JP6521915B2 - Cd86アンタゴニストの多標的結合タンパク質 - Google Patents
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Description
本出願は、2008年10月2日に出願された米国仮特許出願番号61/102,288号、2008年10月2日に出願された米国仮特許出願番号61/102,297号、2008年10月2日に出願された米国仮特許出願番号61/102,307号、2008年10月2日に出願された米国仮特許出願番号61/102,315号、2008年10月2日に出願された米国仮特許出願番号61/102,319号、2008年10月2日に出願された米国仮特許出願番号61/102,327号、2008年10月2日に出願された米国仮特許出願番号61/102,331号、2008年10月2日に出願された米国仮特許出願番号61/102,334号、2008年10月2日に出願された米国仮特許出願番号61/102,336号の米国特許法119条(e)項の下での利益を主張し、これら(9件)の仮出願は、その全容が参照によって本明細書に援用される。
本出願書類に関連する配列表を、紙面コピーに代えてテキスト形式で提供し、引用により本明細書に組み込んでいる。配列表を含むテキストファイル名は、910180_421PC_SEQUENCE_LISTING.txtである。テキストファイルは705KBであり、2009年10月2日に作成したものであり、本明細書の出願と同時にEFS−Webにより電子的に提出されている。
(技術分野)
本開示は、一般的に、多重特異性結合分子およびその治療的適用の分野に関し、より詳しくは、CD86アンタゴニスト結合ドメインと、IL−10アゴニスト、HLA−Gアゴニスト、HGFアゴニスト、IL−35アゴニスト、PD−1アゴニスト、BTLAアゴニスト、LIGHTアンタゴニスト、GITRLアンタゴニストまたはCD40アンタゴニストなどの異種標的に特異的な別の結合ドメインとで構成された融合タンパク質、ならびにその組成物および治療的使用に関する。
ヒト免疫機構は、一般的には、異物および病原体による損傷から身体を保護する。免疫機構が身体を保護する様式の一例は、Tリンパ球またはT細胞と称される特殊細胞の産生によってもたらされるものである。T細胞と抗原提示細胞(APC)との細胞間相互作用により、T細胞共刺激性(costimulatory)シグナルが生成され、これにより、抗原に対するT細胞応答がもたらされる。十分なT細胞の活性化には、抗原提示細胞上に存在する抗原−MHC複合体に対するT細胞受容体(TCR)の結合と、抗原提示細胞上、特に樹状細胞上に存在するCD86および/またはCD80リガンドに対するT細胞表面上の受容体CD28の結合の両方が必要とされる。
本開示により、活性を改変するための抗原提示細胞(APC)の標的化が可能になる。例えば、CD86に優先的に結合する第1結合ドメインと、第2結合ドメイン(異種結合ドメイン)とを含む多重特異性xceptor融合タンパク質を提供することにより、T細胞の活性が調整され得る。一部の特定の実施形態では、多重特異性xceptor融合タンパク質は、第1および第2結合ドメイン、第1および第2リンカー、ならびに介在ドメインを含み、該介在ドメインの一端は、リンカーによって、CD86結合ドメインである第1結合ドメインに融合されており、他端は、リンカーによって、IL−10アゴニスト、HLA−Gアゴニスト、HGFアゴニスト、IL−35アゴニスト、PD−1アゴニスト、BTLAアゴニスト、LIGHTアンタゴニスト、GITRLアンタゴニストまたはCD40アンタゴニストである第2結合ドメインに融合されている。
本発明の好ましい実施形態では、例えば以下が提供される:
(項目1)
介在ドメインによって異種結合ドメインに連結されたCD86結合ドメインを含む多重特異性融合タンパク質であって、該異種結合ドメインは、IL−10アゴニスト、HLA−Gアゴニスト、HGFアゴニスト、IL−35アゴニスト、PD−1アゴニスト、BTLAアゴニスト、LIGHTアンタゴニスト、GITRLアンタゴニストまたはCD40アンタゴニストである、多重特異性融合タンパク質。
(項目2)
該CD86結合ドメインが、CTLA4エクトドメインまたはCTLA4エクトドメインのサブドメインである、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目3)
該CD86結合ドメインが、CD86に特異的なFab、scFv、ドメイン抗体、または重鎖のみの抗体である、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目4)
該CD86結合ドメインが、FUN1抗CD86抗体またはそのヒト化改変体の軽鎖および重鎖の可変ドメインを含む、項目3に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目5)
該FUN1結合ドメインが、配列番号187または237のアミノ酸1〜258を含む、項目4に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目6)
該CD86結合ドメインが、配列番号1〜6のいずれか1つに示すアミノ酸配列を含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目7)
該異種結合ドメインが、配列番号7、14、15、18〜22、25、26、29、32、33、39および40のいずれか1つに示すアミノ酸配列を含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目8)
該異種結合ドメインが、配列番号7に示すアミノ酸配列または87位に点変異を含むその改変体を含むIL−10アゴニストを含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目9)
該異種結合ドメインが、配列番号14または15に示すアミノ酸配列を含むHLA−Gアゴニストを含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目10)
該異種結合ドメインが、配列番号18〜22のいずれか1つに示すアミノ酸配列を含むHGFアゴニストを含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目11)
該異種結合ドメインが、配列番号25または26に示すアミノ酸配列を含むIL−35アゴニストを含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目12)
該異種結合ドメインが、配列番号32または33に示すアミノ酸配列を含むPD−1アゴニストを含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目13)
異種結合ドメインが、配列番号29に示すアミノ酸配列を含むBTLAアゴニストを含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目14)
該異種結合ドメインが、配列番号29に示すアミノ酸配列を含むLIGHTアンタゴニストを含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目15)
該異種結合ドメインが、配列番号39または40に示すアミノ酸配列を含むGITRLアンタゴニストを含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目16)
該介在ドメインが、該CD86結合ドメインと該異種結合ドメインとの間に配置される免疫グロブリンの定常領域または部分領域を含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目17)
該免疫グロブリンの定常領域または部分領域がIgG1 CH2CH3である、項目16に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目18)
該介在ドメインが、第1リンカーと第2リンカーとの間に配置される免疫グロブリンの定常領域を含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目19)
該第1リンカーおよび第2リンカーが、独立して、配列番号43〜166、244、307、320、355〜379および383〜398に示すリンカーから選択される、項目18に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目20)
該介在ドメインが、ヒト免疫グロブリンFc領域、アルブミン、トランスフェリン、または血清タンパク質に結合する骨格ドメインを含む、項目18に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目21)
該介在ドメインが、アミノ末端からカルボキシ末端に向かって以下:
−L1−X−L2−
(式中:
L1およびL2は各々、独立して、2〜約150個のアミノ酸を含むリンカーであり;
Xは、免疫グロブリンの定常領域もしくは部分領域、アルブミン、トランスフェリン、または別の血清タンパク質結合タンパク質である)
の構造を含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目22)
該免疫グロブリンの定常領域または部分領域がIgG1 CH2CH3である、項目21に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目23)
L1が、1つ以上のシステインが他のアミノ酸で置き換わるように任意選択で変異させられたヒト免疫グロブリンヒンジ領域である、項目21に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目24)
Xが、FcγRI−III相互作用を解消するがFcRn相互作用は保持するように任意選択で変異させられたヒトIgG1 Fcドメインまたはその少なくとも1つのCHドメインである、項目21または23に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目25)
該介在ドメインが二量体化ドメインである、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目26)
下記の構造:
N−BD1−X−L2−BD2−C
(式中:
BD1は、CTLA4のエクトドメインと少なくとも約90%同一であるCD86結合ドメインであり;
−X−は、−L1−CH2CH3−(式中、L1は、第1システインを置換することにより任意選択で変異させられた第1IgG1ヒンジであり、−CH2CH3−は、FcγRI−III相互作用を解消するがFcRn相互作用は保持するように任意選択で変異させられたIgG1 FcドメインのCH2CH3領域である)であり;
L2は、配列番号43〜166、244、307、320、355〜379および383〜398から選択されるリンカーであり;
BD2は、該異種結合ドメインである)
を有する、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目27)
配列番号9、13、17、24、28、31、35、38、42、171、173、175、177、179、181、183、185、187、189、191、193、195、197、199、201、203、205、207、209、211、213、215、217、219、221、223、237、239、252、254、256、258、260、262、266、276、302、330、334、336、338、340、350、352、および354のいずれか1つに示すアミノ酸配列を含む、項目1に記載の多重特異性融合タンパク質。
(項目28)
前述の項目のいずれかに記載の1種類以上の多重特異性融合タンパク質と、薬学的に許容され得る担体、希釈剤または賦形剤とを含む組成物。
(項目29)
該多重特異性融合タンパク質が該組成物中で二量体または多量体として存在している、項目28に記載の組成物。
(項目30)
項目1〜27のいずれか1項に記載の多重特異性融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
(項目31)
配列番号8、12、16、23、27、30、34、37、41、170、172、174、176、178、180、182、184、186、188、190、192、194、196、198、200、202、204、206、208、210、212、214、216、218、220、222、236、238、251、253、255、257、259、261、265、275、301、329、333、335、337、339、349、351および353のいずれか1つに示すポリヌクレオチドを含む、項目30に記載のポリヌクレオチド。
(項目32)
発現制御配列に作動可能に連結された項目30または31に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
(項目33)
項目32に記載の発現ベクターを含む宿主細胞。
(項目34)
治療有効量の前述の項目のいずれかに記載の多重特異性融合タンパク質またはその組成物を投与することを含む、CD86、IL−10、HLA−G、HGF、IL−35、PD−1、BTLA、LIGHT、GITRLまたはCD40と関連している障害を有する被験体の処置方法。
(項目35)
該障害が、関節リウマチ、若年性関節リウマチ、全身性エリテマトーデスまたは固形臓器移植である、項目34に記載の方法。
本明細書に示すように、CD86は、免疫グロブリンスーパーファミリーの一構成員であるI型膜タンパク質を含む。CD86は、抗原提示細胞によって発現され、2種類のT細胞タンパク質CD28およびCTLA4のリガンドである。CD28とCD28との結合は、T細胞の活性化に対する共刺激性シグナルであるが、CD28とCTLA4との結合は、T細胞の活性化を下方調節し、免疫応答を低減させる。選択的スプライシングにより、異なるアイソフォーム(GenbankアクセッションNP_787058.3およびNP_008820.2)をコードする2種類の転写物改変体がもたらされる。
上記のように、一部の特定の実施形態では、本開示により、IL10アゴニストである(すなわち、IL10シグナル伝達を増大させ得る)結合領域またはドメインを含むポリペプチドを提供する。一部の実施形態では、IL10アゴニスト結合ドメインは、IL10もしくはIL10Fcまたはその機能性サブドメインである。他の実施形態において、IL10アゴニスト結合ドメインは、IL10R1またはIL10R2に特異的に結合する単鎖結合タンパク質(scFvなど)である。一部の実施形態では、IL10アゴニスト結合ドメインは、配列番号7の87位に点変異、例えば「I」から「A」または「S」(本明細書において、それぞれ、I87AまたはI87Sと称する)を含むIL10である。I87改変体IL10分子は、野生型IL10と比べて免疫賦活性が低いことがわかっている(Dingら,J.Exp.Med.191:213,2000)。また、IL10は、通常、各単量体分子のアミノ末端ドメインが他方の単量体のカルボキシ末端ドメインに結合しているホモ二量体を形成している。一実施形態において、IL10アゴニスト結合ドメインは、分子の2つのサブドメイン(アミノおよびカルボキシ末端ドメイン)を引き離す短いリンカー(gggsgg 配列番号379)を有するIL10分子であり、そのため、これらのサブドメインが分子内二量体を形成し得ることも調べた。これを、本明細書においてモノIL10分子と称する。
上記のように、一部の特定の実施形態では、本開示により、HLA−Gアゴニストである(すなわち、HLA−Gシグナル伝達を増大させ得る)結合領域またはドメインを含むポリペプチドを提供する。一部の実施形態では、HLA−Gアゴニスト結合ドメインは、成熟タンパク質の147位のシステインが代替的アミノ酸(例えば、セリン)に変異させられた、HLA−G1(配列番号14)、HLA−G5(配列番号15)またはHLA−Gムテインである。それぞれHLA−G1およびHLA−G5のアミノ酸1〜24および1〜23は、シグナルペプチドを示す。他の実施形態において、HLA−Gアゴニストドメインは、フレキシブルリンカーによってN末端に結合されたβ−2 ミクログロブリンを有するか、または有しないかのいずれかである、HLA−G1またはHLA−G5のエクトドメインである。かかるリンカーの例としては、配列番号43〜166、244、307、320、355〜379および383〜398に示すもの、および後述するものが挙げられる。可溶性HLA−G1の調製は、米国特許出願公開US2004/0044182に記載されている。
上記のように、一部の特定の実施形態では、本開示により、HGFアゴニストである(すなわち、HGFシグナル伝達を増大させ得る)結合領域またはドメインを含むポリペプチドを提供する。一部の実施形態では、HGFアゴニスト結合ドメインはHGFまたはその機能性サブドメインである。
上記のように、一部の特定の実施形態では、本開示により、IL35アゴニストである(すなわち、IL35シグナル伝達を増大させ得る)結合領域またはドメインを含むポリペプチドを提供する。一部の実施形態では、IL35アゴニスト結合ドメインは、IL35(例えば、配列番号25および26)またはその機能性サブドメインである。一部の特定の実施形態では、IL35アゴニスト結合ドメインは、配列番号25および26またはその機能性サブドメインの配列を含む単鎖ポリペプチドである。かかる単鎖ポリペプチドは、1つ以上のリンカー(例えば、本明細書に記載のリンカー)を含むものであってもよい。他の実施形態において、IL35アゴニスト結合ドメインは、IL35アゴニスト活性を有するIL35Rに特異的な単鎖免疫グロブリン可変ドメイン(scFvなど)である。
上記のように、一部の特定の実施形態では、本開示により、LIGHTアンタゴニストである(すなわち、LIGHTシグナル伝達を阻害し得る)結合領域またはドメインを含むポリペプチドを提供する。一部の実施形態では、LIGHTアンタゴニスト結合ドメインは、HVEMエクトドメイン(sHVEMとも称する;配列番号29;シグナルペプチド:アミノ酸1〜38)またはその機能性サブドメインである。他の実施形態において、LIGHTアンタゴニスト結合ドメインは、LIGHTに特異的な単鎖免疫グロブリン様可変ドメイン(scFvなど)である。一部の特定の実施形態では、LIGHTアンタゴニストドメインは、PCT特許出願公開WO 08/027338に記載されたVHおよびVLドメインを含む単鎖免疫グロブリン様可変ドメインである。
上記のように、一部の特定の実施形態では、本開示により、PD−1アゴニストである(すなわち、PD−1シグナル伝達を増大させ得る)結合領域またはドメインを含むポリペプチドを提供する。一部の実施形態では、PD−1アゴニスト結合ドメインは、PD1−L1(例えば、配列番号32;シグナルペプチド:アミノ酸1〜18)、PD1−L2(例えば、配列番号33;シグナルペプチド:アミノ酸1〜19)またはその機能性サブドメインである。他の実施形態において、PD−1アゴニスト結合ドメインは、PD−1に特異的な単鎖免疫グロブリン様可変ドメイン(scFvなど)である。PD−1に特異的な抗体としては、例えば、米国特許出願公開US2006/0210567に記載されたものが挙げられる。
Honjo(2001)Trends Immunol.2:265;Nishimuraら(1999)Immunity 11:141)。PD−1をPD1−L1およびPD1−L2に結合させると、T細胞の活性化の下方調節がもたらされることが示されている(Freemanら(2000)J.Exp.Med.192:1027;Latchmanら(2001)Nat.Immunol.2:261;Carterら(2002)Eur.J.Immunol.32:634)。
上記のように、一部の特定の実施形態では、本開示により、BTLAアゴニストである(すなわち、BTLAシグナル伝達を増大させ得る)結合領域またはドメインを含むポリペプチドを提供する。一部の実施形態では、BTLAアゴニスト結合ドメインは、HVEMエクトドメイン(sHVEMとも称する;配列番号29;シグナルペプチド:アミノ酸1〜38)またはその機能性サブドメイン(例えば、配列番号29のアミノ酸54〜78)である。他の実施形態において、BTLAアゴニスト結合ドメインは、BTLAに特異的な単鎖免疫グロブリン様可変ドメイン(scFvなど)である。BTLAに特異的なアゴニスト抗体は、例えば、Kriegら(2005)J.Immunol.175:6420−6472に記載されている。
上記のように、一部の特定の実施形態では、本開示により、GITRLアンタゴニストである(すなわち、GITRLシグナル伝達を阻害し得る)結合領域またはドメインを含むポリペプチドを提供する。一部の実施形態では、GITRLアンタゴニスト結合ドメインは、GITRエクトドメイン(sGITRとも称する;配列番号39および40;シグナルペプチド:これらの各配列のアミノ酸1〜25)またはその機能性サブドメインである。他の実施形態において、GITRLアンタゴニスト結合ドメインは、GITRLに特異的な単鎖免疫グロブリン様可変ドメイン(scFvなど)である。GITRLに対するアンタゴニスト抗体は、例えば、米国特許出願公開2005/0014224号に記載されている。
上記のように、一部の特定の実施形態では、本開示により、CD40アンタゴニストである(すなわち、CD40シグナル伝達を阻害し得る)結合領域またはドメインを含むポリペプチドを提供する。一部の実施形態では、CD40アンタゴニスト結合ドメインは、CD40に特異的な単鎖免疫グロブリン様可変ドメイン(scFvなど)である。CD40に対するアンタゴニスト抗体は、例えば、米国特許出願公開US2008/0057070、ならびに米国特許5,874,082号および同6,838,261号に記載されている。
本開示により、CD86に結合するドメイン(「CD86結合ドメイン」)と、CD86以外の分子に結合するドメイン(「異種結合ドメイン」)とを含む多重特異性融合タンパク質を提供する。一部の特定の実施形態では、異種結合ドメインは、IL−10アゴニスト、HLA−Gアゴニスト、HGFアゴニスト、IL−35アゴニスト、PD−1アゴニスト、BTLAアゴニスト、LIGHTアンタゴニスト、GITRLアンタゴニストまたはCD40アンタゴニストである。
本明細書に記載の任意の結合ドメインポリペプチドまたは融合タンパク質を効率的に作製するため、発現されるポリペプチドおよび融合タンパク質の分泌を助長するためにリーダーペプチドが使用される。慣用的なリーダーペプチド(シグナル配列)のいずれかの使用により、新生の(nascently)発現ポリペプチドまたは融合タンパク質が分泌経路に指向されること、およびリーダーペプチドと成熟ポリペプチドまたは融合タンパク質との間の接合部またはその付近での該ポリペプチドまたは融合タンパク質からのリーダーペプチドの切断がもたらされることが予測される。具体的なリーダーペプチドは、当該技術分野において知られた考慮事項に基づいて、例えば、分子的操作を容易にするため、制限エンドヌクレアーゼ切断部位をリーダーペプチドのコード配列の最初または最後に容易に含めることを可能にするポリヌクレオチドにコードされた配列などを用いて選択される。ただし、かかる導入配列により、新生の発現タンパク質からのリーダーペプチドの任意の所望のプロセッシングを許容され得ないほど妨害しないか、またはポリペプチドまたは融合タンパク質の成熟中にリーダーペプチドが切断されない場合は、該ポリペプチドもしくは融合タンパク質分子の任意の所望の機能を許容され得ないほど妨害しないかのいずれかであるアミノ酸が指定されるものとする。本開示の例示的なリーダーペプチドとしては、天然リーダー配列(すなわち、天然タンパク質で発現されるもの)または異種リーダー配列、例えば、H3N−MDFQVQIFSFLLISASVIMSRG(X)n−CO2H(式中、Xは、任意のアミノ酸であり、nは0〜3である)(配列番号167、419、420、および421)もしくはH3N−MEAPAQLLFLLLLWLPDTTG−CO2H(配列番号168)の使用が挙げられる。
本開示により、本開示の多重特異性融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド(単離または精製または純粋なポリヌクレオチド)、かかるポリヌクレオチドを含むベクター(例えば、クローニングベクターおよび発現ベクター)、ならびに本開示によるポリヌクレオチドまたはベクターで形質転換またはトランスフェクトした細胞(例えば、宿主細胞)を提供する。
CD86、IL−10、HLA−G、IL−35、PD−1、BTLA、LIGHT、GITRLまたはCD40の調節不全と関連している疾患状態に罹患したヒトまたは非ヒト哺乳動物を処置するため、本開示の多重特異性融合タンパク質は、該被験体に、1回以上の投与過程後に該疾患状態の症状が改善されるのに有効な量で投与される。ポリペプチドであるため、本開示の多重特異性融合タンパク質を薬学的に許容され得る希釈剤(任意選択で、他の薬学的に許容され得る賦形剤である安定剤を含めてもよい)中に懸濁または溶解させてもよく、これは、注射または注入による静脈内投与に使用され得る(より詳しく後述する)。
(Xceptorの配列)
CTLA4エクトドメインを有する例示的な多重特異性融合タンパク質のヌクレオチド発現カセットおよびアミノ酸の配列を、それぞれ、配列番号8、12、16、23、27、30、34、37および41、ならびに配列番号9、13、17、24、28、31、35、38および42に示す。これらの例示的な多重特異性融合タンパク質の活性を、以下の実施例1〜6に記載のようにして試験した。以下の実施例で使用する略語としては、以下の用語:PBS−T:PBS、pH7.2〜7.4および0.1%Tween(登録商標)20;ワーキング緩衝液:1%BSAを含むPBS−T;ブロッキング緩衝液:3%BSAを含むPBS−Tが挙げられる。
(抗CD86結合ドメイン)
ハイブリドーマ3D1およびFUN1を用いて、これらのモノクローナル抗体の抗CD86可変結合ドメインをクローニングした。FUN1および3D1抗CD86モノクローナル抗体の重鎖、軽鎖、scFvリンカー、およびCDRの配列は、それぞれ、配列番号305〜313および318〜326を参照されたい。
(BIAcoreTMによるIL10−R1に対するXceptor結合)
IL10−R1結合活性を、CTLA4エクトドメインおよびIL10ドメインを含むXceptor(配列番号9)で、実質的に以下のようにして調べた。
(ELISAによるCD80およびCD80とIL10の両方に対するXceptorの結合)
CD80およびIL10R結合活性を、ELISAにより、アバタセプト、CTLA4−N2と称するCTLA4−Ig構築物(配列番号11および10)、ならびに配列番号9のCTLA4/IL10 Xceptorで、実質的に以下のようにして調べた。
96ウェル黒色Maxisorp CD80プレート(Nuncカタログ番号437111)プレートの各ウェルを、2μg/ml溶液のCD80−mIg(Ancellカタログ番号510−020)でコーティングし、4℃で一晩インキュベートした。次いで、プレートをブロッキング緩衝液(3%無脂肪粉乳を含むPBS−T)でブロックした。ブロッキング緩衝液で連続希釈した試験対象のタンパク質の試料を、CD80−mIgコートプレートのウェルに二連で添加し、プレートに覆いをし、室温で約1時間インキュベートした。洗浄後、100μl/ウェルのホースラディッシュペルオキシダーゼヤギ抗ヒトIgG(γ)(ブロッキング緩衝液中1:1,000に希釈)を添加し、プレートに覆いをして室温で60分間インキュベートした後、QuantaBluTM Fluorogenic Peroxidase Substrate(Thermo Scientificカタログ番号15169)において、室温で10分間インキュベーションした。各ウェルの吸光度の読取りを420nmで行なった。非関連融合タンパク質TRU−015を陰性対照として使用した。
96ウェル黒色Maxisorp CD80プレート(Nuncカタログ番号437111)プレートの各ウェルを、2μg/ml溶液のsIL10Ra(R&D Systemsカタログ番号510−020)でコーティングし、4℃で一晩インキュベートした。次いで、プレートをブロッキング緩衝液(3%無脂肪粉乳を含むPBS−T)でブロックした。ブロッキング緩衝液で連続希釈した試験対象のタンパク質の試料を、sIL10Raコートプレートのウェルに二連で添加し、プレートに覆いをし、室温で約1時間インキュベートした。洗浄後、10ng/ulの抗CD152抗体(Ancell♯359−020)または5ug/mlのCD80−mIg(Ancell♯ 510−020)を添加した後、ホースラディッシュペルオキシダーゼヤギ抗マウスIgG(Fc)(Pierce ♯31439)(ブロッキング緩衝液中1:10,000に希釈)を添加し、プレートに覆いをして室温で60分間インキュベートした後、QuantaBluTM Fluorogenic Peroxidase Substrate(Thermo Scientificカタログ番号15169)において、室温で10分間インキュベーションした。各ウェルの吸光度の読取りを420nmで行なった。非関連融合タンパク質TRU−015を陰性対照として使用した。
(Xceptor誘導性STAT3リン酸化)
IL10−R1に対するIL10の結合によりJak−1およびTykが活性化され、これによりSTAT3の活性化がもたらされることがわかっている(例えば、Williamsら(2007)J. Biol. Chem. 282:6965−6975参照)。また、研究により、フローサイトメトリーを用いてPBMCにおけるSTAT3のリン酸化が試験され得ることが示されている(Lafargeら(2007)BMC Mol. Biol. 8:64)。配列番号9のCTLA4/IL10 Xceptorを含む種々のIL10含有構築物がヒトPBMCにおいてSTAT3のリン酸化を誘導する能力を、実質的に以下のようにして調べた。
(CD86およびCD86とIL10との両方に対するXceptor結合)
CD86を発現するヒトBリンパ芽球系細胞株(WIL2−S)を用いてCD86結合を調べ、CD86を表面上に発現するCHO細胞株(HuCD86−2A2細胞)を、マウスIgG Fcに連結させた可溶性IL10受容体1(IL10R1)融合タンパク質または抗IL10抗体と組み合わせて用い、xceptor分子上にみられるCD86アンタゴニストとIL10アゴニストの同時結合を調べた。簡単には、WIL2−SまたはHuCD86−2A2細胞を、飽和レベルからバックグラウンドレベルまでの範囲の濃度のCD86アンタゴニストを含む試験分子とともにインキュベートした。HuCD86−2A2細胞に、IL10R1−muIg融合タンパク質またはマウス抗IL10抗体をさらに添加し、CD86によって細胞表面に結合された試験分子との複合体を形成させた。インキュベーション後、細胞を洗浄し、xceptor分子、IL10R−Ig融合タンパク質、または抗IL10抗体のFc部分に特異的なフルオロフォア(R−フィコエリトリン)タグ化F(Ab’)2抗体。次いで、このタグ化細胞をフローサイトメータに通し、各試料の中央値蛍光強度をプロットすることによりデータを分析した。
(Xceptorタンパク質における種々の結合ドメインリンカーの長さ)
CTLA4::IL10分子のリンカー安定性を調べた。リンカー改変体をすべて、CHOK1SV細胞内に安定的にトランスフェクトし、安定なバルク集団を37℃で培養し、第3日目に34℃にシフトした。タンパク質をプロテインAカラムによって精製した後、第2工程のSECカラムによって精製した。ELISAアッセイを行ない、IL10R1−mIg融合タンパク質に対するIL10結合を測定した。図8の結果により、xceptor(CTLA4::IL10)−65(配列番号9)では、リンカーの不安定性によりIL10結合が低減されていたが、(CTLA4::IL10)−68(配列番号171)、(CTLA4::IL10)−69(配列番号302)、および(CTLA4::IL10)−75(配列番号173)は、これらの培養条件において安定であることが示された。
(Xceptorタンパク質の血清安定性および薬物動態)
(CTLA4::IL10)−75(配列番号173)の血清安定性を試験した。この実験では、配列番号173の精製タンパク質を、マウス血清中37℃で、24時間、72時間およびF/T(凍結/解凍)およびアッセイ時点(T0)でスパイクイン(spike in)で処理した。すべての安定性試料を、CD80に対するその結合について(CD80発現1F6 CHO細胞を使用)、ならびにCD80に対する同時結合およびxceptor上のIL10に対する抗IL10抗体の結合について試験した。その結果により、配列番号173は非常に安定であり、マウス血清中でのインキュベーション後も、試験濃度(約0.01nM〜約10nM)において抗IL10結合を保持していることが示された。
(実施例8)
(CD80、CD86およびIL10R1に対するXceptor結合)
CD80およびIL10R1結合をELISAにより調べ、ならびに/またはCD86およびIL10R1結合を、CD86発現CHO細胞およびIL10R1−Igまたは抗IL10のいずれかを用いて調べた。マウスCD80およびCD86に対する結合を、ELISAにより、ビオチン標識マウス抗体を用いて調べた。調べる分子には、対照CTLA4−Ig(配列番号11)融合タンパク質と、以下の試験xceptor分子:(CTLA4::IL10)−65(配列番号9);(CTLA4::IL10)−68(配列番号171);(CTLA4::IL10)−69(配列番号302)、(CTLA4::PDL2)−65(配列番号336)を含め、実質的に実施例3および5に記載のとおりにした。
(BIAcoreTMによるCD80に対するXceptor結合)
CD80結合活性を、アバタセプト(Orencia(登録商標),Bristol−Myers Squibb)、L104E A29Y変異を含むCTLA4−Fc融合体(ベラタセプト(belatacept)と類似)(配列番号217)、各々、CTLA4エクトドメインとIL10ドメインとを有する3つのCTLA4::IL10 xceptorリンカー改変体:(CTLA4::IL10)−65(配列番号9)、(CTLA4::IL10)−68(配列番号171)、および(CTLA4::IL10)−75(配列番号173);L104E A29Y変異を有するCTLA4エクトドメインとIL10ドメインとを含むxceptor(配列番号219)、ならびにCTLA4エクトドメインとPD−L1ドメインとを含むxceptor(配列番号13)で、実質的に本明細書に記載のようにして調べた。BIAcoreによるCD80/86に対するCTLA4−Fcの結合の試験は、既に報告されている(Greeneら(1996)J. Biol. Chem. 271:26762−26771;van der Merweら(1997)J. Exp. Med. 185:393−403;Collinsら(2002)Immunity 17:201−210)。CTLA4によるCD80の結合は中程度の親和性(Kd=約200nM)であり、高いオン速度(on rate)(4〜8×105M−1s−1)および中程度のオフ速度(off rate)(0.090s−1)を特徴とする。CD80に対する二量体CTLA4−Fcの結合は二相性であり、2つのオフ速度(0.004、0.086s−1)が報告されている。CTLA4−FcにおけるL104E A29Y変異により、CD80に対する親和性が、野生型CTLA4−Fcと比べて2倍増大することが報告されており(Larsenら(2005)Am. J. Transplant. 5:443−453)、これは、主に初期オフ速度の減少による(0.00221s−1に対して0.00108s−1と報告)。
Xceptorの平衡親和性を測定すると、アバタセプトのもの、およびCTLA4−Fcで報告された親和性(200nM;Greeneら 1996,同書)と類似していた。CTLA4::PDL1 xceptorの結合反応速度は、アバタセプトまたはCTLA4::IL10 xceptorのものと異なっていたが、オン/オフ速度を補正すると同様の親和性になる。これは、PD−L1がCD80に、CTLA4(2.5μMのKD)よりも弱い親和性で結合するためであろう。先の試験と同様、L104E A29Y変異を含むCTLA4改変体(配列番号217および219)は、CD80に対してより高い親和性を有し、初期オフ速度のほぼ2倍の改善がみられた(配列番号217で0.00373s−1に対してアバタセプトでは0.006s−1)。
(BIAcoreTMによるCD86に対するXceptor結合)
CD86結合活性を、アバタセプト、L104E A29Y変異を含むCTLA4−Fc融合体(ベラタセプトと類似)(配列番号217)、CTLA4エクトドメインとIL10ドメインとを含むxceptor(配列番号9)、L104E A29Y変異を有するCTLA4エクトドメインとIL10ドメインとを含むxceptor(配列番号219)、ならびに3D1およびFUN1抗CD86抗体由来の抗体可変ドメインを含む種々の構築物(SMIP、PIMS、およびxceptor)で、実質的に本明細書に記載のようにして調べた。CTLA4によるCD86の結合は低親和性(Kd=約2.2μM)であり、高いオン速度(2〜13×105M−1s−1)および中程度のオフ速度(0.42s−1)を特徴とする。CTLA4−FcにおけるL104E A29Y変異により、CD86に対する親和性が、野生型CTLA4−Fcと比べて4倍増大することが報告されている(Larsenら(2005)Am. J. Transplant. 5:443−453)、これは、主に初期オフ速度の減少による(0.00816s−1に対して0.00206s−1と報告)。明らかに、3D1またはFUN1抗体の反応速度または平衡親和性データはこれまでに公表されておらず、そのためこれらの相対親和性を求めた。
(BIAcoreTMによるマウスCD86に対するXceptor結合)
マウスCD86結合活性を、アバタセプト、L104E A29Y変異を含むCTLA4−Fc融合体(ベラタセプトと類似)(配列番号217)、異なるBD2リンカーを含むが同じCTLA4およびIL10ドメインを含む2種類のxceptor(配列番号171および173)、L104E A29Y変異を有するCTLA4エクトドメインとIL10ドメインとを含むxceptor(配列番号219)、ヒトFcドメインとのマウスCTLA4融合体(配列番号404)、ならびにラットGL1抗マウスCD86抗体由来の抗体可変ドメインを含む種々の構築物、例えば、GL1抗体断片およびヒトIL10ドメインを含む2種類のxceptor(GL1::IL10,配列番号252;およびIL10::GL1,配列番号256)で、実質的に以下に記載するようにして調べた。ヒトCTLA4は、マウスCD86と交差反応性であることがわかっているが、本発明者らが知る限り、反応速度または親和性の測定はこれまでに報告されていない。同様に、ラットGL1抗体は、マウスCD86に特異的であることが報告されているが、反応速度または親和性の測定は報告されていない。
ヒトCTLA4およびヒトIL10ドメインを含むXceptor(配列番号171および173)のマウスCD86に対する親和性(1.54、1.81μM)は、ヒトCTLA4−Fcで報告されたヒトCD86に対する親和性(2.2μM;Greeneら 1996)よりもわずかに高かった。L104E A29Y変異を含むヒトCTLA4改変体(配列番号217および219)のマウスCD86に対する親和性は2倍しか高くなく(870〜920nM);これは、マウスCD86に対する有益な高い初期オン速度と不利益な高い初期オフ速度の組合せにより生じているようである。マウスCTLA4は、マウスCD86に対して、ヒトCTLA4と同様かまたはわずかに低い全体親和性を有するようである。GL1抗体について、親ラットモノクローナル抗体を、単鎖GL1抗体断片を含むSMIP(GL1 SMIP,配列番号239)とともに調べた;両者で、マウスCD86に対する同様の結合反応速度および全体親和性が示され(それぞれ、37.7、26.2nM)、これは、ヒトまたはマウスCTLA4含有構築物よりも有意に高かった(約50倍)。IL−10およびGL1抗体断片を含むXceptor(配列番号252および256)では、マウスCD86に対して、親抗体またはSMIPと比べて3倍低い親和性が示されたが、これは、各場合において、低い初期オン速度またはオフ速度のいずれかのために生じるようであった。
(BIAcoreTMによるPD1に対するXceptor結合)
PD1結合活性を、PDL1−Fc(配列番号268)およびPDL2−Fc(配列番号270)、ならびにCTLA4エクトドメインとPDL1(配列番号13)またはPDL2(配列番号336)ドメインのいずれかを含むxceptorで、実質的に以下のようにして調べた。PDL2によるPD1の結合は、一般的に、PDL1によるPD1の結合よりも親和性が高いと報告されている;以前の反応速度分析(Youngnakら,(2003)Biochem. Biophys. Res. Comm. 307、672)で、中程度の親和性が示唆された(PDL1で112nM、PDL2で37nM)が、別の形式で行なわれた平衡分析(Butteら,(2007)Immunity 27、111)では、より弱い親和性が示唆された(PDL1で770nM、PDL2で590nM)。
PDL1−Fc(配列番号268)およびPDL2−Fc(配列番号270)では、文献に報告されたものと同様の結合反応速度および全体親和性が示された。CTLA4と、カルボキシ末端に融合されたPDL1またはPDL2ドメインを含むXceptor(配列番号13および336)は、PD1に対して、アミノ末端PDL1/PDL2融合体(246、42nM)よりも著しく弱い(約10倍)親和性(2.36、0.34μM)を有した;これは、主に、初期オフ速度の顕著な増大(0.165、0.0395対0.0544、0.00724)により生じ、該結合ドメインがBD2(カルボキシ末端)の位置に存在すると、PDL1/2:PD1複合体が不安定化され得ることを示す。
(Xceptor融合タンパク質はヒトT細胞応答をブロックする)
この実施例は、本開示のxceptor融合タンパク質がヒトT細胞応答をブロックし得ることを示す。混合型リンパ球反応(MLR)を使用し、xceptor融合タンパク質によるブロックを試験した。簡単には、ヒト末梢血単核細胞(PBMC)を2例のドナーから、標準的な方法を用いて単離し、別々に維持した。先の試験に基づき、第1のドナー由来のPBMCを「応答群」集団と命名し、第2のドナー由来のPBMCを「刺激群」集団と命名した。どちらのドナーPBMCも、標準的な方法を用いてCFSEで標識した。細胞分裂を抑制するため、刺激群PBMCをマイトマイシン−C(MMC)で処理した。MMC(Sigma ♯M4287−2mg)を、滅菌蒸留水(Gibco ♯15230)中にて0.5mg/mlの濃度で再構成させた。刺激群PBMCは、1×106/mlの濃度で完全培養培地(CM)(10%ヒトB血清,100U/mlペニシリン,100ug/mlストレプトマイシン,2mM L−グルタミン,NEAA,ピルビン酸Naを含むRPMI−1640(0.2um濾過CM))中に懸濁させ、MMCを、終濃度25μg/mlまで添加した。次いで、刺激群PBMC/MMC混合物を37℃、5%CO2で30分間インキュベートした後、細胞をCMで3回洗浄した。応答群および刺激群の細胞を4×106/mlの濃度でCM中に懸濁させ、96ウェル平底組織培養プレートのウェルあたり0.05mlの各細胞集団を最終2×105細胞/ウェル/ドナーで添加した。図に示した表示濃度のすべての処理物をプレートに、細胞と同時に添加した(注:抗体および融合タンパク質について示した濃度はモル当量である)。次いで、MLR条件(96ウェルプレートPBMC処理設定)を、37℃、5%CO2で実験期間中インキュベートした。MLR実験物を第7〜8日目に収集し、このとき、細胞をCD5(e−Bioscience)およびCD25(BD Biosciences)に対する蛍光タグ化抗体で染色し、フローサイトメータ(LSR II,Becton Dickenson)にて流した。データを、FlowJoフローサイトメトリーソフトウェア(TreeStar)を用いて分析した。ゲートストラテジーは以下のとおりとした:FSC:SSCリンパ球ゲートに含まれる細胞をCD5発現について分析し、その後続いて、CD5+ゲートに含まれる細胞を、CFSE希釈およびCD25上方調節について分析した。CD5+、CFSE低およびCD25高である細胞を、を活性化T細胞とみなした。
(CD86アンタゴニストXceptorはマウスT細胞応答をブロックする)
2種類の異なるマウス系統C57BL/6(またはB6D2F1)およびBALB/cに由来するマウス脾細胞を、メス/ナイロンメッシュおよびRBC溶解法を用いて単離した。先の試験に基づき、マウス系統C57Bl/6(またはB6D2F1)由来脾細胞を「応答群」集団と命名し、マウス系統BALB/c由来脾細胞を「刺激群」集団と命名した。どちらのマウス系統脾細胞も、上記のようにCFSEで標識した。細胞分裂を抑制するため、刺激群脾細胞をマイトマイシン−C(MMC)で処理した。MMC(Sigma ♯M4287−2mg)を、滅菌蒸留水(Gibco ♯15230)中にて0.5mg/mlの濃度で再構成させた。刺激群脾細胞は、5×107/ml濃度で、完全培養培地(CM)(10%FBS、100U/mlペニシリン、100μg/mlストレプトマイシン、2mM L−グルタミン、NEAA、ピルビン酸Na、および0.05mM 2−メルカプトエタノールを含むRPMI−1640)中に懸濁させ、MMCを終濃度50μg/mlまで添加した。次いで、刺激群脾細胞/MMC混合物を37℃、5%CO2で20分間インキュベートした後、細胞をCMで3回洗浄した。応答群および刺激群の細胞を8×106/mlの濃度でCM中に懸濁させ、96ウェル平底組織培養プレートのウェルあたり0.05mlの各細胞集団を最終4×105細胞/ウェル/系統で添加した。図18〜20に示した表示濃度のすべての処理物をプレートに、細胞と同時に添加した(注:抗体および融合タンパク質について示した濃度はモル当量である)。次いで、MLR条件(脾細胞を有する96ウェルプレート/処理設定)を37℃、5%CO2で実験期間中インキュベートした。MLR実験物を第4〜5日目に収集し、このとき、細胞をCD5(BD Biosciences)およびCD25(BD Biosciences)に対する蛍光タグ化抗体で染色し、フローサイトメータ(LSR II,Becton Dickenson)にて流した。データを、FlowJoフローサイトメトリーソフトウェア(TreeStar)を用いて分析した。ゲートストラテジーは以下のとおりとした:FSC:SSCリンパ球ゲートに含まれる細胞をCD5発現について分析し、その後続いて、CD5+ゲートに含まれる細胞をCFSE希釈およびCD25上方調節について分析した。CD5+、CFSE低およびCD25高である細胞を活性化T細胞とみなした。
(IL10を含むXceptor分子の免疫賦活活性)
種々のxceptor融合タンパク質におけるIL10の免疫賦活活性を、インビトロ細胞増殖アッセイにおいて試験した。特に、MC/9マウス肝臓脂肪細胞株を以下のようにして使用した。MC/9細胞株(American Type Culture Collection ♯CRL−8306)をDMEMまたはRPMI+10%FBSおよび5%Rat T−STIM(BD ♯354115)中で培養した。Rat T−STIMなしの培地中でMC/9細胞を洗浄し、一晩おいて置いた(37℃、5%CO2でインキュベート、96ウェル平底プレート内、1×105細胞/ウェル、100μl/ウェル)。種々の濃度のIL10タンパク質およびxceptor融合タンパク質を24時間インキュベートし、6時間後、増殖を[3H]チミジン取込みによって評価した。
(Xceptor分子が特定の細胞型を標的とするようにする操作)
この実施例では、Xceptor融合タンパク質が特定の細胞型を標的とするようにする操作を説明する。これは、BD1およびBD2の親和性を操作することによりなされる。4種類のXceptor分子を、CD86およびhuIL10R1に対して異なる親和性を有するように操作した。表9は、これらの4種類の分子の異なる親和性比を示す。例えば、CD86結合ドメイン(例えば、3D1またはヒト化FUN1)およびhuIL10R1に対して低い親和性を有する操作型IL10分子(I87A)の使用によってCD86に対する親和性を改善することにより、次いで、かかる配置は、目的の特定の細胞型(APCなど)を標的とするのに有利になるように使用され得る。
(インビボ関節リウマチ動物モデルにおけるXceptor活性)
(関節リウマチ)
本明細書において開示する任意のxceptor分子の治療効能を、関節リウマチ(RA)、すなわちコラーゲン誘発関節炎(CIA)モデルおよびグルコース−6−リン酸イソメラーゼ(G6PI)モデルの2つのマウスモデルの少なくとも一方において調べる。これらの各モデルは、RAにおける一部の特定の類型の治療用薬物の効能の推定に有用であることが示されている(Holmdahl(2000)Arthritis Res.2:169;Holmdahl(2006)Immunol.Lett.103:86;Holmdahl(2007)Methods Mol.Med.136:185;McDevitt,H.(2000)Arthritis Res.2:85;KamradtおよびSchubert(2005)Arthritis Res.Ther.7:20参照)。
CIAモデルは、その病因および免疫学的根拠に関して最も十分に特性評価された関節炎のマウスモデルである。また、これは、最も広く使用されているRAモデルであり、薬物が患者の疾患を抑止する能力の推定について完璧ではないが、RAの新たな潜在的治療薬を研究する際には、多くの場合でモデル選択肢に考慮される(Jirholtら(2001)Arthritis Res.3:87;Van den Berg,W.B.(2002)Curr.Rheumatol.Rep.4:232;Rosloniec(2003)Collagen−Induced Arthritis. In Current Protocols in Immunology,Coliganら編,John Wiley & Sons,Inc,Hoboken,NJ)。
G6PIモデルでは、アジュバント中のG6PIでのDBA/1マウスの免疫処置によって関節炎を誘導する(KamradtおよびSchubert(2005)Arthritis Res.Ther.7:20;Schubertら,(2004)J.Immunol.172:4503;Bockermann,R.ら(2005)Arthritis Res.Ther.7:R1316;Iwanamiら、(2008)Arthritis Rheum.58:754;Matsumotoら、(2008)Arthritis Res.Ther.10:R66)。G6PIは、事実上、体内のすべての細胞中に存在する酵素である。なぜ免疫処置によって関節特異的疾患が誘導されるのかはわかっていない。CTLA4−Ig、TNFアンタゴニスト(例えば、Enbrel(登録商標))および抗IL6受容体モノクローナル抗体などのいくつかの薬剤により、G6PIモデルにおいて関節炎の発症が抑止されることが示されている。
Claims (35)
- 介在ドメインによって異種結合ドメインに連結されたCD86結合ドメインを含む多重特異性融合タンパク質であって、該異種結合ドメインは、IL10またはモノIL10であり、該IL10がアゴニスト活性を有し、かつ、該モノIL10がアゴニスト活性を有する、多重特異性融合タンパク質。
- 前記CD86結合ドメインが、CTLA4エクトドメインまたはCTLA4エクトドメインのサブドメインである、請求項1に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記CD86結合ドメインが、CD86に特異的なFab、scFv、ドメイン抗体、または重鎖のみの抗体である、請求項1に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記CD86結合ドメインが、FUN1抗CD86抗体またはそのヒト化改変体の軽鎖および重鎖の可変ドメインを含む、請求項3に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記CD86結合ドメインが、配列番号187または237のアミノ酸1〜258を含む、請求項4に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記CD86結合ドメインが、配列番号3〜6および410〜412からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記CD86結合ドメインが、重鎖可変領域および軽鎖可変領域を含み、該重鎖可変領域が、配列番号308のCDR1、配列番号309のCDR2および配列番号310のCDR3を含み、該軽鎖可変領域が、配列番号311のCDR1、配列番号312のCDR2および配列番号313のCDR3を含む、請求項1に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記CD86結合ドメインが、重鎖可変領域および軽鎖可変領域を含み、該重鎖可変領域が、配列番号321のCDR1、配列番号322のCDR2および配列番号323のCDR3を含み、該軽鎖可変領域が、配列番号324のCDR1、配列番号325のCDR2および配列番号326のCDR3を含む、請求項1に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記IL10またはモノIL10が、配列番号380〜382からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1〜8のいずれか一項に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記CD86結合ドメインが配列番号237のアミノ酸1〜258を含み、前記モノIL10が配列番号380を含む、請求項1に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記CD86結合ドメインが、重鎖可変領域および軽鎖可変領域を含み、該重鎖可変領域が、配列番号308のCDR1、配列番号309のCDR2および配列番号310のCDR3を含み、該軽鎖可変領域が、配列番号311のCDR1、配列番号312のCDR2および配列番号313のCDR3を含み、そして、前記モノIL10が配列番号380を含む、請求項1に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記介在ドメインが、前記CD86結合ドメインと前記異種結合ドメインとの間に配置される免疫グロブリンの定常領域または定常部分領域を含む、請求項1〜11のいずれか一項に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記免疫グロブリンの定常領域または定常部分領域がIgG1 CH2およびCH3ドメインを含む、請求項12に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記介在ドメインが、配列番号409および415〜417からなる群より選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1〜11のいずれか一項に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記介在ドメインが配列番号417を含む、請求項1〜11のいずれか一項に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記介在ドメインが第1リンカーと第2リンカーの間に配置される免疫グロブリン定常領域を含み、該第1リンカーおよび第2リンカーが、独立して、配列番号43〜166、244、307、320、355〜379および383〜398からなる群より選択される、請求項1〜11のいずれか一項に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記介在ドメインが、ヒト免疫グロブリンFc領域、アルブミン、トランスフェリン、血清タンパク質に結合する骨格ドメイン、またはこれらの組み合わせを含む、請求項16に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記介在ドメインが、アミノ末端からカルボキシ末端に向かって以下:
−L1−X−L2−
(式中:
L1およびL2は各々、独立して、2〜150個のアミノ酸を含むリンカーであり;
Xは、免疫グロブリン定常領域、免疫グロブリン定常部分領域、アルブミン、トランスフェリン、および別の血清タンパク質結合タンパク質からなる群より選択される)
の構造を含む、請求項1〜11のいずれか一項に記載の多重特異性融合タンパク質。 - 前記免疫グロブリンの定常領域または定常部分領域がIgG1 CH2およびCH3ドメインを含む、請求項18に記載の多重特異性融合タンパク質。
- L1がヒト免疫グロブリンヒンジ領域であり、該ヒト免疫グロブリンヒンジ領域中の0、1または複数のシステイン残基が各々他のアミノ酸で置き換わっている、請求項18または19に記載の多重特異性融合タンパク質。
- Xが、ヒトIgG1 Fcドメインまたはその少なくとも1つのCHドメインである、請求項18または20に記載の多重特異性融合タンパク質。
- Xが、FcγRI−III相互作用を解消するがFcRn相互作用は保持するように変異させられる、請求項21に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記介在ドメインが二量体化ドメインである、請求項1〜11のいずれか一項に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 下記の構造:
N−BD1−X−L2−BD2−C
(式中:
BD1は、CD86に特異的なFab、scFv、ドメイン抗体、または重鎖のみの抗体であるCD86結合ドメインであり;
−X−は、−L1−CH2CH3−(式中、L1は、IgG1ヒンジ領域であり、−CH2CH3−は、IgG1 FcドメインのCH2CH3領域である)であり;
BD2は、IL10またはモノIL10である)
を有する、請求項1に記載の多重特異性融合タンパク質。 - 前記IgG1ヒンジ領域中の1または複数のシステイン残基が置き換わっている、請求項24に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 前記IgG1 Fcドメインが、FcγRI−III相互作用を解消するがFcRn相互作用は保持するように変異させられる、請求項24に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 介在ドメインによって異種結合ドメインに連結されたCD86結合ドメインを含む多重特異性融合タンパク質であって、該異種結合ドメインはモノIL10であり、
該CD86結合ドメインが、配列番号237のアミノ酸1〜258を含み;
該介在ドメインが、配列番号89を含むリンカー、および、配列番号417を含むヒト免疫グロブリンFc領域を含み;そして
該モノIL10が配列番号380を含む、
多重特異性融合タンパク質。 - 介在ドメインによって異種結合ドメインに連結されたCD86結合ドメインを含む多重特異性融合タンパク質であって、該異種結合ドメインはモノIL10であり、
該CD86結合ドメインが、重鎖可変領域および軽鎖可変領域を含み、該重鎖可変領域が、配列番号308のCDR1、配列番号309のCDR2および配列番号310のCDR3を含み、該軽鎖可変領域が、配列番号311のCDR1、配列番号312のCDR2および配列番号313のCDR3を含み;
該介在ドメインが、配列番号89を含むリンカー、および、配列番号417を含むヒト免疫グロブリンFc領域を含み;そして
該モノIL10が配列番号380を含む、
多重特異性融合タンパク質。 - 前記介在ドメインがさらに、CD69、CD72、CD94、NKG2AおよびNKG2Dからなる群より選択されるII型C型レクチンタンパク質のスターク領域に由来する追加のリンカーを含む、請求項27または28に記載の多重特異性融合タンパク質。
- 請求項1〜29のいずれか1項に記載の多重特異性融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
- 発現制御配列に作動可能に連結された請求項30に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
- 請求項31に記載の発現ベクターを含む宿主細胞。
- 請求項1〜29のいずれか一項に記載の1種類以上の多重特異性融合タンパク質と、薬学的に許容され得る担体、希釈剤または賦形剤とを含む組成物。
- CD86、IL−10と関連している障害を有する被験体を処置するための、請求項33に記載の組成物。
- 関節リウマチ、若年性関節リウマチ、喘息、全身性エリテマトーデス(SLE)、炎症性腸疾患(クローン病および潰瘍性大腸炎を含む)、対宿主性移植片病、乾癬、多発性硬化症、皮膚筋炎、多発性筋炎、悪性貧血、原発性胆汁性肝硬変、急性播種性脳脊髄炎(ADEM)、アジソン病、強直性脊椎炎、抗リン脂質抗体症候群(APS)自己免疫性肝炎、真性糖尿病1型、グッドパスチャー症候群、グレーヴズ病、ギヤン−バレー症候群(GBS)、橋本病、特発性血小板減少性紫斑病、紅斑性狼瘡、尋常性天疱瘡、シェーグレン症候群、側頭動脈炎(「巨細胞性動脈炎」としても知られる)、自己免疫性溶血性貧血、水疱性類天疱瘡、脈管炎、セリアック病、子宮内膜症、汗腺膿瘍、間質性膀胱炎、限局性強皮症、強皮症、ナルコレプシー、神経ミオトニー、白斑および自己免疫性内耳疾患からなる群より選択される自己免疫疾患を有する被験体の処置のため、または、器官移植片に対する有害な免疫アロ応答(alloresponse)の抑制のための、請求項34に記載の組成物。
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