｉａ）、歯牙異形成（ｏｄｏｎｔｏｇｅｎｉｃｄｙｓｐｌａｓｉａ）、眼下顎四肢形成不全、根尖性セメント質異形成（ｐｅｒｉａｐｉｃａｌｃｅｍｅｎｔａｌｄｙｓｐｌａｓｉａ）、多骨性線維性骨異形成、偽軟骨発育不全脊椎骨端異形成（ｐｓｅｕｄｏａｃｈｏｎｄｒｏｐｌａｓｔｉｃｓｐｏｎｄｙｌｏｅｐｉｐｈｙｓｉａｌｄｙｓｐｌａｓｉａ）、網膜異形成、中隔視神経異形成、脊椎骨端異形成、及び心室橈骨異形成（ｖｅｎｔｒｉｃｕｌｏｒａｄｉａｌｄｙｓｐｌａｓｉａ）を含むが、これらに限定されない。

治療され得る追加の前腫瘍性障害は、良性の非増殖性疾患（例えば、良性腫瘍、線維嚢胞性状態、組織肥大、腸ポリープ又は腺腫、及び食道異形成）、白斑症、角化症、ボーエン病、農夫皮膚、日光口唇炎、並びに日光角化症を含むが、これらに限定されない。

好ましい実施形態において、本発明の方法は、がん、特に上に列挙されたものの成長、進行、及び／又は転移を阻害するために使用される。

追加の過剰増殖性疾患、障害及び／又は状態は、白血病（急性白血病（例えば、急性リンパ球性白血病、急性骨髄性白血病（骨髄芽球性、前骨髄球性、骨髄単球性、単球性、及び赤白血病を含む））及び慢性白血病（例えば、慢性骨髄性（顆粒球性）白血病及び慢性リンパ球性白血病）を含む）、真性多血症、リンパ腫（例えば、ホジキン病及び非ホジキン病）、多発性骨髄腫、ワルデンシュトレームマクログロブリン血症、重鎖病、並びに線維肉腫、粘液肉腫、脂肪肉腫、軟骨肉腫、骨肉腫、脊索腫、血管肉腫、内皮肉腫（ｅｎｄｏｔｈｅｌｉｏｓａｒｃｏｍａ）、リンパ管肉腫、リンパ管内皮肉腫（ｌｙｍｐｈａｎｇｉｏｅｎｄｏｔｈｅｌｉｏｓａｒｃｏｍａ）、滑膜腫、中皮腫、ユーイング腫瘍、平滑筋肉腫、横紋筋肉腫、結腸癌、膵臓がん、乳がん、卵巣がん、前立腺癌、扁平上皮癌、基底細胞癌、腺癌、汗腺癌、皮脂腺癌、乳頭部癌、乳頭腺癌、嚢胞腺癌、髄様癌、気管支原性肺癌、腎細胞癌、肝細胞がん、胆管癌、絨毛がん、精上皮腫、胚性癌、ウィルムス腫瘍、子宮頸がん、精巣腫瘍、肺癌、小細胞肺がん、膀胱がん、上皮性がん、神経膠腫、星状細胞腫、髄芽腫、頭蓋咽頭腫、上衣腫、松果体腫、血管芽腫、聴神経腫瘍、乏突起神経膠腫、髄膜腫、黒色腫、神経芽腫、及び網膜芽腫等の肉腫及び癌腫を含むがこれらに限定されない固形腫瘍等の悪性腫瘍及び関連障害の進行及び／又は転移を含むが、これらに限定されない。

発現ベクター
さらに他の実施形態は、抗体、抗体断片、サイトカイン又はｂｓＡｂの構成物質融合タンパク質、例えばＤＮＬ（商標）コンストラクトをコードする核酸を含むＤＮＡ配列に関連し得る。融合タンパク質は、例えば、ＡＤ又はＤＤＤ部分に結合した抗体又は断片又はサイトカインを含み得る。

様々な実施形態は、コードＤＮＡ配列を含む発現ベクターに関する。ベクターは、軽鎖及び重鎖定常領域、並びに、キメラ、ヒト化又はヒト可変領域配列が結合され得るヒト免疫グロブリンのヒンジ領域をコードする配列を含有することができる。ベクターは、追加的に、選択された宿主細胞におけるコードされたタンパク質を発現するプロモーター、エンハンサー、及びシグナル又はリーダー配列を含有し得る。特に有用なベクターは、ｐｄＨＬ２又はＧＳである。より好ましくは、軽鎖及び重鎖定常領域並びにヒンジ領域は、ヒトＥＵ骨髄腫免疫グロブリンからのものであってもよく、随意に、アロタイプ位置におけるアミノ酸の少なくとも１つが、異なるＩｇＧ１アロタイプにおいて見られるものに変更され、随意に、ＥＵ番号系に基づくＥＵの重鎖のアミノ酸２５３がアラニンで置き換えられてもよい。Ｅｄｅｌｍａｎｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．ＳｃｉＵＳＡ６３：７８−８５（１９６９）を参照されたい。他の実施形態において、ＩｇＧ１配列は、ＩｇＧ４配列に変換されてもよい。

当業者には、発現コンストラクトを遺伝子操作する方法、及び操作されたタンパク質を発現するための宿主細胞への挿入が、当該技術分野において周知であり、習慣的な実験の問題であることが理解される。宿主細胞及びクローニングされた抗体又は断片の発現の方法は、例えば、米国特許第７，５３１，３２７号、米国特許第７，５３７，９３０号、米国特許第７，７８５，８８０号、米国特許第８，０７６，４１０号、米国特許第８，１５３，４３３号及び米国特許第８，３７２，６０３号に記載されており、それぞれの実施例の項は、参照により本明細書に組み込まれる。

キット
様々な実施形態は、患者における疾患組織の治療又は診断に好適な成分を含有するキットに関連し得る。例示的なキットは、本明細書に記載のような１種以上のｂｓＡｂ、ＡＤＣ、インターフェロン、及び／又はチェックポイント阻害剤抗体を含有し得る。投与用の成分を含有する組成物が、例えば経口送達による消化管からの送達用に製剤化されていない場合、いくつかの他の経路を介してキット成分を送達することができるデバイスが含まれてもよい。非経口送達等の用途のためのデバイスの１つの種類は、組成物を対象の身体内に注射するために使用されるシリンジである。吸入デバイスもまた使用され得る。ある特定の実施形態において、治療薬剤は、無菌液体製剤又は凍結乾燥調製物を含有する、事前に充填されたシリンジ又はオートインジェクションペンの形態で提供されてもよい。

キット成分は、一緒に包装されてもよく、又は、２つ以上の容器内に分けられてもよい。いくつかの実施形態において、容器は、再構成に好適な組成物の無菌凍結乾燥製剤を含有するバイアルであってもよい。キットはまた、他の試薬の再構成及び／又は希釈に好適な１種以上の緩衝剤を含有してもよい。使用され得る他の容器は、パウチ、トレイ、箱、管等を含むが、これらに限定されない。キット成分は、容器内に包装され、滅菌状態で維持されてもよい。含まれてもよい別の成分は、キットを使用する者に対する、その使用に関する指示である。

以下の実施例は、本発明の特許請求の範囲を例示するために提供され、それを制限するために提供されるのではない。

実施例１．Ｔ細胞再指向二重特異性抗体ＤＯＣＫ−ＡＮＤ−ＬＯＣＫ（商標）（ＤＮＬ（商標））複合物
例示的な白血球再指向二重特異性抗体のいくつかの種を、後述のようにＤＮＬ（商標）複合物として作製した。複合物は、適切な標的細胞に対する免疫反応を誘導するのに効果的であった。

材料及び方法
ＤＯＣＫ−ＡＮＤ−ＬＯＣＫ（商標）（ＤＮＬ（商標））複合物を作製及び使用するための一般的技術を、以下の実施例において説明する。ＣＤ３及びＣＤ１９に対する結合部位を有する例示的な白血球再指向二重特異性抗体を、（１９）−３ｓと呼ばれるＤＮＬ（商標）複合物として作製した（図１）。Ｆｄ鎖のカルボキシル末端における二量体化及びドッキングドメイン（ＤＤＤ２）の組換え融合により、抗ＣＤ１９Ｆ（ａｂ）_２ＤＮＬモジュールを構築した。抗ＣＤ３−ｓｃＦｖモジュールは、Ｏｋｔ３ｍＡｂからアンカードメイン（ＡＤ２）を付加して設計され、Ｖ_Ｈ−Ｌ１−Ｖ_Ｋ−Ｌ２−６Ｈ−Ｌ３−ＡＤ２（「６Ｈ」は配列番号１０５として開示される）の形式でアセンブルされたが、Ｖドメインは、柔軟なペプチドリンカーを介して融合され、ＡＤ２ペプチドの前に６−Ｈｉｓリンカー（配列番号１０５）が先行している。抗ＣＤ３可変領域、リンカー及びＡＤ２の配列は、以下に示す通りであった。

発現ベクター及びＤＮＬ（商標）モジュール−一般に（Ｘ）−３ｓｂｓＡｂと省略される抗ＣＤ３抗体部分に連結した様々な疾患関連抗原に対する抗体部分を含むＤＮＬ（商標）複合物を構築した。ＳｐＥＳＦＸ−１０マウス骨髄腫細胞において、（Ｘ）−３ｓｂｓＡｂを作製するために使用されたＤＮＬ（商標）モジュールのそれぞれに対して、独立した生成細胞株を成長させた（Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２０１１，ＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌＰｒｏｇ２７：７６６−７５）。Ｏｋｔ３ｓｃＦｖ−ＡＤ２ポリペプチド（配列番号９６〜１０１）をコードするｃＤＮＡ配列を合成し、５’ＸｂａＩ及び３’ＥａｇＩ制限部位を介してｐｄＨＬ２発現ベクターにクローニングした。コンストラクトは、構造Ｖ_Ｈ−Ｌ１−Ｖ_Ｋ−Ｌ２−６Ｈ−Ｌ３−ＡＤ２（「６Ｈ」は、配列番号１０５として開示されている）を有するｓｃＦｖにおけるＶ_Ｌに融合されたＶ_Ｈドメインを含んでいた。発現したタンパク質は、元のＯｋｔ３ｍＡｂからの２つのアミノ酸置換を有していた。ＣＤＲ−Ｈ３内のシステイン残基は、セリンに変更された（Ｋｉｐｒｙａｎｏｖ，１９９７，ＪＩｍｍｕｎｏｌＭｅｔｈｏｄｓ２００：６９−７７）。Ｖ_Ｌの最後から２番目の残基は、アスパラギン酸塩からリシンに変更された。

Ｏｋｔ３ｓｃＦｖ−ＡＤ２モジュールを、様々なＣ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂモジュールと組み合わせて、（Ｘ）−３ｓ三価ｂｓＡｂのパネルを生成した（表６）。Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｐｄＨＬ２発現ベクターを、同様のコンストラクトに関して以前に説明されたように構築した（Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２００８，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ６８：８３８４−９２）。簡潔に説明すると、Ｃ_Ｈ１−ヒンジ−Ｃ_Ｈ２−Ｃ_Ｈ３ドメインのコード配列を、ＳａｃＩＩ及びＥａｇＩ制限酵素で切断し、これを、Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＡ２０−ｐｄＨＬ２発現ベクターから同じ酵素で切断されたＣ_Ｈ１−ＤＤＤ２（Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２００８，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ６８：８３８４−９２）をコードする５０７ｂｐ配列と置き換えることにより、Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂをコードする発現ベクターを、対応するＩｇＧ−ｐｄＨＬ２発現ベクターから生成した。Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂモジュールは、ヒト化ｍＡｂｈＡ１９（抗ＣＤ１９）、ラベツズマブ（ｈＭＮ−１４、抗ＣＥＡＣＡＭ５）、クリバツズマブ（ｈＰＡＭ４、抗ムチン）、ｈＭＮ−１５（抗ＣＥＡＣＡＭ６）、ｈＲＳ７（抗ＴＲＯＰ−２）、ベルツズマブ（ｈＡ２０、抗ＣＤ２０）、ｈＬ２４３（抗ＨＬＡ−ＤＲ）及びエプラツズマブ（ｈＬＬ２、抗ＣＤ２２）から得られた。ｈＡ１９で指定されるｍＡｂは、マウス抗ＣＤ１９ｍＡｂＢ４３からヒト化された（Ｕｃｋｕｎｅｔａｌ．，１９８８，Ｂｌｏｏｄ７１：１３−２９）。それぞれの発現ベクターを、ＳａｌＩ制限酵素での消化により線形化し、エレクトロポレーションによるＳｐＥＳＦＸ−１０細胞のトランスフェクションに使用した。

０．２μＭメトトレキセート（ＭＴＸ）を含有する培地中でクローンを選択し、ＥＬＩＳＡによりタンパク質発現に関してスクリーニングした。Ｏｋｔ３ｓｃＦｖ−ＡＤ２を、Ｎｉ−ＮＴＡＨｉｓＳｏｒｂプレート（Ｑｉａｇｅｎ）上に捕捉し、抗ＡＤ２ｍＡｂで検出した。Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂモジュールを、ヤギ−抗ヒト−カッパ鎖で捕捉し、ヤギ−抗ヒト−Ｆ（ａｂ’）_２−ＨＲＰで検出した。タンパク質発現の生産性を、３μＭまでのＭＴＸ濃度の段階的増加により増幅した。Ｏｋｔ３ｓｃＦｖ−ＡＤ２及びＣ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂモジュールを、それぞれＮｉ−ＳＥＰＨＡＲＯＳＥ（登録商標）及びＫａｐｐａ−Ｓｅｌｅｃｔ樹脂を使用した親和性クロマトグラフィーにより、ローラーボトル培養のブロスから均一となるまで精製した。ＤＮＬ（商標）法を使用して、モル当量のＯｋｔ３ｓｃＦｖ−ＡＤ２及びＣ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂモジュールの部位特異的複合化により（Ｘ）−３ｓｂｓＡｂをアセンブルした。例えば、２２ｍｇのＯｋｔ３ｓｃＦｖ−ＡＤ２を８０ｍｇのＣ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＡ１９と組み合わせることにより、約１００ｍｇの（１９）−３ｓを生成した。２ｍＭの酸化グルタチオンの添加の前に、１ｍＭの還元グルタチオンにより、混合物を室温で一晩還元した。Ｋａｐｐａ−Ｓｅｌｅｃｔ及びＮｉ−ＳＥＰＨＡＲＯＳＥ（登録商標）での逐次的親和性クロマトグラフィーにより、反応混合物から（１９）−３ｓを精製した。追加的な（Ｘ）−３ｓコンストラクトを、同様のプロセスに従い、様々な規模でアセンブルした。

分析方法−ＢＩＯＳＵＩＴＥ（商標）２５０、４μｍＵＨＲＳＥＣカラム（ＷａｔｅｒｓＣｏｒｐ）を備えるＡｌｌｉａｎｃｅＨＰＬＣＳｙｓｔｅｍを用いて、サイズ排除高速液体クロマトグラフィー（ＳＥ−ＨＰＬＣ）を行った。６２１０ＴＯＦＭＳ（ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、ＳａｎｔａＣｌａｒａ、ＣＡ）と連結した１２００シリーズＨＰＬＣを用いて、エレクトロスプレーイオン化飛行時間（ＥＳＩ−ＴＯＦ）液体クロマトグラフィー／質量分析（ＬＣ−ＭＳ）を行った。Ａｅｒｉｓｗｉｄｅｐｏｒｅ３．６μｍＣ４カラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ）を用い、０．１％ギ酸水溶液中の３０〜８０％アセトニトリルの１４分勾配を使用して、（１９）−３ｓを、逆相ＨＰＬＣ（ＲＰ−ＨＰＬＣ）により６０℃で分離した。ＴＯＦＭＳにおいて、キャピラリ及びフラグメンター電圧は、それぞれ５５００及び３００Ｖに設定した。

細胞株及び試薬−Ｒａｊｉ、Ｒａｍｏｓ、Ｄａｕｄｉ、ＬＳ１７４Ｔ及びＣａｐａｎ−１細胞株を、ＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｅｌｌＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ、Ｍａｎａｓｓａｓ、ＭＤ）から購入し、Ｎａｌｍ−６細胞を、ＤｅｕｔｓｃｈｅＳａｍｍｌｕｎｇｖｏｎＭｉｋｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｅｎｕｎｄＺｅｌｌｉｎｉｅｎ（ＤＳＭＺ、Ｂｒａｕｎｃｈｗｅｉｇ、Ｇｅｒｍａｎｙ）から購入した。Ｃａｐａｎ−１以外の全ての細胞株を、１０％ＦＢＳ、１％Ｌ−グルタミン、１％ペニシリン−ストレプトマイシン及び１％ＭＥＭ非必須アミノ酸を含有するＲＰＭＩ−１６４０中に維持した。Ｃａｐａｎ−１細胞は、２０％ＦＢＳで維持した。全ての細胞培養培地及び補助物質は、ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）から購入した。

ＰＢＭＣ及びＴ細胞単離−ＵＮＩ−ＳＥＰ_ＭＡＸＩ管（Ｎｏｖａｍｅｄ，Ｌｔｄ、Ｊｅｒｕｓａｌｅｍ、Ｉｓｒａｅｌ）を使用して、ヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）をドナー全血（ＢｌｏｏｄＣｅｎｔｅｒｏｆＮＪ、ＥａｓｔＯｒａｎｇｅ、ＮＪ）から精製した。製造者のプロトコルに従い、ＰａｎＴＣｅｌｌＩｓｏｌａｔｉｏｎＫｉｔ（ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ、Ａｕｂｕｒｎ、ＣＡ）を使用して、陰性選択によりＣＤ３陽性Ｔ細胞をＰＢＭＣから単離した。抗ＣＤ３−ＰＥ抗体により濃縮Ｔ細胞を染色した後、Ｔ細胞単離の効率をＦＡＣＳにより評価した。いくつかの場合において、汚染細胞を特定するために、ＣＤ−１９及びＣＤ−１４によるさらなる染色もまた行った。

Ｔ細胞活性化−単離されたＴ細胞を、２．２５×１０^６細胞／ウェルの最終濃度で６ウェル組織培養プレートに播種した。Ｄａｕｄｉ細胞をいくつかのウェルに１．５×１０^６細胞／ウェルの最終濃度で添加し、他のウェルはＴ細胞のみを含有したままとした。代替として、ＰＢＭＣを６ウェル組織培養プレートに６×１０^６細胞／ウェルの最終細胞密度で添加した。各ウェルの体積を、３ｍＬとした。適切なウェルに、３ｎｇ／ｍＬの（１９）−３ｓ、（Ｍ１）−３ｓ又は（１９）−ＤＤＤ２を添加した。３７℃で一晩のインキュベーション後、各試料の１ｍＬを取り出した。細胞をペレット化し、氷上で２０分間ＣＤ６９−ＡＰＣ及びＣＤ３−ＰＥで標識化した。細胞をＰＢＳ中１％ＢＳＡで２回洗浄し、ＦＡＣＳＣＡＬＩＢＥＲ（商標）フローサイトメーター（ＢＤＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、ＳａｎＪｏｓｅ、ＣＡ）を使用して分析した。

Ｔ細胞増殖−ＰＢＭＣを、１×１０^６細胞／ｍＬの濃度で、指定の試薬を含有するＴ２５フラスコ内に播種した。Ｂ細胞枯渇フラスコに対しては、製造者のプロトコルに従いＭｉｌｔｅｎｙｉからのＢ細胞単離キットを使用して、陰性選択によりＢ細胞を除去した。選択された日に、１００μＬの培地を各フラスコから取り出し、氷上で２０分間抗ＣＤ７−ＡＰＣで標識化し、１回洗浄し、７−ＡＡＤを含有する３００μＬの１％ＢＳＡ／ＰＢＳ中に再懸濁させた。各試料に対して、ＦＡＣＳＣＡＬＩＢＥＲ（商標）フローサイトメーターを使用して全体積を分析する。各試料は、２回計数する。分析は、ＦｌｏｗＪｏＳｏｆｔｗａｒｅを使用して行う。各試料に対して、死滅した（７−ＡＡＤ＋）細胞及び残屑（前方対側方散乱に基づく）を除去した。最後に、生存ＣＤ７＋細胞を選択し、Ｐｒｉｓｍソフトウェアを使用してプロットした。

細胞結合アッセイ（Ｊｕｒｋａｔ／Ｃａｐａｎ−１）−Ｊｕｒｋａｔ細胞を、製造者のプロトコルに従い、ＰＫＨ２６ＲｅｄＦｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔＣｅｌｌＬｉｎｋｅｒＫｉｔ（Ｓｉｇｍａ）で染色した。Ｃａｐａｎ−１細胞を、製造者のプロトコルに従い、５μＭのＣＦＳＥ（カルボキシフルオレセインジアセテートスクシンイミジルエステル、ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）で染色した。標識化されたＣａｐａｎ−１細胞を、８ウェルチャンバスライド（ＴｈｅｒｍｏＷａｌｔｈａｍ、ＭＡ）に加え、一晩付着させた。翌日、培地を取り出し、０．１μｇ／ｍＬの（Ｅ１）−３ｓ、（Ｍ１）−３ｓ又は（１９）−３ｓを含有する培地に、ＰＫＨ２６標識化Ｊｕｒｋａｔ細胞を添加した。３７℃で１時間のインキュベーション後、スライドをＰＢＳで洗浄していかなる未結合細胞も除去し、蛍光顕微鏡により観察した。

細胞結合アッセイ（Ｊｕｒｋａｔ／Ｄａｕｄｉ）−Ｊｕｒｋａｔ及びＤａｕｄｉ細胞を、それぞれ抗ＣＤ３−ＰＥ及び抗ＣＤ２０−ＦＩＴＣで標識化した。次いで、標識化された細胞を、０．１μｇ／ｍＬ（１９）−３ｓと、２．５：１の比で室温で３０分間共インキュベートした。次いで、細胞のアリコートを、蛍光顕微鏡により観察した。

細胞毒性アッセイ（血液系腫瘍細胞株）−製造者のプロトコルに従い、標的細胞をＰＫＨ６７ＧｒｅｅｎＦｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔＣｅｌｌＬｉｎｋｅｒＫｉｔ（Ｓｉｇｍａ）で標識化した。簡潔に説明すると、５×１０^６標的細胞を、２５０μＬの希釈剤Ｃ中に再懸濁させた。第２の管内で、１μＬのＰＫＨ２６染料を２５０μＬの希釈剤Ｃに添加する。次いで、細胞懸濁液を染料溶液に添加し、完全に混合し、室温で２分間インキュベートする。等体積のＦＢＳを添加することにより、反応をクエンチした。次いで、標識化された細胞を、完全ＲＰＭＩで３回洗浄した。非刺激単離Ｔ細胞を、エフェクター細胞として使用した。エフェクター細胞及びＰＫＨ６７標識化標的細胞を、１０：１の比で組み合わせ、（１９）−３ｓ又は（１４）−３ｓの連続希釈物を含有する４８ウェルプレートに播種した。各ウェルは、５×１０^４標的細胞及び５×１０^５エフェクター細胞を含有した。２０％ＲＰＭＩ中でＪｅｋｏ−１アッセイを行った。５％ＣＯ_２を含有する３７℃のインキュベーター内で、プレートを１８〜２４時間インキュベートした。インキュベーション後、全ての細胞を４８ウェルプレートからフローサイトメーター管内に取り出し、死滅した細胞から生存細胞を区別するための１ｕｇ／ｍＬの７ＡＡＤ、及び３０，０００のＣＯＵＮＴＢＲＩＧＨＴ（商標）ＡｂｓｏｌｕｔｅＣｏｕｎｔｉｎｇＢｅａｄｓ（ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を含有する１％ＢＳＡ／ＰＢＳ中に再懸濁させた。ＦＡＣＳＣＡＬＩＢＥＲ（商標）フローサイトメーター上で細胞を分析した。各試料に対して、８，０００のＣＯＵＮＴＢＲＩＧＨＴ（商標）ビーズを、正規化された参照として計数した。ＦｌｏｗＪｏソフトウェア（Ｔｒｅｅｓｔａｒ，Ｉｎｃ．、Ａｓｈｌａｎｄ、ＯＲ）を使用してデータを分析した。各試料に対して、死滅した細胞及び残屑を除外し、全生存標的細胞を計数した。

細胞毒性アッセイ（固形腫瘍細胞株）−ＰＫＨ２３による染色の場合と同じ手順に従い、標的細胞をＰＫＨ６７ＧｒｅｅｎＦｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔＣｅｌｌＬｉｎｋｅｒＫｉｔ（Ｓｉｇｍａ）で標識化した。使用されたエフェクター細胞は、以下の通りであった：Ｃａｐａｎ−１分析においては、ＣＤ８＋濃縮カラム（Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓ、Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ、ＭＮ）からの精製後に、ＣＤ８＋濃縮Ｔ細胞を使用した。ＬＳ１７４Ｔ細胞に対しては、２５Ｕ／ｍＬＩＬ−２及び５０ｎｇ／ｍＬＯｋｔ３Ｍａｂを含有する培地中で５日間のＰＢＭＣのインキュベーションに続く、２５Ｕ／ｍＬＩＬ−２のみを含有する培地中で２日間のインキュベーション後に、刺激Ｔ細胞を使用した。エフェクター細胞及びＰＫＨ６７標識化標的細胞を、３：１の比（５×１０^４の標的細胞及び１．５×１０^５のエフェクター細胞／ウェル）で組み合わせ、（Ｅ１）−３ｓ、（１４）−３ｓ又は（１９）−３ｓの連続希釈物を含有する４８ウェルプレート上に播種した。２０％ＲＰＭＩ中でＣａｐａｎ−１アッセイを行った。５％ＣＯ_２を含有する３７℃のインキュベーター内で、プレートを４２〜４８時間インキュベートした。インキュベーション後、懸濁細胞を、全てのウェルからのトリプシン処理付着細胞と組み合わせ、フローサイトメーター管内に移した。細胞を１回洗浄し、死滅した細胞から生存細胞を区別するための１ｕｇ／ｍＬの７ＡＡＤ、及び３０，０００のＣＯＵＮＴＢＲＩＧＨＴ（商標）ＡｂｓｏｌｕｔｅＣｏｕｎｔｉｎｇＢｅａｄｓを含有する１％ＢＳＡ／ＰＢＳ中に再懸濁させた。ＦＡＣＳＣＡＬＩＢＥＲ（商標）フローサイトメーター上で細胞を分析した。各試料に対して、８，０００のＣＯＵＮＴＢＲＩＧＨＴ（商標）ビーズを、正規化された参照として計数した。ＦｌｏｗＪｏソフトウェア（Ｔｒｅｅｓｔａｒ，Ｉｎｃ．、Ａｓｈｌａｎｄ、ＯＲ）を使用してデータを分析した。各試料に対して、死滅した細胞及び残屑を除外し、全生存標的細胞を計数した。

ＩｎＶｉｖｏ効力−８週齢の雌ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスを、ＣｈａｒｌｅｓＲｉｖｅｒ（Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＭＡ）から購入した。マウスに、マトリゲルと１：１で混合されたＲａｊｉ（１×１０^６）及びヒトＰＢＭＣ（５×１０^６細胞）の混合物を皮下注射した。１時間後に治療を開始した。治療計画、用量、及び各実験における動物の数は、結果に記載される。腫瘍増殖の兆候について、動物を毎日監視した。腫瘍が出現したら、それを週２回測定した。腫瘍体積（ＴＶ）は、キャリパーを使用して２つの寸法の測定により決定されたが、体積は、Ｌ×ｗ^２／２として定義され、式中、Ｌは、腫瘍の最長寸法であり、ｗは最短寸法である。効力は、１．０ｃｍ^３への腫瘍進行時間（ＴＴＰ）として生存代用評価項目を使用し、Ｋａｐｌａｎ−Ｍｅｉｅｒ曲線上でＰｒｉｓｍＧｒａｐｈＰａｄソフトウェア（ｖ５；ＬａＪｏｌｌａ、ＣＡ）を使用したログランク検定により決定された。有意性は、Ｐ＜０．０５で考慮された。

結果
白血球再指向二重特異性抗体の構築及び生化学的分析。ＤＮＬ（商標）法を使用して、（Ｘ）−３ｓ、ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＨＬＡ−ＤＲ、ＴＲＯＰ−２、ＣＥＡＣＡＭ５及びＭＵＣ５ＡＣを含む様々な腫瘍関連抗原の標的化のための白血球再指向ｂｓＡｂのパネルを生成した。これらの構造の純度は、ＳＥ−ＨＰＬＣ及びＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析により実証されたが、３つの構成ポリペプチド（Ｏｋｔ３ｓｃＦｖ−ＡＤ２、ｈＡ１９−Ｆｄ−ＤＤＤ２及びｈＡ１９カッパ）を表すバンドのみが明らかであった（データは示さず）。ＬＣ−ＭＳ分析では、Ｏｋｔ３ｓｃＦｖ−ＡＤ２及び２つのＣ_Ｈ１−ＤＤＤ２−ｈＡ１９Ｆｄ鎖のそれぞれにおける予測アミノ末端ピログルタミン酸（データは示さず）を含む、その推定アミノ酸配列からの（１９）−３ｓの計算質量（１３７４３２．３７Ｄａ）と一致する（質量精度＝１１ｐｐｍ）デコンボリューションされた質量スペクトルを有する単一のＲＰ−ＨＰＬＣピークが特定された。グリコシル化を含む追加的な翻訳後修飾は示されなかった。

（１９）−３ｓにより媒介される、ＤａｕｄｉＢｕｒｋｉｔｔリンパ腫とＴ細胞との間の免疫シナプス形成。エフェクターＴ細胞のＣＤ１９^＋リンパ腫細胞への標的化に対する白血球再指向（１９）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物の効果を検査した（図２）。新しく単離されたＴ細胞を、２．５：１のＥ：Ｔ比でＤａｕｄｉ細胞と組み合わせた。細胞を０、１又は５μｇ／ｍＬの（１９）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物で室温で３０分間処理してから、フローサイトメトリーにより分析した。抗ＣＤ２０−ＦＩＴＣ及び抗ＣＤ７−ＡＰＣを使用して、それぞれＤａｕｄｉ及びＴ細胞を特定した。同時結合は、ＣＤ２０^＋／ＣＤ７^＋イベントの％として示された。（１９）−３ｓでの処理後、抗体を含まない混合細胞に対して測定された２％と比較して（図２Ｂ）、フローイベントの４５．５％がＣＤ２０／ＣＤ７二重陽性であり、シナプス形成したＤａｕｄｉ及びＴ細胞を示していた（図２Ａ）。（１９）−３ｓを添加することにより、Ｄａｕｄｉの９０％超がＴ細胞と結合した（図２Ｃ）。これらの結果は、（１９）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物が、Ｔ細胞を標的化抗原発現リンパ腫細胞に指向させるのに効果的であったことを示す。

Ｔ細胞と標的リンパ腫細胞との間のシナプス形成は、蛍光顕微鏡により実証された（図３）。Ｊｕｒｋａｔ（Ｔ細胞）及びＤａｕｄｉ（Ｂ細胞）を１：１の比で組み合わせ、０．１μｇ／ｍＬの（１９）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物で３０分間処理し、抗ＣＤ２０−ＦＩＴＣ（図３Ａ）及び抗ＣＤ３−ＰＥ（図３Ｂ）で染色してから、蛍光顕微鏡により分析した。合成画像（図３Ｃ）は、緑色に染色されたＤａｕｄｉと赤色に染色されたＪｕｒｋａｔ細胞との間のシナプス形成を明らかにしている。（１９）−３ｓが存在しない場合、シナプス形成は明らかではなかった（図３Ｄ）。図３Ｃは、標的リンパ腫細胞が標的化Ｔ細胞と直接接触していることを示している。

例示的Ｂ細胞リンパ腫株に対するＴ細胞の（１９）−３ｓ媒介結合に関して、一連の用量−反応を行った（図４）。図４に示されるように、この実験の条件下で、標的細胞に対するＴ細胞の（１９）−３ｓ−媒介細胞間結合の飽和が、０．０３７〜０．１１１μｇ／ｍｌの間のＤＮＬ（商標）複合物濃度で達成された。

図５は、Ｔ細胞を標的化ＣＤ１９^＋Ｂ細胞に再指向させるための、ＢＩＴＥ（登録商標）（図５Ａ）、ＤＡＲＴ（商標）（図５Ａ）及びＤＮＬ（商標）（図５Ｂ）抗ＣＤ３×抗ＣＤ１９複合物の相対的効用の比較を示す。ＢＩＴＥ（登録商標）及びＤＡＲＴ（商標）のデータは、Ｍｏｏｒｅら（２０１１，Ｂｌｏｏｄ１１７：４５４２−５１）から得られた。試験された０．０００５μｇ／ｍｌの最低濃度において、（１９）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物は、Ｂ細胞リンパ腫へのＴ細胞の標的化において、ＢＩＴＥ（登録商標）又はＤＡＲＴ（商標）よりも効果的であった（図５）。（１９）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物はまた、匹敵するＢＩＴＥ（登録商標）及びＤＡＲＴ（商標）複合物（図５Ａ）よりも若干高い細胞間結合の最大レベルを誘導した。（１９）−３ｓＤＮＬ（商標）複合物に対して作成された単一データ点から外挿するのは困難であるが、ＥＣ_５０レベルは、ＢＩＴＥ（登録商標）、ＤＡＲＴ（商標）及びＤＮＬ（商標）に対して同様であるようであった（図５）。

標的腫瘍細胞に対するＴ細胞の（１９）−３ｓ、（Ｅ１）−３ｓ及び（Ｍ１）−３ｓ−媒介細胞間結合。標的腫瘍細胞に対するＴ細胞の結合を促進するＴ細胞再指向ＢｓＡｂの能力を評価するために、ＪｕｒｋａｔＴ細胞を、（Ｘ）−３ｓを含有する標的腫瘍細胞と共インキュベートし、フローサイトメトリー及び蛍光顕微鏡により評価した。ＪｕｒｋａｔＴ細胞は、ＣＤ４＋Ｔ細胞白血病株であり、様々な濃度の（１９）−３ｓの存在下でＦＩＴＣ標識化Ｄａｕｄｉ細胞の枯渇なしでＴ細胞結合を示す能力のために選択され、Ｔ細胞−Ｂ細胞結合複合物を示す二重陽性（ＣＤ３＋ＣＤ２０＋）集団の検出についてフローサイトメトリーにより分析される。０．５ｎｇ／ｍＬの（１９）−３ｓでの処理後に明らかな細胞間結合が観察され、０．１μｇ／ｍＬでの処理後に、細胞集団の２５％超が、細胞間結合において存在した（図５）。免疫シナプスが０．１μｇ／ｍＬの（１９）−３ｓによる処理後に明確であるため、蛍光顕微鏡はこのデータを裏付けている（図４）。（１９）−３ｓの非存在下では、シナプス形成は観察されなかった（データは示さず）。

この細胞間結合は、膵臓腫瘍株Ｃａｐａｎ−１においても同様に観察された（図６）。Ｃａｐａｎ−１は、高レベルのＴＲＯＰ２及び中レベルのＭＵＣ５ＡＣを発現する。したがって、ＴＲＯＰ２標的化ｂｓＡｂ、（Ｅ１）−３ｓ（図６Ｃ）、及びＭＵＣ５ＡＣ標的化ｂｓＡｂ、（Ｍ１）−３ｓ（図６Ｂ）の両方を、非標的化対照ｂｓＡｂ、（１９）−３ｓ（図６Ａ）と比較した。ＣＦＳＥ標識化Ｃａｐａｎ−１細胞は、これらのｂｓＡｂの存在下でＰＫＨ２６標識化Ｊｕｒｋａｔと共インキュベートされた。予測されるように、蛍光顕微鏡は、（Ｅ１）−３ｓにより媒介される大型のＴ細胞／Ｃａｐａｎ複合物に続く、（Ｍ１）−３ｓにより媒介されるより小さいが実質的な複合物、及び（１９）−３ｓ処理後の比較的低い複合物形成を明らかにした（図６）。

（１９）−３ｓは、Ｔ細胞活性化及び増殖を特異的に誘導する。Ｔ細胞活性化の初期マーカーであるＣＤ６９の発現レベルを測定することにより、Ｔ細胞を活性化する（１９）−３ｓの能力を、ＰＢＭＣ（図７Ａ）、又はＤａｕｄｉＢ細胞と共インキュベートされたＴ細胞（図７Ｂ）中で評価した。非標的化対照抗体、（１９）−ＤＤＤ２及び（Ｍ１）−３ｓ、並びにＤａｕｄｉ標的細胞なしで（１９）−３ｓで処理されたＴ細胞と比較して、ＣＤ６９発現の５０倍を超える増加により示されるように、３ｎｇ／ｍＬの（１９）−３ｓによる処理は、ＤａｕｄｉＢ細胞と共インキュベートされたＴ細胞中でＴ細胞活性化を誘導した（図７Ｂ）。抗体がＴ及びＢ細胞の両方を含有するＰＢＭＣとインキュベートされた場合も同様の結果が観察され；（１９）−３ｓは、非標的化対照よりも２０倍超高いＣＤ６９発現レベルを刺激した（図７Ａ）。標的細胞の非存在下では、（１９）−３ｓで処理された精製Ｔ細胞は、活性化を示さなかった（図７Ｃ）。

Ｔ細胞活性化の別の指標としてのＴ細胞増殖を、様々なＣＤ３標的化抗体によるＰＢＭＣの処理後に評価した。３ｎＭ又は３０ｐＭの（１９）−３ｓは、陽性対照ＩＬ−２／ＰＨＡのＴ細胞増殖と同様のＴ細胞増殖を誘導した（図８Ａ）。非標的化対照抗体（１４）−３ｓは、最高（３ｎＭ）濃度である程度の非特異的Ｔ細胞増殖を示す（図８Ａ）。しかしながら、Ｔ細胞増殖は、Ｂ細胞が枯渇したＰＢＭＣにおいて観察されず（図８Ｂ）、特異的（１９）−３ｓ誘導Ｔ細胞増殖には標的細胞が必要であることを示唆していた。

悪性細胞株の（Ｘ）−３ｓ再指向Ｔ細胞媒介性の死滅。各白血球標的化分子の細胞毒性を、特定の腫瘍標的細胞の溶解を媒介するその能力により評価した。血液系腫瘍細胞系に対して、１８〜２４時間アッセイにおいてエフェクター細胞としての非刺激濃縮Ｔ細胞集団を使用した１０：１のＥ：Ｔ比は、最適アッセイ条件を示した。ＣＤ１９標的化ｂｓＡｂ（１９）−３ｓは、比較的低いＣＤ１９発現細胞株Ｒａｍｏｓ（ＩＣ_５０＝０．１７ｐＭ、Ｌｙｓｉｓ_Ｍａｘ＝７９％）、Ｄａｕｄｉ（ＩＣ_５０＝１ｐＭ、Ｌｙｓｉｓ_Ｍａｘ＝６０％）、及びＮａｌｍ６（ＩＣ_５０＝６ｐＭ、Ｌｙｓｉｓ_Ｍａｘ＝９３％）の最も強力な特異的死滅を誘導した（図９Ａ）。興味深いことに、高ＣＤ１９発現細胞株Ｎａｍａｌｗａ（ＩＣ_５０＝６３ｐＭ、Ｌｙｓｉｓ_Ｍａｘ＝６０％）及びＲａｊｉ（ＩＣ_５０＝３ｎＭ、Ｌｙｓｉｓ_Ｍａｘ＝４１％）は、（１９）−３ｓに対して最も感受性が低かった（図９Ａ）。非標的化（１４）−３ｓＤＮＬ（商標）コンストラクトは、試験された細胞株のいずれにおいてもほとんど細胞毒性作用を有さなかった（図９Ｂ）。Ｎａｌｍ−６ＡＬＬ細胞株に対する（１９）−３ｓコンストラクトの一貫した細胞毒性作用は、２つの異なるドナーから得られたＰＢＭＣにより得られた（図９Ｃ）。

いくつかの細胞株において、（２０）−３ｓ、（２２）−３ｓ及び（Ｃ２）−３ｓＴ細胞再指向ｂｓＡｂのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性作用を決定した（図１０）。ＣＤ２２標的化ｂｓＡｂ（２２）−３ｓは、ＣＤ２２陽性Ｄａｕｄｉ細胞株において、強力な（ＩＣ_５０＝５ｐＭ、Ｌｙｓｉｓ_Ｍａｘ＝６０％）特異的Ｔ細胞媒介溶解を示した（図１０Ｃ）が、ＣＤ２２陰性Ｎａｍａｌｗａ細胞においては示さなかった（図１０Ａ）。

ＣＤ２０標的化ｂｓＡｂ（２０）−３ｓは、より低いＣＤ２０発現性のＮａｍａｌｗａ細胞株（ＩＣ_５０＝３０ｐＭ、Ｌｙｓｉｓ_Ｍａｘ＝５３％）（図１０Ａ）と比較して、より高い発現性のＣＤ２０細胞株Ｄａｕｄｉ（ＩＣ_５０≦０．３ｐＭ、Ｌｙｓｉｓ_Ｍａｘ＝９０％）（図１０Ｃ）及びＪｅｋｏ（ＩＣ_５０＝１ｐＭ、Ｌｙｓｉｓ_Ｍａｘ＝９０％）（図１０Ｂ）において最も高い効能を示した。

ＨＬＡ−ＤＲ標的化ｂｓＡｂ（Ｃ２）−３ｓを、ＨＬＡ−ＤＲ発現Ｊｅｋｏ−１細胞株（ＩＣ_５０＝２０ｐＭ、Ｌｙｓｉｓ_Ｍａｘ＝８８％）において試験した（図１０Ｂ）。

１０：１のＥ：Ｔ比において、単離Ｔ細胞をエフェクター細胞として使用して、ｂｓＡｂは、Ｂｕｒｋｉｔｔリンパ腫（Ｄａｕｄｉ、Ｒａｍｏｓ、Ｎａｍａｌｗａ）、マントル細胞リンパ腫（Ｊｅｋｏ−１）、及び急性リンパ芽球性白血病（Ｎａｌｍ−６）を含む様々なＢ細胞悪性腫瘍において、強力なＴ細胞媒介細胞毒性を誘導した（表７）。非腫瘍結合対照（１４）−３ｓは、１０ｎＭ超で中程度のＴ細胞死滅のみを誘導した。Ｔ細胞再標的化効能のためには、抗原／エピトープの性質、特にそのサイズ及び細胞表面への近接性が、抗原密度よりも重要であるようであった（表７）。（２０）−３ｓは、Ｎａｍａｌｗａ及びＪｅｋｏ−１に関してそれぞれ見られるように、ＣＤ１９又はＨＬＡ−ＤＲの発現がＣＤ２０より著しく高い場合であっても、一貫して（１９）−３ｓ及び（Ｃ２）−３ｓよりも強力であると考えられる（表７）。これは、ＣＤ２０エピトープが、細胞表面に極めて近接した小細胞外ループを含むためと考えられる。Ｄａｕｄｉを直接使用して比較すると、（２２）−３ｓは最も強力でなかった。ＣＤ１９及びＣＤ２０と比較すると、ＣＤ２２は、最も低い密度で発現し、急速に内在化する抗原であり、そのエピトープは、さらに細胞表面から離れている。これらの因子のそれぞれが、その低減された効能に寄与し得る。最後に、Ｔ細胞再標的化死滅への感受性は、（１９）−３ｓを使用して観察されるように細胞株依存的であり、Ｒａｊｉ（ＩＣ_５０＞３ｎＭ）は主として非反応性である一方、Ｒａｍｏｓ（ＩＣ_５０＝２ｐＭ）は極めて反応性であるが、前者はより高いＣＤ１９抗原密度を発現する（表７）。

結論として、（１９）−３ｓ、（２０）−３ｓ、（２２）−３ｓ及び（Ｃ２）−３ｓは、Ｔ細胞に結合すると同時にＢ細胞を標的化し、ｉｎｖｉｔｒｏでＴ細胞媒介死滅を誘導する。ＤＮＬ法のモジュラー的性質により、追加的な組換え操作及びタンパク質生成を必要とすることなく、様々なＢ細胞悪性腫瘍の再指向白血球死滅のためのいくつかの関連複合体の急速な生成が可能であった。ＣＤ２０細胞外エピトープが細胞表面に非常に近接していることにより、（２０）−３ｓの最も高い効能が得られた。

白血球再指向ｂｓＡｂのｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性作用もまた、固形腫瘍細胞において決定した（図１１）。固形腫瘍細胞株において、最適なアッセイ条件は、４２〜４８時間アッセイにおいて刺激Ｔ細胞を使用して、３：１のＥ：Ｔ比であると決定された。各ｂｓＡｂは、腫瘍標的細胞の特異的Ｔ細胞媒介溶解を誘導した。ＣＥＡＣＡＭ５発現ヒト結腸腺癌細胞株ＬＳ−１７４Ｔは、（１４）−３ｓによる処理後に強力な特異的溶解（ＩＣ_５０＝２ｐＭ）を示した（図１１Ａ）。（Ｅ１）−３ｓは、ＴＲＯＰ２発現Ｃａｐａｎ−１ヒト膵臓腺癌細胞株の強力な特異的溶解（ＩＣ_５０＝２９ｐＭ）を媒介した（図１１Ｂ）。高レベルのＣＥＡＣＡＭ６及びＴＲＯＰ２の両方を発現する胃癌細胞株ＮＣＩ−Ｎ８７は、Ｔ細胞標的化分子（１５）−３ｓ及び（Ｅ１）−３ｓに対して非常に強力な特異的溶解を示した（それぞれＩＣ_５０＝３ｐＭ及び０．８５ｐＭ）（図１１Ｃ）。非標的化対照抗体（１９）−３ｓは、Ｃａｐａｎ−１及びＬＳ１７４Ｔに対して、１ｎＭ超の濃度で低い（＜２０％）非特異的溶解を誘導し、ＮＣＩ−Ｎ８７細胞において中程度（約４０％）の非特異的溶解を誘導した（図１１Ａ〜Ｃ）。種々の腫瘍細胞株における様々な白血球再指向ｂｓＡｂに対するｉｎｖｉｔｒｏ細胞毒性データの概要を、図１２に示す。様々なコンストラクトは、９０％まで、又はそれ以上の標的化腫瘍細胞の最大細胞溶解を示し、標的化抗原を発現する細胞株に対するＩＣ_５０値は、一般に低ピコモル範囲内であった（図１２）。

実施例２．白血球再指向ＤＮＬ（商標）複合物のｉｎｖｉｖｏ試験
小（＜６０ｋＤａ）ｓｃＦｖ系コンストラクト、例えばＢＩＴＥ（登録商標）及びＤＡＲＴ（商標）の１つの潜在的な制限は、それらの毒性及び循環からの急速なクリアランスに起因する、長期持続注入による投与の必要性である。ＤＮＬ（商標）ｂｓＡｂの分子サイズは、典型的には腎クリアランスに関連した閾値を超えるため、循環からのより緩やかなクリアランスを示すはずである。我々は、５ｍｇ／ｋｇの（１９）−３ｓｂｓＡｂの単回ボーラス静脈注射後のマウスにおいて、薬物動態パラメータを測定した（データは示さず）。それぞれ１．１及び５．１時間のｔ１／２α及びｔ１／２βで二段階クリアランスが観察され、１８８０ｐｍｏｌ＊ｈ／ｍＬの曲線下面積が得られたが（データは示さず）、これは、同じモル濃度で投与されたＭＴ１０３（抗ＣＤ１９×抗ＣＤ３ＢＩＴＥ（登録商標））に関して報告された曲線下面積よりほぼ６倍大きかった（米国特許ＵＳ２０１０／０３０３８２７Ａ１）。主な違いは、明らかに、（１９）−３ｓのより長いｔ１／２αである（データは示さず）。（１９）−３ｓの潜在的に有利な特性のために、我々は、動物試験においてＢＩＴＥ（登録商標）に対して典型的に使用される毎日の投与ではなく、より少ない頻度での投薬スケジュールの可能性を評価した。

ヒトＰＢＭＣで再構成されたＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスにおいて、ＲａｊｉヒトＢｕｒｋｉｔｔリンパ腫異種移植片を使用して予備的試験を行った（図１３、図１４）。Ｒａｊｉ細胞（１×１０^６細胞／マウス）を、単一の健常ドナーからの新しく単離されたＰＢＭＣ（５×１０^６細胞／マウス）と組み合わせ、マトリゲルと１：１で混合し、０日目に試験における動物の全てにＳＣを注射した。５匹のマウスの群に、０日目に単回投薬で（図１３Ｂ）、４３μｇの３回投薬（０、２及び４日目）（図１３Ｃ）又は２６μｇの５回の毎日の投薬（０〜５日目）（図１３Ｄ）で合計１３０μｇの（１９）−３ｓを静脈注射した。同じ細胞混合物を接種されたが（１９）−３ｓを投与されなかった未処理群（図１３Ａ）は、３１日の生存期間中央値（ＭＳＴ）を有していた。各治療計画は生存率を改善し（Ｐ≦０．０５）、３回投薬（１日おき）スケジュールは、最も高い生存率の利益を提供した（ＭＳＴ＝９１日；ログランク分析によりＰ＝０．００１８）。

より低頻度の投薬の効力を決定するために、追跡試験を開始した（図１４）。９ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスの群に、上記と同様の様式でＲａｊｉ及びＰＢＭＣを接種した。この試験において、治療は、第１の試験における１週間と比較して、２週間に延長された。群に、２週間にわたり、２×１３０μｇ（図１４Ｂ）、４×６５μｇ（図１４Ｄ）又は６×４３μｇの投薬で合計３６０μｇの（１９）−３ｓを静脈注射した（図１４Ｅ）。追加の群に、２×１３０μｇの投薬で、静脈内投与ではなく皮下投与を行った（図１４Ｃ）。比較のために、未処理マウスの対照群（図１４Ａ）又は非標的化（Ｍ１）−３ｓ抗体で処理されたマウス（図１４Ｆ）が準備された。２８日目の時点で、（１９）−３ｓ処理群のそれぞれは、未処理対照よりも有意に小さいＡＵＣを有していた（Ｐ＜０．０５）。驚くべきことに、皮下経路による２回の週１回投薬は、明らかに、より高頻度の静脈内投薬と同程度に効果的であった。

固形腫瘍を使用して、ｉｎｖｉｖｏ試験もまた行った（図１５）。ＬＳ１７４Ｔ結腸腺癌（図１５Ａ、図１５Ｂ）又はＣａｐａｎ−１膵臓癌（図１５Ｃ、図１５Ｄ）に対し、ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウス異種移植片を上述のように調製した。それぞれの場合において、標的化（Ｅ１）−３ｓ（図１５Ｂ）又は（１４）−３ｓ（図１５Ｄ）ｂｓＡｂＤＮＬ（商標）コンストラクトが投与されたマウスは、対照と比較して改善された生存率を示した。

結論として、（１９）−３ｓ、（Ｅ１）−３ｓ及び（Ｍ１）−３ｓＤＮＬ（商標）コンストラクトを含む白血球再標的化ｂｓＡｂは、ＣＤ３及びＣＤ１９に対するそれぞれ一価及び二価結合を介して、それぞれＴ細胞及びＢ細胞、結腸腺癌又は膵臓癌細胞の間のシナプス形成を媒介した。Ｔ細胞活性化、増殖及び標的細胞死滅は、ｅｘｖｉｖｏの設定において、ＤＮＬ（商標）ｂｓＡｂによりｐＭ濃度で誘導された。二価腫瘍結合及びより緩やかなクリアランスを含むＤＮＬ（商標）ｂｓＡｂの有利な特性は、動物モデルにおいて１日１回静脈内に、及び診療所において持続注入として投与される、ＢＩＴＥ（登録商標）又はＤＡＲＴ（商標）コンストラクトと比較して、より低頻度での投薬及び皮下投与を可能にする。ＤＮＬ（商標）法のモジュラー的性質により、追加的な組換え操作及びタンパク質生成を必要とすることなく、様々な悪性腫瘍の再指向白血球死滅のための多くの関連複合体の急速な生成が可能である。

当業者には、ＣＤ３又は他の白血球抗原に結合する他の抗体、及び、ＣＤ１９又は他の疾患関連抗原に結合する他の抗体は当該技術分野において知られており、任意のそのような抗体が、当該技術分野において周知の技術を使用して、Ｆ（ａｂ）_２、ｓｃＦｖ又は他の抗体断片を作製するために使用され得ることが理解される。そのような代替の抗体又はその断片は、本発明の方法及び組成物において使用され得る。以下で議論されるように、ＤＯＣＫ−ＡＮＤ−ＬＯＣＫ（商標）（ＤＮＬ（商標））複合物を作製する方法は、任意の知られた抗体又は抗体断片を安定な生理活性複合物に組み込むために適用され得る。

実施例３．インターフェロン−αは、白血球再指向二重特異性抗体の細胞毒性作用を高める
ＤＮＬ（商標）複合物としてｈＲＳ７及びＯＫＴ３から作製された抗ヒトＴｒｏｐ−２×抗ヒトＣＤ３二重特異性抗体（（Ｅ１）−３ｓ）の治療効力を、ヒトＴ細胞と混合されてマウスに注射された場合にＣａｐａｎ−１ヒト膵臓腺癌腫瘍細胞の腫瘍増殖を遅延させるその能力について試験した。この療法と組み合わせた場合のインターフェロン−α（Ｅ１＊−２ｂ又はＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）の形態で）の効果もまた評価した。

方法
５週齢の雌ＮＯＤ／ＳＣＩＤマウスに、マトリゲルと１：１で混合されたＣａｐａｎ−１（５×１０^６）及びヒトＴ細胞（２．５×１０^６細胞）を皮下注射した（１：２のＥ：Ｔ比）。それぞれ８匹のマウスの６つの異なる処理群があった。処理は、Ｃａｐａｎ−１／Ｔ細胞混合物の投与から１時間後に開始して４７μｇの（Ｅ１）−３ｓを５日間毎日静脈内投与される１つの群からなっていた。２つの群を、ＩＦＮの等モル量で処理したが、１つの群はＩＦＮ−α２ｂ−ＤＤＤ２−ＣＫ−ｈＲＳ７ＩｇＧ１から作製されたＤＮＬ分子を投与され（Ｅ１＊−２ｂ；２．５μｇ皮下、週１回×４週間）、別の群はＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）を投与された（Ｒｏｃｈｅ；０．６μｇ皮下、週１回×４週間）。２つの他の群には、（Ｅ１）−３ｓ及びＥ１＊２ｂ又は（Ｅ１）−３ｓ及びＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）を投与した。最後の群である対照群は未処理のままであった。表８は、様々な処理群を要約している。

腫瘍増殖の兆候について、マウスを毎日監視した。全ての動物に対して、腫瘍が現れ始めたら、それらの腫瘍を週２回測定した。腫瘍体積が１．０ｃｍ^３のサイズを超えたら、疾患の進行のためにマウスを安楽死させた。

結果
様々な群に対する平均腫瘍体積を、図１６に示す。ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）群（図１６Ｂ）を含有するデータは、明確性のために、Ｅ１＊２ｂ群（図１６Ａ）とは別個のグラフ上に示されている。全ての処理は、未処理群内の最初のマウスが疾患の進行のために安楽死させられた２９日目まで、未処理マウスと比較して曲線下面積（ＡＵＣ）の点で腫瘍成長の制御において有意に良好であった（Ｐ＜０．０００９；ＡＵＣ_{２９ｄａｙｓ}）。（Ｅ１）−３ｓをＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）と組み合わせると、腫瘍増殖の点で全体的に最善の抗腫瘍反応が得られた（図１６Ｂ）。この処理は、個々の処理のいずれよりも有意に良好であり（Ｐ＜０．０４２；ＡＵＣ）、また（Ｅ１）−３ｓ及びＥ１＊−２ｂの組み合わせより優れていた（Ｐ＝０．０３１２；ＡＵＣ_{５３ｄａｙｓ}）（図１６Ａ）。（Ｅ１）−３ｓプラスＥ１＊２ｂの組み合わせは、Ｅ１＊２ｂ又はＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）単独と比較して有意に腫瘍成長を制御することができた（Ｐ＜０．００７３；ＡＵＣ_{４６ｄａｙｓ}）が、（Ｅ１）−３ｓ単独ではそうではなかった（図１６Ａ〜Ｂ）。（Ｅ１）−３ｓ、ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）、又はＥ１＊−２ｂで処理されたマウスの間には、有意な差はなかった（図１６Ａ〜Ｂ）。

生存率の点では、全ての処理が、未処理マウスと比較して、有意な生存率の利点を提供する（Ｐ＜０．０１１２；ログランク）（図１７）。８１日目の時点で、（Ｅ１）−３ｓ及びＥ１＊−２ｂの組み合わせで処理されたマウスと（Ｅ１）−３ｓ及びＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）で処理されたマウスとの間で、生存期間中央値（ＭＳＴ）に有意な差はなかった（それぞれＭＳＴ＝７９．５及び＞８１日）（図１７）。（Ｅ１）−３ｓ及びＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）で処理されたマウスは、個々の処理のいずれよりも、有意に改善された生存率の転帰を有していた（Ｐ＜０．０２３７）（図１７）。（Ｅ１）−３ｓ及びＥ１＊２ｂで処理されたマウスは、Ｅ１＊−２ｂ単独で処理されたマウス（ＭＳＴ＝５３日；Ｐ＜０．０３１１）と比較すると、生存率の利点を有していたが、（Ｅ１）−３ｓ又はＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）単独でのみ処理されたマウス（それぞれＭＳＴ＝６８及び５３日）と比較するとそうではなかった（図１７）。（Ｅ１）−３ｓでの処理は、Ｅ１＊−２ｂで処理されたマウスと比較すると、生存率において有意な改善を提供した（Ｐ＝０．０４０６）が、ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）単独で処理されたマウスと比較するとそうではなかった（図１７）。Ｅ１＊２ｂのみで処理されたマウスと、ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）単独で処理されたマウスとの間に、有意な差はなかった（図１７）。

結果は、白血球再指向ｂｓＡｂと組み合わされると、インターフェロン−αの添加が、生存率の有意な増加及び腫瘍成長の減少を提供することを実証している。当業者には、Ｉ型又はＩＩＩ型インターフェロン（インターフェロン−α、インターフェロン−β、又はインターフェロン−λ）の添加により観察される改善された効力は、特定の（Ｅ１）−３ｓｂｓＡｂに限定されず、ＤＮＬ（商標）複合物として、又はＢＩＴＥ（登録商標）若しくはＤＡＲＴ（商標）等の他の形態で作製された他の白血球再指向ｂｓＡｂでも観察されることが理解される。

実施例４．白血球再指向二重特異性抗体とのインターフェロン−α併用療法に関するさらなる研究
上記実施例において、（Ｅ１）−３ｓ及びＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）の組み合わせは、腫瘍成長の制御における非常に効果的な治療法であることが明らかとなった。これらの結果を確認し、それらを拡張するために、２つの新たな群を追加した試験を行った。まず、等モル量のＴＦ１２が動物に投与される（Ｅ１）−３ｓの対照群が含まれた。ＴＦ１２は、１つの非標的化６７９Ｆａｂ（抗ＨＳＧ）に連結した２つのｈＲＳ７−Ｆａｂ分子からなる。さらに、Ｃａｐａｎ−１はＩＦＮに感受性であるため、Ｃａｐａｎ−１腫瘍成長に対するＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）の効果がＴ細胞の利益なしで評価される別の群が追加された。

マウス（４０）にＣａｐａｎ−１／Ｔ細胞混合物を注射した後、それらを５つの処理群に無作為化した。１時間後、１１匹のマウスの１つの群に、腫瘍細胞注射から１時間後に開始して４７μｇの（Ｅ１）−３ｓを毎日静脈内投与し、さらに連続４日間継続した（ｑｄｘ５）。７匹の動物の１つの群に、ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）の形態のインターフェロンを、週１回で４週間皮下投与した。別の群に、（Ｅ１）−３ｓ（静脈内）及びＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）（皮下）の組み合わせを投与した。未処理対照動物には、Ｃａｐａｎ−１／Ｔ細胞を投与したが、処理は行わなかった。さらなる対照群には、モルの点で（Ｅ１）−３ｓと同等の量（５７μｇｑｄｘ５）のＴＦ１２を投与した。群６のマウス（８匹の動物）には、Ｃａｐａｎ−１細胞のみ（すなわちＴ細胞なし）の別個の注射を行い、ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）で処理した。全ての治療注射は、１００μＬの体積であった。表９は、様々な群を要約している。

結果
平均腫瘍成長（図１８）及び生存率曲線（図１９）を示す。互いに異ならないが、（Ｅ１）−３ｓ、ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）、又はＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）（Ｔ細胞なし）で処理されたマウスは、ＴＦ１２及び未処理対照群と比較して有意な抗腫瘍効果を示した（Ｐ＜０．０１０２；ＡＵＣ）。この実験が終了した日（５９日目）に、（Ｅ１）−３ｓ及びＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）の組み合わせで処理されたマウスの平均腫瘍体積は、０．０８３±０．０４８ｃｍ^３であった。全体的に、この処理群は、全ての他の処理群と比較して有意な抗腫瘍効果を示した（Ｐ＜０．００７２；ＡＵＣ）。

それぞれの個々の処理（ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）、Ｔ細胞なしでのＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）、及び（Ｅ１）−３ｓ）は、ＴＦ１２及び未処理対照群と比較して、有意に生存率を改善した（Ｐ＜０．００５９；ログランク）（図１８、図１９）。（Ｅ１）−３ｓ及びＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）の組み合わせ以外の群の全てが、それらのそれぞれのＭＳＴに達した。この組み合わせの群において、疾患の進行（ＴＶ＞１．０ｃｍ^３）のために安楽死させられた動物はいなかった。重要なことに、（Ｅ１）−３ｓ及びＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標）の組み合わせは、他の全ての処理と比較して、有意な生存率の利益を提供した（Ｐ＜０．０００７；ログランク）（図１８、図１９）。

実施例５．ヒト胃がんにおけるＴ細胞再指向二重特異性抗体とのインターフェロン−α併用療法の効果
上記２つの実施例において開示された方法及び組成物を、ＩＦＮ不応性ＮＣＩ−Ｎ８７ヒト胃腫瘍株における白血球再指向ｂｓＡｂ単独又はインターフェロン−α（ＰＥＧＡＳＹＳ（登録商標））との組み合わせの効果を調査するために使用した。マウスに、マトリゲルと混合された５×１０^６のＮＣＩ−Ｎ８７細胞＋２．５×１０^６のＴ細胞（１：２のＥ：Ｔ比）を皮下注射し、１時間後に治療を開始した。処理群を、表１０に示す。

白血球再指向ｂｓＡｂ（Ｅ１）−３ｓ単独又はインターフェロンとの組み合わせの効果を、図２０及び図２１に示す。（Ｅ１）−３ｓｂｓＡｂは、胃がんにおいて、腫瘍成長を低減し、生存率を増加させるのに効果的であった。重要なことに、インターフェロン−αとの組み合わせは、インターフェロン耐性腫瘍においても、白血球再指向ｂｓＡｂの効果を高めた。併用療法は、いずれかの薬剤が単独で加えられた場合よりも効果的であった。ＴＦ１２ｂｓＡｂ単独又はインターフェロン−αとの組み合わせで処理されたマウスの対照は、未処理動物と比較して、腫瘍成長又は死亡率に対する効果をほとんど示さなかった。

実施例６．ヒト膵臓又は結腸癌の前臨床モデルにおける抗体−薬物複合体（ＡＤＣ）のｉｎｖｉｖｏ治療用途
ＣＬ２Ａ−ＳＮ−３８抗体複合体を、以前に説明されたように調製した（例えば、米国特許第７，９９９，０８３号及び米国特許第８，０８０，２５０号を参照されたい）。皮下ヒト膵臓又は結腸腫瘍異種移植片を有する免疫力低下無胸腺ヌードマウス（雌）を、特異的ＣＬ２Ａ−ＳＮ−３８複合体若しくは対照複合体で処理するか、又は未処理とした。特異的複合体の治療効力を観察した。Ｃａｐａｎ１膵臓腫瘍モデルにおいて、ｈＲＳ７（抗ＴＲＯＰ２）、ｈＰＡＭ４（抗ＭＵＣ５ａｃ）、及びｈＭＮ−１４（抗ＣＥＡＣＡＭ５）抗体の特異的ＣＬ２Ａ−ＳＮ−３８複合体は、対照ｈＡ２０−ＣＬ２Ａ−ＳＮ−３８複合体（抗ＣＤ２０）及び未処理対照（図示せず）よりも良好な効力を示した。同様に、ヒト膵臓がんのＢＸＰＣ３モデルにおいて、特異的ｈＲＳ７−ＣＬ２Ａ−ＳＮ−３８は、対照処理（図示せず）よりも良好な治療効力を示した。同様に、ヒト結腸癌の進行性ＬＳ１７４Ｔモデルにおいて、特異的ｈＭＮ−１４−ＣＬ２Ａ−ＳＮ−３８による処理は、非処理（図示せず）よりも有効であった。

実施例７．ＡＤＣｈＭＮ−１４−［ＣＬ２−ＳＮ−３８］、ＩＭＭＵ−１３０を使用した、ヌードマウスにおけるＧＷ−３９ヒト結腸腫瘍の肺転移のｉｎｖｉｖｏ治療
ＧＷ−３９ヒト結腸腫瘍懸濁液の静脈注射により、ヌードマウスにおいて結腸癌の肺転移モデルを確立し、１４日後に治療を開始した。特異的抗ＣＥＡＣＡＭ５抗体複合体ｈＭＮ１４−ＣＬ２−ＳＮ−３８、並びに非標的化抗ＣＤ２２ＭＡｂ対照複合体ｈＬＬ２−ＣＬ２−ＳＮ−３８、並びにｈＭＮ１４及びＳＮ−３８の等用量混合物を、異なる用量を使用して、ｑ４ｄ×８の投薬スケジュールで注射した。ｈＭＮ−１４ＡＤＣで選択的治療効果が観察された（図示せず）。２５０μｇの用量において、ｈＭＮ１４−ＣＬ２−ＳＮ−３８で処理されたマウスは、１０７日を超える生存中央値を示した。肺がん細胞を特異的に標的化しない対照複合化抗体ｈＬＬ２−ＣＬ２−ＳＮ−３８で処理されたマウスは、７７日の生存中央値を示したが、一方非複合化ｈＭＮ１４ＩｇＧ及び遊離ＳＮ−３８で処理されたマウスは、４３．５日の未処理生理食塩水対照と匹敵して、４５日の生存中央値を示した。非複合化抗体及び遊離化学療法薬単独よりも有意により効果的であった、複合化したがん細胞標的化抗ＳＮ−３８複合体の有効性の有意な驚くべき増加が、明確に観察された（図示せず）。複合化抗体の治療効果の用量−反応もまた観察された（図示せず）。これらの結果は、同じｉｎｖｉｖｏヒト肺がん系において、非複合化抗体及び遊離ＳＮ−３８の両方の組み合わされた効果と比較して、ＳＮ−３８抗体の明確な優位性を示している。

実施例８．治療不応性転移性結腸がん（ｍＣＲＣ）を治療するためのＡＤＣ（ＩＭＭＵ−１３２又はｈＲＳ７−ＳＮ−３８）の使用
患者は、元々は２０１２年１月に転移疾患を示したｍＣＲＣを有する６２歳の女性であった。彼女は、診断から数週間後に第１の治療として腹腔鏡下回腸横行結腸切除を受け、次いでネオアジュバントの設定で４サイクルのＦＯＬＦＯＸ（ロイコボリン、５−フルオロウラシル、オキサリプラチン）化学療法を受けてから、肝臓の右葉における転移性病変を除去するために、２０１２年３月に肝右葉切除を受けた。これに続いて、全体で１２サイクルのＦＯＬＦＯＸのアジュバントＦＯＬＦＯＸ投薬計画を２０１２年６月に再開した。８月に、神経毒性の悪化によりオキサリプラチンを計画から除外した。彼女の５−ＦＵの最後のサイクルは、０９／２５／１２であった。

２０１３年１月に行われたＣＴは、肝臓への転移を示した。次いで、彼女は、ＩＭＭＵ−１３２（ｈＲＳ７−ＳＮ−３８）治験への参加にふさわしい候補として評価された。彼女の病歴における併存疾患は、喘息、糖尿病、高血圧、高コレステロール血症、心雑音、裂孔ヘルニア、甲状腺機能低下、手根管症候群、緑内障、うつ病、むずむず脚症候群、及び神経障害を含む。彼女の手術歴は、卵管結紮（１９７５）、甲状腺摘出（１９８３）、胆嚢摘出（２００１）、手根管開放術（２００８）、及び緑内障手術を含む。

この治療を開始する時点で、彼女の標的病変は、肝臓の左葉における３．１ｃｍの腫瘍であった。非標的病変は、肝臓におけるいくつかの低弱毒化腫瘤を含んでいた。彼女のベースラインＣＥＡは、７８１ｎｇ／ｍＬであった。

ＩＭＭＵ−１３２は、週１回のスケジュールで２週間連続して注入により与えられ、次いで１週間おき、これが処理サイクルを構成した。これらのサイクルを、耐えられる限り反復した。ＩＭＭＵ−１３２（８ｍｇ／ｋｇ）の第１の注入は、２０１３年２月１５日に開始し、注目されるイベントのないまま完了した。彼女は、第１のサイクルの間、吐き気（グレード２）及び疲労（グレード２）を経験し、それ以降大きな副作用のないまま治療を継続した。彼女は、２０１３年３月に脱毛及び便秘を報告した。０４／０８／２０１３に行われた（６回の投薬後）最初の反応評価は、コンピューター断層撮影（ＣＴ）により、２９％の標的病変の収縮を示した。彼女のＣＥＡレベルは、２０１３年３月２５日に２３０ｎｇ／ｍＬに低下した。２０１３年５月２３日の第２の反応評価（１０回の投薬後）では、標的病変は３９％収縮し、このようにしてＲＥＣＩＳＴ基準による部分反応に相当した。彼女は、処理を継続し、ｈＲＳ７−ＳＮ−３８（ＩＭＭＵ−１３２）の８ｍｇ／ｋｇでの１２回の投薬を構成する６サイクルを受けた。彼女の全体的な健康及び臨床症状は、この治験中の治療の開始以降、顕著に改善した。

実施例９．転移性固形がんに対するＩＭＭＵ−１３２によるＡＤＣ治療
ＩＭＭＵ−１３２は、ｐＨ感受性リンカー（平均薬物−抗体比＝７．６）によりｈＲＳ７抗Ｔｒｏｐ−２ヒト化モノクローナル抗体に複合化された、ＣＰＴ−１１の活性代謝物ＳＮ−３８を含むＡＤＣであり、Ｔｒｏｐ−２に結合すると急速な内在化を示す。ＩＭＭＵ−１３２は、多くの癌により高い発生率及び特異性で発現するＩ型膜貫通タンパク質であるＴｒｏｐ−２を標的化する。この実施例は、平均３回の以前の治療（一部は、トポイソメラーゼ−Ｉ及び−ＩＩ阻害薬を含む）に失敗した後の、異なる転移性がんを有する２５名の患者（膵臓がん、７名；三重陰性乳がん［ＴＮＢＣ］、４名；結腸直腸がん［ＣＲＣ］、３名；胃がん、３名、食道がん、前立腺癌、卵巣がん、非小細胞肺がん、小細胞が肺がん［ＳＣＬＣ］、腎臓がん、へんとうがん、膀胱がん、それぞれ１名）の第Ｉ相臨床試験を報告する。

ＩＭＭＵ−１３２を、反復２１日サイクルで投与し、各治療は、１日目及び８日目に行われた。投薬は、８ｍｇ／ｋｇ／投薬（すなわち、１６ｍｇ／ｋｇ／サイクル）で開始し、３＋３試験設計で、用量制限好中球減少が生じる前に１８ｍｇ／ｋｇに上昇させた。疲労、脱毛及び時折の軽度〜中程度の下痢が、より一般的な非血液学的毒性のいくつかであり、２名の患者はまた発疹を報告した。２４名の評価可能な患者の８０％超が、ＣＴによる最善の反応として、様々な転移性がんの中で安定な疾患又は腫瘍収縮（ＳＤ及びＰＲ）を有した。３名の患者（ＣＲＣ、ＴＮＢＣ、ＳＣＬＣ）は、ＲＥＣＩＳＴによるＰＲを有し；全ての患者に対する中央ＴＴＰは、膵臓がんを有する患者を除いて１８週間超である。好中球減少は、８〜１０ｍｇ／ｋｇ／投薬（１６〜２０ｍｇ／ｋｇ／サイクル）までの用量低減により制御された。

免疫組織化学は、ほとんどの記録された患者の腫瘍におけるＴｒｏｐ−２の強力な発現を示したが、血清においては検出されない。血液腫瘍マーカー力価（例えば、ＣＥＡ、ＣＡ１９−９）における対応する低減は、腫瘍反応を反映した。反復投薬にもかかわらず、抗抗体又は抗ＳＮ−３８抗体は検出されなかった。血清中のＩＭＭＵ−１３２濃度のピーク及びトラフ値の評価は、複合体が７日以内に完全に除去され、ｉｎｖｉｔｒｏ試験に基づく予測される所見は、ＳＮ−３８の５０％が毎日血清中に放出されることを示している。これらの結果は、この新規なＡＤＣが、サイクル当たり１６〜２４ｍｇ／ｋｇの範囲の用量で投与されると、多様な転移性固形がんにおいて高い治療指数を示すことを示している。

実施例１０．ＣＥＡＣＡＭ５を標的化するＳＮ−３８ＡＤＣであるＩＭＭＵ−１３０は、転移性結腸直腸がん（ｍＣＲＣ）において治療活性を有する
ｐＨ感受性リンカー（７．６の平均薬物−抗体比）によりヒト化抗ＣＥＡＣＡＭ５抗体（ラベツズマブ）に複合化された、ＳＮ−３８のＡＤＣであるＩＭＭＵ−１３０は、２つの第Ｉ相試験を完了している。両方において、進行性ｍＣＲＣを有する適格患者は、標準的治療（１つはトポイソメラーゼ−Ｉ阻害薬、ＣＰＴ−１１（イリノテカン））に失敗／再発している、及び高血漿ＣＥＡ（＞５ｎｇ／ｍＬ）を有する必要があった。

ＩＭＭＵ−１３０は、第１のプロトコル（ＩＭＭＵ−１３０−０１）において、２．０ｍｇ／ｋｇから出発する用量で１４日おきに投与された（ＥＯＷ）。２４ｍｇ／ｋｇで３名の患者のうち２名に発熱性好中球減少が生じ；それ以外は、１６ｍｇ／ｋｇ以下において、好中球減少（≧グレード２）が７名の患者に観察され、１名はまた、血小板減少を経験した。［４回（２サイクル）以上の投薬を受けた８名の患者のうち］１名の患者は、４．７ヶ月の間肝臓（７ｃｍで開始）及び肺標的病変（ＲＥＣＩＳＴによるＰＲ）において４０．６％の減少を示し、大きな毒性は見られず、全部で１６ｍｇ／ｋｇで１８回の投薬に耐えた。試験は、１２ｍｇ／ｋｇＥＯＷで継続している。

ＳＮ−３８は、Ｓ期細胞において最も効果的であるため、より長期化した曝露が効力を改善し得る。したがって、第２の第Ｉ相試験（ＩＭＭＵ−１３０−０２）において、３＋３試験設計で、治療サイクルとして、６ｍｇ／ｋｇ／投薬で開始して週２回２週間（４回投薬）まで投薬を増加させ、１週間おいた。４．０ｍｇ／ｋｇで週２回への用量低減まで、好中球減少及び管理可能な下痢が主な副作用であったが、初期の結果は、複数サイクルが十分耐えられることを示している。現在、３名の患者に腫瘍収縮が生じ、４回（１サイクル）以上の投薬を完了した６名の患者のうち、１名はＲＥＣＩＳＴによるＰＲ（−４６％）が継続中である。両方の試験において、ＣＥＡ血液力価は、腫瘍反応と相関し、高レベルは治療に干渉しなかった。ＥＬＩＳＡ試験に基づき、抗抗体又は抗ＳＮ−３８抗体反応はなかった。各試験において、ＡＤＣは、最初の２４時間以内に５０％除去され、これは、非経口分子ＣＰＴ−１１の典型的な用量よりもはるかに長い曝露である。これらの結果は、この新規なＡＤＣが、平均約１６〜２４ｍｇ／ｋｇ／サイクルの異なる投薬計画で投与されると、進行性ｍＣＲＣ患者において高い治療指数を示すことを示している。ＣＥＡＣＡＭ５は、乳がん及び肺がん、並びに他の上皮腫瘍において高い発現を有するため、他のがんにおいても有用な標的となり得る。

実施例１１．チェックポイント阻害剤抗体単独、又はＴ細胞再指向ｂｓＡｂ、ＩＦＮ−α若しくはＡＤＣとの組み合わせの抗腫瘍活性
例示的なチェックポイント阻害剤抗体イピリムマブ（抗ＣＴＬＡ４）の抗腫瘍活性が、他の治療薬剤の添加と相乗的である、又はそれにより阻害されるかどうかを決定するために、マウス腫瘍モデルにおいて、ＣＴＬＡ４ｍＡｂを単独で、又は例示的なＴ細胞再指向ｂｓＡｂ（Ｅ１）−３ｓ、インターフェロン−α（ＰＥＧＩＮＴＥＲＦＥＲＯＮ（登録商標））又は例示的なＡＤＣｈＲＳ７−ＳＮ−３８（ＩＭＭＵ−１３２）と組み合わせて評価した。Ｍ１０９肺癌、ＳＡ１Ｎ線維肉腫、及びＣＴ２６結腸癌モデルは、様々な薬剤及びＣＴＬＡ４遮断への異なる感受性に基づいて選択される。ヒトＴ細胞は、抗体と同時投与される。

全ての化合物は、それらの最適用量及びスケジュールで試験される。組み合わせて使用される場合、ＣＴＬＡ４ｍＡｂは、ＩＭＭＵ−１３２、（Ｅ１）−３ｓ又はインターフェロン−αの最初の投薬から１日後に開始される。腫瘍成長阻害パーセント及び標的腫瘍サイズに達するまでの日数を使用して、効力を評価する。抗腫瘍活性は、完全退縮（ＣＲ；触知不能腫瘍）又は部分退縮（ＰＲ；腫瘍体積の５０％低減）としてスコア化された。相乗効果は、各薬剤による単剤療法の活性に対して有意に優れた（ｐ＜０．０５）抗腫瘍活性として定義される。

ＣＴＬＡ４遮断に感受性であり、（Ｅ１）−３ｓ、インターフェロン−α、及びＩＭＭＵ−１３２にやや感受性であるＳＡ１Ｎ線維肉腫腫瘍モデルにおいて、ＣＴＬＡ４ｍＡｂ及び（Ｅ１）−３ｓの組み合わせによるボーダーラインの相乗効果が明らかであり、一方インターフェロン−αについては効果は観察されない。ＩＭＭＵ−１３２単剤療法は、有意なＳＡ１Ｎ抗腫瘍活性を生成しない。しかしながら、ＩＭＭＵ−１３２をＣＴＬＡ４ｍＡｂと組み合わせると、相乗効果がもたらされる。Ｍ１０９肺転移モデル及びＣＴ２６結腸癌モデルにおいて、ＩＭＭＵ−１３２、（Ｅ１）−３ｓ及びインターフェロン−αのそれぞれと組み合わされたＣＴＬＡ４ｍＡｂに対して相乗効果が検出される。

要約すると、インターフェロン−α、ＩＭＭＵ−１３２、又は（Ｅ１）−３ｓへのＣＴＬＡ４ｍＡｂの添加は、モデル依存的相乗活性をもたらす。相乗効果は、腫瘍の免疫原性とは無関係に、及び治療薬の少なくとも１つが活性である場合にのみ観察される。全ての組み合わせの投薬計画は、十分な耐性を示し、併用療法は、ＣＴＬＡ４ｍＡｂ活性を阻害しないようである。ＣＴＬＡ４ｍＡｂ単独には反応しない腫瘍において相乗効果が観察され、これは、他の治療薬剤が免疫原性細胞死を誘導し得ることを示唆している。

実施例１２．不応性転移性非小細胞肺がんを治療するための、ＡＤＣ（ＩＭＭＵ−１３２）及びインターフェロン−α（ＰＥＧＩＮＴＥＲＦＥＲＯＮ（登録商標））との併用療法
患者は、非小細胞肺がんと診断された６０歳の男性である。患者は、６ヶ月間のカルボプラチン、ベバシズマブの化学療法計画を受けて反応を示し、次いで、進行後、次の２年間にわたりカルボプラチン、エトポシド、ＴＡＸＯＴＥＲＥ（登録商標）、ゲムシタビンによる化学療法のさらなる工程を受け、時折の反応は、２ヶ月以内の間続く。次いで、患者は、６．５×４ｃｍの寸法の左縦隔腫瘤及び胸水を示す。

インフォームド・コンセントへの署名後、患者にＩＭＭＵ−１３２を１週間おきに１８ｍｇ／ｋｇの用量で投与する。治療の第１週目の後、患者にＩＭＭＵ−１３２及びＰＥＧＩＮＴＥＲＦＥＲＯＮ（登録商標）の併用療法を施す。最初の２回の注射の間、短期間の好中球減少及び下痢を経験し、４時間以内に４回の排便があるが、これらは２日以内に解消する、又は症状に対する医薬に反応する。全６回のＩＭＭＵ−１３２注入及び５回のＰＥＧＩＮＴＥＲＦＥＲＯＮ（登録商標）注入の後、指標病状のＣＴ評価は、２２％の低減を示し、部分的反応をわずかに下回るが、確かな腫瘍収縮を見せる。患者に対してさらに２ヶ月間この治療を継続すると、指標病状の直径の合計の４５％腫瘍収縮の部分的反応がＣＴにより認められ、このようにしてＲＥＣＩＳＴ基準による部分的反応に相当する。併用療法は、２つの薬剤を別個に投与した場合と比較して、相乗反応を提供するようである。

実施例１３．進行性結腸がんを治療するためのＡＤＣ（ＩＭＭＵ−１３０）及びＴ細胞再指向ｂｓＡｂ（ＭＴ１００）による併用療法
患者は、最初に転移性結腸がん（第ＩＶ期）と診断された７５歳の女性である。彼女は、右側の部分的半結腸切除及び小腸の切除を受け、次いでＦＯＬＦＯＸ、ＦＯＬＦＯＸ＋ベバシズマブ、ＦＯＬＦＩＲＩ＋ラムシルマブ、及びＦＯＬＦＩＲＩ＋セツキシマブ治療を１年半受けるが、彼女は疾患の進行を示し、疾患は後盲嚢、網に広がり、骨盤内の腹水及び胸腔の右側の胸水を見せる。この治療直前の彼女のベースラインＣＥＡ力価は、１５ｎｇ／ｍＬである。彼女に、６ｍｇ／ｋｇのＩＭＭＵ−１３０（抗ＣＥＡＣＡＭ５−ＳＮ−３８）を週２回連続２週間投与し、次いで１週間おく（３週間サイクル）。第１のサイクル後、患者にＩＭＭＵ−１３２及び白血球再指向ｂｓＡｂＭＴ１１０による併用療法を施すが、これは同じ３週間サイクルで持続注入により投与される。いかなる大きな血液学的又は非血液学的毒性もなく非常に良く耐えられた５サイクルの後、彼女の血漿ＣＥＡ力価は、１．３ｎｇ／ｍＬまでやや縮まるが、８週間の評価では、指標腫瘍病変の２１％の収縮を示し、これは１３週間で２７％の収縮に増加する。驚くべきことに、この時点で患者の腹水及び胸水は共に減少し（後者は消失する）、このように患者の全体的状態が顕著に改善される。併用療法は、２つの薬剤を別個に投与した場合と比較して、相乗反応を提供するようである。

実施例１４．第ＩＶ期転移性疾患を有する胃がん患者を治療するための、ＡＤＣ（ＩＭＭＵ−１３０）、Ｔ細胞再指向ｂｓＡｂ（（Ｅ１）−３ｓ）及びインターフェロン−αによる併用療法
患者は、約６年間の胃の不快感及び摂食に関連する痛み、並びに過去１２ヶ月の間の体重減少のために医学的処置を求めた５２歳の男性である。腹部の触診では硬いしこりを示し、次いでこれを胃カメラ検査すると、胃の下部における潰瘍腫瘤を示す。これは生検され、胃腺癌と診断される。臨床検査では特定の異常変化は見られないが、肝機能試験では、ＬＤＨ及びＣＥＡが上昇し、後者は１０．２ｎｇ／ｍＬである。次いで患者は、全身ＰＥＴスキャンを受け、これは、胃の腫瘍だけでなく、左腋窩及び肝臓の右葉における転移性疾患（２つの小転移）を明らかとする。患者は、胃の腫瘍を切除され、次いで転移腫瘍のベースラインＣＴ測定を受ける。手術から４週間後、彼は、シスプラチン及び５−フルオロウラシル（ＣＦ）の投薬計画からなる併用化学療法を３回受けるが、これには良好な耐性を示さないため、ドセタキセルによる治療に切り替えられる。ＣＴスキャンによれば、疾患は約４ヶ月間安定であるようであるが、さらなる体重減少、腹痛、食欲減退、及び極度の疲労という患者の病状により、繰り返しＣＴ検査が行われ、これは、合計で２０％の転移のサイズの増加、及び元の胃切除部位における疑わしい病変を示す。

次いで、患者は、８ｍｇ／ｋｇの週１回のスケジュールでのＩＭＭＵ−１３０（抗ＣＥＡＣＡＭ５−ＳＮ−３８）による実験的治療を受ける。第１週目の後、ＩＭＭＵ−１３０、（Ｅ１）−３ｓ及びインターフェロン−αの併用療法を開始する。患者は、その後４週間にわたり、下痢又は好中球減少の兆候を示さない。次いで、患者は、転移性腫瘍サイズを測定するため、及び元の胃切除領域を観察するためにＣＴ検査を受ける。放射線科医は、ＲＥＣＩＳＴ基準に従い、治療前のベースラインである２３％と比較して、転移性病変の合計の減少を測定する。元の胃切除領域にはいかなる明確な病変も見られないようである。この時点での患者のＣＥＡ力価は、７．２ｎｇ／ｍＬであり、これは１４．５ｎｇ／ｍＬのベースライン値から大きく低減されている。患者は週１回の併用療法を継続し、合計１３回の注入後、彼のＣＴ検査は、１つの肝臓転移が消失し、全ての転移性病変の合計が４１％減少し、ＲＥＣＩＳＴによる部分的反応に相当することを示している。患者の全体的な状態は改善し、彼は通常の活動を再開する一方で、３週間毎に維持療法を受ける。血液ＣＥＡの最後の測定の時点で、値は４．８ｎｇ／ｍＬであり、これはこの患者に該当する喫煙者の正常範囲内である。

実施例１５．ＤＯＣＫ−ＡＮＤ−ＬＯＣＫ（商標）の一般的技術
以下で議論される一般的技術は、開示される方法及び組成物を使用して、ＡＤ又はＤＤＤ部分が任意の抗体又は抗原結合抗体断片に結合したＤＮＬ（商標）複合物を生成するために使用され得る。

発現ベクター
プラスミドベクターｐｄＨＬ２は、いくつかの抗体及び抗体系コンストラクトを生成するために使用されている。Ｇｉｌｌｉｅｓｅｔａｌ．，ＪＩｍｍｕｎｏｌＭｅｔｈｏｄｓ（１９８９），１２５：１９１−２０２；Ｌｏｓｍａｎｅｔａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ（Ｐｈｉｌａ）（１９９７），８０：２６６０−６を参照されたい。ジシストロン性哺乳動物発現ベクターは、ＩｇＧの重鎖及び軽鎖の合成を誘導する。ベクター配列は、多くの異なるＩｇＧ−ｐｄＨＬ２コンストラクトにおいてほとんど同一であり、唯一の違いは、可変ドメイン（Ｖ_Ｈ及びＶ_Ｌ）配列に存在する。当業者に知られている分子生物学ツールを使用して、これらのＩｇＧ発現ベクターは、Ｆａｂ−ＤＤＤ又はＦａｂ−ＡＤ発現ベクターに変換され得る。

Ｆａｂ−ＤＤＤ発現ベクターを生成するために、重鎖のヒンジ、ＣＨ２及びＣＨ３ドメインのコード配列を、ヒンジの最初の４つの残基をコードする配列、１４残基リンカー及びＤＤＤ部分、例えばヒトＲＩＩαの最初の４４残基（ＤＤＤ１と呼ばれる、配列番号１）と置き換えた。Ｆａｂ−ＡＤ発現ベクターを生成するために、ＩｇＧのヒンジ、ＣＨ２及びＣＨ３ドメインの配列を、ヒンジの最初の４つの残基をコードする配列、１５残基リンカー及びＡＤ部分、例えばＡＫＡＰ−ＩＳと呼ばれる１７残基合成ＡＤ（ＡＤ１と呼ばれる、配列番号３）で置き換えたが、これは、生物情報学及びペプチドアレイ技術を使用して生成され、非常に高い親和性（０．４ｎＭ）でＲＩＩα二量体に結合することが示された。Ａｌｔｏ，ｅｔａｌ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，Ｕ．Ｓ．Ａ（２００３），１００：４４４５−５０を参照されたい。以下に記載のように、ＩｇＧ−ｐｄＨＬ２ベクターからＦａｂ−ＤＤＤ１又はＦａｂ−ＡＤ１発現ベクターへの変換を促進するように、２つのシャトルベクターを設計した。

ＣＨ１の調製
ｐｄＨＬ２プラスミドベクターをテンプレートとして使用して、ＰＣＲによりＣＨ１ドメインを増幅した。左ＰＣＲプライマーは、ＣＨ１ドメインの上流側（５’）末端、及びＣＨ１コード配列の５’であるＳａｃＩＩ制限エンドヌクレアーゼ部位からなっていた。右側プライマーは、ヒンジの最初の４つの残基をコードする配列（ＰＫＳＣ、配列番号１０２）に続く、４つのグリシン及びセリンからなり、最後の２つのコドン（ＧＳ）は、ＢａｍＨＩ制限部位を含んでいた。４１０ｂｐＰＣＲ増幅プライマーをＰＧＥＭＴ（登録商標）ＰＣＲクローニングベクター（ＰＲＯＭＥＧＡ（登録商標），Ｉｎｃ．）にクローニングし、クローンをＴ７（５’）方位での挿入に関してスクリーニングした。

リンカーペプチドの１１残基に続くＤＤＤ１のアミノ酸配列をコードするように二本鎖オリゴヌクレオチドを合成したが、最初の２つのコドンは、ＢａｍＨＩ制限部位を含んでいた。停止コドン及びＥａｇＩ制限部位は、３’末端に付加されている。コードされたポリペプチド配列を以下に示す。
ＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＨＩＱＩＰＰＧＬＴＥＬＬＱＧＹＴＶＥＶＬＲＱＱＰＰＤＬＶＥＦＡＶＥＹＦＴＲＬＲＥＡＲＡ（配列番号１０３）

その３’末端上の３０塩基対により重複する、ＲＩＩＡ１−４４上部及びＲＩＩＡ１−４４下部と指定される２つのオリゴヌクレオチドを、１７４ｂｐＤＤＤ１配列の中心１５４塩基対を含むように合成及び組み合わせた。オリゴヌクレオチドをアニールし、Ｔａｑポリメラーゼによるプライマー伸長反応に供した。プライマー伸長の後、二本鎖をＰＣＲにより増幅した。増幅プライマーをＰＧＥＭＴ（登録商標）にクローニングし、Ｔ７（５’）方位での挿入に関してスクリーニングした。

リンカーペプチドの１１残基に続くＡＤ１のアミノ酸配列をコードするように二本鎖オリゴヌクレオチドを合成したが、最初の２つのコドンは、ＢａｍＨＩ制限部位を含んでいた。停止コドン及びＥａｇＩ制限部位は、３’末端に付加されている。コードされたポリペプチド配列を以下に示す。
ＧＳＧＧＧＧＳＧＧＧＧＳＱＩＥＹＬＡＫＱＩＶＤＮＡＩＱＱＡ（配列番号１０４）

ＡＫＡＰ−ＩＳ上部及びＡＫＡＰ−ＩＳ下部と指定される上記ペプチド配列をコードする２つの相補的重複オリゴヌクレオチドを合成し、アニールした。二本鎖をＰＣＲにより増幅した。増幅プライマーをＰＧＥＭＴ（登録商標）ベクターにクローニングし、Ｔ７（５’）方位での挿入に関してスクリーニングした。

ＤＤＤ１のＣＨ１とのライゲーション
ＤＤＤ１配列をコードする１９０ｂｐ断片を、ＢａｍＨＩ及びＮｏｔＩ制限酵素によりＰＧＥＭＴ（登録商標）から切断し、次いでＣＨ１−ＰＧＥＭＴ（登録商標）における同じ部位にライゲーションして、シャトルベクターＣＨ１−ＤＤＤ１−ＰＧＥＭＴ（登録商標）を生成した。

ＡＤ１のＣＨ１とのライゲーション
ＡＤ１配列を含有する１１０ｂｐ断片を、ＢａｍＨＩ及びＮｏｔＩによりＰＧＥＭＴ（登録商標）から切断し、次いでＣＨ１−ＰＧＥＭＴ（登録商標）における同じ部位にライゲーションして、シャトルベクターＣＨ１−ＡＤ１−ＰＧＥＭＴ（登録商標）を生成した。

このモジュール設計により、ＣＨ１−ＤＤＤ１又はＣＨ１−ＡＤ１のいずれかが、ｐｄＨＬ２ベクターにおける任意のＩｇＧコンストラクトに組み込まれ得る。ｐｄＨＬ２からＳａｃＩＩ／ＥａｇＩ制限断片（ＣＨ１−ＣＨ３）を除去し、それをそれぞれのＰＧＥＭＴ（登録商標）シャトルベクターから切断されたＣＨ１−ＤＤＤ１又はＣＨ１−ＡＤ１のＳａｃＩＩ／ＥａｇＩ断片と置き換えることにより、重鎖定常ドメイン全体が上記コンストラクトの１つで置き換えられる。

Ｃ−ＤＤＤ２−Ｆｄ−ｈＭＮ−１４−ｐｄＨＬ２
Ｃ−ＤＤＤ２−Ｆｄ−ｈＭＮ−１４−ｐｄＨＬ２は、１４アミノ酸残基Ｇｌｙ／Ｓｅｒペプチドリンカーを介してｈＭＮ−１４のＦｄのカルボキシル末端に付加されたＤＤＤ２の二量体化及びドッキングドメイン配列（配列番号２）を有する、Ｃ−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＭＮ−１４の生成のための発現ベクターである。分泌される融合タンパク質は、ＤＤＤ２ドメインの非共有結合的相互作用により互いに保持されたｈＭＮ−１４Ｆａｂの２つの同一コピーで構成される。

発現ベクターは、以下のように操作された。リンカーペプチドの一部のコード配列及びＤＤＤ２の残基１〜１３を含む２つの重複する相補的オリゴヌクレオチドを、合成的に作製した。オリゴヌクレオチドをアニールし、Ｔ４ＰＮＫでリン酸化すると、それぞれ制限エンドヌクレアーゼＢａｍＨＩ及びＰｓｔＩにより消化されたＤＮＡとのライゲーションに適合する、５’及び３’末端上のオーバーハングが生じる。

二本鎖ＤＮＡを、ＢａｍＨＩ及びＰｓｔＩでの消化により調製されたシャトルベクターＣＨ１−ＤＤＤ１−ＰＧＥＭＴ（登録商標）とライゲーションし、シャトルベクターＣＨ１−ＤＤＤ２−ＰＧＥＭＴ（登録商標）を生成した。５０７ｂｐ断片をＳａｃＩＩ及びＥａｇＩによりＣＨ１−ＤＤＤ２−ＰＧＥＭＴ（登録商標）から切断し、ＳａｃＩＩ及びＥａｇＩでの消化により調製されたＩｇＧ発現ベクターｈＭＮ−１４（Ｉ）−ｐｄＨＬ２とライゲーションした。最終発現コンストラクトは、Ｃ−ＤＤＤ２−Ｆｄ−ｈＭＮ−１４−ｐｄＨＬ２と指定された。いくつかの異なるヒト化抗体のＦａｂ断片のＤＤＤ２融合タンパク質を生成するために、同様の技術を使用した。

ｈ６７９−Ｆｄ−ＡＤ２−ｐｄＨＬ２
ｈ６７９−Ｆａｂ−ＡＤ２を、Ｃ−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＭＮ−１４に対合するように設計した。ｈ６７９−Ｆｄ−ＡＤ２−ｐｄＨＬ２は、ｈ６７９−Ｆａｂ−ＡＤ２の生成のための発現ベクターであり、これは、１４アミノ酸残基Ｇｌｙ／Ｓｅｒペプチドリンカーを介してＣＨ１ドメインのカルボキシル末端に付加されたＡＤ２のアンカリングドメイン配列（配列番号４）を有する。ＡＤ２は、ＡＤ１のアンカードメイン配列の前に１つのシステイン残基、及びその配列の後に別のシステイン残基を有する。

発現ベクターは、以下のように操作された。ＡＤ２のコード配列及びリンカー配列の一部を含む２つの重複する相補的オリゴヌクレオチド（ＡＤ２上部及びＡＤ２下部）を、合成的に作製した。オリゴヌクレオチドをアニールし、Ｔ４ＰＮＫでリン酸化すると、それぞれ制限エンドヌクレアーゼＢａｍＨＩ及びＳｐｅＩにより消化されたＤＮＡとのライゲーションに適合する、５’及び３’末端上のオーバーハングが生じる。

二本鎖ＤＮＡを、ＢａｍＨＩ及びＳｐｅＩでの消化により調製されたシャトルベクターＣＨ１−ＡＤ１−ＰＧＥＭＴ（登録商標）にライゲーションし、シャトルベクターＣＨ１−ＡＤ２−ＰＧＥＭＴ（登録商標）を生成した。ＣＨ１及びＡＤ２コード配列を含有する４２９塩基対断片を、ＳａｃＩＩ及びＥａｇＩ制限酵素によりシャトルベクターから切断し、それらの同じ酵素での消化により調製されたｈ６７９−ｐｄＨＬ２ベクターにライゲーションした。最終発現ベクターは、ｈ６７９−Ｆｄ−ＡＤ２−ｐｄＨＬ２である。

ＴＦ２ＤＮＬ（商標）コンストラクトの生成
Ｃ−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＭＮ−１４をｈ６７９−Ｆａｂ−ＡＤ２と反応させることにより、ＴＦ２と指定された三量体ＤＮＬ（商標）コンストラクトを生成した。ＴＦ２のパイロットバッチを、以下のように９０％超の収率で生成した。タンパク質Ｌ−精製Ｃ−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＭＮ−１４（２００ｍｇ）を、ｈ６７９−Ｆａｂ−ＡＤ２（６０ｍｇ）と１．４：１のモル比で混合した。全タンパク質濃度は、１ｍＭＥＤＴＡを含有するＰＢＳ中１．５ｍｇ／ｍｌであった。その後のステップは、ＴＣＥＰ還元、ＨＩＣクロマトグラフィー、ＤＭＳＯ酸化、及びＩＭＰ２９１親和性クロマトグラフィーを含んでいた。ＴＣＥＰの添加前、ＳＥ−ＨＰＬＣは、ａ_２ｂ形成のいかなる兆候も示さなかった。５ｍＭＴＣＥＰの添加は、二元的構造が予測される１５７ｋＤａタンパク質に一致するａ_２ｂ複合物の形成を速やかにもたらした。ＴＦ２を、ＩＭＰ２９１親和性クロマトグラフィーによりほぼ均一となるまで精製した（図示せず）。ＩＭＰ２９１は、６７９Ｆａｂが結合するＨＳＧハプテンを含有する合成ペプチドである（Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，２００５，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１１：７１２２ｓ−２９ｓ）。ＩＭＰ２９１非結合断片のＳＥ−ＨＰＬＣ分析では、生成物からのａ_４、ａ_２及び遊離カッパ鎖の除去が実証された（図示せず）。

ＴＦ２の機能性を、ＢＩＡＣＯＲＥ（登録商標）アッセイにより決定した。ＴＦ２、Ｃ−ＤＤＤ１−ｈＭＮ−１４＋ｈ６７９−ＡＤ１（非共有結合ａ_２ｂ複合物の対照試料として使用）、又はＣ−ＤＤＤ２−ｈＭＮ−１４＋ｈ６７９−ＡＤ２（非還元ａ_２及びｂ成分の対照試料として使用）を、１μｇ／ｍｌ（全タンパク質）に希釈し、ＨＳＧで固定化されたセンサーチップ上に通過させた。ＴＦ２に対する反応は、２つの対照試料の約２倍であり、対照試料中のｈ６７９−Ｆａｂ−ＡＤ成分のみがセンサーチップに結合及びその上に残留することを示していた。その後のｈＭＮ−１４の抗イディオタイプ抗体であるＷＩ２ＩｇＧの注射は、追加的なシグナル反応により示されるように、ＴＦ２のみが、ｈ６７９−Ｆａｂ−ＡＤと堅く結合したＤＤＤ−Ｆａｂ−ｈＭＮ−１４成分を有することを示した。センサーチップ上に固定化されたＴＦ２に対するＷＩ２の結合から生じる反応単位のさらなる増加は、２つの完全に機能的な結合部位に対応し、それぞれＣ−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＭＮ−１４の１つのサブユニットにより寄与された。これは、ＷＩ２の２つのＦａｂ断片に結合するＴＦ２の能力により確認された（図示せず）。

ＴＦ１０ＤＮＬ（商標）コンストラクトの生成
同様のプロトコルを使用して、Ｃ−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＰＡＭ４の２つのコピー及びＣ−ＡＤ２−Ｆａｂ−６７９の１つのコピーを含む三量体ＴＦ１０ＤＮＬ（商標）コンストラクトを生成した。上述のように、（抗ＣＥＡ）_２×抗ＨＳＧｂｓＡｂＴＦ２の生成に関して開示された方法を使用して、ＴＦ１０二重特異性（［ｈＰＡＭ４］_２×ｈ６７９）抗体を生成した。ＴＦ１０コンストラクトは、２つのヒト化ＰＡＭ４Ｆａｂ及び１つのヒト化６７９Ｆａｂを有している。

２つの融合タンパク質（ｈＰＡＭ４−ＤＤＤ２及びｈ６７９−ＡＤ２）が、安定してトランスフェクトされた骨髄腫細胞において独立して発現した。組織培養上澄み液を組み合わせると、２倍モル過剰のｈＰＡＭ４−ＤＤＤ２が得られた。１ｍＭの還元グルタチオンを使用した穏やかな還元条件下で、反応混合物を室温で２４時間インキュベートした。還元後、２ｍＭ酸化グルタチオンを使用した穏やかな酸化により、反応を完了させた。ｈ６７９Ｆａｂに高い特異性で結合するＩＭＰ２９１−ａｆｆｉｇｅｌ樹脂を使用した親和性クロマトグラフィーにより、ＴＦ１０を単離した。

実施例１６．複数の抗体からの、ＡＤ及びＤＤＤ結合Ｆａｂ及びＩｇＧ融合タンパク質の生成
上記実施例に記載の技術を使用して、表１１に示されるＩｇＧ及びＦａｂ融合タンパク質を構築し、ＤＮＬ（商標）コンストラクトに組み込んだ。融合タンパク質は、親抗体の抗原結合特性を保持し、ＤＮＬ（商標）コンストラクトは、組み込まれた抗体又は抗体断片の抗原結合活性を示した。

実施例１７．２つの異なる抗体部分及びサイトカインを含むＤＮＬ（商標）コンストラクトの生成及び使用
ある特定の実施形態において、三量体ＤＮＬ（商標）コンストラクトは、３つの異なるエフェクター部分、例えば２つの異なる抗体部分及びサイトカイン部分を含んでもよい。我々は、本明細書において、ＩＦＮ−α２ｂの２つのコピー、及びベルツズマブ（ヒト化抗ＣＤ２０）に部位特異的に連結したｈＬ２４３（ヒト化抗ＨＬＡ−ＤＲ；ＩＭＭＵ−１１４）の安定化Ｆ（ａｂ）_２を含む、２０−Ｃ２−２ｂと指定される二重特異性ＭＡｂ−ＩＦＮαの生成及び特性決定を報告する。Ｉｎｖｉｔｒｏにおいて、２０−Ｃ２−２ｂは、４つのリンパ腫及び８つの骨髄腫細胞株のそれぞれを阻害し、１つ（ＨＬＡ−ＤＲ⁻／ＣＤ２０⁻）の骨髄腫株を除き（図示せず）全てにおいて、単一特異性ＣＤ２０標的化ＭＡｂ−ＩＦＮα、又は親抗体及びＩＦＮαを含む混合物よりも効果的であり、２０−Ｃ２−２ｂが様々な造血障害の治療に有用であることを示唆していた。２０−Ｃ２−２ｂは、ＨＬＡ−ＤＲ又はＣＤ２０（図示せず）のみを標的化する単一特異性ＭＡｂ−ＩＦＮαよりもＫＭＳ１２−ＢＭ（ＣＤ２０^＋／ＨＬＡ−ＤＲ^＋骨髄腫）に対してより高い細胞毒性を示し、２０−Ｃ２−２ｂにおける３つ全ての成分が毒性に寄与し得ることを示していた。

抗体
以下の議論において使用される略語は、以下の通りである：２０（Ｃ_Ｈ３−ＡＤ２−ＩｇＧ−ｖ−ｍａｂ、抗ＣＤ２０ＩｇＧＤＮＬ（商標）モジュール）；Ｃ２（Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＬ２４３、抗ＨＬＡ−ＤＲＦａｂ_２ＤＮＬ（商標）モジュール）；２ｂ（二量体ＩＦＮα２Ｂ−ＤＤＤ２ＤＮＬ（商標）モジュール）；７３４（非標的化対照として使用される抗−ｉｎ−ＤＴＰＡＩｇＧＤＮＬ（商標）モジュール）。以下のＭＡｂは、Ｉｍｍｕｎｏｍｅｄｉｃｓ，Ｉｎｃ．により提供された：ベルツズマブ又はｖ−ｍａｂ（抗ＣＤ２０ＩｇＧ_１）、ｈＬ２４３γ４ｐ（Ｉｍｍｕ−１１４、抗ＨＬＡ−ＤＲＩｇＧ_４）、マウス抗ＩＦＮαＭＡｂ、並びにｖ−ｍａｂ（ＷＲ２）及びｈＬ２４３（ＷＴ）に対するラット抗イディオタイプＭＡｂ。

ＤＮＬ（商標）コンストラクト
上記の実施例に記載のように、ＤＮＬ（商標）法を使用して、単一特異性ＭＡｂ−ＩＦＮα（２０−２ｂ−２ｂ、７３４−２ｂ−２ｂ及びＣ２−２ｂ−２ｂ）並びに二重特異性ＨｅｘＡｂ（２０−Ｃ２−Ｃ２）を、ＤＤＤ２モジュールとのＩｇＧ−ＡＤ２モジュールの組み合わせにより生成した。四量体ＩＦＮα２ｂ及びＭＡｂｈ７３４［抗インジウム−ＤＴＰＡＩｇＧ_１］を含む７３４−２ｂ−２ｂを、非標的化対照ＭＡｂ−ＩＦＮαとして使用した。

哺乳動物発現ベクターの構築、並びにその後の生成クローンの生成及びＣ_Ｈ３−ＡＤ２−ＩｇＧ−ｖ−ｍａｂの精製は、上記実施例において開示されている。発現した組換え融合タンパク質は、１５アミノ酸長の柔軟性リンカーペプチドを介してｖ−ｍａｂのＣ_Ｈ３ドメインのカルボキシル末端に連結したＡＤ２ペプチドを有する。重鎖ＡＤ２及び軽鎖ポリペプチドの同時発現は、２つのＡＤ２ペプチドを備えるＩｇＧ構造の形成をもたらす。発現ベクターは、エレクトロポレーションによりＳｐ／ＥＳＦ細胞（Ｓｐ２／０の操作された細胞株）にトランスフェクトされた。ｐｄＨＬ２ベクターは、ジヒドロ葉酸還元酵素に対する遺伝子を含有し、このようにしてクローン選択及びメトトレキセート（ＭＴＸ）との遺伝子増幅を可能にする。安定なクローンは、０．２μＭＭＴＸを含有する培地で選択された９６ウェルプレートから単離された。サンドイッチＥＬＩＳＡにより、Ｃ_Ｈ３−ＡＤ２−ＩｇＧ−ｖｍａｂ生産性に関してクローンをスクリーニングした。モジュールは、無血清培地を含むローラーボトル培養において生成された。

上で議論されたように、１８アミノ酸長の柔軟性リンカーペプチドによるヒトＩＦＮα２ｂのカルボキシル末端へのＤＤＤ２ペプチドの組換え融合により、ＤＤＤモジュール、ＩＦＮα２ｂ−ＤＤＤ２を生成した。全てのＤＤＤモジュールの場合と同様に、発現した融合タンパク質は、自然に安定なホモ二量体を形成する。

Ｃ_Ｈ１−ヒンジ−Ｃ_Ｈ２−Ｃ_Ｈ３ドメインの配列を、ＳａｃＩＩ及びＥａｇＩ制限酵素で切断し、これを、Ｃ−ＤＤＤ２−ｈＭＮ−１４−ｐｄＨＬ２発現ベクターから同じ酵素で切断されたＣ_Ｈ１−ＤＤＤ２をコードする５０７ｂｐ配列と置き換えることにより、Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＬ２４３発現ベクターを、ｈＬ２４３−ＩｇＧ−ｐｄＨＬ２ベクターから生成した。エレクトロポレーションによるＣ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＬ２４３−ｐｄＨＬ２のＳｐ／ＥＳＦ細胞へのトランスフェクション後、ホースラディッシュペルオキシダーゼ複合化ヤギ抗ヒトＨａｂで検出される融合タンパク質を捕捉するためにマウス抗ヒトカッパ鎖でコーティングされた９６ウェルマイクロタイタープレートを使用したサンドイッチＥＬＩＳＡにより、安定なＭＴＸ耐性クローンを生産性に関してスクリーニングした。モジュールは、ローラーボトル培養において生成された。

無血清Ｈ−ＳＦＭ培地内でのローラーボトル培養及び流加培養バイオリアクター生成により、現在まで生成されている他のＩｇＧ−ＡＤ２モジュール及びサイトカイン−ＤＤＤ２モジュールに匹敵する収率が得られた。以前に説明されたように（Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，Ｂｌｏｏｄ２００９，１１４：３８６４−７１）、ＭＡＢＳＥＬＥＣＴ（商標）（ＧＥＨｅａｌｔｈｃａｒｅ）及びＨＩＳ−ＳＥＬＥＣＴ（登録商標）ＨＦＮｉｃｋｅｌＡｆｆｉｎｉｔｙＧｅｌ（Ｓｉｇｍａ）を使用した親和性クロマトグラフィーにより、それぞれＣ_Ｈ３−ＡＤ２−ＩｇＧ−ｖ−ｍａｂ及びＩＦＮα２ｂ−ＤＤＤ２を培養ブロスから精製した。Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＬ２４３モジュールを含有する培養ブロスを、ＫＡＰＰＡＳＥＬＥＣＴ（登録商標）親和性ゲル（ＧＥ−Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）に直接適用し、これをＰＢＳでベースラインまで洗浄し、０．１Ｍグリシン、ｐＨ２．５で溶出した。

ＤＮＬ（商標）による２０−Ｃ２−２ｂの生成
３つのＤＮＬ（商標）モジュール（Ｃ_Ｈ３−ＡＤ２−ＩｇＧ−ｖ−ｍａｂ、Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＬ２４３、及びＩＦＮ−α２ｂ−ＤＤＤ２）を、等モル量で組み合わせ、ｂｓＭＡｂ−ＩＦＮα、２０−Ｃ２−２ｂを生成した。穏やかな還元条件下（１ｍＭの還元グルタチオン）での室温で一晩のドッキングステップの後、酸化グルタチオンを添加して（２ｍＭ）、ジスルフィド結合形成（ロッキング）を促進した。３つの逐次的親和性クロマトグラフィーステップを使用して、２０−Ｃ２−２ｂをほぼ均一となるまで精製した。まず、ＤＮＬ（商標）混合物を、Ｃ_Ｈ３−ＡＤ２−ＩｇＧ−ｖ−ＭＡｂ基に結合して、未反応ＩＦＮα２ｂ−ＤＤＤ２又はＣ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＬ２４３を除去するタンパク質Ａ（ＭＡＢＳＥＬＥＣＴ（商標））で精製した。ＩＦＮα２ｂ−ＤＤＤ２部分に特異的に結合して、この基を有さないいかなるコンストラクトも排除するＨＩＳ−ＳＥＬＥＣＴ（登録商標）ＨＦＮｉｃｋｅｌＡｆｆｉｎｉｔｙＧｅｌを使用して、タンパク質Ａ結合材料をＩＭＡＣによりさらに精製した。ｈＬ２４３−抗イディオタイプ親和性ゲルを使用した最終プロセスステップにより、Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＬ２４３を有さないいかなる分子も除去された。

当業者には、３つのエフェクター部分のそれぞれに対するリガンドが得られ、カラム材料に結合し得る限り、親和性クロマトグラフィーを使用して、エフェクター部分の任意の組み合わせを含むＤＮＬ（商標）複合物を精製することができることが理解される。選択されたＤＮＬ（商標）コンストラクトは、３つのエフェクター部分のそれぞれに対するリガンドを含有する３つのカラムのそれぞれに結合し、また非結合複合物を除去するために洗浄後に溶出され得るコンストラクトである。

以下の例は、２０−Ｃ２−２ｂのいくつかの同様の調製の代表例である。等モル量のＣ_Ｈ３−ＡＤ２−ＩｇＧ−ｖ−ｍａｂ（１５ｍｇ）、Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＬ２４３（１２ｍｇ）、及びＩＦＮ−α２ｂ−ＤＤＤ２（５ｍｇ）を、３０ｍＬの反応容積内で組み合わせ、１ｍＭの還元グルタチオンを溶液に添加した。室温で１６時間後、２ｍＭの酸化グルタチオンを混合物に添加し、これを室温でさらに６時間保持した。反応混合物を５ｍＬのタンパク質Ａ親和性カラムに適用し、これをＰＢＳでベースラインまで洗浄し、０．１Ｍのグリシン、ｐＨ２．５で溶出した。約２０ｍｇのタンパク質を含有する溶出物を、３ＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．６で中和し、ＨＩＳ−ＳＥＬＥＣＴ（登録商標）結合緩衝液（１０ｍＭのイミダゾール、３００ｍＭのＮａＣｌ、５０ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４、ｐＨ８．０）中に透析してから、５ｍＬのＨＩＳ−ＳＥＬＥＣＴ（登録商標）ＩＭＡＣカラムに適用した。カラムを結合緩衝液でベースラインまで洗浄し、２５０ｍＭのイミダゾール、１５０ｍＭのＮａＣｌ、５０ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４、ｐＨ８．０で溶出した。

約１１．５ｍｇのタンパク質を含有するＩＭＡＣ溶出液を、ＷＰ（抗ｈＬ２４３）親和性カラムに直接適用し、これをＰＢＳでベースラインまで洗浄し、０．１Ｍのグリシン、ｐＨ２．５で溶出した。プロセスにより、７ｍｇの高純度２０−Ｃ２−２ｂが得られた。これは、全出発材料（この例では１６ｍｇ）の５０％である２０−Ｃ２−２ｂの理論的収率の約４４％であったが、副生成物としてそれぞれ２５％の２０−２ｂ−２ｂ及び２０−Ｃ２−Ｃ２が生成された。

２０−Ｃ２−２ｂの生成及び特性決定
ＩｇＧ−ＡＤ２モジュール、Ｃ_Ｈ３−ＡＤ２−ＩｇＧ−ｖ−ｍａｂを、２つの異なる二量体ＤＤＤ分子、Ｃ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＬ２４３及びＩＦＮα２ｂ−ＤＤＤ２と組み合わせることにより、二重特異性ＭＡｂ−ＩＦＮαを生成した。いずれかのＤＤＤ分子と２つのＡＤ２基との無作為な結合に起因して、２０−Ｃ２−２ｂに加え、２つの副生成物、２０−Ｃ２−Ｃ２及び２０−２ｂ−２ｂが形成されることが予測される。

非還元性ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（図示せず）は、２０−Ｃ２−Ｃ２（約３６５ｋＤａ）及び２０−２ｂ−２ｂ（２５５ｋＤａ）のバンドの間に位置するバンドのクラスタとして、２０−Ｃ２−２ｂ（約３０５ｋＤａ）を分離した。還元性ＳＤＳ−ＰＡＧＥは、２０−Ｃ２−２ｂを含む５つのポリペプチド（ｖ−ｍａｂＨＣ−ＡＤ２、ｈＬ２４３Ｆｄ−ＤＤＤ２、ＩＦＮα２ｂ−ＤＤＤ２並びに同時移動ｖ−ｍａｂ及びｈＬ２４３カッパ軽鎖）を分離した（図示せず）。ＩＦＮα２ｂ−ＤＤＤ２及びｈＬ２４３Ｆｄ−ＤＤＤ２は、２０−Ｃ２−Ｃ２及び２０−２ｂ−２ｂには存在しなかった。ＭＡＢＳＥＬＥＣＴ（商標）は、ＤＮＬ（商標）反応において生成された主要な種の３つ全てに結合するが、いかなる過剰なＩＦＮα２ｂ−ＤＤＤ２及びＣ_Ｈ１−ＤＤＤ２−Ｆａｂ−ｈＬ２４３も除去する。ＨＩＳ−ＳＥＬＥＣＴ（登録商標）非結合断片は、ほとんど２０−Ｃ２−Ｃ２を含有していた（図示せず）。ＷＴ親和性クロマトグラフィーからの非結合断片は、２０−２ｂ−２ｂを含んでいた（図示せず）。試料のそれぞれを、ＳＥ−ＨＰＬＣ及び免疫反応性分析に供したが、これらはＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析の結果及び結論を裏付けた。

２０−Ｃ２−２ｂの還元後、その５つの成分ポリペプチドをＲＰ−ＨＰＬＣにより分離し、各ピークに対して個々のＥＳＩ−ＴＯＦのデコンボリューションされた質量スペクトルを生成した（図示せず）。天然であるが細菌で発現されていない組換えＩＦＮα２は、Ｔｈｒ−１０６でＯ−グリコシル化される（Ａｄｏｌｆｅｔａｌ．，ＢｉｏｃｈｅｍＪ１９９１；２７６（Ｐｔ２）：５１１−８）。我々は、ＩＦＮα２ｂ−ＤＤＤ２モジュールを含むポリペプチドの約１５％がＯ−グリコシル化され、ＲＰ−ＨＰＬＣ及びＳＤＳ−ＰＡＧＥにより非グリコシル化ポリペプチドから分離され得ることを特定した（図示せず）。２０−Ｃ２−２ｂのＬＣ／ＭＳ分析では、ＩＦＮα２ｂ−ＤＤＤ２のＯ−グリコシル化及び非グリコシル化種の両方が、それぞれ１５ｐｐｍ及び２ｐｐｍの質量精度で同定された。Ｏ−グリコシル化形態の観察された質量は、同じく２０−２ｂ−２ｂに対して予測された（＜１ｐｐｍ）構造ＮｅｕＧｃ−ＮｅｕＧｃ−Ｇａｌ−ＧａｌＮＡｃを有するＯ−連結グリカンを示している（図示せず）。ＬＣ／ＭＳでは、ｖ−ｍａｂ及びｈＬ２４３カッパ鎖の両方並びにｈＬ２４３−Ｆｄ−ＤＤＤ２（図示せず）が、単一の非改質種として同定され、観察された質量は、計算質量と一致していた（＜３５ｐｐｍ）。ｖ−ｍａｂＨＣ−ＡＤ２の２つの主要な糖型は、５３，７１４．７３（７０％）及び５３，８７７．３３（３０％）の質量を有するものとして同定され、典型的にＩｇＧと関連するＧ０Ｆ及びＧ１ＦＮ−グリカンをそれぞれ示している（図示せず）。また、分析により、アミノ末端グルタミンを有するポリペプチドに対して予測されるように、ＨＣ−ＡＤ２のアミノ末端がピログルタミン酸に改質されることが確認された。

２０−Ｃ２−２ｂのＳＥ−ＨＰＬＣ分析は、その計算質量と一致する、及びより大きい２０−Ｃ２−Ｃ２（６．６分）及びより小さい２０−２ｂ−２ｂ（６．８５分）の質量の間の保持時間（６．７分）を有する主要なタンパク質ピーク、並びに、ＩＦＮα２ｂの自己切断により形成された非共有結合二量体を表している可能性があるいくつかのより高い分子量のピークを分離した（図示せず）。

免疫反応性アッセイは、２０−Ｃ２−２ｂの均一性を示し、各分子は、３つの官能基を含有していた（図示せず）。３つの構成モジュールのいずれかに対する過剰の抗体との２０−Ｃ２−２ｂのインキュベーションは、高分子量免疫複合物の量的形成及び２０−Ｃ２−２ｂピークの消失をもたらした（図示せず）。ＨＩＳ−ＳＥＬＥＣＴ（登録商標）及びＷＴ親和性非結合断片は、それぞれＷＴ及び抗ＩＦＮαと免疫反応性ではなかった（図示せず）。ＭＡｂ−ＩＦＮαは、その親ＭＡｂに対する同様の結合親和力を示した（図示せず）。

ＩＦＮα生物活性
細胞ベースレポーター遺伝子アッセイを使用して、様々なＭＡｂ−ＩＦＮαの比活性度を測定し、ペグインターフェロンアルファ−２ｂと比較した（図示せず）。予測されるように、２つのＩＦＮα２ｂ基を有する２０−Ｃ２−２ｂの比活性度（２４５４ＩＵ／ｐｍｏｌ）は、２０−２ｂ−２ｂ（４４４７ＩＵ／ｐｍｏｌ）又は７３４−２ｂ−２ｂ（３７６４ＩＵ／ｐｍｏｌ）の比活性度よりも有意に低いが、ペグインターフェロンアルファ−２ｂよりも高い（Ｐ＜０．００１）（図示せず）。２０−２ｂ−２ｂと７３４−２ｂ−２ｂとの間の差は、有意ではなかった。全ての薬剤の間での比活性度は、全ＩＦＮαのＩＵ／ｐｍｏｌに正規化すると、あまり変化がない。これらのデータに基づき、ＭＡｂ−ＩＦＮαの各ＩＦＮα２ｂ基の比活性度は、組換えＩＦＮα２ｂの約３０％である（約４０００ＩＵ／ｐｍｏｌ）。

Ｅｘ−ｖｉｖｏ設定において、２０−Ｃ２−２ｂＤＮＬ（商標）コンストラクトは、正常Ｂ細胞よりも効果的にリンパ腫細胞を枯渇させ、Ｔ細胞に対する効果は有さなかった（図示せず）。しかしながら、単球を効率的に排除した（図示せず）。ｖ−ｍａｂが単球に対する効果を有さない場合、ｈＬ２４３α４ｐ及びＭＡｂ−ＩＦＮαによる治療後に枯渇が観察され、２０−２ｂ−２ｂ及び７３４−２ｂ−２ｂは、同様の毒性を示した（図示せず）。したがって、２０−Ｃ２−２ｂの予測され得るようにより高い効能は、抗ＨＬＡ−ＤＲ及びＩＦＮαの組み合わされた作用に起因し、これはＨＬＡ−ＤＲ標的化により強化され得る。これらのデータは、単球枯渇が、抗ＨＬＡ−ＤＲ及びＩＦＮα治療に関連した薬力学的効果であり得ることを示唆しているが、単球集団は造血幹細胞から再分布されるはずであるため、この副作用は一時的となり得る。

当業者には、二重特異性免疫サイトカイン、又は３つの異なるエフェクター部分を含む他のＤＮＬ（商標）コンストラクトを生成及び使用する、本明細書に記載のアプローチが、ＤＮＬ（商標）コンストラクトに組み込むことができる抗体、抗体断片、サイトカイン又は他のエフェクターの任意の組み合わせ、例えば、抗ＣＤ３及び抗ＣＤ１９又は他の抗ＴＡＡとＩＦＮα２ｂとの組み合わせと共に使用され得ることが理解される。

実施例１８．ＮＫ標的化白血球再指向ｂｓＡｂの使用
白血球を再標的化するためのｂｓＡｂの使用は、Ｔ細胞に対する抗体に限定されない。代替の実施形態において、単球、ＮＫ細胞又は好中球に結合するｂｓＡｂもまた、再標的化の目的に使用され得る。

ＣＤ１６は、ＩｇＧの活性化低親和性Ｆｃ−γ受容体であり、これはＮＫ細胞のＣＤ５６^ｄｉｍサブセットにより高度に発現される（Ｇｌｅａｓｏｎｅｔａｌ．，２０１２，ＭｏｌＣａｎｃｅｒＴｈｅｒ１１：２６７４−８４）。ＮＫ細胞再標的化におけるそれらの使用に加えて、抗ＣＤ１６抗体成分を含むｂｓＡｂは、ＣＤ１６の直接シグナリングによりＮＫ媒介細胞毒性を活性化し、溶解性顆粒の指向性分泌及び標的細胞死を誘導する能力を有する（Ｇｌｅａｓｏｎｅｔａｌ．，２０１２）。

ＣＤ１６／ＣＤ１９二重特異性キラー細胞エンゲージャー（ＢｉＫＥ）及びＣＤ１６／ＣＤ１９／ＣＤ２２三重特異性キラー細胞エンゲージャー（ＴｒｉＫｅ）は、以前に報告されたようなＤＮＡシャフリング及びライゲーション技術（Ｖａｌｌｅｒａｅｔａｌ．，２００５，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１１：３８７９−８８）を使用して、（Ｇｌｅａｓｏｎｅｔａｌ．，２０１２，ＭｏｌＣａｎｃｅｒＴｈｅｒ１１：２６７４−８４）に従い調製される。発現したＢｉＫＥ及びＴｒｉＫＥは、逐次的イオン交換及びサイズ排除カラムクロマトグラフィーにより精製される。休止ＰＢＭＣは、ＣＤ１６／ＣＤ１９ＢｉＫＥ又はＣＤ１６／ＣＤ１９／ＣＤ２２ＴｒｉＫＥ（１０μｇ／ｍＬ）の存在下で、原発性ＡＬＬ及びＣＬＬ腫瘍細胞に曝露される。再標的化抗体のない細胞と比較して、ＢｉＫＥ又はＴｒｉＫＥの存在下では、腫瘍細胞に対する細胞毒性の有意な増加が観察される。ＰＢＭＣの非存在下では、ＢｉＫＥ又はＴｒｉＫＥに曝露された腫瘍細胞に対する効果は観察されなかった。ＴｒｉＫＥは、ＢｉＫＥと比べて腫瘍細胞毒性に対するより大きな効果を有し、追加的な腫瘍細胞抗原への結合が、再標的化効果を高めることができることを示している。ＰＢＭＣの代わりに精製ＮＫ細胞を使用しても同様の結果が得られる。

ＣＤ１６／ＣＤ３３ＢｉＫＥは、Ｗｉｅｒｎｉｋら（２０１３，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ１９：３８４４−５５）において開示されているように調製される。ＢｉＫＥは、ヒトＰＢＭＣを同時投与されたヒトＨＬ６０前骨髄球性白血病異種移植片細胞を注射されたヌードマウスに投与される。ＢｉＫＥ処理マウスは、対照ｂｓＡｂで処理されたマウスと比較して、死亡率及び腫瘍成長の低下を示す。抗ＣＤ３３−ＳＮ−３８ＡＤＣの追加は、ＢｉＫＥの細胞毒性効果をさらに高める。

実施例１９．複合化抗ＨＩＶ抗体を使用したＩｎＶｉｔｒｏ及びＩｎＶｉｖｏでのＨＩＶ感染の阻害
概要
ＨＩＶ−１に対する免疫抱合体の効力を実証するため、ＨＩＶのエンベロープ抗原に対するマウスモノクローナル抗体（Ｍａｂ）（Ｐ４／Ｄ１０）を、従来の抗がん薬物ドキソルビシンと複合化し、ｉｎｖｉｔｒｏ及びｉｎｖｉｖｏの両方において、感染性ウイルス及び感染細胞に対して試験した。Ｐ４／Ｄ１０抗体を、遊離ウイルス（中和）又はＨＩＶ感染細胞（阻害）と共にインキュベートし、生じた感染を、ｐ２４捕捉酵素免疫測定法により測定した。ＨＩＶ−１／ＭｕＬＶマウス負荷モデルにおいて、ｉｎｖｉｖｏで感染を阻害する複合体の能力を測定した。

ドキソルビシン複合化Ｐ４／Ｄ１０は、ｉｎｖｉｔｒｏにおいて、ＨＩＶ−１_ＩＩＩＢを中和し、感染Ｊｕｒｋａｔ細胞における細胞間伝播及びＨＩＶ複製を排除した。また、ドキソルビシン複合化Ｐ４／Ｄ１０は、遊離抗体おいて必要な濃度より８倍低い濃度で、マウスをＨＩＶ−１_ＩＩＩＢ／ＭｕＬＶの負荷から保護し、一方遊離薬物又は無関係な複合体対照においては効果は観察されなかった。

これらの結果は、ドキソルビシンがＰ４／Ｄ１０抗体によりＨＩＶ感染細胞に濃縮され、ＨＩＶ排除に有意に（Ｐ＝０．０００１）寄与することを示している。ＡＲＴ（抗レトロウイルス療法）により処理された患者における残りの抗原発現Ｔ細胞を根絶するために、同じ組成物及び方法が有用である。

この試験において、我々は、患者における既知の薬理学、毒性学、及び抗腫瘍活性を有する抗がんアントラサイクリンであるドキソルビシンを、ＨＩＶ−１外側エンベロープｇｐ１２０（第３可変ループ領域）に対して確立された中和及びＡＤＣＣ媒介モノクローナル抗体（Ｍａｂ）に複合化した。

ドキソルビシンに複合化されたＰ４／Ｄ１０抗体を、非感染細胞からのＨＩＶ−１感染細胞の排除におけるその効力に関してｉｎｖｉｔｒｏで、及びマウスモデルにおいてＨＩＶ−１／ＭｕＬＶ（マウス白血病ウイルス）感染同系細胞を腹腔から取り出すことにより試験した。抗ｇｐ１２０抗体、Ｐ４／Ｄ１０は、ＨＩＶ−１ウイルスを中和し、ＡＤＣＣを媒介する（Ｂｒｏｌｉｄｅｎｅｔａｌ．，１９９０）。これはまた、末期ＨＩＶ−１感染個人に対する第Ｉ相臨床試験において、その非複合化形態で使用されており、長期間ＨＩＶ抗原を減少させた（Ｈｉｎｋｕｌａｅｔａｌ．，１９９４）。本試験は、遊離Ｍａｂ、遊離薬物、並びにドキソルビシンと同様に複合化した無関係の抗体ｈＲＳ７（Ｓｔｅｉｎｅｔａｌ．，ＩｎｔＪＣａｎｃｅｒ１９９３，５５：９３８−９４６）及びｈＬＬ１（Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓｅｔａｌ．，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ２００３，９：６５６７−６５７１；Ｓａｐｒａｅｔａｌ．，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ２００５，１１：５２５７−５２６４）と比較して、薬物複合化形態でのＰ４／Ｄ１０の組み合わせを前臨床ＨＩＶモデルにおいて初めて検査するものであった。

材料及び方法
抗体及び薬物複合化。ドキソルビシンのＩｇＧ１κ抗ｇｐ１２０抗体Ｐ４／Ｄ１０（Ｂｒｏｌｉｄｅｎｅｔａｌ．，１９９０）及び対照抗体との複合化、並びにマレイミド基を有する二官能性ドキソルビシンヒドラゾン誘導体の調製を、Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓら（２００３）に従い行った。簡潔に説明すると、約９ｍｇ／ｍｌの最終濃度の抗体Ｐ４／Ｄ１０、ｈＬＬ１（ヒト化抗ＣＤ７４）、及びｈＲＳ７（ヒト化抗ＥＧＰ−１）を、５ｍＭのＥＤＴＡを含有するＰＢＳ（ｐＨ７．５）中のＤＴＴ（ジチオスレイトール）で、抗体に対して３８倍モル過剰の還元剤に相当する約２．２ｍＭの最終ＤＴＴ濃度を使用して穏やかに還元した。溶液を、３７℃で４０分間インキュベートした。１５０ｍＭのＮａＣｌ及び２ｍＭのＥＤＴＡを含有する５０ｍＭの酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．３）中で、還元したＭａｂをＳｅｐｈａｄｅｘＧ５０／８０のスピンカラム上で精製した。抗体上に生成されたチオール基の数を、エルマンアッセイにより決定した。複合化に関して、６．５ｍｇ／ｍｌの穏やかに還元された抗体を、二官能性ドキソルビシンと混合した。インキュベートを氷上で１５分間維持し、０．１Ｍの酢酸ナトリウム（ｐＨ６．５）中のＧ５０／８０のスピンカラム上で精製し、続いて同じ緩衝液で平衡化されたＢｉｏ−ＢｅａｄｓＳＭ２（Ｂｉｏ−Ｒａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）の短いカラムに通過させた。吸光度を測定することにより、生成物をドキソルビシン／Ｍａｂ置換比に関して分析した。分析ＢｉｏＳｉｌ２５０カラム上でサイズ排除ＨＰＬＣ分析を行った。

ＨＩＶ感染患者からのＩｇＧのＧＭＰ生成ロット（ＨＩＶＩｇＧ）（Ｇｕａｙｅｔａｌ．ＡＩＤＳ２００２，１６：１３９１−１４００）を陽性対照として使用し、ＨＩＶ陰性個人からの血清を陰性対照として使用した。遊離ドキソルビシン、並びにドキソルビシンに同様に複合化した抗がんヒト化ＭａｂＬＬ１及びＲＳ７を、複合化Ｐ４／Ｄ１０抗体の対照として含めた。

ＨＩＶ−１中和アッセイ。ドキソルビシンＰ４／Ｄ１０、非標識化Ｐ４／Ｄ１０、ＨＩＶ免疫グロブリン（ＨＩＶＩｇＧ）、及びＨＩＶ陰性血清を、ＨＩＶ−１分離株ＨＩＶ−１_ＩＩＩＢ（ＬＡＩ）と混合し、３７℃で１時間インキュベートしてから、５０，０００ＪｕｒｋａｔＴ細胞／ウェルを添加した。１時間のインキュベーション後、細胞を培地で洗浄し、新しい完全培地を添加した（２００μｌ／ウェル）。７日間の培養後、生成されたｐ２４の量を、ｐ２４捕捉ＥＬＩＳＡ（酵素免疫測定法）により測定し、ＨＩＶ−１ｐ２４生成の阻害パーセントを計算した。

ＩｎｖｉｔｒｏでのＨＩＶ−１阻害。５〜１０×１０^６の細胞を１００×ＴＣＩＤ_５０ＨＩＶ−１_ＩＩＩＢと混合し、３７℃で１時間インキュベートすることにより、ＪｕｒｋａｔＴ細胞を、ＨＩＶ−１_ＩＩＩＢに感染させた。細胞を培地中で洗浄し、３７℃でインキュベートした。３日毎に培地を交換し、ｐ２４生成に関して上澄みをチェックした。細胞の１００％近くが感染したら、異なる割合のＨＩＶ−１_ＩＩＩＢ感染細胞を、非感染細胞と混合した。細胞を、１００〜０．００００１μｇ／ｍｌの抗体、血清、又は遊離ドキソルビシンの連続希釈物により処理した。３７℃で数日の培養後、ＨＩＶ−１ｐ２４阻害を測定し、事前に０．１〜１０μｇ／ｍｌのドキソルビシンＰ４／Ｄ１０、非複合化Ｐ４／Ｄ１０、及び０．０５〜０．５ｍｇ／ｍｌＨＩＶ陰性血清で処理された細胞からの上澄みを収集して、新鮮なＪｕｒｋａｔＴ細胞に移し、培養開始後３、７、１０、１２、及び１５日目に感染性ＨＩＶがｐ２４ＥＬＩＳＡにより同定されるかどうかを試験した。

ＨＩＶ−１／ＭｕＬＶ負荷モデル。遺伝子的に統合されたＭｕＬＶゲノムを有するヒトＴ細胞株、ＣＥＭ−１Ｂを、ＨＩＶ−１_ＩＩＩＢに感染させ、これによりＨＩＶ−１ゲノム及びＭｕＬＶエンベロープを有する偽ウイルスの生成をもたらした（Ａｄａｎｇｅｔａｌ．，ＰＮＡＳＵＳＡ１９９９，９６：１２７４９−７５３；Ｈｉｎｋｕｌａｅｔａｌ．，ＣｅｌｌｓＴｉｓｓｕｅｓＯｒｇａｎｓ２００４，１７７：１６９−１８４）。これらのウイルスの上澄みを使用して、ＨＬＡ−Ａ２０１に対してトランスジェニックであるＣ５７Ｂｌ／６ｘＤＢＡＦ１Ｋ^ｂ／ｄマウスからの脾細胞を感染させた。同系マウスを、ＨＩＶ−１_ＩＩＩＢ／ＭｕＬＶ感染脾細胞で腹腔内経路で負荷し、速やかに複合化抗体、遊離抗体又は遊離ドキソルビシンを腹腔内投与した。負荷から１０日後、マウスを致死させ、腹腔細胞を収集した。腹腔細胞をペレット化し、２４ウェルプレート内で増殖させた１×１０^６のＨＩＶ感受性ＪｕｒｋａｔＴ細胞又はヒトＰＢＭＣに添加した。３〜４日毎に、これらの２次培養物から上澄みを取り出し、新鮮な培地を添加した。上澄み中に回収された感染性ＨＩＶの量を、ｐ２４ＥＬＩＳＡにより３週間測定した。

統計分析。抗ｇｐ１２０Ｍａｂ及び対照抗体のｉｎｖｉｔｒｏＨＩＶ−１中和能力を比較するために、スチューデントｔ−検定及びノンパラメトリックＫｒｕｓｋａｌ−Ｗａｌｌｉｓ検定を使用した。ノンパラメトリックＭａｎｎ−ＷｈｉｔｎｅｙＵ及びＫｒｕｓｋａｌ−Ｗａｌｌｉｓ検定を使用して、異なる抗体で処理されたマウスの群の間の統計分析を行った。０．０５未満のｐ値が得られたら、差が有意であるとみなした。ＧｒａｐｈＰａｄＰｒｉｓｍバージョン４．０ａ（ＧｒａｐｈＰａｄＳｏｆｔｗａｒｅ、ＳａｎＤｉｅｇｏ、ＣＡ）を使用してノンパラメトリック一元配置ＡＮＯＶＡ検定を行い、試験群間のＨＩＶ−１単離及びｐ２４抗原陽性度の比較に使用した。

結果
穏やかな還元によりそれぞれの抗体上に生成されたチオール基の数、及び最終的な精製複合体におけるドキソルビシン／Ｍａｂ置換比は、８．８（Ｐ４／Ｄ１０、ｈＲＳ７）から９．４（ｈＬＬ１）の間の範囲であり、ＩｇＧ当たり約９個の薬物分子の比を与えた。高圧液体クロマトグラフィー分析では、複合体及び天然Ｍａｂが同様の保持時間を有し、ゼロから最小限の凝集を伴うことを示した（データは示さず）。

ドキソルビシン複合化Ｐ４／Ｄ１０Ｍａｂと非複合化Ｐ４／Ｄ１０Ｍａｂ又はＨＩＶＩｇＧ抗体との間で、遊離ＨＩＶ−１ウイルスのＨＩＶ−１中和能力に有意な差は示され得なかった（図示せず）。しかしながら、全ての抗ＨＩＶ−１特異的抗体は、ＨＩＶ−１_ＩＩＩＢの中和において陰性対照血清（ｐ＝０．００１）よりも有意に良好であった。

３％のＨＩＶ−１_ＩＩＩＢ感染Ｊｕｒｋａｔ細胞を９７％の非感染細胞と混合すると、ドキソルビシン−Ｐ４／Ｄ１０は、０．５又は０．０５μｇ／ｍｌの濃度で、遊離Ｐ４／Ｄ１０、ドキソルビシン複合化対照抗体、ｈＬＬ１、又は遊離ドキソルビシンよりも有意に（ｐ＝０．００２）強くＨＩＶ−１感染の細胞間伝播の阻害を媒介した（図示せず）。感染及び非感染細胞の他の全ての濃度において、同様の結果が見られた。感染の細胞間伝播は、中和薬剤としてのドキソルビシン−Ｐ４／Ｄ１０により得られた効果よりもさらにより強力に阻害されるようであることが特に興味深かった。また、これらの細胞培養物から非感染Ｊｕｒｋａｔ細胞に上澄みを移した後にｐ２４生成が検出されなかったため（データは示さず）、高用量のドキソルビシン−Ｐ４／Ｄ１０で処理された培地中に感染性ウイルスを見出すことはできなかった。ドキソルビシン−Ｐ４／Ｄ１０と非複合化Ｐ４／Ｄ１０との間の効果の有意な差は、遊離ＨＩＶ−１ウイルスの中和に関する結果から予測され得なかった（図示せず）。

ドキソルビシン−Ｐ４／Ｄ１０抗体のｉｎｖｉｖｏでの効用を試験するために、マウスに同系ＨＩＶ／ＭｕＬＶ感染細胞を複合体と共に腹腔内に投与した。１０日後に腹腔細胞を採取し、以前の研究（Ｈｉｎｋｕｌａｅｔａｌ．，２００４）と同様に、全ての対照において感染ＨＩＶが示された。ドキソルビシン−Ｐ４／Ｄ１０抗体は、ＨＩＶ−１感染原発性リンパ細胞による負荷から、マウスを完全に保護した（ｐ＝０．０００１）（図示せず）。負荷及び１００μｇのドキソルビシン−Ｐ４／Ｄ１０抗体による処理後、腹腔細胞から感染性ＨＩＶは回収されなかった。マウスを１００μｇの非複合化Ｐ４／Ｄ１０抗体で処理すると、全てｐ２４生成に関して陽性であった。抗体のみによる完全保護は、マウス当たり８００μｇの非複合化Ｐ４／Ｄ１０まで用量を８倍に増加させた場合にのみ見られた。ドキソルビシン複合化対照抗体（ｈＬＬ１又はｈＲＳ７）はいずれも、１００〜２００μｇの用量においていかなる保護も提供せず、また１００〜４００μｇの用量の遊離ドキソルビシンも保護を提供しなかった。

考察
上記の結果は、ＨＩＶ−１のエンベロープに対して指向された抗体の全ウイルス阻害特性が、ドキソルビシンへのカップリングにより有意に増幅され得ることを示している。ドキソルビシン−Ｐ４／Ｄ１０は、ｉｎｖｉｔｒｏで、及びｉｎｖｉｖｏ負荷モデルでの実験においてＨＩＶ−１感染細胞を排除することができた。ＨＩＶ−１感染標的細胞に対してＡＤＣＣを媒介する、及びＨＩＶ−１を中和する非複合化Ｐ４／Ｄ１０Ｍａｂの能力（Ｂｒｏｌｉｄｅｎｅｔａｌ．，１９９０；Ｈｉｎｋｕｌａｅｔａｌ．，１９９４）は、薬物免疫抱合体として非毒性的にその効用を高めることができる。

同様にドキソルビシンに複合化した抗がん抗ＣＤ７４Ｍａｂ、ＬＬ１は、非常に低い用量で、ｉｎｖｉｔｒｏで、及び非ホジキンリンパ腫又は多発性骨髄腫のヒト異種移植片モデルにおいて顕著な活性を示した（Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓｅｔａｌ．，２００３；Ｓａｐｒａｅｔａｌ．，２００５）。これらの研究は、サルにおける毒性学と同様に、非常に高い用量の免疫抱合体のみが骨髄抑制の兆候を示すことを示したが、ドキソルビシンに関連した心毒性は観察されなかった（Ｓａｐｒａｅｔａｌ．，２００５）。ウイルスの脱出を回避するために、ＨＩＶのアクセス可能なエピトープの保存及び可変部位の両方に指向性の抗体が共に試験されるべきである（Ｔｒｋｏｌａｅｔａｌ．，２００５；Ｆｅｒｒａｎｔｅｌｌｉｅｔａｌ．，ＪＩｎｆｅｃｔＤｉｓ２００４，１８９：２１６７−２１７３）。

以前のｉｎｖｉｔｒｏ研究において、シュードモナス外毒素Ａ（ＰＥ４０）に複合化されたＨＩＶ−１特異的免疫グロブリンは、ＨＩＶ−１感染細胞を除去した（Ｐｉｎｃｕｓｅｔａｌ．，２００３；Ａｓｈｏｒｎｅｔａｌ．，ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ１９９０，８７：８８８９−８８９３）。しかしながら、臨床試験において、ＣＤ４細胞にカップリングしたＰＥ４０は、免疫原性及び肝毒性であることが判明した（Ｄａｖｅｙｅｔａｌ．，１９９４；Ｒａｍａｃｈａｎｄｒａｎｅｔａｌ．，１９９４）。したがって、副作用をほとんど、又は全く示さないドキソルビシン−Ｍａｂ複合体の効用を示す本発明の結果は、驚くべきものであり、予想外である。ＰＥ４０−ＣＤ４の毒性は、高いウイルス量を有する非ＡＲＴ処理患者において高濃度で存在する遊離ｇｐ１２０との毒性複合体の形成により説明され得る（Ｂｅｒｇｅｒｅｔａｌ．，１９９８）。高いウイルス量に関連した潜在的毒性問題を回避するために、好ましくは、ウイルス負荷が低い設定において、例えばＡＲＴの間に、ＨＩＶ感染の初期において、又はさらにＨＩＶによる感染への既知の若しくは潜在的な曝露の直後に、ＨＩＶエンベロープ特異的エピトープを標的化する分子が使用されるべきである。例えば、針刺し事故によりＨＩＶ汚染又は潜在的に汚染された血液又は液体に曝露された医療従事者は、開示された方法に従い複合化抗体で処置され得る。ドキソルビシン−Ｐ４／Ｄ１０複合体の抗細胞活性の結果、ＡＲＴで治療された患者への薬物複合体の追加は、抗原保持細胞及び遊離ビリオンを排除することができ、したがってウイルス量をさらに低減し得る。当業者には、請求される組成物及び方法が、Ｐ４／Ｄ１０のドキソルビシン複合体に限定されず、むしろＰ４／Ｄ１０又は他の既知の抗ＨＩＶ抗体に複合化された他の既知の細胞毒性薬剤を使用することができることが理解される。

他の実施形態において、非特異的毒性を回避するために、二重特異性抗体、並びに抗体標的化及び毒性薬剤の送達が別個である他の事前標的化戦略が使用されてもよい（Ｗｕｅｔａｌ．，２００５）。この戦略は、前臨床及び臨床がん試験の両方において有望な結果を示した（Ｆｏｒｅｒｏｅｔａｌ．，Ｂｌｏｏｄ２００４，１０４：２２７−２３６；Ｒｏｓｓｉｅｔａｌ．，ＣｌｉｎＣａｎｃｅｒＲｅｓ２００５，１１：７１２２ｓ−７１２９ｓ）。ヒト対象におけるｉｎｖｉｖｏでの使用の場合、反復的な臨床用途のためにヒト又はヒト化形態の抗体が好ましい。

実施例２０．ＡＤＣ及びＴ細胞再指向ｂｓＡｂによるＨＩＶ感染患者の治療
４７歳の男性の患者が、ＨＩＶに対し血清反応陽性であると判定される。患者は、２００／ｍｍ^３未満のＣＤ４カウントを有する。患者を、非ヌクレオシド逆転写酵素阻害薬ネビラピンの標準投薬計画で治療する。ＣＤ４細胞カウントは３００／ｍｍ^３に改善するが、患者はまだＨＩＶに対し血清反応陽性である。患者を、ヒト化ドキソルビシン−Ｐ４／Ｄ１０抗体で、続いて白血球再指向（Ｐ４／Ｄ１０）−３ｓｂｓＡｂで治療する。患者のＣＤ４カウントは、３５０／ｍｍ^３超まで改善し、患者はもはやＨＩＶに対し血清反応陽性ではない。１年後、患者は無症状のままであり、検出可能なＨＩＶ感染の存在はない。

実施例２１．治療用途の三価抗体
（ｉ）ＥＰ１３０９７９５の請求項１のＦａｂが得られる、特許ＵＳ６１８７２８に記載のようなマウス抗ＣＤ１６ｍａｂを、キメラ化又はヒト化することと；（ｉｉ）ＵＳ７５１２１８９に記載のヒト化抗ＨＬＡ−ＤＲ抗体のＦｖを含む一本鎖抗体を構築し、（ｉ）の抗ＣＤ１６Ｆａｂの軽鎖のカルボキシル末端にｓｃＦｖをリンカーにより繋げることと；（ｉｉｉ）ＵＳ８４８６３９５に記載のヒト化抗ＣＤ１９のＦｖの一本鎖を構築し、（ｉｉ）の抗ＣＤ１６ＦａｂのＣＨ１のカルボキシル末端にｓｃＦｖをリンカーにより繋げることとを含む特許ＥＰ１３０９７９５Ｂ１に記載のように、三価三重特異性細胞標的化コンストラクトを作製する。

三価コンストラクトを、非ホジキンリンパ腫を有する患者に、ｈＬＬ２−ＳＮ３８と組み合わせて投与する。部分反応が観察され、腫瘍は、１２ヶ月持続するサイズの退縮を示す。

本明細書において開示及び請求される組成物及び方法は全て、本開示に照らして必要以上の実験を行うことなく作製及び使用することができる。組成物及び方法は、好ましい実施形態に関して説明されたが、当業者には、本発明の概念、精神及び範囲から逸脱せずに、本明細書に記載の組成物及び方法に、並びに方法のステップ又は一連のステップにおいて変形例が適用されてもよいことが明らかである。より具体的には、化学的にも生理学的にも関連したある特定の薬剤が本明細書に記載の薬剤と置換されてもよく、一方で同じ又は同様の結果が達成される。当業者に明らかな全てのそのような同様の置換及び修正は、添付の特許請求の範囲により定義されるような本発明の精神、範囲及び概念に含まれるとみなされる。

Claims

がんに対する免疫反応を誘導するための医薬を製造するための組成物の使用であって、
前記組成物は、
（ａ）白血球再指向二重特異性抗体からなる第１の薬剤、並びに
（ｂ）（ｉ）インターフェロン−α、インターフェロン−β、インターフェロン−λ１、インターフェロン−λ２及びインターフェロン−λ３からなる群から選択されるインターフェロン、及び（ｉｉ）チェックポイント阻害剤抗体からなる群から選択される第２の薬剤の組み合わせを含み、
前記白血球再指向二重特異性抗体は、
白血球抗原ＣＤ３に結合する第１の抗体又はその抗原結合断片と、
ＣＤ１９、ＣＤ２０、ＣＤ２２、ＣＥＡ（ＣＥＡＣＡＭ５）、ＣＥＡＣＡＭ６、ＨＬＡ−ＤＲ、ＭＵＣ５ａｃ、及びＴＲＯＰ−２からなる群から選択される腫瘍関連抗原に結合する、第２の抗体又はその抗原結合断片と、を含み、
前記薬剤の組み合わせは、前記がんに対する白血球媒介免疫反応を誘導する、使用。
前記第２の抗体は、ｈＰＡＭ４（抗ムチン）、ＫＣ４（抗ムチン）、ｈＡ２０（抗ＣＤ２０）、ｈＡ１９（抗ＣＤ１９）、ｈＬＬ２（抗ＣＤ２２）、ＲＦＢ４（抗ＣＤ２２）、ｈＬ２４３（抗ＨＬＡ−ＤＲ）、ｈＭＮ−１４（抗ＣＥＡＣＡＭ５）、ｈＭＮ−１５（抗ＣＥＡＣＡＭ６）、ｈＲＳ７（抗ＴＲＯＰ−２）、ｈＭＮ−３（抗ＣＥＡＣＡＭ６）、イブリツモマブチウキセタン（抗ＣＤ２０）、リツキシマブ（抗ＣＤ２０）、トシツモマブ（抗ＣＤ２０）、及びＧＡ１０１（抗ＣＤ２０）からなる群から選択される、請求項１に記載の使用。
前記第２の抗体は、ｈＡ１９、ｈＰＡＭ４、ｈＡ２０（ベルツズマブ）、ｈＬＬ２（エプラツズマブ）、ｈＬ２４３、ｈＭＮ−１４、ｈＭＮ−１５、ｈＲＳ７及びｈＭＮ−３からなる群から選択される、請求項１に記載の使用。
前記インターフェロンは、インターフェロン−αである、請求項１〜３のいずれか一項に記載の使用。
前記チェックポイント阻害剤抗体は、ラムブロリズマブ（ＭＫ−３４７５）、ニボルマブ（ＢＭＳ−９３６５５８）、ピジリズマブ（ＣＴ−０１１）、ＡＭＰ−２２４、ＭＤＸ−１１０５、ＭＥＤＩ４７３６、ＭＰＤＬ３２８０Ａ、ＢＭＳ−９３６５５９、イピリムマブ、リルルマブ、ＩＰＨ２１０１及びトレメリムマブからなる群から選択される、請求項１〜４のいずれか一項に記載の使用。
前記チェックポイント阻害剤抗体は、ＣＴＬＡ４、ＰＤ１、ＰＤ−Ｌ１、ＬＡＧ３、Ｂ７−Ｈ３、Ｂ７−Ｈ４、ＫＩＲ及びＴＩＭ３からなる群から選択される抗原に結合する、請求項１〜４のいずれか一項に記載の使用。
前記白血球再指向二重特異性抗体は、
ＡＤ（アンカリングドメイン）部分に複合した第１の抗体又はその抗原結合断片であって、前記ＡＤ部分のアミノ酸配列は、ＡＫＡＰタンパク質由来である、第１の抗体又はその抗原結合断片と；
ＤＤＤ（二量体化及びドッキングドメイン）部分に複合した第２の抗体又はその抗原結合断片であって、前記ＤＤＤ部分のアミノ酸配列は、タンパク質キナーゼＡ（ＰＫＡ）調節サブユニットＲＩＩαの１〜４４、ＲＩＩβの１〜４４、ＲＩαの１２〜６１、及びＲＩβの１３〜６６の残基からなる群から選択される、第２の抗体又はその抗原断片と；を含み、
前記ＤＤＤ部分の２つのコピーは、前記ＡＤ部分の１つのコピーに結合して複合物を形成する二量体を形成する、請求項１〜６のいずれか一項に記載の使用。
前記がんは、非ホジキンリンパ腫、Ｂ細胞リンパ腫、Ｂ細胞白血病、Ｔ細胞リンパ腫、Ｔ細胞白血病、急性リンパ性白血病、慢性リンパ性白血病、バーキットリンパ腫、ホジキンリンパ腫、ヘアリー細胞白血病、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病、多発性骨髄腫、神経膠腫、ワルデンシュトレームマクログロブリン血症、癌腫、黒色腫、肉腫、神経膠腫、皮膚がん、口腔がん、消化管がん、結腸がん、胃がん、肺気道がん、肺がん、乳がん、卵巣がん、前立腺癌、子宮がん、子宮内膜がん、子宮頸がん、膀胱がん、膵臓がん、骨がん、肝臓がん、胆嚢がん、腎臓がん、及び精巣がんからなる群から選択される、請求項１〜７のいずれか一項に記載の使用。
前記組成物は、抗体、抗体断片、薬物、毒素、酵素、細胞毒性薬剤抗血管形成薬剤、プロアポトーシス薬剤、抗生物質、ホルモン、免疫賦活剤、サイトカイン、ケモカイン、アンチセンスオリゴヌクレオチド、小分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、ホウ素化合物及び放射性同位体からなる群から選択される治療薬剤をさらに含む、請求項１〜８のいずれか一項に記載の使用。
前記白血球再指向二重特異性抗体は、
第１のペプチドリンカーによりＶＬ−ＣＬ免疫グロブリンドメインのＣＬに連結した第１の単鎖Ｆｖ結合部位（ｓｃＦｖ）を含む第１のポリペプチドと；
第２のペプチドリンカーによりＶＨ−ＣＨ１免疫グロブリンドメインのＣＨ１に連結した第２の単鎖Ｆｖ結合部位（ｓｃＦｖ）を含む第２のポリペプチドであって、前記ＣＨ１は、ヒトＩｇＧ１ＣＨ１である、第２のポリペプチドと；を含み、
前記第１及び第２のｓｃＦｖのそれぞれは、独立して標的結合部位を形成し、ＶＬ領域及びＶＨ領域は、関連して標的結合部位を形成し；前記第２のペプチドリンカーにおけるシステイン残基は、ＣＬ領域とジスルフィド結合を形成し；前記白血球再指向二重特異性抗体は、腫瘍関連抗原、及びエフェクターＴ細胞により発現される抗原に結合する、請求項１〜９のいずれか一項に記載の使用。